CN111004847A - 一种基于copb2与nupr1的前列腺癌预测系统 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及生物医疗技术领域,尤其涉及一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,所述系统涉及以下步骤:S1、研究COPB2、NUPR1单个或者组合的表达量与临床PCA的关系,以及与CRPC患者进展及预后相关性;S2、探索COPB2与NUPR1在前列腺癌中互相调控的关系,并探索对肿瘤增殖和侵袭的影响及其关键机制。通过本方法可为前列腺癌诊断和评估提供新指标,另一方面可明确COPB2与NUPR1蛋白互相调控的关系和具体机制,从而为将来前列腺癌的诊断治疗提供新策略。
Description
技术领域
本发明涉及生物医疗技术领域,尤其涉及一种基于COPB2与 NUPR1的前列腺癌预测系统。
背景技术
根据美国癌症协会2018年预测数据,前列腺癌(prostate cancer,PCA)仍是男性最常见的恶性肿瘤,其死亡率仅次于肺癌。 我国2015年新发现前列腺癌患者6.03万人,新增死亡人数为2.66 万人。依据2017年2月国家癌症中心最新数据显示,前列腺癌发病 率随着城市化发展程度逐渐上升,大城市前列腺癌发病率为 17.26/10万(居大城市男性癌症发病率第五位),中等城市8.51/10 万,小城市<5/10万,大城市发病率几乎是小城市的4倍,前列腺 癌已成为威胁我国男性健康的重大疾病。
在前列腺癌发生的早期,雄激素受体(Androgen receptor, AR)通路发挥关键作用,雄激素阻断治疗对80%以上的患者有效, 但经过中位时间14-30个月后,几乎所有患者都将逐渐发展为雄激 素非依赖状态,即去势抵抗性前列腺癌(Castration refractoryprostate cancer,CRPC),这是晚期前列腺癌患者死亡的主要原因, 中位生存时间小于20个月。CRPC发生机制相当复杂,目前研究表 明除AR通路发挥重要作用外,肿瘤相关通路PI3K/Akt,Ras/MAPK,TGF-β等均参与CRPC的进程。尽管多西紫 杉醇/强的松和AR阻断药(如阿比特龙、蒽杂鲁胺)能延缓CRPC进 展,但临床效果有限,因此深入研究疾病发展机理,探索新靶标及 开发有效的治疗方案依然是目前研究的热点和难点。
COPI是由7个亚基构成的七聚体复合物【亚基:ε-、α- 、β’-(COPB2)、β-、γ-、δ-、ζ-】,目前研究发现,膜泡转 运系统的正常运行是细胞发挥功能的基础,膜泡转运相关的调节蛋 白在癌症发生发展中发挥重要作用。NUPR1属于高活动性,分泌型 多肽类转录调节因子,在细胞应激反应中发挥重要作用并参与肿瘤 的转移过程。因此我们提出了一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌 预测系统。
发明内容
本发明的目的是为了解决现有技术中存在的缺点,而提出的一 种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统。
为了实现上述目的,本发明采用了如下技术方案:
一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,包括以下步骤:
S1、研究COPB2、NUPR1单个或者组合的表达量与临床PCA的关 系,以及与CRPC患者进展及预后相关性;
S2、探索COPB2与NUPR1在前列腺癌中互相调控的关系,并探 索对肿瘤增殖和侵袭的影响及其关键机制,所述S2具体的包括以下 步骤:
A1、Affymetrix全基因表达谱芯片的制作及IPA分析;
A2、研究COPB2与NUPR1在前列腺癌中相互调控并对肿瘤增殖 和侵袭的影响;
A3、免疫共沉淀Co-IP实验检测COPB2与NUPR1相互结合;
A4、检测COPB2与NUPR1定位变化;
A5、寻找COPB2与NUPR1互相调控下游关键信号。
优选的,所述S1中:
先收集200例前列腺癌组织标本,病理诊断200例癌及癌旁组 织;
免疫组化半定量测定组织中COPB2和NUPR1的表达;
设定染色阳性率评分标准:0%为0分;1-25%为1分;26-50% 为2分;51-75%为3分;76-100%为4分,染色程度区分标准:无为 0分;低为1分;中为2分;高为3分;
单倍型积分值(IHS)=染色阳性率×染色程度,高于6分为 高表达,低于6分为低表达;
将检测结果进行分组:COPB2低表达、COPB2高表达、NUPR1低 表达、NUPR1高表达、COPB2高表达+NUPR1低表达、COPB2高表达+NUPR1高表达、COPB2低表达+NUPR1低表达、COPB2低表达+NUPR1 高表达;
收集上述200例患者初诊PSA值、病理、预后资料,利用 SPSS、Fisher及卡方检验分析分类变量与COPB2和NUPR1表达量的 关系,利用Cox回归模型预测复发及进展因素,最后采用Kaplan- Meier分析绘制复发及无病生存曲线。
优选的,所述A1中具体操作步骤为:
准备COPB2干扰组和阴性对照组,每组3个复孔,提取总 RNA,RNA质检,芯片杂交、洗染和扫描,最后完成芯片上机分析;
制作火山图、散点图、聚类图、疾病与功能分析、经典通路分 析,并采用IngenuityPathway Analysis软件分析预测COPB2干扰 后关键基因的改变,通过Z-score值,激活预测蛋白NUPR1作为研 究的对象,利用生物信息学及IPA软件制作NUPR1的调控网络图。
优选的,所述A2中包括以下部分:
病毒感染细胞、
增殖、侵袭功能学实验、
裸鼠皮下成瘤实验。
所述病毒感染细胞具体步骤为:
实验设siCOPB2+siNUPR1、OE-COPB2+siNUPR1、siCOPB2、OE- COPB2、对照COPB2和对照NUPR1共6组,病毒感染PC-3/DU- 145/CWR22RV1/LNCaP细胞,预实验确定最佳MOI、感染条件及感染 效率,正式实验为感染3天后观察感染效率,每组细胞分为两份, 一份提取细胞总RNA,一份提取总蛋白,RNA→cDNA→qRT-PCR检测 3组中COPB2mRNA定量表达;根据Western Blot法步骤检测3组中 COPB2蛋白的表达。
优选的,所述增殖、侵袭功能学实验包括以下内容:
CCK8法检测细胞生长、
流式细胞周期、
流式细胞凋亡、
克隆形成检测细胞增殖能力、
划痕愈合实验检测细胞迁移能力、
检测细胞侵袭能力。
优选的,所述裸鼠皮下成瘤实验具体步骤为:
实验设siCOPB2+siNUPR1、OE-COPB2+siNUPR1、siCOPB2、OE- COPB2、对照COPB2和对照NUPR1共6组,收集密度为5×106病毒 感染对数期细胞PC-3/DU-145,与5mg/mL的基底膜基质混匀制成1 mL细胞悬液,在裸鼠右侧腋下注射0.2mL细胞悬液,含1×106细 胞数;
每5天观察记录肿瘤形成、生长情况,游标卡尺记录肿瘤长径 和短径,按公式0.5236×长径×短径2计算肿瘤体积;
接种42天后颈髓离断法处死裸鼠,完整剥出瘤体,称重,根据 测量肿瘤体积,绘制肿瘤生长曲线;
组织一部分Western Blot法检测COPB2和NUPR1表达情况,另 一部分制作石蜡切片,IHC检测COPB2和NUPR1的表达;
IHC和Western blot检测移植瘤组织CD31和VEGFA表达,肿瘤 微血管密度计数。
优选的,所述A3中具体步骤为:
准备PC-3/DU-145细胞,细胞或组织裂解液加入适量的COPB2 一抗,将抗体耦联到protein A sepharose上,根据表达蛋白的量, 加入不等量的细胞裂解液,加1-5μg的抗体和10μL的Protein A,Protein A为50%质量分数的悬液,用细胞裂解液补充至总体积 到1mL于4℃孵育4h;Beads通过离心沉淀下来,然后用1×HNTG buffer洗3次,每次500μL;沉淀用30μL 1×laemmLi loading 缓冲液洗脱上样,100℃加热10min进行SDS-PAGE电泳以及免疫印 迹,检测COPB2与NUPR1结合情况。
优选的,A4中具体步骤为:
实验设siCOPB2+siNUPR1、OE-COPB2+siNUPR1、siCOPB2、OE- COPB、对照COPB2和对照NUPR1共6组,生长在12mm玻片上的细 胞用冰浴的1×PBS(pH 7.4)洗3遍,然后用–20℃甲醇固定3-5 min,细胞再用0.1-0.5%的Triton X-100通透5-10min,被通透后 的细胞用PBS洗3遍后,用含50mM(NH4)2SO4的1×PBS(pH 7.4)室 温孵育5min以消除醛基,再用1×PBS(pH7.4)洗三遍,被固定后 的细胞在室温用含1%BSA的TBST(pH为7.4)封闭1h,一抗稀释 在TBST-BSA中,一抗稀释比例为:1:100-1:1000,在37℃孵育2h, 然后用TBST-BSA洗5次,每次10min。二抗稀释比例为:1:500- 1:1000,于暗处室温孵育1h,玻片用PERMAFLUOR aqueousmounting medium封闭并在室温风干,然后用激光共聚焦显微镜分析 拍摄图像检测COPB2与NUPR1定位的变化。
将样品分为前列腺癌/癌旁;CRPC/激素依赖前列腺癌两组,冰 冻切片在室温晾干,置于冰丙酮中固定5min,随后在PBS中洗两遍, 以10%羊血清封闭1h,倾去封闭液,滴加适当比例稀释的一抗,室 温孵育1-2h,PBS清洗,5min×3次,再滴加FITC耦联的羊抗兔 的IgG和罗丹明标记的phalloidin,于暗处室温孵育1h,再用PBS 清洗后,以DAPI染色1min,玻片用PERMAFLUOR aqueous mounting medium封闭并在室温风干,荧光图片在激光共聚焦显微镜上拍摄, 检测COPB2与NUPR1定位的变化。
优选的,所述A5中:
先分组:PC-3细胞的COPB2干扰/对照和COPB2过表达/对照, 通过Affymetrix全基因表达谱芯片结合质谱,后续IPA生信分析方 法,筛选下游CRPC肿瘤相关关键信号通路;
Western blot对上述关键信号蛋白进行鉴定,确定关键信号;
采用信号通路抑制剂,设对照组,通过CCK8、克隆形成和 Transwell侵袭实验观察细胞增殖和侵袭的前后变化。
本发明的有益效果是:
通过本系统可对前列腺癌分子的各个阶段的生长机理进行研究, 另一方面可明确COPB2与NUPR1蛋白互相调控的关系和具体机制。
利用本发明系统进行前列腺癌分子分型预测,能更好的判断前 列腺癌生物学行为,本发明的直接目的不是得到诊断结果,而是为 制定个性化治疗方案提供参考依据。
具体实施方式
下面对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显 然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实 施例。
一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,包括以下步骤:
S1、研究COPB2、NUPR1单个或者组合的表达量与临床PCA的关 系,以及与CRPC患者进展及预后相关性;
S2、探索COPB2与NUPR1在前列腺癌中互相调控的关系,并探 索对肿瘤增殖和侵袭的影响及其关键机制,所述S2具体的包括以下 步骤:
A1、Affymetrix全基因表达谱芯片的制作及IPA分析;
A2、研究COPB2与NUPR1在前列腺癌中相互调控并对肿瘤增殖 和侵袭的影响;
A3、Co-IP检测COPB2与NUPR1相互结合;
A4、检测COPB2与NUPR1定位变化;
A5、寻找COPB2与NUPR1互相调控下游关键信号。
所述S1中:
先收集200例前列腺癌组织标本,病理诊断200例癌及癌旁组 织;
免疫组化半定量测定组织中COPB2和NUPR1的表达;
设定染色阳性率评分标准:0%为0分;1-25%为1分;26-50% 为2分;51-75%为3分;76-100%为4分,染色程度区分标准:无为 0分;低为1分;中为2分;高为3分;
单倍型积分值(IHS)=染色阳性率×染色程度,高于6分为高 表达,低于6分为低表达;
将检测结果进行分组:COPB2低表达、COPB2高表达、NUPR1低 表达、NUPR1高表达、COPB2高表达+NUPR1低表达、COPB2高表达 +NUPR1高表达、COPB2低表达+NUPR1低表达、COPB2低表达+NUPR1 高表达;
收集上述200例患者初诊PSA值、病理、预后资料,利用 SPSS、Fisher及卡方检验分析分类变量与COPB2和NUPR1表达量的 关系,利用Cox回归模型预测复发及进展因素,最后采用Kaplan- Meier分析绘制复发及无病生存曲线。
所述A1中具体操作步骤为:
准备COPB2干扰组和阴性对照组,每组3个复孔,提取总 RNA,RNA质检,芯片杂交、洗染和扫描,最后完成芯片上机分析;
制作火山图、散点图、聚类图、疾病与功能分析、经典通路分 析,并采用IngenuityPathway Analysis软件分析预测COPB2干扰 后关键基因的改变,通过Z-score值,激活预测蛋白NUPR1作为研 究的对象,利用生物信息学及IPA软件制作NUPR1的调控网络图。
所述A2中包括以下部分:
病毒感染细胞、
增殖、侵袭功能学实验、
裸鼠皮下成瘤实验。
所述病毒感染细胞具体步骤为:
实验设siCOPB2+siNUPR1、OE-COPB2+siNUPR1、siCOPB2、OE- COPB2、对照COPB2和对照NUPR1等6组。病毒感染PC-3/DU- 145/CWR22RV1/LNCaP细胞,预实验确定最佳MOI、感染条件及感染 效率。正式实验为感染3天后观察感染效率(>70%),每组细胞分为 两份,一份提取细胞总RNA,一份提取总蛋白。RNA→cDNA→qRT- PCR(按试剂盒说明操作)检测3组中COPB2mRNA定量表达(引物设 计及合成交由上海生工生物);根据Western Blot法步骤(蛋白提 取、SDS-PAGE胶制备、上样、电泳、电转、加入一抗、清洗、加入 二抗、清洗后ECL发光剂发光检测)检测3组中COPB2蛋白的表达。 NUPR1同COPB2。
所述增殖、侵袭功能学实验包括以下内容:
CCK8法检测细胞生长:实验设siCOPB2+siNUPR1、 OE-COPB2+siNUPR1、siCOPB2、OE-COPB2、对照COPB2和对照NUPR1 等6组。病毒感染细胞后取对数期细胞按照3000cell/well铺96 孔板,每组6重复,于感染后第0、1、2、3、4和5d,培养终止前 3h,吸尽培养液后每孔加入100μL 1640+10μL CCK8混悬液,放入 37℃、5%CO2培养箱,最后酶标仪450nm检测OD值,数据统计分析 并绘制生长曲线图。
流式细胞周期:分组同上。病毒感染细胞收集,4℃预冷 1×PBS洗1次,离心10min,4℃预冷75%乙醇固定细胞过夜(或8 h)。确保每个流式检测管内细胞至少106个,1×PBS洗两次,每次 离心10min,加入2%血清1×PBS洗一次,离心10min,加入相应 细胞染色液PI(购自BD公司),每管加300μL,重悬,室温避光15 min后,使上机细胞通过率为300-800Cell/s。FACS流式细胞仪检 测、数据分析、绘图。Western bolt检测周期相关蛋白 (CDK2,CDK4,Cyclin D1,P21等)。
流式细胞凋亡:分组同上。病毒感染细胞收集,1×bind buffer重悬细胞,细胞密度≥1×106/mL,每流式检测管100μL重 悬液。加入5μL Annexin V-7AAD及5μL PE染色(试剂盒购自BD公 司),室温避光15min。检测前每管加入1×bind buffer 500μL,重 悬,FACS流式细胞仪检测、数据分析、绘图。Western blot检测凋 亡相关蛋白(Cleaved Caspase-3,Cleaved PARP等)。
克隆形成检测细胞增殖能力:分组同上。病毒感染细胞收集细 胞,每孔加入1000个细胞,每孔设3个复孔。细胞继续培养至10- 14天。实验终止前荧光显微镜对克隆进行拍照,1×PBS洗一次。每 孔加入1mL 4%多聚甲醛,固定细胞40min,1×PBS洗一次。每孔加 入1%结晶紫染液500μL,染细胞20min。ddH2O洗涤细胞,晾干, 数码相机拍照,克隆计数,绘制图表。
划痕愈合实验检测细胞迁移能力:分组同上。6孔板背后直尺 均匀划线,每隔0.5-1.0cm。每孔加入1×105个细胞,细胞覆盖率 90%时加入慢病毒感染细胞,12h后用20μL枪头比着直尺,垂直于 6孔板背后横线划痕,1×PBS洗3次,去掉划下的细胞,加入无血 清培养基继续培养。按0、6、8和12h取样拍照。
检测细胞侵袭能力:分组同上。人工基质膜制备(按试剂说明 书操作),细胞无血清培养基培养24h后收集细胞,调整细胞密度 为1×106/mL,每Boyden小室(孔径8μm)上室加入200μL 105个 细胞,Boyden小室下室加入600μL的含血清完全培养基培养24-48 h;去除下室培养基,1mL 4%多聚甲醛,固定细胞40min,1×PBS 洗一次。每孔加入1%结晶紫染液500μL,染细胞20min。吸弃上室 培养基,棉签擦掉上室面细胞,倒置显微镜计数拍照,200×光镜选 择8个视野计数,取其平均值。Western blot检测上皮间质转化 EMT相关蛋白(E-cadherin,N-cadherin,Vimentin,Snail等)。
所述裸鼠皮下成瘤实验具体步骤为:
实验设siCOPB2+siNUPR1、OE-COPB2+siNUPR1、siCOPB2、OE- COPB2、对照COPB2和对照NUPR1共6组,收集密度为5×106病毒 感染对数期细胞PC-3/DU-145,与5mg/mL的基底膜基质混匀制成1 mL细胞悬液,在裸鼠右侧腋下注射0.2mL细胞悬液,含1×106细 胞数;
每5天观察记录肿瘤形成、生长情况,游标卡尺记录肿瘤长径 和短径,按公式0.5236×长径×短径2计算肿瘤体积;
接种42天后颈髓离断法处死裸鼠,完整剥出瘤体,称重,根据 测量肿瘤体积,绘制肿瘤生长曲线;
组织一部分Western Blot法检测COPB2和NUPR1表达情况,另 一部分制作石蜡切片,IHC检测COPB2和NUPR1的表达;
IHC和Western blot检测移植瘤组织CD31和VEGFA表达,肿瘤 微血管密度计数。
所述A3中具体步骤为:
准备PC-3/DU-145细胞,细胞或组织裂解液加入适量的COPB2 一抗,将抗体耦联到protein A sepharose上,根据表达蛋白的量, 加入不等量的细胞裂解液,加1-5μg的抗体和10μL的Protein A,Protein A为50%质量分数的悬液,用细胞裂解液补充至总体积 到1mL于4℃孵育4h;Beads通过离心沉淀下来,然后用1×HNTG buffer洗3次,每次500μL;沉淀用30μL 1×laemmLi loading 缓冲液洗脱上样,100℃加热10min进行SDS-PAGE电泳以及免疫印 迹,检测COPB2与NUPR1结合情况。
A4中具体步骤为:
实验设siCOPB2+siNUPR1、OE-COPB2+siNUPR1、siCOPB2、OE- COPB、对照COPB2和对照NUPR1共6组,生长在12mm玻片上的细 胞用冰浴的1×PBS(pH 7.4)洗3遍,然后用–20℃甲醇固定3-5 min,细胞再用0.1-0.5%的Triton X-100通透5-10min,被通透后 的细胞用PBS洗3遍后,用含50mM(NH4)2SO4的1×PBS(pH 7.4)室 温孵育5min以消除醛基,再用1×PBS(pH7.4)洗三遍,被固定后 的细胞在室温用含1%BSA的TBST(pH 7.4)封闭1h,一抗稀释在TBST-BSA中,一抗稀释比例为:1:100-1:1000,在37℃孵育2h, 然后用TBST-BSA洗5次,每次10min。二抗稀释比例为:1:500- 1:1000,于暗处室温孵育1h,玻片用PERMAFLUOR aqueousmounting medium封闭并在室温风干,然后用激光共聚焦显微镜分析 拍摄图像检测COPB2与NUPR1定位的变化。
将样品分为前列腺癌/癌旁;CRPC/激素依赖前列腺癌两组,冰 冻切片在室温晾干,置于冰丙酮中固定5min,随后在PBS中洗两遍, 以10%羊血清封闭1h,倾去封闭液,滴加适当比例稀释的一抗,室 温孵育1-2h,PBS清洗,5min×3次,再滴加FITC耦联的羊抗兔 的IgG和罗丹明标记的phalloidin,于暗处室温孵育1h,再用PBS 清洗后,以DAPI染色1min,玻片用PERMAFLUOR aqueous mounting medium封闭并在室温风干,荧光图片在激光共聚焦显微镜上拍摄, 检测COPB2与NUPR1定位的变化。
所述A5中:
先分组:PC-3细胞的COPB2干扰/对照和COPB2过表达/对照, 通过Affymetrix全基因表达谱芯片结合质谱,后续IPA生信分析方 法,筛选下游CRPC肿瘤相关关键信号通路;
Western blot对上述关键信号蛋白进行鉴定,确定关键信号;
采用信号通路抑制剂,设对照组,通过CCK8、克隆形成和Transwell侵袭实验观察细胞增殖和侵袭的前后变化。
本实施例中,通过本系统可对前列腺癌分子的各个阶段的生长 机理进行研究,另一方面可明确COPB2与NUPR1蛋白互相调控的关 系和具体机制。
利用本发明系统进行前列腺癌分子分型预测,能更好的判断前 列腺癌生物学行为,本发明的直接目的不是得到诊断结果,而是为 制定个性化治疗方案提供参考依据。
以上所述,仅为本发明较佳的具体实施方式,但本发明的保护范围 并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技 术范围内,根据本发明的技术方案及其发明构思加以等同替换或改 变,都应涵盖在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1.一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,其特征在于,所述系统涉及以下步骤:
S1、研究COPB2、NUPR1单个或者组合的表达量与临床PCA的关系,以及与CRPC患者进展及预后相关性;
S2、探索COPB2与NUPR1在前列腺癌中互相调控的关系,并探索对肿瘤增殖和侵袭的影响及其关键机制,所述S2具体的包括以下步骤:
A1、Affymetrix全基因表达谱芯片的制作及IPA分析;
A2、研究COPB2与NUPR1在前列腺癌中相互调控并对肿瘤增殖和侵袭的影响;
A3、Co-IP检测COPB2与NUPR1相互结合;
A4、检测COPB2与NUPR1定位变化;
A5、寻找COPB2与NUPR1互相调控下游关键信号。
2.根据权利要求1所述的一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,其特征在于,所述S1中:
先收集200例前列腺癌组织标本,病理诊断200例癌及癌旁组织;
免疫组化半定量测定组织中COPB2和NUPR1的表达;
设定染色阳性率评分标准:0%为0分;1-25%为1分;26-50%为2分;51-75%为3分;76-100%为4分,染色程度区分标准:无为0分;低为1分;中为2分;高为3分;
单倍型积分值(IHS)=染色阳性率×染色程度,高于6分为高表达,低于6分为低表达;
将检测结果进行分组:COPB2低表达、COPB2高表达、NUPR1低表达、NUPR1高表达、COPB2高表达+NUPR1低表达、COPB2高表达+NUPR1高表达、COPB2低表达+NUPR1低表达、COPB2低表达+NUPR1高表达;
收集上述200例患者初诊PSA值、病理、预后资料,利用SPSS、Fisher及卡方检验分析分类变量与COPB2和NUPR1表达量的关系,利用Cox回归模型预测复发及进展因素,最后采用Kaplan-Meier分析绘制复发及无病生存曲线。
3.根据权利要求1所述的一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,其特征在于,所述A1中具体操作步骤为:
准备COPB2干扰组和阴性对照组,每组3个复孔,提取总RNA,RNA质检,芯片杂交、洗染和扫描,最后完成芯片上机分析;
制作火山图、散点图、聚类图、疾病与功能分析、经典通路分析,并采用IngenuityPathway Analysis软件分析预测COPB2干扰后关键基因的改变,通过Z-score值,激活预测蛋白NUPR1作为研究的对象,利用生物信息学及IPA软件制作NUPR1的调控网络图。
4.根据权利要求1所述的一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,其特征在于:所述A2中包括以下部分:
病毒感染细胞、
增殖、侵袭功能学实验、
裸鼠皮下成瘤实验。
5.根据权利要求4所述的一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,其特征在于,所述病毒感染细胞具体步骤为:
实验设siCOPB2+siNUPR1、OE-COPB2+siNUPR1、siCOPB2、OE-COPB2、对照COPB2和对照NUPR1共6组,病毒感染PC-3/DU-145/CWR22RV1/LNCaP细胞,预实验确定最佳MOI、感染条件及感染效率,正式实验为感染3天后观察感染效率,每组细胞分为两份,一份提取细胞总RNA,一份提取总蛋白,RNA→cDNA→qRT-PCR检测3组中COPB2mRNA定量表达;根据WesternBlot法步骤检测3组中COPB2蛋白的表达。
6.根据权利要求1所述的一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,其特征在于,所述增殖、侵袭功能学实验包括以下内容:
CCK8法检测细胞生长、
流式细胞周期、
流式细胞凋亡、
克隆形成检测细胞增殖能力、
划痕愈合实验检测细胞迁移能力、
检测细胞侵袭能力。
7.根据权利要求4所述的一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,其特征在于,所述裸鼠皮下成瘤实验具体步骤为:
实验设siCOPB2+siNUPR1、OE-COPB2+siNUPR1、siCOPB2、OE-COPB2、对照COPB2和对照NUPR1共6组,收集密度为5×106病毒感染对数期细胞PC-3/DU-145,与5mg/mL的基底膜基质混匀制成1mL细胞悬液,在裸鼠右侧腋下注射0.2mL细胞悬液,含1×106细胞数;
每5天观察记录肿瘤形成、生长情况,游标卡尺记录肿瘤长径和短径,按公式0.5236×长径×短径2计算肿瘤体积;
接种42天后颈髓离断法处死裸鼠,完整剥出瘤体,称重,根据测量肿瘤体积,绘制肿瘤生长曲线;
组织一部分Western Blot法检测COPB2和NUPR1表达情况,另一部分制作石蜡切片,免疫组织化学(IHC)检测COPB2和NUPR1的表达;
IHC和Western blot检测移植瘤组织CD31和VEGFA表达,肿瘤微血管密度计数。
8.根据权利要求1所述的一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,其特征在于,所述A3中具体步骤为:
准备PC-3/DU-145细胞,细胞或组织裂解液加入适量的COPB2一抗,将抗体耦联到protein A sepharose上,根据表达蛋白的量,加入不等量的细胞裂解液,加1-5μg的抗体和10μL的Protein A,Protein A为50%质量分数的悬液,用细胞裂解液补充至总体积到1mL于4℃孵育4h;Beads通过离心沉淀下来,然后用1×HNTG buffer洗3次,每次500μL;沉淀用30μL1×laemmLi loading缓冲液洗脱上样,100℃加热10min进行SDS-PAGE电泳以及免疫印迹,检测COPB2与NUPR1结合情况。
9.根据权利要求1所述的一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,其特征在于,A4中具体步骤为:
实验设siCOPB2+siNUPR1、OE-COPB2+siNUPR1、siCOPB2、OE-COPB、对照COPB2和对照NUPR1共6组,生长在12mm玻片上的细胞用冰浴的1×PBS(pH7.4)洗3遍,然后用–20℃甲醇固定3-5min,细胞再用0.1-0.5%的Triton X-100通透5-10min,被通透后的细胞用PBS洗3遍后,用含50mM(NH4)2SO4的1×PBS(pH7.4)室温孵育5min以消除醛基,再用1×PBS(pH7.4)洗三遍,被固定后的细胞在室温用含1%BSA的TBST(pH7.4)封闭1h,一抗稀释在TBST-BSA中,一抗稀释比例为:1:100-1:1000,在37℃孵育2h,然后用TBST-BSA洗5次,每次10min;二抗稀释比例为:1:500-1:1000,于暗处室温孵育1h,玻片用PERMAFLUOR aqueous mountingmedium封闭并在室温风干,然后用激光共聚焦显微镜分析拍摄图像检测COPB2与NUPR1定位的变化;
将样品分为前列腺癌/癌旁;CRPC/激素依赖前列腺癌两组,冰冻切片在室温晾干,置于冰丙酮中固定5min,随后在PBS中洗两遍,以10%羊血清封闭1h,倾去封闭液,滴加适当比例稀释的一抗,室温孵育1-2h,PBS清洗,5min×3次,再滴加FITC耦联的羊抗兔的IgG和罗丹明标记的phalloidin,于暗处室温孵育1h,再用PBS清洗后,以DAPI染色1min,玻片用PERMAFLUOR aqueous mounting medium封闭并在室温风干,荧光图片在激光共聚焦显微镜上拍摄,检测COPB2与NUPR1定位的变化。
10.根据权利要求1所述的一种基于COPB2与NUPR1的前列腺癌预测系统,其特征在于,所述A5中:
先分组:PC-3细胞的COPB2干扰/对照和COPB2过表达/对照,通过Affymetrix全基因表达谱芯片结合质谱,后续IPA生信分析方法,筛选下游CRPC肿瘤相关关键信号通路;
Western blot对上述关键信号蛋白进行鉴定,确定关键信号;
采用信号通路抑制剂,设对照组,通过CCK8、克隆形成和Transwell侵袭实验观察细胞增殖和侵袭的前后变化。
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CN201910672776.0A CN111004847A (zh) | 2019-07-24 | 2019-07-24 | 一种基于copb2与nupr1的前列腺癌预测系统 |
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Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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WO2024101357A1 (ja) * | 2022-11-07 | 2024-05-16 | Ism株式会社 | コートマータンパク質複合体サブユニットベータ2に対する抗体 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20140045915A1 (en) * | 2010-08-31 | 2014-02-13 | The General Hospital Corporation | Cancer-related biological materials in microvesicles |
CN108490180A (zh) * | 2018-03-12 | 2018-09-04 | 南通大学附属医院 | EphA8基因在制备胃癌药物及其诊断试剂盒中的应用 |
CN108535480A (zh) * | 2018-03-05 | 2018-09-14 | 南通大学附属医院 | EphA8基因在制备抗乳腺癌药物及其诊断试剂盒中的应用 |
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2019
- 2019-07-24 CN CN201910672776.0A patent/CN111004847A/zh active Pending
Patent Citations (3)
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WO2024101357A1 (ja) * | 2022-11-07 | 2024-05-16 | Ism株式会社 | コートマータンパク質複合体サブユニットベータ2に対する抗体 |
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