CN103207280B - 大熊猫预产期的预测方法 - Google Patents
大熊猫预产期的预测方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103207280B CN103207280B CN201310092803.XA CN201310092803A CN103207280B CN 103207280 B CN103207280 B CN 103207280B CN 201310092803 A CN201310092803 A CN 201310092803A CN 103207280 B CN103207280 B CN 103207280B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- giant panda
- value
- concentration
- progesterone
- time
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
本发明公开了一种大熊猫预产期的预测方法,通过对繁育期间雌性大熊猫尿样的长时间检测,得到雌二醇浓度值的真实峰值时刻和孕酮浓度值第一次上升期的截止日,然后计算出雌二醇浓度值的真实峰值时刻和孕酮浓度值第一次上升期的截止日的间隔天数X,根据间隔天数X和回归方程y=0.921X+51.26,计算出怀孕雌性大熊猫理论产仔时间y,理论产仔时间y与产仔时间的波动范围4.38天相加减得到大熊猫预产期Y=y±4.38天,其结果与实际大熊猫妊娠期非常接近,为大熊猫种群的保护工作提供了非常宝贵的时间支持。
Description
技术领域
本发明涉及一种用于圈养动物人工繁育的方法,特别是涉及一种大熊猫预产期的预测方法。
背景技术
在圈养条件下,我们观察到的大熊猫的妊娠期为85-185天。在过去几十年的研究中,中外科学家围绕大熊猫独特的妊娠现象进行了多方面的研究。怀孕大熊猫表现出的行为学和生理学现象包括食欲减退、做窝、外阴肿胀和颜色变化、乳腺增大和嗜睡等。但大熊猫还可能出现假孕的现象。假孕大熊猫也表现出的和真孕大熊猫类似的行为学和生理学现象。喻述蓉等(畜牧兽医学报-2003.34(5).-452-456)认为真孕大熊猫和假孕大熊猫尿中孕酮所维持的时间和含量,发现两者没有差异。Nancy等等(Proceedings of aninternational conference San Diego,Califonrnia,USA,October15-18,2000,195-204)通过比较4只真孕大熊猫和4只假孕大熊猫的孕激素水平和变化趋式后认为在妊娠的后期孕激素水平是有差异的。
李学兵等(酶联法测定尿中孕酮和进行妊娠诊断.97成都二十一世纪环境保护与城市发展国际学术研讨会论文集.1997)认为未产仔大熊猫孕激素在上升后维持时间较短,且激素水平波动较大,波谷可接近基础水平,而波峰则可能超过正常怀孕大熊猫。现在可以通过超声影像来确认大熊猫是否怀孕,但必须要等到大熊猫妊娠的晚期才能看到胎儿。因此,到现在为此还没有一种在早期可以有效的区分大熊猫是真孕还是假孕的方法。然而,大熊猫的内分泌和行为变化在大致估计分娩时间还是有用的。大熊猫可能出现延迟着床现象。一旦孕激素的第二次上升启动就认为胚泡在子宫壁上开始着床,胎儿的不断发育刺激了孕激素的不断产生。彭世媛等(动物学杂志-1993.28(2).-25-28)研究认为在妊娠早期与晚期孕酮升高,到了晚期最高,妊振中期停滞在低水平上波动,分娩前孕酮浓度值迅速下降。曾国庆等(动物学报.1992年04期)通过研究在妊振期和非妊振期尿中孕酮和CG样物质含量的变化后发现在大熊猫胚胎着床前,孕酮和CG样物质含量较低;胚胎着床后,二种激素的含量显着上升并达到高峰,同时也为大熊猫的妊振诊断和预测分挽提供一些参考数据。何廷美等(雌性大熊猫配种后尿液孕酮含量的变动.四川农业大学学报.第20卷.第2期.2002年6月)的研究发现大熊猫妊娠后期1~2个月对其尿液孕酮含量进行检测,可能有助于判断该大熊猫是否产仔。
过去的研究多受限于所参与的大熊猫数量,还没有对一个群体进行多年、大量地跟踪研究。尽管超声波检查可以作为大熊猫是否怀孕的一个确诊手段,但只有在大熊猫产前约3周才能检测到胚胎/胎儿,同时还需要提前对大熊猫进行驯化,使得整个研究的难度增大。目前还没有关于大熊猫产仔时间预测的报导。
罗娌等人.西南民族大学学报(自然科学版)》.2011年05期.《产仔大熊猫孕激素变化规律研究》摘要:在过去的30年中,非干扰性的内分泌检测技术逐渐运用到大熊猫的研究中来。已经有许多研究人员报到了大熊猫独特的繁殖特点。但不足的是这些研究都是基于很小数量的大熊猫。本研究追踪了大熊猫30次妊娠的情况。研究发现大熊猫的整个妊娠期可以分为三个部分。第一期为大熊猫雌激素峰值到孕激素第二次上升开始,平均为93.21±22.52天(MAX=125,MIN=50,N=29);第二期为大熊猫孕激素第二次上升开始到孕激素峰值,平均为24.86±9.76天(MAX=53,MIN=8,N=29);第三期为大熊猫孕激素峰值到大熊猫产仔,平均为19.60±5.13天(MAX=29,MIN=8,N=29)。妊娠期的长短与孕激素第一期密切相关,R=0.912。产仔大熊猫与未产仔大熊猫孕激素峰值差异显著,P=0.022。
发明内容
本发明要解决的技术问题是一种如何利用雌性大熊猫雌激素和孕激素的变化规律、科学、合理推定配种后雌性大熊猫妊娠天数的大熊猫预产期的预测方法。
为解决上述技术问题,本发明一种大熊猫预产期的预测方法,包括以下步骤:
(1)春季大熊猫繁殖配种期间,依照专利申请号201210191762.5所述,按时间要求对雌性大熊猫进行尿样收集,在尿样上标记后进行冷冻或冷藏保存,然后对尿样采用酶联免疫吸附试验检测雌二醇浓度值和孕酮浓度值;然后在以大熊猫排尿时间作为横坐标、以雌二醇浓度值和孕酮浓度值作为纵坐标的平面坐标上,分别标出排尿时间及其对应的雌二醇浓度值和孕酮浓度值所确定的两组坐标点,将两组坐标点分别依次连接起来,绘制出雌二醇浓度值变化曲线图和孕酮浓度值变化曲线图,找出雌二醇浓度值的真实峰值及其出现时刻;
(2)配种后,采用酶联免疫吸附试验继续检测配种雌性大熊猫的尿样孕酮浓度值,以雌二醇浓度值的真实峰值的出现时刻为0天,在以上平面坐标上继续绘制出孕酮浓度值的变化曲线图,找出孕酮浓度值的峰值及其出现时刻;所述孕酮浓度值的峰值为所有孕酮浓度值的最大值;
(3)根据雌二醇浓度值的真实峰值时刻与孕酮浓度值的峰值时刻之间的所有检测出的孕酮浓度值,参考孕酮浓度值变化曲线图,找出在两峰值时刻之间的孕酮浓度值第一次上升期的截止日;
(4)计算出孕酮浓度值第一次上升期的截止日与雌二醇浓度值的真实峰值时刻的间隔天数X,根据间隔天数X和回归方程y=0.921X+51.26,计算出怀孕雌性大熊猫理论产仔时间y;
(5)根据理论产仔时间y和大熊猫产仔时间的波动范围4.38天,得到大熊猫预产期Y=y±4.38(天)。
所述的一种大熊猫预产期的预测方法,其孕酮浓度值第一次上升期的截止日也是孕酮浓度值第二次上升期的开始日,它的判断方法如下:
①选取雌性大熊猫雌二醇浓度值的真实峰值时刻与孕酮峰值时刻之间的所有检测出的孕酮值,计算出孕酮值的平均值A1和标准差B1,得出A1+2B1=C1;
②剔除所有高于C1的数据,在剩余孕酮值中,计算出孕酮值的平均值A2和标准差B2,得出A2+2B2=C2;
③剔除所有高于C2的数据,然后按以上方法再进行计算,直到剩下的数据中没有高于Cn时为止,Cn=An+2Bn,其中n代表自然数;
④最接近Cn的孕酮值的出现时刻为孕酮值第一次上升期截止日。
所述的一种大熊猫预产期的预测方法,其按时间要求对雌性大熊猫进行尿样收集的过程如下:
(1)观察雌性大熊猫外阴部,若外阴部出现红肿后,则每天收集1份雌性大熊猫晨尿;
(2)从雌二醇连续上升后的第4天开始,每天间隔8小时左右收集3份尿样;
(3)雌性大熊猫发情高峰行为前后,每天间隔5小时左右收集5份尿样;
(4)一旦监测到雌二醇浓度值有下降趋势,将尿样收集间隔时间缩短为3小时左右;
(5)大熊猫配种后每周至少收三个尿样,直至产仔。
所述的任何一种大熊猫预产期的预测方法,其每一次大熊猫尿样收集包括以下步骤:
(1)清洁并拖干兽舍地面;
(2)将需收集尿样的大熊猫放入兽舍,工作人员守候,一旦大熊猫排出小便,立即将大熊猫放到其它兽舍;
(3)用清洁注射器采集地面新鲜尿样,装入冷冻管,做好标记,然后立即放入冰箱冷冻或冷藏装置。
成都大熊猫繁育研究基地通过连续5年记录29次大熊猫妊娠产仔记录,结果见表1:
表1.大熊猫妊娠期三个组成时期
通过表1数据得到回归方程y=0.921X+51.26,其中y为理论产仔时间,X为孕酮浓度值第一次上升期的截止日与雌二醇浓度值的真实峰值时刻的间隔天数。通过计算回归方程所得y值与实际大熊猫妊娠期的差异值,并得到该组数据的平均数,即为大熊猫产仔时间的波动范围,其结果见表2:
表2.大熊猫产仔时间的波动范围及其与与实际妊娠期比较
由表2可知,理论产仔时间和实际妊娠期的差异系数低于5%的占84%,差异性检验P=0.916,差异不显著。
本发明通过对繁育期间雌性大熊猫尿样的长时间检测,得到雌二醇浓度值的真实峰值时刻和孕酮浓度值第一次上升期的截止日,然后计算出雌二醇浓度值的真实峰值时刻和孕酮浓度值第一次上升期的截止日的间隔天数X,根据间隔天数X和回归方程y=0.921X+51.26,计算出怀孕雌性大熊猫理论产仔时间y,理论产仔时间y与产仔时间的波动范围4.38天相加减得到大熊猫预产期Y=y±4.38(天),其结果与实际大熊猫妊娠期非常接近,为大熊猫种群的保护工作提供了非常宝贵的时间支持。
附图说明
下面结合附图和具体实施方式对本发明作进一步详细的说明。
图1为本发明雌性大熊猫孕酮浓度值第一次上升期维持天数与妊娠期天数的强正关系图;
图2为本发明成年雌雄大熊猫娇子2010年繁育期间的雌二醇浓度值和孕酮浓度值的变化曲线图。
图中标识:1-雌性大熊猫雌二醇浓度值的变化曲线,2-雌性大熊猫孕酮浓度值的变化曲线,D-雌二醇浓度值的真实峰值的坐标点,E-孕酮浓度值的峰值的坐标点,F-孕酮浓度值第一次上升期截止日的坐标点,Ec ng/mg Cr表示为肌酐校正后的雌二醇浓度值,Pg ng/mg Cr表示为肌酐校正后的孕酮浓度值。
具体实施方式
本发明依照专利申请号201210191762.5所述,在春季繁育期间每日观察雌性大熊猫外阴颜色,大熊猫外阴红肿为大熊猫发情启动的特征表现,一旦发现外阴红肿,即可初步确定大熊猫进入发情期,继续每日观察大熊猫发情行为,若出现频繁标记行为、咩叫行为则可确定大熊猫已经发情。
大熊猫发情启动后,开始对雌性大熊猫尿样进行收集,在尿样上记录熊猫呼名、排尿时间、是否出现典型发情高峰行为等标记,并及时地对收集的大熊猫尿样进行化验分析,采用酶联免疫吸附试验检测出与大熊猫呼名及排尿时间对应的雌二醇浓度值和孕酮浓度值;起初每天收集1份晨尿;雌二醇浓度值连续上升后第4天开始,每天收集3份尿样,间隔8小时左右,时间分别为7:00,15:00,23:00左右;发情高峰前后,每天尿样增加到5个左右,间隔5小时左右,收集时间分别为:6:00,11:00,16:00,21:00,1:00左右;一旦监测到雌二醇浓度值有下降趋势,将尿样收集间隔时间缩短为3小时左右;在大熊猫配种后每周至少收三个尿样,直至产仔。
每一次大熊猫尿样收集都是从清洁后的硬化地面收集,先清洁并晾干兽舍地面后,将需收集尿样的大熊猫放入兽舍;然后工作人员守候,一旦大熊猫排出小便,立即将大熊猫放到其它兽舍,用清洁注射器采集地面新鲜尿样,装入冷冻管,做好标记,立即放入冰箱冷冻室冷冻保存或冷藏室冷藏保存。
然后对尿样采用酶联免疫吸附试验检测雌二醇浓度值和孕酮浓度值,如图2所示,在以大熊猫排尿时间作为横坐标、以雌二醇浓度值和孕酮浓度值作为纵坐标的平面坐标上,分别标出排尿时间及其对应的雌二醇浓度值和孕酮浓度值所确定的两组坐标点,将两组坐标点分别依次连接起来,绘制出雌二醇浓度值变化曲线图和孕酮浓度值变化曲线图,得到雌二醇浓度值的真实峰值及其出现时刻,即坐标点D,然后将坐标点D的时刻作为时间起点0小时,继续检测孕酮浓度值;在配种后,每周至少收三个尿样、直至产仔,采用酶联免疫吸附试验继续检测配种雌性大熊猫的尿样孕酮浓度值,在图2上绘制出孕酮浓度值变化曲线图,找出孕酮浓度值的峰值及其出现时刻,即坐标点E,所述孕酮浓度值的峰值为所有孕酮浓度值的最大值。
再后,根据坐标点D与坐标点E之间的所有检测出的孕酮浓度值,参考孕酮浓度值变化曲线图,找出两坐标点间的孕酮浓度值第一次上升期的截止日,即坐标点F;所述坐标点F也是孕酮浓度值第二次上升期的开始日,它的判断方法如下:
①选取坐标点D与坐标点E之间的所有检测出的孕酮值,计算出孕酮值的平均值A1和标准差B1,得出A1+2B1=C1;
②剔除所有高于C1的数据,在剩余孕酮值中,计算出孕酮值的平均值A2和标准差B2,得出A2+2B2=C2;
③剔除所有高于C2的数据,然后按以上方法再进行计算,直到剩下的数据中没有高于Cn时为止,Cn=An+2Bn,其中n代表自然数;
④最接近Cn的孕酮值的出现时刻为孕酮值第一次上升期截止日,即坐标点F。
从图1上可以看出,雌性大熊猫孕酮浓度值第一次上升期维持天数与妊娠期天数呈强正关系。
最后,计算出坐标点D与坐标点F的间隔天数X,根据间隔天数X和回归方程y=0.921X+51.26,计算出怀孕雌性大熊猫理论产仔时间y;根据理论产仔时间y和大熊猫产仔时间的波动范围4.38天,得到大熊猫预产期Y=y±4.38。
如图2所示,雌雄大熊猫娇子的坐标点D与坐标点F的间隔天数为80天,由回归方程计算出娇子的理论产仔时间y为125天,娇子的预产期Y为125±4.38天,其实际实际妊娠期为124天,与理论产仔时间y或预产期Y相差非常接近。
Claims (3)
1.一种大熊猫预产期的预测方法,包括以下步骤:
(1)春季大熊猫繁殖配种期间,按时间要求对雌性大熊猫进行尿样收集,在尿样上标记后进行冷冻或冷藏保存,然后对尿样采用酶联免疫吸附试验检测雌二醇浓度值和孕酮浓度值;然后在以大熊猫排尿时间作为横坐标、以雌二醇浓度值和孕酮浓度值作为纵坐标的平面坐标上,分别标出排尿时间及其对应的雌二醇浓度值和孕酮浓度值所确定的两组坐标点,将两组坐标点分别依次连接起来,绘制出雌二醇浓度值变化曲线图和孕酮浓度值变化曲线图,找出雌二醇浓度值的真实峰值及其出现时刻;
(2)配种后,采用酶联免疫吸附试验继续检测配种雌性大熊猫的尿样孕酮浓度值,在以上平面坐标上继续绘制出孕酮浓度值变化曲线图,找出孕酮浓度值的峰值及其出现时刻;
(3)根据雌二醇浓度值的真实峰值时刻与孕酮浓度值的峰值时刻之间的所有检测出的孕酮浓度值,找出在两峰值时刻之间的孕酮浓度值第一次上升期的截止日;
(4)计算出孕酮浓度值第一次上升期的截止日与雌二醇浓度值的真实峰值时刻的间隔天数X,根据间隔天数X和回归方程y=0.921X+51.26,计算出怀孕雌性大熊猫理论产仔时间y;
(5)根据理论产仔时间y和大熊猫产仔时间的波动范围4.38天,得到大熊猫预产期Y=y±4.38。
2.根据权利要求1所述的一种大熊猫预产期的预测方法,其按时间要求对雌性大熊猫进行尿样收集的过程如下:
(1)观察雌性大熊猫外阴部,若外阴部出现红肿后,则每天收集1份雌性大熊猫晨尿;
(2)从雌二醇连续上升后的第4天开始,每天间隔8小时左右收集3份尿样;
(3)雌性大熊猫发情高峰行为前后,每天间隔5小时左右收集5份尿样;
(4)一旦监测到雌二醇浓度值有下降趋势,将尿样收集间隔时间缩短为3小时左右;
(5)大熊猫配种后每周至少收三个尿样,直至产仔。
3.根据权利要求1或2所述的任何一种大熊猫预产期的预测方法,其每一次大熊猫尿样收集包括以下步骤:
(1)清洁并拖干兽舍地面;
(2)将需收集尿样的大熊猫放入兽舍,工作人员守候,一旦大熊猫排出小便,立即将大熊猫放到其它兽舍;
(3)用清洁注射器采集地面新鲜尿样,装入冷冻管,做好标记,然后立即放入冰箱冷冻或冷藏装置。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310092803.XA CN103207280B (zh) | 2013-03-21 | 2013-03-21 | 大熊猫预产期的预测方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310092803.XA CN103207280B (zh) | 2013-03-21 | 2013-03-21 | 大熊猫预产期的预测方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103207280A CN103207280A (zh) | 2013-07-17 |
CN103207280B true CN103207280B (zh) | 2014-01-01 |
Family
ID=48754565
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310092803.XA Expired - Fee Related CN103207280B (zh) | 2013-03-21 | 2013-03-21 | 大熊猫预产期的预测方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103207280B (zh) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110309547B (zh) * | 2019-06-04 | 2022-09-23 | 西南交通大学 | 一种基于多环境膜系统的大熊猫种群预测方法 |
CN110514849A (zh) * | 2019-08-24 | 2019-11-29 | 牡丹江师范学院 | 一种雌性东北虎超早孕检测方法 |
CN111781096A (zh) * | 2020-07-10 | 2020-10-16 | 成都大熊猫繁育研究基地 | 一种大熊猫尿液激素的校正方法 |
CN112765393B (zh) * | 2020-12-31 | 2022-05-24 | 中国大熊猫保护研究中心 | 大熊猫发情数据管理方法、装置和计算机设备 |
CN115561444B (zh) * | 2022-11-30 | 2023-03-14 | 成都大熊猫繁育研究基地 | 一种早期预测大熊猫雌酮峰值出现时间的方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102735852A (zh) * | 2012-06-12 | 2012-10-17 | 成都大熊猫繁育研究基地 | 大熊猫雌二醇真实峰值的判断方法 |
CN102743239A (zh) * | 2012-07-02 | 2012-10-24 | 成都大熊猫繁育研究基地 | 大熊猫适时人工授精方法 |
-
2013
- 2013-03-21 CN CN201310092803.XA patent/CN103207280B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102735852A (zh) * | 2012-06-12 | 2012-10-17 | 成都大熊猫繁育研究基地 | 大熊猫雌二醇真实峰值的判断方法 |
CN102743239A (zh) * | 2012-07-02 | 2012-10-24 | 成都大熊猫繁育研究基地 | 大熊猫适时人工授精方法 |
Non-Patent Citations (14)
Title |
---|
2只繁育期雌性大熊猫尿中雌二醇、孕酮含量的变化;赵鹏鹏等;《动物医学进展》;20111231(第07期);全文 * |
产仔大熊猫孕激素变化规律研究;罗娌等;《西南民族大学学报(自然科学版)》;20110930(第05期);全文 * |
何廷美等.雌性大熊猫配种后尿液孕酮含量的变动.《四川农业大学学报》.2002,(第02期), |
大熊猫生殖生物学研究:Ⅰ.大熊猫发情期血清和尿液中促黄体素、孕酮和17β-雌二醇含量的变化;曾国庆等;《动物学报》;19900320(第01期);全文 * |
大熊猫生殖生物学研究:Ⅱ.大熊猫妊娠期尿中孕酮和绒毛膜促性腺激素样物质含量的变化;曾国庆等;《动物学报》;19921220(第04期);全文 * |
彭世媛等.雌性大熊猫发情期与妊娠期尿液性激素的变化.《动物学杂志》.1993,(第02期), |
曾国庆等.大熊猫生殖生物学研究:Ⅰ.大熊猫发情期血清和尿液中促黄体素、孕酮和17β-雌二醇含量的变化.《动物学报》.1990,(第01期), |
曾国庆等.大熊猫生殖生物学研究:Ⅱ.大熊猫妊娠期尿中孕酮和绒毛膜促性腺激素样物质含量的变化.《动物学报》.1992,(第04期), |
李复东等.雌性大熊猫发情期尿中17β―雌二醇与孕酮水平的变化及其与配种的关系.《兽类学报》.1993,(第03期), |
罗娌等.产仔大熊猫孕激素变化规律研究.《西南民族大学学报(自然科学版)》.2011,(第05期), |
赵鹏鹏等.2只繁育期雌性大熊猫尿中雌二醇、孕酮含量的变化.《动物医学进展》.2011,(第07期), |
雌性大熊猫发情期与妊娠期尿液性激素的变化;彭世媛等;《动物学杂志》;19931231(第02期);全文 * |
雌性大熊猫发情期尿中17β―雌二醇与孕酮水平的变化及其与配种的关系;李复东等;《兽类学报》;19930813(第03期);全文 * |
雌性大熊猫配种后尿液孕酮含量的变动;何廷美等;《四川农业大学学报》;20020630(第02期);全文 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN103207280A (zh) | 2013-07-17 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Crowe et al. | Reproductive management in dairy cows-the future | |
CN103207280B (zh) | 大熊猫预产期的预测方法 | |
González et al. | A comparison of diagnosis of pregnancy in the goat via transrectal ultrasound scanning, progesterone, and pregnancy-associated glycoprotein assays | |
HUNTER et al. | SPAWNING INCIDENCE AND BATCH FECUNDITY IN NORTHERN ANCHOVY, ENGRAULIS MORDAX¹ | |
BROWN et al. | Assessing reproductive status in wild felids by noninvasive faecal steroid monitoring | |
Witthames et al. | The fate of vitellogenic follicles in experimentally monitored Atlantic cod Gadus morhua (L.): application to stock assessment | |
Cotton et al. | Reproduction and embryonic development in two species of squaliform sharks, Centrophorus granulosus and Etmopterus princeps: evidence of matrotrophy? | |
Smuts | Reproduction and population characteristics of elephants in the Kruger National Park | |
Alhamada et al. | Automatic oestrus detection system enables monitoring of sexual behaviour in sheep | |
Uglem et al. | Male dimorphism, sperm traits and immunology in the corkwing wrasse (Symphodus melops L.) | |
Smuts | Reproduction in the zebra mare Equus burchelli antiquorum from the Kruger National Park | |
CN102735852B (zh) | 大熊猫雌二醇真实峰值的判断方法 | |
Bardon-Albaret et al. | Egg quality traits and predictors of embryo and fry viability in red snapper Lutjanus campechanus | |
Millar | Success of reproduction in pikas, Ochotona princeps (Richardson) | |
Walker | Chapter 10 Reproduction of Chondrichthyans | |
CN102743239B (zh) | 大熊猫适时人工授精时机的判断方法 | |
Bateman et al. | Characterization of basal seminal traits and reproductive endocrine profiles in North American river otters and Asian small‐clawed otters | |
Freeman et al. | Impacts of environmental pressures on the reproductive physiology of subpopulations of black rhinoceros (Diceros bicornis bicornis) in Addo Elephant National Park, South Africa | |
Morrow et al. | Frozen embryos? Torpor during pregnancy in the Tasmanian short-beaked echidna Tachyglossus aculeatus setosus | |
Alavi et al. | Relationships between reproductive characteristics in male Vimba vimba L. and the effects of osmolality on sperm motility | |
Portelinha et al. | Hormone levels and ultrasound evaluation of Caiman latirostris (Crocodylia, Alligatoridae) ovulation | |
Poole | Breeding in the grey kangaroo, Macropus giganteus, from widespread locations in eastern Australia | |
Pourseif et al. | Photoperiod as a factor for studying fluctuations of seminal traits during breeding and non-breeding seasons | |
Jewgenow et al. | Seasonal profiles of ovarian activity in Iberian lynx (Lynx pardinus) based on urinary hormone metabolite analyses | |
Puerto et al. | Spawning area of the tropical Skipjack Tuna, Katsuwonus pelamis (Scombridae), in the western Mediterranean Sea |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20140101 Termination date: 20200321 |