CS239044B1 - Isolation and purification of apolipoprotein A-I and apolipoprotein B - Google Patents
Isolation and purification of apolipoprotein A-I and apolipoprotein B Download PDFInfo
- Publication number
- CS239044B1 CS239044B1 CS837441A CS744183A CS239044B1 CS 239044 B1 CS239044 B1 CS 239044B1 CS 837441 A CS837441 A CS 837441A CS 744183 A CS744183 A CS 744183A CS 239044 B1 CS239044 B1 CS 239044B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- apolipoprotein
- isolation
- ultracentrifugation
- flotation
- purification
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Účelem vynálezu je zlepšení postupu izolace a purifikace plasmatických bílkovin, apolipoproteinu A-I a apolipoproteinu B. Uvedeného účelu je dosaženo navrhovanou technologií, která využívá fyzikálně-che= mických a imunocbemických metod v pořadí: ultraoentrifugační flotace, chromatografie. Tento postup umožňuje souběžnou izolaci obou apolipoproteinů jako antigenů ve vysoké čistotě, při minimálních požadavcích na ultracenrifugační flotaci.The purpose of the invention is to improve the process of isolation and purification of plasma proteins, apolipoprotein A-I and apolipoprotein B. The stated purpose is achieved by the proposed technology, which uses physicochemical and immunochemical methods in the following order: ultracentrifugation flotation, chromatography. This process allows simultaneous isolation of both apolipoproteins as antigens in high purity, with minimal requirements for ultracentrifugation flotation.
Description
Vynález ee týká Izolace a purifikace apolipoproteinu A-i (Apo A-I) a apolipoproteinu Β (Apo B) jako antigenů.The invention relates to the isolation and purification of apolipoprotein A-i (Apo A-I) and apolipoprotein Β (Apo B) as antigens.
Výchozí surovinou pro přípravu obou apolipoproteinů je krevní eórum nebo plasma normolipidemických jedinců.The starting material for the preparation of both apolipoproteins is blood eor or plasma of normolipidemic individuals.
Lze použít také smíšené plasmy od více dárců, kteří však musí splňovat uvedenou podmínku. Je možné použit i plasmu získanou plasmaferesou.Mixed plasma from multiple donors may also be used, but must meet the above condition. Plasma obtained by plasmaferesis may also be used.
Pro zpracování výchozí suroviny je v odborné literatuře k dispozici celá řada metod (Burstein, M. et al.. □ . Lipid. Res., 11, 1970, s. 583-592, Havel, R.3. et al., 3. Clin. Invest., 34, 1955, s. 1345-1353, Weisgraber, K.H. et al., □ , ^ipid, Res·, 21, 1980, s. 316-325, Cohn, E.3. et al. □ , Am. Chem. Soc·, 68, 1946, e. 459—463).A number of methods are available in the literature for processing the starting material (Burstein, M. et al., Lipid. Res., 11, 1970, pp. 583-592, Havel, R.3. Et al., 3). Clin. Invest., 34, 1955, pp. 1345-1353, Weisgraber, KH et al., Et al., Res., 21, 1980, pp. 316-325, Cohn, E.3 et al. (Am. Chem. Soc., 68, 1946, e. 459-463).
První fáze zpracováni spočívá v izolaci jednotlivých frakci krevních lipoproteinů, K tomuto účelu se používá téměř výhradně dvou postupů. První z nich je založen na selektivní precipitaci lipoproteinů polyanionty (Burstein,The first stage of processing consists of isolating the individual fractions of blood lipoproteins. For this purpose, almost exclusively two procedures are used. The first is based on selective precipitation of lipoproteins by polyanions (Burstein,
M. et el., □.Lipid. Res·, 11, 1970, s. 583-592). Metodou dle Bursteina lze izolovat z čerstvé plasmy precipitaci roztokem wolframanu sodného (40 g/1) a chloridem manganatým v koncentraci 2,0 mol/l směs lipoproteinů a velmi nízké hustotě a nízké hustotě (VLDL a LDL) a lipoproteiny o vysoké hustotě (HOL). Druhý z nich spočívá v postupné ultracentrifugačni flotaci podle Havela a spol. (Havel, R.3. et al., □· Clin. Invest., 34, 1955, s. 1345-1353). Pomoci flotace s postupně se zvyšujíc! specifickou hmotnosti jsouM. et al., Lipid. Res., 11, 1970, pp. 583-592). Burstein can be isolated from fresh plasma by precipitation with sodium tungstate solution (40 g / l) and manganese chloride at 2.0 mol / l a mixture of lipoproteins and very low density (VLDL and LDL) and high density lipoproteins (HOL) ). The second is the gradual ultracentrifugation flotation of Havel et al. (Havel, R.3. Et al., Clin Invest., 34, 1955, pp. 1345-1353). Help flotation with gradually increasing! specific weights are
- 2 239 044 z výchozího materiálu, krevní plasmy nebo séra. Izolovány- 2,239,044 of starting material, blood plasma or serum. Isolated
VLDL, LDL a HOL. Jen zcela výjimečně bylo použito k přípra vě některé z uvedených' llpoprotelnových frakcí jiné metody.VLDL, LDL, and HOL. Exceptionally, another method has been used to prepare some of the above mentioned protein fractions.
Druhá fáze je zaměřena na izolaci jednotlivých apolipoproteinů z delipldovaných frakci lipoproteinů - jejich proteinové komponenty. K tomuto účelu se nej častěji používá gelová filtrace ne dextranových gelech (Sephadex) nebo ieoelektrická fokueace (Alaupovlc, P. et al., Biochim, Blophye· Acta, 260, 1971, 8. 689-707, Curry, M.D. et al., Clin, Chem., 22, 1976, e. 315-322, Curry* M.D. et al.,The second phase is focused on the isolation of individual apolipoproteins from the delipldated fractions of lipoproteins - their protein components. Gel filtration on dextran gels (Sephadex) or electrolytic focusing is most commonly used for this purpose (Alaupovlc, P. et al., Biochim, Blophye Acta, 260, 1971, 8. 689-707, Curry, MD et al., Clin. Chem., 22, 1976, e. 315-322, Curry * MD et al.,
Clin, Chem., 24, 1978, e. 280-286, Forhez, P. et al., □ . Biochem. Biophye., 6, 1982, e. 283-296).Clin, Chem., 24, 1978, e 280-286, Forhez, P. et al. Biochem. Biophye., 6, 1982, e. 283-296).
Při izolaci jednotlivých frakci pleemetických nebo sé rových lipoproteinů je dávána přednost ultracentrlfugační flotaci před metodami precipitačnimi. Pomocí ni lze připra vit frakce lipoproteinů, jejichž fyeikálně-chemické vlastnosti jsou aIterovány méně než vlastnosti lipoproteinů dělených precipitaci. Ultracentrlfugační flotace je věak metodou vysoce náročnou na kvalitní technická vybavení.In the isolation of individual fractions of pleemetic or serum lipoproteins, ultracentrifugation flotation is preferred over precipitation methods. It can be used to prepare fractions of lipoproteins whose physico-chemical properties are atherently less than the properties of lipoproteins divided by precipitation. Ultracentrifuge flotation is, however, a method highly demanding in terms of quality technical equipment.
Z dosavadních zkušeností vyplývá, že nejvhodnějšim postupem Izolace ς purifikace apolipoproteinů je kombinace ultracentrlfugační flotace, delipidace a chromatografie. Této koncepce bylo využito taká k vypracování navrženého výrobního postupu izolace Apo A-I a Apo B, avšak tak, aby byly co nejvíce sníženy požadavky na technická vybaveni při zachováni potřebné čistoty obou apolipoproteinů jako antlgenů.Experience has shown that the most suitable procedure for Isolation and Purification of Apolipoproteins is a combination of ultracentrifugation flotation, delipidation and chromatography. This concept has been used to elaborate the proposed production process for the isolation of Apo A-I and Apo B, but so as to minimize technical equipment requirements while maintaining the required purity of both apolipoproteins as antigens.
Podstatou vynálezu Je návrh reprodukovatelné výrobníThe present invention is based on a reproducible manufacturing design
239 044 technologie Izolace apolipoproteinů A-I a B ae zvláštní· zřetelem na dosažení potřebná čistoty konečného produktu při použití co nej jednoduššího pracovního postupu·239 044 technology Isolation of apolipoproteins A-I and B and with particular regard to achieving the required purity of the end product using as simple a process as possible ·
1· Příprava plasmy jako výchozí suroviny spočívá v přidáni sodná soli kyseliny ethyléndiamlntetraocéové a přefiltrováni přes aebeatoceluloaovou vrstvu (Seitz).The preparation of the plasma as starting material consists in adding the sodium salt of ethylenediaminetetraacetic acid and filtering through an aebeatoceluloa layer (Seitz).
2. K prvnímu ultracentrifugačnlmu děleni ee specifická hmotnost plasmy upraví pomoci bromidu sodného na 1.030- 1,050 kg/1. Ultracentrifugačni flotaca probíhá při 750 Hz a teplotě 5 až 10^°C po dobu 18 až 22 hodin· Po skončeni ae oddělí supernatant. mezivrstva a infranatant. Mezivrstva sa odstraní.2. For the first ultracentrifugation, the specific gravity of the plasma is adjusted to 1.030-1.050 kg / l with sodium bromide. The ultracentrifugation flotation is run at 750 Hz and a temperature of 5-10 ° C for 18-22 hours. After completion, the supernatant is collected. interlayer and infranatant. The intermediate layer is removed.
Ke druhému ultracentrifugačnlmu děleni ee upraví specifická hmotnost infranatantu pomocí bromidu draselného <~<j,230 na 1,050) kg/1· Ultracentrifugačni flotaca probíhá při 750 Hz a teplotě 5 až lof°C po dobu 18 až 22 hodin· Oddělí se supernatant, mezivrstva a infranatant.For the second ultracentrifugation separation, the specific gravity of the infranatant is adjusted with potassium bromide (230 to 1,050) kg / l. and infranatant.
- Supernatant slouží k přípravě Apo B,- The supernatant is used to prepare Apo B,
- Infranatant slouží k přípravě Apo A-I.- Infranatant is used to prepare Apo A-I.
3. Příprava apolipoproteinu A-I.3. Preparation of apolipoprotein A-I.
Specifická hmotnost infranatantu získaného druhou ultracentrlfugační flotaci se upraví bromidem draselným na 1.23 kg/1· Následující ultracentrifugačni dělení probíhá při 750 Hz a teplotě sj°C až ÍO^C po dobu 40 až 45 hodin. Po úpravě specifické hmotnosti ee ultracentrifugačni dělení opakuje za stejných podmínek·The specific gravity of the infranatant obtained by the second ultracentrifugation flotation is adjusted to 1.23 kg / l with potassium bromide. The following ultracentrifugation separation is carried out at 750 Hz and at a temperature between 50 ° C and 10 ° C for 40 to 45 hours. After adjusting the specific gravity ee the ultracentrifugation is repeated under the same conditions ·
Supernatant se dialysuje proti destilované vodě β přídavkem sodné soli EOTA v koncentraci 0.02 mol/l po dobuThe supernatant is dialysed against distilled water β by addition of 0.02 mol / l EOTA sodium salt for a period of time
239 044 dvakrát 4 hodiny. Dialysovaný materiál ee lyofllisuje.239,044 twice for 4 hours. The dialyzed material is lyophilized.
Delipidace lyofilisovaného materiálu se provádí ve skleněné centrifugačni kyvetě. K materiálu ee přidá směs chloroformu (2 díly) a etanolu (1 díl) a kyveta se umleti na dobu 30 minut do směsi suchého ledu (CO^ tuhý) s etanolem. Občas se obsah kyvety zamíchá. Pak se kyveta z chladicí směsi vyjme a obsah ee odstředí při 42 Hz. Rozpouštědlo se odleje a extrakce ee opakuje za stejných podmínek. Potom se k materiálu přidá éter, směs se dobře promíchá a odstředí při 42 Hz, Také tato extrakce éterem se ještě jednou opakuje,Delipidation of the lyophilized material is performed in a glass centrifuge tube. To the material was added a mixture of chloroform (2 parts) and ethanol (1 part), and the cuvette was ground for 30 minutes in a mixture of dry ice (CO 2 solid) with ethanol. Occasionally the contents of the cuvette are mixed. Then the cuvette is removed from the coolant and centrifuged at 42 Hz. The solvent is poured off and the extraction is repeated under the same conditions. Ether is then added to the material, mixed well and centrifuged at 42 Hz. This ether extraction is also repeated once more,
Delipidovaný materiál se opatrně vysuší proudem dusíku a rozpustí v roztoku 2 M-kysaliny octová. Rozpouštění lze zlepšit přidáním močoviny. Získaný roztok se přefiltruje přes skleněnou vatu a nanese na kolonu Sephadexu G-100 (90 x 2,5 cm), která je ekvilibrovaná stejným roztokem, Vymýváním roztokem kyseliny octová ( 2 mol/1) ee získají frakce obsahující Apo A-I, Apo A-IX a dalši proteiny. Frakce, které obsahují Apo A-I se spoji, zahusti na membráně Amicon a rechromatografuji za stejných podmínek. Získaná frakce ee dialyzuje proti vodě obsahující sodnou sůl EDTA v koncentraci 0,02 mol/1, při teplotě 4^C a po dobu 24 hodin,The delipidated material was carefully dried with a stream of nitrogen and dissolved in a solution of 2 M acetic acid. Dissolution can be improved by adding urea. The solution obtained is filtered through glass wool and applied to a Sephadex G-100 column (90 x 2.5 cm) which is equilibrated with the same solution. IX and other proteins. The fractions containing Apo A-I combined are concentrated on an Amicon membrane and rechromatographed under the same conditions. The fraction ee obtained is dialyzed against water containing sodium EDTA at a concentration of 0.02 mol / l, at 4 ° C and for 24 hours,
4, Příprava apollpoprotelnu B4, Preparation of the apolls room B
Specifická hmotnost supernatantu, který byl získán druhou ultracentrifugačni flotacl ae upraví bromidem draselným na 1,050 kg/1. Následující ultracentrifugačni dělení probíhá při 750 Hz a teplotě β až 10^°C po dobu 15The specific gravity of the supernatant obtained by the second ultracentrifugation flotation was adjusted to 1.050 kg / l with potassium bromide. The following ultracentrifugation separation is performed at 750 Hz and a temperature of β to 10 ° C for 15 hours
239 044 až 20 hodin. Získaný eupernatant ee dialyauje dvakrát 4 hodiny proti destilované vodě obsahující sodnou eůl EDTA ( 0,02 mol/1).Dialysováný metriál ee lyofilieuje·239,044 to 20 hours. The obtained eupernatant ee dialylated twice for 4 hours against distilled water containing sodium EDTA (0.02 mol / l). The dialysed material ee lyophilized ·
Delipidace lyfilieovanóho materiálu ee provádí stejně jako při izolaci apollpoproteinu A-I.The delipidation of the lyophilized material ee is carried out as in the case of the isolation of apollpoprotein A-I.
Příklad provedeniExecution example
Postup izolace a purifikace apollpoproteinů A-I a B a příprava materiálu k. izolaci je rozdělen do 3 stupňů o 9 pracovních krocích.The procedure for the isolation and purification of the apolloproteins A-I and B and the preparation of the material for isolation is divided into 3 steps of 9 steps.
Postup od zpracováni výchozí suroviny pó krok 1.2. dovoluje současnou přípravu obou antigenů. Také některé další kroky při izolaci antigenů (2.2. a 3.2.) Jsou pro oba antigeny společné, což zjednodušuje celý pracovní postup.The process from processing the starting material to step 1.2. allows simultaneous preparation of both antigens. Also, some other steps for antigen isolation (2.2 and 3.2) are common to both antigens, which simplifies the procedure.
0.0. Výchoz! súrovina0.0. Out! raw material
K izolaci apollpoproteinů A-I a B použijeme odleželé lidské plasmy od zdravých dárců. Výhodné je vycházet z 500 ml plaamy. K plasmě přidáme sodnou sůl EDTA v množství 0,37 g/1 a azid sodný do výsledné koncentrace 1 g/1. Potom plasmu přefiltrujeme přes asbeetocelulosovou vrstvu (Seitz, K5).To isolate apolloproteins A-I and B, we will use remote human plasma from healthy donors. It is preferred to start from 500 ml of plama. Add ED7 sodium salt 0.37 g / l and sodium azide to a final concentration of 1 g / l. Then filter the plasma through an asbeetocellulose layer (Seitz, K5).
1.0. Izolace plasmatických lipoproteinů1.0. Isolation of plasma lipoproteins
1.1. Ultracentrifugačni flotace plasmatických lipoproteinů1.1. Ultracentrifugation flotation of plasma lipoproteins
Specifickou hmotnost výchozí suroviny upravíme pomoci pevného bromidu draselného (KBr) na 1,030 kg/1. Ultracentrifugačni flotaci provádíme na ultracentrifuze C H RII S T Omega II (rotor 9710) při 750 Hz aThe specific weight of the starting material is adjusted to 1.030 kg / l with solid potassium bromide (KBr). Ultracentrifugation flotation is performed on C H RII S T Omega II (rotor 9710) at 750 Hz and
- 6 239 044 a teplotě 5 až loj?C po dobu 18 až 22 hodin. Po skončeni oddělíme supernatant a mezlvretvu od infranatantu Supernatant a mezlvretvu odstraníme·- 6,239,044 and a temperature of 5 to tallow for 18 to 22 hours. After completion, separate supernatant and intermediate layer from infranatant Supernatant and remove intermediate layer ·
1.2. Rozdělení plaematických lipoproteinů podle jejich specifické hmotnosti1.2. Classification of plamatic lipoproteins according to their specific weight
Specifickou hmotnost infranatantu získaného v kroku 1«2« upravíme pomoci pevného bromidu draselného na 1,050 kg/1· Ultracantrifugačni flotaci provádíme na ultracentrifuze Chriet Omega II (rotor 9730) při 750 HZ a teplotě 5 až lo|°C po dobu 18 až 22 hodin· Oddělíme supernant, mezlvretvu a infranatant, Supernatant slouží jako zdroj apollpoproteinu B, infranatant jako zdroj apollpoproteinu A-I a mezivretva ea odstraní.The specific gravity of the infranatant obtained in step 1 «2« is adjusted to 1,050 kg / l with solid potassium bromide. · Ultracantrifugation flotation is performed on an ultracentrifuge Chriet Omega II (rotor 9730) at 750 HZ and temperature 5 to lo | ° C for 18 to 22 hours · Separate supernate, intermediate layer and infranatant, supernatant serves as a source of apollpoprotein B, infranatant as a source of apollpoprotein AI, and removes interstitial ea.
2.0. Izolace a purifikace apollpoproteinu A-I2.0. Isolation and purification of apollpoprotein A-I
2.1. Ultracentrifugační flotace2.1. Ultracentrifugation flotation
Specifickou hmotnost infranatantu získaného v kroku 1.2. upravíme pomoci pevného bromidu draselného na 1,230 kg/1. Ultracentrifugační flotaci provádíme opět na ultracantrifuza Chriet Omega II (rotor 9730) při 750 Hz a teplotě β až ÍC^C po dobu 40 až 45 hodin. U získaného euparnatantu změříme specifickou hmotnost, podle potřeby Ji upravíme pomocí pevného bromidu draselného na 1,230 kg/1 a ultracentrifugační flotaci opa kujeme za stejných podmínek.The specific gravity of the infranatant obtained in step 1.2. adjust with solid potassium bromide to 1.230 kg / l. The ultracentrifugation flotation is performed again on the ultracantrifusion Chriet Omega II (rotor 9730) at 750 Hz and at a temperature of β to IC for 40 to 45 hours. Measure the specific gravity of the obtained euparnatant, adjust it to 1,230 kg / l with solid potassium bromide if necessary and repeat the ultracentrifugation flotation under the same conditions.
2.2. Dialýea a lyofilisace2.2. Dialysis and lyophilization
Supernatant získaný v kroku 2.1. dialyeujame proti etonáeobku destilované vody e přídavkem sodné > 239 044 eoli EDTA v koncentraci 0,02 mol/1 při teplotě 4 až 8^C po dobu 4 hodin. Potom dialysační roztok vyměníme a dialýsu za stejných podmínek opakujeme. Získaný materiál lyofilieujeme.The supernatant obtained in step 2.1. dialysis is carried out against the end of the distilled water by the addition of sodium> 239 044 eol EDTA at a concentration of 0.02 mol / l at 4 to 8 ° C for 4 hours. Then replace the dialysis solution and repeat the dialysis under the same conditions. The material obtained is lyophilized.
2.3. Oellpidace2.3. Oellpidace
Delipidaei lyofilieovaného materiálu z krokuDelipidaei of the lyophilized material of step
2,2. provádíme ve skleněné centrifugačni kyvetě o objemu 100 ml. K materiálu přidáme eměs 2 dílů chlorofor mu a 1 dílu etanolu v množství 50 ml. Kyvetu umístíme na dobu 30 minut do směsi pevného C02 a etanolem. Pravidelně kyvetou mícháme. Pak odstředíme při 42 Hz při laboratorní teplotě po dobu 10 minut, Rozpouětědlo odlijeme a extrakci za stejných podmínek opakujeme. K takto získanému materiálu přidáme 30 ml éteru. Směs dobře promícháme potom odstředíme při 42 Hz a laboratorní teplotě po dobu 10 minut, éter odlijeme a extrak ci opakujeme za stejných podmínek. Získaný materiál do8ušlme slabým proudem dualku.2.2. performed in a 100 ml glass centrifuge tube. Add 2 parts chloroform and 1 part ethanol 50 ml. Place the cuvette for 30 minutes in a mixture of solid C0 2 and ethanol. Stir the cuvette regularly. Centrifuge at 42 Hz at room temperature for 10 minutes, discard the solvent and repeat the extraction under the same conditions. 30 ml of ether are added to the material so obtained. Mix well by centrifugation at 42 Hz and room temperature for 10 minutes, decant the ether and repeat the extraction under the same conditions. Finish the obtained material with a low current dual.
2.4. Chromatografie2.4. Chromatography
Materiál získaný v předchozím kroku (2.3.) podroblma|dělenl na sloupci Sephadexu G-100 o rozměrechThe material obtained in the previous step (2.3) was subdivided on a Sephadex G-100 column of dimensions
2,5 x 90 cm v prostředí 2 M-kyeeliny octově. Před nanesením na sloupec rozpustíme materiál v 8 ml kyseliny octové stejné koncentrace. Probíhá-li rozpouštěni obtížně, přidáme malé množství močoviny, čistoty p.a.2.5 x 90 cm in 2 M-cyeelines with acetic acid. Before application to the column, dissolve the material in 8 ml of acetic acid of the same concentration. If it is difficult to dissolve, add a small amount of urea, p.a.
Po rozpuštěni a před nanesením na sloupec roztok přefiltrujeme přes eklěněnou vatu. Sloupec vymýváme 2 Mrottokem kyseliny octové. Frakce jímáme po 15 minutáchAfter dissolution and before application to the column, filter the solution through a cotton swab. Wash the column with 2 Mrottok acetic acid. Collect fractions after 15 minutes
- 8 239 044 při průtoku 20 ml/h. Jednotlivé frakce proměříme na spektrofotometru při vlnové délce 280 nm na obeah bílkoviny. Frakce odpovídající jednotlivým vrcholům spojíme a po zahuštění na membráně Amlcon podrobíme rechromatograf11 za stejných podmínek. Výsledný materiál dlalysujeme proti stonáeobku objemu destilované vody s přídavkem sodné soli EDTA (0.02 mol/1), v chiadu po dobu 24 hodin. Potom stanovíme v získaném materiálu imunochemicky obeah apolipoprotelnu A-I. Potom materiál lyofilieujeme·- 8 239 044 at a flow rate of 20 ml / h. The individual fractions are measured on a spectrophotometer at 280 nm for obeah proteins. The fractions corresponding to each peak are pooled and after concentration on an Amlcon membrane, rechromatographed under the same conditions. The resulting material was flushed against the stem of the volume of distilled water with the addition of sodium EDTA (0.02 mol / l) in ice for 24 hours. Then we determine in the obtained material immunochemically the obeah apolipoprotein A-I. Then lyophilize the material ·
3.0. Izolace a purifikace apolipoprotelnu B3.0. Isolation and purification of apolipoprotein B
3.1. UltracentrifugaČni flotace3.1. Ultracentrifugation flotation
Specifickou hmotlnoet eupernatantu získaného v kroku 1.2. znovu změříme , podle potřeby upravíme pomocí pevného bromidu draselného na 1,050 kg/1 a opakujeme ultracentrlfugečni flotaci za podmínek uvedených ve stejném kroku (1.2,).The specific weight of the eupernatant obtained in step 1.2. read again, adjust as necessary with solid potassium bromide to 1,050 kg / l and repeat ultracentrifuge flotation under the conditions given in the same step (1.2,).
3.2. Oialýsa a lyofilisace3.2. Oialysis and lyophilization
Supernatant získaný ultracentrlfugečni flotaci v předchozím kroku (3.1.) dlalysujeme proti etonáeobku objemu destilované vody s přidavekem sodené soli EDTA v koncentraci 0,02 mol/1 při teplotě po dobu 4 hodin. Pak dialýsu opakujeme za stejných podmínek.The supernatant obtained by ultracentrifugation flotation in the previous step (3.1) was plotted against the volume of distilled water with the addition of sodium EDTA at a concentration of 0.02 mol / l at 4 hours. Then we repeat the dialysis under the same conditions.
V získaném materiálu stanovíme obsah Apo B imunochs_ micky a potom materiál lyofilieujeme.In the obtained material, the content of Apo B is determined by immunochemistry and then lyophilized.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS837441A CS239044B1 (en) | 1983-10-11 | 1983-10-11 | Isolation and purification of apolipoprotein A-I and apolipoprotein B |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS837441A CS239044B1 (en) | 1983-10-11 | 1983-10-11 | Isolation and purification of apolipoprotein A-I and apolipoprotein B |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS744183A1 CS744183A1 (en) | 1985-05-15 |
| CS239044B1 true CS239044B1 (en) | 1985-12-16 |
Family
ID=5423550
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS837441A CS239044B1 (en) | 1983-10-11 | 1983-10-11 | Isolation and purification of apolipoprotein A-I and apolipoprotein B |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS239044B1 (en) |
-
1983
- 1983-10-11 CS CS837441A patent/CS239044B1/en unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS744183A1 (en) | 1985-05-15 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Glangeaud et al. | Very low density lipoprotein: dissociation of apolipoprotein C during lipoprotein lipase induced lipolysis | |
| Van Blitterswijk et al. | Differences in lipid fluidity among isolated plasma membranes of normal and leukemic lymphocytes and membranes exfoliated from their cell surface | |
| JPS6361318B2 (en) | ||
| Papahadjopoulos et al. | Interaction of a purified hydrophobic protein from myelin with phospholipid membranes: Studies on ultrastructure, phase transitions and permeability | |
| CN109251886A (en) | A kind of kit extracting adipose tissue-derived excretion body and its extracting method and application | |
| Ghiselli et al. | Apolipoprotein AI isoforms in human lymph: effect of fat absorption | |
| Curtain | The nature of the protein in the hyaluronic complex of bovine synovial fluid | |
| Meissner | [22] Isolation of sarcoplasmic reticulum from skeletal muscle | |
| Ritsch et al. | Polyclonal antibody-based immunoradiometric assay for quantification of cholesteryl ester transfer protein. | |
| US4368148A (en) | Protein PP9, process for its enrichment and its isolation and its use | |
| Mussoni et al. | Atherogenic lipoproteins and release of plasminogen activator inhibitor-1 (PAI-1) by endothelial cells | |
| Heideman et al. | Lipoproteins containing apolipoprotein AI extracted from human aortas | |
| CN110174456A (en) | A kind of method and its application measuring Pulmonary surfactant protein | |
| CS239044B1 (en) | Isolation and purification of apolipoprotein A-I and apolipoprotein B | |
| Gotto et al. | Human serum beta-lipoprotein: preparation and properties of a delipidated, soluble derivative | |
| Kleinveld et al. | Oxidation of lipoprotein (a) and low density lipoprotein containing density gradient ultracentrifugation fractions | |
| Dickie et al. | Amino acid incorporation into protein of a surface-active lung fraction. | |
| Potter | [30] α-Bungarotoxin (and similar α-neurotoxins) and nicotinic acetylcholine receptors | |
| Haunerland et al. | Purification of very high density lipoproteins by differential density gradient ultracentrifugation | |
| McCormick et al. | Effect of alkali cations on freeze-thaw-dependent reconstitution of amino acid transport from Ehrlich ascites cell plasma membrane. | |
| CA1222693A (en) | Membrane-associated proteins (mp.sub.2), a process for obtaining them, and their use | |
| JPH11506827A (en) | Method for isolating lipoprotein (A) in consideration of subsequent determination of mass and cholesterol content | |
| US20130231461A1 (en) | Method for the isolation of high density lipoprotein | |
| Mouriz et al. | Purification of human 19S thyroglobulin by gel filtration | |
| Grinstead et al. | Heterogeneity of lipoprotein Lp (a) and apolipoprotein (a). |