CN1256950C - 海狗油软胶囊在制备调节血脂保健品中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及海狗油软胶囊及其在制备调节血脂保健品中的应用，本发明的海狗油软胶囊由精制海狗油和维生素E按一定配比组成，该海狗油软胶囊可用于制备调节血脂的保健品，其功效优于鱼油。
Description
技术领域
本发明涉及一种海狗油软胶囊及其在制备调节血脂保健品中的应用。
背景技术
海狗为海豹科动物竖琴海豹(Harp seal)的俗称，栖居于北极和大西洋的北部。由于加拿大政府采取的保护措施，海狗的数量以每年5％的速度稳定增长。为保持海狗与鱼群之间的生态平衡，经联合国和加拿大政府批准，每年可以少量地捕杀海狗。
本产品取材于新捕猎的北极海狗皮下脂肪，经过真空蒸馏等工艺，在低温条件下除去蛋白、碳水化合物等物质，得到呈微黄色、透明液体状的精炼海狗油。
海狗油中富含人体必需的Ω-3型多碳不饱合脂肪酸(Ω-3PUFA)，其营养价值要优于其它食用油类。在海狗油中除发现鱼油中通常含有的二十碳五烯酸(EPA)和二十二碳六烯酸(DHA)外，还有含量可观的二十二碳五烯酸(DPA)。理想条件下提炼加工的海狗油，其中EPA、DHA和DPA的含量可达25％左右。
血脂通常是指血清中的脂质和各种脂蛋白。流行病学调查和实验研究证实，人体血液中的血脂水平与动脉粥样硬化或冠心病的发生和发展密切相关，高脂血症是引起动脉粥样硬化或冠心病的重要危险因素。目前普遍认为与动脉粥样硬化或冠心病密切相关的主要是血液中胆固醇、甘油三酯和低密度脂蛋白水平的增高。
鱼油的降血脂功能已为国内外许多研究所证实，国内针对该功能而研制的多种鱼油产品作为医疗药品和保健食品已经上市。实验研究结果表明，鱼油中的EPA和DHA具有显著降低血液中胆固醇、甘油三酯和低密度脂蛋白水平的作用。
海狗油中除EPA和DHA的含量较鱼油丰富外，还有含量可观的DPA，且几乎不含胆固醇，而大多数的鱼油中却含有较多的胆固醇，这对健康是不利的。海狗油与鱼油相比的另一重要特点是Ω-3PUFA在与甘油三酯成酯时的位置不同。鱼油中的Ω-3PUFA成酯多位于三醇甘油酯的2位，而海豹(狗)油中的Ω-3PUFA多位于1、3位。这一结构上的不同对Ω-3PUFA的吸收和生物利用度具有明显的影响，在胃肠道中，胰脂肪酶易于水解甘油酯中的1、3位酯键。因此，海狗油中的Ω-3PUFA摄入后在肠道以游离脂肪酸的形式吸收，可直接与组织细胞结合而被利用。从脂肪结构和脂肪酸组成上分析，海豹(狗)油比较接近人体，因此，与鱼油相比，海狗油中Ω-3PUFA的生物利用度更高。
维生素E作为一种抗氧化剂，在清除自由基过程中起着重要的作用，能够有效地抑制脂质过氧化物的产生，防止产品中的不饱和脂肪酸氧化变质。
由于北极海狗仅栖居于加拿大沿海区域，目前国内关于海狗油保健作用的研究工作开展不多，更未见有关海狗油调节血脂方面的用途报导。
CN1378843A(公开日2002年11月13日)公开了一种海狗油胶丸及其生产方法，该对比文件中提及的生产方法与本发明完全不同，实质上该对比文件描述的是海狗油的精制方法，而且该对比文件只字未提该产品在制备调节血脂保健品中的应用。
本发明目的是提供一种海狗油软胶囊，它由精制海狗油和维生素E组成。
本发明另一个目的是提供海狗油软胶囊在制备调节血脂保健品中的应用，其功效优于鱼油。
发明内容
本发明提供的一种海狗油软胶囊，其特征在于含有以重量计的精制海狗油99％，维生素E1％。将精制海狗油和维生素E的混合液与加热熔化的食用明胶置于胶囊成型机中制成软胶囊，然后经干燥，用75％食用酒精洗粒消毒即得产品。
本发明还提供了含上述组份和配比的海狗油软胶囊在制备调节血脂保健品中的应用。
本发明的海狗油软胶囊，其主要原料为精制海狗油，它是由加拿大进口的，呈浅黄色油状物，具有海狗油固有香味，无异味，无肉眼可见外来杂质，理化指标应符合表1的规定。
表1精制海狗油的理化指标
| 项目 | 指标 |
| 水分及挥发物，％ ≤ | 0.2 |
| 酸价，mg KOH/g ≤ | 2.0 |
| 过氧化值，meq/Kg ≤ | 6.0 |
| 杂质，％ ≤ | 0.1 |
制备本发明海狗油软胶囊使用的维生素E原料应符合GB14756的规定，所用的明胶应符合GB6783的规定。
本发明的海狗油软胶囊色泽为微黄色，内容物为浅黄色至黄色油状物，胶囊表面光泽，具有海狗油固有香味，无异味，无肉眼可见外来杂质。
本发明海狗油软胶囊的理化指标如表2所示，微生物指标如表3所示，功效成份如表4所示。
表2海狗油软胶囊的理化指标
| 项目 | 指标 |
| 净含量，g/粒 | 0.5 |
| 净含量允许负偏差，％ ≤ | 9.0 |
| 水分及挥发物，％ ≤ | 1.0 |
| 崩解时限，min ≤ | 60.0 |
| 酸价，mg KOH/g ≤ | 2.0 |
| 过氧化值，meq/Kg ≤ | 15.0 |
| 维生素E，mg/100g ≥ | 800 |
| 砷(以As计)，mg/Kg ≤ | 1.0 |
| 铅(以pb计)，mg/Kg ≤ | 1.5 |
| 汞(以Hg计)，mg.Kg ≤ | 0.3 |
表3海狗油软胶囊的微生物指标
| 项目 | 指标 |
| 菌落总数，cfu/g ≤ | 1000 |
| 大肠菌群，MPN/100g ≤ | 40 |
| 霉菌计数，cfu/g ≤ | 10 |
| 酵母计数，cfu/g ≤ | 10 |
| 致病菌 | 不得检出 |
| 注：致病菌系指沙门菌、志贺氏菌、金黄色葡萄球菌、溶血性链球菌 | |
表4海狗油软胶囊的功效成份
| 项目 | 指标 |
| 二十二碳六烯酸(DHA)，g/100g ≥ | 7.29 |
| 二十碳五烯酸(EPA)，g/100g ≥ | 5.96 |
| 二十二碳五烯酸(DPA)，g/100g ≥ | 3.55 |
表4中二十二碳六烯酸(DHA)、二十碳五烯酸(EPA)、二十二碳五烯酸(DPA)的检验按GB/T17376、GB/T17377的规定进行。
本发明海狗油软胶囊的毒理学安全性测试如下：
试验动物：昆明种小白鼠，由中国医科大学实验动物部提供，批准证号：辽实动质字[2000]015号。
Wistar大白鼠，由中国医科大学实验动物部提供，批准证号：辽实动质字[2000]015号。
1、小鼠急性毒性试验：选用健康昆明种小白鼠40只，雌雄各20只，进行试验。小鼠体重为18.0-22.0g。每个性别小鼠随机分成四个剂量组，分别为：21.50、10.00、4.64、2.15g/Kg.bw，各剂量组以植物油配制。小鼠灌胃后连续观察14天。记录中毒表现及死亡情况，试验结果如表5所示。
表5小鼠急性毒性试验结果
| 剂量组(g/kg.bw) | 雄性 | 雌性 | ||
| 实验动物数 | 死亡动物数 | 实验动物数 | 死亡动物数 | |
| 21.5010.004.642.15 | 5555 | 0000 | 5555 | 0000 |
厂家推荐成人(体重以60kg计)日摄入定型产品最大量0.033g/kg.bw，最高剂量组给予受试物21.50g/kg.bw，换算相当于成人日摄入定型产品量的652倍。实验观察14天各剂量组未见中毒症状，死亡数为零。受试物对两种性别小鼠的急性毒性LD50均大于15.00g/kg.bw，根据毒性分级，属无毒级。LD50大于厂家推荐成人日摄入量10倍，可进入下一阶段毒理学实验。
2、遗传毒性试验：
①Ames试验：采用经鉴定符合要求的鼠伤寒沙门氏菌组氨酸缺陷型TA97、TA98、TA100、TA102四个试验菌株进行试验。采用多氯联苯(PCB)诱导的大鼠肝匀浆作为体外代谢活化系统。试验设0.313、0.625、1.250、2.500、5.000mg/皿5个剂量，各剂量组以二甲基亚砜(DMSO)稀释，同时设空白对照、溶剂对照、阴性对照(蒸馏水)、和阳性对照(非活化系统TA97、TA98、TA102为敌克松50.0μg/皿，TA100为叠氮钠1.5μg/皿。活化系统采用二氨基芴10.0μg/皿)。在顶层琼脂中加入0.1mL试验菌株增菌液、0.1mL受试物溶液，代谢活化时加入0.5mL S9混合液，混匀后倒入底层培养基平板上。在37℃培养48小时，计数每皿回变菌落数。如果受试物的回变菌落数是自发回变菌落数2倍以上，并具有剂量--反应关系者则定为阳性。每个剂量做三个平行。整套试验在相同条件下重复做两次并分别统计，试验结果如表6、7所示。
表6Ames试验结果(第一次)
| 剂量(mg/皿) | TA97 | TA98 | TA100 | TA102 | ||||
| -S9 | +S9 | -S9 | +S9 | -S9 | +S9 | -S9 | +S9 | |
| 5.0002.5001.2500.6250.313空白对照溶剂对照阴性对照阳性对照 | 135.7±15.0131.3±25.4141.7±37.0124.0±28.5119.0±23.6127.7±28.4141.7±28.9122.7±15.82037.7±78.9 | 124.0±20.8109.3±22.9126.3±27.8128.3±8.7126.0±45.9117.3±28.7140.0±27.2148.0±30.31162.7±162.1 | 41.0±1.737.7±9.940.0±7.040.7±3.241.3±8.346.0±3.647.0±2.638.0±7.2909.0±60.8 | 37.3±11.039.7±5.134.0±1.045.0±4.441.7±8.437.3±6.735.7±1.536.7±7.62482.7±204.1 | 170.3±37.6160.3±27.3135.0±30.9126.3±28.4144.0±26.9144.3±48.0170.0±34.8159.7±32.31763.3±40.3 | 120.0±11.1164.7±40.5176.0±13.2160.7±14.6149.0±2.6153.0±44.5141.3±32.1169.0±20.02479.3±215.1 | 286.7±13.6292.7±18.2285.3±31.2281.3±29.7293.0±27.0301.7±10.5285.7±26.1255.3±7.1895.0±3.0 | 293.7±28.1314.0±5.6286.3±22.4279.7±4.0295.7±22.5279.7±17.0279.7±30.0287.0±40.1267.3±13.5 |
表7Ames试验结果(第二次)
| 剂量(mg/皿) | TA97 | TA98 | TA100 | TA102 | ||||
| -S9 | +S9 | -S9 | +S9 | -S9 | +S9 | -S9 | +S9 | |
| 5.0002.5001.2500.6250.313空白对照溶剂对照阴性对照阳性对照 | 146.0±24.0152.0±12.8123.0±28.8142.7±13.1139.3±33.4150.0±26.5114.3±27.7133.7±37.22088.3±92.5 | 132.0±41.6161.8±31.8159.6±22.2152.3±31.1142.4±26.1154.5±40.4134.2±27.1141.3±40.51414.3±168.3 | 35.0±4.644.7±5.142.3±2.546.7±1.539.3±8.538.3±7.044.7±5.938.3±2.3913.3±29.2 | 39.7±9.034.0±2.040.3±9.042.0±6.133.7±1.535.3±4.541.0±7.044.0±4.42492.3±423.4 | 137.3±46.5136.0±25.2162.0±10.5152.3±21.5129.0±26.2139.0±46.0128.3±1.2153.7±20.82071.3±122.8 | 160.7±45.4169.7±49.9177.3±20.7128.7±18.1157.3±45.8165.0±18.5107.7±3.2162.0±13.72803.3±406.4 | 260.0±26.0299.3±13.0284.7±24.9301.3±14.4285.3±24.0274.3±37.9267.6±22.0281.3±16.5822.0±21.9 | 264.7±20.5303.7±17.2279.3±17.4287.7±26.6254.3±4.9288.7±18.7272.3±25.8272.0±24.1277.3±6.4 |
由表6、7可见，各剂量组回变菌落数均未超过阴性对照组回变菌落数的二倍，亦无剂量--反应关系。说明该受试物对鼠伤寒沙门氏菌组氨酸缺陷型TA97、TA98、TA100、TA102四菌株，加与不加S9，均未呈现遗传毒性。
②小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验：采用间隔24小时两次经口灌胃法进行试验，灌胃量0.2mL/10g体重。用体重26.0-30.0g小白鼠，按体重随机分组，每组10只，雌雄各半。以40mg/kg.bw剂量的环磷酰胺(CP)为阳性对照，熟豆油为阴性对照，受试物剂量为0.94、1.88、3.75、7.50g/kg.bw，用熟豆油配至所需浓度。末次给药后6小时，颈椎脱臼处死动物，取股骨骨髓用小牛血清稀释涂片，甲醇固定，Giemsa染色。在光学显微镜下，每只动物计数1000个嗜多染红细胞(PCE)，微核发生率以含微核的PCE千分率计，试验结果如表8所示。
表8小鼠骨髓PCE微核试验结果
| 性别 | 剂量组(g/kg.bw) | 动物数(只) | 检查PCE数(个) | 含微核PCE数(个) | 微核数(‰) |
| 雄性 | 7.503.751.880.94阴性组阳性组 | 555555 | 5×10005×10005×10005×10005×10005×1000 | 78659124 | 1.41.61.21.01.824.8 |
| 雌性 | 7.503.751.880.94阴性组阳性组 | 555555 | 5×10005×10005×10005×10005×10005×1000 | 56796111 | 1.01.21.41.81.222.2 |
经卡方检验，各剂量组微核率与阴性对照组比较差异无显著性(P＞0.05)，阳性对照组与阴性对照组比较有高度显著性差异(P＜0.01)。该受试物小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验为阴性。
③小鼠精子畸形试验：用体重26.0-30.0g的性成熟雄性小鼠，按体重随机分组。受试物剂量为1.88、3.75、7.50g/kg.bw，用熟豆油配至所需浓度。以40mg/kg.bw环磷酰胺(CP)为阳性对照组，蒸馏水为阴性对照组，熟豆油为溶剂对照。以上各试验组每日灌胃一次，连续5天，灌胃量0.2mL/10g体重，末次灌胃后第30天处死动物，取附睾制片，伊红染色，每组计数5只动物，每只动物计数1000个结构完整的精子，计算畸变精子发生率，试验结果如表9所示。
无定形 无钩 胖 香蕉形 尾
表9小鼠精子畸形试验结果
| 剂量组(g/kg.bw) | 动物数(只) | 观察精子数(个) | 精子畸形类型 | 畸形精子数(个) | 畸形率(‰) | |||||||
| 无定形 | 无钩 | 胖头 | 香蕉形 | 双头 | 双尾 | 尾折叠 | 其它 | |||||
| 7.503.751.88阴性对照组溶剂对照组阳性对照组 | 555555 | 5×10005×10005×10005×10005×10005×1000 | 6144515445163 | 2335233129132 | 1925262125123 | 2117261815112 | 000000 | 000000 | 1111236 | 000000 | 125122126125116566 | 25.024.425.225.023.2113.2 |
经Wilconson秩和检验，各剂量组精子畸形率与阴性对照组比较差异无显著性(P＞0.05)，阳性对照组与阴性对照组比较有高度显著性差异(P＜0.01)。小鼠精子畸形试验为阴性。
3、30天喂养试验
试验动物：选用体重55.0-69.8g Wistar大白鼠。
试验方法：将大鼠随机分为对照组及三个受试物组，厂家推荐成人(体重以60kg计)每日摄入定型产品最大量为2.000g/60kg.bw(按内容物计算)。最高剂量组为B组以成人日最大摄入量的100倍计，即3.333g/kg.bw，以下中、低剂量组以1/5递减，即C组0.667g/kg.bw，相当于成人最大摄入量的20倍，D组0.133g/kg.bw，相当于成人最大摄入量的4倍，每组10只大鼠。将B、C、D三个试验组受试物均匀掺入基础饲料中，含量依此为3.333％、0.667％、0.133％。对照组(A组)喂饲正常基础饲料。大鼠饲料摄入量按体重10％计算，单笼喂养，自由饮食，记录大鼠进食量、体重，连续观察30天。
临床观察：动物的一般表现、行为、中毒症状、及死亡情况，每周称一次体重、摄入量，计算食物总利用率。
测血常规及生化指标：于试验第31d尾静脉取血，采用日本CA-300血球自动计数仪，测定血红蛋白(HGB)、红细胞(RBC)、白细胞(WBC)。股动脉取血，采用北京中生生物工程高技术公司提供的试剂盒、荷兰VITALAB-MICRO生化分析仪测定谷丙转氨酶(GPT)、谷草转氨酶(GOT)、尿素氮(BUN)、肌酐(CR)、血糖(GLU)、总蛋白(TP)、白蛋白(ALB)、胆固醇(CHO)、甘油三脂(TG)。
病理解剖：大体观察、脏器系数、病理组织检查(肝、肾、脾、胃及十二指肠)
试验结果如表10、11、12、13、14所示。
1、对大鼠体重的影响如表10所示：
表10 30天喂养试验大鼠体重测定结果
| 剂量组 | 动物数(只) | 始重(g) | 第1周体重(g) | 第2周体重(g) | 第3周体重(g) | 第4周体重(g) | |
| 雄 | ABCD | 10101010 | 65.0±3.862.1±4.164.2±5.662.4±4.1 | 91.6±7.492.3±9.598.4±9.393.5±5.7 | 128.1±15.6124.6±16.8135.6±9.6129.1±14.1 | 173.5±15.1169.8±15.6177.1±19.3176.7±14.1 | 206.9±18.8209.7±17.1217.9±18.3215.4±14.5 |
| 雌 | A | 10 | 60.8±4.9 | 86.8±7.4 | 132.0±9.5 | 165.7±6.5 | 193.2±9.9 |
| BCD | 101010 | 62.7±4.661.3±4.660.5±4.2 | 90.7±6.684.0±5.088.7±8.8 | 133.9±10.0127.9±12.1125.1±11.3 | 166.4±13.1161.6±18.5156.0±10.3 | 193.0±16.2190.0±20.5182.2±14.6 |
由表10可见，各组动物生长活动正常。各剂量组动物体重与对照组比较，差异无显著性(P＞0.05)。
2、对大鼠总食物利用率的影响如表11所示：
表11 30天喂养试验总食物利用率测定结果
| 性别 | 剂量组 | 动物数(只) | 体重增重(g) | 进食量(g) | 食物利用率(％) |
| 雄 | ABCD | 10101010 | 141.9±17.3147.5±14.9153.8±14.9153.0±12.9 | 516.9±55.0512.5±57.2548.3±47.7533.8±46.9 | 27.528.828.128.7 |
| 雌 | ABCD | 10101010 | 132.5±11.5130.4±16.0128.7±19.1121.7±14.3 | 502.4±25.4513.1±46.4487.4±47.6476.1±34.9 | 26.425.426.325.5 |
由表11可见，受试物掺入饲料中喂饲大鼠30天，动物未出现拒食现象，各剂量组动物食物利用率与对照组比较差异无显著性(P＞0.05)。
3、血液学检查结果如表12所示：
表12 30天喂养试验血液学检查结果
| 性别 | 剂量组 | 动物数(只) | 血红蛋白(g/dL) | 红细胞计数(×1012/L) | 白细胞计数(×109/L) |
| 雄 | ABCD | 10101010 | 15±414±313±313±4 | 9.89±1.449.96±1.4010.46±1.1210.29±1.12 | 8.8±1.08.9±1.19.6±1.09.6±1.0 |
| 雌 | ABCD | 10101010 | 12±214±313±313±3 | 10.60±1.0210.29±1.029.89±1.239.67±1.17 | 8.9±1.39.1±0.89.8±1.09.8±1.1 |
由表12可见，各剂量组的血红蛋白(HGB)、红细胞(RBC)、白细胞(WBC)与对照组比较差异无显著性(P＞0.05)。
4、30天喂养试验生化检验结果如表13所示：
表13 30天喂养试验生化检验结果
| 性别 | 剂量组 | 动物数(只) | GPT(U/L) | BUN(mmol/L) | GOT(U/L) | CR(μmol/L) | GLU(mmol/L) | TP(g/dL) | AIB(g/L) | CHO(mmol/L) | TG(mmol/L) |
| 雄 | ABCD | 10101010 | 80±1282±1573±1481±12 | 6.328±0.8336.578±0.8536.364±0.7576.041±0.971 | 204±29197±19307±55309±15 | 116.4±13.0105.5±14.4120.6±14.3119.2±10.4 | 9.30±1.058.53±1.459.41±2.288.35±1.62 | 10.5±0.611.0±0.810.6±0.510.9±0.8 | 45.9±4.445.1±2.150.8±3.045.6±1.9 | 2.62±0.432.49±0.312.65±0.392.48±0.45 | 0.99±0.191.10±0.380.93±0.190.97±0.23 |
| 雌 | ABCD | 10101010 | 73±1462±980±1184±14 | 6.386±0.6586.558±0.7816.309±0.8066.575±0.919 | 215±53213±33227±55222±80 | 116.4±11.5111.9±16.5121.9±16.1114.4±12.2 | 8.14±1.658.63±0.678.92±1.358.00±1.39 | 10.5±0.610.6±0.610.5±0.510.8±0.6 | 47.5±3.243.9±1.947.8±4.444.8±3.3 | 2.68±0.402.80±0.552.59±0.322.74±0.24 | 1.00±0.241.07±0.460.90±0.250.97±0.25 |
由表13可见，各剂量组的谷丙转氨酶(GPT)、谷草转氨酶(GOT)、尿素氮(BUN)、肌酐(CR)、血糖(GLU)、总蛋白(TP)、白蛋白(ALB)、胆固醇(CHO)、甘油三脂(TG)与对照组比较差异无显著性(P＞0.05)。
5、受试物对大鼠脏体比的影响：
表14 30天喂养试验大鼠脏体比的测定结果
| 性别 | 剂量组 | 动物数(只) | 肝/体(％) | 脾/体(％) | 肾/体(％) |
| 雄 | ABCD | 10101010 | 3.713.743.913.57 | 0.230.230.260.22 | 0.790.770.760.75 |
| 雌 | ABCD | 10101010 | 3.653.663.613.76 | 0.270.230.230.22 | 0.800.830.760.81 |
由表14可见，各剂量组与对照组比较差异无显著性(P＞0.05)。
6、病理组织学检查：
各组动物大体观察未发现异常，解剖时亦未发现膀胱、肝总管结石，镜下观察动物的肝、脾、肾、胃、十二指肠均未见有意义的病理改变。
试验结果表明该受试物掺入饲料中喂饲大鼠30天，对各剂量组动物体重增长、食物利用率，血常规、血生化指标、脏器系数等各项指标均未见不良影响。病理组织学观察、肝、脾、肾、胃、十二指肠均未见有意义的病理改变。
本发明海狗油软胶囊具有调节血脂作用的试验如下：
1、材料和方法：
1.1样品：淡黄色液体透明软胶囊装，人体推荐量为2000mg/60Kg.bw.d。
1.2仪器和试剂：采用意大利产AUTOLAB-PW/4000全自动生化分析仪测定，试剂盒：TC(血清胆固醇)、TG(甘油三酯)、HDL-C(高密度脂蛋白)由北京中生生物工程高技术公司提供。
1.3试验动物：由中国医科大学实验动物中心提供的雄性Wistar大鼠60只，体重150.1-180.0克，批准号为辽实动第015号。
1.4高脂饲料：基础饲料79％，胆固醇1％，猪油10％，蛋黄粉10％。
1.5实验方法：以基础饲料喂饲大鼠观察5天后，将所有实验动物取尾血，测定TC，根据TC水平将动物随机分为6组：高脂对照组、空白对照组，溶剂豆油对照组及3个受试物组(33、333、1000mg/kg.bw.d，相当于人体推荐量的1、10、30倍)。受试物用豆油配至所需浓度。自正式试验开始，各受试组及高脂对照组换用高脂饲料，同时各受试物组灌胃给予不同剂量的海狗油软胶囊，高脂对照组及溶剂对照组灌胃给予同体积的豆油，空白对照组给予同体积的蒸馏水。灌胃量按1mL/100g.bw.d计算，连续灌胃30天，于试验的第14天和28天取尾血测定各项血脂指标。
2、结果
2.1海狗油软胶囊对大鼠体重的影响：见表15
表15海狗油软胶囊对大鼠体重的影响
| 剂量(mg/kg.bw) | 动物数(只) | 试验前体重(g) | 试验末期体重(g) | 试验末期增重(g) | P值 |
| 333331000空白对照溶剂对照高脂对照 | 101010101010 | 165.1±8.2163.0±8.0166.7±9.7166.1±10.3165.2±10.8164.1±11.0 | 317.3±28.7311.2±27.4314.3±25.1280.4±32.2286.6±27.7324.7±36.6 | 152.2±26.8148.2±33.1147.7±24.1114.3±28.3121.5±29.1160.7±36.7 | 0.54200.41760.33500.00290.0110-- |
由表15可见，以33、333、1000mg/kg.bw剂量的海狗油软胶囊灌胃给予大鼠30天，各组大鼠生长、活动正常。各剂量组体重与高脂对照组比较，差异均无显著性(P＞0.05)。空白对照组及溶剂对照组大鼠的体重在试验末期低于高脂对照组(P＜0.05)，这可能与高脂饲料营养价值高于基础饲料有关。
2.2海狗油软胶囊对大鼠血清TC的影响：见表16
表16海狗油软胶囊对大鼠血清TC的影响(mmol/L)
| 剂量(mg/kg.bw) | 动物数(只) | 试验前 | 试验中期 | 试验末期 | |||
| X±S | P值 | X±S | P值 | X±S | P值 | ||
| 333331000空白对照溶剂对照高脂对照 | 101010101010 | 1.83±0.201.92±0.261.91±0.251.93±0.141.96±0.131.97±0.17 | 0.12400.55100.48500.48300.8660---- | 2.07±0.252.07±0.212.05±0.251.97±0.101.96±0.102.11±.010 | 0.62500.62500.41400.00390.0018---- | 2.46±0.412.39±0.322.38±0.412.02±0.112.03±0.132.69±0.41 | 0.11800.04530.03530.00000.0000---- |
由表16可见，各组大鼠在试验前血清胆固醇(TC)水平均衡；以33、333、1000mg/kg.bw.d剂量的海狗油软胶囊灌胃给予大鼠30天，高脂对照组在试验中期与末期均明显高于空白对照组及溶剂对照组(P＜0.01)，说明本试验高脂动物模型成立；333mg/kg.bw.d及1000mg/kg.bw.d剂量组大鼠的TC与高脂对照组比较在试验末期均明显降低(P＜0.05)，说明海狗油软胶囊有降低大鼠TC的作用。
2.3海狗油软胶囊对大鼠血清TG的影响：见表17。
表17海狗油软胶囊对大鼠血清TG的影响(mmol/L)
| 剂量(mg/kg.bw) | 动物数(只) | 试验中期 | 试验末期 | ||
| X±S | P值 | X±S | P值 | ||
| 333331000空白对照溶剂对照高脂对照 | 101010101010 | 1.48±0.391.51±0.431.26±0.280.99±0.281.50±0.321.50±0.56 | 0.89500.99500.16400.00540.0021---- | 1.53±0.310.35±0.331.26±0.251.06±0.241.08±0.261.69±0.59 | 0.31200.03570.00780.00020.0002---- |
由表17可见，以33、333、1000mg/kg.bw.d剂量的海狗油软胶囊给予大鼠30天，高脂对照组TG在试验中期与末期均明显高于空白对照组及溶剂对照组(P＜0.01)，说明本试验高脂动物模型成立；333mg/kg.bw.d及1000mg/kg.bw.d剂量组大鼠的TG与高脂对照组比较在试验末期均明显降低(P＜0.05)；说明海狗油软胶囊有降低大鼠TG的作用。
2.4海狗油软胶囊对大鼠血清HDL-C的影响：见表18。
表18海狗油软胶囊对大鼠血清HDL-C的影响(mmol/L)
| 剂量(mg/kg.bw) | 动物数(只) | 试验中期 | 试验末期 | ||
| X±S | P值 | X±S | P值 | ||
| 33 | 10 | 1.18±0.25 | 0.9710 | 1.17±0.23 | 0.9080 |
| 3331000空白对照溶剂对照高脂对照 | 1010101010 | 1.16±0.171.14±0.280.94±0.261.12±0.171.18±0.26 | 0.92100.75900.01670.5650---- | 1.13±0.141.16±0.170.93±0.211.09±0.161.16±0.23 | 0.75500.93500.01640.4790---- |
由表18可见，以33、333、1000mg/kg.bw.d剂量的海狗油软胶囊灌胃给予大鼠30天，各剂量组大鼠的HDL-C与高脂对照组比较无显著差异(P＞0.05)，说明本试验所设剂量海狗油软胶囊对大鼠HDL-C未见显著影响。
3、结论：
以33、333、1000mg/kg.bw.d剂量的海狗油软胶囊灌胃给予大鼠30天；333mg/kg.bw.d及1000mg/kg.bw.d剂量组大鼠的TC与高脂对照组比较在试验末期均明显降低(P＜0.05＝，333mg/kg.bw.d及1000mg/kg.bw.d剂量组大鼠的TG在试验末期与高脂对照组比较均明显降低(P＜0.05＝；由此可判定，海狗油软胶囊具有调节血脂作用。
本发明海狗油软胶囊稳定性检测结果如表19所示：
表19海狗油软胶囊稳定性检测结果
| 批号 | 20010520 | 20010601 | 20010610 |
| 第0个月稳定性试验 | |||
| 菌落总数，cfu/g大肠菌群，MPN/100g致病菌霉菌计数，cfu/g酵母菌计数，cfu/g二十碳五烯酸，％二十二碳六烯酸，％二十二碳五烯酸，％酸价过氧化值，meq/kg维生素E，mg/100g铅，mg/kg砷，mg/kg汞，mg/kg水分及挥发物，％ | ＜10＜30未检出＜10＜106.247.563.741.2610.28851＜0.12＜0.1＜0.0030.07 | ＜10＜30未检出＜10＜106.087.293.821.2810.25837＜0.12＜0.1＜0.0030.12 | ＜10＜30未检出＜10＜105.967.363.771.2610.26838＜0.12＜0.1＜0.0030.09 |
| 第1个月稳定性试验 保存条件：相对湿度75％ 温度37℃ | |||
| 菌落总数，cfu/g | ＜10 | ＜10 | ＜10 |
| 大肠菌群，MPN/100g致病菌霉菌计数cfu/g酵母菌计数，cfu/g二十碳五烯酸，％二十二碳六烯酸，％二十二碳五烯酸，％酸价过氧化值，meq/kg维生素E，mg/100g铅，mg/kg砷，mg/kg汞，mg/kg水分及挥发物，％ | ＜30未检出＜10＜106.277.633.821.2810.30840＜0.12＜0.1＜0.0030.09 | ＜30未检出＜10＜106.027.363.941.2810.26828＜0.12＜0.1＜0.0030.11 | ＜30未检出＜10＜106.207.703.641.2610.38830＜0.12＜0.1＜0.0030.10 | |
| 第2个月稳定性试验 保存条件：相对湿度75％ 温度37℃ | ||||
| 菌落总数，cfu/g大肠菌群，MPN/100g致病菌霉菌计数，cfu/g酵母菌计数，cfu/g二十碳五烯酸，％二十二碳六烯酸，％二十二碳五烯酸，％酸价过氧化值，meq/kg维生素E，mg/100g铅，mg/kg砷，mg/kg汞，mg/kg水分及挥发物，％ | ＜10＜30未检出＜10＜106.367.543.721.2810.38836＜0.12＜0.1＜0.0030.09 | ＜10＜30未检出＜10＜106.197.673.621.2710.28831＜0.12＜0.1＜0.0030.13 | ＜10＜30未检出＜10＜106.117.823.551.2710.36834＜0.12＜0.1＜0.0030.11 | |
| 第3个月稳定性试验 保存条件：相对湿度75％ 温度37℃ | ||||
| 菌落总数，cfu/g大肠菌群，MPN/100g致病菌霉菌计数，cfu/g酵母菌计数，cfu/g二十碳五烯酸，％二十二碳六烯酸，％二十二碳五烯酸，％ | ＜10＜30未检出＜10＜106.497.683.82 | ＜10＜30未检出＜10＜106.257.523.94 | 30＜30未检出＜10＜106.157.323.64 | |
| 酸价过氧化值，meq/kg维生素E，mg/100g铅，mg/kg砷，mg/kg汞，mg/kg水分及挥发物，％ | 1.3010.43819＜0.12＜0.1＜0.0030.10 | 1.3210.32835＜0.12＜0.1＜0.0030.13 | 1.2810.46834＜0.12＜0.1＜0.0030.12 |
具体实施方式：
下面实施例是为了进一步说明本发明。
实施例1
取加拿大进口精制海狗油99kg、维生素E1kg，制成每粒为0.5g的胶囊200000粒，其中每100g含有效成份为二十二碳六烯酸(DHA)7.29g、二十碳五烯酸(EPA)5.96g、二十二碳五烯酸(DPA)3.55g，对血脂偏高者口服每日2次，每次2粒，具有明显的调节血脂功效。
Claims (1)
1、海狗油软胶囊在制备调节血脂的保健品中的应用，所述的海狗油软胶囊的有效成分是由以重量计的99％精制海狗油和1％维生素E组成。
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