CN103376311A - 养殖场核心动物群体的抗体变化曲线图的建立及健康状况判定方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种畜牧动物群体的抗体变化曲线图的建立及健康状况判定方法。畜牧动物群体抗体变化曲线图的建立方法包括:确定核心畜牧动物群体,确定抽样检测的数量,现场快速采血,分离出血清,进行抗体检测并记录检测结果,结果统计并平均计算,得到该抽样群体当前的该种抗体的水平,将各月的该抽样群体当前的该种抗体的水平数据制成该畜牧动物群体的该种抗体的随时间变化的曲线图。本发明还提供了畜牧动物群体健康状况的判定方法。本发明使现代化养殖业的免疫更合理化、系统化和科学化。
Description
技术领域
本发明属于畜牧业生产领域,具体涉及一种养殖场核心动物群体抗体变化曲线图的建立方法、核心动物群体健康状况的判定方法和判定核心动物群体健康防疫效果的方法。
背景技术
进入21世纪以来,禽流感、疯牛病、口蹄疫等动物疫病频繁发生,由动物疫病、药残等引起的食源性疾病数量不断上升,由食品卫生质量、动植物检验检疫而引起的贸易纠纷不断,全球食品安全、动植物健康和生态环境形势不容乐观,这些问题已成为影响各国公共健康和经济发展的重要因素。事实上,对于任何一个养殖场而言,长期生长的核心畜群的健康状况是有一定规律可循的,但是由于不同的养殖场环境条件、饲养管理水平、管理方式方法、动物营养状况都有差异,因此不同的养殖场动物核心群的健康规律都不一样,随之带来的商品代动物群健康也不一样。同时由于技术水平、检测技术和设备以及成本的限制,无法得到本场准确的动物健康规律,所以尽管目前国内养殖场在健康预防保健上面的投入越来越大,但效果却并不理想,也造成在疫病的监测与控制手段上未能规范,不能建立属于本场的疫病监测与控制系统,因此对某些重大动物疫病的发生与流行难以做到准确预警,及早采取防范措施,常常不是预防在前,而是处理于后,即使处理也往往是传播开来再采取相应对策,造成抗生素的大量使用和药物残留等问题,严重阻碍和影响养殖业的持续稳定发展。为此,研究能在养殖现场使用的动物健康数字化管理工程技术,不仅能促进畜牧业的健康、持续发展,也能满足国家政府制定相关政策的迫切需求。因此动物健康数字化管理工程技术的建立,将有利于养殖场自身对疫病的危害和危险进行评估,对疫病的控制情况做出总结,为养殖场制订适合自身的免疫、防治措施和如何应对提供重要依据。
现代化养殖业,都具有一定的规模,采取集约化生产的形式,为了提高畜禽对特定疫病的特异性免疫力,必须搞好免疫接种,免疫接种不仅需要质量优良的疫苗,正确的接种方法和熟练的技术,还需要一个合理的免疫程序,才能充分发挥各种疫苗应用的的免疫效果。一个地区、一个养殖场可能发生多种传染病,而可以用来预防这些传染病的疫苗的性质又不尽相同,免疫期长短也不一,因此需要根据各种疫苗的免疫特性合理地制定预防接种的次数和间隔时间,这就是所谓的免疫程序。疫苗的免疫程序在各个养殖场,各种不同用途的畜禽群,各种不同饲养方式的情况下是不可能相同的。要达到免疫程序和实施方案的合理,应根据不同情况制定切合实际的程序,为使免疫更合理、更科学化,并通过实际的免疫效果检验免疫程序,应考虑建立动物健康监测制度,根据动物自身健康状况修正免疫程序,使畜禽免疫更科学、更合理。
另外,养殖场在疫苗免疫后,因养殖场自身管理水平、环境卫生状况、饲料营养水平等不同导致免疫后动物产生的抗体水平、抗体在体内衰减的速度及存留时间的长短也是不同的。即使是同一养殖场,因动物机体对疫苗的反应以及机体的代谢状况等不同,每次免疫接种所产生的抗体水平也不相同。再加上以下一些因素:疫苗的种类、质量与运输、贮存条件,及操作技术;母源抗体水平高低对幼畜禽早期应用疫苗的免疫效果干扰;免疫程序的安排及疫苗的免疫接种方法是否合理;畜禽的免疫状态对疫苗免疫回忆反应的作用等,也会影响免疫效果。因此寻找一种简单地判定畜牧动物群体健康防疫效果的方法也迫在眉睫。
发明内容
本发明的目的是通过给养殖场生产一线提供一套完整的健康规律检测与数据处理体系,从而建立完善的免疫抗体变化曲线图,可以随时通过现场检测与监测,并与图中的健康数据比对后快速判定健康状况,从而为整群动物的健康预防保健采取科学合理的有效措施提供依据。
本发明的另一目的是提供一种核心动物群体健康状况的判定方法。
本发明的目的可以通过以下措施达到:
一种养殖场核心动物群体抗体变化曲线图的建立方法,其包括如下步骤:
a、确定核心畜牧动物群体;
b、根据核心动物群体的大小,确定抽样检测的数量;
c、对核心动物群体进行抽样并进行现场快速采血;
d、对采集到的血液离心处理,分离出血清;
e、采用一种动物的抗体快速检测试纸对得到的血清进行抗体现场快速检测并记录检测结果;
f、将所有抽样动物的抗体检测结果统计后,进行平均计算,得到该抽样群体当前的该种抗体的实际水平;
g、对核心动物群体按月进行步骤c-f的操作,将各月的该抽样群体当前的该种抗体的实际水平数据制成该畜牧动物群体的该种抗体的随时间变化的曲线图。
本发明的养殖场核心动物群体抗体变化曲线图,又可称为健康心电图,其建立方法的流程可以归纳如下:
其具体方法可包括如下步骤:
a确定检测动物群
选定核心动物群体,如后备母畜群、怀孕母畜群、哺乳母畜群、种用公畜群、青年种禽、产蛋种禽或产蛋禽等,只有先确定检测核心动物群后,才能开始下一个工序工作;
b确定抽样检测数量
由于检测动物群体大小不同,为了检测结果能够代表该群,所以必须根据核心动物群体大小,确定抽样检测的数量,其按照一定比例随机抽样检测,具体抽样比例如下:
家畜类动物按照以下比例进行(表1)
群体大小(头) | 50以下 | 50-100 | 100-500 | 500-1000 | 1000以上 |
抽样比例(%) | 100 | 50 | 30 | 20 | 10 |
在不同群体大小的共有端点时,可以适用不同群体所对应的抽样比例,根据具体情况进行选择(如500头时可适用30%或20%的抽样比例)。下同。
种禽类动物按照以下比例进行(表2)
群体大小(羽) | 500以下 | 500-1000 | 1000-2000 | 2000以上 |
抽样比例(%) | 50 | 30 | 15 | 8 |
商品禽类动物按照以下比例进行(表3)
群体大小(羽) | 3000以下 | 3000-5000 | 5000以上 |
抽样比例(%) | 15 | 10 | 5 |
c现场快速采血
家畜采用颈静脉(专职兽医采用较多)或者耳背经脉采血(普通养殖人员多采用)或者尾根静脉采血方法,家禽则可以采用颈静脉或翅内侧腋下静脉采血方法采集干净血液,采血量为1~2.5ml,放入专用离心管内,并编上记号,便于区别和记录;
d血液离心处理
用相匹配的离心机(迷你型掌式离心机、80-1离心机)离心放置在离心管中的血液,2000转离心2分钟或者4000转离心1分钟,上清液为血清,备用。
e血清滴定检测卡, 读取检测结果
取出相应的检测卡(如猪瘟抗体检测卡、猪蓝耳病抗体检测卡、猪伪狂犬抗体检测卡、猪口蹄疫抗体检测卡、禽流感抗体检测卡、猪流感抗体检测卡、猪圆环病毒抗体检测卡等),打开外封包装,平放检测卡,用记号笔编号登记然后用包装袋内配置的专用滴管,吸取血清足量,垂直向检测卡的滴液孔滴入3滴血清,检测卡观察窗层析面液体流动时开始计时,15-20分钟之间读取数据;
用和检测卡随同配备的读数比色卡进行比色对照(注意:最好在自然光下比色读取,避免强光照射,所以应尽量选择晴天进行检测),与比色卡上T线颜色最为接近的对应抗体滴度数据,即为该动物该种抗体的滴度水平,做记录并和检测卡编号一一对应;
f输入数据库,计算平均值
将所有抽样检测个体的抗体数据输入数据库(或电脑EXCEL表),进行平均计算,所得结果即为该抽样群体当前的该种抗体的水平。
g建立以月份为横坐标、数据为纵坐标的曲线图
按照检测的时间(月)为横坐标和平均检测数据(抗体滴度)为纵坐标,将每个检测数据在平面坐标上点好位置,当连续多个点找到后,进行连接,就绘制成了一张该动物群体该种抗体的变化曲线图,称之为该种抗原抵抗力的健康心电图。即该畜牧动物群体的该种抗体的随时间变化的曲线图中的横坐标为月份,纵坐标为当月该抽样群体该种抗体的水平数据。
在该核心动物群体抗体变化曲线图上还可以根据不同抗体的种类或类型,进一步标出该抗体的理想最高安全水平曲线和理想最低安全水平曲线,即根据该抗体的理想最高安全数据和理想最低安全数据,在图中将各月的安全数据连接成曲线(即直线)。
本发明中的“理想最低安全数据”,是指在具体免疫环境中起到相应免疫作用的较理想的抗体最低水平值,其该数据根据不同的抗体类型都有不同。不同疫苗所产生的有效抗体都有其“理论最低安全数值”,可由疫苗的来源商提供,但在实际免疫过程中, 针对实际不同的具体环境和对象,实际上的最低安全数值会大于前述“理论最低安全数值”,本发明中将该实际上的最低安全数值称为“理想最低安全数据”,其可以在具体免疫环境中总结或统计得到。与其类似的,“理想最高安全数据”是在具体免疫环境中起到相应免疫作用的较理想的抗体最高水平值,其该数据根据不同的抗体类型都有不同。本发明中将实际上针对具体环境的最高安全数值称为“理想最高安全数据”,其可以在具体免疫环境中总结或统计得到。前述两数据也可称为“理想最低安全滴度” 和“理想最高安全滴度”。
本发明还公开了一种养殖场核心动物群体健康状况的判定方法,其包括如下步骤:
h、根据核心动物群体的大小,确定抽样检测的数量;
i、对核心动物群体进行抽样现场快速采血;
j、对采集到的血液离心处理,分离出血清;
k、采用与上述方法得到的核心动物群体抗体变化曲线图相同的抗体检测试纸对得到的血清进行抗体检测并记录检测结果;
l、将所有抽样的抗体检测结果统计后,进行平均计算,得到该抽样群体当前的该种抗体的水平;
m、将该抽样群体当前的该种抗体的水平数据与该畜牧动物群体的该种抗体随时间变化曲线图中所对应时间段的抗体水平比较,如果:
A、两者的差别在50%以内,或前者数据在理想最低安全水平以上且在理想最高安全水平以下时,则该核心动物群体无需采取相应的免疫措施;
B、当前的该种抗体的水平数据低于变化曲线图中理想最低安全水平时,则需要对该核心动物群体进行相应的免疫措施;
C、当前的该种抗体的水平数据高于变化曲线图中所对应时间段的抗体水平100%或高于理想最高安全水平时,则需进行抗原复检;如抗原复检结果为阴性,则该核心动物群体无需采取相应的免疫措施;如抗原复检结果为阳性,则需要对该核心动物群体进行相应的免疫措施或相应的治疗措施。
对于已经建立健康心电图曲线的动物群:在步骤h中根据核心动物群体的大小,按下述比例确定抽样检测的数量:
家畜类动物:
群体大小(头) | 50以下 | 50-100 | 100-500 | 500-1000 | 1000以上 |
抽样比例(%) | 50 | 25 | 15 | 10 | 5 |
种禽类动物:
群体大小(羽) | 500以下 | 500-1000 | 1000-2000 | 2000以上 |
抽样比例(%) | 25 | 15 | 10 | 5 |
商品禽类动物:
群体大小(羽) | 3000以下 | 3000-5000 | 5000以上 |
抽样比例(%) | 10 | 8 | 3 |
按h-l的步骤得出数据后,直接将检测数据(平均值)与健康心电图对应时间段抗体水平比较,如果吻合且在合理范围之内,则表明动物处于健康状态或者表明动物本身对检测病毒项目具有足够的免疫力,此时则不需要采取相应的免疫措施;若数据结果明显低于安全范围,则表明该动物群应该进行免疫了;若结果数据非常高,超出了合理范围的上限,则建议最好进行抗原复检,如复检阴性,则是健康状态不用免疫,如是阳性,则必须立即采取措施进行免疫或其他治疗措施,避免病毒扩散造成更大的生产损失。
在A、B、C的判断中,当根据不同判断条件同时出现无需和需要采取相应的免疫措施时,以采取相应的免疫措施为佳。
对于尚未建立健康心电图曲线的动物群,同样按h-l的步骤得出数据后,可以在步骤m中,将该抽样群体当前的该种抗体的水平数据与该抗体的理想最高安全水平和理想最低安全水平进行对比,如果:
A1、前者在理想最高安全水平和理想最低安全水平之间时,则该核心动物群体无需采取相应的免疫措施;
B1、前者小于理想最低安全水平时,则需要对该核心动物群体进行相应的免疫措施;
C1、前者大于理想最高安全水平时,则需进行抗原复检;如抗原复检结果为阴性,则该核心动物群体无需采取相应的免疫措施;如抗原复检结果为阳性,则需要对该核心动物群体进行相应的免疫措施或相应的治疗措施。
对于尚未建立健康心电图曲线的动物群,在判定动物群体健康状况时可按下表进行快速采血。
家畜类动物按照以下比例进行(表1)
群体大小(头) | 50以下 | 50-100 | 100-500 | 500-1000 | 1000以上 |
抽样比例(%) | 100 | 50 | 30 | 20 | 10 |
种禽类动物按照以下比例进行(表2)
群体大小(羽) | 500以下 | 500-1000 | 1000-2000 | 2000以上 |
抽样比例(%) | 50 | 30 | 15 | 8 |
商品禽类动物按照以下比例进行(表3)
群体大小(羽) | 3000以下 | 3000-5000 | 5000以上 |
抽样比例(%) | 15 | 10 | 5 |
本发明所确定的采血抽样检测数量方法即可最大程度上实现抽样的代表性,又兼顾了采样的速度和成本。
本发明当建立起抗体心电图后,无需每月进行抽检,只需在疫苗接种前进行抗体水平的抽测,如发现有异常情况的要和心电图进行比照,一般情况下,只要核心群不发生大的变化,那么心电图可以使用多年,视核心群疾病爆发情况和核心群淘汰数量而定(养殖场可以自行进行调整)。
根据抗体心电图,再结合该场疫苗的接种程序,在接种疫苗时要避开抗体水平较高的时间段,也就是应该在抗体水平下降以及低于保护效价水平时进行接种,如果原定的接种时间正好处于抗体水平较高时间,则应该取消接种。
接种疫苗后参考该疫苗产生抗体需要的时间(疫苗供应商可提供)抽取血样进行抗体水平的检测,以确认种群是否具有了免疫力。
就整个群体而言,这样可减少疫苗的接种次数,但提高了免疫保护效果,而且相当部分的畜禽只需要一次接种即可完成该抗体一生的防疫需要,免疫成本大大下降。其改善了接种程序使之更加符合该养殖场的实际情况,并降低了畜禽群发病率和饲养成本。
本发明可以使现代化养殖业的免疫更合理、更科学化,其:
1、可以快速、准确、低成本找到养殖场动物健康的规律,使养殖场管理者对动物健康信息了然于胸;
2、可以极大的避免盲目防疫,做到不需要的防疫就可以不做,需要做时立即进行;
3、全面彻底提高动物健康水平,减少疾病发生,降低用药50%以上,提高饲料报酬20%,缩短出栏期,改善日增重,增加母畜年出栏商品畜数量,全面提高养殖经济效益;
4、为种畜销售以及购买提供现场健康数据,增强可信度;
5、对出栏动物的本身安全、健康指标可以做到现场提供,快速判别,减少了成为畜产品后再发现安全问题时所造成的损失的事故机会,杜绝社会性浪费。
附图说明
图1是猪瘟抗体金标试纸试验实物参照图。
图2是实施例1完成的该母猪群猪瘟抗体水平年变化曲线图。
具体实施方式
以下结合实施例和附图对本发明做进一步说明。
实施例1:
事例:
以某猪场300头后备母猪(配种怀孕数据跟群延续)为例,建立猪瘟抗体变化曲线图:
1、首先确定检测抽样比例,对照抽样比例表,本群母猪抽样比例为30%,共需随机抽血样90份:
2、选择采血母猪:按照随机抽样要求,确定90头母猪,并标记;
3、采血:采用耳背静脉采血,每份血样1-2mL,放入专用15ml离心管内,并编上记号,便于区别和记录;
4、离心:用80-1离心机将采集的血样进行4000转离心1-2分钟,以血清和血细胞分离为标准,离心后静置于试管架上备用;
5、移取血清:用连续可调1ml移液器将离心管中上清液---血清移入到1.5ml的离心管中;
6、二次离心:将移出的血清在掌式离心机LX-100上2000转二次离心1-2分钟,充分分离血清和血细胞,离心后的血清备用;
7、检测卡准备:取出猪瘟抗体快速检测试纸卡,开封后平放在桌面,记号笔进行标记(标记应该和血样记号对应);
8、滴定反应:用检测卡包装袋内配置的定量滴管吸取血清,从检测卡滴液孔上方垂直缓慢而准确的逐滴滴入3滴血清,并开始计时。
9、准备比色读数卡:取出猪瘟抗体检测比色读数卡片,放置在自然光下,待检测卡内血清反应时间到后进行比色读数;
10、比色读数:(滴定开始计时15分钟—20分钟之间进行读数)
a首先判定检测卡本次检测是否有效,主要看检测卡观测窗对应C线位置色带是否出现,如果出现表示本次检测卡结果有效,可以读数;如果C线没有出现,表示本次检测结果无效,需要重新换卡滴定检测;
b将检测卡的C线对齐比色读数卡的C线,对比检测卡上T线颜色与比色读数卡上T线颜色最为接近的位置,该位置所对应的数据即为本次血清猪瘟抗体的检测数据;
11、数据记录:将比色读数卡上对应的数据记录下来。
猪瘟抗体金标试纸卡实物参照图详见图1。
把本次检测结果全部记录,计算群体抗体平均值(见下表4,本处实施案例选取了其中20个数据示范),该平均值就是该群母猪该月的抗体平均水平数据,连续12个月如此检测后,就会得到12个数据,将这些数据在坐标系上标示出来,就会有12个点,连接起来就形成了一张完整的该母猪群猪瘟抗体变化曲线图(猪瘟健康心电图),连续12个月的检测抗体部分检测数据见下表(表4-1和4-2):
表4-1
编号 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 |
1月 | 256 | 128 | 256 | 128 | 256 | 512 | 128 | 128 | 512 | 256 | 256 |
2月 | 256 | 128 | 64 | 128 | 256 | 128 | 128 | 128 | 256 | 256 | 512 |
3月 | 64 | 32 | 64 | 32 | 32 | 16 | 16 | 8 | 8 | 16 | 32 |
4月 | 64 | 128 | 256 | 512 | 64 | 128 | 128 | 128 | 128 | 64 | 64 |
5月 | 128 | 128 | 512 | 1024 | 512 | 128 | 128 | 512 | 512 | 64 | 128 |
6月 | 256 | 256 | 256 | 512 | 256 | 512 | 512 | 512 | 1024 | 1024 | 1024 |
7月 | 128 | 256 | 128 | 256 | 256 | 512 | 512 | 256 | 256 | 128 | 128 |
8月 | 128 | 128 | 128 | 128 | 256 | 256 | 256 | 128 | 128 | 128 | 256 |
9月 | 128 | 128 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 | 128 | 128 |
10月 | 64 | 32 | 16 | 16 | 8 | 8 | 8 | 8 | 16 | 16 | 32 |
11月 | 32 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 | 128 | 128 | 64 | 64 | 256 |
12月 | 128 | 128 | 256 | 256 | 256 | 256 | 512 | 512 | 256 | 256 | 512 |
表4-2
编号 | 12 | 13 | 14 | 15 | 16 | 17 | 18 | 19 | 20 | 总平均值 |
1月 | 256 | 128 | 128 | 256 | 256 | 512 | 256 | 128 | 256 | 249.6 |
2月 | 256 | 128 | 64 | 64 | 128 | 128 | 256 | 128 | 64 | 172.8 |
3月 | 32 | 64 | 32 | 32 | 64 | 8 | 16 | 16 | 16 | 30 |
4月 | 64 | 64 | 128 | 256 | 128 | 128 | 64 | 128 | 128 | 137.6 |
5月 | 64 | 128 | 512 | 1024 | 512 | 128 | 128 | 256 | 256 | 339.2 |
6月 | 512 | 512 | 256 | 512 | 512 | 512 | 512 | 512 | 512 | 524.8 |
7月 | 128 | 256 | 256 | 256 | 512 | 512 | 256 | 256 | 512 | 288 |
8月 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 211.2 |
9月 | 128 | 128 | 64 | 128 | 32 | 32 | 64 | 64 | 32 | 81.6 |
10月 | 32 | 32 | 16 | 16 | 8 | 0 | 0 | 8 | 0 | 16.8 |
11月 | 64 | 128 | 128 | 64 | 64 | 128 | 128 | 64 | 128 | 94.4 |
12月 | 512 | 256 | 256 | 128 | 128 | 64 | 128 | 64 | 128 | 249.6 |
整理出该母猪群整体的猪瘟抗体水平12个月的变化表(表5)
月份 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 |
抗体实际滴度 | 250 | 173 | 30 | 138 | 339 | 525 | 288 | 211.2 | 81.6 | 16.8 | 94.4 | 250 |
理想最高安全滴度 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 | 256 |
理想最低安全滴度 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 | 64 |
依据上表数据,可以完成该母猪群猪瘟抗体水平年变化曲线图(猪瘟年健康心电图),即图2。
根据图2曲线,再结合该场本群猪瘟疫苗的接种程序,该猪场在接种猪瘟疫苗时要避开猪瘟抗体水平较高的时间段,也就是应该在抗体水平下降以及低于保护效价水平时进行接种,如果原定的接种时间正好处于抗体水平较高时间,则应该取消接种;
当建立起本猪场的猪瘟抗体心电图后,就无需每月进行抽检,而是在再次猪瘟疫苗接种前进行抗体水平的抽测,如发现有异常情况的要和心电图进行比照。
一般情况下,只要母猪核心群不发生大的变化,那么心电图可以使用3年左右的时间,视猪场疾病和母猪淘汰数量而定(养殖场可以自行进行调整)。
接种疫苗后应该在7-10天(主要参考该疫苗产生抗体需要的时间而定)抽取血样进行抗体水平的检测,以确认猪群是否具有了免疫力。
就整个猪群而言,猪瘟疫苗的接种次数减少,但是免疫保护却更加有效了,而且相当部分的猪只只需要一次接种即可完成一生的猪瘟防疫需要,免疫成本大大下降。由于改善了接种程序使之更加符合该猪场的实际情况,调整接种程序后的猪群发病率大大降低,饲养成本又继续下降,饲料报酬也更加合理。
根据图2曲线,如果在9月份时需要判定该动物群体的详细健康状况,则,以15%的抽样比例随机抽血样45份,按上述2-11的步骤计算群体抗体平均值,当:
A、当该平均值在64~256之间时,则该群体无需进行猪瘟疫苗接种;(256是最高上限)
B、该平均值小于64时,则需要对群体进行猪瘟疫苗接种;
C、该平均值大于256时,则需进行抗原复检;如抗原复检结果为阴性,则该畜牧动物群体无需进行猪瘟疫苗接种;如抗原复检结果为阳性,则需要对该畜牧动物群体进行相应的免疫措施或相应的治疗措施。
实施例2
猪群健康状况判定
本方法一般用于在传染病高发时节或者种畜采购进场时的现场快速判定,我们仍以实施例1中建立了健康心电图的母猪群健康检测为例。
该猪场可疑感染猪瘟病毒母猪15头,按照抽样比例应抽取100%进行检测,具体步骤如下:
1、确定抽样比例,整群个体数量为15头,抽样比例确定为100%;
2、抽取15头母猪,并标记;
3、采血:采用耳背静脉采血,每份血样0.5-1mL,放入专用1.5ml离心管内,并编上记号,便于区别和记录;
4、离心:用LX-100掌式离心机将采集的血样进行2000转离心1-2分钟,以血清和血细胞分离为标准,离心后静置于试管架上备用;
5、检测卡准备:取出猪瘟病毒快速检测试纸卡,开封后平放在桌面,记号笔进行标记(标记应该和血样记号对应);
6、滴定反应:用检测卡包装袋内配置的定量滴管吸取血清,从检测卡滴液孔上方垂直缓慢而准确的逐滴滴入3滴血清,并开始计时;
7、结果判定:3-4分钟观察检测卡观测窗内显示情况,C线T线双线均显为阳性,表明母猪携带猪瘟病毒,C线显示T线不显示,则为阴性,表示母猪未有猪瘟病毒感染,是健康猪;C线不显示,T线无论显示与否,都表明检测卡失效,本次检测结果无效,需要换卡重新滴定检测。本卡结果5分钟无效。
8、检测结果如下(表6):
母猪号 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
显示结果 | 阴性 | 阴性 | 阴性 | 阴性 | 阴性 | 阴性 | 阳性 | 阴性 |
判定 | 健康 | 健康 | 健康 | 健康 | 健康 | 健康 | 携带 | 健康 |
母猪号 | 9 | 10 | 11 | 12 | 13 | 14 | 15 | |
显示结果 | 阳性 | 阳性 | 阴性 | 阴性 | 阴性 | 阳性 | 阴性 | |
判定 | 携带 | 携带 | 健康 | 健康 | 健康 | 携带 | 健康 |
9、猪群健康评定:
根据以上检测结果表明,该群母猪猪瘟病毒携带率为4/15,可以判定本群15头种猪健康状况不好,处于危险期,应马上采取应激措施。
通过本方法的检测,快速避免了母猪群猪瘟病毒的进一步扩散。
实施例3 免疫前健康状况判定
仍然以建立了健康心电图的实施例1猪场的500头生长猪为例,对其猪瘟免疫前健康状况进行判定,具体流程如下:
免疫前的猪瘟抗体水平检测:
1、确定猪群:500头生长猪
2、确定抽样比例:按照猪群个体数量,确定为抽样比例是20%,即要随机抽取100头猪进行猪瘟抗体水平的检测;
3、选取抽样猪:按照抽样比例随机选取100头猪,并标记
4、采血:采用耳背或尾根静脉采血,每份血样0.5-1mL,放入专用1.5ml离心管内,并编上记号,便于区别和记录;
5、离心:用LX-100掌式离心机将采集的血样进行2000转离心1-2分钟,以血清和血细胞分离为标准,离心后静置于试管架上备用;
6、检测卡准备:取出猪瘟抗体快速检测试纸卡,开封后平放在桌面,记号笔进行标记(标记应该和血样记号对应);
7、滴定反应:用检测卡包装袋内配置的定量滴管吸取血清,从检测卡滴液孔上方垂直缓慢而准确的逐滴滴入3滴血清,并开始计时;
8、结果判定:15-20分钟之间用比色读数卡读数,20分钟后结果无效。
a首先判定检测卡本次检测是否有效,主要看检测卡观测窗对应C线位置色带是否出现,如果出现表示本次检测卡结果有效,可以读数;如果C线没有出现,表示本次检测结果无效,需要重新换卡滴定检测;
b将检测卡的C线对齐比色读数卡的C线,对比检测卡上T线颜色与比色读数卡上T线颜色最为接近的位置,该位置所对应的数据即为本次血清猪瘟抗体的检测数据;
9、本次抽样检测的意义:
本次检测在于判断健康状况,确认是否需要进行猪瘟免疫以及免疫的时机是否正确。
10、具体检测结果如下(表7)
猪号 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
抗体 | 8 | 4 | 8 | 8 | 8 | 16 | 8 | 8 | 8 | 16 |
猪号 | 11 | 12 | 13 | 14 | 15 | 16 | 17 | 18 | 19 | 20 |
抗体 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 | 8 | 8 | 8 | 8 |
猪号 | 21 | 22 | 23 | 24 | 25 | 26 | 27 | 28 | 29 | 30 |
抗体 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 16 | 16 | 32 | 16 |
猪号 | 31 | 32 | 33 | 34 | 35 | 36 | 37 | 38 | 39 | 40 |
抗体 | 8 | 4 | 8 | 8 | 4 | 4 | 4 | 32 | 32 | 16 |
猪号 | 41 | 42 | 43 | 44 | 45 | 46 | 47 | 48 | 49 | 50 |
抗体 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 |
猪号 | 51 | 52 | 53 | 54 | 55 | 56 | 57 | 58 | 59 | 60 |
抗体 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 | 16 | 16 | 8 |
猪号 | 61 | 62 | 63 | 64 | 65 | 66 | 67 | 68 | 69 | 70 |
抗体 | 32 | 32 | 16 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 |
猪号 | 71 | 72 | 73 | 74 | 75 | 76 | 77 | 78 | 79 | 80 |
抗体 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 |
猪号 | 81 | 82 | 83 | 84 | 85 | 86 | 87 | 88 | 89 | 90 |
抗体 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 |
猪号 | 91 | 92 | 93 | 94 | 95 | 96 | 97 | 98 | 99 | 100 |
抗体 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 |
11、结果判断:猪群猪瘟抗体水平无论从个体水平还是群体平均值8.8,均明显低于最低理论有效保护值16,更是低于理想最低安全水平64),群体猪瘟抗体水平健康度较低,可以进行猪瘟免疫免疫。
Claims (10)
1.一种养殖场核心动物群体抗体变化规律曲线图的建立方法,其特征在于包括如下步骤:
a、确定核心动物群体;
b、根据核心动物群体的大小,确定抽样检测的数量;
c、对核心动物群体进行抽样并进行现场快速采血;
d、对采集到的血液离心处理,分离出血清;
e、采用一种动物的抗体快速检测试纸对得到的血清进行抗体现场快速检测并记录检测结果;
f、将所有抽样动物的抗体检测结果统计后,进行平均计算,得到该抽样群体当前的该种抗体的实际水平;
g、对核心动物群体按月进行步骤c-f的操作,将各月的该抽样群体当前的该种抗体的实际水平数据制成该核心动物群体的该种抗体的随时间变化的曲线图。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述核心动物群体为后备母畜群、怀孕母畜群、哺乳母畜群、种用公畜群、青年种禽、产蛋种禽或产蛋禽。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:步骤b中根据核心动物群体的大小,按下述比例确定抽样检测的核心动物个体数量:
家畜类动物:
种禽类动物:
商品禽类动物:
。
4.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:在步骤c对核心动物群体进行抽样现场快速采血过程中,家畜类动物采用颈静脉或耳背经脉采血的方法采集干净血液,家禽类动物采用颈静脉或翅内侧腋下静脉采血的方法采集干净血液;采血量为1~2.5ml。
5.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述该核心动物群体的该种抗体的随时间变化的曲线图中的横坐标为月份,纵坐标为当月该抽样群体该种抗体的水平数据。
6.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:在该核心动物群体抗体变化曲线图上还标出该抗体的理想最高安全水平曲线和理想最低安全水平曲线。
7.一种养殖场核心动物群体健康状况的判定方法,其特征在于包括如下步骤:
h、根据核心动物群体的大小,确定抽样检测的数量;
i、对核心动物群体按确定的抽样比例进行抽样并进行现场快速采血;
j、对采集到的血液离心处理,分离出血清;
k、采用与权利要求1得到的核心动物群体抗体变化曲线图相同的抗体快速检测试纸对得到的血清进行抗体检测并记录检测结果;
l、将所有抽样的抗体检测结果统计后,进行平均计算,得到该抽样群体当前的该种抗体的水平;
m、将该抽样群体当前的该种抗体的水平数据与权利要求6得到的该核心动物群体的该种抗体随时间变化曲线图中所对应时间段的抗体水平比较,如果:
A、两者的差别在50%以内,或前者数据在理想最低安全水平以上且在理想最高安全水平以下时,则该核心动物群体无需采取相应的免疫措施;
B、当前的该种抗体的水平数据低于变化曲线图中理想最低安全水平时,则需要对该核心动物群体进行相应的免疫措施;
C、当前的该种抗体的水平数据高于变化曲线图中所对应时间段的抗体水平100%或高于理想最高安全水平时,则需进行抗原复检;如抗原复检结果为阴性,则该核心动物群体无需采取相应的免疫措施;如抗原复检结果为阳性,则需要对该核心动物群体进行相应的免疫措施或相应的治疗措施。
8.根据权利要求7所述的方法,其特征在于:步骤h中根据畜牧动物群体的大小,按下述比例确定抽样检测的数量:
家畜类动物:
种禽类动物:
商品禽类动物:
。
9.根据权利要求7所述的方法,其特征在于:在步骤m中,直接将该抽样群体当前的该种抗体的水平数据与该抗体的理想最高安全水平和理想最低安全水平进行对比,如果:
A1、前者在理想最高安全水平和理想最低安全水平之间时,则该核心动物群体无需采取相应的免疫措施;
B1、前者小于理想最低安全水平时,则需要对该核心动物群体进行相应的免疫措施;
C1、前者大于理想最高安全水平时,则需进行抗原复检;如抗原复检结果为阴性,则该核心动物群体无需采取相应的免疫措施;如抗原复检结果为阳性,则需要对该核心动物群体进行相应的免疫措施或相应的治疗措施。
10.根据权利要求9所述的方法,其特征在于:在步骤h中,根据核心动物群体的大小,按下述比例确定抽样检测的数量:
家畜类动物:
种禽类动物:
商品禽类动物:
。
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Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2005015355A (ja) * | 2003-06-24 | 2005-01-20 | Kobe University | Dnaワクチンから産生される抗原量を増加させる方法、dnaワクチンの投与方法、dnaワクチンが産生した抗原を検出する方法 |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
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Non-Patent Citations (7)
Title |
---|
于桂阳: "规模化猪场主要疫病的抗体水平监测与免疫效果分析", 《黑龙江畜牧兽医》 * |
刘晓丽: "Ⅰ型鸭肝炎病毒抗体在产蛋鸭和雏鸭体内的变化规律研究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库农业科技辑》 * |
刘玉芬等: "大肠杆菌O126免疫产蛋鸡后血清抗体与卵黄抗体效价动态变化规律比较", 《黑龙江畜牧兽医》 * |
刘莲芝等: "猪瘟抗体监测最佳采样数量的试验研究", 《河南畜牧兽医(综合版)》 * |
卢清侠等: "基于免疫层析试纸的猪O型FMDV抗体水平监测", 《河南农业大学学报》 * |
李坚等: "猪瘟免疫抗体监测的综合分析", 《上海畜牧兽医通讯》 * |
李宇琴等: "一例抗体监测改善猪场免疫状况实例", 《今日养猪业》 * |
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