CN109490265A - 监测植物内物质运输的方法及其应用 - Google Patents

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CN109490265A CN201811335997.0A CN201811335997A CN109490265A CN 109490265 A CN109490265 A CN 109490265A CN 201811335997 A CN201811335997 A CN 201811335997A CN 109490265 A CN109490265 A CN 109490265A
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    • G01N2021/6417—Spectrofluorimetric devices

Abstract

本发明提供了一种监测植物内物质运输的方法及其应用，涉及纳米医学技术领域，本发明提供的监测植物内物质运输的方法，用荧光成像仪器对吸收有荧光染料的植物进行成像拍照，经过软件处理图像和数据分析，监测植物内物质的运输。该方法工艺简单，操作简便，可节约大量的人力物力，便于实验人员操作，所涉及到的试剂无毒无害，对实验人员和待测植物均有安全保证。并且，荧光成像技术设备具有价格便宜、体积小和质量轻等优点，便于野外携带。此外，荧光成像技术的灵敏度高和信噪比高，可以提供清晰的图像质量，监测结果准确。

Description

监测植物内物质运输的方法及其应用
技术领域
本发明涉及纳米医学技术领域，尤其是涉及一种监测植物内物质运输的方法及其应用。
背景技术
水是植物生长和生产力最有限的非生物因子，也是全球植被分布的主要决定因素。了解水在植物中的流动以及影响水分运输的因素对于保护土壤水分、感知植物压力和提高作物产量至关重要。而植物蒸腾作用是植物对水分的吸收和运输的一个主要动力，特别是高大的植物，假如没有蒸腾作用，由蒸腾拉力引起的吸水过程便不能产生，植株较高部分也无法获得水分。蒸腾作用主要是通过叶片进行的蒸发导致水分从植物体内运输到体外过程，其过程为：土壤中的水分→根毛→根内导管→茎内导管→叶内导管→气孔→大气。蒸腾作用不仅受外界环境条件的影响，而且还受植物本身的调节和控制，它是一种复杂的生理过程。因此，对植物蒸腾作用过程中水分运输的监测可以使我们随时了解植物对水分的需求，对节约用水和植物合理灌溉都具有重要意义。
目前用于研究水运输的非侵入性成像方法包括CT、PET和MRI，但这些技术有一些局限性，包括仪器设备巨大难携带、仪器价格昂贵以及放射性和强磁场的安全问题。
因此，开发一种操作方便、成本较低、安全性高且监测结果准确的监测植物内物质运输的方法尤为重要。
有鉴于此，特提出本发明。
发明内容
本发明的第一个目的在于提供一种监测植物内物质运输的方法，以至少缓解现有技术中存在的技术问题之一。
本发明的第二个目的在于提供上述监测植物内物质运输的方法在监测水在植物内的运输情况中的应用。
本发明提供了一种监测植物内物质运输的方法，所述方法包括：
用荧光成像仪器对吸收有荧光染料的植物进行成像拍照，通过软件处理图像和数据分析，监测植物内物质的运输。
进一步地，所述荧光染料的荧光发射峰为900-1000nm，优选的荧光发射峰为920-980nm，更优选的荧光发射峰为940-960nm；
优选地，所述荧光染料为NIR-Ib荧光染料；
优选地，所述NIR-Ib荧光染料选自IR-775、IR-780、IR-783、IR-797、IR-806或IR-808。
进一步地，所述物质为水。
进一步地，将植物的根或茎插入含有荧光染料的水中，得到所述吸收有荧光染料的植物；
优选地，所述含有荧光染料的水的浓度为20-80μg/mL，优选的浓度为30-60μg/mL，更优选的浓度为40-55μg/mL。
进一步地，将吸收有荧光染料的植物进行促进蒸腾作用的处理后，再进行成像拍照；
优选地，所述促进蒸腾作用的处理包括高温处理和光照处理；
优选地，所述高温处理的温度为30-40℃，优选的温度为32-38℃，更优选的温度为34-36℃；
优选地，所述光照处理为5-30W白色荧光灯照射；
优选地，所述白色荧光灯照射的时间为3-10小时。
另外，本发明还提供了上述的监测植物内物质运输的方法在监测水在植物内的运输情况中的应用。
本发明提供的监测植物内物质运输的方法，用荧光成像仪器对吸收有荧光染料的植物进行成像拍照，经过软件处理图像和数据分析，监测植物内物质的运输。该方法工艺简单，操作简便，可节约大量的人力物力，便于实验人员操作，所涉及到的试剂无毒无害，对实验人员和待测植物均不存在任何危害。并且，荧光成像技术设备具有价格便宜、体积小和质量轻等优点，便于野外携带。此外，荧光成像技术的灵敏度高和信噪比高，可以提供清晰的图像质量，监测结果准确。
附图说明
为了更清楚地说明本发明具体实施方式或现有技术中的技术方案，下面将对具体实施方式或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图是本发明的一些实施方式，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1A为本发明实施例1提供的荧光成像技术监控植物蒸腾作用中水运输的处理示意图；
图1B为本发明实施例1提供的荧光成像技术监控植物蒸腾作用中水运输的自然光下的结果图；
图1C为本发明实施例1提供的荧光成像技术监控植物蒸腾作用中水运输的荧光成像的结果图；
图2A为本发明实施例8提供的荧光成像技术监控植物蒸腾作用中水运输的处理示意图；
图2B为本发明实施例8提供的荧光成像技术监控植物蒸腾作用中水运输的自然光下的结果图；
图2C为本发明实施例8提供的荧光成像技术监控植物蒸腾作用中水运输的荧光成像的结果图；
图3A为IR-775在水中的吸收光谱结果图；
图3B为IR-775在水中的荧光发射光谱结果图；
图3C为IR-775在水中的荧光发射光谱结果图；
图4A为IR-780在水中的吸收光谱结果图；
图4B为IR-780在水中的荧光发射光谱结果图；
图4C为IR-780在水中的荧光发射光谱结果图；
图5A为IR-783在水中的吸收光谱结果图；
图5B为IR-783在水中的荧光发射光谱结果图；
图5C为IR-783在水中的荧光发射光谱结果图；
图6A为IR-797在水中的吸收光谱结果图；
图6B为IR-797在水中的荧光发射光谱结果图；
图6C为IR-797在水中的荧光发射光谱结果图；
图7A为IR-806在水中的吸收光谱结果图；
图7B为IR-806在水中的荧光发射光谱结果图；
图7C为IR-806在水中的荧光发射光谱结果图。
具体实施方式
下面将结合实施例对本发明的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。
本发明提供了一种监测植物内物质运输的方法，所述方法包括：
用荧光成像仪器对吸收有荧光染料的植物进行成像拍照，通过软件处理图像和数据分析，监测植物内物质的运输。
荧光是自然界常见的一种发光现象，是光子与分子的相互作用产生的。荧光成像的理论基础是荧光物质被激发后所发射的荧光信号的强度在一定的范围内与荧光素的量成线性关系。本发明典型但非限制性的荧光成像仪器包括荧光信号激发系统、荧光信号收集组件、信号检测以及放大系统，其中，荧光信号激发系统包括激发光源和光路传输组件。
典型但非限制性的荧光成像仪器由808nm的激光器、InGaAs CCD AWIR-35镜头、900-1000nm带通滤光片、装有Matlab7处理软件的电脑和载体台组成。
在一个优选的实施方式中，通过软件扣除图像背景，能够使图像更清晰看到物质运输的情况。优选地软件可以为Matlab1、Matlab3、Matlab5和Matlab 7，更优选的软件为Matlab 7。
在本发明中，将荧光染料与待测物质相结合，荧光染料会随着待测物质在植物内运输移动，在运输过程中待测物质所在的位置，荧光强度更强。因此，通过监测植物内待测物质上的荧光染料的发光情况，能够明确在不同时间、不同作用部位下，植物内的物质运输情况。
本发明提供的监测植物内物质运输的方法，工艺简单，操作简便，可节约大量的人力物力，便于实验人员操作，所涉及到的试剂无毒无害，对实验人员和待测植物均有安全保证。并且，荧光成像技术设备具有价格便宜、体积小和质量轻等优点，便于野外携带。此外，荧光成像技术的灵敏度高和信噪比高，可以提供清晰的图像质量，监测结果准确。
在一些优选的实施方式中，所述荧光染料的荧光发射峰为900-1000nm，例如可以为，但不限于900nm、910nm、920nm、930nm、940nm、950nm、960nm、970nm、980nm、990nm或1000nm。
当荧光染料的荧光发射峰为900-1000nm时，它具有自发荧光低、散射率小、生物组织吸收弱、穿透深度大、无毒性和高信噪比等特点，荧光成像技术对植物内的荧光染料监测的灵敏度和信噪比均较高，可以提供清晰的图像质量，监测结果准确。当荧光染料的荧光发射峰小于900nm时，荧光成像系统无法有效监测到发光结果，当荧光染料的荧光发射峰大于1000nm时，并不适合监测植物内的荧光发光情况。
优选的荧光发射峰为920-980nm，更优选的荧光发射峰为940-960nm。
通过对荧光染料的发射峰进行进一步的选择，荧光成像技术对植物内的荧光染料监测的灵敏度和信噪比更高，能够得到更清晰的图像质量，使得本发明提供的监测结果更加准确。
优选地，所述荧光染料为NIR-Ib荧光染料。
近红外(NIR)荧光成像是一种快速、方便和无创的成像技术，用于可视化深部组织结构。在本发明中，选择NIR-Ib作为荧光染料，具有增加的空间分辨率、信号背景比(SBR)和穿透深度的优点，并且NIR-Ib在生物组织中的自发荧光、散射和生物组织吸收均较小，因此，NIR-1b具有较强的信号监测强度。此外，因为水是主要的大多数生物样品的成分，具有以970nm为中心的吸收峰，因此，本发明以NIR-Ib作为荧光染料发监测植物内物质运输，尤其是水运输，能够得到准确的监测结果，具有灵敏度高和信噪比高的优点。
优选地，所述NIR-Ib荧光染料选自IR-775、IR-780、IR-783、IR-797、IR-806或IR-808。其中，IR-775的光学表征如图3A、3B和3C所示；IR-780的光学表征如图4A、4B和4C所示；IR-783的光学表征如图5A、5B和5C所示；IR-797的光学表征如图6A、6B和6C所示；IR-806的光学表征如图7A、7B和7C所示。
上述NIR-Ib荧光染料能够在水中表现出优异的溶解性和低细胞毒性，用于监测植物内物质运输，具有灵敏度和信噪比高的特点，能够得到清晰的监测图像，并且该荧光染料试剂无毒无害，对实验人员和待测植物均有安全保证。
在一些优选的实施方式中，所述物质为水。
当物质为水时，本发明提供的监测植物内物质运输的方法能够用来监测植物蒸腾作用过程中水运输的情况。
在一些优选的实施方式中，将植物的根或茎插入含有荧光染料的水中，得到所述吸收有荧光染料的植物。
通过蒸腾作用，植物会从根或茎部吸收水分，从而荧光染料会随着水分在植物内运输，通过监测荧光染料的发光情况，能够准确有效地监测植物蒸腾作用过程中水运输的情况。
优选地，所述含有荧光染料的水的浓度为20-80μg/mL，例如可以为，但不限于20μg/mL、30μg/mL、40μg/mL、50μg/mL、60μg/mL、70μg/mL或80μg/mL。
当含有荧光染料的水的浓度为20-80μg/mL时，荧光染料在植物内的运输效果好，荧光成像技术对植物内的荧光染料监测的灵敏度和信噪比均较高，可以提供清晰的图像质量，监测结果准确。
优选的浓度为30-60μg/mL，更优选的浓度为40-55μg/mL。
通过对含有荧光染料的水的浓度进行进一步的选择，荧光染料在植物内的运输效果更好，荧光成像技术对植物内的荧光染料监测的灵敏度和信噪比更高，能够得到更清晰的图像质量，使得本发明提供的监测结果更加准确。
在一些优选的实施方式中，将吸收有荧光染料的植物进行促进蒸腾作用的处理后，再进行成像拍照。
将植物置于易发生蒸腾作用的条件下处理，能够加快植物对水分的吸收，也就加快了荧光染料在植物体内的运输，能够更好更快地得到完整准确的检测结果。
优选地，所述促进蒸腾作用的处理包括高温处理和光照处理。
优选地，所述高温处理的温度为30-40℃，例如可以为，但不限于30℃、31℃、32℃、33℃、34℃、35℃、36℃、37℃、38℃、39℃或40℃。优选的温度为32-38℃，更优选的温度为34-36℃。
通过对高温条件的进一步限定，能够使得植物的蒸腾作用更加明显，能够更好更快地得到完整准确的检测结果。
优选地，所述光照处理为5-30W白色荧光灯照射，例如可以为，但不限于5W、10W、15W、20W、25W或30W。
优选地，所述白色荧光灯照射的时间为3-10小时，例如可以为，但不限于3小时、4小时、5小时、6小时、7小时、8小时、9小时或10小时。
通过对光照条件的进一步限定，能够使得植物的蒸腾作用更加明显，能够更好更快地得到完整准确的检测结果。
值得注意的是，在光照过程中，保持荧光灯与植物间至少0.5m的距离，以使照射均匀，且避免烤伤植物。
另外，本发明还提供了上述的监测植物内物质运输的方法在监测水、在植物内的运输情况中的应用。
当监测水在植物内的运输情况时，可根据上述方法，在水中加入不同种类的荧光染料进行监测。
通过监测水在植物内的运输情况，能够了解植物对水分的需求，对合理灌溉及肥料的施用均具有重要意义。
为了更清楚地说明本发明，下面结合优选实施例对本发明做进一步的说明。
如未特殊说明，本发明实施例所用的试剂和仪器如下：
IR-775、IR-780、IR-783、IR-797、IR-806或IR-808从美国的Sigma-Aldrich公司购买的，NIR-Ib荧光成像仪器为本实验室搭建。
实施例1
将带叶片分支皂荚树的茎插入在含有50μg/mL IR-783的培养液中温育。其中植物的一个侧枝在35℃的孵育室内孵育。在孵育6小时后提取植株，固定好皂荚树的茎进行荧光成像。
实施例2
将与实施例1同株的带叶片分支皂荚树的茎插入在含有20μg/mL IR-797的培养液中温育。其中植物的一个侧枝在35℃的孵育室内孵育。在孵育6小时后提取植株，固定好皂荚树的茎进行荧光成像。
实施例3
将与实施例1同株的带叶片分支皂荚树的茎插入在含有80μg/mL IR-775的培养液中温育。其中植物的一个侧枝在35℃的孵育室内孵育。在孵育6小时后提取植株，固定好皂荚树的茎进行荧光成像。
实施例4
将与实施例1同株的带叶片分支皂荚树的茎插入在含有50μg/mL IR-780的培养液中温育。其中植物的一个侧枝在30℃的孵育室内孵育。在孵育6小时后提取植株，固定好皂荚树的茎进行荧光成像。
实施例5
将与实施例1同株的带叶片分支皂荚树的茎插入在含有50μg/mL IR-808的培养液中温育。其中植物的一个侧枝在50℃的孵育室内孵育。在孵育6小时后提取植株，固定好皂荚树的茎进行荧光成像。
实施例6
将与实施例1同株的带叶片分支皂荚树的茎插入在含有50μg/mL IR-808的培养液中温育。其中植物的一个侧枝在50℃的孵育室内孵育。在孵育3小时后提取植株，固定好皂荚树的茎进行荧光成像。
实施例7
将与实施例1同株的带叶片分支皂荚树的茎插入在含有50μg/mL IR-808的培养液中温育。其中植物的一个侧枝在50℃的孵育室内孵育。在孵育10小时后提取植株，固定好皂荚树的茎进行荧光成像。
实施例8
将带叶片分支非洲楝的茎插入在含有50μg/mL IR-783的培养液中温育。其中植物的一个侧枝用0.5m外的标准15W荧光灯泡的白光照射。在照射6小时后提取植株，固定好非洲楝的茎进行荧光成像。
实施例9
将带叶片分支玫瑰的茎插入在含有50μg/mL IR-775的培养液中温育。其中植物的一个侧枝用1m外的标准15W荧光灯泡的白光照射。在照射6小时后提取植株，固定好玫瑰的茎进行荧光成像。
实施例10
将带叶片分支百合的茎插入在含有50μg/mL IR-780的培养液中温育。其中植物的一个侧枝用0.5m外的标准5W荧光灯泡的白光照射。在照射6小时后提取植株，固定好百合的茎进行荧光成像。
实施例11
将带叶片分支杨树茎插入在含有50μg/mL IR-780的培养液中温育。其中植物的一个侧枝用0.5m外的标准30W荧光灯泡的白光照射。在照射6小时后提取植株，固定好杨树的茎进行荧光成像。
实施例12
将带叶片分支挑花心木的茎插入在含有50μg/mL IR-783的培养液中温育。在6小时后提取植株，固定好挑花心木的茎进行荧光成像。
对比例1
将与实施例1同株的带叶片分支皂荚树的茎插入在含有50μg/mL异硫氰酸荧光素(FITC)的培养液中温育。其中植物的一个侧枝在35℃的孵育室内孵育。在孵育6小时后提取植株，固定好皂荚树的茎进行荧光成像。
对比例2
将与实施例1同株的带叶片分支皂荚树的茎插入在含有50μg/mL IR-1061的培养液中温育。其中植物的一个侧枝在35℃的孵育室内孵育。在孵育6小时后提取植株，固定好皂荚树的茎进行荧光成像。
实验例1
将上述实施例1-12及对比例1和2得到的荧光成像结果经过Matlab软件数据分析，各组荧光强度如表1所示。
表1各组植物荧光成像得到的荧光强度
由于荧光染料会随着待测物质在植物内运输移动，在运输过程中待测物质所在的位置，荧光强度更强。因此，本实验例通过检测荧光强度，可以明确植物内的待测物质运输情况。其中，第一侧枝为置于易发生蒸腾作用的条件下处理的侧枝，第二侧枝为未置于易发生蒸腾作用的条件下处理的侧枝。
从实验结果中可以看出，应用本发明实施例1-12提供的监测植物内物质运输的方法得到的荧光结果，其灵敏度高和信噪比高，能够得到准确有效的监测结果。而对比例1或2提供的监测植物内物质运输的方法，无论在荧光强度、灵敏度或信噪比的方面，均不及本发明实施例的水平。
其中，实施例1-3提供的监测植物内物质运输的方法，均采用同株植物，即所用的带叶片分支皂荚树运输物质的能力相同。三者采用高温孵育的方法促进蒸腾作用，且各项孵育条件完全相同，仅含有荧光染料的水的浓度不同。但应用实施例1提供的监测植物内物质运输的方法得到的结果，无论在荧光强度、灵敏度或信噪比的方面，均优于实施例2和3。说明通过对含有荧光染料的水的浓度进行进一步的调整和优化，能够使得得到的荧光结果的灵敏度高和信噪比高，监测结果准确有效。
实施例1与实施例4和5提供的监测植物内物质运输的方法，同样采用同株植物，即所用的带叶片分支皂荚树运输物质的能力相同。三者均采用高温孵育的方法促进蒸腾作用，且所用的含有荧光染料的水浓度相同，仅孵育温度不同。但应用实施例1提供的监测植物内物质运输的方法得到的结果，无论在荧光强度、灵敏度或信噪比的方面，均优于实施例4和5。说明通过对孵育温度进行进一步的调整和优化，能够使得得到的荧光结果的灵敏度高和信噪比高，监测结果准确有效。
实施例1与实施例6和7提供的监测植物内物质运输的方法，采用同株植物，即所用的带叶片分支皂荚树运输物质的能力相同。三者均采用高温孵育的方法促进蒸腾作用，且所用的含有荧光染料的水浓度相同，仅孵育时间不同。但应用实施例1提供的监测植物内物质运输的方法得到的结果，无论在荧光强度、灵敏度或信噪比的方面，均优于实施例6和7。说明通过对孵育时间进行进一步的调整和优化，能够使得得到的荧光结果的灵敏度高和信噪比高，监测结果准确有效。
实施例8和9提供的监测植物内物质运输的方法，均采用光照处理的方法促进蒸腾作用，且所用的含有荧光染料的水浓度相同，仅光源与植物的距离不同。二者在荧光强度、灵敏度或信噪比的方面，均较高且相差不多。说明光源与植物的距离大于0.5m，能够使得得到的荧光结果的灵敏度高和信噪比高，监测结果准确有效。
实施例8与实施例10和11提供的监测植物内物质运输的方法，均采用高温孵育的方法促进蒸腾作用，且所用的含有荧光染料的水浓度相同，仅光源强度不同。但应用实施例8提供的监测植物内物质运输的方法得到的结果，无论在荧光强度、灵敏度或信噪比的方面，均优于实施例10和11。说明通过对光源强度进行进一步的调整和优化，能够使得得到的荧光结果的灵敏度高和信噪比高，监测结果准确有效。
实施例1与实施例12提供的监测植物内物质运输的方法，所用的含有荧光染料的水浓度相同，但实施例12未进行促进蒸腾作用的处理。应用实施例1提供的监测植物内物质运输的方法得到的结果，无论在荧光强度、灵敏度或信噪比的方面，均优于实施例12。说明通过对待测植物进行促进蒸腾作用的处理，能够使得得到的荧光结果的灵敏度高和信噪比高，监测结果准确有效。
实施例1与对比例1和2提供的监测植物内物质运输的方法，采用同株植物，即所用的带叶片分支皂荚树运输物质的能力相同。三者均采用高温孵育的方法促进蒸腾作用，且含有荧光染料的水的浓度也相同。但对比例1中应用的荧光染料的荧光发射峰在900nm以下，对比例2中应用的荧光染料的荧光发射峰在1000nm以上。应用实施例1提供的监测植物内物质运输的方法得到的结果，无论在荧光强度、灵敏度或信噪比的方面，均优于对比例1和2。说明通过对含有荧光染料的荧光发射峰进行进一步的调整和优化，能够使得得到的荧光结果的灵敏度高和信噪比高，监测结果准确有效。
实验例2
本实验例为了节约成本，选择其中荧光强度较强的实施例1和实施例8经过软件处理图像，结果如图1A、1B和1C，图2A、2B和2C所示。从图中可以看出，应用本发明实施例1和实施例8提供的监测方法得到的荧光成像结果图，其灵敏度高和信噪比高，可以提供清晰的图像质量，监测结果准确。
实验例3
本实验例对吸收有荧光染料的植物进行植物内物质运输的动态观察实验，具体为：
将带叶片顶枝皂荚树的茎插入在含有50μg/mL IR-783的培养液中温育。其中植物的顶枝在35℃的孵育室内孵育。分别在孵育2小时、4小时、6小时和8小时后提取植株，固定好皂荚树的茎，分别对该茎的同一固定位置的上部和同一固定位置的下部进行荧光强度测定。结果如下表所示：
时间 上部荧光强度 下部荧光强度
2小时 1350a.u. 54500a.u.
4小时 16160a.u. 55800a.u.
6小时 48500a.u. 56640a.u.
8小时 57800a.u. 56790a.u.
由上表可以看出，植株吸收荧光染料，通过蒸腾作用荧光染料随着水分在植物内运输，随着吸收时间的延长，皂荚树茎上部的荧光强度逐渐增强，说明带有荧光染料的水分由植物的底部逐渐运输至植物的顶部。由此可知，本发明提供的方法能够有效监测植物内物质的运输。
最后应说明的是：以上各实施例仅用以说明本发明的技术方案，而非对其限制；尽管参照前述各实施例对本发明进行了详细的说明，本领域的普通技术人员应当理解：其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分或者全部技术特征进行等同替换；而这些修改或者替换，并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的范围。

Claims (10)

1.一种监测植物内物质运输的方法，其特征在于，所述方法包括：
用荧光成像仪器对吸收有荧光染料的植物进行成像拍照，通过软件处理图像和数据分析，监测植物内物质的运输。
2.根据权利要求1所述的监测植物内物质运输的方法，其特征在于，所述荧光染料的荧光发射峰为900-1000nm，优选的荧光发射峰为920-980nm，更优选的荧光发射峰为940-960nm；
优选地，所述荧光染料为NIR-Ib荧光染料；
优选地，所述NIR-Ib荧光染料选自IR-775、IR-780、IR-783、IR-797、IR-806或IR-808。
3.根据权利要求1所述的监测植物内物质运输的方法，其特征在于，所述物质为水。
4.根据权利要求3所述的监测植物内物质运输的方法，其特征在于，将植物的根或茎插入含有荧光染料的水中，得到所述吸收有荧光染料的植物。
5.根据权利要求4所述的监测植物内物质运输的方法，其特征在于，所述含有荧光染料的水的浓度为20-80μg/mL，优选的浓度为30-60μg/mL，更优选的浓度为40-55μg/mL。
6.根据权利要求3所述的监测植物内物质运输的方法，其特征在于，将吸收有荧光染料的植物进行促进蒸腾作用的处理后，再进行成像拍照。
7.根据权利要求6所述的监测植物内物质运输的方法，其特征在于，所述促进蒸腾作用的处理包括高温处理和光照处理。
8.根据权利要求7所述的监测植物内物质运输的方法，其特征在于，所述高温处理的温度为30-40℃，优选的温度为32-38℃，更优选的温度为34-36℃。
9.根据权利要求7所述的监测植物内物质运输的方法，其特征在于，所述光照处理为5-30W白色荧光灯照射；
优选地，所述白色荧光灯照射的时间为3-10小时。
10.如权利要求1-9任一项所述的监测植物内物质运输的方法在监测水在植物内的运输情况中的应用。
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