CS258359B1 - Způsob izolace a purifikace mitochondriólnl malótdehydrogenasy - Google Patents
Způsob izolace a purifikace mitochondriólnl malótdehydrogenasy Download PDFInfo
- Publication number
- CS258359B1 CS258359B1 CS856243A CS624385A CS258359B1 CS 258359 B1 CS258359 B1 CS 258359B1 CS 856243 A CS856243 A CS 856243A CS 624385 A CS624385 A CS 624385A CS 258359 B1 CS258359 B1 CS 258359B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- mol
- enzyme
- nicotinamide
- adenine
- purification
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Podstata řešení spočívá v tom, že izolace a purifikace mitochondriální malátdehydrogenasy se provádí sorpcí enzymu z roztoků pufrů o pH 6 až 8 a určité koncentraci na modifikovaný makroporézní gelový kopolymer 2-hydroxyetylmetakrylátu s etylendimetakrylátem, který obsahuje v postranních řetězcích 1,4-diamino-9,10-anthrachinon-3- -sulfonovou kyselinu. Současně sorbované doprovodné látky se odstraní promýváním pufry, kterými se desorbuje enzym po přídavku sodné nebo draselné soli kyseliny chlorovodíkové nebo sírové a popřípadě nikotinamidenin-dinukleotidu, nikotinamid-adenin- -dinukleotidu redukovaného nebo téhož ve směsi se solemi kyseliny siřičité.
Description
Vynález se týká izolace a purifikace mitochondriální malátdehydrogenasy (dále MDH) a živočišných srdcí technikou afinitní chromatografie na modifikovaných hydroxyetylmetakrylátových gelech s vázaným anthrachinonovým barvivém.
Malátdehydrogenasa je důležitý enzym, který se široce využívá v klinické diagnostice a potravinářské analytice (stanoveni transaminas, kys. jablečné apod.). Enzym se izoluje z různých zdrojů, nejčastěji z živočišných srdcí. Extrakty a koncentráty připravené z těchto zdrojů obsahují celou řadu balastních látek, od nichž je třeba malátdehydrogenasu oddělit.
Pro izolaci a purifikaci enzymu byla vypracována celá řada postupů. Mezi nejmodernějši patří afinitní chromatografie na imobilizovaném anthrachinonovém barvivu (T. Atkinson a kol., Biochem. Soc. Trans., 9, 290 (1981), R. Bittner a kol., pat. NDR č. 152 359 (1 981)), resp, azobarvivu (K. Smith a kol. Biochem. Biophys. Acta, 708, 17, (1982)). Širšímu využití těchto postupů však bráni nevýhodné mechanické vlastnosti agarosové matrice, na níž byla zmíněná barviva zakotvena.
Uvedené nevýhody odstraňuje způsob podle vynálezu. Jeho podstata spočívá v tom, že se enzym sorbuje z roztoku pufrů o pH 6 až 8 o koncentraci 0,002 až 0,1 mol/1 na modifikovaný makroporézní gelový kopolymer 2-hydroxyetylmetakrylátu s etylendimetakrylátem, který obsahuje v postranních řetězcích 1,4-diamino-9,10-anthrachinon-3-sulfonovou kyselinu kovalentně navázanou prostřednictvím arylidensulfonyletoxyskupin, současně sorbované doprovodné látky se odstraní ze sorbentu promýváním pufry o pH 6 až 8 a koncentraci 0,002 až 0,2 mol/1 a nakonec se zachycený enzym desorbuje výše definovanými promývacími pufry, k nimž bylo přidáno 0,2 až 1 mol sodné nebo draselné soli kyseliny chlorovodíkové nebo sírové a případně 0,1 až 10 mmol/1 nikotinamid-adenin-dinukleotidu, nikotinamid-adenin-dinukleotidu redukovaného, nebo nikotinamid-adenin-dinukleotidu ve směsi s 3 až 5 násobným molárním přebytkem solí kyseliny siřičité.
Hydroxyetylmetakrylátové gely s 1,4-diamino-9,10-anthrachinon-3-sulfonovou kyselinou navázanou v postranních řetězcích prostřednictvím arylidensulfonyletoxy skupiny jsou popsány v AO 255 416. Tyto materiály*si zachovávají všechny příznivé vlastnosti výchozích hydroxyetylmetakrylátových gelů, zejména jejich mechanickou pevnost a objemovou stálost a mohou proto být na rozdíl od derivátů na bázi agarosy používány i za vyšších průtoků a tlaků.
Jejich výhodou oproti materiálům s 1,4-diamino-9,lO-anthrachinon-3-sulfonovou kyselinou navázanou jiným způsobem než prostřednictvím arylidensulfonyletoxyskupin je i jejich vysoká selektivita vůči mitochondriální malátdehydrogenáse. Nesorbuje se na nich např. laktátdehydrogenasa, takže modifikovaný gel může být využit k oddělení obou enzymů. Podobně je tomu i u cytoplasmatické malátdehydrogenasy, která se nesorbuje nebo ji lze vymýt zředěným pufrem bez jakéhokoliv přídavku.
Způsob izolace a purifikace mitochondriální malátdehydrogenasy podle vynálezu je ilustrován následujícími příklady provedeni.
Přikladl g acetonového prášku z vepřových srdcí bylo extrahováno 100 ml fosforečnanového pufru, pH 7,4 o koncentraci 0,1 mol/1. Extrakt byl smísen se síranem amonným do 45% nasycení, vyloučená sraženina byla odstředěna a supernatant dosycen síranem amonným na 70% nasycení.
Po odstředění byla sraženina rozpuštěna ve vodě a roztok dialyzován proti fosforečnanovému pufru, pH 7,1, o koncentraci 0,01 mol/1. Po dialýze bylo získáno 30 ml roztoku, který podle výsledku analýzy obsahoval 595 mg bílkoviny; aktivita MDH činila 45 000 U. K roztoku bylo přidáno 5 g modifikovaného gelu, který byl připraven z výchozího kopolymerů získaného z 61 % hmotnostních 2-hydroxyetylmetakrylátu a 39 % hmot. etylendimetakrylátu o vylučovací mezi molekulové hmotnosti 10® daltonů a zrnění 63 až 100/um a obsahoval 199 yumol/g 1,4-diamino-9,10-anthrachinon-3-sulfonové kyseliny kovalentně vázané prostřednictvím arylidensulfonyletoxyskupin, předem ekvilibrovaného s fosforečnanovým pufrem, pH 7,1 a suspenze byla třepána 30 minut.
Po .oddělení gelu zůstalo ve zbývajícím roztoku 6 100 U cytoplasmatické MDH, veškerá mitochondriální dehydrogenasa .zůstala nasorbována na gel s navázaným barvivém. Po promytí pufrem o pH 7,1 a koncentraci 0,01 mol/1 byla zachycená mitochondriální MDH eluována týmž pufrem, k němuž bylo přidáno 0,5 mol/1 chloridu draselného. Aktivita eluátu činila 35 800 U (92 % vztaženo na nasorbovaný enzym).
Příklad 2 ml extraktu z vepřových srdci, který byl připraven obdobným způsobem jako v příkladu 1 a obsahoval 40 mg bílkoviny a 3 000 U MDH byly aplikovány na kolonku 0,7 x 5,5 cm, která obsahovala podobný gel jako v příkladu 1, avšak o zrnění 40 až 63 jam a obsahu vázaného barviva 67 jumol/g, který byl předem ekvilibrován s fosforečnanovým pufrem, pil 7,1 a koncentraci 0,01 mol/1. Sorbent byl promyt týmž pufrem. Přitom se vymyla cytoplasmatická MDH (690 U, % celkové aktivity). Pak byla eluována sorbovaná mitochondriální MDH pufrem, do něhož bylo přidáno 0,5 mol/1 chloridu draselného. Byla získána frakce 12 ml, která obsahovala 0,3 mg bílkoviny/ml a 180 U mitochondriální MDH (ml) tj. celkem získaná aktivita 2 160 U, což je 93,5 % sorbované aktivity; spec. aktivita 600 U/mg bílkoviny, faktor vyčištění - 8x).
Příklad 3
Postupováno bylo obdobně jako v příkladu 2, jako náplň kolonky však byl použit stejný materiál jako v příkladu 1. Zachycený enzym byl eluován roztokem 1 mmol/1 NAD ve fosforečnanovém pufru, pH 7,1 o koncentraci 0,1 mol/1. Výtěžek desorpce činil 89 % (vztaženo na zachycenou mitochondriální MDH, specifická aktivita preparátu 640 U/mg. *
Příklad 4
Postupováno bylo stejně jako v příkladě 3, eluční roztok však obsahoval kromě 1 mmol/1 NAD ještě 5 mmol/1 siřičitanu sodného. Výtěžek i specifická aktivita byly podobné jako v přikladu 3, zachycený enzym se však vymyl v užším píku (objem frakce 9 ml).
Příklad 5
Postupováno bylo obdobně jako v příkladu 3, eluční roztok však obsahoval 1 mmol/1 NADH. Výtěžek desorpce činil 95 % (vztaženo na zachycenou aktivitu), specifická aktivita mitochondriální MDH v eluátu činila 700 U/mg.
Příklad 6
Postupováno bylo obdobně jako v příkladu 3 s tím, rozdílem, že násada byla poloviční a použitý fosforečnanový pufr měl koncentraci 0,1 mol/1 a pH 6,8. Desorpce byla provedena stejným pufrem, k němuž bylo přidáno 10 mmol/1 NAD a 0,1 mol/.l síranu sodného. Výtěžek činil 74 %,,specifická aktivita 620 U/mg bílkoviny, objem frakce 8 ml.
Příklad 7
Postupováno obdobně jako v přikladu 3, s tím rozdílem, že místo fosforečnanového pufru o pH 7,1 byl použit Tris pufr pH 7 o koncentraci 0,05 mol/1 (roztok 6,05 g tris/hydroxymetyl/aminometanu vil vody, jehož pH bylo nastaveno přídavkem kyseliny chlorovodíkové na uvedenou hodnotu). Zachycený enzym byl desorbován Tris pufrem o výše uvedeném pH a koncentraci, do něhož bylo přidáno 0,2 mol/1 chloridu draselného a 0,5 mmol/1 NADH. Výtěžek desorpce činil 85 % (vztaženo na zachycenou mitochondriální MDH), specifická aktivita 670 U/mg, objem frakce 11 ml.
Claims (1)
- předmEt vynálezuZpůsob izolace a purifikace mitochondriální malátdehydrogenasy z extraktů a koncentrátů připravených z živočišných srdcí vyznačený tím, že se enzym sorbuje z roztoků pufrů o pH 6 až 8 a koncentraci 0,002 až 0,1 mol/1 na modifikovaný makroporézní gelový kopolymer 2-hydro xymetylmetakrylátu s etylendimetakrylátem, který obsahuje v postranních řetězcích 1,4-diamino-9,10-anthrachinon-3-sulfonovou kyselinu kovalentně navázanou prostřednictvím arylidensulfonyletoxyskupin, současně sorbované doprovodné látky se odstraní ze sorbentu promýváním pufry o pH 6 až 8 a koncentraci 0,002 až 0,2 mol/1 a nakonec se zachycený enzym desorbuje výše definovanými promývacími pufry, k nimž bylo přidáno 0,2 až 1 mol sodné nebo draselné soli kyseliny chlorovodíkové nebo sírové a případně 0,1 až 10 mmol/1 nikotinamid-adenin-dinukleotidu, nikotinamid-adenin-dinukleotidu redukovaného, nebo nikotinamid-adenin-dinukleotidu ve směsi s 3 až 5 násobným molárním přebytkem solí kyseliny siřičité.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS856243A CS258359B1 (cs) | 1985-09-02 | 1985-09-02 | Způsob izolace a purifikace mitochondriólnl malótdehydrogenasy |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS856243A CS258359B1 (cs) | 1985-09-02 | 1985-09-02 | Způsob izolace a purifikace mitochondriólnl malótdehydrogenasy |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS624385A1 CS624385A1 (en) | 1987-12-17 |
| CS258359B1 true CS258359B1 (cs) | 1988-08-16 |
Family
ID=5409034
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS856243A CS258359B1 (cs) | 1985-09-02 | 1985-09-02 | Způsob izolace a purifikace mitochondriólnl malótdehydrogenasy |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS258359B1 (cs) |
-
1985
- 1985-09-02 CS CS856243A patent/CS258359B1/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS624385A1 (en) | 1987-12-17 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US4269605A (en) | Method and kit for separation of glycoproteins | |
| US3842061A (en) | Method for isolation of antithrombin from animal tissue materials by adsorption on sulfated carbohydrate gel | |
| Mattock et al. | Partial purification and properties of an enzyme from rat liver that catalyses the sulphation of L-tyrosyl derivatives | |
| Funahashi et al. | Preparation of three types of heparin-Sepharose and their binding activities to thrombin and antithrombin III | |
| Kuntz et al. | Isolation of phosphoglycerate kinases by affinity chromatography | |
| JPS6356501A (ja) | アフイニテイークロマトグラフイー用カラム充填剤及びその製造方法 | |
| EP0153763B1 (en) | Affinity chromatography matrix with built-in reaction indicator | |
| Stadtman et al. | Anaerobic degradation of lysine: V. Some properties of the cobamide coenzyme-dependent β-lysine mutase of Clostridium sticklandii | |
| Rosen et al. | Purification and characterization of a histidine-binding protein from Salmonella typhimurium LT-2 and its relationship to the histidine permease system | |
| US3951744A (en) | Purification of dehydrogenases | |
| Gerlach et al. | Interaction of immobilized phosphofructokinase with soluble muscle proteins | |
| Kondo et al. | Developmental changes in glucose transport of guinea pig erythrocytes. | |
| US4350767A (en) | Method for isolating and purifying enzymes from a crude enzyme solution | |
| AU627450B2 (en) | A method for the purification of factor xiii by affinity chromatography | |
| Blackburn et al. | Factors affecting iron and transferrin release from rabbit reticulocyte ghosts to cytosol | |
| US3926730A (en) | Separation and purification of alpha-amylase | |
| Mukerji et al. | Evidence for two uroporphyrinogen decarboxylase isoenzymes in human erythrocytes | |
| Sieber | Chromatography of human urinary erythropoietin and granulocyte colony-stimulating factor on insolubilized phytohaemagglutinin | |
| Vardanis | Fractionation of particulate glycogen and bound enzymes using high-performance liquid chromatography | |
| Eby et al. | Isolation and characterization of glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase from human erythrocyte membranes | |
| Agarwal et al. | [79] A general method for the isolation of various enzymes from human erythrocytes | |
| CA1130229A (en) | Method for isolating mb creatine kinase | |
| Mattiasson et al. | General chromatographic purification procedure based on the use of heterobifunctional affinity ligands | |
| Hager et al. | [67] The preparation and properties of cytochrome b562 from Escherichia coli | |
| Somers et al. | A two-step purification procedure for sheep liver 6-phosphogluconate dehydrogenase |