CN1161151C - 内皮抑素的新用途及其应用 - Google Patents
内皮抑素的新用途及其应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN1161151C CN1161151C CNB011037091A CN01103709A CN1161151C CN 1161151 C CN1161151 C CN 1161151C CN B011037091 A CNB011037091 A CN B011037091A CN 01103709 A CN01103709 A CN 01103709A CN 1161151 C CN1161151 C CN 1161151C
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- endostatin
- cell
- cartilage
- colyone
- endothelial
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
本发明公开了内皮抑素的新用途及其应用,具体表现在,内皮抑素具有促进软骨细胞生长的作用,具有抑制基质外金属蛋白酶基因表达及其活性的作用,具有促进基质外金属蛋白酶抑制剂TIMP1基因表达及其活性的作用。在内皮抑素上述功能的基础上,可以生产以内皮抑素为活性成分的治疗关节炎及类风湿的药物,具有广阔的应用前景。
Description
技术领域
本发明涉及内皮抑素的新用途及其应用。
背景技术
内皮抑素(endostatin)最初发现于小鼠血管内皮瘤细胞EOMA的培养上清中,具有强大的抑制新血管生成和抑制肿瘤形成、转移的功能。自发现之初,就以其强大的抑瘤活性引起广泛关注。作为肿瘤治疗辅助药物,内皮抑素在美国已经开始一期临床实验观察,但其作用机理还未阐明。目前研究认为,内皮抑素抑制肿瘤的活性,是由于抑制了血管内皮细胞的增殖,即抑制新血管的形成,从而切断肿瘤的营养供应,饿死了肿瘤。至今为止关于内皮抑素的生物活性的报道都是围绕抑制新血管形成、抑制肿瘤生长方面。并且据国外报道,内皮抑素的活性并不稳定,不同研究小组的报道也有矛盾之处。我们认为,内皮抑素的作用不一定局限于血管内皮细胞,可能对更广泛的细胞类型,特别是那些与血管内皮细胞有共同祖先来源的细胞类型也会有作用。
另一方面,软骨组织是机体的重要组成部分,以软骨组织损伤为主要表现形式的关节炎、类风湿等病症长期以来给人类及牲畜等造成了巨大的痛苦和威胁。
发明内容
本发明的目的是提供内皮抑素的新用途。
本发明的另一个目的是提供内皮抑素在新用途基础上的应用。
本发明证实,内皮抑素具有保护软骨的用途。
具体表现在,所述内皮抑素具有促进软骨细胞生长的作用;具有抑制基质外金属蛋白酶(MMP9)基因的表达及其活性的作用;具有促进基质外金属蛋白酶抑制剂TIMP1基因表达的,提高抑制剂TIMP1活性的作用。
在内皮抑素上述功能的基础上,可以生产以内皮抑素为活性成分的治疗关节炎及类风湿的药物。内皮抑素在制备治疗关节炎的药物,治疗类风湿的药物中有广阔的应用前景。
本发明的实验结果表明,内皮抑素可促进软骨细胞的增殖,促进软骨特异基质蛋白胶原II的表达,对软骨细胞具有保护作用。基质外金属蛋白酶(MMP9)会造成关节炎发生时软骨基质的过度降解,引起软骨的损伤,而内皮抑素具有抑制基质外金属蛋白酶(MMP9)基因的表达及其活性的作用,并且可促进MMP9抑制剂TIMP1基因的表达,提高抑制剂TIMP1的活性,还具有维持软骨细胞表型的功能,因而起到对软骨的保护作用,阻止关节炎的发生,可制成治疗关节炎、类风湿的药物,给广大的关节炎、类风湿患者带来了福音。
下面结合附图及具体实施例对本发明作进一步说明。
附图说明
图1为所提取的内皮抑素抑制bFGF刺激的人脐静脉血管内皮细胞增殖的直方图。
图2为内皮抑素刺激原代培养的兔软骨细胞[3H]-TdR掺入的直方图。
图3为内皮抑素处理的细胞RNA的Northern blotting结果。
图4为无血清培养基加内皮抑素培养的兔软骨细胞
图5为无血清培养基加PBS培养的兔软骨细胞
图6为无血清培养基加PBS培养的人软骨肉瘤细胞sw1353
图7为无血清培养基加内皮抑素培养的人软骨肉瘤细胞sw1353
图8为胎牛血清培养基加PBS培养的人软骨肉瘤细胞sw1353
首先,介绍本发明实施例中所用到的实验材料的获得。
具体实施方式
一、人脐静脉血管内皮细胞(HUVEC)的分离培养
无菌条件下取新鲜人脐带,用含抗生素的PBS缓冲液洗去脐静脉中的血细胞,用止血钳夹住一端,灌入0.1%胶原酶II,37℃消化20h后PBS洗两遍,合并消化液和PBS,加15%胎牛血清,900r/h离心10h,收集细胞,重悬于含20%胎牛血清的IMDM培养基中,记数105接种于明胶铺板的六孔培养板上。第二天除去悬浮细胞换IMDM完全培养基(含,20%胎牛血清;0.9%肝素;1%BSA;2ng/mlbFGF),37℃、5%CO2培养至长满后1∶5传代。用VIII因子免疫组化鉴定纯度,第3-8代HUVEC被用来做生物活性实验。
二、内皮抑素的获得与鉴定
内皮抑素的提取可以用PCR的方法从人胎肝cDNA文库中扩增出人内皮抑素的cDNA,测序正确后转入毕赤巴斯德)(pichia pastoris)甲醇酵母,获得高效可溶型表达,用肝素亲和层析的方法进行纯化,得到产物。(冯怡等,2001(2).人内皮抑素在毕赤酵母中的表达及其纯化与生物功能研究。生物工程学报)。如图1所示,以人脐静脉血管内皮细胞为实验材料,通过以加入缓冲液PBS为对照的加入不同浓度的人碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)与内皮抑素(分别为bFGF10ng;bFGF10ng+内皮抑素50ng;bFGF10ng+内皮抑素500ng;bFGF10ng+内皮抑素lug)所进行的实验证实,在加入相同剂量的bFGF的情况下,随着加入内皮抑素剂量的增加,人脐静脉血管内皮细胞的增长受到抑制,方差显示效果稳定,证明所提取出的内皮抑素是正常的。所提取出的内皮抑素的可信性还可以通过MTT比色试验及鸡胚绒毛尿囊膜血管生成实验得到证实(冯怡等,2001(2).人内皮抑素在毕赤酵母中的表达及其纯化与生物功能研究。生物工程学报)。
三、关节软骨细胞的原代培养
取一月龄的新西兰幼兔关节软骨,切成1mm3大小,用含青霉素(50万单位/升)链霉素(50万单位/生)的10mM PBS缓冲液洗净。按顺序用0.01%透明质酸酶37℃消化40分钟,去消化液;0.25%胰蛋白酶37℃消化1小时,去消化液;0.2%胶原酶II型37℃消化30分钟,去消化液;0.2%胶原酶II型消化90分钟,吹打散开,收集消化液,1000转/分离心3分钟,去上清,重悬于含12%胎牛血清的DMEM/F-12(1∶1)培养基中,在37℃、5%CO2、饱和湿度的培养箱中培养,每3天换液一次,待细胞长满后用0.25%胰酶消化传代,第3-5代细胞被用来进行试验。可用苏木精-亮绿-番红花“O”染色和软骨细胞特异的胶原II免疫组化鉴定软骨细胞纯度。
实施例1、[3H]-TdR标记掺入实验
取状态良好的兔软骨细胞,用0.25%胰酶消化,吹打、离心后重悬与一定体积的培养基中,调节到100ul 5×104个细胞,按每孔100ul接种于96孔板。贴壁过夜后换含2%血清的培养基,继续培养24小时,然后加入试验样品每种处理平行三个,继续培养20小时,然后加入[3H]-TdR(5μ Ci per well),4小时后吸去培养液,PBS洗去残存培养基,加入胰酶消化至脱落,收集细胞到玻璃纤维膜上,烤干后收于5ml闪烁液中,用液闪仪测量,所得数据进行统计学分析。如图2所示,左侧的直方图是加入PBS缓冲液的对照组,右侧的直方图是加入10ug/ml内皮抑素的实验组,从图中可以看出,处理组与对照组兔软骨细胞增殖速度的差异达到极显著水平(P<0.01),说明内皮抑素有显著的促进软骨细胞生长的功能。
实施例2、细胞周期检测
将状态良好的兔软骨细胞用0.25%胰酶消化,吹打、离心后重悬于一定体积的培养基中,正常传代至50ml细胞培养瓶中,培养至铺满瓶底的80%,换无血清培养基,继续培养24小时,分别加入PBS对照,内皮抑素10ug。继续培养16小时,用0.25%胰酶+0.04MEDTA消化至脱落,加培养基补齐到5ml,900转/分钟离心10分钟,吸弃上清,加5mlPBS重悬细胞,再次离心900转/分钟10分钟,吸净上清,用75%4℃冰冷的乙醇5ml重悬固定细胞,放于4℃保存至PI染色,染色前用PBS洗净细胞,最后一次离心后吸净上清,加入100ul 0.1mg/ml RNA酶37℃闭光孵育20分钟,加入100ul50ug/ml碘化丙啶(PI)染色15分钟后加入PBS缓冲液至500ul,1小时内流式细胞仪检测。结果如下:
G0-G1(%) S(%) G2-M(%)
PBS 84.38 8.89 6.73
Endo(5ug/ml) 69.17 24.21 6.77
从上述结果可以看出,加入内皮抑素后S期细胞增多,G0-G1期细胞减少,证实内皮抑素可刺激软骨细胞进入细胞周期,即促进软骨细胞的生长。
实施例3、RNA与探针杂交(Northern blotting)实验
将状态良好的兔软骨细胞接种于75cm2的细胞培养瓶中,在含12%FCS的培养基中培养至铺满瓶底80%,换含2%胎牛血清的培养基,24小时后分别加入内皮抑素1ug/ml和PBS对照,继续培养48小时。用Trizol提取细胞总RNA。取20ugRNA上样于低甲醛琼脂糖凝胶中,在1×MOPS缓冲液中电泳后转移至硝酸纤维素膜,80℃干烤。用Promega公司的Primer-a-gene标记试剂盒标记探针,GAPDH为内标,68℃杂交过夜。2×SSC,0.1%SDS室温下洗膜2次,0.1×SSC,0.1%SDS60℃洗膜2次,每次15分钟。结果如图3所示,图中的各样品均用GAPDH标定,各样品上样量一致,其中,A带为基质外金属蛋白酶(MMP9)抑制剂TIMP1的Northern blotting结果;B带为软骨特异基质蛋白胶原II(Collagen II)的Northern blotting结果;C带为基质外金属蛋白酶(MMP9)的Northern blotting结果;D带为GAPDH对照;A、B、C、D带中的1均为未经内皮抑素处理的细胞的RNA Northern blotting结果,2均为经内皮抑素处理的细胞的RNA Northern blotting结果。从图中可以看出,内皮抑素可促进软骨细胞特异基质蛋白胶原II的表达,即可促进软骨细胞的增殖,对软骨细胞具有保护作用;内皮抑素还可抑制基质外金属蛋白酶(MMP9)基因的表达,并抑制其活性,进而防止关节炎发生时软骨基质的过度降解,避免损伤的发生;同时,内皮抑素还可以促进MMP9抑制剂TIMP1基因的表达,并提高其活性,从而抑制MMP9的作用,关节炎发生时可以起到间接地保护软骨的作用。
实施例4、内皮抑素可维持无血清培养条件下软骨细胞的正常生长
原代培养的兔软骨细胞需在加有血清的培养基中才能正常生长,细胞呈梭形,当不加血清时不能正常生长,细胞成圆形,很快死亡。在无血清的培养基中加入10ug/ml的内皮抑素,用该培养基来培养生长情况良好的兔软骨细胞,18小时后,如图4所示,兔软骨细胞形态正常,同时,在无血清的培养基中加入10ug/ml的PBS缓冲液来培养生长情况良好的兔软骨细胞,作为上述实验的对照,18小时后,如图5所示,兔软骨细胞已成圆形并死亡。可见,内皮抑素可使无血清培养的软骨细胞维持正常的形态,和正常的生长,对软骨有保护作用。
实施例5、内皮抑素可维持无血清培养条件下人软骨肉瘤细胞sw1353的正常生长
人软骨肉瘤细胞sw1353需在加有血清的培养基中才能正常生长,细胞呈梭形,当不加血清时不能正常生长,细胞成圆形,很快死亡。在无血清的培养基中加入10ug/ml的内皮抑素,用该培养基来培养人软骨肉瘤细胞sw1353,12小时后,如图7所示,人软骨肉瘤细胞sw1353形态正常,与如图8所示的,在10%胎牛血清培养基中(加入10ug/mlPBS缓冲液)培养12小时的人软骨肉瘤细胞sw1353形态相同,同时,如图6所示,在加入10ug/mlPBS缓冲液的无血清培养基中培养的人软骨肉瘤细胞sw1353,培养12小时时已成圆形并死亡。说明内皮抑素对人的软骨具有保护作用。
Claims (1)
1、内皮抑素在制备治疗关节炎及类风湿的药物中的应用。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CNB011037091A CN1161151C (zh) | 2001-02-08 | 2001-02-08 | 内皮抑素的新用途及其应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CNB011037091A CN1161151C (zh) | 2001-02-08 | 2001-02-08 | 内皮抑素的新用途及其应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN1368382A CN1368382A (zh) | 2002-09-11 |
CN1161151C true CN1161151C (zh) | 2004-08-11 |
Family
ID=4653429
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CNB011037091A Expired - Fee Related CN1161151C (zh) | 2001-02-08 | 2001-02-08 | 内皮抑素的新用途及其应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN1161151C (zh) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9879052B2 (en) | 2011-12-27 | 2018-01-30 | Hanmei Xu | Integrin-blocking polypeptides and uses thereof |
CN102850443B (zh) * | 2011-12-27 | 2014-04-16 | 中国药科大学 | 整合素阻断剂多肽及其应用 |
-
2001
- 2001-02-08 CN CNB011037091A patent/CN1161151C/zh not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN1368382A (zh) | 2002-09-11 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Nagata et al. | Conditioned medium from periodontal ligament stem cells enhances periodontal regeneration | |
Nakajima et al. | Inhibition by retinoic acid of type IV collagenolysis and invasion through reconstituted basement membrane by metastatic rat mammary adenocarcinoma cells | |
Melchiori et al. | Inhibition of tumor cell invasion by a highly conserved peptide sequence from the matrix metalloproteinase enzyme prosegment | |
Heath et al. | Human gingival tissues in culture synthesize three metalloproteinases and a metalloproteinase inhibitor | |
Algermissen et al. | Mast cell chymase and tryptase during tissue turnover: analysis on in vitro mitogenesis of fibroblasts and keratinocytes and alterations in cutaneous scars | |
CN108714156A (zh) | 人脐带来源的间充质干细胞培养物或其培养物上清的用途 | |
CN108586575A (zh) | 一种多肽及其皮肤修复功能的应用 | |
CN110540586B (zh) | 一种皮肤创伤修复肽rl-rf10及其提纯方法与应用 | |
Evans et al. | Release of neutral proteinases from mononuclear phagocytes and synovial cells in response to cartilaginous wear particles in vitro | |
CN1161151C (zh) | 内皮抑素的新用途及其应用 | |
JP2021072789A (ja) | 幹細胞材料およびその製造方法 | |
Williams III et al. | Septic arthritis | |
Ries et al. | Matrix metalloproteinase-9 expression and release from skin fibroblasts interacting with keratinocytes: Upregulation in response to sulphur mustard | |
Mikuni-Takagaki et al. | Shedding of hyaluronate from the cell surface of Rous sarcoma virus-transformed chondrocytes. | |
Zucker et al. | Diversity of human pancreatic cancer cell proteinases: role of cell membrane metalloproteinases in collagenolysis and cytolysis | |
Tilotta et al. | Mesenchymal stem cell-derived secretome enhances nucleus pulposus cell metabolism and modulates extracellular matrix gene expression in vitro | |
Liu et al. | Cytochalasin D promotes osteogenic differentiation of MC3T3-E1 cells via p38-MAPK signaling pathway | |
CN106434543A (zh) | 一种培养基及细胞培养方法 | |
Jiang et al. | Regulation Mechanisms and Maintenance Strategies of Stemness in Mesenchymal Stem Cells | |
Yaoi | Growth-inhibitory glycopeptides obtained from the cell surface of cultured chick embryo fibroblasts | |
KR102307115B1 (ko) | 시프로플록사신에 의한 줄기세포의 연골전구세포로의 유도 및 연골세포로의 분화 | |
Dabbous et al. | Macrophage and lymphocyte potentiation of syngeneic tumor cell and host fibroblast collagenolytic activity in rats | |
Li et al. | Effects of dendrobium polysaccharides on the functions of human skin fibroblasts and expression of matrix metalloproteinase-2 under high-glucose conditions | |
Halper et al. | Modulation of growth of human carcinoma SW‐13 cells by heparin and growth factors | |
Yang et al. | Effect of black-pigmented bacteria on the plasminogen-plasmin system in human pulp and osteoblastic cells |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
C17 | Cessation of patent right | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20040811 Termination date: 20130208 |