CS224511B1 - Způsob odstranění desoxyribonukleové kyseliny ze subvirové vakcřny proti viru herpes simplex - Google Patents

Způsob odstranění desoxyribonukleové kyseliny ze subvirové vakcřny proti viru herpes simplex Download PDF

Info

Publication number
CS224511B1
CS224511B1 CS895081A CS895081A CS224511B1 CS 224511 B1 CS224511 B1 CS 224511B1 CS 895081 A CS895081 A CS 895081A CS 895081 A CS895081 A CS 895081A CS 224511 B1 CS224511 B1 CS 224511B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
herpes simplex
subvirus
dna
vaccine against
lectin
Prior art date
Application number
CS895081A
Other languages
English (en)
Inventor
Luda Rndr Kutinova
Ivan Rndr Csc Hirsch
Vladimir Mudr Drsc Vonka
Original Assignee
Luda Rndr Kutinova
Ivan Rndr Csc Hirsch
Vladimir Mudr Drsc Vonka
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Luda Rndr Kutinova, Ivan Rndr Csc Hirsch, Vladimir Mudr Drsc Vonka filed Critical Luda Rndr Kutinova
Priority to CS895081A priority Critical patent/CS224511B1/cs
Publication of CS224511B1 publication Critical patent/CS224511B1/cs

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

Vynález se týká přípravy subvirové vakcíny proti viru herpes simplex. ŘeSí odstranění desoxyribonukleové kyseliny (DNK) z antigenních směsí připravených z buněk infikovaných virem, herpes simplex (HSV).
Vzhledem k tomu, že jak HSV, tak sama virová DNK jsou schopny vyvolávat nádorovou transformaci buněk, je nepřítomnost desoxyribonukleové kyseliny v preparátu jedním ze základních požadavků na subvirovou vakcínu proti viru herpes simplex. Pro odstraňování DNK z vyvíjených HSV subvirových vakcím se v cizině prozatím používá ultracentrifugace v gradientech CsCl nebo eacharózy v kombinaci s opracováním preparátů enzymem desoxyribonukleázou (DNázou) a formaldehydem (Cappel, 1976, Arch. Virol. 52, 29-35; Cappel a spol. 1978, Dev. Biol. Standard. 43, 381-385; Cappel a spol., 1980, Arch. Virol 65, 12-23; Conard a spol. 1980, Internát. Confer. Humen Herpesviruses, Atlanta, USA; Kitces a spol., 1977, Infect. Immun.
16, 955-960; Lehman a spol., 1980, Internát. Confer. Human Herpesviruses, Atlanta, USA; Salerno a spol., 1980, Internát. Confer. Human Herpesviruses, Atlanta, USA; Skinner a spol., Í978, Med. Microbiol. Imunol. 166, 119-132; Skinner a spol., 1980, Med. Microbiol. Immunol. 169, 39-51; Thomson a spol., 1980, Internát. Confer. Human Herpesviruses, Atlanta, USA).
Ultracentrifugace v hustotních gradientech je nevýhodná kvůli nutnosti dlouhodobé centrifugace a velkých ztrát v důsledku nehomogenity preparátů a inaktivece antigenů centrifúgačním médiem. Opracování DNázou u subvirových preparátů obsahujících větěí množství DNE v naěich pokusech nikdy nevedlo k úplnému odstranění frakce DNK nerozpustné v kyselinách.
Vzhledem k tomu, že pro přípravu vakcíny by bylo nutno používat DNázy čiStěné a tedy dražěl, vedlo by to k podstatnému zvýěení výrobních nákladů. Použití samotného formaldehydú bez désoxyribonukleázy je sporné, nebol kontrola likvidace biologické aktivity DNK pomocí formaldehydú je dlouhodobá a značně nestandardní.
Výše uvedené nedostatky jsou odstraněny užitím kombinace rychlostní centrifugace a afi nitní chromatografie. Při rychlostní ultracentrifugeci sedimentuje většina DŇK do peletu, zatímco antigén zůstává v supernatantu. DNK zbývající v supernatantu je z preparátu odstraněna při afinitní chromatografii na sloupci gelu tvořeného kuličkami GNBr-ektivovené agarozy s navázaným lektinem (velikost kuliěek 60 až 140/im, agarézová koncentrace 4%, koncentrace vázaného lektinu 2 až 8 mg/ml gelu). V několika pracích bylo využito vazebnosti glykoproteinovýeh antigenů HSV na lektin pro izolaci glykoproteinů (Lehman a spol., Salerno a spol., Thomson a spol., - 1980, Internát. Conf. Humen Herpesviruses, Atlanta, USA;
Zwernik a spol., 1981, Infect, Immun. 31, 267 až 275). Zjistili jsme, že za stejných podmínek DNK s lektinem ani s egerózou nereaguje a kolonou volně protéká.
Použití rychlostní centrifugace je výhodnější než ultracentrifugace v hustotních gradientech z důvodů Sašových a ekonomických (meněí opotřebování centrifug, nižší spotřeby energie, nižší ztráty antigenů). Vzhledem k tomu, že lektin vázaný ne agBrózu je používán při další izolaci protektivních antigenů (které jsou glykoproteinové povahy), lze odstranění DNK docílit pouhým důkladným proplachováním sloupce gelu s vázanými glykoproteiny acetátovým pufrem bez použití dalších chemikálií nebo procedur. Náplň kolony je možno mnohonásobně regenerovat.
Popis konkrétního provedení
Extrakty připravené z buněk infikovaných HSV jsou zbaveny buněčných jader nlzkoobrátko vou centrifUgací a pek centrifugovány při 60 až 150 000 x g při 0 až 10 °C 1 až 2 hod.
(s výhodou 1 hod. při 100 0.00 x g a 4 °C). Supernetanty se opatrně odeberou, přičemž se nad sedimentem nechává 1/12 objemu původního materiálu, aby se vyloučila možnost kontaminace supernatantu sedimentovanou DNK, Antigenni směs, která po tomto zpracování obsahuje 0,2 až 1 % DNK, se 1/2 až 5 hodin inkubuje při pokojové teplotě nebo při 0 až 10 °C s agarózou s vázaným lektinem (buň na koloně nebo Bádkovš).
Po skončení., inkubace se z gelu připraví kolona, která se při uvedených teplotách důkladně propláchne acetátovým pufrem pH 5,5 až 6,5 (s výhodou pH 6,0) obsahujícím 0,2 % Triton X 100. Objem vyplachovacího pufru závisí na množství DNK zbylé po ultrecentrifugaci. Běžně se‘používá 5 až 20 ml ecetátováho pufru na 0,1 ml gelu. Glykoproteinová směs, která je v další fázi uvolňována z lektinu pomocí α -metyl manosidu nebo jiného cukru, je prosta DNK. Účinnost procedury se monitoruje na paralelním vzorku, ve kterém byla DNK HSV označena ^H-thymidinem.
Uvedený postup je použitelný obecně pro přípravu jakékoliv subvirové vakcíny (připravované buň rozštípáním viru nebo infikovaných buněk), která má být proste virové DNK a u které jsou protektivní antigeny glykoproteinové povahy.

Claims (1)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    Způsob odstraňování desoxyribonukleové kyseliny ze subvirové vakcíny proti viru herpes simplex vyznačený tím, že se antigenni extrakty 1 až 2 hodiny, s výhodou 1 hod. ultracentri fugují při 60 až 150 000 x g, s výhodou 100 000 x g a teplotě 0 °C až 10 °C e supernetanty zbavené centrifugací většiny DNK se inkubují s gelem tvořeným kuličkami CNBr-aktivované agarázy s navázaným lektinem při velikosti kuliček 60 až 140^um, agarózové koncentraci 4 % hm. a koncentraci vázaného lektinu 2 až 8 mg/ml gelu, přičemž se DNK z kolonky odstraní acetátovým pufrem pH 5,5 až 6,5.
CS895081A 1981-12-03 1981-12-03 Způsob odstranění desoxyribonukleové kyseliny ze subvirové vakcřny proti viru herpes simplex CS224511B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS895081A CS224511B1 (cs) 1981-12-03 1981-12-03 Způsob odstranění desoxyribonukleové kyseliny ze subvirové vakcřny proti viru herpes simplex

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS895081A CS224511B1 (cs) 1981-12-03 1981-12-03 Způsob odstranění desoxyribonukleové kyseliny ze subvirové vakcřny proti viru herpes simplex

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS224511B1 true CS224511B1 (cs) 1984-01-16

Family

ID=5440771

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS895081A CS224511B1 (cs) 1981-12-03 1981-12-03 Způsob odstranění desoxyribonukleové kyseliny ze subvirové vakcřny proti viru herpes simplex

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS224511B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Nagai et al. Studies on the assembly of the envelope of Newcastle disease virus
Siegel et al. The isolation of defective tobacco mosaic virus strains
Strauss Jr et al. Identification of the membrane protein and" core" protein of Sindbis virus.
Morgan et al. A hemolysin associated with the mumps virus
Pons The inhibition of influenza virus RNA synthesis by actinomycin D and cycloheximide
Bachmayer Selective solubilization of hemagglutinin and neuraminidase from influenza viruses
Burge et al. Functional defects of temperature-sensitive mutants of Sindbis virus
Radziwill et al. The duck hepatitis B virus DNA polymerase is tightly associated with the viral core structure and unable to switch to an exogenous template
Winocour On the apparent homology between DNA from polyoma virus and normal mouse synthetic RNA
Waterson et al. The components of measles virus and their relation to rinderpest and distemper
Planterose et al. The purification of vaccinia virus from cell cultures
Skehel et al. Ribonucleic acid synthesis in chick embryo cells infected with fowl-plague virus
Bader et al. Characteristics of cores of avian leuko-sarcoma viruses
Toneguzzo et al. Characterization and translation of methylated and unmethylated vesicular stomatitis virus mRNA synthesized in vitro by ribonucleoprotein particles from vesicular stomatitis virus-infected L cells
THOWENEL et al. Evidence for polar reconstitution of TMV
Jensik et al. Polypeptides of mumps virus
Norrby et al. Separation of measles virus components by equilibrium centrifugation in CsCl gradients: II. Studies on the large and the small hemagglutinin
Joss et al. Ribonucleic acid and protein synthesis in chick embryo cells infected with fowl plague virus
JP3082908B2 (ja) リボ核酸の単離方法
US3975344A (en) Interferon purification
Schluederberg et al. Comparative molecular weight estimates of measles and subacute sclerosing panencephalitis virus structural polypeptides by simultaneous electrophoresis in acrylamide gel slabs
Nilsson-Tillgren Studies on the biosynthesis of TMV: III. Isolation and characterization of the replicative form and the replicative intermediate RNA
Anderson et al. Effect of actinomycin D on measles virus growth and interferon production
CS224511B1 (cs) Způsob odstranění desoxyribonukleové kyseliny ze subvirové vakcřny proti viru herpes simplex
Acheson et al. Ribonuclease sensitivity of Semliki Forest virus nucleocapsids