一种制备malforminC的方法
技术领域:
发明涉及药品技术领域,即利用生物发酵生产malformin C的方法,即提供了微生物发酵制备malformin C的一个菌株和用其发酵液生产malformin C的方法。
技术背景:
环肽类化合物malformin C是1968年由Steenbergen S等人从发霉的大米上找到的一株黑曲霉产生,其发酵产率极低,只有200ug/ml(Steenbergen,S.,and E.D.Weinberg.Trace metal requirements for malformin biosynthesis.Growth.1968,32:125-134)。此外,Yasuhiro Kojimal等采固相合成的方法合成malformin C,收率只有15%(Yasuhiro Kojimal,Toshiaki Sunazukal,Kenichiro Nagail,et al.Solid-phase synthesis and biological activity of malformin C and its derivatives.The Journal of Antibiotics2009,62:681-686)。Keiichi HAGIMORI等人在2007年阐述了malformin C的抗癌机制。即malformin C作为一个G2期检验点(checkpoint)的抑制剂来达到抗癌的效果(Keiichi HAGIMORI,Takashi FUKUDA,Yoko HASEGAWA,et al.Fungal Malformins Inhibit Bleomycin-Induced G2 Checkpoint in Jurkat Cells.Biol.Pharm.Bull.2007,30(8):1379-1383)。因此,找到一个收率高、成本低的新方法来积累malformin C对于开发这类抗肿瘤药物具有非常重要的作用。
发明内容:
本发明提供了一套完整的从生产到分离纯化malformin C的方法。选择菌株SYP2612,采用需氧微生物发酵法,从其发酵液中分离纯化获得malformin C。
该方法包括原始菌种的活化、摇瓶种子培养、微生物发酵、以及后提取的各种步骤。其生产工艺包括:
脱脂牛奶冻干管菌种→斜面活化→摇瓶种子→微生物发酵→终止发酵,提取纯化获得malformin C。
本发明所述的摇瓶种子培养是指采用菌株生长所需要的碳源、氮源、无机盐等,经过灭菌后,挖取适量菌体斜面,转移到种子摇瓶中,在自动旋转摇瓶机上震荡培养,50-300rpm,25~30℃,培养24-48小时获得摇瓶种子。本发明涉及的菌株SYP2612已提交相关单位保藏, 其分类命名及保藏信息如下:
分类命名:塔宾曲霉(Aspergillus tubingensis)
保藏单位全称:中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心
保藏单位简称:中国普通微生物菌种保藏管理中心
保藏单位地址:北京市朝阳区大屯路,中国科学院微生物研究所
保藏日期:2012年12月14日
保藏编号:CGMCC NO.6992
本发明所述的微生物发酵是指采用菌株生长所需要的碳源、氮源、无机盐等,经过灭菌后,按照一定比例(1-15%)转入种子液。既可以采用在自动旋转摇瓶机上震荡,100-300rpm,25~30℃培养96~144小时后,停止发酵;也可以使用发酵罐进行微生物有氧发酵,100-400rpm,25~30℃培养96~144小时后,停止发酵。均可获得发酵产物malformin C。
本发明所述的微生物发酵的提取、分离、纯化过程如下:将所述的微生物发酵液用高速离心机或者布氏漏斗减压抽滤,除去菌丝体,将发酵上清液用乙酸乙酯或水饱和正丁醇等体积分别连续萃取三次,合并乙酸乙酯或水饱和正丁醇萃取液上层部分,用旋转蒸发仪减压浓缩至干燥,用甲醇完全溶解后取出,经过硅胶柱层析、经TLC获得目标馏分后,进一步采用HPLC法制备malformin C。
附图说明
附图1:菌株SYP2612菌落形态
附图2:菌株SYP2612孢子囊和孢子形态
附图3:菌株SYP2612依据ITS-5.8S rDNA序列的系统进化树
附图4:菌株SYP2612代谢产物的分离纯化流程
附图5:malfominC的ESI-MS图谱
附图6:C5的HPLC检测图谱
附图7:malfominC的13C-NMR图谱
附图8:malformin C的1H-NMR图谱
附图9:malformin C的HSQC-NMR图谱
附图10:malformin C的HMBC-NMR图谱
具体实施方式
下面结合优选实施例对本发明做进一步叙述,但保护范围不受所述实施例的限制。
实施例1:本发明所述真菌SYP2612在不同培养基上的特征。
上述菌株的生长状态参见附图1:菌株SYP2612菌落形态。
菌株SYP2612菌株在光学显微镜下的特征:
分生孢子头球形至辐射形;分生孢子梗壁光滑,顶囊球形,产孢结构双层,分生孢子球形,壁粗糙或具疣状突起。参见附图2:菌株SYP2612孢子囊和孢子形态。
以分子生物学手段,提取上述真菌基因组DNA,以ITS1、ITS4(ITS1:5’-TCC GTC GGT GAA CCT GCG G-3’;ITS4:5’-TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC-3’)为引物进行PCR扩增,测序,并将所测序列与Genbank中的rRNA同源序列比对,选取11株较高同源性的菌株,并以Sphingobacterium siyangensis为参照,利用软件Clustal X与Mega3.1构建菌种进化树。菌株SYP2612与Aspergillus tubingensis strain CBS103.12同源性最高(100%)。再结合形态学鉴定结果,该菌株被鉴定为塔宾曲霉Aspetgillus tubingensis。参见附图3:菌株SYP2612依据ITS-5.8SrDNA序列的系统进化树。
实施例2:需氧微生物摇瓶发酵法制备malformin C的方法
一、培养基
1.斜面培养基(g/L)
PDA培养基:马铃薯200、葡萄糖10、琼脂20、蒸馏水配制pH7.2-7.4121℃30min
马铃薯浸汁的制备:取200g去皮马铃薯,切成小块,置于1000ml水中煮一个小时后过滤,用蒸馏水将滤液补足1000ml。
2.摇瓶种子培养基(g/L)
3.摇瓶与发酵罐发酵培养基(g/L)摇瓶和发酵罐的培养基一样?
二、需氧微生物发酵过程
1.菌种的斜面活化:打开菌种脱脂牛奶冻干管,挑取少量粉匀涂布在上述灭菌后的斜面上,在28℃温度下培养5~7天,菌苔生长致密、布满斜面、无杂菌,冰箱4℃保存。
2.摇瓶种子培养:将活化好的斜面菌种挖块1*1cm2接种到种子培养瓶中,在28℃温度下恒温震荡培养,200rpm,培养40~48h,镜检菌丝生长舒展、染色深、无杂菌即可。
3.摇瓶发酵培养:发酵培养基如上,按1%的转种量将种子液接入发酵培养基中,28℃,200r/min培养144h,发酵120h时发酵液中C5含量达到最大值(758ug/ml),随后有所下降。
4.发酵罐发酵培养:发酵培养基如上,接种量1%~5%,通气量为0.66vvm(air volume/culture volume/min),28℃,200~400r/min发酵培养;C5产量达到最高峰的时间为96h, 经HPLC检测发酵液中C5浓度达到930ug/ml,随后有所下降;菌丝体前期生长状态良好,菌丝伸展,粗细均匀,在培养120h时菌丝体断裂成片段;在培养120h左右时残糖量下降为0g/100ml,氨基氮在24h左右下降到最低点,结束发酵。
三、菌株2612微生物发酵液中分离纯化C5的方法
1.发酵液预处理:将发酵液用布氏漏斗减压抽滤除去菌丝体,滤液乙酸乙酯萃取三次,合并乙酸乙酯萃取液上层部分,用旋转蒸发仪减压浓缩至干燥,备用。
2.代谢产物C-5的纯化
将上述干燥的样品用甲醇溶解,用10g硅胶拌样进行硅胶(200-300目,150g)柱层析,采用氯仿-甲醇梯度洗脱(15∶1→10∶1→5∶1),每100mL为一馏分,根据TLC分析,合并极性相近部分,得到极性较小的Section E部分,流程图见附图4。再将Section E部分进行制备液相作进一步纯化(菲纳米Kromasil C18,10*250mm5μm,流动相:甲醇∶水=90∶10;检测波长205nm),得到单体化合物,分析纯度达到95%以上,经过二次制备后,纯度可以达到99%。将所得纯净样品溶于氘代吡啶中,委托沈阳药科大学测试中心代测MS、13C、1H、HMQC、HMBC核磁数据,进行结构解析,鉴定为malformin C,malfominC的ESI-MS图谱见附图5。
3、HPLC法检测malformin C
色谱柱:Diamonsil C18(200*4.6mm5μm) 流速:1ml/min
流动相:甲醇∶水=90∶10 检测条件:205nm
保留时间:tR=15.565min
C5的HPLC检测图谱见附图6。