CS266851B1 - Sorbent heparínu a látek obsahujících struktury heparínu a způsob jejich přípravy - Google Patents

Sorbent heparínu a látek obsahujících struktury heparínu a způsob jejich přípravy Download PDF

Info

Publication number
CS266851B1
CS266851B1 CS85273A CS27385A CS266851B1 CS 266851 B1 CS266851 B1 CS 266851B1 CS 85273 A CS85273 A CS 85273A CS 27385 A CS27385 A CS 27385A CS 266851 B1 CS266851 B1 CS 266851B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
heparin
protamine
lysine
sorbent
substances
Prior art date
Application number
CS85273A
Other languages
English (en)
Other versions
CS27385A1 (en
Inventor
Miroslav Ing Csc Rybak
Jiri Ing Csc Coupek
Original Assignee
Rybak Miroslav
Coupek Jiri
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Rybak Miroslav, Coupek Jiri filed Critical Rybak Miroslav
Priority to CS85273A priority Critical patent/CS266851B1/cs
Publication of CS27385A1 publication Critical patent/CS27385A1/cs
Publication of CS266851B1 publication Critical patent/CS266851B1/cs

Links

Landscapes

  • External Artificial Organs (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Abstract

Sorbent heparínu a látek obsahujících struktury heparínu, komplexy bílkovin s heparinem a další látky anionické povahy, jehož podstata spočívá v tom, že na hydrofilní makroporézní trojrozměrné kopolymery hydroxyalkylakrylátů, případně hydroxyalkylmetakrylátů s alkylendiakryláty nebo alkylendimetakryláty je imobilizován protaminsulfát, protaminchlorid, poly-L-lysin nebo jiný oligopeptid a polypeptid obsahující v převážně arginin, histidin a lysin. Imobilizace je uskutečněna kovalentní vazbou polypeptidu na aktivované hydroxyalkylakrylátové nebo hydroxyalkylmetakrylátové nosiče. Tyto kopolymerní nosiče se aktivují reakcí s epichlorhydrinem a produkt této reakce se ponechá reagovat s roztokem polypeptidu v tlumivém roztoku pH 8 až 12 obsahujícím 1,5 až 1,8 mol/1 síranu amonného při teplotě 10 až 45 °C po dobu 10 až 100 hodin. Po skončení reakce se eventuálně nezreagované epoxidové skupiny ponechají spontánně zhydrolyzovat. Sorbované molekuly protaminu se odstraní afinitní elucí roztokem heparínu. Sorbenty nachá­ zejí uplatnění v separační technice a technologii v analytickém i preparativním měřítku.

Description

Vynález se týká sorbentu heparinu a látek obsahujících struktury heparinu, který je tvořen protamin-sulfátem, protaminchloridem nebo poly-L-lysinem a dalšími oligopepíidy nebo polypeptidy obsahujícími převážně arginin, histidin a lysin, imobilizovanými na Irojrozměrných makroporézních hydrofilních kopolymerech hydroxyalkylakrylátů, případně hydroxyalkylmetakrylátů s alkylendiakryláty nebo dimetakryláty a způsobu jeho přípravy.
Hydrofilní trojrozměrné makroporézní kopolymery hydroxyalkylakrylátů a hydroxyalkylmetakrylátů s alkylendimetakryláty nebo álkylendimetakryláty a způsob jejich přípravy řízenou suspenzní kopolymerizací v přítomnosti inertních organických sloučenin ve vodném nebo organickém dispersním prostředí jsou známy z čs. autorských osvědčení č. 148 828 a 150 819. Kopolymery se vyznačují velmi dobrými mechanickými vlastnostmi a jejich sférický tvar a makroporézní struktura je předurčují k celé řadě aplikací při dělení složitých směsí přírodního i syntetického původu. Hydroxylové funkční skupiny lze chemicky přeměnit řadou substitučních reakcí, oxidací apod. Polymeranalogickými reakcemi modifikované kopolymery byly využity jako nosiče ionogenních skupin (čs. autorské osvědčení č. 171 963, 177 307 a 173 201) nebo jako specificky účinné sorbenty v afinitní chromatografií (čs. autorské osvědčení č. 167 530, 175 047 a 193 845).
Protaminsulfát je polypeptid s vysokým obsahem argininu molekulární hmotnosti do 5 000, izolovaný z mlíčí ryb. Jeho schopnosti stechiometricky reagovat s heparinem za současné inaktivace jeho antikoagulačních vlastností je využíváno v médicíně. Poly-L-lysin je syntetický polypeptid basické povahy. Guanidylové a NH2— skupiny těchto látek,mohou vhodných podmínek reagovat s epoxidovou skupinou hydroxyalkylakrylátů nebo hydroxyalkylmetakrylátů aktivovaných reakcí s epichlorhydrinem, za tvorby kovalentní vazby. Takto vzniklé látky mají povahu sorbentu pro heparin, heparinu podobné látky, komplexy heparinu s dalšími látkami, ev. jiné látky anionické povahy. Této vlastnosti lze využít k separaci heparinu, k separaci komplexu heparin-antitrombin ÍII z bílkovinných směsí, k separaci heparinu z krve za účelem jeho stanovení apod. Na Sepharosu imobilizovali Piepkorn a spolupracovníci protamin (Troinb. res. 13, 1077, 1978) a Mohammad a spolupracovníci imobilizovali poly-L-lysin (Tromb. res. 20, 599, 1980). Použití agarosy pro tyto účely má však mnohé nevýhody pro navrhované účely, tj. separaci heparinu a látek obsahujících struktury heparinu, ať již pro účely preparativní nebo analytické. Sorbenty na bázi hydroxyalkylakrylátů a hydroxyalkylmetakrylátů jsou chemicky stálé, odolné bakteriální kontaminaci a jejich fyzikální vlastnosti se nemění pod vlivem běžně používaných tlaků. To umožňuje jejich opakované použití, použití tlakových čerpadel v technologii separace a automatizace separačního procesu. Provedení imobilizace je jednoduché a technologicky nenáročné. Afinanty neztrácí
CS 266 851 B1 po imobilizaci svoji biospecifickou aktivitu. Pro dosažení dobré mechanické a hydrolytické stability imobilizovaného protaminu nebo poly-Llysínu k použití v laboratorní, případně v průmyslové biospecifické chromatografické separační technice je žádoucí volit nosič na bázi rigidního makroporézního materiálu s pravidelným tvarem částic, který má vhodné hydrodynamické vlastnosti při sloupcovém uspořádání procesu a je dostatečně hydrofilní. Provedení vazby bazických polypeptidů musí být jednoduché, technologicky nenáročné a musí zaručit dostatečnou stabilitu afinantu vůči hydrolýze bez ztráty jeho biochemické aktivity. Těchto vlastností je dosaženo imobilizaci protaminsulfátu (poly-L-lysinu) na hydroxyalkylakrylátových a hydroxyalkýlmetakrylátových nosičích.
Předmětem vynálezu je sorbent heparinu a látek obsahujících struktury heparinu, například glykosaminoglukanů, komplexů bílkovin s heparinem a dalších látek anionické povahy, který je tvořen protaminsulfátem, protaminchloridem, poly-L-lysinem nebo dalšími oligopeptidy a polypeptidy obsahujícími v převážné míře arginin, histidin a lysin, molekulární hmotnosti 5 až 10 000, které jsou vázány na makroporézní, trojrozměrné, hydrofilní kopolymery hydroxyalkylakrylátů, případně hydroxyalkylmetakrylátů, ve kterých alkyl obsahuje 1 až 4 atomy uhlíku, s alkylendiakryláty nebo alkylendimetakryláty, ve kterých alkylen obsahuje 2 až 4 atomy uhlíku. Dále je předmětem vynálezu způsob výroby uvedených materiálů, který spočívá v tom, že se makroporézní trojrozměrné hydrofilní kopolymery hydroxyalkylakrylátů, případně hydroxyalkylmetakrylátů, ve kterých alkyl obsahuje 1 až 4 atomy uhlíku, s alkylendiakryláty nebo alkylendimetakryláty, ve kterých alkylen obsahuje 2 až 4 atomy uhlíku, aktivují reakcí s epichlorhydrinem. Produkt aktivace se ponechá reagovat s roztokem polypeptidu v tlumivém roztoku obsahujícím 1,5 až 1,8 mol/l sulfátu amonného, při teplotě 10 až 45 °C po dobu 10 až 100 hodin a popřípadě nezreagované epoxidové skupiny se nechají hydrolyzovat spontánně a sorbované, ale nevázané částice polypeptidů jsou odstraněny promytím roztokem heparinu. Jako tlumivý roztok je s výhodou použit borátový pufr s pH 8 až 10.
Ve srovnání s polypeptidy vázanými na polysacharidové nosiče je při srovnatelné měrné aktivitě podstatný rozdíl ve vlastnostech sorbentu podle tohoto vynálezu, jsou-li v kontaktu s vodnými roztoky separovaných složek. Makroporézní charakter hydroxyalkylakrylátových a hydroxyalkylmetakrylátových nosičů zaručuje stálost objemů sorbentu při změně pH a iontové síly. Při změně pH mezi hodnotou 5,5 a 8,5 nedochází k měřitelné změně objemu, zvýšení koncentrace chloridu sodného z 0,1 na 2,0 mol/l znamená kontrakci sloupce o méně než 1 %, zvýšením tlaku o 100 kPa dojde ke stlačení sloupce o 0,4 %. Sférický tvar a mechanická pevnost částic těchto sorbentů umožňuje vysoké průtokové rychlosti kapalného média ve sloupcovém uspořádání; makroporézní charakter struktury dovoluje penetraci molekul s molekulovou hmotností do cca 2.166 do vnitřní domény sorbentů bez podstatných omezení způsobených zpomalením difúze, která je často pozorována u homogenních xerogelů polysacharidového typu. Sorbenty umožňují práce za vysokého linku nebo ve vysokých prcpa ralivních sloupcích bez nebezpečí jejich sesedání a ucpávání. Syntetická matrice nosiče zaručuje odolnost proti působení mikroorganismů.
Aktivace akrylátových a metakrylátových nosičů přímou reakcí s epichlorhydrinem je technologicky nenáročná a poskytuje reaktivní produkt, který je v suchém stavu vysoce stabilní. Důležitou skutečností je, že aktivace nosiče probíhá pouze na vnitřním hydrofilním povrchu pórů, nikoli ve hmotě, takže po následné • vazebné reakci s protaminem je eliminace zbylých reaktivních skupin úplná, poměrně rychlá a konečná.
Vlastní vazba protaminu (poly-L-Ijsynu) se uskutečňuje adicí primárních skupin afinantů na epoxidový kruh aktivovaného kopolymeru. Nutnou podmínkou je, aby aminoskupiny nebyly protonizovány, proto je nutno upravit alkalitu roztoku protaminu (poly-L-lysinu) vhodným pufrem na hodnotu pH 8 až 12. S výhodou lze použít 0,1 mol/1 borátových pufrů pH 8,7 až 9,4. Teplota a čas reakce určují stupeň konverze, s výhodou lze provádět při teplotách 10 až 43 °C po dobu 10 až 100 hodin při mírném míchání suspenze. Stanovení obsahu vázaného protaminu (poly-L-lysinu) bylo provedeno stanovením dusíku podle Kjehldahla.
Účinek sorbentů podle vynálezu byl prokázán při jejich použití k odstraňování heparinu od antitrombinu, při přípravě vysoce purifikovaného plasmatického antitrombinu. Z lidské krevní plasmy byl komplex antitrombinu s heparinem připraven sorpcí na heparin-Separon a afinitní elucí heparinem (vedle dalších). Za specifických podmínek lze na sloupci protamin- nebo poly-L-lysin- Separonu uskutečnit sorpci tohoto komplexu, jeho disociaci a separaci antitrombinu od heparinu. Získaný antitrombin měl původní antikoagulační vlastnosti, byl imunochemicky a elektroforetichy homogenní. Získaný heparin měl původní vlastnosti a lze jej opakovaně použít. Tyto sorbenty dále umožňují odstranění heparinu z krevní plasmy nebo testovaných roztoků a analýzu deheparizované plasmy na přítomnost koagulačních faktorů. Sorbovaný heparin je pak možno po eluci kvantifikovat. Sorbenty podle vynálezu umožňují frakcionaci fragmentů heparinu po jeho hydrolýze a separaci vysoce biologicky účinných podílů. Dále jsou vhodné pro separaci semisyntetických a syntetických sulfonovaných polysacharidů s vlastnostmi heparinu. Ve všech uvedených případech použití sorbentů podle vynálezu probíhá za fyziologických podmínek pH a iontové síly, eluci lze uskutečnit zvýšením koncentrace solí a posunem pH na kyselou nebo alkalickou stranu. Při koncentraci 0,1 mol/1 hydroxidu sodného je heparin kvantitativně odstraněn z těchto sorbentů, aniž by došlo k poškození matrice nebo afinantů.
CS 266 851 B1
Předmět vynálezu je objasněn v následujících příkladech provedení, aniž by však byl jimi jakkoli omezován.
Příklad 1 .
100g kopolymeru etyléndimctakrylátu s 2hydíOxyetylénmetakrylálcm o vylučovacím limitu 106 s velikostí sférických částic 100 až 300 pm je nabotnáno v 500 ml 50% hydroxidu draselného po dobu 15 hodin při teplotě 5 °C. Takto zbotnalý nosič se odfiltruje a za stálého míchání se vnese do reaktoru opatřeného zpětným chladičem a teploměrem, ve kterém bylo předloženo 400 ml epichlorhydrinu. Asi po 1 hodině vystoupí teplota reakční směsi na teplotu varu epichlorhydrinu. Po odeznění reakce se přidá 100 ml nasyceného roztoku bromidu draselného a reakční směs se zahřívá k varu po dobu 3 hodin. Po skončení se aktivovaný sorbent odfiltruje, na filtru se promyje 3 x 500 ml acetonu, rychle 2 x 1 000 ml vody do neutrální reakce filtrátu, znova 3 acetonem, éterem a vysuší se ve vakuové sušárně při 20 °C po dobu 24 hodin. Obsah epoxidových skupin se stanovuje titračně: 0,420 mol/g suchého kopolymeru.
g aktivovaného nosiče připraveného podle uvedeného postupu se ponechá za občasného míchání 30 až 56 hodin v 50 ml destilované vody. Nato se voda odfiltruje a vlhký nosič se promyje borátovým pufrem (0,1 mol/1, pH 8,7, který obsahuje 1,8 mol/1 síranu amonného). Vlhký nosič je převrstven 30 ml borátového pufru pH 8,7 obsahujícího 1,8 mol/1 síranu amonného a 1 g protaminsulfátu je sledován kontrolou protaminsulfátu v roztoku (např. jako antiheparin). Imobilizace je ukončena, když nedochází ke snižování koncentrace protaminsulfátu v roztoku nad nosičem. Pokud se zjistí nulová nebo nízká koncentrace protaminsulfátu, je přidán další podíl. Po skončení imobilizace je nosič promyt vodou, pak pufrem pH 6,0 až 6,5 s přídavkem NaCl (2 mol/1), pak znovu vodou a pufrem. Sorbent je ponechán 2 až tři dny při teplotě místnosti k hydrolýze, eventuálně nezreagovaných epoxidových skupin, nebo se hydrolyzuje 0,1 M roztokem kyseliny chloristé po dobu 3 hodin při normální teplotě. Nato je sorbent promyt pufrem pH 6,0 až 6,5 obsahujícím 1 mg/100 ml heparinu, pufrem s NaCl (2 mol/1), vodou a pufrem, ve kterém má proběhnout separace. Účinek takto připraveného sorbentu byl ověřen izolací a stanovením heparinu z vodného roztoku, z lidské plasmy a z lidské krve (za přítomnosti hemoglobinu). Obsah vázaného protaminsulfátu byl 16 až 25 mg/g suchého nosiče.
Příkl ad 2
Aktivace kopolymeru 2-hydroxyetylmetakrylátu s etylénglykoldimetakrylátem se provádí analogicky jako v příkladu 1. Na místě protaminsulfátu je použit poly-L-lysin. Reakční podmínky pro imobilizaci jsou stejné jako při protaminsulfátu. Při promývání není nutné používat heparinových roztoků k odstranění ne5 zreagovaných 'molekul poly-L-lysinu. Obsah vázaného poly-L-lysinu byl 5,6 až 8 m/g suchého nosiče a řídil sc stupněm polymerizace afina n tu.
Příklad 3
Aktivace kopolymerů 2-hydroxyetylmetakrylátu s etyléndimetakrylátem o vylučovacím limitu 2.106 se provádí stejně jako v příkladu 1. Reakce s protaminsulfátem je analogická jako v příkladu 1 s tím rozdílem, že pH borátového pufru je 9,4; reakční teplota je 40 až 45 °C a doba reakce je 12 až 16 hod. Spontánní hydrolýza nezreagovaných epoxidových skupin probíhá při teplotě 40 °C 24 hod. Obsah vázaného protaminsulfátu byl 18 až 26 mg/g suchého nosiče.
Příklad 4
Imobilizace protaminu sulfátu byla provedena analogicky jako v příkladu 1 s tím rozdílem, že jako nosiče bylo použito kopolymerů 2-hydroxymetakrylátu s 1,4-butyléndimetakryIátem o velikosti částic 50 až 80 pm a vylučovacím limitu 900 tisíc daltonů pro lineární polydextraci. Koncentrace e-protaminusulfátu činila 0,1 g ve 30 ml (tj. 3,3 g/1) borátového pufru, pH 8,7 obsahujícího 2,0 mol/l síranu amonného. Obsah vázaného protaminu sulfátu činil 8,5 mg/g suchého nosiče.

Claims (3)

  1. í. Sorbent heparinu a látek obsahujících struktury heparinu, například glykosaminoglukanů, komplexů bílkovin s heparinem a dalších látek anionické povahy, vyznačený tím, že je tvořen protaminsulfátem, protaminchloridem, )oly-L-lysinem nebo dalšími oligopeptidy a poypeptidy obsahujícími v převážné míře arginin, ůstidin a lysin, molekulární hmotnosti 5 až 0 000, které jsou vázány na makroporézní, trojrozměrné, hydrofilní kopolyméry hydroxyalkylakrylátů, případně hydroxyalkylmetakrylátů, ve kterých alkyl obsahuje 1 až 4 atomy uhlíku, s alkylendiakryláty nebo alkylendimetakryláty, ve kterých alkylen obsahuje 2 až 4 atomy uhlíku.
    CS 266 851 B1
    Příklad 5
    Aktivace nosiče byla provedena analogicky jako v příkladu 1 s tím rozdílem, že k imobilizaci bylo použilo kopolymeru 4 btitylénglykolmonornetakrylátu s etyléndimetakrylátem o vylučovacím limitu 10R daltonů a koncentrace protaminsulfátu byla 5 g ve 30 ml borátového pufru o pH 8,7 (tj. 166 g/1).
    Příklad 6
    Aktivace kopolymerů 2-hydroxyetylakrylátu a etylénglykoldimetakrylátu byla provedena analogicky jako v příkladu 1 s tím rozdílem, že k imobilizaci bylo místo protaminsulfátu použito molekulárních fragmentů histonu z telecího thymu bohatého lysinem, o melekulární hmotnosti menší než 20 tisíc daltonů. Při odstraňování nadbytku histonových fragmentů není použito heparinového roztoku jako v příkladu 1. Obsah fragmentů histonu vázaných na matrici byl 4,4 až 7,2 mg/10 g suchého nosiče.
    Příklad 7
    Postupuje se stejně jako v příkladu 1 a 6 s tím, že na místě protaminsulfátu nebo histonu je použit syntetický polymer peptidu (Ala-Lys-Lys.Pro-Lys)n molekulární hmotnosti 13 tisíc daltonů, kde n = 9. Obsah vázaného pólymerizováného peptidu byl 2,5 až 7,2 mg/g suchého nosiče.
    VYNÁLEZU
  2. 2. Způsob výroby sorbentu podle bodu 1, vyznačující se tím, že kopolyméry definované v bodě 1 se aktivují epichlorhydrinem, načež se nechají reagovat s polypeptidem v tlumivém roztoku obsahujícím 1,5 až 1,8 mol/l sulfátu amonného, při teplotě 10 až 45 °C po dobu 10 až 100 hodin a popřípadě nezreagované epoxidové skupiny se nechají hydrolyzovat spontánně a sorbované, ale nevázané částice protaminu se odstraní promytím roztokem heparinu.
  3. 3. Způsob podle bodu 2, vyznačující se tím, že jako tlumivý roztok se užívá borátový pufr pH 8 až 10, obsahující 1,5 až 1,8 mol/l sulfátu amonného.
CS85273A 1985-01-14 1985-01-14 Sorbent heparínu a látek obsahujících struktury heparínu a způsob jejich přípravy CS266851B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS85273A CS266851B1 (cs) 1985-01-14 1985-01-14 Sorbent heparínu a látek obsahujících struktury heparínu a způsob jejich přípravy

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS85273A CS266851B1 (cs) 1985-01-14 1985-01-14 Sorbent heparínu a látek obsahujících struktury heparínu a způsob jejich přípravy

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS27385A1 CS27385A1 (en) 1989-06-13
CS266851B1 true CS266851B1 (cs) 1990-01-12

Family

ID=5334569

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS85273A CS266851B1 (cs) 1985-01-14 1985-01-14 Sorbent heparínu a látek obsahujících struktury heparínu a způsob jejich přípravy

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS266851B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS27385A1 (en) 1989-06-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US6699386B2 (en) Endotoxin adsorbent, and a method of removing endotoxin by using the same
Mallik et al. High-performance affinity monolith chromatography: development and evaluation of human serum albumin columns
US4269605A (en) Method and kit for separation of glycoproteins
AU709290B2 (en) IgG separation medium and novel protein A variant
US6852818B1 (en) Molecularly imprinted polymers produced by template polymerization
JPH0144725B2 (cs)
Carlsson et al. 10 Affinity Chromatography
CA2168038A1 (en) Heparin functional affinity supports
Wang et al. Oriented covalent immobilization of recombinant protein A on the glutaraldehyde activated agarose support
JP7584481B2 (ja) バイオセパレーションのための複合材料
GB2024829A (en) Method and Product for Separation of Glycoproteins
Zhou et al. Coated silica supports for high-performance affinity chromatography of proteins
Turková et al. Hydroxyalkyl methacrylate gels derivatized with epichlorohydrin as supports for large-scale and high-performance affinity chromatography
Bereli et al. Antibody purification by concanavalin A affinity chromatography
EP0153763A2 (en) Affinity chromatography matrix with built-in reaction indicator
WO1994015951A1 (en) Affinity purification by the use of a complexed ligand
CS266851B1 (cs) Sorbent heparínu a látek obsahujících struktury heparínu a způsob jejich přípravy
AU610734B2 (en) Polyethyleneimine matrixes for affinity chromatography
Larsson et al. Isolation of concanavalin A by affinity precipitation
Turkova Affinity chromatography
Turková et al. Affinity chromatography on hydroxyalkyl methacrylate gels II. Isolation of thiol-containing protein and peptide using mercurial derivatives of gels
RU2694883C1 (ru) Способ ковалентной иммобилизации лизоцима для последующего применения иммобилизованного лизоцима для снижения бактериальной обсемененности биологических жидкостей
Burton Affinity chromatography
Millot et al. Rapid preparation of bovine mercaptalbumin by means of covalent chromatography on silica-based materials
Sada Engineering aspects of bioaffinity separation