CS254645B1 - Způsob přípravy enzymové, resp. hybridní elektrody - Google Patents

Způsob přípravy enzymové, resp. hybridní elektrody Download PDF

Info

Publication number
CS254645B1
CS254645B1 CS864738A CS473886A CS254645B1 CS 254645 B1 CS254645 B1 CS 254645B1 CS 864738 A CS864738 A CS 864738A CS 473886 A CS473886 A CS 473886A CS 254645 B1 CS254645 B1 CS 254645B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
enzyme
preparation
enzymes
immobilized
mass
Prior art date
Application number
CS864738A
Other languages
English (en)
Other versions
CS473886A1 (en
Inventor
Miroslav Marek
Eva Vrbova
Jiri Nepozitek
Bohuslav Dolezal
Radko Volf
Miloslav Stastny
Original Assignee
Miroslav Marek
Eva Vrbova
Jiri Nepozitek
Bohuslav Dolezal
Radko Volf
Miloslav Stastny
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Miroslav Marek, Eva Vrbova, Jiri Nepozitek, Bohuslav Dolezal, Radko Volf, Miloslav Stastny filed Critical Miroslav Marek
Priority to CS864738A priority Critical patent/CS254645B1/cs
Publication of CS473886A1 publication Critical patent/CS473886A1/cs
Publication of CS254645B1 publication Critical patent/CS254645B1/cs

Links

Landscapes

  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Řešení se týká přípravy enzymové, resp. hybridní elektrody, jejíž podstata spočívá v tom, že se enzym nebo směs enzymů a/nebo celých buněk nebo jejich fragmentů, imobilisuje do kolagenové hmoty rozmícháním v této hmotě s následným prokříženim pomocí bifunkčních činidel a vytvořený kolagenový gel se fixuje na povrch elektrochemického sensoru například přetažením a upevněním membrány propustné pro nízkomolekulární sloučeniny.

Description

Vynález se týká způsobu přípravy enzymové, resp. hybridní elektrody.
Použití enzymů i celých biochemických systémů v analytické chemii znamená výrazný pokrok především z hlediska vysoké substrátové a účinkové specifity enzymů a tím i probíhájících reakcí, čímž je dána i vysoká selektivnost prováděných analýz. Reakce katalysované enzymy probíhají při velmi nízkých koncentracích substrátu s vysokou reakční rychlostí, aniž by vyžadovaly extrémní hodnoty teploty, tlaku pH reakční směsi. Z těchto důvodů je snížena na minimum možnost ovlivnění výsledku analýz tvorbou vedlejších produktů reakce, případně reakcemi jiných složek analyzované směsi látek.
Použití volných enzymů naráží v některých případech na technické či ekenomické problémy jejich získávání, obtížnou regeneraci z reakčni směsi, poměrně malou stabilitu volných enzymů atd. Tyto problémy jsou postupně řešeny náhradou rozpustných enzymů imobilizovanými enzymy použitelnými pro velký počet analýz.
Výrazné uplatnění nalezly imobilizované enzymy ve formě enzymových elektrod. Enzymové elektrody jsou realisovány spojením iraobilisovaného enzymu a vhodného elektrochemického senzoru. Tímto způsobem je možno detegovat průběh všech enzymových reakcí, při kterých dochází ke změně koncentrace elektrochemicky detegovatelných látek. Velkou výhodou enzymových elektrod je rychlost, přesnost a reprodukovatelnost stanovení a dále možnost analýzy roztoků barevných, kapalných či fluoreskujících, kde jsou jiné způsoby detekce obtížné.
Tato skutečnost umožňuje jejich použití v nejrůznějších oblastech chemie, chemické technologie farmaceutického a potravinářského průmyslu, v moderních biotechnologiích a v klinické biochemii.
Analýtická využitelnost enzymových elektrod je podstatně ovlivněna jejich stabilitou.
K hlavním faktorům, které ovlivňují stabilitu enzymových elektrod, patří způsob imobilisace, množství navázaného enzymu, čistota enzymu, podmínky enzymové reakce a stabilita senzoru /elektrochemického čidla/. Z uvedených faktorů je způsob imobilisace nejsnáze ovlivnitelným faktorem, kterému je věnována náležitá pozornost.
Vzhledem k tomu, že isolace některých enzymů je technicky či ekonomicky velmi náročná a dále s přihlédnutím ke skutečnosti, že některé isolované enzymy jsou málo stabilní i v imobilisované formě, byla vyvinuta technika přípravy buněčných a hybridních elektrod.
Tyto elektrody jsou připravovány za obdobných podmínek jako enzymové elektrody s tím rozdílem, že místo enzymu jsou na povrchu elektrochemického senzoru zachyceny celé buňky, případně buňky společně s přidanými enzymy. Pro analytické účely se pak využívá analyticky významných enzymů, které jsou u použitých buněk v nadprodukci /a které jsou díky fysiologickému prostředí, v němž se nalézají, podstatně stabilnější než v isolovaném stavu/ nebo se analyticky využívá spřažených enzymových reakcí či celých komplexů metabolických pochodů, nejčastěji buněčné respirace.
K přípravě buněčných nebo hybridních elektrod se běžně používají buňky mikrobiální, především kvasničné a bakteriální. Mohou být však použity i isolované buňky živočišné či rostlinné nebo různé suboelulárni částice, jako např. mitochondrie.
Z jednotlivých imobilizačních postupů se pro přípravu beněčných či hybridních elektrod nejčastěji používá zabudování do gelu at již přírodního /želatina, agar, algináty/ či synthetického /polyakrylamid/.
Způsobem podle vynálezu je enzymová, resp. hybridní elektroda připravena imobilisací enzymů, buněk či jejich fragmentů, případně jejich směsi do kolagenového gelu. Biologický, enzymově aktivní materiál se suspenduje v kolagenové hmotě, načež se vytvořená hustá suspenze prokříží a zpevní pomocí bifunkčních činidel (např. glutaraldehydu/. Vytvořený gel se poté fixuje na povrch elektrochemického sensoru a s výhodou se od reakčního prostoru oddělí membránou propustnou pro nízkomolekulární látky /např. celofánovou membránou/.
Výhodou způsobu přípravy enzymové, resp. hybridní elektrody podle vynálezu je především jednoduchost způsobu imobilizace biologicky aktivního materiálu do kolagenové hmoty, kdy není nutná její předchozí aktivace a kdy je možno přímo imobilisovat jak samotné enzymy, tak i celé buňky či jejich fragmenty. Vytvořená tenká vrstva kolagenu, ve kterém je imobilisován enzymově aktivní materiál jednak vlastním zabudováním do vytvořené struktury kolagenového gelu a jednak následným prokřížením pomocí bifunkčních činidel, vytváří pro tento imobilisovaný materiál velmi příznivé podmínky z hlediska jeho stability. Enzymové, resp. hybridní elektrody připravené způsobem podle vynálezu jsou proto velmi stabilní.
Vynález je dokumentován příklady použití, aniž by se jimi omezoval:
Příklad 1 _3
Kolagenová hmota /1 g/ byla rozmíchána ve 2 ml 0,1 mol.dm fosfátového pufru pH 5,8.
Po krátkém zahřátí /2 min/ na 40 °C, kdy došlo ke ztekucení, bylo aplikováno na celofánovou membránu o síle 30 /um 20 yul této hmoty, 0,2 mg lyofilizovaného preparátu glukosaoxidázy a 2 yul neředěného preparátu katalazy. Po promíchání vytvořené směsi bylo přidáno 5 /il 5% vodného roztoku glutaraldehydu a směs byla opět promíchána. Celofánová membrána s gelem byla přiložena na kyslíkové čidlo Clarkova typu a pevně zafixována. Vytvořený kolagenový gel s imobilisovanými enzymy byl zachycen pod touto membránou, čímž byl zároveň chráněn -3 před mechanickým poškozením. Celá elektroda byla uchovávána v 0,1 mol.dm fosfátovém pufru pH 5,8 při 4 °C. Časový interval mezi přípravou enzymové elektrody a prvním stanovením její odezvy, resp. vlastním stanovením D-glukosy byl 24 hodin.
Příklad 2
Ke ztekucené kolagenové hmotě připravené podle příkladu 1 a nanesené na celofánovou membránu bylo přidáno 5 mg buněčných stěn kvasinek Saccharomyces cerevisiae s invertasovou aktivitou, 0 2 mg lyofilisovaného preparátu glukosaoxidasy a 2 jul neředěného preparátu katalasy a mutarotasy. Po promíchání vytvořené směsi bylo přidáno 5 μΐ 5% vodného roztoku glutaraldehydu a směs byla opět promíchána. Celofánová membrána s gelem byla přiložena kolagenovou stranou na kyslíkové čidlo Clarkova typu a pevně zafixována. Celá elektroda byla uchovávána v 0,1 mol.dm 3 fosfátovém pufru pH 5,8 při 4 °C. Časový interval mezi přípravou enzymové elektrody a vlastním stanovením sacharosy byl 24 hodin.
Příklad 3
Ke ztekucené kolagenové hmotě připravené podle příkladu 1 a nanesené na celofánovou membránu bylo přidáno 10 mg vlhkých kvasinek Saccharomyces uvarum kultivovaných v mediu obsahujícím etanol. Po promíchání vytvořené směsi bylo přidáno 5/ul 5% vodného roztoku glutaraldehydu a směs byla opět promíchána. Celofánová membrána s gelem obsahujícím imobiliso váné buňky byla přiložena na kyslíkové čidlo Clarkova typu a pevně zafixována. Celá elektroda byla uchovávána v 0,1 mol.dm 3 fosfátovém pufru pH 5,8 při 4 °C. Časový interval mezi přípravou kvasničné elektrody a vlastním stanovením etanolu byl 24 hodin.

Claims (2)

1. Způsob přípravy enzymové, resp. hybridní elektrody vyznačující se tím, že se enzym či směs enzymů a/nebo celých buněk nebo jejich fragmentů imobilisuje do kolagenové hmoty jejich rozmícháním v této hmotě s následným prokřížením pomocí bifunkčních činidel, s výhodou pomocí glutaraldehydu, a vytvořený kolagenový gel s imobilisovaným enzymově aktivním biologickým materiálem se fixuje na povrch elektrochemického senzoru.
2. Způsob podle bodu 1 vyznačující se tím, že se fixace kolagenového gelu s imobilisovaným enzymově aktivním biologickým materiálem provede přetažením a upevněním membrány propustné pro nízkomolekulární sloučeniny.
CS864738A 1986-06-26 1986-06-26 Způsob přípravy enzymové, resp. hybridní elektrody CS254645B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS864738A CS254645B1 (cs) 1986-06-26 1986-06-26 Způsob přípravy enzymové, resp. hybridní elektrody

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS864738A CS254645B1 (cs) 1986-06-26 1986-06-26 Způsob přípravy enzymové, resp. hybridní elektrody

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS473886A1 CS473886A1 (en) 1987-05-14
CS254645B1 true CS254645B1 (cs) 1988-01-15

Family

ID=5390801

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS864738A CS254645B1 (cs) 1986-06-26 1986-06-26 Způsob přípravy enzymové, resp. hybridní elektrody

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS254645B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS473886A1 (en) 1987-05-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Scheller et al. Biosensors
Zhang et al. Development and analytical application of an uric acid biosensor using an uricase-immobilized eggshell membrane
Dicks et al. Mediated amperometric biosensors for D-galactose, glycolate and L-amino acids based on a ferrocene-modified carbon paste electrode
US4780191A (en) L-glutamine sensor
Mascini et al. Clinical uses of enzyme electrode probes
Koncki et al. Bienzymatic potentiometric electrodes for creatine and L-arginine determination
Kovach et al. Development and application of a histidine-selective biomembrane electrode
JPS62501932A (ja) 分解性基質との組合せで媒質中でのレドックス種の電気化学的検出の使用
Kauffmann et al. Enzyme electrode biosensors: theory and applications
Durand et al. An enzyme electrode for acetylcholine
Varadi et al. Studying the bienzyme reaction with amperometric detection for measuring maltose
Guilbault et al. Preparation and analytical uses of immobilized enzymes
Noll et al. A computer-supported oxystat system maintaining steady-state O2 partial pressures and simultaneously monitoring O2 uptake in biological systems
Racek et al. Biosensor for lactate determination in biological fluids. I. Construction and properties of the biosensor
US4042462A (en) Creatine phosphokinase determination method
Vrbova et al. Application of the Ugi reaction for the preparation of enzyme electrodes
Upadhyay et al. Performance characterization of recombinant L-glutamate oxidase in a micro GOT/GPT sensing system
Macholan Biocatalytic membrane electrodes
Zhang et al. Simultaneous determination of glucose and sucrose by a dual‐working electrode multienzyme sensor flow‐injection system
CS254645B1 (cs) Způsob přípravy enzymové, resp. hybridní elektrody
Schmidt et al. 14 Specific Features of Biosensors
Guilbault et al. Enzymic methods of analysis
Eremenko et al. Monomolecular enzyme films stabilized by amphiphilic polyelectrolytes for biosensor devices
Matsunaga et al. Rapid determination of phenylalanine with immobilized leuconostoc mesenteroides and a lactate electrode
JPH0332357B2 (cs)