CS250018B1 - A method of preparing a biologically active cover for the early - Google Patents
A method of preparing a biologically active cover for the early Download PDFInfo
- Publication number
- CS250018B1 CS250018B1 CS680085A CS680085A CS250018B1 CS 250018 B1 CS250018 B1 CS 250018B1 CS 680085 A CS680085 A CS 680085A CS 680085 A CS680085 A CS 680085A CS 250018 B1 CS250018 B1 CS 250018B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- gel
- biologically active
- enzymes
- chloromethyloxirane
- washing
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
Účelom riešenia je spůsob přípravy biologicky aktívneho krytu na raný. Uvedeného účelu sa dosiahne tak, že práškový polysacharid ako škrob, celulóza, agar, lichenan s velkosťou častíc 0,06 až 0,3 mm zosietený s 2-chlórmetyloxiránom na hydírofilný gél o stuipni napúčania 4 až 15 ml. g"1 sa aktivuje 2-chlórmetyloxiránam a po aktivácii sa na vzniklé oxiránové skupiny chemicky naviažu proteolytické enzymy, ako chymotrypsín, trypsin, subtiilizín a lysozým, potom sa z gelu odstránia neviazané enzýmy premývaním a premytý gél sa odvodní organickým rozpúšťadlom a po jeho odpaření sa práškový produkt sterilizuje rádioaktívnym χ-žiarením. Prípravqk může nájsť využitie na chirurgických oddeleniach, na klinikách Specializovaných na civilně a profesionálně úrazy a vo veterinárnom lekárstveThe purpose of the solution is a method of preparing a biologically active wound dressing. The stated purpose is achieved by crosslinking powdered polysaccharide such as starch, cellulose, agar, lichenan with a particle size of 0.06 to 0.3 mm with 2-chloromethyloxirane to a hydrophilic gel with a swelling degree of 4 to 15 ml. g"1 is activated with 2-chloromethyloxirane and after activation, proteolytic enzymes such as chymotrypsin, trypsin, subtilisin and lysozyme are chemically bound to the resulting oxirane groups, then unbound enzymes are removed from the gel by washing and the washed gel is drained with an organic solvent and after its evaporation, the powdered product is sterilized by radioactive χ-radiation. The preparation can find application in surgical departments, in clinics specializing in civil and professional injuries and in veterinary medicine
Description
Vynález sa týká spósobu přípravy bfokk gicky aktívneho krytu na raný vo formě zásypu.The present invention relates to a method for preparing a bi-active active cover in the form of a backfill.
Pre účely oše trenia povrchoyých rán sav medicinálnej praxi bežne používajú zásypy připravené zo škrabu, mastenoa alebo iných galeniďkých základov a účinnej zložky s haktericidným účinkom, ako například antibiotiká, suilfoamidy a pod. Pri ošetření hnisavých a nekrotických rán sa v poslednej době zdórazňuje sorpčný účinek niektorých polymérov, ktoré sú schopné vďaka svojmu hydrofilnému charakteru odotoerať tekutiny z povrchu raný nasáváním exudátu, baktérií a ich metabolitov do kapilár vnútornej štruktúry gélu.For the purpose of treating surface wounds and in medical practice, powders prepared from scratch, mastenoa or other galenic bases and an active ingredient with a bactericidal action, such as antibiotics, suilfoamides and the like, are commonly used. The treatment of purulent and necrotic wounds has recently highlighted the sorption effect of some polymers, which, by virtue of their hydrophilic character, are able to take off liquids from the surface early by aspiration of exudate, bacteria and their metabolites into the capillaries of the internal gel structure.
Tieto vlastnosti majú přípravky zhotovené na báze sieťovaného a-l,6-gilu,kánu, dextránu [B. S. Jacobson: Scand. J. Plast. Reconsťr. Surg. 10, 65 až 72 (1976)], alebo celulózy derivatizovanej v substitučně] reakcii na éter [DTA 1 932 753],Preparations based on cross-linked a-1,6-gil, cane, dextran [B. S. Jacobson: Scand. J. Plast. Reconstr. Surg. 10, 65-72 (1976)], or cellulose derivatized in a substitution reaction to ether [DTA 1,932,753],
V poslednej době sa účinnost takto připravených zásypov ďalej zvyšuje naviazaním enzýmov zo skupiny hydroláz s proieolytickou účinnosťou na-?poycch· modifikovaného biopolyméru kovalentnou vazbou. [Immobilizovanyje proteolytičeskije fermenty v liečenii gnojmo-nekrotičeských procesov, sborník rabót, AN ZSSR, Sibirsikoje otdelenije, Institut citologii i genetik!, Novosibirsk (1981).)Recently, the efficacy of the powders thus prepared has been further enhanced by the binding of enzymes from the group of hydrolases with the proolytic activity of the modified biopolymers by covalent bonding. [Immobilizovanyje proteolytičeskije ferments in the treatment of gnojmo-necrotic processes, proceedings of rabotts, AN USSR, Sibirsikoje otdelenije, Institute of Citology and Genetics !, Novosibirsk (1981).)
Přítomnost imobilizovaných proteáz v takto upravených preparátech sposobuje rozklad nekrotického tkaniva v blízkosti raný a hnisu na jej povrchu, pričom takto vytvořené rozkladné produkty hydrofílný gél nasáva do svojej vnútornej štruktúry, čím sa súčasne odstraňuje prostredie pre rozmnožovanie baktérií a znemožní sa prienik toxínov do organizmu.The presence of immobilized proteases in such treated preparations causes the decomposition of necrotic tissue in the vicinity of the early and pus on its surface, and the resulting degradation products soak up the hydrophilic gel into its internal structure, thereby simultaneously removing the bacterial growth environment and preventing toxins from penetrating the organism.
Příprava a vlastnosti proteolytického krytu na raný, je popísaná na báze peirlovej celulózy modif ikovanej v oxidačnom stupni na polyaldehyd a následnom naviazaní proteolytického enzýmu primárnou amínoskupinou na aildehydidkú funkciu celulózy a konečne stabilizáclou Schiffovej vazby medzi enzýmom a hydrofilným nosičom redukciou AO č. 249 311.The preparation and properties of an early proteolytic cover is described on the basis of polyaldehyde-modified peiric cellulose modified in the oxidation step and subsequent coupling of the proteolytic enzyme with the primary amino group of the cellulose and finally stabilizing the Schiff bond between the enzyme and the hydrophilic carrier by reduction. 249 311.
Uvedený postup přípravy proteolytického krytu na raný je technicky náročný, predovšetkým s ohladom na použité chemikálie, nízké výťažky pri imobilizácii enzýmových preparátov a potřebu stabilizácie 'vznikajúcich schiffových vázieb.Said process for the preparation of an early proteolytic cover is technically demanding, especially with regard to the chemicals used, low yields in the immobilization of enzyme preparations and the need to stabilize the resulting schiff bonds.
Nevýhodou je nutnost použitia náročných metod sušenia připraveného preparátu lyofilizáciou, ako aj skutočnosť, že pri použití uvedeného preparátu dochádza k odstráneniu v rané přítomných baktérií len fyzikálnou cestou — ich sorpciou do vnútornej štruktúry gélu.The disadvantage is the necessity to use sophisticated methods of drying the prepared preparation by freeze-drying, as well as the fact that the use of said preparation only removes bacteria in the early presence - by their sorption into the internal structure of the gel.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že práškový polysacharid, ako škrob, celulóza, agar, lichenan s velkosťou častíc 0,006 až 0,3 mm zosietený s 2-chlórmetyloxiránom na liydrófilný géí' o' stupni napúčania 4 až 15 ml. g-1 sa aktivuje pri teplote 10 až 25 stupňov C po dobu 2 až 4 h, v přítomnosti hydroxidu sodného 2-chlórmetyloxiránom, načo sa aktivovaný gél obsahujúci 0,05 až 0,3 mmól. g_1 oxiranových funkčných skupin premyje do neutrálnej reakcie a nechá sa reagovat s roztokom proteolytických enzýmov ako chymotrypsín, trypsin, substilizín a lysozým v pomere aktivit proteolytických enzýmov k lyozýmu 2 až 4 ku 1, pri teplote 20 až 40 °C po dobu 3 až 6 h, načo sa polysacharidový gél s naviazanými enzýmaiml zbaví volných enzýmov premývaním, nato sa gél odvodní premývaním organickým rozpúštadlom, s výhodou etanolom a/alebo acetónom a suchý gél sa nakoniec sterilizuje rádioaktívnym χ-žiarením.It is an object of the present invention to provide a powdered polysaccharide such as starch, cellulose, agar, lichenate having a particle size of 0.006-0.3 mm crosslinked with 2-chloromethyl oxirane to a hydrophilic gel having a swelling degree of 4-15 ml. g -1 is activated at a temperature of 10 to 25 degrees C for 2 to 4 h, in the presence of sodium hydroxide with 2-chloromethyloxirane, after which an activated gel containing 0.05 to 0.3 mmol is activated. The g- 1 oxirane functional groups are washed into a neutral reaction and reacted with a solution of proteolytic enzymes such as chymotrypsin, trypsin, substillizine and lysozyme at a ratio of proteolytic enzyme to lysozyme activity of 2 to 4 to 1, at 20 to 40 ° C for 3 to 6 h, after which the polysaccharide gel with the bound enzymes is freed of free enzymes by washing, then the gel is drained by washing with an organic solvent, preferably ethanol and / or acetone, and the dry gel is finally sterilized by radioactive χ-radiation.
Biologicky aktívny kryt na raný připravený na báze sieťovaných polysacharidov možno sušit odpařením nadbytočného obsahu vody vo vákuovej odparike alebo odsátím nadlbytočnej vody na frite a suspendováním čiastočiek gélu polysacharidu v etanole, alebo v acetone a po odstránení nadbytočného množstva organického rozpúšťadla dalším vysušením gélu na vákuovej odiparke pri teplote 40 až 60 °C na zvyškovú vlhkost 30 až 50 mg vody na 1 g gélu.The biologically active early dressing prepared on the basis of cross-linked polysaccharides can be dried by evaporating excess water in a vacuum evaporator or by sucking off excess water on a frit and suspending polysaccharide gel particles in ethanol or acetone, and after removing excess organic solvent in vacuum to dry at a temperature of 40 to 60 ° C to a residual moisture of 30 to 50 mg of water per 1 g of gel.
Takto· připravený a vysušený biologicky aktívny kryt na raný zaručuje snaďnú manipulovatefnosť vo výrobě a pri použití, rovnoměrný tok pudru pri aplikácii na ránu, zamedzenie vstupu gélu a enzýmových proteínov do krvného oběhu a nepřítomnost malých čiastočiek, tzv. fines frakcie gélu biopolyméru.The thus prepared and dried biologically active wound dressing ensures easy handling in production and use, uniform powder flow when applied to the wound, preventing the entry of gel and enzyme proteins into the bloodstream and the absence of small particles, so-called " fines gel biopolymer fraction.
Častíce o velkosti 0,06 až 0,3 mm sa nezachytávajú v povrchovej štruktúre raný. Lýzu mikroflóry Gram pozitívnych baktérií zodpovědných za hnisavý charakter rán zabezpečuje imobilizovaný lysozým. Sorpčná schopnost nosného gélu je až 15 ml. g-1, čo je podstatné viac ako sorpčná schopnost' natívnych biopolymérov alebo perlovej celulózy.Particles of 0.06 to 0.3 mm in size do not get caught in the surface structure early. Microbiota lysis Gram positive bacteria responsible for the suppurative character of the wounds are provided by immobilized lysozyme. The sorption capacity of the carrier gel is up to 15 ml. g -1 , which is substantially more than the sorption capacity of native biopolymers or pearl cellulose.
Pri aplikácii biologicky aktívneho krytu na raný, připraveného na báze mobilizovaného chymotrypsínu alebo trypsinu a lysozýmu na géli zo siefovanej celulózy, hydroxyetylcelulózy, škrobu alebo agaru sa pozoroval výrazný proteolytický účinok na nekrotické tkanivo charakterizovaný 300 až 600 mg hydrolyzovaného proteinu (albumin hovadzielho alebo 1'udského séra, denaturovaný kolagén) 1 g suchej hmotnosti gélu za 1 hodinu.When applying a biologically active wound dressing prepared on the basis of mobilized chymotrypsin or trypsin and lysozyme on a gel of cross-linked cellulose, hydroxyethylcellulose, starch or agar, a marked proteolytic effect on necrotic tissue characterized by 300-600 mg of hydrolyzed protein (bovine or 1'-human albumin) serum, denatured collagen) 1 g dry gel weight per hour.
Použité gély preukázali vysokú sorpčnú •schopnost pri nasávaní exudátov z raný (až 15 g exudátu na 1 g suchej hmotnosti gélu.) a imobilizovaný lysozým spósobil pokles sledovaných stafylokokov a streptoikokov o 95 % (charakterizované 150 mg lyžovaných bunisk Micrococcus luteuis a až 100 mg Staphyloicoccus aureus v suchej hmotnosti za 1 hodinu 1 g suchej hmotnosti gélu).The gels used showed a high sorption ability when aspirating exudates from the early (up to 15 g exudate per 1 g dry weight of gel) and immobilized lysozyme caused a 95% decrease in the observed staphylococci and streptoicocci (characterized by 150 mg lysed Micrococcus luteuis and up to 100 mg aureus (dry weight per hour 1 g dry weight gel).
S Β O 1 8S Β O 1 8
Příklad 1Example 1
100 g mikroikryštalickej celulózy zosietenej is 10 % hmot. 2-chilórmetyloxiránom s napúčacím objemem 5 ml. g-1 a velikostem častíc 0,05 až 0,3 mm sa alkalizuje 1 h pri teplote 20 °C so· 100 ml vodného· rozteku hydroxidu sodného o koncentrácii 20 % hmotnostných. Potom sa .přidá k reakčnej zmesi 25 ml 2-iohlór,metyloxi'ránu a nechá sa reagovat 6 h pri teplote 15 C za stálého •miešania.100 g of microcrystalline cellulose cross-linked with 10 wt. 2-Chloromethyloxirane with a swelling volume of 5 ml. g -1 and a particle size of 0.05 to 0.3 mm is made alkaline for 1 h at 20 ° C with 100 ml of an aqueous solution of sodium hydroxide at a concentration of 20% by weight. 25 ml of 2-chloro-methyloxane are then added to the reaction mixture and the mixture is left to react for 6 hours at 15 DEG C. with stirring.
Ďalej sa rekčná zmes neutralizuje vodným roztokom kyseliny octovej na indikátor fenolftalein, vzniklé soli sa vymyjú destilovanou vodou. Po vymyti nezreagovaných chemikálií sa přidá k vymytému gelu roztok chymotrypsínu a lysozýmu vo fosfátovom tlmivom roztoku (10 mmól.il-1, pH 7,6, 300 ml) o aktivitě chymotrypsínu 1 300 mg hydrolyzovaného albuminu hovadzieho séra za 1 Ih a aktivitě lysozýmu 650 mg lýzovaných buniek Micrococcus luteus za 1 ,h. Takto připravená suspenzia sa nechá .pretrepávať na recítprokej trepačke (frekvencia 1 Hz, amplituda 20 cm) po dobu 6 h při teplote 20 °C.Next, the reaction mixture is neutralized with an aqueous acetic acid solution to the phenolphthalein indicator, and the resulting salts are washed with distilled water. After washing the unreacted chemicals, a solution of chymotrypsin and lysozyme in phosphate buffer (10 mmol.l -1 , pH 7.6, 300 ml) with a chymotrypsin activity of 1,300 mg hydrolyzed bovine serum albumin per lh and lysozyme activity 650 was added to the eluted gel. mg of lysed Micrococcus luteus cells per h. The suspension thus prepared is shaken on a recirculating shaker (frequency 1 Hz, amplitude 20 cm) for 6 h at 20 ° C.
Nezreagovaný chymotoypsín a lysozým sa vymývali 2 000 ml fosfátového tlmivého roztoku o pH 7,6 (10 mmól.l-1), potom 2 000 mililitrov citrát fosfátového roztoku 50 mmól.l-1; pH 5,5j a nakoniec destilovanou vodou (4 000 ml). Odvodnenie gelu sa zabezpečilo postupným vymýváním gélu zmesou etanol—voda (1 000 ml:, najprv 30 objemových dielov etanolu a 70 objemových dielov vody; ďalej 70 objemových .dielov etanolu a 30 objemových dielov vody a nakoniec 96 obje,mo<vými dielmi etanolu a 4 objemovými dielami vody).Unreacted chymotoypsine and lysozyme were eluted with 2,000 ml phosphate buffer pH 7.6 (10 mmol.l -1 ), then 2,000 ml phosphate citrate 50 mmol.l -1 ; pH 5.5j and finally distilled water (4000 ml). The dewatering of the gel was ensured by successive elution of the gel with ethanol-water mixture (1000 ml: first 30 parts by volume of ethanol and 70 parts by volume of water; then by 70 parts by volume of ethanol and 30 parts by volume of water; 4 volumes of water).
Odvodněný gel sa vysušil najprv na vzduchu a potom v rotačnej vákuovej odparke pri teplote 50 C. Sterilizácia hotového iproteolytického krytu na raný sa zabezpečila gama-žiarením, dávkou 25 kGy v .polyetylénových zatavených vreckách. Takto připravený .proteolytický kryt neobsahoval volné oxiránové skupiny ani netán i zo váné formy chlóru. Nezreagovaný 2-chlórmetytá'Xirán sa rozložil jednak na glycerol a ten sa vymyl pri spracovaní gélu. Nezreagovaný metyloxiránový substituent .na povrchu gélu zhydrolyzoval na l,2-dihydroxyp,ropylový substituent.The dewatered gel was dried first in air and then in a rotary evaporator at 50 ° C. Sterilization of the finished iproteolytic cover for early was ensured by gamma-irradiation, with a dose of 25 kGy in polyethylene sealed bags. The proteolytic capsule thus prepared did not contain free oxirane groups or non-flammable chlorine form. The unreacted 2-chloromethyl-oxirane was decomposed to glycerol and eluted at the gel treatment. The unreacted methyloxirane substituent on the gel surface hydrolyzed to a 1,2-dihydroxypropyl substituent.
Příklad 2 že ako polysacharid sa (použije prášková hydroxyefylcelulóza zosietená s 2-c.hlórmetyioxiránom na napúčací objem 15 ml. g-1 a aktivácia s 2-chiórmetyloxiránom sa prevádza .pri teplote 25 C,C po dobu 3 h.Example 2 such that the polysaccharide (used hydroxyefylcelulóza powder crosslinked with 2-c.hlórmetyioxiránom the swelling volume 15 ml. G-1 and activation of the 2-chiórmetyloxiránom is performed at preferably 25 DEG C for 3 hours.
Příklad 3Example 3
Postup podfa příkladu 1 s tým rozdielom, že ako enzýmový nosič sa použije siefovaný agar s ,2-chlórmetyloxiránoini o stupni sletová,nia 0,03 priečnych vazieb na jednu anhydroglukozytovú jednotku a napúčacom objeme 15 ml. g-1. K imobilizácii sa použila zmes subtilizínu a lysozýmu v pomertích tak, ako je uvedené v pofklade 1. Vysušený preparát .mal aktivitu 300 mg hydrolyzovanáho albuminu hovadzieho séra za 1 h na 1 g suchej hmotnosti a 150 mg suchých bunielk Micrococcus luteus lyžovaných za 1 h 1 g imobilizovaného preparátu pri 37 C.The procedure of Example 1, except that crosslinked agar with 2-chloromethyloxiranini having a degree of flaking of 0.03 cross-links per anhydroglucosyte unit and a swelling volume of 15 ml was used as the enzyme support. g -1 . A mixture of subtilisin and lysozyme was used for immobilization as described in Example 1. The dried preparation had an activity of 300 mg hydrolyzed bovine serum albumin per hour per g dry weight and 150 mg dry Micrococcus luteus cells lysed per hour g immobilized preparation at 37 C.
Příklad 4Example 4
Postupuje sa podfa .příkladu 1 s tým rozdielom, že k imobilizácii sa použije papín a ako enzýmový .nosič sa použil zemiakový škrob sletovaný 2-chlórmety.loxiránom na napúčací objem 5 ml. g-1. Naviazanie enzymu prebehlo pri teplote 40 C po dobu 3 h. Odvodnenie sa zabezpečilo., ako je uvedené v příklade 1 s tým rozdielom, že sa použili vodné roztoky acetonu. Výsledný enzýmový preparát mal aktivitu imobilizovaného .papaínu 50 mg hydrolyzovaného· albuminu hovadzieho séra za 1 h na 1 g a 12,5 miligramov lýzovauých buniek Micrococcus luteus za 1 h na 1 g suchého preparátu pri teplote 37 ’C.The procedure is as described in Example 1 except that papermaking is used for immobilization and potato starch, beaded with 2-chloromethylloxirane to a swelling volume of 5 ml, is used as the enzyme carrier. g -1 . Enzyme binding was performed at 40 ° C for 3 h. Drainage was provided as described in Example 1 except that aqueous acetone solutions were used. The resulting enzyme preparation had an immobilized papain activity of 50 mg hydrolyzed bovine serum albumin per hour for 1 g and 12.5 milligrams of Micrococcus luteus lysed cells per hour for 1 g dry preparation at 37 ° C.
P r í k 1 a d 5Example 5
Postupuje sa ako v příklade 1 s tým rozdielom, že ako nosič sa použije siefovaný a-l,4,6-glukan-pululán o stupni sieťovania 0,03 a napúčacom objeme 15 ml. g-1. Výsledná aktivita imobilizovaných enzýmových preparátov bola 290 mg hydrolyzovaného albuminu hovadzieho séra za 1 h na 1 g suchej hmotnosti a 143 mg lýzovauých buniek Micrococcus luteus za 1 h na 1 g suchého imobilizovaného preparátu.The procedure is as in Example 1 except that crosslinked α1,6-glucan-pulluan having a cross-linking degree of 0.03 and a swelling volume of 15 ml is used as carrier. g -1 . The resulting activity of the immobilized enzyme preparations was 290 mg hydrolyzed bovine serum albumin per hour per g dry weight and 143 mg lysed Micrococcus luteus cells per hour per g dry immobilized preparation.
'Vynález má případné využitie na chirurgických oddeleniach, na klinikách specializovaných na civilně a profesionálně úrazy, ale aj vo veterinárnom lekárstve.The invention has potential applications in surgical departments, clinics specialized in civil and professional injuries, but also in veterinary medicine.
Postup podfa příkladu 1 s tým rozdielom,The procedure of Example 1 with the difference
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS680085A CS250018B1 (en) | 1985-09-24 | 1985-09-24 | A method of preparing a biologically active cover for the early |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS680085A CS250018B1 (en) | 1985-09-24 | 1985-09-24 | A method of preparing a biologically active cover for the early |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS250018B1 true CS250018B1 (en) | 1987-04-16 |
Family
ID=5415863
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS680085A CS250018B1 (en) | 1985-09-24 | 1985-09-24 | A method of preparing a biologically active cover for the early |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS250018B1 (en) |
-
1985
- 1985-09-24 CS CS680085A patent/CS250018B1/en unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CA1237983A (en) | Proteolytic cover of wounds | |
| JP3337472B2 (en) | Wound healing agent | |
| US5516673A (en) | Bioactive conjugates of cellulose with amino compounds | |
| JPS59225064A (en) | Carrier for immobilizing physiologically active substance | |
| US4904469A (en) | Therapeutic agents for enzymatic wound cleaning | |
| CN105906742A (en) | Oxidized chitosan quaternary ammonium salt and preparation method thereof | |
| CS249311B1 (en) | Proteolytic wound dressing | |
| CN116003838B (en) | Crosslinked hydrogel and preparation method and application thereof | |
| CN106822987B (en) | A kind of preparation method of the porous ball hemostatic material of chitin-alginic acid salt | |
| EP1299135B1 (en) | Wound dressing comprising terrilytin as therapeutically active agent | |
| TW201425343A (en) | Polymer composition and polymer material | |
| CS250018B1 (en) | A method of preparing a biologically active cover for the early | |
| CN108057129A (en) | A kind of preparation method for the sorptivety liquid wound repair material that stops blooding | |
| WO2019026177A1 (en) | Hemostatic material and wound dressing material containing same | |
| GB2043668A (en) | Cross-linked hydroxyethyl starch | |
| GB2164052A (en) | Polymeric material having an enzymatic action, its process of preparation and a medicament containing it | |
| JPS621731B2 (en) | ||
| CA2260324A1 (en) | Method for preparing bioactive polymers | |
| JPS60156468A (en) | Protein decomposable wound cover | |
| JPS59204601A (en) | Manufacture of molded article having physiological activity | |
| RU2323748C2 (en) | Medical bandage containing exzyme complex from hepatopancreas of crab, and method of its preparation | |
| RU2769243C1 (en) | Method for producing heterogeneous enzyme preparation based on ficin and low-molecular chitosan | |
| RU2771183C1 (en) | Method for producing ficin preparation in gel based on carboxymethylcellulose | |
| RU2678435C2 (en) | Method of obtaining a heterogeneous drug based on collagenase and chitosan | |
| Eldarovna et al. | Biointerface Research in Ap |