CS226526B1 - Způsob stanovení hydrazinu ve fenetidinu a fenacetinu - Google Patents

Způsob stanovení hydrazinu ve fenetidinu a fenacetinu Download PDF

Info

Publication number
CS226526B1
CS226526B1 CS230681A CS230681A CS226526B1 CS 226526 B1 CS226526 B1 CS 226526B1 CS 230681 A CS230681 A CS 230681A CS 230681 A CS230681 A CS 230681A CS 226526 B1 CS226526 B1 CS 226526B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
phenacetin
hydrazine
solution
phenetidin
hydrazin
Prior art date
Application number
CS230681A
Other languages
English (en)
Inventor
Jaroslav Ing Csc Franc
Marie Hajkova
Original Assignee
Jaroslav Ing Csc Franc
Marie Hajkova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jaroslav Ing Csc Franc, Marie Hajkova filed Critical Jaroslav Ing Csc Franc
Priority to CS230681A priority Critical patent/CS226526B1/cs
Publication of CS226526B1 publication Critical patent/CS226526B1/cs

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analyzing Non-Biological Materials By The Use Of Chemical Means (AREA)

Description

Vynález ©e týká stanovení hydrazinu ve fenetidinu a fenacetinu.
Hydrazin ve formě hydrazlnhydrátu se přidává k fenetidinu jako stabilizátor a je přirozené, že málá jeho část ;se dostává do fenacetinu.
Vzhledem! ík tomu, že fenacetin je významnou složkou řady léků, je zapotřebí znát přesný obsah hydrazinu jak ve fenetidinu, tak ve fenacetinu. Jeho množství se však pohybuje ve velmi malých koncentracích, a to od desetin procenta do desetitisícin i měrně. Pro vypracování vhodné analytické metody, v literatuře není žádná uvedena, bylo použito· j,ak papírové chromatografie, talk chromatografie na tenké vrstvě či elektroforézy na papíře, avšak bezúspěšně. Příčinou byl malý obsah hydrazlnu, nedostatečná citlivost detekce, rozmývání skvrn a jiné příčiny s tím spojené.
Nyní bylo zjištěno, že lze stanovit hydrazin ve fenetidinu a fenacetinu způsobem podle vynálezu, který spočívá v tom, že se hydrazin oddělí od ostatních složek elektroforézou na tenké vrstvě silikagelu, zviditelní postřikem, výhodně Ehrlichovým činidlem, a stanoví densitometnicky, popřípadě se přímo koloriinetruje po vyvolání zabarvení s p-dimetylanninobenzaldehydem v roztoku dimetylsulfoxidu.
Níže uvedené příklady ilustrují stanovení způsobu podle vynálezu.
Příklad 1
Pro stanovení hydrazinu ve fenetidinu se na desku z umělé hmoty pokrytou vrstvou silikagelu o rozměru 15X20 cm od kraje po delší straně odměří 5 cm, kolmou čárou se odměří start, na který se ve vzdálenostech 3 cm nanese 2 X á 5 roztoku vzorku a 2 X 3 ,μΐ a 5 ,tíl standardního· roztoku hydrazinhydrátu Gorhachovou pipetou nebo Hamiltonovou injekční stříkačkou. Potom se deska položí do středu elektroforetické komory a na kraj levé strany se přitiskne vlhký chromatografický papír o stejné šířce jako deska, tj. 15 cm, který je svým druhým koncem ponořen do elektrolytu. Elektrolyt — kyselina octová o koncentraci c (CH3COOHj = 1 mol/1 postupuje přes chromatografický papír po desce, až čelo dostoupí asi 1 cm od startu. Pak se stejným způsobem upraví pravá kratší strana. Spojení elektrolytu se má uskutečnit ma startovní čáře. Po úplném spojení elektrolytu z obou stran se na pravou ©tramu, kratší od startu, zapíná (+ jelektrodu, :na. levou ( —jelektrodu. Nechá se procházet stejnosměrný proud o napětí , 300 V. Po 80 min. se proud vypne,,
226326 deska vyjme a usuší na vzduchu. Pak se postříká Ehrllehoivým činidlem, tj. 1% roztokem p-dimetylaminobenzaldehydu v kyselině chlorovodíkové o koncentraci c (HC1) = 2 mol/1. Zabarvení skvrn se proměří na densitometru. Byl použit ERI-10 s filtrem o maximu propustnosti 480 nm. Roztoky pro nanášení:
Vzorek:
3,000 g se vpraví do 10 ml odměrné nádoby, rozpustí v etanolu a doplní ke značce. Z tohoto roztoku se pipetuje 5 μΐ, popřípadě 10 ,ul.
Standard:
0,3500 g hydrazinhydrátu se rozpustí v ml odměrné baňce ve vodě, z toho 5 mililitrů se odpipetuje do 100 ml odměrné baňky a doplní destilovanou vodou. Z totohoto roztoku se na start elektroferogramu pipetuje 3 μΐ a 5 μΐ (tj. 2,1 pg a 3,5 ^g). Spodní hranice citlivosti při těchto koncentracích je 0,01 % ihydrazinhydrátu.
Intenzita zabervení skvrn náležejících vzorku se porovnává s intenzitou skvrn standardů. Barvě skvrn je žlutá. Chyba staH hovení při obsahu kolem 0,1 % ělní +8 %. Příklad 2
Pro stanovení hydrazinu ve fenacetinu sie pracuje obdobně jako v příkladu 1. Vzhledem ík tomu, že obsah hydrazinu ve fenacetinu je o dva až tři řády nižší, je třeba výše uvedenou metodu jvšak vhodně upravit.
Změna je v tom, že se 10 g vzorku třepe s 10 ml dimetylsulfoxidu po dobu 8 hodin a pak se nechá ještě v tomto roztoku stát přes noc. Na start elektroferogramu se nanáší z tohoto roztoku 10 μΐ.
Citlivost takto upravené metody je 0,0001 procenta.
Příklad 3
Vzhledem k malé koncentraci hydrazinu byla vypracována jednodušší kolorimetrická metoda ma jeho stanovení ve fenacetinu. Metoda je založena na reakci některých aminů s Ehrlichovým činidlem. Vzhledem k tomu, že fenaoetin v dimetylsulfoxidu dává rovněž zabarvení, i když velmi slabé, je třeba veškeré standardy připravovat z čistého fenacetinu a hydrazinhydrátu. V případě, že není k dispozici fenaoetin bez hydrazlnu, použije se metody standardního přídavku.
Příprava roztoku hydrazinhydrátu:
Naváží se 0,66 g 70'·% hydrazinhydrátu, tj. 0,46 g 100%, doi 50 ml odměrné baňky a doplní se po značku dlmetylsulfoxidem. Z tohoto roztoku se pipetuje 1 ml do 50 ml odměrné baňky a doplní se ke značce dimetylsulfoxidem. Z toho se pipetuje 10 ml do 50 ml baňky a opět se doplní. Z tohoto konečného roztoku se pipetuje pro standardní stupnici.
Standardní stupnice:
0,5 g fenacetinu
0,5 g fenacetinu + + 0,25 ml (9,2 ,ug] hydrazinu
0,5 g fenacetinu + + 0,50 ml (18,4 ^g] hydrazinu
0,5 g fenacetinu + + 0,75 ml (27,6 /zg) hydrazinu.
Toto množství se vpraví do 10 ml odměrných baněk, přidá se 8 ml dimetylsulfoxidu a 0,5 ml Ehrlichova činidla (viz výše] a doplní dlmetylsulfoxidem po značku a důkladně ise protřepe. Stejným způsobem se připraví i slepý pokus.
Po 2,5 hodinách po přidání Ehrlichova činidla se kolorimetruje zabarvení.

Claims (1)

  1. PREDMET
    Způsob stanovení hydrazinu ve fenetidinu a fenacetinu, vyznačený tím, že se hydraziin oddělí od ostatních složek elektroforézou na tenké vrstvě silikagelu, zviditelní se postřikem, například Ehrlichovým činidlem,
    VYNÁLEZU a stanoví densltometricky, nebo se přímo kolorimertuje po vyvolání zabarvení s p-dimetylamlnohenzaldehydem v roztoku dimetylsulfoxidu.
CS230681A 1981-03-30 1981-03-30 Způsob stanovení hydrazinu ve fenetidinu a fenacetinu CS226526B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS230681A CS226526B1 (cs) 1981-03-30 1981-03-30 Způsob stanovení hydrazinu ve fenetidinu a fenacetinu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS230681A CS226526B1 (cs) 1981-03-30 1981-03-30 Způsob stanovení hydrazinu ve fenetidinu a fenacetinu

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS226526B1 true CS226526B1 (cs) 1984-04-16

Family

ID=5359797

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS230681A CS226526B1 (cs) 1981-03-30 1981-03-30 Způsob stanovení hydrazinu ve fenetidinu a fenacetinu

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS226526B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Bennett [36] Paper chromatography and electrophoresis; special procedure for peptide maps
McKnight A colorimetric method for the determination of submicrogram quantities of protein
Mrestani et al. Determination of dissociation constants of cephalosporins by capillary zone electrophoresis
Olefirowicz et al. Dopamine concentration in the cytoplasmic compartment of single neurons determined by capillary electrophoresis
Rodkey Direct spectrophotometric determination of albumin in human serum
Easley et al. Application of specialized techniques for specific staining of peptide maps on various media
US20100089774A1 (en) Non-enzymatic electrochemical method for simultaneous determination of total hemoglobin and glycated hemoglobin
ATE311591T1 (de) System zur elektrochemischen quantitativen analyse von analyten in einer festphase
DE3786631D1 (de) Mehrfacher eichungsstandard fuer blutanalyse.
Xu Capillary electrophoresis
DE69736336D1 (de) Verfahren zur messung von blutersatzstoffen
Mori et al. Capillary ion electrophoresis of inorganic anions and uric acid in human saliva using a polyvinyl alcohol coated capillary column and hexamethonium chloride as additive of background electrolyte
Culková et al. Indirect voltammetric sensing platforms for fluoride detection on boron-doped diamond electrode mediated via [FeF6] 3− and [CeF6] 2− complexes formation
DK149830C (da) Fremgangsmaade ved bestemmelse af koncentrationen af en ion i en praeve af blod eller blodvaeske
CS226526B1 (cs) Způsob stanovení hydrazinu ve fenetidinu a fenacetinu
Liu et al. Determination of phosphoamino acids derivatized with 5-(4, 6-dichloro-s-triazin-2-ylamino) fluorescein by micellar electrokinetic chromatography
Ševčík et al. A rapid and simple screening method for detection of orotic aciduria by capillary zone electrophoresis
Athiroh et al. Carbon paste electrode modified imprinted zeolite as a selective sensor for creatine analysis by potentiometry
Leech et al. Radiochemical assays for adenylate kinase and AMP deaminase using polyethyleneimine-cellulose thin layers
Roy et al. Second Dissociation Constants of 4-[N-morpholino] butanesulfonic Acid and N-[2-hydroxyethyl] piperazine-N′-4-butanesulfonic Acid from 5 to 55° C
Westwood et al. Group-specific component: A review of the isoelectric focusing methods and auxiliary methods available for the separation of its phenotypes
Stephens Equimolar heterodimers in microtubules.
Adam et al. Determination of adenosine deaminase activity in human erythrocytes by on‐column capillary isotachophoresis—capillary zone electrophoresis in the presence of electroosmotic flow
Abraham et al. A sensitive assay for allantoin
Gustafsson Urinary albumin determination by the immediate bromcresol green method