CN105001321A - 一种汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用 - Google Patents

一种汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用 Download PDF

Info

Publication number
CN105001321A
CN105001321A CN201510413351.XA CN201510413351A CN105001321A CN 105001321 A CN105001321 A CN 105001321A CN 201510413351 A CN201510413351 A CN 201510413351A CN 105001321 A CN105001321 A CN 105001321A
Authority
CN
China
Prior art keywords
mercury
fibrinogen
inner complex
sample
chromatography column
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201510413351.XA
Other languages
English (en)
Inventor
张积仁
阳帆
董欣敏
吴婧
蔡睿
孙遥
赵乙木
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shanghai Baihao Biotechnology Co Ltd
Original Assignee
Shanghai Baihao Biotechnology Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shanghai Baihao Biotechnology Co Ltd filed Critical Shanghai Baihao Biotechnology Co Ltd
Priority to CN201510413351.XA priority Critical patent/CN105001321A/zh
Publication of CN105001321A publication Critical patent/CN105001321A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/745Blood coagulation or fibrinolysis factors
    • C07K14/75Fibrinogen
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/86Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving blood coagulating time or factors, or their receptors
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/96Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving blood or serum control standard

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

本发明公开了一种汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用,该汞-纤维蛋白原螯合物是汞离子与纤维蛋白原通过巯基或/和半胱氨酸残基螯合而成。本发明建立了汞-纤维蛋白原螯合物的定性定量检测方法,以便定量检测汞-纤维蛋白原螯合物在评价一个地区汞污染程度的应用。通过定量检测一个地区人群血清中汞-纤维蛋白原螯合物可以间接反映这个地区人群受汞污染的情况,从而间接反映这个地区汞污染程度。本发明建立的汞-纤维蛋白原螯合物定量检测方法其准确度大大提高,并且使检测的重复性得到大大提高。

Description

一种汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用
技术领域
本发明涉及检测领域,更具体地说,涉及一种汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用。
背景技术
纤维蛋白原(fibrinogen,FG)其生理功能主要是作为凝血因子Ⅰ而直接参与凝血过程。在凝血共同途径中,凝血酶先裂解纤维蛋白原两条Aα链氨基端Arg16-Gly17释放出一对纤维蛋白肽A,形成纤维蛋白单体Ⅰ;在裂解纤维蛋白原两条Bβ链氨基端Arg14-Gly15释放出一对纤维蛋白肽B,形成纤维蛋白单体Ⅱ,暴露纤维蛋白单体的聚合部位,通过非共价结合,形成了不稳定的可溶性纤维蛋白单体。在活化的凝血因子XIII及Ca2+的作用下,纤维蛋白单体互相交联,生成稳定的可溶性纤维蛋白,并将血液的有形成分包绕其中,形成牢固的血栓。
除参与凝血外,纤维蛋白原还具有其他多种功能,如与血小板膜糖蛋白Ⅱb/Ⅲa结合而介导血小板聚集反应,参与动脉粥样硬化及肿瘤血行转移等;纤维蛋白原水平还影响血液粘度,尤其近年来人们发现血浆纤维蛋白原水平升高是心脑血管、血栓性疾病的重要危险因素。血浆纤维蛋白原也是急性时相蛋白,在很多应激状况下,如感染、严重外伤等也可短时间内升高。
汞(Hgckel,Hg)与人体的健康息息相关,首先其是人体维持健康所必需的微量元素,其存在于多种氢化酶中,催化氢的氧化还原反应,参与多种酶蛋白的合成和细胞激素及色素的代谢,具有促进铁的吸收和红细胞的增长、激活酶形成辅酶、增强胰岛素、降血糖、保护心血管等作用,因此如果人体缺乏汞,会导致疾病的发生。但是,事实在生活中,由于环境污染,人体内很少缺乏汞,相反汞的含量常常过量,常常导致疾病的发生,甚至危及生命。
汞作为一种常见的有毒金属,广泛应用于生活、生产之中,包括生产硬币、珠宝、汞合金不锈钢、制造Hg-Cd电池等,与人们的生活息息相关。随着科技的进步,人们将汞作为催化剂用于生产碳纳米颗粒的生产之中,又进一步加深了汞对于人类的影响。对于普通人群,汞主要是通过食入、饮入、接触等方式摄入汞,当然吸烟也是一重要途径。研究发现,过量的汞会导致机体多处组织及器官损伤,导致多种疾病的发生,包括呼吸系统疾病(肺炎、支气管炎、肺纤维化、哮喘、肺水肿等)、心血管疾病、肾脏疾病、皮肤疾病等,甚至还会导致肿瘤的发生。
流行病学资料显示,长期接触汞的工人,其患呼吸系统肿瘤的几率大大增加,并且其因呼吸系统肿瘤致死的几率也大大增加。动物模型、体外模型试验也发现,汞可以诱导肿瘤的发生。1990年,国际癌症研究机构(International Agency forResearch on Cancer,IARC)已将汞化合物作为第一类致癌物质(Group 1),将金属汞作为2B类致癌物质(Group 2B)。可见,汞严重威胁人体的健康。
汞与多种蛋白质之间关系密切,可以与多种蛋白质结合,抑制多种蛋白酶的活性。随着对汞毒性研究的深入,人们逐渐认识到汞与蛋白的相互作用在其致毒过程中扮演着重要的角色,被认为是了解汞的毒性机理的关键所在,因此,对汞和蛋白质相互作用的研究就显得愈发重要。而现在关于汞与蛋白质作用的机理仅是冰山一角,还有很多蛋白质与汞之间的关系还不清楚,因而加强对于汞与蛋白质之间的关系至关重要。
发明内容
针对汞污染严重的问题,本发明的目的在于提供一种汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法,并建立汞-纤维蛋白原螯合物的定性、定量检测方法,以便定量检测汞-纤维蛋白原螯合物在评价一个地区汞污染程度的应用。通过定量检测一个地区人群血清中汞-纤维蛋白原螯合物可以间接反映这个地区人群受汞污染的情况,从而间接反映这个地区汞污染程度。
本发明解决其技术问题所采用的技术方案是:提供一种汞-纤维蛋白原螯合物,汞离子与纤维蛋白原通过巯基或/和半胱氨酸残基螯合而成。
本发明还提供一种上述的汞-纤维蛋白原螯合物的制备方法,包括以下步骤:
A)汞与纤维蛋白原的螯合反应:在提纯源于人体的纤维蛋白原或按照生物学方法重组的纤维蛋白原中加入汞离子进行螯合反应,得到反应溶液;
B)纯化汞-纤维蛋白原螯合物的提取:采用免疫亲和层析法,去除反应溶液中未反应的纤维蛋白原以及多余的汞离子,即得汞-纤维蛋白原螯合物。
其中,体外合成法中所述步骤B)具体如下:
(1)溶解样品:向经过步骤A)得到的反应溶液中加入生理盐水使汞-纤维蛋白原螯合物复溶;
(2)平衡层析柱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱的管路,在层析柱中装入能与纤维蛋白原特异性结合的填料,装柱后,继续使用稀释缓冲液平衡层析柱;
(3)上样:待层析柱平衡后,用稀释缓冲液稀释步骤(1)中样品,然后上柱,纤维蛋白原与填料特异性结合;
(4)洗脱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡,然后使用0.05-0.1mol/L的磷酸盐溶液进行洗脱,得到洗脱液Ⅰ;
(5)收集:收集洗脱液Ⅰ
(6)透析:将步骤(5)中的收集的洗脱液,装透析袋,用ddH2O透析除盐,换水三次后,4℃透析过夜,收集样本;
(7)平衡层析柱:采用新的层析柱,用稀释缓冲液冲洗管路,在该层析柱中装入能与汞特异性结合的填料,装柱后再用稀释缓冲液平衡层析柱;
(8)上样:待层析柱平衡后,用稀释缓冲液稀释步骤(6)中样本,然后上柱;
(9)洗脱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡,然后使用0.5-1.0mol/L的磷酸盐溶液进行洗脱,得到洗脱液Ⅱ;
(10)收集:收集洗脱液Ⅱ
(11)透析:将步骤(10)中的收集的洗脱液,装透析袋,用ddH2O透析除盐,换水三次后,4℃透析过夜,收集样本,即得汞-纤维蛋白原螯合物。
其中,上述汞-纤维蛋白原螯合物的制备方法,还包括步骤C):对汞-纤维蛋白原螯合物的鉴定;
其中,步骤C)中具体如下:
(1)制备胶床:以琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶中的一种作为介质制备胶床;
(2)加样:取步骤B)中提取纯化得到的汞-纤维蛋白原螯合物,加入稀释缓冲液,并混匀,然后加样于样品槽中;
(3)电泳:连接电泳板,进行电泳;
(4)检测:在胶床上找出含汞的蛋白条带,将该蛋白条带取出并溶解,然后再采用ELISA法或ICP-MS法或AAS法检测是否含有汞以及检测汞的含量。
本发明还提供一种如上述的汞-纤维蛋白原螯合物在制备检测人体内汞-纤维蛋白原螯合物的试剂或试剂盒中的应用。
本发明还提供一种至少包括如上述的汞-纤维蛋白原螯合物作为标准品的试剂盒。
优选地,该试剂盒中还包括包被液,该包被液含有捕获纤维蛋白原的物质或捕获汞的物质。
本发明还提供一种定量检测汞-纤维蛋白原螯合物的方法,以已知含量的上述的汞-纤维蛋白原螯合物作为标准品,采用以下方法之一对样品进行检测:酶联免疫法、酶联免疫与原子吸收光谱结合法、酶联免疫与电感耦合等离子体质谱结合法、提纯汞-纤维蛋白原螯合物与酶联免疫结合法、提纯汞-纤维蛋白原螯合物与原子吸收光谱结合法、提纯汞-纤维蛋白原螯合物与电感耦合等离子体质谱结合法、电泳与酶联免疫或原子吸收光谱或电感耦合等离子体质谱结合法。
实施本发明的汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用,具有以下有益效果:
1.本发明首次体外合成汞-纤维蛋白原螯合物;
2.本发明首次提出汞-纤维蛋白原螯合物可用于制备检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物的试剂或试剂盒中的应用。
3.本发明建立了汞-纤维蛋白原螯合物的定性定量检测方法,以便定量检测汞-纤维蛋白原螯合物在评价一个地区汞污染程度的应用。通过定量检测一个地区人群血清中汞-纤维蛋白原螯合物可以间接反映这个地区人群受汞污染的情况,从而间接反映这个地区汞污染程度。本发明建立的汞-纤维蛋白原螯合物定量检测方法其准确度大大提高,并且使检测的重复性得到大大提高。
附图说明
图1为本发明所述的汞-纤维蛋白原螯合物的非变性电泳条带图;
图2为本发明所述的汞-纤维蛋白原螯合物的电泳条带的同步辐射X线荧光分析图。
具体实施方式
下面,结合具体实施方式,对本发明做进一步描述:
本发明除特别说明外,涉及的实验操作步骤均为本领域常规的步骤,所用试剂、材料如下述所列举,在本发明中没有列举出来的均为本领域常用的试剂或可以通过市购方式获得:
磷酸盐溶液为0.05-0.1mol/L Na2HPO4溶液或0.5-1mol/L Na2HPO4溶液;
提取试剂为PEG溶液、硼酸盐缓冲液等(采用PEG法);
胶床介质为琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶中的一种;
捕获纤维蛋白原的物质购买自Novus公司型号为A-0577的人纤维蛋白原抗体;其中,本发明所述与纤维蛋白原特异性结合的物质、抗FG抗体、抗纤维蛋白原抗体均为捕获纤维蛋白原的物质;
捕获汞的物质购买自巴傲得生物科技有限公司的型号为AP7014的鼠抗HgmAb;其中,本发明所述与汞特异性结合的物质、抗Hg抗体、抗汞抗体、汞抗均为捕获汞的物质;
酶标抗体为含有辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶等酶标记的抗体中的一种;
底物为甲基联苯胺(TMB)溶液;
洗涤液为含有KH2PO40.2mg/ml、Na2HPO4·12H2O 2.90mg/ml、NaCl8.0mg/ml、KCl 0.2mg/ml、0.5%Tween-20的pH为7.4的0.15M PBS溶液;
封闭液为1%-5%牛血清白蛋白或脱脂奶粉;
稀释缓冲液为含1.5mg/mL Na2CO3、2.93mg/ml NaHCO3的PH为9.6的0.05M碳酸盐缓冲液;
酶标抗体为HRP酶标抗体;
终止液为:将21.7ml的2M H2SO4定容至200ml的ddH2O中;
洗脱液为含木瓜蛋白酶的PH为8.0的0.1mol/L Tris-HCL缓冲液;
酸化剂为硝酸;
上样缓冲液为含有1M Tris-HCl(pH 6.8)15.5mL、1%溴酚蓝2.5mL、ddH2O7mL、甘氨酸25mL的Sample buffer(5X);
电泳缓冲液为含Tris 3mg/ml、甘氨酸14.4mg/ml的PH为6.8的ddH2O溶液。
本发明提供一种汞-纤维蛋白原螯合物,汞离子与纤维蛋白原通过巯基或/和半胱氨酸残基螯合而成。
本发明还提供一种汞-纤维蛋白原螯合物的制备方法,包括以下步骤:
A)汞与纤维蛋白原的螯合反应:在人源的纤维蛋白原中加入汞离子进行螯合反应,得到反应溶液;
B)纯化汞-纤维蛋白原螯合物的提取:采用免疫亲和层析法,去除反应溶液中未反应的纤维蛋白原以及多余的汞离子,即得汞-纤维蛋白原螯合物,具体步骤如下:
(1)溶解样品:向经过步骤A)得到的反应溶液中加入生理盐水使汞-纤维蛋白原螯合物复溶;
(2)平衡层析柱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱的管路,在层析柱中装入能与纤维蛋白原特异性结合的填料,装柱后,继续使用稀释缓冲液平衡层析柱;所述能与纤维蛋白原特异性结合的填料为含抗纤维蛋白原抗体的硅胶或树脂;
(3)上样:待层析柱平衡后,用稀释缓冲液稀释步骤(1)中样品,然后上柱,纤维蛋白原与填料特异性结合;
(4)洗脱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡,然后使用0.05-0.1mol/L的磷酸盐溶液进行洗脱,得到洗脱液Ⅰ;
(5)收集:收集洗脱液Ⅰ
(6)透析:将步骤(5)中的收集的洗脱液,装透析袋,用ddH2O透析除盐,换水三次后,4℃透析过夜,收集样本;
(7)平衡层析柱:采用新的层析柱,用稀释缓冲液冲洗管路,在该层析柱中装入能与汞特异性结合的填料,装柱后再用稀释缓冲液平衡层析柱;所述能与汞特异性结合的填料为含抗汞抗体的硅胶或树脂;
(8)上样:待层析柱平衡后,用稀释缓冲液稀释步骤(6)中样本,然后上柱;
(9)洗脱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡,然后使用0.5-1.0mol/L的磷酸盐溶液进行洗脱,得到洗脱液Ⅱ;
(10)收集:收集洗脱液Ⅱ
(11)透析:将步骤(10)中的收集的洗脱液,装透析袋,用2升ddH2O透析除盐,换水三次后,4℃透析过夜,收集样本,即得汞-纤维蛋白原螯合物;
C)对汞-纤维蛋白原螯合物的鉴定,具体步骤如下:
(1)制备胶床:以琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶中的一种作为介质制备胶床;
(2)加样:取步骤B)中提取纯化得到的汞-纤维蛋白原螯合物,加入稀释缓冲液,并混匀,然后加样于样品槽中;
(3)电泳:连接电泳板,进行电泳;
(4)检测:在胶床上找出含汞的蛋白条带,将该蛋白条带取出并溶解,然后再采用ELISA法或ICP-MS法或AAS法检测是否含有汞以及检测汞的含量。
本发明还提供一种至少包括如上述的汞-纤维蛋白原螯合物作为标准品的试剂盒。
优选地,该试剂盒中还包括包被液,该包被液含有捕获纤维蛋白原的物质或捕获汞的物质。
在本发明中,能实现本发明目的的试剂盒可以列出以下几种,但并不限于此。
一种检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物的试剂盒,包括含有捕获纤维蛋白原的物质的包被液、封闭液、洗涤液、作为二抗的可捕获汞的物质、酶标抗体、底物、终止液、稀释缓冲液、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物的试剂盒,包括含有捕获纤维蛋白原的物质的包被液、封闭液、洗涤液、洗脱液、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物的试剂盒,包括含有捕获纤维蛋白原的物质的包被液、封闭液、洗涤液、洗脱液、酸化剂、过氧化氢、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物的试剂盒,包括作为提纯全血中纤维蛋白原所需提取试剂、复溶液、含有捕获汞的物质的包被液、封闭液、洗涤液、酶标抗体、底物、终止液、稀释缓冲液、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物的试剂盒,包括作为提纯全血中纤维蛋白原所需提取试剂、复溶液、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物的试剂盒,包括作为提纯全血中纤维蛋白原所需提取试剂、复溶液、酸化剂、过氧化氢、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物的试剂盒,包括作为提纯全血中纤维蛋白原的提取试剂、胶床介质、复溶液、上样缓冲液、溶解胶床上含汞的蛋白条带所需液体、含有捕获汞的物质的包被液、封闭液、洗涤液、酶标抗体、底物、终止液、稀释缓冲液、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物的试剂盒,包括作为提纯全血中纤维蛋白原所需提取试剂、胶床介质、复溶液、上样缓冲液、溶解胶床上含汞的蛋白条带所需液体、阳性对照、阴性对照等。
一种检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物的试剂盒,包括作为提纯全血中纤维蛋白原所需提取试剂、胶床介质、复溶液、上样缓冲液、溶解胶床上含汞的蛋白条带所需液体、酸化剂、过氧化氢、阳性对照、阴性对照等。
上述几种试剂盒中,所述阳性对照为标准品,即螯合有重金属汞的纤维蛋白原螯合物或螯合有重金属汞的BSA螯合物;所述阴性对照为不含有标准品的稀释缓冲液。
上述试剂盒用于检测螯合汞的纤维蛋白原,以提高检测的准确性,重复性,并使之在临床中得到推广。
本发明还提供一种定量检测汞-纤维蛋白原螯合物的方法,以已知含量的上述的汞-纤维蛋白原螯合物作为标准品,采用以下方法之一对样品进行检测:酶联免疫法、酶联免疫与原子吸收光谱结合法、酶联免疫与电感耦合等离子体质谱结合法、提纯汞-纤维蛋白原螯合物与酶联免疫结合法、提纯汞-纤维蛋白原螯合物与原子吸收光谱结合法、提纯汞-纤维蛋白原螯合物与电感耦合等离子体质谱结合法、电泳与酶联免疫或原子吸收光谱或电感耦合等离子体质谱结合法。在本发明中,用检测汞-纤维蛋白原螯合物的方法可以列出的有以下几种,但并不限于以下几种。
其中,上述定量检测汞-纤维蛋白原螯合物的方法中采用的试剂如下:
方法一:酶联免疫法(ELISA法)检测汞-纤维蛋白原螯合物,按照如下步骤检测:
1)将能够捕获纤维蛋白原的物质,如抗纤维蛋白原抗体(抗FG Ab)包被于固相载体上:用稀释缓冲液将抗FG Ab稀释至1000-8000倍,加入ELISA板微孔中,4℃过夜16-18小时,或37℃水浴1-3小时,储存冰箱;
2)从循环系统取全血,作待检样品,1000rmp离心5-8分钟,离心弃去沉淀;
3)封闭:移去稀释缓冲液,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入以1%-5%牛血清白蛋白或脱脂奶粉作为封闭液,37℃放置1小时,移去封闭液,并用洗涤液进行洗涤,洗涤完成后,ELISA板于36.5-37.5℃放置1-2小时;
4)加待检样品,并且温育:加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的汞-纤维蛋白原螯合物作标准品;用稀释缓冲液将待检样品稀释至20-80倍,加入微孔中,37℃作用1-2小时;
5)加入可以捕获汞的物质,并且温育:移去待检样品,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入用稀释缓冲液稀释至50000-4000000倍的抗Hg Ab,37℃作用1-2小时,使抗Hg Ab与纤维蛋白原上的金属汞反应形成抗原抗体复合物;
6)酶结合物温育:移去抗汞抗体,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入用稀释缓冲液稀释的酶标抗体,使稀释的酶标抗体的浓度为2μg/mL,37℃作用1-2小时,使其与酶标抗体反应;
7)底物温育:移去酶标抗体,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入底物,37℃避光作用30分钟;
8)终止反应:将终止液滴加至每一微孔;
9)取波长405nm,加完终止液后,将ELISA板置于酶标仪上检测,分别读取待检样品和标准品的OD值,通过与标准品组比较,求得待检样品的含量(也可不使用酶标仪,直接通过显色情况进行定性检测)。
该方法利用ELISA原理,可以将全血中的特异性纤维蛋白原提取出来,提取出来的纤维蛋白原上部分螯合有重金属汞,而这部分纤维蛋白原上的汞被抗汞抗体所捕获,之后可以再被辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶等酶标记的抗体所捕获(该抗体不识别包被蛋白),捕获上的抗体在显色剂及终止液的作用下,可以在仪器下读出OD值,而不含有螯合金属汞的纤维蛋白原,则不会被抗汞的特异性抗体所捕获,也不会与辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶等酶标记的抗体所捕获,而所用试剂中也不含有金属汞(阴性对照组结果为阴性),因而当所读取的OD值结果显示为阳性时,即可证明检测出纤维蛋白原上螯合的金属汞。
方法二:酶联免疫与原子吸收光谱结合法(ELISA法+AAS法)检测汞-纤维蛋白原螯合物按照如下步骤检测:
1)将能够捕获纤维蛋白原的物质,如抗纤维蛋白原抗体(抗FG Ab)包被于固相载体上:用稀释缓冲液将抗FG Ab稀释至1000-8000倍,加入ELISA板微孔中,4℃过夜16-18小时,或37℃水浴1-3小时,储存冰箱;
2)从循环系统取全血,作待检样品,1000rpm离心5-8分钟,离心弃去沉淀;
3)封闭:移去稀释缓冲液,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入以1%-5%牛血清白蛋白或脱脂奶粉作为封闭液,37℃放置1小时,移去封闭液,并用洗涤液进行洗涤,洗涤完成后,ELISA板于36.5-37.5℃放置1-2小时;
4)加待检样品,并且温育:加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的汞-纤维蛋白原螯合物作标准品;用稀释缓冲液将待检样品稀释至20-80倍,加入微孔中,37℃作用1-2小时;
5)洗脱:移去待检样品,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入洗脱液,在37℃下洗脱1-3小时。
6)检测:从ELISA板的微孔中取样,于原子吸收光谱仪检测螯合于纤维蛋白原上的汞,并绘制标准曲线,读出数值;
该方法利用ELISA原理的基础上结合原子吸收光谱(AAS)原理,利用原子吸收光谱仪检测螯合于纤维蛋白原上的汞,由于溶液中仅含有纤维蛋白原,且所用试剂中不含任何重金属(阴性对照组结果为阴性),不会对结果造成干扰,因而当所读取的结果显示为阳性时,即可证明检测出纤维蛋白原上螯合的金属汞。
方法三:酶联免疫与电感耦合等离子体质谱结合法(ELISA法+ICP-MS法)检测汞-纤维蛋白原螯合物按照如下步骤检测:
1)将能够捕获纤维蛋白原的物质,如抗纤维蛋白原抗体(抗FG Ab)包被于固相载体上:用稀释缓冲液将抗FG Ab至稀释1000-8000倍,加入ELISA板微孔中,4℃过夜16-18小时,或37℃水浴1-3小时,储存冰箱;
2)从循环系统取全血,作待检样品,1000rmp离心5-8分钟,离心弃去沉淀;
3)封闭:移去稀释缓冲液,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入以1%-5%牛血清白蛋白或脱脂奶粉作为封闭液,37℃放置1小时,移去封闭液,并用洗涤液进行洗涤,洗涤完成后,ELISA板于36.5-37.5℃放置1-2小时;
4)加待检样品,并且温育:加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的汞-纤维蛋白原螯合物作标准品;用稀释缓冲液将待检样品稀释至20-80倍,加入微孔中,37℃作用1-2小时;
5)洗脱:移去待检样品,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入洗脱液,在37℃下洗脱1-3小时。
6)酸化:在步骤5)中的溶液中加入酸化剂对溶液进行酸化,封口过夜,彻底酸化,加入过氧化氢,并且加热赶酸;
7)检测:从步骤6)的ELISA板的溶液中取0.5ml液体,于电感耦合等离子体质谱仪下检测螯合于纤维蛋白原的汞,并绘制标准曲线,读出数值。
该方法在利用ELISA原理的基础上,结合感耦合等离子体质谱(ICP-MS)原理,用电感耦合等离子体质谱仪检测螯合于纤维蛋白原上的汞,由于溶液中仅含有纤维蛋白原,且所用试剂中不含任何重金属(阴性对照组结果为阴性),不会对结果造成干扰,因而当所读取的结果显示为阳性时,即可证明检测出纤维蛋白原上螯合的金属汞。
方法四:提纯汞-纤维蛋白原螯合物与酶联免疫结合法(提纯法+ELISA法)检测汞-纤维蛋白原螯合物,按照如下步骤检测:
1)从全血中提取纤维蛋白原:采用聚乙二醇PEG沉淀法或超速离心或分子超滤或凝胶过滤等方法从全血提取纯化血液中的纤维蛋白原,并将纤纤维蛋白原复溶于溶液中,得到纤维蛋白原溶液;
2)将抗Hg Ab包被于固相载体上:用稀释缓冲液将抗Hg Ab稀释至50000-400000倍,加入ELISA板微孔中,4℃过夜16-18小时,或37℃水浴1-3小时,储存冰箱;
3)封闭:移去稀释缓冲液,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入以1%-5%牛血清白蛋白或脱脂奶粉作为封闭液,37℃放置1小时,移去封闭液,并用洗涤液进行洗涤,洗涤完成后,ELISA板于36.5-37.5℃放置1-2小时;
4)加待检样品,并且温育:从步骤1)的溶液中取样,作待检样品;以已知含量的汞-纤维蛋白原螯合物作标准品;用稀释缓冲液将待检样品稀释至20-80倍,加入微孔中,37℃作用1-2小时;
5)酶结合物温育:移去步骤4)中的待检样品,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入用稀释缓冲液稀释的酶标抗体,使稀释的酶标抗体的浓度为2μg/mL,,37℃作用1-2小时,使其与酶标抗体反应;
6)底物温育:移去酶标抗体,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入底物,37℃避光作用30分钟;
7)终止反应:将终止液滴加至每一微孔;
8)取波长405nm,加完终止液后,将ELISA板置于酶标仪上检测,分别读取待检样品和标准品的OD值,通过绘制标准曲线,求得待检样品的含量(也可不使用酶标仪,直接通过显色情况进行定性检测)。
方法五:提纯汞-纤维蛋白原螯合物与原子吸收光谱结合法(提纯法+AAS法)检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物,按照如下步骤检测:
1)从全血中提取纤维蛋白原:采用聚乙二醇PEG沉淀法或超速离心或分子超滤或凝胶过滤等方法从全血提取纯化血液中的纤维蛋白原,并将纤纤维蛋白原复溶于溶液中,得到纤维蛋白原溶液;
2)检测:从步骤1)得到的溶液中取样,于原子吸收光谱仪检测螯合于纤维蛋白原上的汞,并绘制标准曲线,读出数值。
方法六:提纯汞-纤维蛋白原螯合物与电感耦合等离子体质谱结合法(提纯法+ICP-MS法)检测汞-纤维蛋白原螯合物,按照如下步骤检测:
1)从全血中提取纤维蛋白原:采用聚乙二醇PEG沉淀法或超速离心或分子超滤或凝胶过滤等方法从全血提取纯化血液中的纤维蛋白原,并将纤纤维蛋白原复溶于溶液中,得到纤维蛋白原溶液;
2)酸化:从步骤1)得到的溶液中取样,在溶液中加入酸化剂(如硝酸)对溶液进行酸化,封口过夜,彻底酸化,加入过氧化氢,并且加热赶酸;
3)检测:从步骤2)得到的溶液中取0.5ml液体,于电感耦合等离子体质谱仪下检测螯合于纤维蛋白原上的汞,并绘制标准曲线,读出数值。
方法七:电泳与酶联免疫法或原子吸收光谱法或电感耦合等离子体质谱结合法(电泳法-ELISA法/AAS法/ICP-MS法)检测汞-纤维蛋白原螯合物,按照如下步骤检测:
1)从全血中提取纤维蛋白原:采用聚乙二醇PEG沉淀法或超速离心或分子超滤或凝胶过滤等方法从全血提取纯化血液中的纤维蛋白原,并将纤纤维蛋白原复溶于溶液中,得到纤维蛋白原溶液;
2)制备胶床:根据需要选择琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶或SDS-聚丙烯酰胺凝胶等作为介质,按照常规方法制备好胶床;
3)加样:取步骤1)得到的溶液8μL加入2μL上样缓冲液,混匀,短暂离心;(注意此处步骤不能煮)
4)电泳:连接电泳板,进行电泳分离;
5)检测:在胶床上找出含有汞的蛋白条带,将该条带取出,将该蛋白条带溶于液体之中,,然后再分别利用ELISA或ICP-MS或AAS检测溶于液体中的汞含量。此外,还可以利用此方法检测螯合汞的纤维蛋白原的等电点、分子量及含量等。
方法七中的纤维蛋白原可以用多种方法提纯出来(例如超速离心法或高压液相层析法或凝胶过滤层析法或凝胶电泳法或ELISA方法等),将提纯出来的纤维蛋白原复溶于溶液中,取一定量的纤维蛋白原,利用电荷移动原理,进行电泳(electrophoresis,EP),在凝胶板(可根据需要采用不同介质)上可根据分子量、等电点等不同跑出不同的条带,寻找出富含汞的相应条带,将凝胶中的蛋白质复溶于溶液中,即可以在特定波长下检测相关纤维蛋白原的含量,也可以利用ELISA、AAS、ICP-MS等原理检测出螯合于纤维蛋白原上的汞含量,由于溶液中仅含有纤维蛋白原,且所用试剂中不含任何重金属(阴性对照组结果为阴性),不会对结果造成干扰,因而当所读取的结果显示为阳性时,即可证明检测出纤维蛋白原上螯合的金属汞。
实施例1:汞-纤维蛋白原螯合物的制备方法,包括以下步骤:
A)汞与纤维蛋白原的螯合反应:在人源的纤维蛋白原中加入汞离子进行螯合反应,得到反应溶液;
试剂配制:
1)硼酸盐缓冲液(0.01M):称取0.31g硼酸溶于400ml超纯水中,用0.1M的NaOH调节pH至9.0,定容至500mL。
2)纤维蛋白原溶液:称取4.0mg纤维蛋白原溶于4.0mL 0.01M pH9.0硼酸盐缓冲液中,充分振荡溶解,配制成1.0mg/mL的蛋白溶液;
3)EDTA-NaHCO3混合溶液:称取EDTA·2H2O 1.86g、NaHCO316.8g溶于900mL超纯水中,用1.0M NaOH调整pH至8.0定容至1000ml,高压灭菌,室温保存;
4)ITCBE购买自日本同仁化学研究所,货号为M030;
5)透析袋购自Bioshop Inc,截留分子量14000。
汞-纤维蛋白原螯合物的螯合步骤:
1)透析袋的处理:将透析袋放入500ml的EDTA-NaHCO3混合溶液中,煮沸10min;倾弃EDTA/NaHCO3液,用超纯水轻轻漂洗,再用500ml的5mmol/LEDTA溶液煮沸10min;弃掉煮沸液,用超纯水彻底清洗,加入超纯水浸泡透析袋4℃过夜。使用时,戴上手套,取出透析袋,用超纯水彻底冲洗其内外表面;
2)取2.0mg ITCBE溶于2ml DMSO中;
3)取4.0mg纤维蛋白原溶于4.0ml硼酸盐缓冲溶液中;
4)缓慢将步骤2)配制的液体加入步骤3)配制的纤维蛋白原溶液中,边滴加边震荡,置于温度为25℃,转速为100r/min的摇床中反应24h,然后用透析袋透析24h,除去未与纤维蛋白原结合的ITCBE;
5)将步骤4)所得的液体用1mol/L HCl调节pH值至7.0,然后缓慢逐渐滴加80μl的1mmol/L汞离子溶液,边滴加边振荡,以免汞离子使蛋白变性沉淀;
6)将步骤5)所得的溶液置于温度为25℃,转速为100r/min的摇床中反应2h,用透析袋进行透析24h;
7)将步骤6)透析后的液体于-20℃分装保存,得到反应溶液。
B)纯化汞-纤维蛋白原螯合物的提取:采用免疫亲和层析法,去除反应溶液(即步骤7)得到的反应溶液)中未反应的纤维蛋白原以及多余的汞离子,即得汞-纤维蛋白原螯合物,具体步骤如下:
(1)溶解样品:向经过步骤7)得到的反应溶液中加入生理盐水使汞-纤维蛋白原螯合物复溶;
(2)平衡层析柱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱的管路,在层析柱中装入能与纤维蛋白原特异性结合的填料,装柱后,继续使用稀释缓冲液平衡层析柱;
(3)上样:待层析柱平衡后,用稀释缓冲液稀释步骤(1)中样品,然后上柱,纤维蛋白原与填料特异性结合;
(4)洗脱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡,然后使用0.05-0.1mol/L的磷酸盐溶液进行洗脱,得到洗脱液Ⅰ;
(5)收集:收集洗脱液Ⅰ
(6)透析:将步骤(5)中的收集的洗脱液,装透析袋,用ddH2O透析除盐,换水三次后,4℃透析过夜,收集样本;
(7)平衡层析柱:采用新的层析柱,用稀释缓冲液冲洗管路,在该层析柱中装入能与汞特异性结合的填料,装柱后再用稀释缓冲液平衡层析柱;
(8)上样:待层析柱平衡后,用稀释缓冲液稀释步骤(6)中样本,然后上柱;
(9)洗脱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡,然后使用0.5-1.0mol/L的磷酸盐溶液进行洗脱,得到洗脱液Ⅱ;
(10)收集:收集洗脱液Ⅱ
(11)透析:将步骤(10)中的收集的洗脱液,装透析袋,用2升ddH2O透析除盐,换水三次后,4℃透析过夜,收集样本,即得汞-纤维蛋白原螯合物;
C)对汞-纤维蛋白原螯合物的鉴定,具体步骤如下:
(1)制备胶床:以琼脂糖凝胶作为介质制备胶床;
(2)加样:取步骤B)中8μL提取纯化得到的汞-纤维蛋白原螯合物,加入2μL上样缓冲液,并混匀,然后加样于样品槽中;
(3)电泳:连接电泳板,加入电泳缓冲液进行电泳;电泳过程中,电流为22mA恒流,环境温度为4℃;电泳至溴酚蓝移至胶底部时停止电泳;
(4)检测:在胶床上找出含汞的蛋白条带,将该蛋白条带取出并溶解,然后再采用ELISA法或ICP-MS法或AAS法检测是否含有汞以及检测汞的含量。
D)检测结果
(1)石墨炉原子吸收光谱法(AAS)初步测定FG中重金属含量:结果见表1
表1 为纤维蛋白原中重金属含量(μg/L)
样本名 Hg(μg/L)
FG 92.334
(NH4)2SO4 0.369
N.S 0
N.S 0
(2)电泳结果:
其中,图1为本发明所述的汞-纤维蛋白原螯合物的非变性电泳条带图。
非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(Native-PAGE)或称为活性电泳是在不加入SDS和疏基乙醇等变性剂的条件下,对保持活性的蛋白质进行聚丙烯酰胺凝胶电泳,常用于酶的鉴定、同工酶分析和提纯。未加SDS的天然聚丙烯酰胺凝胶电泳可以使生物大分子在电泳过程中保持其天然的形状和电荷,它们的分离是依据其电泳迁移率的不同和凝胶的分子筛作用,因而可以得到较高的分辨率,尤其是在电泳分离后仍能保持蛋白质和酶等生物大分子的生物活性,因此左边泳道M为变性Marker,只用于检测,没有标记作用,泳道1、3、5为纤维蛋白原的条带。
(3)同步辐射X荧光分析:
蛋白条带内微量元素含量的SRXRF分析在北京正负电子对撞机(BEPC)的4W1"同步辐射束线上完成。储存环中电子束流能量为2.2GeV,束流强度100mA。样品移动台(TSA200型,北京卓立汉光公司)可在计算机控制的步进马达驱动下沿X、Y二维方向上移动以改变入射光斑位置,移动步长为0.0025mm。从样品发射出的X射线由Si(Li)探测器(PGT Inc.LS 30143-DS)探测,探头与入射SR线共平面且相互垂直,距样品照射点20mm,信号用PGT多道分析仪(MCA4000)获取输出。用11.5keV的单色同步辐射光激发样品,调节入射光斑(1mmx3mm)位置使之处于条带一端,在300s的测定时间内,光斑一直沿条带均匀缓慢移动,计数结束时光斑移到该条带另一端。沿电泳方向每1mm取一个谱。采用AX IL软件处理数据,并用来源于空气且含量恒定的Ar信号峰对其它元素峰进行归一处理,以抵消束流强度变化对信号强弱产生的影响。在相同的条件下以同样的方式测量定量标准干胶膜的荧光谱。
图2为本发明所述的汞-纤维蛋白原螯合物的电泳条带的同步辐射X线荧光分析图,图中横坐标为蛋白条带位置,纵坐标为该条带各金属能量(含量)值。
本发明一种定量检测汞-纤维蛋白原螯合物的方法的检测条件的确定:
1.抗纤维蛋白原抗体、抗汞抗体最佳工作浓度以及血浆的最佳稀释倍数的确定
步骤如下:
(1)将抗FG Ab用稀释缓冲液按照抗FG Ab与稀释缓冲液的质量体积比为1:1000、1:2000、1:4000、1:8000进行稀释,加入ELISA板微孔中,将抗FG Ab包被于固相载体上,每个浓度包被三排,4℃过夜18小时;
(2)移去稀释缓冲液,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,用2%牛血清白蛋白作为封闭液,37℃放置1小时,移去封闭液,并用洗涤液进行洗涤;
(3)待检样品按待检样品与稀释缓冲液的质量体积比为1:20、1:40、1:80进行稀释,加入微孔中,按照上述包被的抗FG Ab浓度,同一个浓度的抗FG Ab的分别加入不同稀释度血浆,37℃作用1小时;
(4)移去待检样品,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入抗Hg Ab,抗Hg Ab按抗Hg Ab与稀释缓冲液的质量体积比为1:50000、1:100000、1:200000、1:400000进行稀释,按照每一个相同抗FG Ab、全血稀释浓度,不同浓度抗Hg Ab各加2孔,37℃作用1小时,使抗Hg Ab与FG上的金属汞反应;
(5)酶标抗体选择最适工作浓度,即2μg/mL,移去抗Hg抗体,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入用稀释缓冲液稀释HRP酶标抗体,37℃作用1小时,使HRP酶标抗体与汞-纤维蛋白原螯合物反应;
(6)移去酶标抗体,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入底物,37℃避光作用30分钟;
(7)将终止液滴加至每一微孔;
(8)取波长405nm,加完终止液后,将ELISA板置于酶标仪上检测,分别读取各孔OD值。根据各孔OD值数值,选择抗FG Ab、抗Hg Ab的最佳工作浓度以及血浆的最佳稀释倍数。
试验中同时以所制标准品作为阳性对照,选择抗FG Ab+封闭+抗Hg Ab+酶标+底物(即不加待检样品)作为阴性对照1;抗FG Ab+封闭+血浆+酶标+底物(即不加抗Hg Ab)作为阴性对照2;抗FG Ab+封闭+酶标+底物(即不加待检样品和抗Hg Ab)作为阴性对照3;抗FG Ab+封闭+血浆+抗Hg Ab+底物(即不加酶标)作为阴性对照4;封闭+血浆+抗Hg Ab+酶标+底物(即不加抗FG Ab捕获FG)作为空白对照1;只加底物作为空白对照2及PBS作为空白对照3。
检测结果见表2-3。
表2:棋盘滴定法确定抗FG Ab、抗Hg Ab的
最佳工作浓度以及血浆的最佳稀释倍数的数据(每个数据皆为平均值)
表3:ELISA阳性对照及阴性对照ELISA检测结果
由表2-3数据显示,我们可以看出当抗FG Ab的稀释度为1:2000、全血稀释度为1:40、Hg抗稀释度为1:50000时,OD值最大,所以选此值所对应的浓度作为最佳工作浓度。
2.定量检测汞-纤维蛋白原螯合物的方法中方法二、三中洗脱液最佳工作浓度及洗脱时间的确定
步骤如下:(1)(1)包被:将抗Hg Ab用稀释缓冲液稀释至50000倍(质量体积比),加入ELISA板微孔中,37℃水浴3小时,储存冰箱;
(2)封闭:移去稀释缓冲液,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,用2%牛血清白蛋白作为封闭液,37℃放置1小时,移去封闭液,并用洗涤液进行洗涤;
(3)移去封闭液,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入用稀释缓冲液稀释的酶标抗体,酶标抗体稀释至浓度为2μg/mL,37℃作用2小时,使其与抗Hg Ab反应;
(4)准备洗脱液:将木瓜蛋白酶用pH 8.0,0.1mol/L Tris-HCI缓冲液配制成100ng/ml,再加入1mmol/L二硫苏糖醇(DTT)37℃孵育30min;
(5)移去酶标抗体,用稀释缓冲液对洗脱液进行稀释,使洗脱液中的木瓜蛋白酶的浓度与酶标抗体的浓度之比为1:80、1:40、1:20、1:10、1:5(其中每个浓度作3个复孔),分别放置于37℃温度下洗脱1h、2h、3h;
(6)移去洗脱液,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入底物,37℃避光作用30分钟;
(7)将终止液滴加至每一微孔;
(8)取405nm波长,加完终止液后,将ELISA板置于酶标仪上检测,分别读取每组OD值,通过与PBS缓冲液组比较,比较出洗脱液的最适浓度及洗脱时间,具体结果参见表4。
表4:ELISA洗脱液最佳工作浓度及洗脱时间确定
从表4中我们可以发现,当洗脱液中的木瓜蛋白酶的浓度与酶标抗体的浓度之比=1:20时,各组OD值均低于其他几组,说明该浓度洗脱液洗脱效果最优(即将ELISA孔壁上结合的抗Hg Ab-酶标复合物洗脱程度达到最大,因而OD值最低);而洗脱时间不管是1h、2h、3h,各组OD值变化均不大,可见随着时间的延长,酶活力逐渐减弱,在酶浓度不变的情况下,延长消化时间并不能提高消化率,所以本试验中洗脱液的洗脱时间为1-3h皆可。
应用实施例1
取采用ELISA法检测100份标本血浆中的汞-纤维蛋白原螯合物,按照以下步骤进行检测:酶联免疫法(ELISA法)检测汞-纤维蛋白原螯合物,按照如下步骤检测:
1)将抗FG Ab包被于固相载体上:用稀释缓冲液将抗FG Ab稀释至2000倍,加入ELISA板微孔中,37℃水浴1小时,储存冰箱;
2)从循环系统取全血,作待检样品,1000rmp离心5-8分钟,离心弃去沉淀;
3)封闭:移去稀释缓冲液,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加2%牛血清白蛋白作为封闭液,37℃放置1小时,移去封闭液,并用洗涤液进行洗涤,洗涤完成后,ELISA板于37℃放置1小时;
4)加待检样品,并且温育:加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的汞-纤维蛋白原螯合物作标准品;用稀释缓冲液将待检样品稀释至40倍,加入微孔中,37℃作用1小时;
5)加入可以捕获汞的物质,并且温育:移去待检样品,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入用稀释缓冲液稀释50000倍,37℃作用1小时,使抗Hg Ab与纤维蛋白原上的金属汞反应;
6)酶结合物温育:移去抗汞抗体,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入用稀释缓冲液稀释的HRP酶标抗体,37℃作用1小时,使其与酶标抗体反应;
7)底物温育:移去酶标抗体,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入底物,37℃避光作用30分钟;
8)终止反应:将终止液滴加至每一微孔;
9)取波长为405nm,加完终止液后,将ELISA板置于酶标仪上检测,分别读取待检样品OD值(也可不使用酶标仪,直接通过显色情况进行定性检测),具体检测值如表5所示。
表5:100份血样标本中汞-纤维蛋白原螯合物的ELISA检测结果
应用实施例2
采用酶联免疫与原子吸收光谱结合法(ELISA法+AAS法)检测100分标本血样中的汞-纤维蛋白原螯合物,按照如下步骤检测:
1)将能够捕获纤维蛋白原的物质,如抗纤维蛋白原抗体(抗FG Ab)包被于固相载体上:用稀释缓冲液将抗FG Ab稀释至2000倍,加入ELISA板微孔中,4℃过夜18小时;
2)从循环系统取全血,作待检样品,1000rmp离心5-8分钟,离心弃去沉淀;
3)封闭:移去稀释缓冲液,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入2%牛血清白蛋白或脱脂奶粉作为封闭液,37℃放置1小时,移去封闭液,并用洗涤液进行洗涤,洗涤完成后,ELISA板于37℃放置1小时;
4)加待检样品,并且温育:加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的汞-纤维蛋白原螯合物作标准品;用稀释缓冲液将待检样品稀释至40倍,加入微孔中,37℃作用1小时;
5)洗脱:移去待检样品,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入木瓜蛋白酶浓度为100ng/ml的洗脱液,洗脱1-3小时;
6)检测:从ELISA板的微孔中取样,于原子吸收光谱仪检测螯合于纤维蛋白原上的汞,检测值如表6所示。
表6:100份血样标本中汞-纤维蛋白原螯合物的AAS检测结果
应用实施例3
采用酶联免疫与电感耦合等离子体质谱结合法(ELISA法+ICP-MS法)检测100分标本血样中的汞-纤维蛋白原螯合物含量,按照如下步骤检测:
1)将能够捕获纤维蛋白原的物质,如抗纤维蛋白原抗体(抗FG Ab)包被于固相载体上:用稀释缓冲液将抗FG Ab稀释至2000倍,加入ELISA板微孔中,4℃过夜18小时;
2)取100份标准血样作为待检样品,1000rmp离心5-8分钟,离心弃去沉淀;
3)封闭:移去稀释缓冲液,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入2%牛血清白蛋白作为封闭液,37℃放置1小时,移去封闭液,并用洗涤液进行洗涤,洗涤完成后,ELISA板于37℃放置1小时;
4)加待检样品,并且温育:加入步骤2)中的待检样品、以已知含量的汞-纤维蛋白原螯合物作标准品;用稀释缓冲液将待检样品稀释至40倍,加入微孔中,37℃作用1小时;
5)洗脱:移去待检样品,并用洗涤液进行洗涤,待洗涤完成后,加入木瓜蛋白酶浓度为100ng/ml的洗脱液,洗脱1-3小时;
6)酸化:在步骤5)中的溶液中加入硝酸对溶液进行酸化,封口过夜,彻底酸化,加入过氧化氢,并且加热赶酸;
7)检测:从步骤6)得到的溶液中取样,于电感耦合等离子体质谱仪下检测螯合于纤维蛋白原的汞,检测值如表7所示。
表7:100份血样标本中汞-纤维蛋白原螯合物的ICP-MS检测结果
对本领域的技术人员来说,可根据以上描述的技术方案以及构思,做出其它各种相应的改变以及形变,而所有的这些改变以及形变都应该属于本发明权利要求的保护范围之内。

Claims (8)

1.一种汞-纤维蛋白原螯合物,其特征在于,汞离子与纤维蛋白原通过巯基或/和半胱氨酸残基螯合而成。
2.一种如权利要求1所述的汞-纤维蛋白原螯合物的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
A)汞与纤维蛋白原的螯合反应:在提纯源于人体的纤维蛋白原或按照生物学方法重组的纤维蛋白原中加入汞离子进行螯合反应,得到反应溶液;
B)纯化汞-纤维蛋白原螯合物的提取:采用免疫亲和层析法,去除反应溶液中未反应的纤维蛋白原以及多余的汞离子,即得汞-纤维蛋白原螯合物。
3.根据权利要求2所述的制备方法,其特征在于,
所述步骤B)具体如下:
(1)溶解样品:向经过步骤A)得到的反应溶液中加入生理盐水使汞-纤维蛋白原螯合物复溶;
(2)平衡层析柱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱的管路,在层析柱中装入能与纤维蛋白原特异性结合的填料,装柱后,继续使用稀释缓冲液平衡层析柱;
(3)上样:待层析柱平衡后,用稀释缓冲液稀释步骤(1)中样品,然后上柱,纤维蛋白原与填料特异性结合;
(4)洗脱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡,然后使用0.05-0.1mol/L的磷酸盐溶液进行洗脱,得到洗脱液Ⅰ;
(5)收集:收集洗脱液Ⅰ
(6)透析:将步骤(5)中的收集的洗脱液,装透析袋,用ddH2O透析除盐,换水三次后,4℃透析过夜,收集样本;
(7)平衡层析柱:采用新的层析柱,用稀释缓冲液冲洗管路,在该层析柱中装入能与汞特异性结合的填料,装柱后再用稀释缓冲液平衡层析柱;
(8)上样:待层析柱平衡后,用稀释缓冲液稀释步骤(6)中样本,然后上柱;
(9)洗脱:使用稀释缓冲液冲洗层析柱至基线平衡,然后使用0.5-1.0mol/L的磷酸盐溶液进行洗脱,得到洗脱液Ⅱ;
(10)收集:收集洗脱液Ⅱ
(11)透析:将步骤(10)中的收集的洗脱液,装透析袋,用ddH2O透析除盐,换水三次后,4℃透析过夜,收集样本,即得汞-纤维蛋白原螯合物。
4.根据权利要求2所述的汞-纤维蛋白原螯合物的制备方法,其特征在于,还包括步骤C):对汞-纤维蛋白原螯合物的鉴定;
其中,步骤C)中具体如下:
(1)制备胶床:以琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶中的一种作为介质制备胶床;
(2)加样:取步骤B)中提取纯化得到的汞-纤维蛋白原螯合物,加入稀释缓冲液,并混匀,然后加样于样品槽中;
(3)电泳:连接电泳板,进行电泳;
(4)检测:在胶床上找出含汞的蛋白条带,将该蛋白条带取出并溶解,然后再采用ELISA法或ICP-MS法或AAS法检测是否含有汞以及检测汞的含量。
5.一种如权利要求1所述的汞-纤维蛋白原螯合物在制备检测血样中汞-纤维蛋白原螯合物的试剂或试剂盒中的应用。
6.一种至少包括如权利要求1所述的汞-纤维蛋白原螯合物作为标准品的试剂盒。
7.根据权利要求6所述的试剂盒,其特征在于,还包括包被液,该包被液含有捕获纤维蛋白原的物质或捕获汞的物质。
8.一种定量检测汞-纤维蛋白原螯合物的方法,其特征在于,以已知含量的权利要求1所述的汞-纤维蛋白原螯合物作为标准品,采用以下方法之一对样品进行检测:酶联免疫法、酶联免疫与原子吸收光谱结合法、酶联免疫与电感耦合等离子体质谱结合法、提纯汞-纤维蛋白原螯合物与酶联免疫结合法、提纯汞-纤维蛋白原螯合物与原子吸收光谱结合法、提纯汞-纤维蛋白原螯合物与电感耦合等离子体质谱结合法、电泳与酶联免疫或原子吸收光谱或电感耦合等离子体质谱结合法。
CN201510413351.XA 2015-07-14 2015-07-14 一种汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用 Pending CN105001321A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201510413351.XA CN105001321A (zh) 2015-07-14 2015-07-14 一种汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201510413351.XA CN105001321A (zh) 2015-07-14 2015-07-14 一种汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN105001321A true CN105001321A (zh) 2015-10-28

Family

ID=54374215

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201510413351.XA Pending CN105001321A (zh) 2015-07-14 2015-07-14 一种汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105001321A (zh)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108489941A (zh) * 2018-01-31 2018-09-04 吉林大学 溴酚蓝在作为检测牛胰岛素淀粉样纤维探针和作为牛胰岛素淀粉样纤维抑制剂方面的应用

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1994022490A1 (en) * 1993-03-29 1994-10-13 Immunomedics, Inc. Conjugates of proteins and bifunctional ligands

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1994022490A1 (en) * 1993-03-29 1994-10-13 Immunomedics, Inc. Conjugates of proteins and bifunctional ligands

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
何春燕、喻红: "《医学生物化学实验指导》", 30 September 2010 *
刘冬等: "《生物分离技术》", 31 December 2007, 高等教育出版社 *
邹军辉: "六价铬间接竞争 ELISA 检测试剂盒的研制及新型一步法竞争 ELISA的建立", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库 医药卫生科技辑》 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108489941A (zh) * 2018-01-31 2018-09-04 吉林大学 溴酚蓝在作为检测牛胰岛素淀粉样纤维探针和作为牛胰岛素淀粉样纤维抑制剂方面的应用
CN108489941B (zh) * 2018-01-31 2021-07-27 吉林大学 溴酚蓝在作为检测牛胰岛素淀粉样纤维探针和作为牛胰岛素淀粉样纤维抑制剂方面的应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN105001321A (zh) 一种汞-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用
CN105137059B (zh) 一种汞螯合型免疫复合物及其制备方法和应用
CN104987400A (zh) 一种汞-血红蛋白螯合物及其制备方法和应用
CN104987384A (zh) 一种镍-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用
CN105021548B (zh) 一种砷‑纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用
CN104987390A (zh) 一种镉-白蛋白螯合物及其制备方法和应用
CN104987412A (zh) 一种砷-IgE螯合物及其制备方法和应用
CN104987387A (zh) 一种铬-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用
CN105004684A (zh) 一种镍-IgE螯合物及其制备方法和应用
CN104987403A (zh) 一种镍-血红蛋白螯合物及其制备方法和应用
CN104987404A (zh) 一种镍-IgG螯合物及其制备方法和应用
CN104987391A (zh) 一种汞-白蛋白螯合物及其制备方法和应用
CN104987409A (zh) 一种铅-IgG螯合物及其制备方法和应用
CN104987411A (zh) 一种镉-IgA螯合物及其制备方法和应用
CN104987414A (zh) 一种镍-IgM螯合物及其制备方法和应用
CN104987402A (zh) 一种铅-血红蛋白螯合物及其制备方法和应用
CN104987401A (zh) 一种镉-血红蛋白螯合物及其制备方法和应用
CN104987406A (zh) 一种镍-IgA螯合物及其制备方法和应用
CN104987388A (zh) 一种铅-白蛋白螯合物及其制备方法和应用
CN105021549A (zh) 一种镍-白蛋白螯合物及其制备方法和应用
CN104961824A (zh) 一种铅-高密度脂蛋白螯合物及其制备方法和应用
CN104987385A (zh) 一种镉-纤维蛋白原螯合物及其制备方法和应用
CN104987389A (zh) 一种砷-白蛋白螯合物及其制备方法和应用
CN104987410A (zh) 一种铅-IgE螯合物及其制备方法和应用
CN104987407A (zh) 一种镉-IgG螯合物及其制备方法和应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20151028

RJ01 Rejection of invention patent application after publication