CS198055B1 - způsob přípravy testovacího systému buněčných nebo tkáňových kultur pro stanoveni virů nebo viry inhibujiclch látek - Google Patents

způsob přípravy testovacího systému buněčných nebo tkáňových kultur pro stanoveni virů nebo viry inhibujiclch látek Download PDF

Info

Publication number
CS198055B1
CS198055B1 CS502677A CS502677A CS198055B1 CS 198055 B1 CS198055 B1 CS 198055B1 CS 502677 A CS502677 A CS 502677A CS 502677 A CS502677 A CS 502677A CS 198055 B1 CS198055 B1 CS 198055B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
viruses
cell
determination
medium
cells
Prior art date
Application number
CS502677A
Other languages
English (en)
Inventor
Alexej Izbicky
Original Assignee
Alexej Izbicky
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Alexej Izbicky filed Critical Alexej Izbicky
Priority to CS502677A priority Critical patent/CS198055B1/cs
Publication of CS198055B1 publication Critical patent/CS198055B1/cs

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Vynález se týká způsobu přípravy testovacího systému buněčných nebo tkáňových kultur pro stanoveni virů nebo viry inhibujiclch látek.Řeší zjednodušeni metodiky v připadechzkdy je zapotřebí prodloužené inkubace pokusných kultur.
Pomnoženi /nebo inhibice pomnoženi / virového inokula v buněčné kultuře je základem diagnostických postupů pro izolaci infekčního agens,pro kvantitaci infekční aktivity ve vzorcích virové tekutiny /ΤΚίΡ^θ / i inhibični aktivity např.virusneutra lizačn1ch proti látek.
Při obecně známém postupu se k testu uživá narostlých buněčných kultur.Po výměně více méně vyčerpaného kultivačného media se aplikuje vyšetřované inokul um a v průběhu dalši inkubace se sledují změny v* kuItuřezkteré jsou indikátorem pomnoženi viru.Při malém počtu inoku lovaných infekčních částic nebo u virů s pomalejší reprodukci je zapotřebí protrahované inkubačni dobyzběhěm niž je nutno vyměňovat medium v kulturách až 2krát týdně/viz na př. Mayr A. et al.zVirologische Arbeitsmethoden,sv.Iz VEB G. Fischer,Jena 1974 /.
Jsou známa také některá zjednodušeni diagnostického postupu,která se s výhodou uplatni zvláště při sériových výšetřovánich.Při inokulaci vzorků na narostlé kultury bylo např.popsáno užiti media s galaktosou a pyruvátem,umožňujici nejméně 10 až 12 denní inkubaci kultur bez výměny media /Izbický A.,Zprávy SEVAC 3Z81-89Z1974 /. Jinou modifikaci
198 055
198 0SS je Inokulace testovaného materiálu přímo do suspense buněk,určených ke kultivaci v běžném růstovém mediu.Odpadá tak samostatné pracovní fáze nasazováni ku ltury,nehledě k tomu,že tento způsob aplikace je pro pomnožovénl řady virů zvláStě vhodný/Mayr A.et al., V1rolog1sche Arbeitsmethoden,Sv.l,VEB G.Fischer Jana 1974/.Ve srovnáni se známými modifikacemi přlnéSI nová řeSenl dalS1 sníženi pracnosti a nákladů.
Podstatou vynálezu je spojeni Inokulace buněk pro nárůst kultury a Inokulace testovaného materiálu do jedná operace a to v mediu,v němž. je glukosa nahražena příměsi galaktózy a pyruvátu.Postup slučuje výhody menS1 pracnosti postupu a prodlouženého udržováni kultur bez výměny media.
V novám řeSenl se využívá poznatku,že médium s galaktózou a pyruvátem/bez glukózy/ je vhodná jak krůstu,tak 1 prodlouženému udržováni buněčných kultur.Dobré růstová vlastnosti galaktózy byly zjištěny při pomnožovénl řady druhů buněk/WilImerE.N.edlt.,CelIs and tlssues 1n culture,vol.I,Academle Press,London-N-York,1965/,včetně lidských d1plo1dn1ch buněk UI-38 /Sloním Ď.,J.B1ol.Stand.,2,51-58,1974,Baugh C.L.,L1fe Science,6,371-380,1967/. Taká pyruvát stimuloval růst některých buněčných Iini1/Uillmer E.N.edit.Cells and tlssues, vol.I,Academie Press,London-N.York,1965/ 1 lidských d1plo1dn1ch buněk /Sloním D.,J.B1ol. Stand.,2,51-58,1974/.Při studiu kultivace lidských dlploldnlch buněk/Slonim D„,J.Biol. Stand.,2,51-58,1974/ a buněk linie VĚRO /Izblcký A.,Čs.Epidem. 26,1,9-14,1977/ byl v modifikovaném Eaglově minimálním esenciálním mádlu s galaktózou / 1 g/litr/ a pyruvátem /0,5 g/l1tr/ zjiStěn vySS1 pomnožovael efekt,než v mádlu s glukólou.Současně v mádlu s galaktózou nebo pyruvátem 1 v mádlu s příměsi obou látek docházelo v průběhu kultivace lidských dlploldnlch buněk/Slonim D.,J.B1ol.Stand., 2,51-58,1974/ a buněk Unie Věro /Izblcký A.,Čs.Ep1dem. 26,1,9-14,1977/ jen k pomalému poklesu pH a bylo v něm možná kultury protrahovaně inkubovat bez výměny média /Izblcký A.,Zprávy SEVAC,č.3,81-89,1974/. Podle výsledků naS1 laboratoře má modifikovaná Eaglovo minimální esenciální médium s galaktózou a pyruvátem vhodná vlastnosti 1 např. pro prodloužené/sledováno po dobu 3 týdnů/ udržováni narostlých primárních kultur buněk psftSh /beagle/ ledvin i pro jejich růst.
Je zřejmá,že se médium s galaktózou a pyruvátem může uplatnit při kultivaci mnoha typů buněk primárních,dlploldnlch 1 heteroploldnlch buněčných linii a při jejich Širokém diagnostickém využiti.Jen lidská dlploldnl buňky samy o sobě mohou sloužit k diagnostice např. viru zarděnek,var1cella-zoster,RSV,herpesviru,cýtomegalov1ru a entarovirů/Lenette E.H.,Schm1dt N.J. et al.,Laboratorní vySetřovad metody virových a rickettsiálnlch nákaz, Avlcenum 1974/-buňky Věro potom viru SV 40,herpesvirů,reov1rů,poxv1rů,viru parotitidy, spalni ček,psinky,NDV,SV5,rubely,lymfocytárnl choříomenlngltIdy,adenovirů,erbovírů ap. /Whitaker A.,Tissue and cell,Ba1lllere Tindall, 1972/.
Novým řeSenlm se dosahuje předevžlm ekonomického efektu,který je dán zjednodušením pracovního postupu,snížením spotřeby materiálu a u zkumavkovýeh kultur využitím stacionární Inkubace.Sníženi počtu laboratorních operaci kromě toho zkracuje exposici pracovníků profesionálním rlslkům a zmenSuje možnost eventuální kontaminace a znehodnoceni kultur.
198 085
PŘÍKLAD
Stanoveni ΤΚΙΟ^θ parotitického viru a virus parotitidy neutralizujících protilátek ve zkumavkových kulturách buněk Věro
Buňky
Jako biologického substrátu se v testu užívá kultur buněk heteroploidní linie Věro /odvozených z ledvinné tkáně opice Cercopithecus aethiops/ s negativním nálezem mykoplasmatické kontaminace.Buňky se.pomnožuj1 v lahvích podle Rouxe /1200 ml/ v Eaglově minimálním esenciálním médiu/Eagle H.,Science,Washington, 130,432-437,1959/,/Izbický A.,Zprávy SEVAC í.2,54-60,1 974;izbický A. , £s. Epi dera., 26,1,9-1 4,1 977/.
Médium
Ve vlastním testu se užívá Eaglovo modifikované minimální esenciální médium,v němž je glukóza nahražena galaktózou/1 g/litr/ a natrium pyruvátem /0,5 g/litr/ /Baugh C.L. et at.,Life Science, 6,371-380,1 967;S lonim D.,J,Biol.Stand. 2,51-58-,1 974; Xzbi cký A.,Zprávy SEVAC č. 3,81-89,1974/ se 7,5% inaktivovaného telecího séra a 1,2 ml roztoku 7,5 %NaHCO^ na 100 ml média a s příměsi penicillinu a sterptomycinu /100 j.,respekti ve 100 mg na 1 ml média/- dále jen MEM-GaPy.
Příprava inokula pro virusneutralizačni test
Dvojnásobná řada ředěni /2_n/ vyšetřovaného séra/inaktivovaného/ se smisi se stejným objemem virové tekutiny /např.Endersův laboratorní kmen viru parotitidy/ o obsahu 100 TKIDS0 v 1 ml a inkubuje se při 37 °C po dobu 60 minut nebo při +4 °C 18 hodin.
Vlastni test
Bezprostředně před zahájením vlastního testu se připraví suspenze buněk Vero/z Roux lahvi uvolněny pomoci roztoku 0,01 % trypsinu s 0.02 % versenu-dvojsodná sůl EDTA v densitě 300 000 buněk na 1.3 ml média MEM-GaPy /cca 231 000 buněk/ml/ a až do inokulace se udržuje v chladu />4 °c/.
Ředěni vzorku pro stanoveni ΤΚΙΒ^θ /geometrická řada 10nv médiu MEM-GaPy/ se provádí průběžně během pokusu,séra pro stanoveni obsahu virusneutralizačnich protilátek je nutno zpracovat předem/viz příprava inokula pro virusneutralizačni test/.
Do zvoleného počtu/např. deset u testu TKIDgg a čtyři u virusneutralizačniho testu/ zkumavek průměru 16 mm a délky 100 mm se inokuluje po 1.3 ml buněčné suspenze a po 0,2 ml příslušného ředěni testovaného mateřiálu.zkumavky se potom zazátkuji gumovými zátkami, důkladně protřepou a uloži ke stacionární inkubací v šikmé poloze při teplotě +37 °C na dobu deseti dnů.
Ode čítáni
Přestože se pomnoženi parotitiekého viru v kultuře buněk Věro zpravidla projeví zřetelným eytopatickým efektem/tvorba syncycii až destrukce monolayeru/,je vhodné sledovat také hemag lutinaci kuřecích erytrocytů v médiu jednotlivých zkumavek a výskyt hemadsorpce.
Po skončené inkubaci se zkumavky odzátkuji a do média/1.5 ml/ se přidá po 0.2 ml suspenze třikrát promytých 3 % kuřecích erytrocytů v roztoku PBS /Dulbecco,Vogt,J.Exper. Med. 99,1 67-1 82,1 954/ bez Ca++ a Mg ++,důkladně protřepou a ponechají v klidu ve vertikální
198 OSS poloze v inkubátoru + 37 °C po dobu 30 minut, a potom při- laboratorní teplotě do vytvořeni sedimentu kontrolních zkumavek/kontrola erytrocytálni suspenze/.
Potom se prostým okem odečte hemaglutinace, u kultur s negativní nebo nejasnou heraaglutinad se konečný výsledek ověří mikroskopicky /zvětšeni 6 x 10/ podle výskytu hemadsorpce nebo cytopatického efektu.
Při testováni infekční aktivity se hodnoty ΤΚΙΕ>5θ stanoví výpočtem podle Reeda a Muenchea /Amer.J.Hyg.,27,493,1938/ a vyjádři v negativních log
Při stanoveni virusneutralizačnich protilátek se titr urči jako ředěni séra,které sniži počet destruovaných buněk v kultuře asi na po loví nu,nebo které ještě zřetelně redukuje hemadsorpci.
Součásti titračniho pokusu jsou vyšetřeni referenčních vzorků a soustava kontrol, e
Vedle využiti ve virolog ické diagnostice /izolace viru,stanoveni infekční nebo virusinhibuj 1 ci aktivity např. protilátek/ se může nový postup uplatnit i při pomnožováni virových agens pro výrobní účely;nelze vyloučit ani jeh využiti mimo oblast virologie při sledováni biologického účinku pomalu působících látek neinfekčniho charakteru.

Claims (1)

  1. Způsob přípravy te.stovaciho systému buněčných nebo tkáňových kultur pro stanoveni virů nebo viry inhibujiclch látek,vyznačuj 1d se tim,že se testovaný materiál inokuluje v jedné operaci současně s buňkami pro nárůst kultury s užitím Caglova minimálního esenciálního média,v němž je glukóza nahražena galaktózou v množstvi 0,5 až 1,5 g na litr média a pyrohroznanem sodným v množství 0,25 až 0,75 g na 1 litr média,o pH 7,0 až 7,8, s inkubaci po dobu 4 až 21 dni při teplotě 30 až 40 °C«
CS502677A 1977-07-29 1977-07-29 způsob přípravy testovacího systému buněčných nebo tkáňových kultur pro stanoveni virů nebo viry inhibujiclch látek CS198055B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS502677A CS198055B1 (cs) 1977-07-29 1977-07-29 způsob přípravy testovacího systému buněčných nebo tkáňových kultur pro stanoveni virů nebo viry inhibujiclch látek

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS502677A CS198055B1 (cs) 1977-07-29 1977-07-29 způsob přípravy testovacího systému buněčných nebo tkáňových kultur pro stanoveni virů nebo viry inhibujiclch látek

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS198055B1 true CS198055B1 (cs) 1980-05-30

Family

ID=5394301

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS502677A CS198055B1 (cs) 1977-07-29 1977-07-29 způsob přípravy testovacího systému buněčných nebo tkáňových kultur pro stanoveni virů nebo viry inhibujiclch látek

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS198055B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sedwick et al. Reproducible plaquing system for rabies, lymphocytic choriomeningitis, and other ribonucleic acid viruses in BHK-21/13S agarose suspensions
Baublis et al. Measles antigen and syncytium formation in brain cell cultures from subacute sclerosing panencephalitis (SSPE)
Hamdy et al. Response of white-tailed deer to infection with peste des petits ruminants virus
Fernandes et al. Endosymbiotic relationship between animal viruses and host cells: a study of rabies virus in tissue culture
Moe et al. Plaque assay for Ebola virus
Reich et al. Nucleic acid homology studies of adenovirus type 7-SV40 interactions.
Gutekunst Latent pseudorabies virus infection in swine detected by RNA-DNA hybridization
Howell et al. Plaque formation by bluetongue virus
EP1497468B1 (en) Cells for detection of influenza and parainfluenza viruses
Hughes Physical and chemical methods for enhancing rapid detection of viruses and other agents
Moulder et al. Purification and properties of the agent of feline pneumonitis
LaColla et al. Vaccinia virus infection of HeLa cells. I. Synthesis of vaccinia DNA in host cell nuclei
Saunders Development and evaluation of an enzyme-labeled antibody test for the rapid detection of hog cholera antibodies
Chiu et al. Potato yellow dwarf virus in leafhopper cell culture
Högman Blood group antigens on human cells in tissue culture: The effect of prolonged cultivation
Nakajima et al. Immunodiffusion studies of purified equine infectious anemia virus
Pinon et al. Evaluation of risk and diagnostic value of quantitative assays for anti-Toxoplasma gondii immunoglobulin A (IgA), IgE, and IgM and analytical study of specific IgG in immunodeficient patients
Genovesi et al. Effect of macrophage-specific colony-stimulating factor (CSF-1) on swine monocyte/macrophage susceptibility to in vitro infection by African swine fever virus
Oshiro et al. Electron microscopic studies of rubella virus
Echeverria et al. The first isolation of equine arteritis virus in Argentina
US4334016A (en) Human osteogenic sarcoma cell line and use thereof for immunofluorescent antibody test
CS198055B1 (cs) způsob přípravy testovacího systému buněčných nebo tkáňových kultur pro stanoveni virů nebo viry inhibujiclch látek
Tada et al. An analysis of factors influencing the isolation rate of herpes simplex virus
Dewar et al. Isolation of HIV-1 from plasma of infected individuals: an analysis of experimental conditions affecting successful virus propagation
Takemoto et al. Transformation of mouse cells by K-papovavirus