CS218624B1 - Sposob přípravy P-l,4-xylooligosachari<lov a P-l,4-(U«14C)xylooligosacha· ridov - Google Patents

Sposob přípravy P-l,4-xylooligosachari<lov a P-l,4-(U«14C)xylooligosacha· ridov Download PDF

Info

Publication number
CS218624B1
CS218624B1 CS437980A CS437980A CS218624B1 CS 218624 B1 CS218624 B1 CS 218624B1 CS 437980 A CS437980 A CS 437980A CS 437980 A CS437980 A CS 437980A CS 218624 B1 CS218624 B1 CS 218624B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
xylooligosaccharides
aryl
xylosides
xylanase
enzyme
Prior art date
Application number
CS437980A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Inventor
Zdenek Kratky
Peter Biely
Maria Vrsanska
Original Assignee
Zdenek Kratky
Peter Biely
Maria Vrsanska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Zdenek Kratky, Peter Biely, Maria Vrsanska filed Critical Zdenek Kratky
Priority to CS437980A priority Critical patent/CS218624B1/cs
Publication of CS218624B1 publication Critical patent/CS218624B1/cs

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Abstract

Vynález sa týká spósobu přípravy p-l,4-xyloolii gosacharidov neznačených alebo značených rádionuklidom uhlíka 14C, , Podstata vynálezu spočívá v tom, že sa na aryl-P-xylozidy alebo aryl-P-(U-14C)xylozidy v koncentrácii vyššej ako 100 mM pósobí extracelulárnou β-xylanázou kvasiniek Cryptococcus albidus a výsledný produkt sa izoluje papierovou chromatografiou. Lineárně 3-l,4-xylooligosacharidy majú využitie ako modelové látky na štúdium chemických vlastností a reaktivity hemicelulóz. Predstavujú tiež vhodné substráty na štúdium mechanizmu k účinku mikrobiálnych 3-1,4-xylanáz.

Description

3
Vynález sa týká spósobu přípravy β-1,4-χγ1οο1ί-gosacharidov neznačených alebo značených rádio-nuklidom uhlíka 14C reakciou aryl-p^D-xylopyra-nozidov s extracelulárnou endo-1,4-β-xylanázouprodukovanou kvasinkami Cryptococcus al-bidus. p-l,4-Mylooligosacharidy sa nachádzajú v znač-nom množstve v predhydrolyzátoch dřeva. Tieto savšak obvykle nepoužívajú na ich izoláciu, leboobsahuju celý rad dalších sacharidových zložiek,ktoré. komplikujú izolačný proces. Najbežnejšímipostupmi přípravy xylooligosacharidóv je parciál-na kyslá hydrolýza a enzýmová hydrolýza rastlin-ných a dřevných xylánov (R. L. Whistler a C. C. Tu,J. Am. Chem. Soc., 73, 1389 [1951], 74, 3609[1952], 75, [1953]; C. T. Bishop, Can. J. Chem.,33, 1073 [1955]; T. E. Timell, Svensk Paperstid.,65,435 [1962]). Predovšetkým enzýmová hydrolý-za poskytuje poměrně dobré výtažky vzhradom namnožstvo východzieho xylánu (J. Kusakabe, T.Yasui a T. Kobayashi, Nippon Nogeikagaku Kaishi49, 383 [1975]). Žiadna z uvedených metod však neposkytujemožnost’ přípravy β-1,4-xylooligosacharidov zna-čených rádionuklidom uhlíka 14C, pokiaf sa nezíská14C značený polysacharid, čo je finančně i experi-mentálně náročný proces.
Pri štúdiu vlastností extracelulámej β-xylanázykvasiniek Cryptococcus albidus (P. Biely, M. Vr-šanská a Z. Krátký, Eur. J. Biochem., v tlači) sazistilo, že enzým napriek tomu, že vykazuje všetkytypické vlastnosti endoxylanázy (hydrolyzuje xylánná xylooligosacharidy, znižuje viskozitu jeho roz-tokov a nehydrolyzuje xylobiózu) má schopnost’uvolňovat’ p-nitrofenol z p-nitrofenyl^-D-xylopy-ranozidu podobné ako β-xylozidáza. Podrobnýmštúdiom tejto reakcie sa zistilo, že rozklad p-nitro-fenyl-, o-nitrofenyl- a fenyl^-D-xylopyranoziduneprebieha hydrolytickým štiepením na xylózua aglykón, ale je sprevádzaný vznikom xylobiózy,xylotriózy, xylotetraózy a xylózy. Kvantitativnouanalýzou reakčných produktov fenyl-P-D-[U--14C]xylopyranozidu syntetizovaného z (Ur14Č)xy-lózy podlá Montgomery a spol. (J. Am. Chem. Soc.64, 690 [1942]) sa dokázala závislost’ reakčnejrýchlosti a zloženia produktov reakcie β-xylanázyna koncentrácii substrátu. Najvyššie výťažky oligo-sacharidov sa dosahujú pri koncentráciách fenyl-β-xylozidu vyšších ako 100 mM. Kedže s výnimkouxylobiózy sa koncentrácie vyšších xylooligosacha-ridov menia v priebehu inkubácie, t. j. najprv saakumulujú a neskoršíe miznú v reakčnej zmesi,reakciu je potřebné zastavit’ podlá toho, akýoligosacharid sa izoluje. Za účelom přípravy xylo-triózy a xylotetraózy je vhodné reakciu jsastaviťpřibližné v štádiu 40 až 50 % rozkladu fenyl^-xy-lozidu. Najvyššie výťažky xylobiózy sa dosiahnu, aksa reakcia nechá pokračovat’ do ustavenia rovno-vážnej zmesi, ktorá už oligosacharidy vyššie akoxylobiózu neobsahuje.
Transglykozylačné reakcie β-xylanázy s aryl-β--xylozidmi sú stereošpecifické, vedú výlučné ktvor- 218624 be xylooligosacharidov s p-l,4-glykozidickýmivazbami. Potvrdilo sa to hmotnosťou spektromet-"riou per-0-metylovanej xylobiózy a hodnotamioptickej otáčavosti a bodom topenia kryštalickejxylobiózy izolovanej z enzýmovej reakčnej zmesi.Konštanty bolí v zhode s Iiterárnymi údajmi.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že sa naaryl- β-xylozidy alebo aryl- β- (U -14 C)xy lozidyv koncentrácii vyššej ako 100 mM pósobí extrace-lulárnou β-xylanázou kvasiniek Cryptococcus albi-dus a výsledný produkt sa izoluje papierovouchromatograf iou. Výhodou navrhovaného spósobu přípravy niž-ších β-1,4-xylooligosacharidov je, že představujev súčasnej době jedinú reálnu cestu k získaniuβ-1,4-xylooligosacharidov univerzálně značenýchrádionuklidom uhlíka 14C pri použití aryl^-D-(U--14C) xylozidov ako substrátu. příprava aryl^-D-xylopyranozidov je z časové-ho híadiska menej náročná ako izolácia rastlinnýchxylánov pre enzýmovú hydrolýzu, nie je viazaná na použitie purifikovanej β-xyla-názy, ako zdroj β-xylanázy sa dá použit’ zahuštěnéa dialyzované rastové médium kvasiniek C. albiduszískané po kultivácii kvasiniek na xyláne alebo poindukcii enzýmu metyl^-D-xylozidom, pri použití neznačených aryl-^-D-xylopyranozi-dov uvedený spósob přípravy xylobiózy móžekonkurovat’ spósobu získania týchto látok enzýmo-vou hydrolýzou xylánu. Příklad 1 p-Nitrofenyl^-D-xylopyranozid sa rozpustí vovodě aby sa získal 100 mM roztok. K roztokusubstrátu sa přidá preparát extracelulámej β-xyla-názy kvasiniek Cryptococcus albidus a zmes sainkubuje pri 30 °C po dobu 0,5 až 20 hodin. Poinkubácii a zahuštění sa zmes chromatografuje napapieri Whatman No 1 alebo 3 MM v sústaveetylacetát-kyselina octová — voda (18 : 7 : 8, v/v).Po detekcii vodiacich pásov sa zóny odpovedajúcexylobióze a xylotrióze vystrihnú, eluujú vodou a porechromatografii sa oligosacharidy kryštalizujúz vodného metylalkoholu. Výťažky závisí a odštádia ukončenia reakcie. Příklad 2
Kmeň Cryptococcus albidus CCY-17-4-1 sapestuje na pode obsahujúcej 1 % xylánu, 0,67 %kvasničnej dusíkatej bázy, 0,2 % asparagínua 0,5 % dihydrofošforečnanu draselného. Po4 dňoch sa narastené buňky odstránia centrifugá-ciou a získaná kultivačná tekutina sa zahustí vovákuu pri 40 °C na 1/10 póvodného objemua dialyzuje sa oproti destilovanej vodě pri 4 °C. Podialýze sa objem dialyzačného čreva použije akopreparát β-xylanázy. Roztok fenyl^-D-xylozidu(150 mM) sa inkubuje s prídavkom enzýmovéhopreparátu (1/10 objemu roztoku substrátu) pri30 °C. Po ukončení reakcie sa reakčná zmesspracuje ako v bode 1.

Claims (1)

  1. 4 Příklad 3 Fenyl-P-D-(U-14C)xylozid syntetizovaný z U--14C)xylózy sa koncentrácii 150 mM inkubuje s pu-rifikovanou endo-xylanázou pri 30 °C (koncentrá-cia enzýmu 3 jednotky/ml). Pod jednotkou enzy-mu sa rozumie také množstvo enzymu, ktoréuvolní za 1 minútu pri 30 °C a pH 5,4 (acetátovýpufor)v0,5 mlinkubačnejzmesiobsahujúcej 1 mgxylánu redukujúcej oligosacharidy rovné 1 móluxylózových ekvivalentov. Reakčná zmes sa po 0,5až 20 hodinách zahustí a chromatografuje napapieri Whatman No 1 v sústave etylacetát-kyseli-na octová-voda (18 : 7 : 8, v/v). Radioaktivněprodukty sa lokalizujú autorádiografiou, vystrihnú PREDMET Spósob přípravy β-1,4-xylooligosacharidova p-l,4-(U-14C)xylooligosacharidov vyznačujúcisa tým, že sa na aryl-P-xylozidy alebo aryl-P-(U--14C)xylozidy v koncentrácii vyššej ako 100 mM 218624 z papiera a eluujú vodou. V závislosti od štádiazastavenia reakcie sá získájú (U-14C)xylobióza,(U-14C)xylotrióza a (U-14C)xylotetraóza o špeci-fickej radioaktivitě rovnej dvoj-, troj-, štvornásob-ku špecifickej rádioaktivity východiskového fenyl--(U-14C)xylozidu. Lineáme -1,4-xylooIigosacharidy sa využívajuako modelové látky na štúdium chemických vlast-ností a reaktivity hemicelulóz. Predstavujú tiežvhodné substráty na štúdium mechanizmu účinkumikrobiálnych -1,4-xylanáz. Z posledného hradis-ka majú hlavně význam xylooligosacharidy znače-né rádionuklidom uhlíka 14C, ktoré nie sú do-stupné. VYNÁLEZU pósobí extracelulámou β-xylanázou kvasiniekCryptococcus albidus a výsledný produkt sa izolujepapierovou chromatografiou. Vytiskly Moravské tiskařské závody,provoz 12, Leninova 21, Olomouc Cena: 2,40 Kčs
CS437980A 1980-06-20 1980-06-20 Sposob přípravy P-l,4-xylooligosachari<lov a P-l,4-(U«14C)xylooligosacha· ridov CS218624B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS437980A CS218624B1 (cs) 1980-06-20 1980-06-20 Sposob přípravy P-l,4-xylooligosachari<lov a P-l,4-(U«14C)xylooligosacha· ridov

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS437980A CS218624B1 (cs) 1980-06-20 1980-06-20 Sposob přípravy P-l,4-xylooligosachari<lov a P-l,4-(U«14C)xylooligosacha· ridov

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS218624B1 true CS218624B1 (cs) 1983-02-25

Family

ID=5386400

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS437980A CS218624B1 (cs) 1980-06-20 1980-06-20 Sposob přípravy P-l,4-xylooligosachari<lov a P-l,4-(U«14C)xylooligosacha· ridov

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS218624B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Legler et al. Epoxyalkyl oligo-(1→ 4)-β-D-glucosides as active-site-directed inhibitors of cellulases
Wang et al. Changing enzymic reaction mechanisms by mutagenesis: conversion of a retaining glucosidase to an inverting enzyme
Kato et al. Studies on the chemical structure of konjac mannan: Part II. Isolation and characterization of oligosaccharides from the enzymatic hydrolyzate of the mannan
Ballou Alkali-sensitive glycosides
Biely et al. Mechanisms of Substrate Digestion by Endo‐1, 4‐β‐Xylanase of Cryptococcus albidus: Lysozyme‐Type Pattern of Action
Pemberton et al. The role of β‐glucosidase in the bioconversion of cellulose to ethanol
US20090280541A1 (en) Beta-xylosidase for conversion of plant cell wall carbohydrates to simple sugars
Debeire et al. Purification and properties of an endo‐1, 4‐xylanase excreted by a hydrolytic thermophilic anaerobe, Clostridium thermolacticum: A proposal for its action mechanism on larchwood 4‐O‐methylglucuronoxylan
Vršanská et al. Reaction pathways of substrate degradation by an acidic endo-1, 4-β-xylanase of Aspergillus niger
Fort et al. Stepwise synthesis of cellodextrins assisted by a mutant cellulase
Clinch et al. Synthesis and utility of sulfated chromogenic carbohydrate model substrates for measuring activities of mucin-desulfating enzymes
CS218624B1 (cs) Sposob přípravy P-l,4-xylooligosachari&lt;lov a P-l,4-(U«14C)xylooligosacha· ridov
Wiemann et al. Xylose: the first ambident acceptor substrate for galactosyltransferase from bovine milk
Totani et al. Enzymatic synthesis of aliphatic β-lactosides as mimic units of glycosphingolipids by use of Trichoderma reesei cellulase
Yasukochi et al. Enzymatic Synthesis of 4-Methylumbelliferyl Glycosides of Trisaccharide and Core Tetrasaccharide, Gal (. BETA. 1-3) Gal (. BETA. 1-4) Xyl and GlcA (. BETA. 1-3) Gal (. BETA. 1-3) Gal (. BETA. 1-4) Xyl, Corresponding to the Linkage Region of Proteoglycans.
Shoda et al. Cellulase-catalysed, stereoselective synthesis of oligosaccharides
Marmuse et al. New chromogenic substrates for feruloyl esterases
Khandke et al. Degradation of larchwood xylan by enzymes of a thermophilic fungus, Thermoascus aurantiacus
US5068182A (en) Substrates and reagents useful in determining α-amylase and a method for determining α-amylase
CN118272469A (zh) 酶解处理作物秸秆的方法及相关应用
EP0541083B1 (en) Method for determination of alpha-amylase activity
US5612203A (en) Process for producing saccharides
Eveleigh et al. Fungal metabolism of complex glycosides: ustilagic acid
Stevenson et al. High-yield syntheses of ethyl and 2-fluoroethyl β-d-galactopyranosides using Streptococcus thermophilus β-galactosidase
Nakano et al. Synthesis of 2-deoxy-glucooligosaccharides through condensation of 2-deoxy-D-glucose by glucoamylase and α-glucosidase