CS206986B1 - Způsob preparátivního dělení difosfátů a trifosfátů ribonukleosidů a deoxyribonukleosidů - Google Patents

Způsob preparátivního dělení difosfátů a trifosfátů ribonukleosidů a deoxyribonukleosidů Download PDF

Info

Publication number
CS206986B1
CS206986B1 CS717379A CS717379A CS206986B1 CS 206986 B1 CS206986 B1 CS 206986B1 CS 717379 A CS717379 A CS 717379A CS 717379 A CS717379 A CS 717379A CS 206986 B1 CS206986 B1 CS 206986B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
eluent
concentration
ethanol
formic acid
preparative
Prior art date
Application number
CS717379A
Other languages
English (en)
Inventor
Vratislav Svoboda
Inrich Kleinmann
Josef Kolina
Original Assignee
Vratislav Svoboda
Inrich Kleinmann
Josef Kolina
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vratislav Svoboda, Inrich Kleinmann, Josef Kolina filed Critical Vratislav Svoboda
Priority to CS717379A priority Critical patent/CS206986B1/cs
Publication of CS206986B1 publication Critical patent/CS206986B1/cs

Links

Landscapes

  • Saccharide Compounds (AREA)

Description

(54) Způsob preparátivního dělení difosfátů a trifosfátů ribonukleosidů a deoxyribonukleosidů
Vynález se týká preparátivního dělení směsí difosfátů a trifosfátů ribonukleosidů a deoxyribonukleosidů připravovaných z biologického materiálu, značených radioizotopy 1^C, ^2P nebo s vysokou specifickou aktivitou.
Dosud se tyto látky zpravidla dělily metodou preparati-vní papírové chromatografie.
I když lze vhodnou kombinací rozpoustědlových soustav rozdělit i složitou směs na jednotlivé složky, má tato metoda zjevné nedostatky. Především jsou to izolační ztráty a nižší stupeň chemické čistoty sloučenin, které se dělí touto metodou. Při dnešních požadavcích na vysoké molové aktivity značených sloučenin jsou ztráty převyšující 10/ug z ekonomického hlediska nezanedbatelné. Nižší stupeň chemické čistoty preparátů připravovaných papírovou preparativní chromatografii je zapříčiněn zejména výluhy z ehromatografického papíru, což je opět rozhodující při dělení sloučenin s vysokou molovou aktivitou. Další nedostatek preparativní papírové chromatografie spadá do oblasti bezpečnosti práce s radioaktivními látkami. Manipulace s radioaktivními sloučeninami pří nanášení na chromatografické papíry, vlastní chromatografie, autoradlografie a eluce podstatně zvyšují možnost kontaminace prostředí i osob. Nutno ještě konstatovat, že preparativní papírová chromatografie je časově náročnou metodou.
Pro ilustraci uvádíme dosud používaný způsob pro separaci při výrobě ribonukleo206 986
208 880 sid-5'-trifosfátů-14C (U).
Enzymatická směs se nanese na chromatografioký papír Whatman 3 a sestupně se vyvíjí v soustavě kyselina izomáselná t voda t koncentrovaný amoniak (66 i 33 > 1,5) po dobu 20 hodin. Po skončeném dělení se papíry suší v proudu vzduchu· Identifikaoe se provede na základě souběžně prováděné chromatografie standardů. Radioaktivní trlfosfát se na papíru promyje soustavou butanol nasycený vodou, čímž se odstraní zbytek kyseliny izomáselné. Eluoe z papíru se pak provádí směsí 96 % etanol - 1,5 N amoniak (1 i 1)· Protože se obvykle nedosáhne požadované čistoty, je třeba papírovou chromatografií i několikrát opakovat, čímž vzrostou dále ztráty preparátu· Sušení papírů s nenasycenými radioaktivními preparáty má za následek vysoké riziko kontaminace pracovníků i ovzduší*
Podstata způsobu prepaprativního dělení difosfátů a trifosfátů ribonukleosidů a deoxyribonukleosidů značených radioizotopy se speoiflokou aktivitou vyšší než
3,7 GBq/mmol eluční vysokotlakou kapalinovou chromatografií podle vynálezu spočívá v tom, že se směs látek vznikajících při přípravě radioaktivních difosfátů a trifosfátů deoxyribonukleosidů a ribonukleosidů dělí na sloupci porézního hydrofilního iontoměniče na bázi ethylenglykolmetakrylátového kopolymerů s diethylaminoethylovými výměnnými skupinami za použití eluentu tvořeného kyselinou mravenčí, mravenčeném amonným, ethylalkoholem a vodou, přičemž koncentrace kyseliny mravenčí v eluentu činí 0,01 M až 4,5 M, koncentraoe mravenčenu amonného 0,01 M až 1,3 M, konoentraoe ethanolu 1 až S0 % objemových, přičemž takto získané frakce eluentů, obsahujíoí nukleotidy, případně nukleosidy nebo báze se dále zbavují netěkavýoh složek eluentu na sloupci porézního hydrofilního iontoměniče na bázi ethylenglykolmethakrylátového kopolymerů s fosfátovými, kárboxylovými nebo sulfátovými skupinami za použití eluentu tvořeného ethanolem, kyselinou octovou, kyselinou mravenčí a vodou, přičemž koncentrace kyseliny v eluentu činí 0,05až5 M a konoentraoe ethanolu 1 až 80 % objemových.
Výhody nového postupu spočívají v tom, že výtěžek radioaktivního produktu je přibližně o 20 až 30 % vyšší než při dělení dosud běžným způsobem papírové ohromatografie, neboť ztráty způsobené na ionexeoh jsou ve srovnání s chromatografiokým papírem zanedbatelné· Vzhledem k tomu, že účinnost dělení a tudíž i čistota preparátů je velmi vysoká, vznikají ještě další úspory tím, že získáváme čisté další radioaktivní látky a dále tím, že použitý donor lze znovu použít·
Dělení kapalinovou ohromatografií v podstatě probíhá v kapalném prostředí v uzav řeném poloautomatizovaném systému. Odpadá autoradiografie a sušení chromátografických papírů, při niohž snadno může dojít ke kontaminaoi obsluhy radioaktivitou· Tím se podstatně zvyšuje také bezpečnost práce·
Pro objasnění je dále uveden příklad postupu izolace radioaktivního 5'guanoslntrifosfátu z reakční enzymatioké směsi, která obsahuje donor 5'adenoslntrifosfát
206 986 a v menším množství produkty rozkladu uvedených trifosfátů tj· difosfáty, monofosfáty, nukleosidy a báze· Kromě uvedených látek obsahuje výchozí směs ještě značená množství solí·
Asi 15 ml dělená směsi se vnese na kolonu 15 x 400 mm a a promývá nejprve 0,05 M mravenčeném amonným pH « 8,1 v 10 % obj· ethanolu· Po eluci nukleosidů a bází se promývá 0,1 M mravenčanem amonným pH » 7,2 a po eluol monofosfátů 0,5 M mravenčanem amonným pH » 6,3 v 30 % obj. ethanolu· Po eluci 5'adenosindifosfátu se přepne na eluent 1 M mravenčen amonný pH - 6,3 v 50 % ethanolu a tak se rozdělí zbylé komponenty výchozí směsi, tj· 5'guanosindifosfát, 5'adenosintrifosfát a 5'guanosintrifosfát.
Jednotlivé frakce rozdělené z původní směsi látek se dále odsolí na koloně 38 x 500 mm plněné katexem na bázi ethylenglykolmethakrylátového kopolymeru se sulfátovými výměnnými skupinami, promývaném roztokem 1,5 M kyseliny mravenčí v 5 % ethanolu. Odsolené frakce se odpaří do sucha na vakuové odparce, a tím se získají čisté kyseliny monomérů nukleotidů, které se pak mohou neutralizovat a uchovávat v mrazícím boxu·

Claims (1)

  1. Předmět vynálezu
    Způsob preparátivního dělení difosfátů a trifosfátů ribonukleosidů a deoxyribonukleosidů značenýoh radioizotopy se specifickou aktivitou vyšší než 3,7 GBq/mmol eluční vysokotlakou kapalinovou sloupcovou chromatografií, vyznačujíoí se tím, že se směs látek vznikajíoíoh při přípravě radioaktivních difosfátů a trifosfátů deoxyribonukleosidů a ribonukleosidů dělí na sloupci porézního hydrofilního iontoměniče na bázi ethylenglykolmetakrylátového kopolymeru s diethylaminoethylovými výměnnými skupinami za použití eluentu tvořeného kyselinou mravenčí, mravenčanem amonným, ethylalkoholem a vodou, přičemž koncentrace kyseliny mravenčí v eluentu činí 0,01 M až 4,5 M, koncentrace mravenčenu amonného 0,01 M až 1,3 M, koncentrace ethanolu 1 až 80 % objemových, přičemž takto získané frakce eluentů, obsahující nukleotidy, případně nukleosidy nebo báze se dále zbavují netěkavých složek eluentu na sloupci porézního hydrofilního iontoměniče na bázi ethylenglykolmetakrylátového kopolymeru s fosfátovými, karboxylovými nebo sulfátovými skupinami za použití eluentu tvořeného ethanolem, kyselinou octovou, kyselinou mravenčí a vodou, přičemž koncentraoe kyseliny v eluentu činí 0,05 až 5 M a koncentrace ethanolu 1 až 80 % objemových.
CS717379A 1979-10-24 1979-10-24 Způsob preparátivního dělení difosfátů a trifosfátů ribonukleosidů a deoxyribonukleosidů CS206986B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS717379A CS206986B1 (cs) 1979-10-24 1979-10-24 Způsob preparátivního dělení difosfátů a trifosfátů ribonukleosidů a deoxyribonukleosidů

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS717379A CS206986B1 (cs) 1979-10-24 1979-10-24 Způsob preparátivního dělení difosfátů a trifosfátů ribonukleosidů a deoxyribonukleosidů

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS206986B1 true CS206986B1 (cs) 1981-07-31

Family

ID=5420356

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS717379A CS206986B1 (cs) 1979-10-24 1979-10-24 Způsob preparátivního dělení difosfátů a trifosfátů ribonukleosidů a deoxyribonukleosidů

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS206986B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Moffatt et al. Nucleoside Polyphosphates. VIII. 1 New and Improved Syntheses of Uridine Diphosphate Glucose and Flavin Adenine Dinucleotide Using Nucleoside-5'Phosphoramidates2
Khorana Carbodiimides. Part V. 1 A Novel Synthesis of Adenosine Di-and Triphosphate and P1, P2-Diadenosine-5'-pyrophosphate
Hurlbert [111] Preparation of nucleoside diphosphates and triphosphates
Tener et al. Studies on Polynucleotides. II. 1 The Synthesis and Characterization of Linear and Cyclic Thymidine Oligonucleotides2
Cohn The separation of purine and pyrimidine bases and of nucleotides by ion exchange
Ponnamperuma et al. Nucleotide synthesis under possible primitive earth conditions
Bendich et al. Fractionation of Deoxyribonucleic Acids on Columns of Anion Exchangers; Methodology1
Shelton et al. A proton exchange between purines and water and its application to biochemistry
Lohrmann et al. Studies on Polynucleotides. LI. 1 Syntheses of the 64 Possible Ribotrinucleotides Derived from the Four Major Ribomononucleotides2
Markham et al. The structure of ribonucleic acid. 3. The end groups, the general structure and the nature of thecore'
Ralph et al. Studies on Polynucleotides. XVIII. 1 Experiments on the Polymerization of Mononucleotides. The Synthesis and Characterization of Deoxyguanosine Oligonucleotides 2
Plunkett et al. Metabolism of 9-β-D-arabinofuranosyladenine by mouse fibroblasts
Symons [11] Synthesis of [α-32P] ribo-and deoxyribonucleoside 5′-triphosphates
Hall et al. Nucleoside Polyphosphates. III. 1 Syntheses of Pyrimidine Nucleoside-2'(3'), 5'-diphosphates
Rhaese et al. Chemical analysis of DNA alterations: II. Alteration and liberation of bases of deoxynucleotides and deoxynucleosides induced by hydrogen peroxide and hydroxylamine
Glitz Nucleotide sequence at the 3'-linked end of bacteriophage MS2 ribonucleic acid
Singhal et al. Cation-exclusion chromatography on anion exchangers. Application to nucleic acid components and comparison with anion-exchange chromatography
Drummond et al. Deoxyribonucleoside-3′, 5′ Cyclic Phosphates. Synthesis and Acid-Catalyzed and Enzymic Hydrolysis
Tener et al. Cyclic Phosphates. II. Further Studies of Ribonucleoside 2': 3'-Cyclic Phosphates1
Okazaki Studies of deoxyribonucleic acid synthesis and cell growth in the deoxyriboside-requiring bacteria, Lactobacillus acidophilus: III. Identification of thymidine diphosphate rhamnose
Singhal Separation and analysis of nucleic acids and their constituents by ion-exclusion and ion-exchange column chromatography
Smellie et al. Studies on the biosynthesis of deoxyribonucleic acid by extracts of mammalian cells III. Net synthesis of polynucleotides
Chambers et al. Nucleoside Polyphosphates. V. 1 Syntheses of Guanosine 5'-Di-and Triphosphates
CS206986B1 (cs) Způsob preparátivního dělení difosfátů a trifosfátů ribonukleosidů a deoxyribonukleosidů
Ip et al. Separation of nucleosides and nucleotides by reversed-phase high-performance liquid chromatography with volatile buffers allowing sample recovery