CH716482A2 - Process for the preparation of an agent for suppressing metastases containing exosomes. - Google Patents
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Abstract
Hierin ist ein Verfahren zur Herstellung eines Exosomen enthaltenden therapeutischen Mittels offenbart, umfassend die folgenden Schritte: Abtrennen von Tumorzellen aus einer Biomaterialprobe eines Subjekts; Behandeln der abgetrennten Tumorzellen in einem Kulturmedium bei 37°C und 5% CO 2 während 24-72 h oder Behandeln der abgetrennten; Abtrennen einer Exosomenzusammensetzung aus dem Kulturmedium; Lösen der abgetrennten Exosomenzusammensetzung in einem Phosphatpuffer, um das Exosomen enthaltende therapeutische Mittel zu erhalten; dadurch gekennzeichnet, dass das Kulturmedium umfasst (i) entweder eine 1:1-Mischung von DMEM/F12 (Dulbecco's Modified Eagle Medium: Nährstoffmischung F-12) und HEPES (4-(2-Hydroxyethyl)-1-piperazin-ethansulfonsäure), 2 mmol/ml oder 3,65 mg/10 ml L-Glutamin, 100 Einheiten/ml Penicillin, 100 ug/ml Streptomycin, 10% fötales Rinderserum; oder (ii) 79 Gew.-% RPMI, 20 Gew.-% fötales Rinderserum und 1 Gew.-% Streptomycin.Disclosed herein is a method of making a therapeutic agent containing exosomes, comprising the steps of: separating tumor cells from a biomaterial sample of a subject; Treating the separated tumor cells in a culture medium at 37 ° C. and 5% CO 2 for 24-72 h or treating the separated; Separating an exosome composition from the culture medium; Dissolving the separated exosome composition in a phosphate buffer to obtain therapeutic agents containing the exosome; characterized in that the culture medium comprises (i) either a 1: 1 mixture of DMEM / F12 (Dulbecco's Modified Eagle Medium: nutrient mixture F-12) and HEPES (4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazine-ethanesulfonic acid), 2 mmol / ml or 3.65 mg / 10 ml L-glutamine, 100 units / ml penicillin, 100 µg / ml streptomycin, 10% fetal bovine serum; or (ii) 79 wt% RPMI, 20 wt% fetal bovine serum, and 1 wt% streptomycin.
Description
Gebiet der OffenbarungArea of revelation
[0001] Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung eines Exosomen enthaltenden therapeutischen Mittels zur Unterdrückung von Metastasen und ein Verfahren zur Behandlung mit einem Exosomen enthaltenden therapeutischen Mittel. The present invention relates to a method for producing an exosome-containing therapeutic agent for suppressing metastases and a method for treatment with an exosome-containing therapeutic agent.
Hintergrund,Stand der TechnikBackground, prior art
[0002] RO 2593003 C2 offenbart ein Verfahren zur Tumorimmuntherapie, das auf der Verabreichung eines Exosomen enthaltenden Medikaments an den Patienten beruht, wobei Krebspatienten mit Exosomen behandelt werden, die aus der Zellkultur K562/i-S9 isoliert wurden, die es nicht erlaubt, spezifische Exosomen zu erhalten, weshalb es nicht möglich ist, eine hohe Effizienz der Immunantwort zu erreichen, im Gegensatz zu den Exosomen, die von patienteneigenen Tumorzellen produziert werden - die spezifische Antigene, ähnlich den Antigenen von Tumorzellen, enthalten, welche es erlauben, eine hocheffektive Immunantwort zu erzielen. Infolgedessen ist das bekannte Verfahren nicht genug wirksam. RO 2593003 C2 discloses a method for tumor immunotherapy based on the administration of an exosome-containing drug to the patient, cancer patients being treated with exosomes isolated from the cell culture K562 / i-S9, which does not allow specific Obtaining exosomes, which is why it is not possible to achieve a high efficiency of the immune response, in contrast to the exosomes, which are produced by the patient's own tumor cells - which contain specific antigens, similar to the antigens of tumor cells, which allow a highly effective immune response to achieve. As a result, the known method is not effective enough.
Kurzdarstellung der OffenbarungSummary of the disclosure
[0003] Es ist bekannt, dass Exosomen an verschiedenen Stadien von Immunantwortreaktionen beteiligt sind. Insbesondere Exosomen, die von B-Zellen sezerniert werden, tragen auf ihrer Oberfläche Rezeptoren für MHC II (den Haupthistokompatibilitätskomplex II), co-stimulierende und anhaftende Moleküle, was ihre Fähigkeit zeigt, CD4-positive T-Zellen direkt zu stimulieren. [B lymphocytes secrete antigen-presenting vesicles. Raposo G, Nijman HW, Stoorvogel W, Liejendekker R., Harding CV, Melief CJ, Geuze HJ, J. Exp. Med., 1. März 1996; 183 (3) :1161-72.] Um diesen Effekt zu verstärken, werden Exosomen beispielsweise durch Magnetkügelchen konzentriert und mit Peptiden beladen. Neben der Fähigkeit zum Aktivieren von CD4-positiven Zellen, sind Exosomen, die aus dendritischen Zellen gewonnen und mit Peptiden von prozessierten Tumorantigenen gepoolt werden, in der Lage, tumorspezifische zytotoxische Lymphozyten zu aktivieren und dadurch das Tumorwachstum zu hemmen. [Eradication of established murine tumors using a novel cell-free vaccine: dendritic cell-derived exosomes. Zitvogel L, Regnault A, Lozier A, Wolfers J, Flament C, Tenza D, Ricciardi-Castagnoli P, Raposo G, Amigorena S, Nat. Med., Mai 1998; 4(5):594-600.] It is known that exosomes are involved in various stages of immune response reactions. In particular, exosomes that are secreted by B cells carry receptors for MHC II (the major histocompatibility complex II), co-stimulatory and adhesive molecules on their surface, which shows their ability to stimulate CD4-positive T cells directly. [B lymphocytes secrete antigen-presenting vesicles. Raposo G, Nijman HW, Stoorvogel W, Liejendekker R., Harding CV, Melief CJ, Geuze HJ, J. Exp. Med., March 1, 1996; 183 (3): 1161-72.] In order to intensify this effect, exosomes are concentrated, for example, by magnetic beads and loaded with peptides. In addition to the ability to activate CD4-positive cells, exosomes that are obtained from dendritic cells and pooled with peptides from processed tumor antigens are able to activate tumor-specific cytotoxic lymphocytes and thereby inhibit tumor growth. [Eradication of established murine tumors using a novel cell-free vaccine: dendritic cell-derived exosomes. Zitvogel L, Regnault A, Lozier A, Wolfers J, Flament C, Tenza D, Ricciardi-Castagnoli P, Raposo G, Amigorena S, Nat. Med., May 1998; 4 (5): 594-600.]
[0004] So wirken von Tumorzellen sezernierte Exosomen auch als Aktivatoren des Immunsystems, aber im Verlauf des Tumorprozesses kommt es zu Transformationen, die es atypischen Zellen erlauben, der Wirkung immunkompetenter Zellen zu entgehen. Eine dieser Transformationen ist die Unfähigkeit von Lymphozyten, Exosomen als Träger von genetischem Material des Tumors zu erkennen. Bei der Anwendung von Exosomen, die aus dem Patienten erhalten wurden, per os besteht ein Kontakt zwischen den Zellen des Immunsystems und den von den Tumorzellen synthetisierten Exosomen, was zur Aktivierung von Antitumorimmunität führen kann. [0004] Exosomes secreted by tumor cells also act as activators of the immune system, but in the course of the tumor process, transformations occur that allow atypical cells to escape the effects of immunocompetent cells. One of these transformations is the inability of lymphocytes to recognize exosomes as carriers of genetic material from the tumor. When exosomes obtained from the patient are used per os, there is contact between the cells of the immune system and the exosomes synthesized by the tumor cells, which can lead to the activation of anti-tumor immunity.
[0005] Es ist eine allgemeine Aufgabe der Erfindung, ein weiterentwickeltes therapeutisches Mittel zur Unterdrückung von Metastasen bereitzustellen. In bevorzugten Ausführungsformen wird ein therapeutisches Mittel mit erhöhter Wirksamkeit bereitgestellt. It is a general object of the invention to provide an advanced therapeutic agent for suppressing metastases. In preferred embodiments, a therapeutic agent having increased effectiveness is provided.
[0006] In einem ersten Aspekt der Erfindung wird die allgemeine Aufgabe gelöst durch ein Verfahren zur Herstellung eines Exosomen enthaltenden therapeutischen Mittels, umfassend die folgenden Schritte: Abtrennen von Tumorzellen aus einer Biomaterialprobe eines Subjekts; Behandeln der abgetrennten Tumorzellen in einem Kulturmedium bei 37°C und 5% CO2während 24-72 h oder Behandeln der abgetrennten; Abtrennen einer Exosomenzusammensetzung aus dem Kulturmedium; Lösen der abgetrennten Exosomenzusammensetzung in einem Phosphatpuffer, um das Exosomen enthaltende therapeutische Mittel zu erhalten;dadurch gekennzeichnet, dass das Kulturmedium umfasst: (i) entweder eine 1:1-Mischung von DMEM/F12 (Dulbecco's Modified Eagle Medium: Nährstoffmischung F-12, gemäß Dulbecco, R. & Freeman, G. (1959) Virology 8, 396, und Smith et al. (1960) Virology 12, 185) und HEPES (4-(2-Hydroxyethyl)-1-piperazinethansulfonsäure), 2 mmol/ml oder 3,65 mg/10 ml L-Glutamin, 100 Einheiten/ml Penicillin, 100 ug/ml Streptomycin, 10% fötales Rinderserum; oder (ii) 79 Gew.-% RPMI, 20 Gew.-% fötales Rinderserum und 1 Gew.-% Streptomycin.In a first aspect of the invention, the general object is achieved by a method for producing a therapeutic agent containing exosomes, comprising the following steps: Separating tumor cells from a biomaterial sample of a subject; Treating the separated tumor cells in a culture medium at 37 ° C and 5% CO2 for 24-72 hours or treating the separated; Separating an exosome composition from the culture medium; Dissolving the separated exosome composition in a phosphate buffer to obtain the exosome-containing therapeutic agent; characterized in that the culture medium comprises: (i) either a 1: 1 mixture of DMEM / F12 (Dulbecco's Modified Eagle Medium: Nutrient Mixture F-12, according to Dulbecco, R. & Freeman, G. (1959) Virology 8, 396, and Smith et al. (1960) Virology 12, 185) and HEPES (4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazine ethanesulfonic acid), 2 mmol / ml or 3.65 mg / 10 ml L-glutamine, 100 units / ml penicillin, 100 µg / ml streptomycin, 10% fetal bovine serum; or (ii) 79 wt% RPMI, 20 wt% fetal bovine serum, and 1 wt% streptomycin.
[0007] Wie der Fachmann versteht, ist RPMI, auch bekannt als RIMO 1640, ein in der Zellkultur verwendetes Wachstumsmedium (Atlas RM, Snyder JW (2006). Handbook of Media for Clinical Microbiology (2. Aufl.). Boca Raton, Florida: CRC Press. S. 427). As those skilled in the art will understand, RPMI, also known as RIMO 1640, is a growth medium used in cell culture (Atlas RM, Snyder JW (2006). Handbook of Media for Clinical Microbiology (2nd ed.). Boca Raton, Florida : CRC Press, p. 427).
[0008] Es versteht sich, dass das Verfahren zur Herstellung eines Exosomen enthaltenden therapeutischen Mittels und insbesondere der Schritt der Abtrennung von Tumorzellen in vitro durchgeführt wird. It will be understood that the method for producing a therapeutic agent containing exosomes, and in particular the step of separating tumor cells, is carried out in vitro.
[0009] Typischerweise wird das Abtrennen von Tumorzellen aus einer Biomaterialprobe eines Subjekts mittels Zentrifugation erreicht. Typically, the separation of tumor cells from a biomaterial sample of a subject is accomplished by centrifugation.
[0010] In einigen Ausführungsformen wird das Lösen der abgetrennten Exosomenzusammensetzung in einem Phosphatpuffer so durchgeführt, dass ein Verhältnis von 1:5 bis 1:20 von abgetrennter Exosomenzusammensetzung zu Phosphatpuffer erhalten wird. In some embodiments, the dissolving of the separated exosome composition in a phosphate buffer is carried out such that a ratio of 1: 5 to 1:20 of separated exosome composition to phosphate buffer is obtained.
[0011] In weiteren Ausführungsformen besteht die Biomaterialprobe aus venösem Blut. Alternativ ist es auch möglich, intraoperativ gewonnenes peripheres Blut oder Tumorgewebe des Subjekts oder eine Aszites/Pleurites-Flüssigkeit metastatischer Herkunft zu verwenden. In further embodiments, the biomaterial sample consists of venous blood. Alternatively, it is also possible to use peripheral blood or tumor tissue of the subject obtained intraoperatively or an ascites / pleuritis fluid of metastatic origin.
[0012] In bevorzugten Ausführungsformen umfasst das Abtrennen der Tumorzellen: a. Exposition des Biomaterials an ein EDTA-Antikoagulans; b. Verdünnen mit Hanks-Salzlösung um einen Faktor 2; c. Auftragen der verdünnten Mischung auf eine Ficoll-Urografin (F-U))-Lösung mit einer Dichte von 1,077 g/cm<3>in einem Verhältnis von 1:4, gefolgt von einer 15-minütigen Zentrifugation bei 2000 U/min; d. Sammeln eines erzeugten Interphasenrings; e. Verdünnen des Interphasenrings mit einer Phosphatpufferlösung in einem Verhältnis von 1:15 bis 1:20 und anschließendes 10-minütiges Zentrifugieren bei 1500 U/min, um ein Sediment bereitzustellen; f. Sammeln des Sediments, Hinzufügen von Lysierlösung und 10-minütiges Halten des gesammelten Sediments und der Lysierlösung bei 15-25°C; g. Mischen mit einem Phosphatpuffer mit 0,9 M CaCl2-Lösung h. Sammeln der Tumorzellen.In preferred embodiments, separating the tumor cells comprises: a. Exposure of the biomaterial to an EDTA anticoagulant; b. Dilute with Hanks' saline by a factor of 2; c. Applying the diluted mixture to a Ficoll-Urografin (F-U)) solution with a density of 1.077 g / cm 3 in a ratio of 1: 4, followed by centrifugation at 2000 rpm for 15 minutes; d. Collecting a generated interphase ring; e. Diluting the interphase ring with a phosphate buffer solution in a ratio of 1:15 to 1:20 and then centrifuging at 1500 rpm for 10 minutes to provide a sediment; f. collecting the sediment, adding lysing solution and keeping the collected sediment and lysing solution at 15-25 ° C for 10 minutes; G. Mix with a phosphate buffer with 0.9 M CaCl2 solution h. Collect the tumor cells.
[0013] Der Vorteil dieses Verfahren zum Isolieren von Tumorzellen besteht in der Fähigkeit, einen bestmöglich quantitativen Pool von Tumorzellen zu erhalten, während ihre Lebensfähigkeit und Sterilität erhalten bleiben. Gleichzeitig erlaubt dieses Verfahren, bei minimalen Verlusten an Tumorzellen, Zellen zu beseitigen, die nicht in den interessierenden Pool fallen, wie etwa rote Blutzellen, Leukozyten und, teilweise Blutplättchen. Die Verwendung gewisser Typen von Enzymen, wie Accutase, minimiert die Schädigung von Zelloberflächenrezeptoren und antigenen Determinanten. Die Zentrifugationsbedingungen werden so gewählt, dass eine Unterscheidung von Zelltrümmern (Zellfragmenten und Zersetzungsprodukten) mit Exosomen von Zellen ermöglicht wird, wobei es, bei den Arbeitsstufen mit einem Überstand, der ein Präzipitat mit Zellfragmenten, Zersetzungsprodukten und Exosomen enthält, die beschriebenen Arbeitsbedingungen erlauben, eine Fraktion mit dem höchsten Gehalt an Exosomen aus dem Gesamtsediment zu gewinnen. The advantage of this method of isolating tumor cells is the ability to obtain the most quantitative pool of tumor cells possible while maintaining their viability and sterility. At the same time, this method allows, with minimal loss of tumor cells, to eliminate cells that do not fall into the pool of interest, such as red blood cells, leukocytes and, in some cases, platelets. The use of certain types of enzymes, such as Accutase, minimizes damage to cell surface receptors and antigenic determinants. The centrifugation conditions are chosen in such a way that a differentiation between cell debris (cell fragments and decomposition products) with exosomes of cells is made possible; the working conditions described allow a supernatant containing a precipitate with cell fragments, decomposition products and exosomes Obtain fraction with the highest content of exosomes from the total sediment.
[0014] In einigen Ausführungsformen umfasst der Schritt des Abtrennens der Exosomenzusammensetzung von dem Kulturmedium ferner eine Differentialzentrifugation. In some embodiments, the step of separating the exosome composition from the culture medium further comprises differential centrifugation.
[0015] In weiteren Ausführungsformen wird die Differentialzentrifugation während 10 min bei 3000 U/min durchgeführt, gefolgt vom Sammeln eines erzeugten ersten Überstands und vom Zentrifugieren des ersten Überstands während 30 min bei 10 000 U/min, gefolgt vom Sammeln eines erzeugten zweiten Überstands und vom Ultrazentrifugieren des zweiten Überstands während 2 h bei 100 000 U/min, wobei nach jedem Zentrifugationsschritt eine Exosomenzusammensetzung abgetrennt wird. In further embodiments, differential centrifugation is carried out for 10 minutes at 3000 rpm, followed by collecting a generated first supernatant and centrifuging the first supernatant for 30 minutes at 10,000 rpm, followed by collecting a second supernatant generated and from ultracentrifuging the second supernatant for 2 hours at 100,000 rpm, with an exosome composition being separated after each centrifugation step.
[0016] Gemäß einem zweiten Aspekt ist die Erfindung auf ein Verfahren zur Behandlung der Metastasenentstehung bei einem Subjekt gerichtet, umfassend: Entnehmen einer Biomaterialprobe des Subjekts; Abtrennen von Tumorzellen aus der Biomaterialprobe; Behandeln der abgetrennten Tumorzellen in einem Kulturmedium bei 37°C und 5% CO2während 24-72 h oder Behandeln der abgetrennten; Abtrennen einer Exosomenzusammensetzung aus dem Kulturmedium; Lösen der abgetrennten Exosomenzusammensetzung in einem Phosphatpuffer, um das Exosomen enthaltende therapeutische Mittel zu erhalten; intravenöses Verabreichen des therapeutischen Mittels an das Subjekt; dadurch gekennzeichnet, dass das Kulturmedium umfasst: (i) entweder eine 1:1-Mischung von DMEM/F12 und HEPES, 2 mmol/ml oder 3,65 mg/10 ml L-Glutamin, 100 Einheiten/ml Penicillin, 100 µg/ml Streptomycin, 10% fötales Rinderserum; oder (ii) 79 Gew.-% RPMI, 20 Gew.-% fötales Rinderserum und 1 Gew.-% Streptomycin.In a second aspect, the invention is directed to a method of treating metastasis in a subject, comprising: Taking a biomaterial sample from the subject; Separating tumor cells from the biomaterial sample; Treating the separated tumor cells in a culture medium at 37 ° C and 5% CO2 for 24-72 hours or treating the separated; Separating an exosome composition from the culture medium; Dissolving the separated exosome composition in a phosphate buffer to obtain therapeutic agents containing the exosome; administering the therapeutic agent intravenously to the subject; characterized in that the culture medium comprises: (i) either a 1: 1 mixture of DMEM / F12 and HEPES, 2 mmol / ml or 3.65 mg / 10 ml L-glutamine, 100 units / ml penicillin, 100 µg / ml streptomycin, 10% fetal bovine serum; or (ii) 79 wt% RPMI, 20 wt% fetal bovine serum, and 1 wt% streptomycin.
[0017] In einigen Ausführungsformen wird das Lösen der abgetrennten Exosomenzusammensetzung in einem Phosphatpuffer so durchgeführt, dass ein Verhältnis von 1:5 bis 1:20 von abgetrennter Exosomenzusammensetzung zu Phosphatpuffer erhalten wird. In some embodiments, the dissolution of the separated exosome composition in a phosphate buffer is carried out so that a ratio of 1: 5 to 1:20 of separated exosome composition to phosphate buffer is obtained.
[0018] In weiteren Ausführungsformen besteht die Biomaterialprobe aus venösem Blut. Alternativ ist es auch möglich, intraoperativ gewonnenes peripheres Blut oder Tumorgewebe des Subjekts oder eine Aszites/Pleurites-Flüssigkeit metastatischer Herkunft zu verwenden. In further embodiments, the biomaterial sample consists of venous blood. Alternatively, it is also possible to use peripheral blood or tumor tissue of the subject obtained intraoperatively or an ascites / pleuritis fluid of metastatic origin.
[0019] In bevorzugten Ausführungsformen umfasst das Abtrennen der Tumorzellen: a. Exposition des Biomaterials an ein EDTA-Antikoagulans; b. Verdünnen mit Hanks-Salzlösung um einen Faktor 2; c. Auftragen der verdünnten Mischung auf eine Diatrizaoat)(Urografin))-Lösung mit einer Dichte von 1,077 g/cm<3>in einem Verhältnis von 1:4, gefolgt von einer 15-minütigen Zentrifugation bei 2000 U/min; d. Sammeln eines erzeugten Interphasenrings; e. Verdünnen des Interphasenrings mit einer Phosphatpufferlösung in einem Verhältnis von 1:15 bis 1:20 und anschließendes 10-minütiges Zentrifugieren bei 1500 U/min, um ein Sediment bereitzustellen; f. Sammeln des Sediments, Hinzufügen von Lysierlösung und 10-minütiges Halten des gesammelten Sediments und der Lysierlösung bei 15-25°C; g. Mischen mit einem Phosphatpuffer mit 0,9 M CaCl2-Lösung h. Sammeln der Tumorzellen.In preferred embodiments, separating the tumor cells comprises: a. Exposure of the biomaterial to an EDTA anticoagulant; b. Dilute with Hanks' saline by a factor of 2; c. Applying the diluted mixture to a diatrizaoate) (urografin)) solution with a density of 1.077 g / cm 3 in a ratio of 1: 4, followed by centrifugation for 15 minutes at 2000 rpm; d. Collecting a generated interphase ring; e. Diluting the interphase ring with a phosphate buffer solution in a ratio of 1:15 to 1:20 and then centrifuging at 1500 rpm for 10 minutes to provide a sediment; f. collecting the sediment, adding lysing solution and keeping the collected sediment and lysing solution at 15-25 ° C for 10 minutes; G. Mix with a phosphate buffer with 0.9 M CaCl2 solution h. Collect the tumor cells.
[0020] In einigen Ausführungsformen umfasst der Schritt des Abtrennens der Exosomenzusammensetzung aus dem Kulturmedium ferner eine Differentialzentrifugation. In some embodiments, the step of separating the exosome composition from the culture medium further comprises differential centrifugation.
[0021] In weiteren Ausführungsformen wird die Differentialzentrifugation während 10 min bei 3000 U/min durchgeführt, gefolgt vom Sammeln eines erzeugten ersten Überstands und vom Zentrifugieren des ersten Überstands während 30 min bei 10 000 U/min, gefolgt vom Sammeln eines erzeugten zweiten Überstands und vom Ultrazentrifugieren des zweiten Überstands während 2 h bei 100 000 U/min, wobei nach jedem Zentrifugationsschritt eine Exosomenzusammensetzung abgetrennt wird. In further embodiments, differential centrifugation is carried out for 10 minutes at 3000 rpm, followed by collecting a generated first supernatant and centrifuging the first supernatant for 30 minutes at 10,000 rpm, followed by collecting a second supernatant generated and from ultracentrifuging the second supernatant for 2 hours at 100,000 rpm, with an exosome composition being separated after each centrifugation step.
Exemplarische AusführungsformenExemplary embodiments
[0022] Patient, 14 Jahre alt, Schüler, medizinische Vorgeschichte ohne Anomalien, akute B-lymphoblastische Leukämie, zytogenetische Variante t(1;19) (q23;p13), E2A/PBX1. Blasten im Knochenmarkaspirat (CD19+, CD79+, CD22cyt+, TdT+, HLADR+) 17,5%, die Leukozytenkomponente überschreitet die Obergrenze, neutrophile Metamyelozyten sind am stärksten erhöht (bis zu 67%), Myeloblasten sind nicht definiert. Im Hämogramm liegen vor: Blastenzellen 9%, Metamyelozyten 3%, Erythropenie bis zu 2,9*10^12/Liter, Leukopenie 2,3*10^9/Liter. Im Stadium der Erhaltungstherapie wurden, zusammen mit 6-Mercaptopurin, Exosomen, die aus autologen Tumorzellen erhalten worden waren, zweimal pro Woche per os verabreicht. Patient, 14 years old, schoolboy, medical history without abnormalities, acute B-lymphoblastic leukemia, cytogenetic variant t (1; 19) (q23; p13), E2A / PBX1. Blasts in the bone marrow aspirate (CD19 +, CD79 +, CD22cyt +, TdT +, HLADR +) 17.5%, the leukocyte component exceeds the upper limit, neutrophil metamyelocytes are the most elevated (up to 67%), myeloblasts are not defined. The hemogram shows: blast cells 9%, metamyelocytes 3%, erythropenia up to 2.9 * 10 ^ 12 / liter, leukopenia 2.3 * 10 ^ 9 / liter. At the maintenance therapy stage, exosomes obtained from autologous tumor cells were administered orally twice a week together with 6-mercaptopurine.
[0023] Zwei Monate nach der Arzneimittelverabreichung und bei Erhaltungstherapie zeigte der Patient eine Abnahme der Leukopenie von 2,3*10^9/Liter auf 3,1*10^9/Liter, was auf einen allmählichen Anstieg des Anteils reifer Leukozyten im Blutstrom hinweist; die Anzahl an Blasten im Knochenmarkaspirat sinkt von 17,5% auf 14%, Blastenzellen im Hämogramm werden nicht festgestellt. Bei den immunologischen Parametern ist ein Anstieg der zytotoxischen Aktivität von NK (Natural Killer)-Zellen von 65% vor der Arzneimittelverabreichung auf 78% nach der Arzneimittelverabreichung zu verzeichnen (mit einem Verhältnis von Effektorzellen zu Zielzellen von 1:5). Diese Veränderungen untermauern die Verbesserung des Zustands des Patienten und die Stabilisierung des Prozesses. Two months after drug administration and on maintenance therapy, the patient showed a decrease in leukopenia from 2.3 * 10 ^ 9 / liter to 3.1 * 10 ^ 9 / liter, indicating a gradual increase in the proportion of mature leukocytes in the bloodstream indicates; the number of blasts in the bone marrow aspirate drops from 17.5% to 14%, blast cells are not found in the hemogram. The immunological parameters show an increase in the cytotoxic activity of NK (Natural Killer) cells from 65% before the drug administration to 78% after the drug administration (with a ratio of effector cells to target cells of 1: 5). These changes underpin the improvement in the patient's condition and the stabilization of the process.
[0024] Die Tumorzellen wurden aus dem venösen Blut des Patienten isoliert. Das venöse Blut wird in ein Reagenzglas mit einem Antikoagulans EDTA abgenommen, sodann wird das resultierende Blut 2-fach mit Hanks-Lösung verdünnt, dann wird es auf eine Fikoll-Urographin-Lösung mit einer Dichte von 1,077 g/cm<2>bei einem Verhältnis von 1:4 aufbeschichtet, dann 15 Minuten bei 4°C bei 2000 U/min zentrifugiert, dann wird der während der Zentrifugation gebildete Interphasenring abgesammelt und Phosphatpuffer-Salzlösungspuffer wird bei einem Verhältnis von 1:15 zugegeben, und dann wird 10 Minuten lang bei 1500 U/min zentrifugiert, woraufhin der Niederschlag isoliert wird und 2 ml der Lyselösung zugegeben werden, und die resultierende Mischung wird 10 Minuten lang bei 15°C gehalten, wonach der Phosphatpuffer-Salzlösungspuffer zu der Mischung beim Verhältnis 1:10 zugesetzt und verrührt wird. Dies wird dann 10 Minuten bei 1500 U/min zentrifugiert, danach wird der Überstand ausgegossen und 4 ml Phosphatpuffer-Salzlösungspuffer werden zum Niederschlag gegeben, ferner enthaltend 0,9 M CaCl2, und verrührt, dann werden Tumorzellen aus der erhaltenen Suspension in Form eines Niederschlags isoliert, indem diese durch ein Mikro-Röhrchen hindurchgeleitet wird. Der resultierende Niederschlag mit Tumorzellen wird sodann in einem Kulturmedium der folgenden Zusammensetzung kultiviert: 79% RPMI, 20% FBS, 1% Penicillin-Streptomycin-Lösung, und zwar unter Bedingungen von t=37°C und 5% CO2, während 72 Stunden, wobei der Überstand alle 24 Stunden isoliert und dem verbleibenden Niederschlag Kulturmedium der folgenden Zusammensetzung: 79% RPMI, 20% FBS, 1% Penicillin-Streptomycin-Lösung, im Volumen des isolierten Überstands hinzugesetzt wird. The tumor cells were isolated from the patient's venous blood. The venous blood is drawn into a test tube with an anticoagulant EDTA, then the resulting blood is diluted 2-fold with Hanks' solution, then it is made into a Fikoll urographin solution with a density of 1.077 g / cm 2 at a Coated ratio of 1: 4, then centrifuged for 15 minutes at 4 ° C at 2000 rpm, then the interphase ring formed during centrifugation is collected and phosphate buffer-saline buffer is added at a ratio of 1:15, and then for 10 minutes centrifuged at 1500 rpm whereupon the precipitate is isolated and 2 ml of the lysis solution is added and the resulting mixture is kept at 15 ° C for 10 minutes, after which the phosphate buffer-saline buffer is added to the mixture at a ratio of 1:10 and stirred becomes. This is then centrifuged for 10 minutes at 1500 rpm, after which the supernatant is poured out and 4 ml of phosphate buffer saline solution buffer are added to the precipitate, further containing 0.9 M CaCl2, and stirred, then tumor cells from the suspension obtained are in the form of a precipitate isolated by passing it through a micro-tube. The resulting precipitate with tumor cells is then cultivated in a culture medium of the following composition: 79% RPMI, 20% FBS, 1% penicillin-streptomycin solution, under conditions of t = 37 ° C and 5% CO2, for 72 hours, The supernatant is isolated every 24 hours and culture medium of the following composition is added to the remaining precipitate: 79% RPMI, 20% FBS, 1% penicillin-streptomycin solution, in the volume of the isolated supernatant.
[0025] Eine Isolierung von Exosomen enthaltendem Sediment aus dem resultierenden Kulturmedium wird durch Differentialzentrifugation vorgenommen, nämlich: Das resultierende Kulturmedium wird 10 Minuten bei 3000 U/min zentrifugiert, dann wird der resultierende Überstand abgesammelt und 30 Minuten bei 10 000 U/min weiter zentrifugiert. Dann wird der resultierende Überstand gesammelt und eine Ultrazentrifugation bei 100 000 U/min während 2 Stunden durchgeführt, danach wird der gebildete Niederschlag isoliert. An isolation of exosome-containing sediment from the resulting culture medium is carried out by differential centrifugation, namely: The resulting culture medium is centrifuged for 10 minutes at 3000 rpm, then the resulting supernatant is collected and further centrifuged at 10,000 rpm for 30 minutes . Then the resulting supernatant is collected and ultracentrifugation is carried out at 100,000 rpm for 2 hours, after which the precipitate formed is isolated.
[0026] 1.1. Zur Erstellung eines Tumormodells zum Zwecke des Untersuchens der Prozesse der Metastasierung und Aktivierung der Immunantwort wurden immunkompetente männliche Mäuse der C57BL/6-Linie im Alter von nicht mehr als 4 Wochen ausgewählt. n = 27,1 × 10<5>Zellen der murinen Melanomlinie F10/B16 in phosphatgepufferter Salzlösung (PBS, 100 000 Zellen/0,1 ml PBS) wurden in die Schwanzvene aller Tiere injiziert. Der Metastasierungsprozess fand während 8 Tagen bis zum Zeitpunkt der Exposition statt. 1.1. To create a tumor model for the purpose of studying the processes of metastasis and activation of the immune response, immunocompetent male mice of the C57BL / 6 line aged no more than 4 weeks were selected. n = 27.1 × 10 5 cells of the murine melanoma line F10 / B16 in phosphate-buffered saline solution (PBS, 100,000 cells / 0.1 ml PBS) were injected into the tail vein of all animals. The metastatic process took place for 8 days up to the time of exposure.
[0027] 1.2. Zum Erhalten eines Präparats wurden die Zellen des murinen Melanoms der Linie F10/B16 aufgetaut und 72 h lang kultiviert, um die Menge von 6 000 000 zu erreichen. Danach wurden sie bei 3000 U/min zentrifugiert, der Überstand wurde an den Kunden übergeben, um das Präparat herzustellen. 1.2. To obtain a preparation, the F10 / B16 line murine melanoma cells were thawed and cultured for 72 hours to reach the amount of 6,000,000. They were then centrifuged at 3000 rpm, and the supernatant was given to the customer to make the preparation.
[0028] 1.3. Die Tiere wurden in 3 Gruppen eingeteilt: Nr. 1 (i.v.-Injektion), Nr. 2 (orale Verabreichung), Nr. 3 (Kontrolle). 1.3. The animals were divided into 3 groups: No. 1 (i.v. injection), No. 2 (oral administration), No. 3 (control).
[0029] 1.4. Die Mäuse wurden unter standardmäßigen Vivariums-Bedingungen mit freiem Zugang zu brikettförmigem Futter und Wasser gehalten. Das Präparat wurde am 8. und 11. Tag nach dem Inokulationsdatum verabreicht: • in Gruppe 1 wurden 100 µg Präparat in die Schwanzvene injiziert, • in Gruppe 2 wurden 100 µg Präparat per os verabreicht, • in Gruppe 3 wurden 100 µg reines PBS (ohne Präparat) in die Schwanzvene injiziert.1.4. The mice were housed under standard vivarium conditions with free access to briquette-shaped food and water. The preparation was administered on the 8th and 11th day after the inoculation date: • in group 1 100 µg of the preparation were injected into the tail vein, • in group 2 100 µg of the preparation was administered orally, • in group 3 100 µg of pure PBS ( without preparation) is injected into the tail vein.
[0030] Die Schlachtung erfolgte 16 Tage nach der Inokulation der Tumorzellen mithilfe der Genickbruch-Methode. Zur Beurteilung des Metastasierungsprozesses wurde eine visuelle Bewertung des Vorhandenseins und der Anzahl von Metastasen in der Leber durchgeführt und deren Masse gemessen. Die statistische Signifikanz wurde unter Verwendung einer Einweg-Varianzanalyse im Programm SPSS 22 bewertet. • Durchschnittliche Anzahl von Lebermetastasen in Gruppe Nr. 1: 5,5 +-0,5. Durchschnittliche Lebermasse: 1,2+-0,1. • Durchschnittliche Anzahl von Lebermetastasen in Gruppe Nr. 2: 3,8 +-0,3. Durchschnittliche Lebermasse: 1,1+-0,2 • Durchschnittliche Anzahl von Lebermetastasen in Gruppe Nr. 3: 9,0+-2,1. Durchschnittliche Lebermasse: 1,4+-0,2The slaughter took place 16 days after the inoculation of the tumor cells using the broken neck method. To assess the process of metastasis, a visual assessment of the presence and number of metastases in the liver was carried out and their mass was measured. Statistical significance was assessed using a one-way analysis of variance in the SPSS 22 program. • Average number of liver metastases in group no. 1: 5.5 + -0.5. Average liver mass: 1.2 + -0.1. • Average number of liver metastases in group No. 2: 3.8 + -0.3. Average liver mass: 1.1 + -0.2 • Average number of liver metastases in group no. 3: 9.0 + -2.1. Average liver mass: 1.4 + -0.2
[0031] Die Unterschiede in der Anzahl an Metastasen in den Beobachtungsgruppen gegenüber der Kontrolle sind signifikant (p<0,05). Der Unterschied in der Anzahl an Metastasen zwischen Gruppe 1 und 2 ist am Rande der Signifikanz (p<0,1). Die Lebermasse in den Beobachtungs- und Kontrollgruppen unterschied sich insignifikant (p>0,05). The differences in the number of metastases in the observation groups compared to the control are significant (p <0.05). The difference in the number of metastases between groups 1 and 2 is on the verge of significance (p <0.1). The liver mass in the observation and control groups differed insignificantly (p> 0.05).
[0032] Zum Beurteilen der Aktivierung des Immunsystems wurden Splenozyten aus der tierischen Milz isoliert, wobei der Prozentsatz an cytotoxischen CD8<+>-T-Lymphozyten mittels der Durchflusszytometrie-Methode bestimmt wurde. Zu diesem Zweck wurden die Splenozyten nach der Isolierung in PBS gewaschen und eine Stunde bei 4°C mit Anti-CD8-Antikörpern inkubiert, wobei eine weitere Analyse auf dem Durchflusszytofluorometer von Beckman&Dickinson erfolgte. To assess the activation of the immune system, splenocytes were isolated from the animal spleen, the percentage of cytotoxic CD8 <+> - T lymphocytes being determined by means of the flow cytometry method. For this purpose, the splenocytes were washed in PBS after isolation and incubated for one hour at 4 ° C. with anti-CD8 antibodies, with further analysis being carried out on the flow cytofluorometer from Beckman & Dickinson.
[0033] Der durchschnittliche Prozentsatz an CD8<+>-T-Lymphozyten in Gruppe Nr. 1: 27% The average percentage of CD8 <+> - T lymphocytes in group No. 1: 27%
[0034] Der durchschnittliche Prozentsatz an CD8<+>-T-Lymphozyten in Gruppe Nr. 2: 36% The average percentage of CD8 <+> - T lymphocytes in group No. 2: 36%
[0035] Der durchschnittliche Prozentsatz an CD8<+>-T-Lymphozyten in Gruppe Nr. 2: 17% The average percentage of CD8 <+> - T lymphocytes in group No. 2: 17%
[0036] Die Werte „Beobachtung-Kontrolle“ unterscheiden sich signifikant (p<0,05). Der Unterschied zwischen den Gruppen 1 und 2 ist signifikant (p<0,05). The “observation-control” values differ significantly (p <0.05). The difference between groups 1 and 2 is significant (p <0.05).
[0037] Die orale Verabreichung des Präparats hemmt den Metastasierungsprozess vergleichsweise stärker als die intravenöse Injektion. Ähnliche Beobachtungen wurden während der Analyse des Aktivierungsgrades des Immunsystems festgestellt. Der Prozess kann mit der Makrophagen-vermittelten Antigenpräsentation des Tumors an T-Killer zusammenhängen. Oral administration of the preparation inhibits the metastasis process comparatively more strongly than intravenous injection. Similar observations were made during the analysis of the degree of activation of the immune system. The process may be related to the macrophage-mediated antigen presentation of the tumor to T-killers.
Claims (12)
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