CS258359B1 - Způsob izolace a purifikace mitochondriólnl malótdehydrogenasy - Google Patents

Způsob izolace a purifikace mitochondriólnl malótdehydrogenasy Download PDF

Info

Publication number
CS258359B1
CS258359B1 CS856243A CS624385A CS258359B1 CS 258359 B1 CS258359 B1 CS 258359B1 CS 856243 A CS856243 A CS 856243A CS 624385 A CS624385 A CS 624385A CS 258359 B1 CS258359 B1 CS 258359B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
mol
enzyme
nicotinamide
adenine
purification
Prior art date
Application number
CS856243A
Other languages
English (en)
Other versions
CS624385A1 (en
Inventor
Premysl Konecny
Jindrich Borak
Miloslav Smrz
Original Assignee
Premysl Konecny
Jindrich Borak
Miloslav Smrz
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Premysl Konecny, Jindrich Borak, Miloslav Smrz filed Critical Premysl Konecny
Priority to CS856243A priority Critical patent/CS258359B1/cs
Publication of CS624385A1 publication Critical patent/CS624385A1/cs
Publication of CS258359B1 publication Critical patent/CS258359B1/cs

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Podstata řešení spočívá v tom, že izolace a purifikace mitochondriální malátdehydrogenasy se provádí sorpcí enzymu z roztoků pufrů o pH 6 až 8 a určité koncentraci na modifikovaný makroporézní gelový kopolymer 2-hydroxyetylmetakrylátu s etylendimetakrylátem, který obsahuje v postranních řetězcích 1,4-diamino-9,10-anthrachinon-3- -sulfonovou kyselinu. Současně sorbované doprovodné látky se odstraní promýváním pufry, kterými se desorbuje enzym po přídavku sodné nebo draselné soli kyseliny chlorovodíkové nebo sírové a popřípadě nikotinamidenin-dinukleotidu, nikotinamid-adenin- -dinukleotidu redukovaného nebo téhož ve směsi se solemi kyseliny siřičité.

Description

Vynález se týká izolace a purifikace mitochondriální malátdehydrogenasy (dále MDH) a živočišných srdcí technikou afinitní chromatografie na modifikovaných hydroxyetylmetakrylátových gelech s vázaným anthrachinonovým barvivém.
Malátdehydrogenasa je důležitý enzym, který se široce využívá v klinické diagnostice a potravinářské analytice (stanoveni transaminas, kys. jablečné apod.). Enzym se izoluje z různých zdrojů, nejčastěji z živočišných srdcí. Extrakty a koncentráty připravené z těchto zdrojů obsahují celou řadu balastních látek, od nichž je třeba malátdehydrogenasu oddělit.
Pro izolaci a purifikaci enzymu byla vypracována celá řada postupů. Mezi nejmodernějši patří afinitní chromatografie na imobilizovaném anthrachinonovém barvivu (T. Atkinson a kol., Biochem. Soc. Trans., 9, 290 (1981), R. Bittner a kol., pat. NDR č. 152 359 (1 981)), resp, azobarvivu (K. Smith a kol. Biochem. Biophys. Acta, 708, 17, (1982)). Širšímu využití těchto postupů však bráni nevýhodné mechanické vlastnosti agarosové matrice, na níž byla zmíněná barviva zakotvena.
Uvedené nevýhody odstraňuje způsob podle vynálezu. Jeho podstata spočívá v tom, že se enzym sorbuje z roztoku pufrů o pH 6 až 8 o koncentraci 0,002 až 0,1 mol/1 na modifikovaný makroporézní gelový kopolymer 2-hydroxyetylmetakrylátu s etylendimetakrylátem, který obsahuje v postranních řetězcích 1,4-diamino-9,10-anthrachinon-3-sulfonovou kyselinu kovalentně navázanou prostřednictvím arylidensulfonyletoxyskupin, současně sorbované doprovodné látky se odstraní ze sorbentu promýváním pufry o pH 6 až 8 a koncentraci 0,002 až 0,2 mol/1 a nakonec se zachycený enzym desorbuje výše definovanými promývacími pufry, k nimž bylo přidáno 0,2 až 1 mol sodné nebo draselné soli kyseliny chlorovodíkové nebo sírové a případně 0,1 až 10 mmol/1 nikotinamid-adenin-dinukleotidu, nikotinamid-adenin-dinukleotidu redukovaného, nebo nikotinamid-adenin-dinukleotidu ve směsi s 3 až 5 násobným molárním přebytkem solí kyseliny siřičité.
Hydroxyetylmetakrylátové gely s 1,4-diamino-9,10-anthrachinon-3-sulfonovou kyselinou navázanou v postranních řetězcích prostřednictvím arylidensulfonyletoxy skupiny jsou popsány v AO 255 416. Tyto materiály*si zachovávají všechny příznivé vlastnosti výchozích hydroxyetylmetakrylátových gelů, zejména jejich mechanickou pevnost a objemovou stálost a mohou proto být na rozdíl od derivátů na bázi agarosy používány i za vyšších průtoků a tlaků.
Jejich výhodou oproti materiálům s 1,4-diamino-9,lO-anthrachinon-3-sulfonovou kyselinou navázanou jiným způsobem než prostřednictvím arylidensulfonyletoxyskupin je i jejich vysoká selektivita vůči mitochondriální malátdehydrogenáse. Nesorbuje se na nich např. laktátdehydrogenasa, takže modifikovaný gel může být využit k oddělení obou enzymů. Podobně je tomu i u cytoplasmatické malátdehydrogenasy, která se nesorbuje nebo ji lze vymýt zředěným pufrem bez jakéhokoliv přídavku.
Způsob izolace a purifikace mitochondriální malátdehydrogenasy podle vynálezu je ilustrován následujícími příklady provedeni.
Přikladl g acetonového prášku z vepřových srdcí bylo extrahováno 100 ml fosforečnanového pufru, pH 7,4 o koncentraci 0,1 mol/1. Extrakt byl smísen se síranem amonným do 45% nasycení, vyloučená sraženina byla odstředěna a supernatant dosycen síranem amonným na 70% nasycení.
Po odstředění byla sraženina rozpuštěna ve vodě a roztok dialyzován proti fosforečnanovému pufru, pH 7,1, o koncentraci 0,01 mol/1. Po dialýze bylo získáno 30 ml roztoku, který podle výsledku analýzy obsahoval 595 mg bílkoviny; aktivita MDH činila 45 000 U. K roztoku bylo přidáno 5 g modifikovaného gelu, který byl připraven z výchozího kopolymerů získaného z 61 % hmotnostních 2-hydroxyetylmetakrylátu a 39 % hmot. etylendimetakrylátu o vylučovací mezi molekulové hmotnosti 10® daltonů a zrnění 63 až 100/um a obsahoval 199 yumol/g 1,4-diamino-9,10-anthrachinon-3-sulfonové kyseliny kovalentně vázané prostřednictvím arylidensulfonyletoxyskupin, předem ekvilibrovaného s fosforečnanovým pufrem, pH 7,1 a suspenze byla třepána 30 minut.
Po .oddělení gelu zůstalo ve zbývajícím roztoku 6 100 U cytoplasmatické MDH, veškerá mitochondriální dehydrogenasa .zůstala nasorbována na gel s navázaným barvivém. Po promytí pufrem o pH 7,1 a koncentraci 0,01 mol/1 byla zachycená mitochondriální MDH eluována týmž pufrem, k němuž bylo přidáno 0,5 mol/1 chloridu draselného. Aktivita eluátu činila 35 800 U (92 % vztaženo na nasorbovaný enzym).
Příklad 2 ml extraktu z vepřových srdci, který byl připraven obdobným způsobem jako v příkladu 1 a obsahoval 40 mg bílkoviny a 3 000 U MDH byly aplikovány na kolonku 0,7 x 5,5 cm, která obsahovala podobný gel jako v příkladu 1, avšak o zrnění 40 až 63 jam a obsahu vázaného barviva 67 jumol/g, který byl předem ekvilibrován s fosforečnanovým pufrem, pil 7,1 a koncentraci 0,01 mol/1. Sorbent byl promyt týmž pufrem. Přitom se vymyla cytoplasmatická MDH (690 U, % celkové aktivity). Pak byla eluována sorbovaná mitochondriální MDH pufrem, do něhož bylo přidáno 0,5 mol/1 chloridu draselného. Byla získána frakce 12 ml, která obsahovala 0,3 mg bílkoviny/ml a 180 U mitochondriální MDH (ml) tj. celkem získaná aktivita 2 160 U, což je 93,5 % sorbované aktivity; spec. aktivita 600 U/mg bílkoviny, faktor vyčištění - 8x).
Příklad 3
Postupováno bylo obdobně jako v příkladu 2, jako náplň kolonky však byl použit stejný materiál jako v příkladu 1. Zachycený enzym byl eluován roztokem 1 mmol/1 NAD ve fosforečnanovém pufru, pH 7,1 o koncentraci 0,1 mol/1. Výtěžek desorpce činil 89 % (vztaženo na zachycenou mitochondriální MDH, specifická aktivita preparátu 640 U/mg. *
Příklad 4
Postupováno bylo stejně jako v příkladě 3, eluční roztok však obsahoval kromě 1 mmol/1 NAD ještě 5 mmol/1 siřičitanu sodného. Výtěžek i specifická aktivita byly podobné jako v přikladu 3, zachycený enzym se však vymyl v užším píku (objem frakce 9 ml).
Příklad 5
Postupováno bylo obdobně jako v příkladu 3, eluční roztok však obsahoval 1 mmol/1 NADH. Výtěžek desorpce činil 95 % (vztaženo na zachycenou aktivitu), specifická aktivita mitochondriální MDH v eluátu činila 700 U/mg.
Příklad 6
Postupováno bylo obdobně jako v příkladu 3 s tím, rozdílem, že násada byla poloviční a použitý fosforečnanový pufr měl koncentraci 0,1 mol/1 a pH 6,8. Desorpce byla provedena stejným pufrem, k němuž bylo přidáno 10 mmol/1 NAD a 0,1 mol/.l síranu sodného. Výtěžek činil 74 %,,specifická aktivita 620 U/mg bílkoviny, objem frakce 8 ml.
Příklad 7
Postupováno obdobně jako v přikladu 3, s tím rozdílem, že místo fosforečnanového pufru o pH 7,1 byl použit Tris pufr pH 7 o koncentraci 0,05 mol/1 (roztok 6,05 g tris/hydroxymetyl/aminometanu vil vody, jehož pH bylo nastaveno přídavkem kyseliny chlorovodíkové na uvedenou hodnotu). Zachycený enzym byl desorbován Tris pufrem o výše uvedeném pH a koncentraci, do něhož bylo přidáno 0,2 mol/1 chloridu draselného a 0,5 mmol/1 NADH. Výtěžek desorpce činil 85 % (vztaženo na zachycenou mitochondriální MDH), specifická aktivita 670 U/mg, objem frakce 11 ml.

Claims (1)

  1. předmEt vynálezu
    Způsob izolace a purifikace mitochondriální malátdehydrogenasy z extraktů a koncentrátů připravených z živočišných srdcí vyznačený tím, že se enzym sorbuje z roztoků pufrů o pH 6 až 8 a koncentraci 0,002 až 0,1 mol/1 na modifikovaný makroporézní gelový kopolymer 2-hydro xymetylmetakrylátu s etylendimetakrylátem, který obsahuje v postranních řetězcích 1,4-diamino-9,10-anthrachinon-3-sulfonovou kyselinu kovalentně navázanou prostřednictvím arylidensulfonyletoxyskupin, současně sorbované doprovodné látky se odstraní ze sorbentu promýváním pufry o pH 6 až 8 a koncentraci 0,002 až 0,2 mol/1 a nakonec se zachycený enzym desorbuje výše definovanými promývacími pufry, k nimž bylo přidáno 0,2 až 1 mol sodné nebo draselné soli kyseliny chlorovodíkové nebo sírové a případně 0,1 až 10 mmol/1 nikotinamid-adenin-dinukleotidu, nikotinamid-adenin-dinukleotidu redukovaného, nebo nikotinamid-adenin-dinukleotidu ve směsi s 3 až 5 násobným molárním přebytkem solí kyseliny siřičité.
CS856243A 1985-09-02 1985-09-02 Způsob izolace a purifikace mitochondriólnl malótdehydrogenasy CS258359B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS856243A CS258359B1 (cs) 1985-09-02 1985-09-02 Způsob izolace a purifikace mitochondriólnl malótdehydrogenasy

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS856243A CS258359B1 (cs) 1985-09-02 1985-09-02 Způsob izolace a purifikace mitochondriólnl malótdehydrogenasy

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS624385A1 CS624385A1 (en) 1987-12-17
CS258359B1 true CS258359B1 (cs) 1988-08-16

Family

ID=5409034

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS856243A CS258359B1 (cs) 1985-09-02 1985-09-02 Způsob izolace a purifikace mitochondriólnl malótdehydrogenasy

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS258359B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS624385A1 (en) 1987-12-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4269605A (en) Method and kit for separation of glycoproteins
US3842061A (en) Method for isolation of antithrombin from animal tissue materials by adsorption on sulfated carbohydrate gel
Mattock et al. Partial purification and properties of an enzyme from rat liver that catalyses the sulphation of L-tyrosyl derivatives
Funahashi et al. Preparation of three types of heparin-Sepharose and their binding activities to thrombin and antithrombin III
Kuntz et al. Isolation of phosphoglycerate kinases by affinity chromatography
JPS6356501A (ja) アフイニテイークロマトグラフイー用カラム充填剤及びその製造方法
EP0153763B1 (en) Affinity chromatography matrix with built-in reaction indicator
Stadtman et al. Anaerobic degradation of lysine: V. Some properties of the cobamide coenzyme-dependent β-lysine mutase of Clostridium sticklandii
Rosen et al. Purification and characterization of a histidine-binding protein from Salmonella typhimurium LT-2 and its relationship to the histidine permease system
US3951744A (en) Purification of dehydrogenases
Gerlach et al. Interaction of immobilized phosphofructokinase with soluble muscle proteins
Kondo et al. Developmental changes in glucose transport of guinea pig erythrocytes.
US4350767A (en) Method for isolating and purifying enzymes from a crude enzyme solution
AU627450B2 (en) A method for the purification of factor xiii by affinity chromatography
Blackburn et al. Factors affecting iron and transferrin release from rabbit reticulocyte ghosts to cytosol
US3926730A (en) Separation and purification of alpha-amylase
Mukerji et al. Evidence for two uroporphyrinogen decarboxylase isoenzymes in human erythrocytes
Sieber Chromatography of human urinary erythropoietin and granulocyte colony-stimulating factor on insolubilized phytohaemagglutinin
Vardanis Fractionation of particulate glycogen and bound enzymes using high-performance liquid chromatography
Eby et al. Isolation and characterization of glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase from human erythrocyte membranes
Agarwal et al. [79] A general method for the isolation of various enzymes from human erythrocytes
CA1130229A (en) Method for isolating mb creatine kinase
Mattiasson et al. General chromatographic purification procedure based on the use of heterobifunctional affinity ligands
Hager et al. [67] The preparation and properties of cytochrome b562 from Escherichia coli
Somers et al. A two-step purification procedure for sheep liver 6-phosphogluconate dehydrogenase