CS224010B1 - Preparation method of diagnostic antigen of cytomegalitic virus for reaztion of complement linkage - Google Patents

Preparation method of diagnostic antigen of cytomegalitic virus for reaztion of complement linkage Download PDF

Info

Publication number
CS224010B1
CS224010B1 CS298681A CS298681A CS224010B1 CS 224010 B1 CS224010 B1 CS 224010B1 CS 298681 A CS298681 A CS 298681A CS 298681 A CS298681 A CS 298681A CS 224010 B1 CS224010 B1 CS 224010B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
antigen
virus
complement
sediment
suspension
Prior art date
Application number
CS298681A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Inventor
Augustin Hrbka
Original Assignee
Augustin Hrbka
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Augustin Hrbka filed Critical Augustin Hrbka
Priority to CS298681A priority Critical patent/CS224010B1/cs
Publication of CS224010B1 publication Critical patent/CS224010B1/cs

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

ČESKOSLOVENSKÁ SOCIALISTICKÁ REPUBLIKA (19) POPIS VYNÁLEZU K AUTORSKÉMU OSVEDČENIU 224010 (11) (Bl) (51) Int. Cl.1 * 3 (22) Přihlášené 21 04 81(21) (PV 2986-81) G 01 N 33/48 (40) Zverejnené 25 02 83 OftAO PRO VYNÁLEZY A OBJEVY (45) Vydané 15 04 86 178)
Autor vynálezu HRBKA AUGUSTIN MUDr. CSc., PREŠOV (54) Sposob přípravy diagnostického antigénu z cytomegalického virusu prereakciu vazby komplementu 1
Vynález rieši sposob přípravy diagnostic-kého antigénu z cytomegalického virusu prereakciu vazby komplementu, ktorým sa mádiagnostikovat onemocnenie cytomegalickýmvírusom.
Na přípravu antigénu pre reakciu vazbykomplementu bolo popísaných niekotko me-téd. Niektorí autoři používali celú bunkovúkultúru a snažili sa uvolnit antigén z bunieksonifikáciou, alebo zmrazením a rozmraže-ním kultúry. Takýto antigén má však malúkapacitu a bývá antikomplementárny, pre-tože na pomnoženie virusu je třeba 7 až 11dní a za tento čas narastie v bunkovej kul-tuře antikomplementarita. Iní autoři koncen-trovali antigén po rozbití buniek ultracen-trifúgou. Niektorí autoři nebrali v úvahu ex-tracelulárny antigén a koncentrovali len an-tigén intracelulárny tak, že zliali médium zbunkovej kultúry, buňky zoškriabali zo sklaalebo uvolnili zmrazením a rozmražením kul-túry a čisté buňky rozbili zmrazovaním arozmrazováním alebo sonifikáciou. (BENY-ESH— MELNIGK, M. VONKA, V., PROBST-MEYER, F., WIMBERLY, I.,: Human Cytome-galovirus: Proporties of the Complement —— Fixing Antigén. J. Imunol. 96, 1966, s.261 — 267. CARLSTROM, G.,: Virologic studies on cyto- 2 megalic inclusion disease, Acta Paediat.Scand. 54, 1965, s. 17—23. HANSHAW, J. B.,: Congenital cytomegalovirusinfection: A fiftean year perspective, J. In-fect. Dis. 123, 1971, s. 555—561. MEDARIS, D. N., Jr.: Observations Concer-ning Human Cytomegalovirus Infection andDisease Bull. Johns Hopkins, Hosp. 114,1964, s. 181 — 211. STERN, H., AND ELEK, S. D.,: The incidenceof infection with cytomegalovirus in a nor-mál population: A sérologie study in grea-ter London, J. Hyg. 63, 1965, s. 79—87],
Buňkové antigény majú slabú stránku vnespecifických reakciách. Vyššie uvedenénedostatky sú odstránené postupom přípra-vy podl'a vynálezu, ktorého podstatou je, žek suspenzii cytomegalického virusu po roz-bití buniek sa přidá alkohol. Po zhluknutívirusu respektive virusového antigénu sus-penzia sa scentrifuguje a sediment resus-penduje. Resuspendovaný sediment předsta-vuje antigén. Tým sa antigén zbaví antikom-plementárnej zložky, využije sa intracelulár-ny i extracelulárny antigén a vyhne sa příliškoncentrovanému buňkovému materiálu, pre-tože tento robí nespecifické reakcie. Tátometoda je velmi rentabilná z hfadiska pro-dukcie, pretože pri jej použití sa získá z ví- 224010

Claims (1)

  1. 224010 rusovej suspenzie všetok antigén pomocouvelkokapacitných l'ahko dostupných centri-fúg. Takto sa m.óže rýchle připravit relativ-né velké množstvo hodnotného antigénu.Koncentráciu antigénu je možné regulovatriedením sedimentu. Příklad prevedenia Virusová suspenzia z buňkových kultúr sa ozvučí ultrazvukom za účelom uvolnenia vi-rusu z buniek. Potom sa k nej přidá alko-hol v množstve od 10 do 80 °/o. Táto zmes sanechá stát pokial' sa antigénne částice ne-zhluknú a scentrifugnje sa. Supernatant saodstráni a sediment sa suspenduje v množ-stve podlá potřeby, aby sa dostala žiadanákoncentrácia antigénu. PREDMET Sposob přípravy (jiagnostického antigénuz cytomegalického virusu pre reakciu vazbykomplementu vyznačujúci sa tým, že k víru-sovej suspenzii sa přidá alkohol v množstve vynalezu 10 až 80 %, po zhluknutí antigénu sa sus-penzia scentrifugnje a získá sa resuspendo-vaný sediment diagnostického antigénu.
CS298681A 1981-04-21 1981-04-21 Preparation method of diagnostic antigen of cytomegalitic virus for reaztion of complement linkage CS224010B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS298681A CS224010B1 (en) 1981-04-21 1981-04-21 Preparation method of diagnostic antigen of cytomegalitic virus for reaztion of complement linkage

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS298681A CS224010B1 (en) 1981-04-21 1981-04-21 Preparation method of diagnostic antigen of cytomegalitic virus for reaztion of complement linkage

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS224010B1 true CS224010B1 (en) 1983-12-30

Family

ID=5368632

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS298681A CS224010B1 (en) 1981-04-21 1981-04-21 Preparation method of diagnostic antigen of cytomegalitic virus for reaztion of complement linkage

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS224010B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sokol et al. Purification of rabies virus grown in tissue culture
Scherer et al. Studies on the propagation in vitro of poliomyelitis viruses: IV. Viral multiplication in a stable strain of human malignant epithelial cells (strain HeLa) derived from an epidermoid carcinoma of the cervix
Malmquist et al. Production of equine infectious anemia antigen in a persistently infected cell line
Fernandez-Moran et al. A macromolecular repeating unit of mitochondrial structure and function: Correlated electron microscopic and biochemical studies of isolated mitochondria and submitochondrial particles of beef heart muscle
Strand et al. Type-C RNA virus gene expression in human tissue
Heine et al. Entry of vesicular stomatitis virus into L cells
Simpson et al. Isolation and partial characterization of the tegumental outer membrane of adult Schistosoma mansoni
Schaffer et al. Purification and properties of poliovirus
Kane Direct isolation of the hyaline layer protein released from the cortical granules of the sea urchin egg at fertilization
Philipson et al. Structure and Function of Virion Proteins of Adenoviruses¹
Tada et al. Preparation and properties of plasma membranes from guinea pig hearts
Ahmed et al. Occurrence of Mason-Pfizer monkey virus in healthy rhesus monkeys
Kartner et al. Isolation of plasma membranes from human skin fibroblasts
CS224010B1 (en) Preparation method of diagnostic antigen of cytomegalitic virus for reaztion of complement linkage
CA2274793A1 (en) Selective lysis of cells
Crawford Purification of polyoma virus
Anderson Studies on isolated cell components: VI. The effects of nucleases and proteases on rat liver nuclei
Anderson Virus isolation in the zonal ultracentrifuge
Graves et al. Immunochemical studies of foot-and-mouth disease: II. Characterization of RNA-free viruslike particles
Vacquier et al. The effect of soluble egg jelly on the fertilizability of acid‐dejellied sea urchin eggs
Knudsen et al. In vitro immune serum-mediated protection of pig monocytes against African swine fever virus
Hjalmarsson et al. Identification of IPNV-specified components released from productively infected RTG-2 cells following massive cytopathic effect
Emanuel et al. A rapid method for preparing polymerized deoxyribonucleic acid from tissues, based on separation of nuclei
A. Mortara et al. Analysis of pseudopodial structure and assembly with viral projections
Maier et al. Passage of a Marine Brown Algal Dna Virus from Ectocarpus Fasciculatus (ectocarpales, Phaeophyceae) to Myriotrichia Clavaeformis (dictyosiphonales, Phaeophyceae): Infection Symptoms and Recovery 1