CS243864B1 - Enzymová elektroda - Google Patents

Enzymová elektroda Download PDF

Info

Publication number
CS243864B1
CS243864B1 CS849525A CS952584A CS243864B1 CS 243864 B1 CS243864 B1 CS 243864B1 CS 849525 A CS849525 A CS 849525A CS 952584 A CS952584 A CS 952584A CS 243864 B1 CS243864 B1 CS 243864B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
enzyme
enzyme electrode
electrode
biocatalytic
layer
Prior art date
Application number
CS849525A
Other languages
English (en)
Other versions
CS952584A1 (en
Inventor
Lumir Macholan
Jaroslav Filipek
Original Assignee
Lumir Macholan
Jaroslav Filipek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Lumir Macholan, Jaroslav Filipek filed Critical Lumir Macholan
Priority to CS849525A priority Critical patent/CS243864B1/cs
Publication of CS952584A1 publication Critical patent/CS952584A1/cs
Publication of CS243864B1 publication Critical patent/CS243864B1/cs

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Řešení se týká enzymové elektrody, která sestává ze dvou paralelně umístěných kovových sítěk, uchycených v pružném držáku, mezi nimiž je biokatalytická vrstva. Elektroda je určena k enzymatickokonduktometrickému stanoveni biologicky důležitých látek.

Description

(54) Enzymová elektroda
Řešení se týká enzymové elektrody, která sestává ze dvou paralelně umístěných kovových sítěk, uchycených v pružném držáku, mezi nimiž je biokatalytická vrstva.
Elektroda je určena k enzymatickokonduktometrickému stanoveni biologicky důležitých látek.
Obr. 1.
Vynález se týká enzymové elektrody. Enzymové elektrody jsou specifická analytická čidla pro rychlé stanoveni biologicky důležitých látek v tělesných tekutinách, v potravinách, krmivech a odpadech většinou bez potřeby jejich separace. Dají se použít i v kalných, barevných a fluoreskujících prostředích bez nároků na chemikálie, kromě pufru a příslušného standardu. Obvykle se zhotovují mechanickým připevněním biokatalytické vrstvy s imobilisovaným enzymem, suspenzí buněk, tkáňovým řezem na konvenční elektrochemický senzor.
Z literatury i komerční produkce jsou známy dva druhy enzymových elektrod, které se liší typem základního indikačního senzoru:
- potenciometrické, reagující na přídavek analytu změnou potencionálu, jako iontově selektivní elektroda a
- polarografické, tj. amperometrické, které při vloženém konstantním napětí mezi měrnou a referentní elektrodou dávají po přídavku analytu proudový signál.
Je známé stanovení biologicky důležitých látek, využívající změnu vodivosti v závislosti na enzymatické reakci, například u analyzátoru močoviny v krvi, který pracuje na konduktometrickém principu s rozpustnou ureasou, která po analýze odtéká do odpadu, což je značně neekonomické.
Tuto nevýhodu odstraňuje enzymetická elektroda podle vynálezu, který sestává ze dvou paralelně umístěných kovových sítěk, uchycených v pružném držáku, mezi nimiž je biokatalytická vrstva. Síťky jsou s výhodou vyrobeny z platiny nebo zlaceného fosforového bronzu s počtem 2 až 3.10 ok na cm . Biokatalytická vrstva obsahuje fyzikálně nebo chemicky imobilizovaný enzym, buněčné organely, mikrobiální buňky nebo tkáňový řez. Síla biokatalytické vrstvy je obvykle 0,2 až 0,5 mm. Biokatalytická vrstva může být tvořena zapolymerovaným enzymem v polyakrylamidovém gelu nebo enzymem zesítěným s albuminem nebo želatinou pomocí glutardialdehydu.
Enzymová elektroda je schematicky v řezu znázorněna na obr. 1 a v nárysu na obr. 2. Sestává ze dvou paralelně umístěných kovových sítěk 2> mezi nimiž je umístěna biokatalytická vrstva g. Bezprostřední dotyk sítěk 2 s biokatalytickou vrstvou g zajištuje pružný držák 2. Sítky 1 jsou připojeny na neznázoměný konduktometr přes jednoduchý neznázoměný kompenzační člen, který umožňuje eliminovat výchozí vodivost pracovního pufru o nízké iontové síle.
Signál se vyvádí na neznázoměný zapisovač při citlivosti 20 mV a s rychlostí posuvu 0,1 mm/s.
Funkce zařízení je dokumentována na stanoveni močoviny v moči (příklad 1). Močovina difundující přes elektrodové sítky do vrstvy,Amobilizovaného enzymu ureasy se zde štěpí na amonné a uhličitanové ionty : močovina + 2 H2Ó 2 NH^ + CO3 . Tím se mění i vodivost v meZielektrodovém prostoru. Elektrodová odezva má tvar.vlny a oba parametry zaznamenané křivky, tj. celková změna vodivosti i počáteční změna vodivosti jsou lineární funkci koncentrace močoviny v reakčním médiu. Pokud analyzovaný vzorek sáni již obsahuje ionty, je třeba jeho vodivost odečíst; za tím účelem se analýza opakuje s membránou obsáhující místo enzymu stejné množství inaktivní bílkoviny. Je už jen technickou záležitostí změřit oba signály současně, eventuálně přímo jejich diferenci.
Předností biosenzoru je ekonomika analýz, nebot se mnohonásobně využije zakotveného enzymu, který může být i velmi nákladný.
Druhým příkladem je jednoduché měření aktivity enzymu arginasy, která štěp! svůj substrát arginin na močovinu a ornithin:
arginasa
L-arginin + HjO -i-> močovina + ornithin
V tomto případě po nastartování reakce enzymem plynule vzrůstá vodivost. Vyhodnocuje se počáteční maximální změna vodivosti, která je úměrná aktivitě enzymu.
Další možnosti využití nového biosenzoru jsou nasnadě, např. stanovení různých amidů, esterů, alkoholů, aldehydů, kys. štavelové, argininu apod. při zvolení vhodného složení biokatalytické vrstvy.
Enzymatická elektroda a její použití je blíže osvětleno v následujících příkladech.
Příklad 1
Stanovení močoviny
Elektroda sestává z platinových sítěk s počtem ok 2 500 na cm ,' mezi nimiž je biokatalytická vrstva tvořena membránou, která byla připravena podle Guilbaulta a Montalva (Anal.
Chem. 41, 1 897, 1969) zapolymerováním 10 mg ureasy (Sigma III) do 60 ul polyakrylamidového 2 gelu mezi dvěma sklíčky na ploše 1,4 cm . Membrány o síle 0,25 mm jsou uchovávány v pracovním pufru. Do skleněné reakční nádobky s vodním pláštěm, magnetickým míchadlem a 6,5 ml 30 mM veronalového pufru pH 6,2, se vloží enzymová elektroda s imobilizovanou ureasou. Po vytemperování na 30 °C a vykompenzování výchozí vodivosti se přidá např. 20yUl lOx ředěné moči a zaznamená se změna vodivosti až do dosažení ustálené odezvy za 3 až 4 min. Poté se provede celé měření znovu při výměně enzymové vrstvy za vrstvu neaktivní /ureasa nahrazena stejným množstvím hovězího serumalbuminu/. Rozdíl obou měření odpovídá obsahu močoviny. Standardizace se provede s roztokem 1 g močoviny/1. Kalibrační křivka je lineární v rozmezí 3.8.10-^ až -4
6.1.10 M a reprodukovatelnost je okolo 6 %.
Příklad 2
Stanovení aktivity arginasy
Analýza se provádí se stejnou enzymovou elektrodou v 6,5 ml 20 mM maleátového pufru pH 9,5 obsahujícího 10 mM síran manganatý s 25 mM hydrochlorid argininu. Po přidání vzorku arginasy elektrodový systém signalizuje vznikající močovinu jako-'plynulý vzrůst vodivosti.
Ze záznamu se odečte počáteční rychlost, která se převede na enzymovou aktivitu v katalech po kalibraci standardem močoviny.

Claims (6)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    1. Enzymová elektroda, vyznačující se tím, že sestává ze dvou paralelně umístěných kovových sítěk (1), uchycených v pružném držáku (2), mezi nimiž je biokatalytická vrstva (3).
  2. 2. Enzymová elektroda podle bodu 1, vyznačující se tím, že sítky jsou z platiny nebo
  3. 3 2 zlaceného fosforového bronzu s počtem 2 až 3.10 ok na cm.
    3. Enzymová elektroda podle bodů 1 až 2, vyznačující se tím, žě biokatalytická vrstva obsahuje fyzikálně nebo chemicky imobilizovaný enzym, buněčné organely, mikrobiální buňky nebo tkáňový řez.
  4. 4. Enzymová elektroda podle bodů 1 až 3, vyznačující se tím, že biokatalytická vrstva je silná 0,2 až 0,5 mm.
  5. 5. Enzymová elektroda podle bodů 1 až 4, vyznačující se tím, že biokatalytická vrstva je tvořena zapolymerovaným enzymem v polyakrylamidovém gelu.
  6. 6. Enzymová elektroda podle bodů 1 až 5, vyznačující se tím, že biokatalytická vrstva je tvořena enzymem zesítěným s albuminem nebo želatinou pomocí glutardialdehydu.
CS849525A 1984-12-10 1984-12-10 Enzymová elektroda CS243864B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS849525A CS243864B1 (cs) 1984-12-10 1984-12-10 Enzymová elektroda

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS849525A CS243864B1 (cs) 1984-12-10 1984-12-10 Enzymová elektroda

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS952584A1 CS952584A1 (en) 1985-09-17
CS243864B1 true CS243864B1 (cs) 1986-07-17

Family

ID=5445199

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS849525A CS243864B1 (cs) 1984-12-10 1984-12-10 Enzymová elektroda

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS243864B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS952584A1 (en) 1985-09-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4655880A (en) Apparatus and method for sensing species, substances and substrates using oxidase
US5411866A (en) Method and system for determining bioactive substances
Martorell et al. Amperometric determination of pesticides using a biosensor based on a polishable graphie-epoxy biocomposite
US5611900A (en) Microbiosensor used in-situ
US5462645A (en) Dialysis electrode device
Adeloju et al. Polypyrrole-based potentiometric biosensor for urea: part 2. Analytical optimisation
Radomska et al. Creatinine biosensor based on ammonium ion selective electrode and its application in flow-injection analysis
EP0121385A1 (en) Conductimetric bioassay techniques
Zen et al. Voltammetric determination of serotonin in human blood using a chemically modified electrode
Schubert et al. Organic phase enzyme electrodes for the determination of hydrogen peroxide and phenol
Markas Rapid detection of paracetamol using a disposable, surface-modified screen-printed carbon electrode
US5256271A (en) Method of immobilizing biofunctional material, and element prepared thereby, and measurement by using the same element
Niwa et al. Continuous monitoring of L-glutamate released from cultured nerve cells by an online sensor coupled with micro-capillary sampling
Gyurcsányi et al. Fast response potentiometric acetylcholine biosensor
US5378332A (en) Amperometric flow injection analysis biosensor for glucose based on graphite paste modified with tetracyanoquinodimethane
Kurita et al. Differential measurement with a microfluidic device for the highly selective continuous measurement of histamine released from rat basophilic leukemia cells (RBL-2H3)
McNeil et al. Amperometric biosensor for rapid measurement of 3-hydroxybutyrate in undiluted whole blood and plasma
Kulys et al. Urease sensors based on differential antimony electrodes
Uemura et al. Development of Small-sized Lysine Enzyme Sensor for Clinical Use.
Stancik et al. Biosensing of tyrosinase inhibitors in nonaqueous solvents
CS243864B1 (cs) Enzymová elektroda
Eppelsheim et al. Potentiometric thick-film sensor for the determination of the neurotransmitter acetylcholine
Bradley et al. Immobilization barrier effects on the dynamic response characteristics of potentiometric adenosine deaminase enzyme electrodes
GR1003489B (el) Μεθοδος προσδιορισμου βιολογικων και χημικων παραγοντων μεσω της μετρησης των μεταβολων των ηλεκτρικων ιδιοτητων ακινητοποιημενων κυτταρων ή συστατικων αυτων (βιοηλεκτρικη μεθοδος αναγνωρισης)
Wang et al. Tissue bioelectrode for eliminating protein interferences