CN108812410A - 一种动物实验用高压氧舱 - Google Patents
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Abstract
一种动物实验用高压氧舱,包括底座,底座为中空的长方体,底座内部设有实验装置组,实验装置组与控制装置组通过导线连接,控制装置组通过导线与控制面板相连,底座上设有高压氧舱,且嵌在底座内,底座的下端面上设有四个移动轮,高压氧舱与实验装置相连,高压氧舱内设有实验舱,本发明通过本新型的PLC控制器的设置可将生命体征监护仪和高压氧舱有机的结合在一起,实现了对动物的多个体征的监测,更加多元化的监测动物在高压氧舱内的体征和实验数据的监测;通过耐高压玻璃的设置,提高了观察口的面积,便于观察;通过设置过滤器和湿化器使实验时的实验环境最大限度的贴近生物体使用环境,提高实验质量;本发明结构简单,构思巧妙,便于推广。
Description
技术领域
本发明属于医疗实验用器具技术领域,具体涉及一种动物实验用高压氧舱。
背景技术
高压氧医学是一门新型的学科,高压氧所治疗的疾病遍及临床各个学科,包括内科、外科、妇产科、儿科、神经内科、神经外科、五官科、矫形科、职业科、烧伤、创伤、潜水、老年病以及运动医学等。
但目前的动物实验用高压氧设备功能单一,无法对实验动物的多个体征进行监测,需要额外添加实验器材,且无法在高压氧舱的环境下进行多个实验,导致增加实验成本,实验数据不准,且多数的设备简陋,集成度低。
发明内容
本发明的目的是针对现有的技术存在的不足,提出了一种工作效率高且结构紧凑的一种动物实验用高压氧舱。
本发明所解决的技术问题采用以下技术方案来实现一种动物实验用高压氧舱,包括底座,所述的底座为中空的长方体,所述的底座内部设有实验装置组,所述的实验装置组与控制装置组通过导线连接,所述的控制装置组通过导线与控制面板相连,所述的底座上设有高压氧舱,且嵌在底座内,所述的底座的下端面上设有四个移动轮,所述的高压氧舱与实验装置相连,所述的高压氧舱内设有实验舱。
所述的实验装置组包括多个实验装置、清洗装置、加压泵和可拆卸式氧气瓶,所述的实验装置包括监护装置和加压泵,所述的可拆卸式氧气瓶固定在底座内,所述的可拆卸式氧气瓶一侧设有加压泵,所述的加压泵和可拆卸式氧气瓶上方设有清洗装置,所述的清洗装置上方设有监护装置。
所述的控制装置组包括多个控制装置,所述的控制装置包括PLC控制器和稳压电源,所述的PLC控制器通过导线与稳压电源相连,且所述的PLC控制器通过导线与蜂鸣器相连;所述的控制装置通过导线与控制面板相连,所述的控制面板上设有电源开关、触控屏和旋钮,所述的触控屏为独立触控屏。
所述的监护装置内设有生命体征监护仪、氧气监测装置和蜂鸣器,所述的生命体征监护仪通过导线与PLC控制器相连,所述的生命体征监护仪通过导线与高压氧舱内的血氧饱和探头、心率探测器和应变式呼吸传感器相连,所述的血氧饱和探头、心率探测器和应变式呼吸传感器均设在高压氧舱内的腕带式固定装置内,所述的腕带式固定装置通过两端的魔术贴相连;所述的高压氧舱内设有氧气监测装置,所述的氧气监测装置通过导线与PLC控制器相连。
所述的清洗装置包括水泵、水箱、喷水头、紫外线灯以及烘干机,喷水头通过喷水管与水泵相连,且所述的喷水头设在高压氧舱内,所述的高压氧舱内设有排水口,所述的排水口通过排水管与水箱相连,所述的所述的水箱内设有水泵和滤网,且所述的滤网设在排水管与水箱相连处的位置,所述的水箱上设有进水口和出水口,且所述的进水口和出水口均穿过底座,所述的喷水管和排水管上均设有电磁阀;所述的高压氧舱内设有紫外线灯和烘干机,所述的紫外线灯和烘干机均设在高压氧舱内侧壁上,所述的紫外线灯、电磁阀、烘干机和水泵通过导线与控制装置内的PLC控制器相连。
所述的高压氧舱内设有的实验舱可通过隔板分为多个小仓,且每个小仓内均设有腕带式固定装置,所述的隔板上设有通气孔,所述的隔板上设有投食槽和饮水槽,所述的高压氧舱上设有快接口组,所述的快接口组通过快接头与气管和水管的一端相连,所述的气管和水管的另一端通与电磁阀一端相连。
所述的高压氧舱通过夹紧螺母、螺丝杆、夹紧板、耐高压玻璃固定在底座上,所述的螺丝杆的一端固定在底座上,另一端穿过夹紧板并通过夹紧螺母将耐高压玻璃紧固在高压氧舱上,所述的高压氧舱和耐高压玻璃之间设有硅胶密封条,且硅胶密封条设在高压氧舱上。
所述的高压氧舱为半圆型或长方型。
所述的加压泵、可拆卸式氧气瓶通过气管与电磁阀的一端相连,所述的电磁阀通过导线与PLC控制器相连。
所述的长方型的高压氧舱底面为坡面,且地面最低的地方设有排水口。
本发明的有益效果为:通过本新型的PLC控制器的设置可将生命体征监护仪和高压氧舱有机的结合在一起,实现了对实现动物的多个体征的监测,更加多元化的监测动物在高压氧舱内的体征和实验数据的监测,且由于隔板的设置可以实现多动物的同环境和同条件下进行对比实验,提高了实验效率等;通过耐高压玻璃的设置,提高了观察口的面积,便于观察;通过设置过滤器和湿化器使实验时的实验环境最大限度的贴近生物体使用环境,提高实验质量;通过电磁阀的设置和PLC控制器的配合可实现瞬间的闭合氧气或加压泵的闭合,降低实验误差,提高实验质量;本使用新型结构简单,构思巧妙,便于推广。
附图说明
图1是本发明的结构示意图。
图2 是本发明的长方型高压氧舱的结构示意图。
图3是本发明的腕带式固定装置的结构示意图。
图4是本发明的控制面板示意图。
图5是本发明的半圆型高压氧舱的内部俯视图。
图6是本发明的半圆型高压氧舱的隔板的结构示意图。
图7是本发明的血氧饱和度探头的电路图。
具体实施方式
附图仅用于示例性说明,不能理解为对本专利的限制;为了更好说明本实施例,附图某些部件会有省略、放大或缩小,并不代表实际产品的尺寸;对于本领域技术人员来说,附图中某些公知结构及其说明可能省略是可以理解的。
一种动物实验用高压氧舱24,包括底座20,所述的底座20为中空的长方体,所述的底座20内部设有实验装置组,所述的实验装置组与控制装置组通过导线连接,所述的控制装置组通过导线与控制面板9相连,所述的底座20上设有高压氧舱24,且嵌在底座20内,所述的底座20的下端面上设有四个移动轮,所述的高压氧舱24与实验装置相连,所述的高压氧舱24内设有实验舱。
所述的实验装置组包括多个实验装置、清洗装置、加压泵15和可拆卸式氧气瓶13,所述的实验装置包括监护装置和加压泵15,所述的可拆卸式氧气瓶13固定在底座20内,所述的可拆卸式氧气瓶13一侧设有加压泵15,所述的加压泵15和可拆卸式氧气瓶13上方设有清洗装置,所述的清洗装置上方设有监护装置。
所述的控制装置组包括多个控制装置8,所述的控制装置8包括PLC控制器10和稳压电源11,所述的PLC控制器10通过导线与稳压电源11相连,且所述的PLC控制器10通过导线与蜂鸣器相连;所述的控制装置8通过导线与控制面板9相连,所述的控制面板9上设有电源开关、触控屏和旋钮,所述的触控屏为独立触控屏。
所述的监护装置内设有生命体征监护仪19、氧气监测装置和蜂鸣器,所述的生命体征监护仪19通过导线与PLC控制器10相连,所述的生命体征监护仪19通过导线与高压氧舱24内的血氧饱和探头25、心率探测器26和应变式呼吸传感器27相连,所述的血氧饱和探头25、心率探测器26和应变式呼吸传感器27均设在高压氧舱24内的腕带式固定装置2内,所述的腕带式固定装置2通过两端的魔术贴相连;所述的高压氧舱24内设有氧气监测装置,所述的氧气监测装置通过导线与PLC控制器10相连。
所述的清洗装置包括水泵17、水箱、喷水头6、紫外线灯7以及烘干机,喷水头6通过喷水管与水泵17相连,且所述的喷水头6设在高压氧舱24内,所述的高压氧舱24内设有排水口16,所述的排水口16通过排水管与水箱相连,所述的所述的水箱内设有水泵17和滤网14,且所述的滤网14设在排水管与水箱相连处的位置,所述的水箱上设有进水口12和出水口18,且所述的进水口12和出水口18均穿过底座20,所述的喷水管和排水管上均设有电磁阀5;所述的高压氧舱24内设有紫外线灯7和烘干机,所述的紫外线灯7和烘干机均设在高压氧舱24内侧壁上,所述的紫外线灯7、电磁阀5、烘干机和水泵17通过导线与控制装置8内的PLC控制器10相连。
所述的高压氧舱24内设有的实验舱可通过隔板28分为多个小仓,且每个小仓内均设有腕带式固定装置2,所述的隔板28上设有通气孔,所述的隔板28上设有投食槽和饮水槽,所述的高压氧舱24上设有快接口组4,所述的快接口组4通过快接头与气管和水管的一端相连,所述的气管和水管的另一端通与电磁阀5一端相连。
所述的高压氧舱24通过夹紧螺母23、螺丝杆21、夹紧板22、耐高压玻璃1固定在底座20上,所述的螺丝杆21的一端固定在底座20上,另一端穿过夹紧板22并通过夹紧螺母23将耐高压玻璃1紧固在高压氧舱24上,所述的高压氧舱24和耐高压玻璃1之间设有硅胶密封条3,且硅胶密封条3设在高压氧舱24上。
所述的高压氧舱24为半圆型或长方型。
所述的加压泵15、可拆卸式氧气瓶13通过气管与电磁阀5的一端相连,所述的电磁阀5通过导线与PLC控制器10相连。
所述的长方型的高压氧舱24底面为坡面,且地面最低的地方设有排水口16。
高压氧效果实验:本研究通过200只小鼠使用该实验用高压氧舱24进行考察,考察经过该实验用高压氧舱24对小鼠的效果。测试项目分为小鼠的紧张性和小鼠进行高压氧治疗的副作用两个大方面。
1.紧张性测试项目:主要通过测定小鼠在正常环境下的血压和心率、人用高压氧舱24环境下的血压和心率和该实验用高压氧舱24环境下的血压和心率,并进行比较。分为A、B两组。
A组比较小鼠血压,分为血压在正常范围的小鼠(5分)、血压高于正常范围20%以内的小鼠(4分)、血压高于正常范围20~40%的小鼠(3分)、血压高于正常范围40~60%的小鼠(2分);以及血压高于正常范围60%以上的小鼠(1分)。小鼠正常收缩压113(95~125)mmHg、舒张压81(67~90)mmHg。
5分 | 4分 | 3分 | 2分 | 1分 | 平均得分 | |
正常环境 | 144只 | 36只 | 14只 | 6只 | 0只 | 4.59分 |
人用高压氧舱24环境 | 24只 | 46只 | 82只 | 30只 | 18只 | 3.14分 |
该实验用高压氧舱24环境 | 52只 | 90只 | 48只 | 6只 | 4只 | 3.9分 |
B组比较小鼠心率,分为心率在正常范围的小鼠(5分)、心率高于正常范围20%以内的小鼠(4分)、心率高于正常范围20~40%的小鼠(3分)、心率高于正常范围40~60%的小鼠(2分);以及血压和心率高于正常范围60%以上的小鼠(1分)。小鼠正常心率为625(470~780)次/分。
5分 | 4分 | 3分 | 2分 | 1分 | 平均得分 | |
正常环境 | 150只 | 32只 | 12只 | 6只 | 0只 | 4.63分 |
人用高压氧舱24环境 | 30只 | 42只 | 82只 | 26只 | 20只 | 3.18分 |
该实验用高压氧舱24环境 | 46只 | 94只 | 42只 | 10只 | 8只 | 3.8分 |
A组比较小鼠血压,分为血压在正常范围的小鼠(5分)、血压高于正常范围20%以内的小鼠(4分)、血压高于正常范围20~40%的小鼠(3分)、血压高于正常范围40~60%的小鼠(2分);以及血压高于正常范围60%以上的小鼠(1分)。小鼠正常收缩压113(95~125)mmHg、舒张压81(67~90)mmHg。
2.副作用测试项目:高压氧舱24的主要副作用为氧中毒、气压伤和减压病。
主要副作用简介:(1)氧中毒:指高压或常压下,吸入高浓度的氧达一定时程后,氧对机体产生的功能性或器质性损害。氧中毒可分为中枢型、肺型、溶血型和眼型。无论发生哪一型氧中毒,整个机体均同时受害。临床上,在高于0.3MPa压力下吸氧,常规治疗时随意延长吸氧时间,常压下长时间吸入浓度高于50%的氧是氧中毒的常见原因。 其机理大致有三个方面:① 氧对中枢代谢的毒性作用;②氧对酶的毒性作用; ③自由基的过量产生。 氧中毒一发生,立即停止吸氧,一般可以缓解症状。维生素E、C、K、镁离子制剂等可以预防氧中毒。
(2)气压伤:常见的有中耳气压伤、副鼻窦气压伤和肺气压伤。另外,减压中气胸病人未及时发现和处理,可使胸腔内气体过度膨胀,肺和心脏受压,纵膈摆动,可致病人突然死亡。
(3)减压病:减压速度过快,幅度过大,使气体在组织中的溶解度降低,在血液和组织中游离出形成气泡,造成血管气栓,组织受压的一种高危情况。所幸的是,这种情况多发生在潜水作业中,在一般的HBO治疗中十分少见。只要我们思想上重视,严格按规程操作,此病不难预防。 在超过一个大气压的环境中呼吸纯氧气叫做高压氧治疗。普通的吸氧是在一个大气压的环境下,而且吸入的也不是纯氧,氧气的浓度和压力小,没有高压氧的效果好。
通过选用200只小鼠使用一疗程(10天,每天一次,每次一小时)该实验用高压氧舱24后进行统计。
小鼠氧中毒发生率 | 小鼠气压伤发生率 | 小鼠减压病发生率 | 总计 | |
人用高压氧舱24 | 1.2% | 0.7% | 0.3% | 2.2% |
该实验用高压氧舱24 | 0.4% | 0.2% | 0.1% | 0.7% |
3.治疗效果测试项目 。
①高压氧治疗的适应症比较多,疗效比较好的疾病有:(1)各种中毒,如CO中毒、二氧化碳中毒、硫化氢中毒、氢化物中毒、氨气中毒、光气中毒、农药中毒、化学药物中毒等。
(2)溺水、自缢、电击伤、麻醉意外以及其它原因引起的脑缺氧、脑水肿、减压病等。
(3)心血管系统:冠心病、心绞痛、心肌梗塞、心源性休克。
(4)消化系统:胃、十二指肠溃疡、术后溃疡。
(5)感染:气性坏疽、破伤风及其它厌氧菌感染,病毒性脑炎等。
(6)空气栓塞。
(7)脑血栓形成、脑栓塞、脑萎缩、脑供血不全、脑挫伤、脑外伤后综合症、骨髓炎、截瘫、周围神经损伤、多发性神经炎。
(8)皮肤移植、断肢(指)再植术、脉管炎、顽固性溃疡、骨筋膜间隔区综合征、术后伤口不愈、动脉栓塞、骨愈合不良、放射性骨髓炎、挤压伤。
(9)新生儿窒息、3岁之前的脑瘫等。
(10)中心性视网膜脉络膜炎、视网膜动脉栓塞、突发性耳聋、牙周炎、口腔溃疡。
(11)皮肤科疾病:玫瑰糠疹、寻常唑疮、结节性红斑、硬皮病、神经性或糖尿病皮炎等等。
②选取CO中毒进行动物建模,进行此发明的治疗效果测试。
(1)治疗CO中毒
实验方法:1)动物模型的制备:将180只小鼠,观察1周,健康情况良好后进行实验,实验前1d禁食。所有小鼠均为雄性,70天龄,体重18-22g。将小鼠放入体积为98L的密闭染毒罐中并注入纯CO气体480ml,静式吸入含CO的空气共10min。染毒1min后动物表现活跃,5~6min后开始躁动,10min后全部小鼠昏迷。
2)动物分组:将180只一氧化碳中毒小鼠随机分为三组,每组60只。
A组:迅速放入此动物实验用高压氧舱内进行治疗。
B组:迅速放入人用高压氧舱内进行治疗。
C组:放入空气中,不进行治疗的对照组。
3)各组再随机分为不同的时间点:0min,10min,20min,30min,40min,50min,60min,70min,80min,90min,100min,每个时间点观察小鼠情况,并对小鼠进行尾尖静脉采血,动态监测染毒小鼠碳氧血红蛋白含量。(碳氧血红蛋白是由一氧化碳与血红蛋白结合而形成。一氧化碳与血红蛋白的结合力比氧与血红蛋白的结合力大200-300倍,碳氧血红蛋白的解离速度只有氧血红蛋白的1/3600。因此一氧化碳与血红蛋白结合生成碳氧血红蛋白,不仅减少了红细胞的携氧能力,而且抑制、减慢氧合血红蛋白的解离和氧的释放)。
4)碳氧血红蛋白浓度分级:
正常:(2.19±0.28)%;
轻度CO中毒(14.39±5.32)%;
中度CO中毒(27.49±7.32)%;
重度CO中毒(38.11±8.91)%。
5)从染毒开始观察意识状态,根据小鼠的感觉、运动功能,一般将意识状态分为如下 6 级;
Ⅰ级:在笼内活动如常;
Ⅱ级:在笼内活动减少;
Ⅲ级:在笼内活动减少并运动失调;
Ⅳ级:当背部放在笼的底部时能滚动(翻正反射存在)但不能站立;
Ⅴ级:翻正反射消失但对疼痛刺激有肢体回缩反应;
Ⅵ级:对任何刺激无反应。
6)实验结果:(a)0min时。
A组小鼠:碳氧血红蛋白平均42.51%,小鼠意识状态Ⅵ级。
B组小鼠:碳氧血红蛋白平均41.22%,小鼠意识状态Ⅵ级。
C组小鼠:碳氧血红蛋白平均43.14%,小鼠意识状态Ⅵ级。
(b)10min时。
A组小鼠:碳氧血红蛋白平均32.31%,小鼠意识状态Ⅲ级。
B组小鼠:碳氧血红蛋白平均37.54%,小鼠意识状态Ⅳ级。
C组小鼠:碳氧血红蛋白平均40.17%,小鼠意识状态Ⅴ级。
(c)20min时。
A组小鼠:碳氧血红蛋白平均26.34%,小鼠意识状态Ⅲ级。
B组小鼠:碳氧血红蛋白平均31.21%,小鼠意识状态Ⅲ级。
C组小鼠:碳氧血红蛋白平均35.96%,小鼠意识状态Ⅳ级。
(d)30min时。
A组小鼠:碳氧血红蛋白平均23.47%,小鼠意识状态Ⅱ级。
B组小鼠:碳氧血红蛋白平均25.24%,小鼠意识状态Ⅲ级。
C组小鼠:碳氧血红蛋白平均33.11%,小鼠意识状态Ⅳ级。
(e)40min时。
A组小鼠:碳氧血红蛋白平均22.07%,小鼠意识状态Ⅱ级。
B组小鼠:碳氧血红蛋白平均23.94%,小鼠意识状态Ⅱ级。
C组小鼠:碳氧血红蛋白平均31.41%,小鼠意识状态Ⅳ级。
(f)50min时。
A组小鼠:碳氧血红蛋白平均17.14%,小鼠意识状态Ⅰ级。
B组小鼠:碳氧血红蛋白平均20.97%,小鼠意识状态Ⅱ级。
C组小鼠:碳氧血红蛋白平均25.62%,小鼠意识状态Ⅲ级。
(g)60min时。
A组小鼠:碳氧血红蛋白平均16.15%,小鼠意识状态Ⅰ级。
B组小鼠:碳氧血红蛋白平均19.84%,小鼠意识状态Ⅰ级。
C组小鼠:碳氧血红蛋白平均22.61%,小鼠意识状态Ⅲ级。
(h)70min时。
A组小鼠:碳氧血红蛋白平均14.47%,小鼠意识状态Ⅰ级。
B组小鼠:碳氧血红蛋白平均17.93%,小鼠意识状态Ⅰ级。
C组小鼠:碳氧血红蛋白平均21.54%,小鼠意识状态Ⅱ级。
(i)80min时。
A组小鼠:碳氧血红蛋白平均13.81%,小鼠意识状态Ⅰ级。
B组小鼠:碳氧血红蛋白平均15.41%,小鼠意识状态Ⅰ级。
C组小鼠:碳氧血红蛋白平均19.91%,小鼠意识状态Ⅱ级。
(j)90min时。
A组小鼠:碳氧血红蛋白平均11.57%,小鼠意识状态Ⅰ级。
B组小鼠:碳氧血红蛋白平均13.46%,小鼠意识状态Ⅰ级。
C组小鼠:碳氧血红蛋白平均17.51%,小鼠意识状态Ⅰ级。
(k)100min时。
A组小鼠:碳氧血红蛋白平均10.17%,小鼠意识状态Ⅰ级。
B组小鼠:碳氧血红蛋白平均11.97%,小鼠意识状态Ⅰ级。
C组小鼠:碳氧血红蛋白平均15.64%,小鼠意识状态Ⅰ级。
意识状态评分
0分钟 | 10分钟 | 20分钟 | 30分钟 | 40分钟 | 50分钟 | 60分钟 | 70分钟 | 80分钟 | 90分钟 | 100分钟 | |
A组 | 6 | 3 | 3 | 2 | 2 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 |
B组 | 6 | 4 | 3 | 3 | 2 | 2 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 |
C组 | 6 | 5 | 4 | 4 | 4 | 3 | 3 | 2 | 2 | 1 | 1 |
小鼠意识状态评分
碳氧血红蛋白浓度(%)
0分钟 | 10分钟 | 20分钟 | 30分钟 | 40分钟 | 50分钟 | 60分钟 | 70分钟 | 80分钟 | 90分钟 | 100分钟 | |
A组 | 42.51 | 32.31 | 26.34 | 23.47 | 22.07 | 17.14 | 16.15 | 14.47 | 13.81 | 11.57 | 10.17 |
B组 | 41.22 | 37.54 | 31.21 | 25.24 | 23.94 | 20.97 | 19.84 | 17.93 | 15.41 | 13.46 | 11.97 |
C组 | 43.14 | 40.17 | 35.96 | 33.11 | 31.41 | 25.62 | 22.61 | 21.54 | 19.91 | 17.51 | 15.64 |
碳氧血红蛋白浓度(%)
7)染毒4小时后,取材方法及组织处理。
a)从染毒罐中取出4h后,对各组实验动物进行固定并取脑。
b)断头处死实验动物,去除脑干、脑桥和小脑,取大脑,用适量冷的生理盐水淋洗组织。
c)用小剪刀于冰浴的小烧杯中将脑组织剪成边长约3mm的小块。
d)按照5~8mL/g组织的用量加入冰生理盐水,将剪好的组织块转移到预冷的玻璃匀浆器中,上下均匀匀浆 10 次,注意尽量避免出现气泡。
e)将匀浆液离心,1000~1500g,4℃,离心10min。
f)将上清液转入另一离心管中于4℃暂放;操作中尽量避免出现气泡,取样测定细胞色素氧化酶活性(小鼠细胞色素氧化酶 Elisa 试剂盒由北京千汇博联生物科技有限公司生产)。
g)以上操作均在0~4℃下完成。
观察指标:脑组织中细胞色素氧化酶活性。(细胞色素氧化酶为细胞线粒体氧化呼吸连氧化磷酸化过程中,具有电子传递链末端的酶。具有质子泵的作用,可将H+由基质抽提到膜间隙,同时可通过血红素中铁原子的氧化还原变化,把电子传递给还原的氧形成水。一氧化碳能够与细胞色素氧化酶结合,并抑制其活性。)
组别 | 细胞色素氧化酶平均活性 |
A组 | 31.35 |
B组 | 27.47 |
C组 | 19.12 |
可以看出,染毒后 4 h,A组小鼠脑组织中细胞色素氧化酶活性明显高于B组和C组。说明一氧化碳中毒后即刻给予此动物实验用高压氧舱治疗,可比使用人用高压氧舱更能提高脑组织细胞色素氧化酶活性,保护脑细胞。
通过以上医务人员使用本申请文件中的实验用高压氧舱24对小鼠进行实验,可以得出以下结论,该实验用高压氧舱24不仅可以有效降低小鼠的紧张情绪,还可降低高压氧疗法副作用的发生,而且在治疗效果上也优于人用高压氧舱。
在使用本发明时,可通过控制装置8内的PLC控制器10控制氧气监测装置监测高压氧舱24内的氧气浓度,当氧气浓度低于90%的时候可以自动增加给氧速度;可检测动物的心率、呼吸、血氧浓度,有危险时可以自动报警;通过高压氧舱24内的隔板进行分割,分割后的空间可同时同条件的对多个实验对象进行实验,可用控制面板9控制PLC控制器10对本发明的实验装置进行参数设置和控制;在使用完后可通过控制面板9控制清洗装置对高压氧舱24内进行清洗,清洗过程中喷水头6对高压氧舱24内进行喷洗,同时喷洗后的水通过排水管和滤网14后重新进入到水箱内,再次通过水泵17对高压氧舱24内进行清洗,使用后的水可通过出水口18排出,水排出后通过紫外线灯7进行消毒,消毒过后通过烘干机进行烘干。
本发明通过本新型的PLC控制器10的设置可将生命体征监护仪19和高压氧舱24有机的结合在一起,实现了对实现动物的多个体征的监测,更加多元化的监测动物在高压氧舱24内的体征和实验数据的监测,且由于隔板28的设置可以实现多动物的同环境和同条件下进行对比实验,提高了实验效率等;通过耐高压玻璃1的设置,提高了观察口的面积,便于观察;通过设置过滤器和湿化器使实验时的实验环境最大限度的贴近生物体使用环境,提高实验质量;通过电磁阀5的设置和PLC控制器10的配合可实现瞬间的闭合氧气或加压泵15的闭合,降低实验误差,提高实验质量;本使用新型结构简单,构思巧妙,便于推广。
最后说明的是,选取上述实施例并对其进行了详细的说明和描述是为了更好的说明本发明专利的技术方案,并不是想要局限于所示的细节。本领域的技术人员对本发明的技术方案进行修改或同等替换,而不脱离本发明技术方案的宗旨和范围的,均应涵盖在本发明的权利要求范围当中。
Claims (10)
1.一种动物实验用高压氧舱,包括底座,其特征在于:所述的底座为中空的长方体,所述的底座内部设有实验装置组,所述的实验装置组与控制装置组通过导线连接,所述的控制装置组通过导线与控制面板相连,所述的底座上设有高压氧舱,且嵌在底座内,所述的底座的下端面上设有四个移动轮,所述的高压氧舱与实验装置相连,所述的高压氧舱内设有实验舱。
2.根据权利要求1所述的一种动物实验用高压氧舱,其特征在于:所述的实验装置组包括多个实验装置、清洗装置、加压泵和可拆卸式氧气瓶,所述的实验装置包括监护装置和加压泵,所述的可拆卸式氧气瓶固定在底座内,所述的可拆卸式氧气瓶一侧设有加压泵,所述的加压泵和可拆卸式氧气瓶上方设有清洗装置,所述的清洗装置上方设有监护装置。
3.根据权利要求1所述的一种动物实验用高压氧舱,其特征在于:所述的控制装置组包括多个控制装置,所述的控制装置包括PLC控制器和稳压电源,所述的PLC控制器通过导线与稳压电源相连,且所述的PLC控制器通过导线与蜂鸣器相连;所述的控制装置通过导线与控制面板相连,所述的控制面板上设有电源开关、触控屏和旋钮,所述的触控屏为独立触控屏。
4.根据权利要求2或3所述的一种动物实验用高压氧舱,其特征在于:所述的监护装置内设有生命体征监护仪、氧气浓度监测装置和蜂鸣器,所述的生命体征监护仪通过导线与PLC控制器相连,所述的生命体征监护仪通过导线与高压氧舱内的血氧饱和探头、心率探测器和应变式呼吸传感器相连,所述的血氧饱和探头、心率探测器和应变式呼吸传感器均设在高压氧舱内的腕带式固定装置内,所述的腕带式固定装置通过两端的魔术贴相连;所述的高压氧舱内设有氧气浓度监测装置,所述的氧气浓度监测装置通过导线与PLC控制器相连。
5.根据权利要求2或4所述的一种动物实验用高压氧舱,其特征在于:所述的清洗装置包括水泵、水箱、喷水头、紫外线灯以及烘干机,喷水头通过喷水管与水泵相连,且所述的喷水头设在高压氧舱内,所述的高压氧舱内设有排水口,所述的排水口通过排水管与水箱相连,所述的所述的水箱内设有水泵和滤网,且所述的滤网设在排水管与水箱相连处的位置,所述的水箱上设有进水口和出水口,且所述的进水口和出水口均穿过底座,所述的喷水管和排水管上均设有电磁阀;所述的高压氧舱内设有紫外线灯和烘干机,所述的紫外线灯和烘干机均设在高压氧舱内侧壁上,所述的紫外线灯、电磁阀、烘干机和水泵通过导线与控制装置内的PLC控制器相连。
6.根据权利要求1或4所述的一种动物实验用高压氧舱,其特征在于:所述的高压氧舱内设有的实验舱可通过隔板分为多个小仓,且每个小仓内均设有腕带式固定装置,所述的隔板上设有通气孔,所述的隔板上设有投食槽和饮水槽,所述的高压氧舱上设有快接口组,所述的快接口组通过快接头与气管和水管的一端相连,所述的气管和水管的另一端通与电磁阀一端相连。
7.根据权利要求1所述的一种动物实验用高压氧舱,其特征在于:所述的高压氧舱通过夹紧螺母、螺丝杆、夹紧板、耐高压玻璃固定在底座上,所述的螺丝杆的一端固定在底座上,另一端穿过夹紧板并通过夹紧螺母将耐高压玻璃紧固在高压氧舱上,所述的高压氧舱和耐高压玻璃之间设有硅胶密封条,且硅胶密封条设在高压氧舱上。
8.根据权利要求1所述的一种动物实验用高压氧舱,其特征在于:所述的高压氧舱为半圆型或长方型。
9.根据权利要求2或4所述的一种动物实验用高压氧舱,其特征在于:所述的加压泵、可拆卸式氧气瓶通过气管与电磁阀的一端相连,所述的电磁阀通过导线与PLC控制器相连。
10.根据权利要求8所述的一种动物实验用高压氧舱,其特征在于:所述的长方型的高压氧舱底面为坡面,且最低的地方设有排水口。
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