CS252790B1 - Způsob oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin - Google Patents
Způsob oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin Download PDFInfo
- Publication number
- CS252790B1 CS252790B1 CS86133A CS13386A CS252790B1 CS 252790 B1 CS252790 B1 CS 252790B1 CS 86133 A CS86133 A CS 86133A CS 13386 A CS13386 A CS 13386A CS 252790 B1 CS252790 B1 CS 252790B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- amino acids
- carboxypeptidase
- peptides
- proteins
- peptide
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Řešení se týká oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin z konce peptidového řetězce, obsahujícího volné karboxylové skupiny aminokyselin. Je určeno pro určení sekvence peptidů a bílkovin. Vodný roztok, pufrovaný na pH 5,0 až 8,0, obsahující peptid nebo bílkovinu, se podrobí působení enzymu karboxypeptidázy, imobilizovaném na poly-hydroxyethylmethakrylátovém gelu a to v ultrafiltrační cele opatřené membránou propouštějící pouze nízkomolekulární látky, jako aminokyseliny uvolněné karboxypeptidázou z peptidů nebo bílkoviny, za poměru enzym - substrát 1 ku 200 až 1 ku 2 000.
Description
Vynález se týká způsobu oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin z konce peptidového řetězce, obsahujícího volné karboxylové skupiny aminokyselin, pro určování sekvence peptidů a bílkovin.
V biochemii je velice zapotřebí určovat primární struktury proteinů, to je sledu aminokyselin, jež vzájemně vázány peptidickou vazbou vytvoří peptidy či proteiny. K tomuto postupu je využíváno známých způsobů, přičemž všechny jsou kompromisem mezi přesností stanovení a množstvím materiálu, jenž je nutno použít ke stanovení. Jeden známý způsob využívá specifických proteolytických enzymů, tak zvaných karboxypeptidáz. Tyto enzymy odštěpují jednotlivé aminokyseliny od toho konce peptidů či proteinu, který má volnou karboxylovou skupinu.
U dosud používaných tak zvaných klasických postupů určování koncových aminokyselin se jedná o zjišťování obsahu jednotlivých aminokyselin v roztoku, který obsahuje zkoumaný polypeptid a enzym, to je karboxypeptidázu. Přitom prostředí, v němž je stanovení prováděno, je pufrováno na pH blízké optimu působení příslušné karboxypeptidázy.
V původní reakční směsi, jež obsahuje s počátku pouze polypeptid a karboxypeptidázu, je sledována narůstající koncentra ce aminokyselin, jež jsou přítomnou karboxypeptidázou uvolňovány z peptidů do roztoku.
V daném klasickém postupu je krokem, jenž ovlivňuje přesnost způsobu, právě zpracování odebíraných podílů, určených k aminokyselinové analýze. V uvedeném klasickém postupu je ne252 790 výhodou nutnost srážení kyselinou trichloroctovou, následná kon centrace precipitátu centrifugací, extrakce etherem a odpaření. Teprve po těchto operacích je vzorek připraven pro aminokyselinou analýzu.
Uvedené nedostatky odstraňuje podle vynálezu způsob oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin z konce peptidového řetězce pro určování sekvence peptidů a bílkovin, za použití enzymu karboxypeptidázy, vyznačující se tím, že vodný roztok pufrovaný na pH 5,0 až 8,0, obsahující peptid nebo bílkovinu, se podrobí působení enzymu karboxypeptidázy, imobilizovaném na poly-hydroxyethylmethakrylátovém gelu a to v ultrafiltrační cele opatřené membránou propouštějící pouze nízkomolekulární látky, jako aminokyseliny, uvolněné karboxypeptidázou z peptidů nebo bílkoviny, za poměru enzym - substrát 1 ku 200 až 1 ku 2 000.
Základní výhoda způsobu podle vynálezu spočívá v podstatném zjednodušení postupu, neboí veškerá úprava vzorku před aminokyselinou analýzou spočívá pouze v jeho odpaření. Další výhoda spočívá v tom, že karboxypeptidáza je imobilizovaná na pevném nosiči a proto nedochází k její autolýze, dále je ji možno snadno oddělit ze směsi. Díky pevnosti použitého materiálu nehrozí nebezpečí jeho rozmělnění a karboxypeptidázu lze snadno opakovaně použít. Uvedený postup je proti klasickému způsobu sekvenování výrazně kratší, zhruba o polovinu a celý postup je možno snadno automatizovat.
Způsob podle vynálezu je dále blíže popsán na konkrétních příkladech provedení.
Příklad 1
Pro použití karboxypeptidázy Y k sekvenčním práčem byla karboxypeptidáza imobilizována na poly-hydroxyethylmethakrylátovém gelu s imobilizováným Konkavalinem A. Takto imobilizovaná karboxypeptidáza byla přidána ke 3 ml roztoku proteinu /ribonukleáza A/. Koncentrace proteinu byla 10 mg v 3 ml 0,1 M acetátu sodného pH 6,0 s 0,5 % laurylsíranu sodného. Roztok
252 790 proteinu byl umístěn v malé ultrafiltrační cele /objem 10 ml/ s membránou propouštějící látky s molekulovou hmotností pod 2 000. Ve vhodně zvolených časových intervalech byl tlakem dusíku odebírán alikvot /0,2 ml/ a ten po odpaření byl přímo použit pro aminokyselinovou analýzu.
Touto metodou byly získány výsledky o stejné kvalitě jako u klasického postupu.
Příklad 2
Stejný postup s použitím ultrafiltrační cely byl využit pro sekvenční práci s karboxypeptidázou A a karboxypeptidézou
B.
Příklad 5
Za podmínek uvedených v příkladu 1 bylo provedeno štěpení proteinu imobilizovanou karboxypeptidázou. 1 ml roztoku proteinu /0,1 M acetát sodný, pH 6,0 s 0,5 % laurylsíranu sodného obsahující 2 zug ribonukleázy A/ byl podroben štěpení karboxypeptidézou Y imobilizovanou na polyhydroxyethylmethakrylátovém gelu s imobilizovaným konkanavalinem A. Bylo použito 200 ,ug nosiče s obsahem 0,1/Ug karboxypeptidázy Y. Byla použita ultrafiltrační cela o objemu 2 ml, opatřená membránou propouštějící látky s molekulovou hmotností pod 2 000 a odebírána vzorky o objemu 0,05 ml.
Claims (1)
- PŘEDMĚT VYNÁLEZUZpůsob oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin z konce peptidového řetězce pro určováni sekvence peptidu a bílkovin, za použití enzymu karboxypeptidázy, vyznačující se tím, že vodný roztok pufrovaný na pH 5,0 až 8,0, obsahující peptid nebo bílkovinu, se podrobí působení enzymu karboxypeptidázy, imobilizovaném na poly-hydroxyethylmethakrylátovém gelu^ v ultrafiltrační cele opatřené membránou propouštějící pouze nízkomolekulární látky, jako aminokyseliny uvolněné karboxypeptidázou z peptidu nebo bílkoviny, za poměru enzym - substrát 1 ku 200 až 1 Ku 2 000¾.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS86133A CS252790B1 (cs) | 1986-01-08 | 1986-01-08 | Způsob oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS86133A CS252790B1 (cs) | 1986-01-08 | 1986-01-08 | Způsob oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS13386A1 CS13386A1 (en) | 1987-02-12 |
| CS252790B1 true CS252790B1 (cs) | 1987-10-15 |
Family
ID=5332950
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS86133A CS252790B1 (cs) | 1986-01-08 | 1986-01-08 | Způsob oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS252790B1 (cs) |
-
1986
- 1986-01-08 CS CS86133A patent/CS252790B1/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS13386A1 (en) | 1987-02-12 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Hiller et al. | Biotin binding to avidin. Oligosaccharide side chain not required for ligand association | |
| Huston et al. | Activation of skeletal muscle phosphorylase kinase by calcium ions. II. Identification of the kinase activating factor as a proteolytic enzyme | |
| Ambler | [21] Carboxypeptidases A and B | |
| Taylor et al. | Catabolism of neuropeptides by a brain proline endopeptidase | |
| Goldsmith et al. | Adsorption protein of the bacteriophage fd: isolation, molecular properties, and location in the virus | |
| Peter et al. | Different sorting of Lys-Asp-Glu-Leu proteins in rat liver. | |
| DK1672368T3 (da) | Diagnostisk og terapeutisk epitop | |
| CA2413857A1 (en) | Pd-l2 molecules: pd-1 ligands and uses therefor | |
| Blank et al. | Detection of enzymatic activities in sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gels: DNA polymerases as model enzymes | |
| Hanai et al. | Protein footprinting by the combined use of reversible and irreversible lysine modifications. | |
| Winstead et al. | Studies on rabbit muscle enolase. Chemical evidence for two polypeptide chains in the active enzyme | |
| Kosakowski et al. | The Subunit Structure of Phenylalanyl‐tRNA Synthetase of Escherichia coli | |
| Bayer et al. | Enzyme-based detection of glycoproteins on blot transfers using avidin-biotin technology | |
| Choli et al. | Blotting of proteins onto immobilon membranes: In situ characterization and comparison with high-performance liquid chromatography | |
| US6346245B1 (en) | Procedure for extraction and use of hatching fluid from Atlantic salmon | |
| Migneault et al. | Comparison of two glutaraldehyde immobilization techniques for solid‐phase tryptic peptide mapping of human hemoglobin by capillary zone electrophoresis and mass spectrometry | |
| Elleman et al. | The amino acid sequence of cysteic acid-containing peptides from performic acid-oxidized ovotransferrin | |
| Potts Jr et al. | Structural basis of biological and immunological activity of parathyroid hormone. | |
| PREHN et al. | Demonstration of specific receptors of the rough endoplasmic membrane for the signal sequence of carp preproinsulin | |
| CA1327866C (en) | Method for purifying and isolating carboxyl-terminal peptides | |
| Iwata et al. | Rabbit pulmonary angiotensin-converting enzyme: the NH2-terminal fragment with enzymatic activity and its formation from the native enzyme by NH4OH treatment | |
| CS252790B1 (cs) | Způsob oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin | |
| Iwata et al. | The NH2-and COOH-terminal sequences of the angiotensin-converting enzyme isozymes from rabbit lung and testis | |
| Khan et al. | Purification and characterization of a novel proteinase, chymopapain S | |
| Williams et al. | A solid phase method for peptide sequencing from the carboxyl terminus |