Y染色体AZF区微缺失检测试剂盒
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种采用gDNA或外周血游离DNA检测Y染色体AZF区微缺失的试剂盒及使用该试剂盒体外检测Y染色体AZF区微缺失的方法。
背景技术
有研究报告指出,不育夫妇占已婚育龄夫妇的15%,其中男性因素约占一半,而男性不育症35%是由于遗传因素造成。Y染色体微缺失是除克式综合征外男性不育的最主要遗传因素。Y染色体大量的重复序列和回文结构在维持Y染色体进化稳定性的同时,也使Y染色体更容易发生结构重排,导致染色体部分缺失或重复。Y染色体微缺失主要发生在Y染色体上的AZF(azoospermia factor)区。AZF区包括AZFa、AZFb、AZFc三个亚区,这些位置包括许多与精子形成有关的基因,这些区域的完全缺失或部分缺失可引起男性精子发生障碍、少精、弱精甚至无精症状。
检测Y染色体AZF区微缺失现在已经成为男性不育专科的常规检查,可以为男性不育患者找出病因,为遗传咨询提供依据;也为临床医生的诊断与后续治疗提供指导。所以一种简单快速、准确度高且低成本的检测方法对临床具有重大意义。
目前检测Y染色体AZF区微缺失的方法有很多,例如多重PCR、实时荧光PCR、芯片杂交、MLPA等技术,最常用的是使用多重PCR扩增序列标签位点(Sequence Tagged Site,STS)。该方法选择AZFa、AZFb、AZFc区的STS序列进行PCR扩增,对扩增产物进行电泳,根据条带的有无判断AZF各区是否发生缺失。欧洲男科协会(European Academy of Andrology,EAA)和欧洲分子遗传质控网(European Molecular Genetics Quality Network,EMQN)联合发布的《Y染色体微缺失分子诊断实践指南》推荐了多重PCR检测Y染色体AZF区微缺失的6个STS(AZFa:sY84,sY86;AZFb:sY127,sY134;AZFc:sY254,sY255)。在此基础上,各个检测实验室可选择性地增加STS的数量进行更精确的检测。这种方法简单易行,目前使用最广泛。但是这种方法扩增的STS位点较少(6个或以上),而且电泳只能定性检测目的产物是否存在,不能检测拷贝数的变化,这对于Y染色体AZF区部分缺失的情况可能检测不精确,所以这种方法在检测准确度和灵敏度上还有待提高。其中一个方法是增加检测的STS数量,但这需要进行多次多重PCR反应,从而大大增加实验工作量和检测成本。
检测Y染色体AZF区微缺失还可以使用多重实时荧光PCR,这种方法简便快速更准确,但是探针设计繁琐并且需要报告基团修饰,价格昂贵,不适合临床推广使用。
有文献报导采用芯片杂交技术检测Y染色体AZF区微缺失,相比于多重PCR技术,可以极大地提高检测的准确度和灵敏度。但缺点是该方法需要设计大量的探针,成本较高,另外检测信号分析也较为复杂,不适合临床医生判读。
MRC-Holland公司推出一款SALSA MLPA probe-mix kit P360-A1试剂盒,用于Y染色体AZF区微缺失的检测,通过杂交、连接手段获取探针相对拷贝数信号,并根据产物长度识别对应探针,最终通过探针信号给出检测结论。该技术手段与芯片杂交技术一样,面临着检测信号分析复杂的缺陷,另外由于需要根据产物长度识别探针,在探针设计和识别上有着一定的局限性。
综上所述,目前Y染色体AZF区微缺失的检测方法存在的缺陷主要有准确度和灵敏度低、成本高、检测结果判读复杂等。因此亟需开发一种Y染色体AZF区微缺失检测的新方法,来解决现有技术存在的上述不足。
发明内容
本发明的目的是提供一种采用gDNA或外周血游离DNA检测Y染色体AZF区微缺失的引物系统、检测试剂、试剂盒和检测方法,以克服上述现有技术方法所存在的不足。
本发明的第一方面提供了一种检测Y染色体AZF区微缺失的引物组合物,其引物位点包括至少6个Y染色体AZF区位点,以及至少一个Y染色体其他特异性区域的内参位点。其中,根据每个引物位点的序列设计上、中、下游三条引物,每条引物长10~50bp,优选为20bp;每个引物位点的所述上、中、下游三条引物在参考基因组序列上自5’到3’方向是连续的。所述参考基因组序列为hg18或hg19版本。
优选地,所述引物的GC含量均为30%~70%,更优选50%。
优选地,每个引物位点的所述中游和下游引物的5’端分别进行磷酸化修饰。
优选地,每个引物位点的所述上游引物的5’端延伸15~30bp的保护序列,更优选为20bp。
优选地,每个引物位点的所述上游引物的5’端和下游引物的3’端分别延伸通用扩增引物序列。
本发明的引物系统的引物位点按照AZF区可划分到AZFa、AZFb及AZFc区的b1、b2、b3、b4、g1、g2、g3、r1、r2、r3、r4、y1、y2等不同的亚区(如图2所示)。其中b、g、r等亚区是本发明用来判定AZFc区详细缺失信息的重要参考区域。
在一个特定的实施方案中,针对Y染色体AZF区域和其他作为内部参考的特异性区域(包括SRY基因、ZFY基因和TBL1Y基因等)选定的148个引物位点,共设计了148组引物序列。这些引物序列的特点为:(1)每组引物均是以基因组上一段序列为模板来设计三条连续的引物,这三条引物连接后形成PCR模板;(2)在正常人染色体目标区域,引物位点序列存在已知且不变的拷贝数,且在目标区域之外的其他染色体区域不存在该序列;(3)这些序列引物具有接近的退火温度,波动范围<5℃;(4)与通用扩增引物序列不存在互补性;(5)内参位点仅在目标区域唯一出现,在基因组其他区域不存在该位点。
所述引物位点的上、中、下游三条引物的序列分别选自SEQ ID NO:n、SEQ ID NO:(n+148)、SEQ ID NO:(n+296),其中n为1~148的自然数。
最优实施方式中,所述引物组合物包括序列分别为SEQ ID NO:1-444的全部引物。
本发明的第二方面提供了上述引物组合物组合物的用途。
上述引物组合物可用于制备用于检测Y染色体AZF区微缺失的诊断试剂或试剂盒。
上述引物组合物可用于体外检测Y染色体AZF区微缺失。所述检测可以是诊断目的(例如诊断男性不育等),也可以是非诊断目的(例如实验室研究等)。
本发明的第三部分提供了一种检测Y染色体AZF区微缺失的检测试剂,其包括上述引物组合物。
本发明的第四部分提供了一种检测Y染色体AZF区微缺失的试剂盒,其包括上述引物组合物。优选地,所述试剂盒还包括DNA提取试剂、通用PCR引物、DNA聚合酶、DNA连接酶、末端转移酶、dNTPs、反应缓冲液、用于纯化PCR反应产物的磁珠及缓冲液;更优选地,还包括阴性质控品和阳性质控品;最优选地,还包括用于高通量测序的试剂。所述的高通量测序方法选自Ion Torrent的PGM、Proton或Illumina的Hiseq、Miseq。
本发明的第五方面提供了一种体外检测Y染色体AZF区微缺失的方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)提取gDNA或外周血游离DNA作为模板;
(2)将本发明的引物组合物与DNA模板进行杂交反应;
(3)杂交产物进行连接反应;
(4)将连接产物进行纯化;
(5)将纯化后的产物进行PCR扩增,构建文库;
(6)将PCR扩增产物进行高通量测序;
(7)测序数据分析。
优选地,包括以下步骤:
(1)分离、提取待检测样本的组织细胞gDNA或外周血的游离DNA片段;
(2)将样本DNA模板末端采用生物素标记,标记后的DNA模板和磁珠结合;
(3)将权利要求1-20任一项中定义的引物组合物与DNA模板进行杂交、连接反应,反应产物进行扩增,扩增产物构成文库;
(4)将扩增产物进行高通量测序;
(5)数据分析:将测序数据进行目标区域的定位,即与用来设计引物的参考基因组序列片段进行比对,根据比对结果计算每个目标区域的测序序列条数,根据目标区域的测序序列条数计算AZF区各小区域的拷贝数信息,通过与正常人理论值比较分析拷贝数的变化,从而判定AZF区微缺失检测信息。
检测结论的判断标准如下:
(1)若AZFa区所有或部分位点拷贝数为0,其余区域位点拷贝数不变,则检测结论为AZFa区缺失或部分缺失;
(2)若AZFb区的y3、y4、b5、b6和/或u1亚区位点拷贝数变为0或部分拷贝数发生变化,AZFa区及AZFc区位点拷贝数不变,则检测结论根据变化信息相应为AZFb区缺失或部分缺失;
(3)若g1、g2、g3区位点拷贝数减少1/3~2/3,r1、r2、r3、r4区位点拷贝数减少1/2以上,b1、b2、b3、b4区位点拷贝数减少1/4,y1、y2区位点拷贝数减少1/2,其余区域位点拷贝数不变,则检测结论为gr/gr缺失;
(4)若b1、b2、b3、b4区位点拷贝数减少1/2左右,g1、g2、g3、r1、r2、r3、r4、y1、y2、t1、t2区位点拷贝数为0,其余区域位点拷贝数不变,则检测结论为b2/b4缺失,亦称作AZFc区缺失;
(5)若同时存在(2)与(4)的拷贝数变化信息,则检测结论为AZFb+c区缺失,具体缺失的亚区区域可根据位点拷贝数变化来判定。
所述检测可以是诊断目的(例如诊断男性不育等),也可以是非诊断目的(例如实验室研究等)。
附图说明
图1本发明的设计流程图。首先提取DNA模板,然后进行杂交、连接反应,并对产物进行纯化,之后进行PCR扩增并采用高通量测序技术对文库进行测序,最后分析测序数据。
图2目标检测区域的详细亚区划分。Y染色体AZF区可详细划分为AZFa、AZFbc区的y、b、g、r、t、grey等不同的亚区,有的亚区可能存在顺式重复或回文重复区域,例如g1、g2、g3三个重复区。
图3实施例1的拷贝数变化信息。
图4实施例2的拷贝数变化信息。
图5实施例3的拷贝数变化信息。
图6实施例4的拷贝数变化信息。
具体实施方式
下面将对本发明实施例中的方案进行清楚完整的描述,但本发明并不受其限制,所描述的实施例仅仅是本发明的一部分实施例,基于本发明的实施例,本领域技术人员所获得的所有其他实施例,都属于本发明的保护范围;同样地,实施例的附图仅仅是本发明一部分实施例的附图,本领域技术人员根据这些附图所获得的其他附图,也都属于本发明的保护范围。
下列实施例中使用的杂交引物为表1所示的引物组合物(其中,上游引物序列分别为SEQ ID NO:1-148,中游引物序列分别为SEQ ID NO:149-296,下游引物序列分别为SEQID NO:297-444),未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件,或按照制造厂商所建议的条件。
表1 杂交引物序列
实施例1 毛囊样本检测AZF区微缺失
一、材料:
1.标本:样本来源为合作医院接诊的一位男性少精症患者的毛囊样本,经医院采用多重PCR技术检测为Y染色体AZFc区缺失。
2.试剂:微量基因组DNA提取试剂盒、末端补平试剂盒、dsDNA HS分析试剂盒、生物素、标记酶、标记酶反应液、超纯水、杂交缓冲液、杂交引物、DNA溶解液(Low TE)、连接酶、连接酶反应液、PCR反应液、标签接头、洗涤液、XP磁珠、异丙醇、无水乙醇、MyOneTM Streptavidin C1 beads(Myone C1磁珠)、1M NaOH、Nuclease-freeWater(not DEPC-treated)、Ion PGMTM Template OT2 200 Kit。
3.器材:高速冷冻离心机、水浴锅、超声打断仪Covaris M220、磁力架、PCR仪、IonOneTouchTM 2 Instrument、Ion OneTouchTM ES、Ion torrentPGM测序仪、Ion 316TM Chipv2、四维旋转混合仪、迷你离心机、漩涡振荡器、Qubit2.0、移液器(1000/200/100/10/2.5μL)。
二、操作步骤:
1.提取毛囊样本中的基因组DNA。超声打断成150bp大小片段,按照下表配制体系,室温静置20分钟补平末端。
成分 |
体积 |
Fragmented gDNA |
158μL |
5×End Repair Buffer |
40μL |
End Repair Enzyme |
2μL |
总体系 |
200μL |
将完成补平的体系加入360μL XP磁珠,混匀后室温放置5分钟,磁吸待液体澄清后弃上清,不取下离心管,加入75%乙醇500μL,来回倾斜磁力架冲洗磁珠表面5~10次,吸弃液体后再重复清洗一遍。取下离心管瞬时离心,重新放置在磁力架上至液体澄清后弃掉上清液,晾干磁珠,加入DNA溶解液,混匀后磁吸收集上清。
2.DNA标记
按照下表制备反应体系,混匀后37℃温浴1小时。
试剂 |
体积 |
DNA |
38.75μL |
生物素 |
0.25μL |
标记酶 |
1μL |
标记酶反应液 |
10μL |
总体系 |
50μL |
3.标记产物的纯化
加等体积异丙醇(预冷-20℃),-70℃放置1小时以上或-20℃放置过夜,4℃13000rpm离心40min。用300μL新配制的75%乙醇洗涤沉淀,4℃13000rpm离心8min,弃上清。共洗两次。室温晾干沉淀后用13μL DNA溶解液溶解DNA。
4.杂交
准备Myone C1磁珠:(提前30min取出Myone C1磁珠室温孵育)漩涡振荡大于30s彻底混匀,取10μL磁珠移到一个新的PCR管中,磁吸3min,弃上清5μL,备用。按照下表混合反应体系,轻轻混匀(避免产生气泡),PCR仪上95℃反应5min,反应结束后迅速冰置10min。
试剂 |
体积 |
标记纯化产物 |
12.5μL |
杂交缓冲液 |
22.5μL |
杂交引物 |
10μL |
总体系 |
45μL |
冰置结束后,瞬时离心,将反应液加入准备好的Myone C1磁珠中,漩涡振荡30s混匀,避免有气泡,室温22~25℃(室温不能低于20℃,最高不能超过27℃)轻轻旋转混合2h。
5.杂交产物的纯化
将PCR管置于磁力架上磁吸3min,待液体澄清后弃上清,取下PCR管(切勿使磁珠干燥)。加50μL洗涤液,吹吸混匀,磁吸后弃上清,取下离心管(切勿使磁珠干燥)。共洗涤3次。加入45μL DNA溶解液重悬磁珠。
6.连接
将下表的连接体系置于PCR仪上,37℃反应1小时。
试剂 |
体积 |
杂交纯化产物 |
45μL |
连接酶 |
0.1μL |
连接酶反应液 |
5μL |
总体系 |
50.1μL |
7.连接产物的纯化
将完成连接反应的PCR管置于磁力架上磁吸3min,液体澄清后弃上清,取下PCR管(切勿使磁珠干燥)。加50μL洗涤液,吹吸混匀,磁吸后弃上清,取下离心管。共洗涤2次。加入23μL DNA溶解液重悬磁珠,PCR仪上95℃变性3min,立即放到磁力架上磁吸,吸取上清液体至新的PCR管中。
8.PCR
按照下表加反应体系:
连接纯化产物 |
23μL |
PCR反应液 |
25μL |
PCR引物 |
1μL |
标签接头 |
1μL |
总体系 |
50μL |
按照下述程序进行反应:
9.PCR产物的纯化
将XP磁珠提前30min取出平衡至室温,漩涡振荡30s以上,各取20μL、97μL放入新的EP管中并做好标记。取45μL PCR产物加入20μL XP磁珠中,混匀后室温放置5min。磁吸3~5min,待液体彻底澄清后取上清62μL到97μLXP磁珠中,混匀后室温放置5min。磁吸待液体澄清后弃上清,不取下离心管,加入75%乙醇150μL,来回倾斜磁力架,使液体冲洗XP磁珠的表面5~10次,并在1min内吸弃液体。共洗两次。取下离心管瞬时离心,再重新放置在磁力架上,至液体澄清时弃掉上清。晾干磁珠,加入15μL DNA溶解液,混匀后室温放置3~5min,磁吸后将上清(即文库)转移至新的EP管中。
10.文库测序
取2μL文库用Qubit2.0进行浓度测定。将文库稀释至18pmol/μL经用Ion PGMTMTemplate OT2 200Kit制备成乳液PCR样本,Ion OneTouchTM ES上进行产物富集后在IonTorrent PGM(life technology)上测序。
11.数据分析
首先过滤低质量测序序列,去掉小于70bp的测序片段,将过滤后的序列比对到148个用来设计引物的参考基因组序列片段,计算这148个目标区域的总测序序列条数N和各自的测序序列条数Ni。
利用10个内部参考区域的引物序列条数的均值N0,将138个AZF区域的引物序列条数进行均一化,公式为:Ci=Ni/N0。
根据每个引物的Ci值,计算AZF区划分的每个小区的均值,即得到待检测样本AZF区各小区的真实拷贝数信息,例如g区有10个引物位点,对应的Ci值分别为g1、g2、g3…g10,则g区拷贝数:
通过待检测样本AZF区各小区的真实拷贝数信息与理论值的变化比较,发现AZFc区内g、r区拷贝数变为0,b区拷贝数减少一半,而AZFa和AZFb区拷贝数不变(如图3所示)。检测结论为该样本Y染色体AZF区发生b2/b4缺失。
实施例2 外周血样本检测AZF区微缺失
一、材料:
1.标本:样本来源为合作医院接诊的一位男性少精症患者的外周血样本,经医院采用多重PCR技术检测为Y染色体AZFc区部分缺失。
2.试剂:血浆DNA提取试剂盒、dsDNA HS分析试剂盒、生物素、标记酶、标记酶反应液、超纯水、杂交缓冲液、杂交引物、DNA溶解液(Low TE)、连接酶、连接酶反应液、PCR反应液、标签接头、洗涤液、XP磁珠、异丙醇、无水乙醇、MyOneTM StreptavidinC1 beads(Myone C1磁珠)、1M NaOH、Nuclease-free Water(not DEPC-treated)、IonPGMTM Template OT2 200 Kit。
3.器材:高速冷冻离心机、水浴锅、磁力架、PCR仪、Ion OneTouchTM 2 Instrument、Ion OneTouchTM ES、Ion torrentPGM测序仪、Ion 316TM Chip v2、四维旋转混合仪、迷你离心机、漩涡振荡器、Qubit2.0、移液器(1000/200/100/10/2.5μL)。
二、操作步骤:
1.用血浆DNA提取试剂盒提取血浆DNA。
2.DNA标记
按照下表制备反应体系,混匀后37℃温浴1小时。
试剂 |
体积 |
DNA |
38.75μL |
生物素 |
0.25μL |
标记酶 |
1μL |
标记酶反应液 |
10μL |
总体系 |
50μL |
3.标记产物的纯化
加等体积异丙醇(预冷-20℃),-70℃放置1小时以上或-20℃放置过夜,4℃13000rpm离心40min。用300μL新鲜配制的75%乙醇洗涤沉淀,4℃13000rpm离心8min,弃上清。共洗两次。室温晾干沉淀后用13μL DNA溶解液溶解DNA。
4.杂交
准备Myone C1磁珠:(提前30min取出Myone C1磁珠室温孵育)漩涡振荡大于30s彻底混匀,取10μL磁珠移到一个新的PCR管中,磁吸3min,弃上清5μL,备用。按照下表混合反应体系,轻轻混匀(避免产生气泡),PCR仪上95℃反应5min,反应结束后迅速冰置10min。
试剂 |
体积 |
标记纯化产物 |
12.5μL |
杂交缓冲液 |
22.5μL |
杂交引物 |
10μL |
总体系 |
45μL |
冰置结束后,瞬时离心,将反应液加入准备好的Myone C1磁珠中,漩涡振荡30s混匀,避免有气泡,室温22~25℃(室温不能低于20℃,最高不能超过27℃)轻轻旋转混合2h。
5.杂交产物的纯化
将PCR管置于磁力架上磁吸3min,待液体澄清后弃上清,取下PCR管(切勿使磁珠干燥)。加50μL洗涤液,吹吸混匀,磁吸后弃上清,取下离心管(切勿使磁珠干燥)。共洗涤3次。加入45μL DNA溶解液重悬磁珠。
6.连接
将下表的连接体系置于PCR仪上,37℃反应1小时。
试剂 |
体积 |
杂交纯化产物 |
45μL |
连接酶 |
0.1μL |
连接酶反应液 |
5μL |
总体系 |
50.1μL |
7.连接产物的纯化
将完成连接反应的PCR管置于磁力架上磁吸3min,液体澄清后弃上清,取下PCR管(切勿使磁珠干燥)。加50μL洗涤液,吹吸混匀,磁吸后弃上清,取下离心管。共洗涤2次。加入23μL DNA溶解液重悬磁珠,PCR仪上95℃变性3min,立即放到磁力架上磁吸,吸取上清液移至新的PCR管中。
8.PCR
按照表格加反应体系。
试剂 |
体积 |
连接纯化产物 |
23μL |
PCR反应液 |
25μL |
PCR引物 |
1μL |
标签接头 |
1μL |
总体系 |
50μL |
按照下述程序进行反应。
9.PCR产物的纯化
将XP磁珠提前30min取出平衡至室温,漩涡振荡30s以上,各取20μL、97μL放入新的EP管中并做好标记。取45μL PCR产物加入20μL XP磁珠中,混匀后室温放置5min。磁吸3~5min,待液体彻底澄清后取上清62μL到97μL XP磁珠中,混匀后室温放置5min。磁吸待液体澄清后弃上清,不取下离心管,加入75%乙醇150μL,来回倾斜磁力架,使液体冲洗XP磁珠的表面5~10次,并在1min内吸弃液体。共洗两次。取下离心管瞬时离心,再重新放置在磁力架上,至液体澄清时弃掉上清。晾干磁珠,加入15μL DNA溶解液,混匀后室温放置3~5min,磁吸后将上清(即文库)转移至新的EP管中。
10.文库测序
取2μL文库用Qubit2.0进行浓度测定。将文库稀释至18pmol/μL经用Ion PGMTMTemplate OT2 200 Kit制备成乳液PCR样本,Ion OneTouchTM ES上进行产物富集后在IonTorrent PGM(life technology)上测序。
11.数据分析
首先过滤低质量测序序列,去掉小于70bp的测序片段,将过滤后的序列比对到148个用来设计引物的参考基因组序列片段,计算这148个目标区域的总测序序列条数N和各自的测序序列条数Ni。
利用10个内部参考区域的引物序列条数的均值N0,将138个AZF区域的引物序列条数进行均一化,公式为:Ci=Ni/N0。
根据每个引物的Ci值,计算AZF区划分的每个小区的均值,即得到待检测样本AZF区各小区的真实拷贝数信息,例如g区有10个引物位点,对应的Ci值分别为g1、g2、g3…g10,则g区拷贝数:
通过待检测样本AZF区各小区的真实拷贝数信息与理论值的变化比较,发现AZFc区内g区拷贝数变为0,而r区存在近1/4的拷贝数,判定b2/b3发生倒位;同时发现b区拷贝数减少一半,AZFa和AZFb区拷贝数不变(如图4所示)检测结论为该样本Y染色体AZF区发生b2/b3倒位后g1/b4区缺失。
实施例3 外周血样本检测AZF区微缺失
一、材料:
1.标本:样本来源为合作医院接诊的一位男性少精症患者的外周血样本,经医院采用多重PCR技术检测为Y染色体AZF区正常。
2.试剂:血浆DNA提取试剂盒、dsDNA HS分析试剂盒、生物素、标记酶、标记酶反应液、超纯水、杂交缓冲液、杂交引物、DNA溶解液(Low TE)、连接酶、连接酶反应液、PCR反应液、标签接头、洗涤液、XP磁珠、异丙醇、无水乙醇、MyOneTM StreptavidinC1 beads(Myone C1磁珠)、1M NaOH、Nuclease-free Water(not DEPC-treated)、IonPGMTM Template OT2 200 Kit。
3.器材:高速冷冻离心机、水浴锅、磁力架、PCR仪、Ion OneTouchTM 2 Instrument、Ion OneTouchTM ES、Ion torrentPGM测序仪、Ion 316TM Chip v2、四维旋转混合仪、迷你离心机、漩涡振荡器、Qubit2.0、移液器(1000/200/100/10/2.5μL)。
二、操作步骤:
1.用血浆DNA提取试剂盒提取血浆DNA。
2.DNA标记
按照下表制备反应体系,混匀后37℃温浴1小时。
试剂 |
体积 |
DNA |
38.75μL |
生物素 |
0.25μL |
标记酶 |
1μL |
标记酶反应液 |
10μL |
总体系 |
50μL |
3.标记产物的纯化
加等体积异丙醇(预冷-20℃),-70℃放置1小时以上或-20℃放置过夜,4℃13000rpm离心40min。用300μL新鲜配制的75%乙醇洗涤沉淀,4℃13000rpm离心8min,弃上清。共洗两次。室温晾干沉淀后用13μL DNA溶解液溶解DNA。
4.杂交
准备Myone C1磁珠:(提前30min取出Myone C1磁珠室温孵育)漩涡振荡大于30s彻底混匀,取10μL磁珠移到一个新的PCR管中,磁吸3min,弃上清5μL,备用。按照下表混合反应体系,轻轻混匀(避免产生气泡),PCR仪上95℃反应5min,反应结束后迅速冰置10min。
试剂 |
体积 |
标记纯化产物 |
12.5μL |
杂交缓冲液 |
22.5μL |
杂交引物 |
10μL |
总体系 |
45μL |
冰置结束后,瞬时离心,将反应液加入准备好的Myone C1磁珠中,漩涡振荡30s混匀,避免有气泡,室温22~25℃(室温不能低于20℃,最高不能超过27℃)轻轻旋转混合2h。
5.杂交产物的纯化
将PCR管置于磁力架上磁吸3min,待液体澄清后弃上清,取下PCR管(切勿使磁珠干燥)。加50μL洗涤液,吹吸混匀,磁吸后弃上清,取下离心管(切勿使磁珠干燥)。共洗涤3次。加入45μL DNA溶解液重悬磁珠。
6.连接
将下表的连接体系置于PCR仪上,37℃反应1小时。
试剂 |
体积 |
杂交纯化产物 |
45μL |
连接酶 |
0.1μL |
连接酶反应液 |
5μL |
总体系 |
50.1μL |
7.连接产物的纯化
将完成连接反应的PCR管置于磁力架上磁吸3min,液体澄清后弃上清,取下PCR管(切勿使磁珠干燥)。加50μL洗涤液,吹吸混匀,磁吸后弃上清,取下离心管。共洗涤2次。加入23μL DNA溶解液重悬磁珠,PCR仪上95℃变性3min,立即放到磁力架上磁吸,吸取上清液移至新的PCR管中。
8.PCR
按照表格加反应体系。
试剂 |
体积 |
连接纯化产物 |
23μL |
PCR反应液 |
25μL |
PCR引物 |
1μL |
标签接头 |
1μL |
总体系 |
50μL |
按照下述程序进行反应。
9.PCR产物的纯化
将XP磁珠提前30min取出平衡至室温,漩涡振荡30s以上,各取20μL、97μL放入新的EP管中并做好标记。取45μL PCR产物加入20μL XP磁珠中,混匀后室温放置5min。磁吸3~5min,待液体彻底澄清后取上清62μL到97μL XP磁珠中,混匀后室温放置5min。磁吸待液体澄清后弃上清,不取下离心管,加入75%乙醇150μL,来回倾斜磁力架,使液体冲洗XP磁珠的表面5~10次,并在1min内吸弃液体。共洗两次。取下离心管瞬时离心,再重新放置在磁力架上,至液体澄清时弃掉上清。晾干磁珠,加入15μL DNA溶解液,混匀后室温放置3~5min,磁吸后将上清(即文库)转移至新的EP管中。
10.文库测序
取2μL文库用Qubit2.0进行浓度测定。将文库稀释至18pmol/μL经用Ion PGMTMTemplate OT2 200 Kit制备成乳液PCR样本,Ion OneTouchTM ES上进行产物富集后在IonTorrent PGM(life technology)上测序。
11.数据分析
首先过滤低质量测序序列,去掉小于70bp的测序片段,将过滤后的序列比对到148个用来设计引物的参考基因组序列片段,计算这148个目标区域的总测序序列条数N和各自的测序序列条数Ni。
利用10个内部参考区域的引物序列条数的均值N0,将138个AZF区域的引物序列条数进行均一化,公式为:Ci=Ni/N0。
根据每个引物的Ci值,计算AZF区划分的每个小区的均值,即得到待检测样本AZF区各小区的真实拷贝数信息,例如g区有10个引物位点,对应的Ci值分别为g1、g2、g3…g10,则g区拷贝数:
通过待检测样本AZF区各小区的真实拷贝数信息与理论值的变化比较,发现AZFa、AZFb、AZFc区拷贝数不变(如图5所示)。检测结论为该样本Y染色体AZF区正常,造成患者少精症状的原因是AZF区之外的遗传因素或非遗传因素。
实施例4 外周血样本检测AZF区微缺失
一、材料:
1.标本:样本来源为合作医院接诊的一位男性少精症患者的外周血样本,经医院采用多重PCR技术检测为Y染色体AZFb+c区缺失。
2.试剂:血液基因组DNA提取试剂盒、末端补平试剂盒、dsDNA HS分析试剂盒、生物素、标记酶、标记酶反应液、超纯水、杂交缓冲液、杂交引物、DNA溶解液(Low TE)、连接酶、连接酶反应液、PCR反应液、标签接头、洗涤液、XP磁珠、异丙醇、无水乙醇、MyOneTM Streptavidin C1 beads(Myone C1磁珠)、1M NaOH、Nuclease-freeWater(not DEPC-treated)、Ion PGMTM Template OT2 200 Kit。
3.器材:高速冷冻离心机、水浴锅、超声打断仪Covaris M220、磁力架、PCR仪、IonOneTouchTM 2 Instrument、Ion OneTouchTM ES、Ion torrentPGM测序仪、Ion 316TM Chipv2、四维旋转混合仪、迷你离心机、漩涡振荡器、Qubit2.0、移液器(1000/200/100/10/2.5μL)。
二、操作步骤:
1.提取外周血样本中的基因组DNA。超声打断成150bp大小片段,按照下表配制体系,室温静置20分钟补平末端。
成分 |
体积 |
Fragmented gDNA |
158μL |
5×End Repair Buffer |
40μL |
End Repair Enzyme |
2μL |
总体系 |
200μL |
将完成补平的体系加入360μL XP磁珠,混匀后室温放置5分钟,磁吸待液体澄清后弃上清,不取下离心管,加入75%乙醇500μL,来回倾斜磁力架冲洗磁珠表面5~10次,吸弃液体后再重复清洗一遍。取下离心管瞬时离心,重新放置在磁力架上至液体澄清后弃掉上清液,晾干磁珠,加入DNA溶解液,混匀后磁吸收集上清。
2.DNA标记
按照下表制备反应体系,混匀后37℃温浴1小时。
试剂 |
体积 |
DNA |
38.75μL |
生物素 |
0.25μL |
标记酶 |
1μL |
标记酶反应液 |
10μL |
总体系 |
50μL |
3.标记产物的纯化
加等体积异丙醇(预冷-20℃),-70℃放置1小时以上或-20℃放置过夜,4℃13000rpm离心40min。用300μL新鲜配制的75%乙醇洗涤沉淀,4℃13000rpm离心8min,弃上清。共洗两次。室温晾干沉淀后用13μL DNA溶解液溶解DNA。
4.杂交
准备Myone C1磁珠:(提前30min取出Myone C1磁珠室温孵育)漩涡振荡大于30s彻底混匀,取10μL磁珠移到一个新的PCR管中,磁吸3min,弃上清5μL,备用。按照下表混合反应体系,轻轻混匀(避免产生气泡),PCR仪上95℃反应5min,反应结束后迅速冰置10min。
试剂 |
体积 |
标记纯化产物 |
12.5μL |
杂交缓冲液 |
22.5μL |
杂交引物 |
10μL |
总体系 |
45μL |
冰置结束后,瞬时离心,将反应液加入准备好的Myone C1磁珠中,漩涡振荡30s混匀,避免有气泡,室温22~25℃(室温不能低于20℃,最高不能超过27℃)轻轻旋转混合2h。
5.杂交产物的纯化
将PCR管置于磁力架上磁吸3min,待液体澄清后弃上清,取下PCR管(切勿使磁珠干燥)。加50μL洗涤液,吹吸混匀,磁吸后弃上清,取下离心管(切勿使磁珠干燥)。共洗涤3次。加入45μL DNA溶解液重悬磁珠。
6.连接
将下表的连接体系置于PCR仪上,37℃反应1小时。
试剂 |
体积 |
杂交纯化产物 |
45μL |
连接酶 |
0.1μL |
连接酶反应液 |
5μL |
总体系 |
50.1μL |
7.连接产物的纯化
将完成连接反应的PCR管置于磁力架上磁吸3min,液体澄清后弃上清,取下PCR管(切勿使磁珠干燥)。加50μL洗涤液,吹吸混匀,磁吸后弃上清,取下离心管。共洗涤2次。加入23μL DNA溶解液重悬磁珠,PCR仪上95℃变性3min,立即放到磁力架上磁吸,吸取上清液移至新的PCR管中。
8.PCR
按照表格加反应体系。
试剂 |
体积 |
连接纯化产物 |
23μL |
PCR反应液 |
25μL |
PCR引物 |
1μL |
标签接头 |
1μL |
总体系 |
50μL |
按照下述程序进行反应。
9.PCR产物的纯化
将XP磁珠提前30min取出平衡至室温,漩涡振荡30s以上,各取20μL、97μL放入新的EP管中并做好标记。取45μL PCR产物加入20μL XP磁珠中,混匀后室温放置5min。磁吸3~5min,待液体彻底澄清后取上清62μL到97μL XP磁珠中,混匀后室温放置5min。磁吸待液体澄清后弃上清,不取下离心管,加入75%乙醇150μL,来回倾斜磁力架,使液体冲洗XP磁珠的表面5~10次,并在1min内吸弃液体。共洗两次。取下离心管瞬时离心,再重新放置在磁力架上,至液体澄清时弃掉上清。晾干磁珠,加入15μL DNA溶解液,混匀后室温放置3~5min,磁吸后将上清(即文库)转移至新的EP管中。
10.文库测序
取2μL文库用Qubit2.0进行浓度测定。将文库稀释至18pmol/μL经用Ion PGMTMTemplate OT2 200 Kit制备成乳液PCR样本,Ion OneTouchTM ES上进行产物富集后在IonTorrent PGM(life technology)上测序。
11.数据分析
首先过滤低质量测序序列,去掉小于70bp的测序片段,将过滤后的序列比对到148个用来设计引物的参考基因组序列片段,计算这148个目标区域的总测序序列条数N和各自的测序序列条数Ni。
利用10个内部参考区域的引物序列条数的均值N0,将138个AZF区域的引物序列条数进行均一化,公式为:Ci=Ni/N0。
根据每个引物的Ci值,计算AZF区划分的每个小区的均值,即得到待检测样本AZF区各小区的真实拷贝数信息,例如g区有10个引物位点,对应的Ci值分别为g1、g2、g3…g10,则g区拷贝数:
通过待检测样本AZF区各小区的真实拷贝数信息与理论值的变化比较,发现AZFb区内b5、b6、u1等区及AZFc区内b、g、r等区拷贝数均变为0,AZFa拷贝数不变(如图6所示)。检测结论为该样本Y染色体AZF区发生AZFb+c区缺失。