CN103283441B - 一种采用风干污泥提高草坪植物抗旱性的方法 - Google Patents

Abstract

本发明公开了一种采用风干污泥提高草坪植物抗旱性的方法，它是在选取培养皿为草坪植物培植容器，装入污泥与土壤混合基质总重80g，风干污泥与土壤按比例1:7（w/w）混合，基质最大持水量为47.5%，每皿播种量按照10 g/m²，播种前将种子浸泡于水中24 h，使种子充分吸水膨胀后再进行播种。实验结果表明：添加风干污泥有效促进干旱条件下高羊茅地上生物量的积累，叶绿素含量的上升，同时SOD、POD活性增强，综合各个测定指标，认为干旱胁迫下施加风干污泥可有效缓解逆境对植物带来的损伤。

Description

一种采用风干污泥提高草坪植物抗旱性的方法

技术领域

本发明属于环境保护技术领域，涉及城市绿化特别是一种采用风干污泥提高草坪植物抗旱性的方法。

背景技术

我国污泥产量与日俱增，如何妥善处置污水处理厂污泥，已成为各界人们所关注的问题。目前，我国城市污泥处理与处置的主要目的是达到污泥的减量化、稳定化、无害化和资源化。污泥的处置方法有很多，我国常用方法有：卫生填埋、焚烧处理、水体消纳、堆肥处理和土地利用。卫生填埋是较为成熟的污泥处理方式，这种方式投资少、容量大且见效快，在一定基础上还可增加部分城市的建筑用地。但卫生填埋的基本处理方式只是将污泥简单灭菌然后直接倾倒于低地或谷地。但是卫生填埋的处理方式需要占用大面积土地，并且污泥中含有的有毒有害物质会随着雨水和渗透作用污染地下水。据美国环保局估计，在未来十几年里将有80%左右填埋厂关闭。

堆肥处理就是将城市污泥进行堆肥达到稳定化的处理方式。污泥的堆肥处理是污泥达到较高的稳定化、无害化水平，经处理的污泥无味、无害同时具有较高的肥效。有研究指出，污泥堆肥在城市园林绿地施用可促进树木、花卉及草坪的生长，同时污泥堆肥能够改善土壤的理化性质，例如：土壤的容重下降，持水量、孔隙度及渗水率增加；当施用量小于120 t/ ha，随污泥带入的盐分和重金属对植物并未产生危害，对环境质量影响很小。但堆肥过程需要较大面积的专用场地，同时需要较高运输以及处理费用。而我国人均耕地少、资金短缺的发展中国家，利用大批专门场地进行堆肥化处理并不利于可持续发展。

污泥堆肥处理土地利用被认为是最有发展潜力的处置方式。城市污泥土地利用可处理大量污泥且环境安全，是一条经济可行的处置方法。这种处置方式是把污泥应用于农田、菜地、果园、林地、草地、市政绿化、育苗基质及严重扰动的土地修复与重建等。在1984年，我国颁布了《农用污泥中污染物控制标准》(GB4284-84)，污泥的土地利用也随之定量化、标准化。污泥中含有大量有机质以及植物所需的营养物质，是有价值的生物资源，污泥科学合理的土地利用，能够降低污泥带来的负面效应，使其重新进入自然环境，参与自然的物质和能量循环。我国污泥土地利用，农用资源化理论研究与实践之间存在差距，但就北京、上海、天津等地，污泥应用于农田的历史也有二十年。目前常用的污泥土地资源化利用途径有农田施用、林地施用、园林绿化建设应用、受损土壤的改良和修复等。

污泥的农田利用研究显示，将污泥应用于农田有利于维持和提高土壤肥力，有利于土壤资源的可持续利用和农业可持续发展。同时，施用污泥或污泥堆肥栽种水稻、玉米、小麦、棉花、蔬菜等作物，植株的生长状况、产量和品质明显比不施肥好，与施用化肥或优质农家肥相当，甚至更好污泥或污泥堆肥的施用能明显改善土壤的物理性质，如有利于团粒的形成和提高团粒的水稳定性；可增加土壤的孔隙度，提高土壤的持水能力和保水能力等.施用污泥或污泥堆肥，还能明显改善土壤的化学性质，如能显著地提高土壤氮、磷、钾（全量和有效态）和有机质的含量等。

    综上所述，由于城市污泥堆肥含有丰富的有机质和大量的植物生长所需营养元素，对污泥堆肥的园林绿地资源化利用已得到广泛报道。但对城市污泥利用于园林绿地的研究多集中于污泥经过有氧或无氧的堆肥发酵，形成腐熟堆肥，或单独施用污泥堆肥，或与其他废弃物，例如与垃圾堆肥、泥炭、珍珠岩、河沙等物质，按照相应比例混合后，形成植物的生长基质。

尽管如此，污泥堆肥化处理利用，存在耗时长，并需要大量的人类、物力和财力；同时，在处理工程中，污泥的营养成分也会存在损失。因此，污泥堆肥化处理利用，会大大增加了其利用成本，这也在很大程度上限制也高效和广泛的利用。可见，研制一种有效的低成本利用污泥的方法，已成为当务之急。

因此本技术在反复实验的基础上，对污水处理厂处理后剩余的生污泥进行自然风干处理后的可利用进行研究。将污水处理厂的脱水污泥经过自然风干处理后，直接应用于草坪植物培植，既缩短了污泥再利用的时间，同时节约了大量的人力资源，降低了污泥再利用的成本；而这一技术方法，目前国内外尚无文献报道。

发明内容

本发明的主要目的在于利用风干污泥自身理化特性，以达到提高在水分胁迫条件下草坪植物抗旱性的目的。为此，本发明公开了一种采用风干污泥提高草坪植物抗旱性的方法，其特征在于按如下的步骤进行：

（1）选取挑选籽粒饱满、均匀一致的高羊茅种子为试验材料；采集土壤放置于塑料布，摊平碾碎，过2 mm筛，放置于通风口处2～3天，自然条件下风干，土壤有机质含量4.68%，全氮量0.21%，有效磷22.03 mg/kg，全钾量324.3 mg/kg，pH 7.44，饱和含水率0.58 ml/g；供试污泥采自天津纪庄子污水处理厂，采集后的污泥碾碎过2mm筛，平铺于塑料布放置于通风口处2～3天，自然条件下风干，污泥有机质含量18.21%，全氮量1.41%，有效磷含量187 mg/kg，全钾量652.9 mg/kg，含水量为2.13%；

（2）选取直径9.5cm，高1.5cm的培养皿为草坪植物培植容器，装入污泥与土壤混合基质总重80g，风干污泥与土壤按比例1:7（w/w）混合，基质最大持水量为47.5%。，正常水分是基质的含水率保持在70%-80%，干旱胁迫采用称重水分，使基质含水量保持在35%~50%；

（3）每皿播种量按照10 g/m²，播种前将种子浸泡于水中24 h，使种子充分吸水膨胀后再进行播种。草坪生长初期，充分水分以保证植物的生长需求，培植3星期后按照胁迫程度进行定量给水，给水采用称重法，即80g基质含水量为13.3 g~19 g，加上培养皿的重量约40 g左右，总重应保持在140 g，到达胁迫程度后，每一至两天称重水分，以保证基质含水量维持在胁迫范围内，干旱胁迫持续一周后，对各处理进行取样，各生理指标测定，干旱胁迫一周后进行复水，至对照水平，复水后第5天对照组和复水组进行取样测定；

   （4）植物培养期间环境条件：温度为18℃，最高温度为20.7℃，最低温度为15.3℃。平均相对湿度为37.1%，最大湿度为39.7%，最小湿度34.5%，光照强度400μmol·m^-2·s^-1；

（5）高羊茅培植3-4周，进行第一次株高测定，然后进行干旱胁迫，分别在胁迫第4天和最后一天进行株高的测定，胁迫一周后将草坪植物齐根刈割，地上部分和地下部分分别用蒸馏水冲洗干净，吸水纸吸干表面水分，放入烘箱中，在105℃下杀青1 h，80℃烘干至恒重进行测定。

   本发明所述的干旱胁迫指的是给水采用称重法，即80g基质含水量为13.3 g~19 g，到达胁迫程度后，每一至两天称重水分，以保证基质含水量维持在胁迫范围内。

本发明进一步公开了采用风干污泥提高草坪植物抗旱性的方法在制备干旱胁迫下缓解逆境对植物带来损伤方面的应用。其中缓解逆境对植物带来损伤指的是高羊茅地上生物量积累，叶绿素含量，SOD、POD活性。

本发明更加详细的制备方法及测定情况如下：

1 研制材料与方法

1.1 材料

 选取挑选籽粒饱满、均匀一致的高羊茅 ( Festuca arundinacea L .) 种子为试验材料。供试土壤为天津师范大学校内园土，采集土壤放置于塑料布，摊平碾碎，过2 mm筛，放置于通风口处2～3天，自然条件下风干。土壤有机质含量4.68%，全氮量0.21%，有效磷22.03 mg/kg，全钾量324.3 mg/kg，pH 7.44，饱和含水率0.58 ml/g。供试污泥采自天津纪庄子污水处理厂，采集后的污泥碾碎过2mm筛，平铺于塑料布放置于通风口处2～3天，自然条件下风干。污泥有机质含量18.21%，全氮量1.41%，有效磷含量187 mg/kg，全钾量652.9 mg/kg，含水量为2.13%。

1.2 试验设计

 实验采取室内盆栽的方法，选取直径9.5cm，高1.5cm的培养皿为草坪植物培植容器。装入污泥与土壤混合基质总重80g，风干污泥与土壤按比例1:7（w/w）混合，基质最大持水量为47.5%。试验设置4组处理，分别是土壤基质正常水分处理(TW)，混合基质正常水分处理(SW)，土壤干旱胁迫处理(TD)，混合基质干旱胁迫处理(SD)，每组处理3次重复。正常水分是基质的含水率保持在70%-80%。干旱胁迫采用称重水分，使基质含水量保持在35%~50%；每皿播种量按照10 g/m²，播种前将种子浸泡于水中24 h，使种子充分吸水膨胀后再进行播种。草坪生长初期，充分水分以保证植物的生长需求，培植3星期后按照胁迫程度进行定量给水。给水采用称重法，即80g基质含水量为13.3 g~19 g，加上培养皿的重量约40 g左右，总重应保持在140 g左右。到达胁迫程度后，每一至两天称重水分，以保证基质含水量维持在胁迫范围内，干旱胁迫持续一周后，对各处理进行取样，各生理指标测定，干旱胁迫一周后进行复水，至对照水平，复水后第5天对照组和复水组进行取样测定。

1.3 环境条件控制

   植物培养期间环境条件：温度为18℃，最高温度为20.7℃，最低温度为15.3℃。平均相对湿度为37.1%，最大湿度为39.7%，最小湿度34.5%。光照强度400μmol·m-2·s-1

1.4 指标测定

1.4.1 干旱胁迫条件下高羊茅动态株高变化

高羊茅培植3-4周，进行第一次株高测定，然后进行干旱胁迫，分别在胁迫第4天和最后一天进行株高的测定。

1.4.2 地上生物量和地下生物量

 胁迫一周后将草坪植物齐根刈割，地上部分和地下部分分别用蒸馏水冲洗干净，吸水纸吸干表面水分，放入烘箱中，在105℃下杀青1 h，80℃烘干至恒重，以其干重视为地上部分和地下部分的生物量。

1.4.3 离体叶片持水力的测定

 将准确称过鲜重的植物叶片，放入25℃~30℃的干燥器中，在黑暗条件下干燥2~6 h，再称量失水后叶片的重量，按下式计算失水率：失水率（%）＝（鲜重－失水后重）/ 鲜重×100%

1.4.4 叶绿素含量的测定

叶绿素含量测定叶绿素含量的测定：取0.1 g叶片，剪成1-2 mm碎片，浸泡于丙酮:乙醇（V:V=1:1）溶液中24小时，浸泡液为待测液。用分光光度计于波长633 nm和645 nm下测量吸光值，并根据公式计算叶绿素含量。

结果计算：

其中，A663、A645—分别为叶绿素提取液在663nm和645nm处的吸光率

      V—叶绿素提取液体积 ml

      W—材料重(g)。

1.4.5 保护酶活性的测定

POD活性测定：采用愈创木酚法，在25℃下直接测定波长470 nm处由于愈创木酚氧化而引起吸光值的变化，以每分钟△A470变化0.01为一个酶活单位。

SOD活性测定方法SOD活性测定：采用NBT法。3 ml反应混和液包括：0.05mol pH=7.8磷酸缓冲液，0.1mmol/L EDTA，13mmol/L蛋氨酸，750umol/L NBT，20umol/L 核黄素和0.05mL得酶提取液，不加酶液的为对照。在人工气候箱中照射20min，不加酶液和无光照得作为空白对照。然后迅速在560nm下测定吸光值。以抑制NBT光化还原的50%为一个酶活性单位。

1.4.6 丙二醛含量的测定：

称取0.5 g叶片，用10%TCA提取，定容10 ml,4000 r·min^-1离心10 min，取上层液2 ml再加入2 ml的0.6%TBA，沸水中15min，离心10 min，取上清液于532 nm和450 nm下测吸光值。

1.4.7 脯氨酸含量的测定：

采用茚三酮显色法：准确称取待测植物叶片0.5 g，剪碎置于大试管中，向试管中加入5ml 3%的磺基水杨酸溶液，在沸水于中提取10 min，冷却过滤于干净试管中，即为脯氨酸提取液。吸取2 ml提取液置于干净试管，加入2 ml冰醋酸及2 ml酸性茚三酮，沸水浴加热30 min，溶液呈红色。冷却后加入4 ml甲苯，震荡30 s，静止片刻，取上层液至10 ml离心管中，在3000 r/min下离心5 min。用移液抢吸取上层脯氨酸红色甲苯溶液与比色皿中，以甲苯为空白对照，与520 nm波长处比色，求得吸光值。结果计算：标准曲线查出2 ml测定液中脯氨酸含量(ug/ml)，然后计算样品中脯氨酸含量百分数。公式如下：

1.5 数据分析处理

数据分析采用Microsoft Excel 2003和SPSS12.0进行分析。

2研制结果与分析

2.1 风干污泥对干旱胁迫条件下高羊茅株高的影响

对胁迫前以及胁迫后不同处理的高羊茅株高进行测量。干旱胁迫前，各基质株高已存在明显差异，添加污泥的基质培植的高羊茅株高明显高于土壤基质，SW较TW高出11.65%。土壤污泥组配基质与土壤基质相比，含有较高植物生长所需营养物质，对高羊茅的生长起到了促进作用。胁迫期间，与TD相比，SD高羊茅株高高于TD，胁迫第4天和胁迫第7天分别高出TD 19.96%和22.19%，干旱胁迫下，污泥的施入可改善逆境对高羊茅住高的影响。

表1 风干污泥对干旱胁迫下对高羊茅株高的影响（cm）

注：同列数据不同字母之间表示差异显著，即P<0.05；

TW:土壤基质正常水分；TD:土壤基质干旱胁迫；SW:混合污泥基质正常水分；SD:混合污泥基质干旱胁迫

2.2 风干污泥对干旱胁迫下高羊茅地上生物量、地下生物量的影响

    施入风干污泥能够显著提高地上生物量，正常水分和干旱胁迫条件下，施入污泥的高羊茅地上生物量均高于土壤培植高羊茅的地上生物量，且分别高出了15.12%、46%，污泥土壤混合基质与土壤基质在正常水分和干旱胁迫下，二者高羊茅地上生物量差异显著。与高羊茅地上生物量效果相似，污泥施入促进高羊茅地下生物量的增加，正常水分条件下，添加污泥的处理较土壤地下生物量明显增加且差异显著(P<0.05)，SW较TW地下生物量增加50 %。干旱胁迫条件下，污泥的施用并未引起高羊茅地下生物量的积累，TD与SD地下生物量无显著差异(P>0.05)。污泥的施入促进地上生物量积累的作用效果更为显著。

表2 风干污泥对干旱胁迫下高羊茅地上生物量、地下生物量的影响（克/皿）

2.3 风干污泥对干旱胁迫下高羊茅叶绿素含量的影响

    叶绿素是植物光合作用过程中对光能吸收、传递和转化的主要色素，其含量的高低对植物的光合作用及其强度有着明显的影响。风干污泥对干旱胁迫下高羊茅叶绿素含量的影响见表3。在干旱胁迫下，SD与TD相比，高羊茅叶绿素a含量较高，叶绿素b含量SD与TD间无显著差异，叶绿素总含量亦无显著性差异。正常水分条件下，施用污泥的SW处理的叶绿素a、叶绿素b以及总叶绿素含量均显著高于土壤TW处理，且分别高出7.94%、21.74%和12.33%，且均呈现显著性差异。风干污泥的施入，有效增加了高羊茅叶绿素含量，干旱胁迫条件下，添加有风干污泥的混合基质高羊茅叶绿素含量高于土壤基质，同时较正常水分条件下土壤基质培植高羊茅的总叶绿素含量高出4.11%。

表3 干旱胁迫下风干污泥对高羊茅叶绿素含量的影响（mg·g-1 FW）

2.4 风干污泥对干旱胁迫下高羊茅SOD、POD活性的影响

    风干污泥对干旱胁迫下高羊茅SOD、POD活性的影响见表4。风干污泥增强了高羊茅SOD、POD保护酶活性。干旱胁迫条件下，SD较TD的SOD、POD分别高出29.86%和11.60%，二者差异显著。正常水分条件下，污泥的施入显著提高了POD酶活性，SOD活性有所提高，SW与TW相比，SOD、POD活性分别提高了25.72%、92.72%。SOD、POD保护酶活性的提高有助于增强高羊茅对外界不良条件的抵抗力。

表4 干旱胁迫条件下风干污泥对高羊茅SOD、POD活性的影响

2.5 风干污泥对干旱胁迫下高羊茅MDA和脯氨酸含量的影响

正常水分条件下，SW处理的高羊茅丙二醛含量与TW间无显著性差异（表5）。然而在干旱胁迫条件下，SD丙二醛含量较TD明显下降，与SD相比，丙二醛含量下降了23.52%。当植物处于逆境中，常会发生膜脂过氧化作用，丙二醛是该过程中的产物之一，产将其作为膜脂过氧化指示物，来表示膜脂过氧化程度及对逆境反应的强弱。干旱胁迫下，TD处理高羊茅丙二醛含量为最高，说明，干旱胁迫对TD下高羊茅细胞膜的损伤最为严重。污泥的施入降低了高羊茅丙二醛含量，从而减轻了干旱胁迫对高羊茅所带来的损伤。

干旱胁迫条件下，TD、SD脯氨酸含量明显上升，与TW、SW均呈现显著性差异，且TD比SD脯氨酸含量高出17.20%，可见，在干旱胁迫条件下，TD处理的高羊茅积累了更多的脯氨酸。正常水分条件下，污泥的施入促进了脯氨酸的积累，SW与TW相比，脯氨酸含量上升了45.59%，脯氨酸是植物受到胁迫后的渗透调节物质，脯氨酸积累越多，表示其调节能力越强，同时也表示受到的胁迫程度越严重。由此可见，干旱胁迫条件下，污泥的施入有助于缓解逆境对高羊茅带来的损伤，同时，在正常水分条件下，污泥的施入有助于提高高羊茅对逆境的抵抗力。

失水率高，说明叶片干燥后失水较多，即叶片含水量高，则离体叶片持水力高。干旱胁迫与正常水分条件下，施入污泥处理的高羊茅离体叶片持水力均高于土壤，正常水分条件下，SW较TW高出5.4%，但二者间无显著性差异。在干旱胁迫条件下，SD离体叶片的持水力高出TD 9.4%，且SD与TD差异显著。污泥的施入提高了高羊茅离体叶片的持水力，干旱胁迫条件下，作用效果更为明显。

表5 干旱胁迫下风干污泥对高羊茅丙二醛、脯氨酸含量、离体叶片持水率的影响

3 研制结论

 风干污泥施入园林土壤有效改善土壤的理化性质，增加土壤养分，促进植物生长，同时污泥的园林土地利用是污泥资源化利用的有效途径。本实验中，添加风干污泥有效促进高羊茅地上生物量的积累，叶绿素含量的上升，同时SOD、POD活性增强，这与实验三中的研究结果相一致。干旱胁迫下添加风干污泥的土壤基质与正常水分纯土壤相比，高羊茅叶绿素含量无明显变化，SOD、POD活性明显上升，丙二醛含量无显著性变化，渗透调节物质脯氨酸含量积累，离体叶片持水力较高，综合各个测定指标，认为干旱胁迫下施加风干污泥可有效缓解逆境对植物带来的损伤。

具体实施方式：

下面结合具体实施例对本发明做进一步说明，下述各实施例仅用于说明本发明而并非对本发明的限制。

实施例1

（1）选取挑选籽粒饱满、均匀一致的高羊茅种子为试验材料；采集土壤放置于塑料布，摊平碾碎，过2 mm筛，放置于通风口处2天，自然条件下风干，土壤有机质含量4.68%，全氮量0.21%，有效磷22.03 mg/kg，全钾量324.3 mg/kg，pH 7.44，饱和含水率0.58 ml/g；供试污泥采自天津纪庄子污水处理厂，采集后的污泥碾碎过2mm筛，平铺于塑料布放置于通风口处2天，自然条件下风干，污泥有机质含量18.21%，全氮量1.41%，有效磷含量187 mg/kg，全钾量652.9 mg/kg，含水量为2.13%；

（2）选取直径9.5cm，高1.5cm的培养皿为草坪植物培植容器，装入污泥与土壤混合基质总重80g，风干污泥与土壤按比例1:7（w/w）混合，基质最大持水量为47.5%。，正常水分是基质的含水率保持在70%，干旱胁迫采用称重水分，使基质含水量保持在40%；

（3）每皿播种量按照10 g/m²，播种前将种子浸泡于水中24 h，使种子充分吸水膨胀后再进行播种。草坪生长初期，充分水分以保证植物的生长需求，培植3星期后按照胁迫程度进行定量给水，给水采用称重法，即80g基质含水量为13.3 g，加上培养皿的重量约40 g左右，总重应保持在140 g，到达胁迫程度后，每一至两天称重水分，以保证基质含水量维持在胁迫范围内，干旱胁迫持续一周后，对各处理进行取样，各生理指标测定，干旱胁迫一周后进行复水，至对照水平，复水后第5天对照组和复水组进行取样测定；

   （4）植物培养期间环境条件：温度为18℃，最高温度为20.7℃，最低温度为15.3℃。平均相对湿度为37.1%，最大湿度为39.7%，最小湿度34.5%，光照强度400μmol·m^-2·s^-1；

（5）高羊茅培植4周，进行第一次株高测定，然后进行干旱胁迫，分别在胁迫第4天和最后一天进行株高的测定，胁迫一周后将草坪植物齐根刈割，地上部分和地下部分分别用蒸馏水冲洗干净，吸水纸吸干表面水分，放入烘箱中，在105℃下杀青1 h，80℃烘干至恒重进行测定。

实施例2

（1）选取挑选籽粒饱满、均匀一致的高羊茅种子为试验材料；采集土壤放置于塑料布，摊平碾碎，过2mm筛，放置于通风口处3天，自然条件下风干，土壤有机质含量4.68%，全氮量0.21%，有效磷22.03 mg/kg，全钾量324.3 mg/kg，pH 7.44，饱和含水率0.58 ml/g；供试污泥采自天津纪庄子污水处理厂，采集后的污泥碾碎过2mm筛，平铺于塑料布放置于通风口处2天，自然条件下风干，污泥有机质含量18.21%，全氮量1.41%，有效磷含量187mg/kg，全钾量652.9mg/kg，含水量为2.13%；

（2）选取直径9.5cm，高1.5cm的培养皿为草坪植物培植容器，装入污泥与土壤混合基质总重80g，风干污泥与土壤按比例1:7（w/w）混合，基质最大持水量为47.5%，正常水分是基质的含水率保持在70%，干旱胁迫采用称重水分，使基质含水量保持在50%；

（3）每皿播种量按照10 g/m²，播种前将种子浸泡于水中24 h，使种子充分吸水膨胀后再进行播种。草坪生长初期，充分水分以保证植物的生长需求，培植3星期后按照胁迫程度进行定量给水，给水采用称重法，即80g基质含水量为18g，加上培养皿的重量约40g，总重应保持在140g，到达胁迫程度后，每一至两天称重水分，以保证基质含水量维持在胁迫范围内，干旱胁迫持续一周后，对各处理进行取样，各生理指标测定，干旱胁迫一周后进行复水，至对照水平，复水后第5天对照组和复水组进行取样测定；

   （4）植物培养期间环境条件：温度为18℃，最高温度为20.7℃，最低温度为15.3℃。平均相对湿度为37.1%，最大湿度为39.7%，最小湿度34.5%，光照强度400μmol·m^-2·s^-1；

（5）高羊茅培植3周，进行第一次株高测定，然后进行干旱胁迫，分别在胁迫第4天和最后一天进行株高的测定，胁迫一周后将草坪植物齐根刈割，地上部分和地下部分分别用蒸馏水冲洗干净，吸水纸吸干表面水分，放入烘箱中，在105℃下杀青1 h，80℃烘干至恒重进行测定。

Claims (1)

1.一种采用风干污泥提高草坪植物抗旱性的方法，其特征在于按如下的步骤进行：

（1）选取挑选籽粒饱满、均匀一致的高羊茅种子为试验材料；采集土壤放置于塑料布，摊平碾碎，过2mm筛，放置于通风口处2～3天，自然条件下风干，土壤有机质含量4.68%，全氮量0.21%，有效磷22.03 mg/kg，全钾量324.3 mg/kg，pH 7.44，饱和含水率0.58 ml/g；供试污泥采自天津纪庄子污水处理厂，采集后的污泥碾碎过2mm筛，平铺于塑料布放置于通风口处2～3天，自然条件下风干，污泥有机质含量18.21%，全氮量1.41%，有效磷含量187 mg/kg，全钾量652.9 mg/kg，含水量为2.13%；

（2）选取直径9.5cm，高1.5cm的培养皿为草坪植物培植容器，装入污泥与土壤混合基质总重80g，风干污泥与土壤按质量比1:7w/w混合，基质最大持水量为47.5%；正常水分是基质的含水率保持在70%-80%，干旱胁迫采用称重水分，使基质含水量保持在35%~50%；

（3）每皿播种量按照10 g/m²，播种前将种子浸泡于水中24 h，使种子充分吸水膨胀后再进行播种，草坪生长初期，充分水分以保证植物的生长需求，培植3星期后按照胁迫程度进行定量给水，给水采用称重法，到达胁迫程度后，每一至两天称重水分，以保证基质含水量维持在胁迫范围内，干旱胁迫持续一周后，对各处理进行取样，各生理指标测定，干旱胁迫一周后进行复水，至对照水平，复水后第5天对照组和复水组进行取样测定；

（4）植物培养期间环境条件：温度为18℃，最高温度为20.7℃，最低温度为15.3℃；平均相对湿度为37.1%，最大湿度为39.7%，最小湿度34.5%，光照强度400μmol·m^-2·s^-1；

（5）高羊茅培植3-4周，进行第一次株高测定，然后进行干旱胁迫，分别在胁迫第4天和最后一天进行株高的测定，胁迫一周后将草坪植物齐根刈割，地上部分和地下部分分别用蒸馏水冲洗干净，吸水纸吸干表面水分，放入烘箱中，在105℃下杀青1 h，80℃烘干至恒重进行测定。