CS252222B1 - Stanovení proteinů enzymimunologickou metodou - Google Patents
Stanovení proteinů enzymimunologickou metodou Download PDFInfo
- Publication number
- CS252222B1 CS252222B1 CS855246A CS524685A CS252222B1 CS 252222 B1 CS252222 B1 CS 252222B1 CS 855246 A CS855246 A CS 855246A CS 524685 A CS524685 A CS 524685A CS 252222 B1 CS252222 B1 CS 252222B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- proteins
- agarose plate
- room temperature
- determination
- zones
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Stanovení proteinu, zejména imunoglobulinu E a ostatních sérových bílkovin enzymimunologickou metodou spočívá v tom, že do agarozové plotny s obsahem antiséra difunduje zkoušený vzorek s obsahem proteinů, přičemž identifikace radiálních precipitačnioh zón se provádí převrstvením agarozové plotny peroxidásovým konjugátem králičího antiséra proti prasečím bílkovinám, po inkubaci při teplotě místnosti ve vlhké komůrce po dobu 20 + 2 h a po promytí gelu fosfátovým fyziologickým roztokem s tenzidem se opět agarozové plotny převrství při teplotě místnosti substrátovým roztokem peroxidu vodíku s chromogenem, který je nerozpustný ve vodě a je citlivý na změnu vodíkových iontů, barevně zvýrazněné zóny se proměří planimetricky.
Description
Vynález se týká 2púsobu stanovení proteinů, zejména imunoglobulinu E a ostatních sérových bílkovin ve velmi nízkých koncentracích.
Dosud používané metody kvantitace imunoglobulinu E IgE jsou radioimunostanovení, enzymimunostanovení a imunonefelometrické metody. Všechny tyto metody jsou velmi citlivé a v principu založené na reakci antigen-protilátka.
Nevýhod těchto technik je však poměrně mnoho. Jedná se o práci s radioizotopy, což vyžaduje specielní laboratoř, drahé dovozové soupravy a přístroje. Toto částečně odstraňují enzymimunostanovení, kde odpadá práce s izotopy, avšak neodstraňují drahé soupravy a přístroje z dovozu. Robněž imunonefelometrické metody vyžadují nákladné přístroje a jsou náročné na čas, materiál a počet pracovníků. Známá enzymoimunologická stanovení sendvičovými testy na pevných nosičích vyžadují nákladné přístroje z dovozu a antiséra vysoké čistoty. Například při stanovení imunoglobulinu R by bylo nutno použít antisérum proti imunoglobulinu E, které je v potřebné vysoké čistotě a kojugované peroxidásou nedostupné.
Tyto nevýhody odstraňuje stanovení nízkých obsahů proteinu enzymimunologickou metodou podle vynálezu, která spočívá v tom, že do agarozové plotny s obsahem antiséra difunduje zkoušený vzorek s obsahem proteinů, přičemž identifikace radiálních precipitaČních zón se provádí převrstvením agarozové plotny peroxidázovým konjugátem králičího antiséra proti prasečím bílkovinám, po inkubaci při teplotě místnosti ve vlhké komůrce po dobu 20 + 2 h a po promytí gelu fosfátovým fyziologickým roztokem s neionogenním tenzidem (Tweenem 20) se opět agarozová plotna převství při teplotě místnosti substrátovým roztokem peroxidu vodíku s chromogenem, který je nerozpustný ve vodě a je citlivý na změnu vodíkových iontů, barevně zvýrazněné zóny se planímetricky proměří.
Výhodou tohoto způsobu je vysoká citlivost a specifita reakce. V případě kvantitace imunoglobulinu E lze stanovit koncentrace v rozmez! 30 až 20 000 KU(1 /72,6 x 10 až 48,4 x x 10 g/ml. Metoda je schopna plně nahradit radioimunodifuzi a odstraňuje práci s izotopy. Rovněž nevyžaduje žádné přístroje. Cena jednoho vyšetření je 20 až 30krát nižší než u dovozových souprav. Oproti imunologickým metodám sendvičového typu přináší výhodu dostupného přístrojového vybavení, nebot velikost zón se proměřuje pouze planimeteicky. Při této metodě není nutno používat těžko dostupná antiséra konjugovaná s peroxidásou vůči zkoušeným lidským proteinům nebot králičí protilátka, která je snadno dostupná, působí vůči první prasečí protilátce.
Způsob stanovení podle vynálezu je blíže osvětlen v následujícím příkladu.
Příklad
V prvé fázi se do agarozového gelu inkorporuje prasečí protilátka proti lidskému imunoglobulinu E ve vysokém ředění /500 až 1 OOOkrát podle čistoty preparátu/. K naředění antiséra a k přípravě gelu se používá 0,03M fosfátový puft a 2 % citronanu sodného, pH 8,0.
Po nanesení vzorků /standardy a lidské sérum/ se gel inkubuje 24 hodin při teplotě místnosti. Následuje intensivní promývání ve fosfát-fyziologickém roztoku s přídavkem 0,05 % hmotnostního tenzidu (Tweenu 20) pH 7,4 /PBS-T/ po dobu 72 hodin. Vypraný agarozový gel se pak inkubuje v roztoku peroxidázovém konjugátu protilátky proti první protilátce králičího antiséra proti prasečím bílkovinám. Roztok se připravuje v tisícinásobném ředění uvedeného antiséra v PBS-T s přídavkem 1 % hovězího sérového albuminu. Roztok může být zaměněn i pouhým přiložením filtračního papíru Whatman 1 napuštěného roztokem konjugátu. Inkubace probíhá ve vlhkém prostředí 20 hodin při 4 °C /nebo 10 hodin při 20 °C/. Po ukončení inkubace se gel intenzivně pere v PBS-T 72 hodiny.
Po odstranění pracího roztoku z gelu se agarozová plotna převrství substrátovým roztokem při teplotě místnosti a po objevení precipitaČních prstenců se reakce zastaví roztokem azidu sodného /0,1 i hmot./, popřípadě vysušením. Může se použít několika druhů substrátových roztoků peroxidu vodíku s chromogenem:
1. 50 mg o-diaminobenzidinu se rozpustí ve 200 ml O,1M Tris-HCl pufru pH 7,6 a přidá se 670 μ 3 í H2°2'
2. 30 mg 3-amino-9-etylkarbazol se rozpustí v 10 ml dimetylformamidu /DMR, Reachim/ ev. ve 2 ml acetonu, přidá se 40 ml 5mM acetátového pufru pH 5,0 a 200 pl 3 % čerstvého roztoku H2°2
3. 30 mg 4-chlor-l-naftol /Fluka/ v 50 ml 50 mM Tris-HCl s 200 mM NaCl, pH 7,4 a přidá se 170 yil 3 % H^.
Zóny se vybarví během 5 až 10 minut. Podle průměru nebo podle plochy zbarveného prstence a porovnáním se standardem se stanoví obsah sérových bílkovin.
Uvedené metody je možno využít při stanovení imunoglobulinu E u alergiků, defektů v imunitě, parazitárních chorob a defektních imunoglobulinů G, A, H, D, při stanovení nízkých hladin všech nádorových, zánětlivých i dalších bílkovin.
Claims (1)
- Stanovení proteinu enzymimunologickou metodou, vyznačující se tím, že do agarozové plotny s obsahem antiséra difunguje zkoušený vzorek s obsahem proteinů, přičemž identifikace radiálních precipitačních zón se provádí převrstvením agarozové plotny peroxidásovým kojugátem králičího antiséra proti prasečím bílkovinám, po inkubaci při teplotě místnosti ve vlhké komůrce po dobu 20 + 2 h a po promytí gelu fosfátovým fyziologickým roztokem s přídavkem 0,05 % hmot. neinogenního tenzidu se opět agarozová plotna převrství při teplotě místnosti substrátovým roztokem peroxidu vodíku s chromogenem, nerozpustným ve vodě a citlivým na změnu vodíkových iontů, přičemž barevně zvýrazněné zóny se proměří planimetricky.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS855246A CS252222B1 (cs) | 1985-07-15 | 1985-07-15 | Stanovení proteinů enzymimunologickou metodou |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS855246A CS252222B1 (cs) | 1985-07-15 | 1985-07-15 | Stanovení proteinů enzymimunologickou metodou |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS524685A1 CS524685A1 (en) | 1987-01-15 |
| CS252222B1 true CS252222B1 (cs) | 1987-08-13 |
Family
ID=5396982
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS855246A CS252222B1 (cs) | 1985-07-15 | 1985-07-15 | Stanovení proteinů enzymimunologickou metodou |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS252222B1 (cs) |
-
1985
- 1985-07-15 CS CS855246A patent/CS252222B1/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS524685A1 (en) | 1987-01-15 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US4016043A (en) | Enzymatic immunological method for the determination of antigens and antibodies | |
| CA1336675C (en) | Assay for antigens | |
| CA1160566A (en) | Immunological determination method | |
| US4294817A (en) | Method of fluoro immunoassay | |
| US5051356A (en) | Specific binding composition comprising a low pI protein or carbohydrate and a diagnostic test kit and method of use | |
| US4943525A (en) | Simultaneous immunoassay for the determination of antigens and antibodies | |
| US4639425A (en) | Heterogeneous immunoassay and reagent therefore | |
| JPS614962A (ja) | 薬物誘発性血小板減少症の検出方法 | |
| KR880001533B1 (ko) | 항원 항체반응의 측정방법 및 그 시약 | |
| CA1180274A (en) | Immunoassay of proteins | |
| WO1980001515A1 (en) | Improvements in or relating to processes and materials for detecting and determining proteinaceous specific binding agents and materials bindable thereto | |
| EP0278340B1 (en) | Mycoplasma membrane antigens and their use | |
| US4729961A (en) | Process for the detection and assay by erythroadsorption | |
| US5439799A (en) | Agent and process for treating body fluids in the determination of neopterin | |
| Jaouhari et al. | Avidin-biotin enzyme immunoassay of osteocalcin in serum or plasma | |
| US4794076A (en) | Simultaneous extraction of a ligand from a sample and capture by anti-ligands therefor in ligand/anti-ligand assays | |
| USRE32696E (en) | Enzymatic immunological method for determination of antigens and antibodies | |
| CS252222B1 (cs) | Stanovení proteinů enzymimunologickou metodou | |
| Hovi et al. | Solid-phase enzyme immunoassay for rotavirus antigen: faecal protease activity as a reason for false-negative results | |
| EP0389301A2 (en) | Reagent complex for immunoassay | |
| KR900005486B1 (ko) | 고상 분석 방법 | |
| Hoffman | [45] Enzyme-linked immunosorbent assays (ELISA) for immunoglobulin E and blocking antibodies | |
| EP0554657B1 (de) | Verfahren zur Bestimmung von Antigenen oder Antikörpern in Gegenwart eines Immunkomplexes | |
| US7138239B2 (en) | Method and reagent for testing for multiple organ failure in SIRS by cytochrome C measurement | |
| WO1990010232A1 (en) | Composition containing labeled streptococcal antibody, test kit and assay using same |