BR102015031861B1 - Peptídeos sintéticos, método e kit para diagnóstico da leishmaniose cutânea humana, e uso - Google Patents
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Abstract
PEPTÍDEOS SINTÉTICOS, MÉTODO E KIT PARA DIAGNÓSTICO DA LEISHMANIOSE CUTÂNEA HUMANA, E USO. A presente tecnologia trata de 6 (seis) peptídeos sintéticos altamente específicos e reativos com amostras de pacientes com leishmaniose cutânea humana, além de um método e um kit para diagnóstico da leishmaniose cutânea sintomática e assintomática, que utilizam como antígenos os 6 peptídeos sintéticos, isolados ou associados, ou os clones de bacteriófagos expressando tais peptídeos, isolados ou associados.
Description
[001] A presente tecnologia trata de 6 (seis) peptídeos sintéticos altamente específicos e reativos com amostras de pacientes com leishmaniose cutânea humana, além de um método e um kit para diagnóstico da leishmaniose cutânea sintomática e assintomática, que utilizam como antígenos os 6 peptídeos sintéticos, isolados ou associados, ou os clones de bacteriófagos expressando tais peptídeos, isolados ou associados.
[002] As leishmanioses são doenças negligenciadas causadas por parasitos protozoários do gênero Leishmania, pertencentes à família Trypanosomatidae e ordem Kinetoplastida. A doença é encontrada em 98 países no mundo e estima-se que 12 milhões de pessoas estejam clinicamente afetadas, com uma incidência anual 700.000 a 1.200.000 casos de leishmaniose tegumentar (LT) (DESJEUX, P. The increase in risk factors for leishmaniasis worldwide. Trans R Soc Trop Med Hyg, v. 95, n. 3, p. 239-43, May-Jun 2001a. ISSN 0035-9203. Leishmaniasis: current situation and new perspectives. Comp Immunol Microbiol Infect Dis, v. 27, n. 5, p. 305-18, 2004. ALVAR, J. et al. Leishmaniasis worldwide and global estimates of its incidence. PLoS One, v. 7, n. 5, p. e35671, 2012). Cerca de urn terço dos casos de LT ocorrem nas Américas, Mediterrâneo e Ásia Ocidental. Os países com maior número de casos da doença são: Afeganistão, Argélia, Colômbia, Brasil, Irã, Síria, Etiópia, Sudão do Norte, Costa Rica e Peru; que em conjunto representam entre 70 e 75% da incidência global de LT (ALVAR, J. et al. Leishmaniasis worldwide and global estimates of its incidence. PLoS One, v. 7, n. 5, p. e35671,2012).
[003] Atualmente, 20 espécies de Leishmania são encontradas nas Américas, das quais 14 estão associadas à L.T. No Brasil, seis espécies foram identificadas como agentes etiológicos da doença, das quais cinco pertencem ao subgênero Viannia: Leishmania (Viannia) braziliensis, Leishmania (V.) guyanensis, Leishmania (V.) lainsoni, Leishmania (V.) shawi e Leishmania (V.) lindenbergi (LAINSON, R.; SHAW, J. J. Evolution, classification and geographical distribution. Academic Press: London, p. 1-120, 1987; SILVEIRA, F. T. et al. An outbreak of cutaneous leishmaniasis among soldiers in Belem, Para State, Brazil, caused by Leishmania (Viannia) lindenbergi n. sp. A new leishmanial parasite of man in the Amazon region. Parasite, v. 9, n. 1, p. 43-50, 2002). A sexta espécie pertence ao subgênero Leishmania, Leishmania (Leishmania) amazonensis (SHAW, J. J.; LAINSON, R. Leishmaniasis in Brazil. VI. Observations on the seasonal variations of Lutzomyia flaviscutellata in different types of forest and its relationship to enzootic rodent leishmaniasis (Leishmania mexicana amazonensis). Trans R Soc Trop Med Hyg. v. 66, n. 5, p. 709-17, 1972). As espécies L. (V.) braziliensis e L. (L.) amazonensis são as mais patogênicas ao homem (SILVEIRA, F. T.; LAINSON, R.; CORBETT, C. E. Clinical and immunopathological spectrum of American cutaneous leishmaniasis with special reference to the disease in Amazonian Brazil: a review. Mem Inst Oswaldo Cruz, v. 99, n. 3, p. 239-51,2004).
[004] Na apresentação clínica da LT, a doença pode se manifestar sobre três formas clínicas principais: leishmaniose cutânea (LC), forma mais comum e incidente da doença; leishmaniose muco-cutânea ou mucosa (LMC) e a leishmaniose cutâneo-difusa (LCD) (WHO. Leishmaniasis. Fact sheet, v. 375, Jan 2014). A LC é caracterizada pela presença de uma lesão cutânea primária que se desenvolve no local da picada do flebotomíneo, sendo única ou podendo originar várias outras lesões. A doença tende a evoluir à cura espontânea. Porém, há casos em que a lesão pode permanecer ativa por vários anos e coexistir com lesões mucosas que podem surgir posteriormente (GONTIJO, B.; DE CARVALHO MDE, L. [American cutaneous leishmaniasis]. Rev Soc Bras Med Trop, v. 36, n. 1, p. 71-80, 2003). A doença pode se apresentar sob as seguintes formas clínicas: (1) cutâneo-localizada, responsável por cerca de 85% dos casos, com tendência à cicatrização espontânea e com boa resposta à terapêutica; e (2) cutâneo- disseminada, caracterizada pelo aparecimento de lesões papulares múltiplas que acometem diversas partes do corpo.
[005] A espécie L. braziliensis é o principal agente etiológico da LC na América do Sul (MARSDEN, P. D. Mucosal leishmaniasis ("espundia" Escomel, 1911). Trans R Soc Trop Med Hyg, v. 80, n. 6, p. 859-76, 1986. ISSN 0035-9203 (Print). Mucosal leishmaniasis due to Leishmania (Viannia) braziliensis in Tres Bracos, Bahia-Brazil. Rev Soc Bras Med Trop, v. 27, n. 2, p. 93-101, 1994). O diagnóstico definitivo das leishmanioses baseia-se na avaliação clínica das manifestações da doença em conjunto com inquéritos epidemiológicos e com a detecção dos estágios intracelulares do parasito, por meio de exame de esfregaços ou biópsias de lesões da pele e cultura de espécimes, além de outros exames laboratoriais.
[006] O diagnóstico precoce é fundamental para evitar danos permanentes e graves sequelas funcionais. Porém, para o diagnóstico clínico, a sintomatologia da LT é semelhante à de outras doenças infecciosas, tais como tuberculose, paracoccidioidomicose e hanseníase. Doenças não-infecciosas, como granuloma e neoplasias, podem também causar lesões que se assemelham às úlceras causadas pelo parasita Leishmania (JUNQUEIRA-PEDRAS, M. et al. Antibody subclass profile against Leishmania braziliensis and Leishmania amazonensis in the diagnosis and follow-up of mucosal leishmaniasis. Diagn Microbiol Infect Dis, v. 47, n. 3, p. 477-85, 2003).
[007] A detecção do agente causador de toda doença infecciosa é um passo determinante para o manejo clínico e/ou monitoramento epidemiológico da doença. As leishmanioses representam um desafio para o diagnóstico clínico e laboratorial e um motivo de preocupação de saúde pública mundial, pois o número de casos de falha terapêutica ao tratamento convencional tem aumentado nos últimos anos (ALVAR, J.; CROFT, S.; OLLIARO, P. Chemotherapy in the treatment and control of leishmaniasis. Adv Parasitol, v. 61, p. 223-74, 2006).
[008] Os métodos de diagnóstico direto, que demonstram a presença do parasito no indivíduo doente, são considerados ideais para o diagnóstico das leishmanioses. Entretanto, a prática apresenta limitações, que podem ser compensadas por métodos indiretos baseados na resposta imunológica dos hospedeiros infectados (KAR, K. Serodiagnosis of leishmaniasis. Crit Rev Microbiol, v. 21, n. 2, p. 123-52, 1995). A observação das formas evolutivas de diferentes espécies do parasito é essencial para demonstrar a origem da doença e é considerada o padrão-ouro para seu diagnóstico. Amostras obtidas de biópsias das lesões de LT são normalmente empregadas para a confecção de lâminas de esfregaço e/ou para impressão em lâminas. A técnica de coloração utilizada para a identificação das formas amastigotas dos parasites é a coloração por Giemsa. Entretanto, na LT, a sensibilidade na observação dos esfregaços depende da forma clínica da doença, da idade e do sexo do paciente, do tempo de existência da lesão, da espécie do parasito, além da distribuição do mesmo na lesão, que pode não ser homogênea (BOGGILD, A. K. et al. Clinical and demographic stratification of test performance: a pooled analysis of five laboratory diagnostic methods for American cutaneous leishmaniasis. Am J Trop Med Hyg, v. 83, n. 2, p. 345-50, 2010). Dessa forma, os métodos parasitológicos, apesar de apresentarem especificidade elevada, possuem limitações em sua sensibilidade, pela distribuição não homogênea dos parasitos na lesão, além da coleta das amostras ser considerada invasiva. Além disso, esses métodos consomem um grande tempo para a confecção das lâminas, fato que também dificulta sua utilização na prática médica rotineira (WEIGLE, K. A. et al. Diagnosis of cutaneous and mucocutaneous leishmaniasis in Colombia: a comparison of seven methods. Am J Trop Med Hyg, v. 36, n. 3, p. 489-96, 1987).
[009] Em relação ao diagnóstico imunológico da LT, o teste de Intradermoreação de Montenegro (IDRM) se baseia na resposta celular devido à memória imunológica de células T que são ativadas quando um indivíduo foi ou se encontra infectado por Leishmania spp. O IDRM foi o primeiro método de diagnóstico que necessitava de um produto preparado em laboratório para comprovar o diagnóstico clínico da LT. Seu uso é amplo em várias áreas endêmicas do mundo. Entretanto, não existe uma padronização na preparação do antígeno usado, com a utilização de diferentes espécies e inóculos de Leishmania spp., além de diferentes concentrações de conservantes, como o fenol e o timerosol (WEIGLE, K. A. et al. Leishmania skin test standardization and evaluation of safety, dose, storage, longevity of reaction and sensitization. Am J Trop Med Hyg, v. 44, n. 3, p. 260-71, 1991). Além disso, essa técnica apresenta limitações, como a complexidade e fraca estabilidade de seus componentes, além de poder ser interpretada como positiva em indivíduos assintomáticos ou naqueles não infectados, mas que residem em áreas endêmicas e de elevada transmissão da LT. Indivíduos alérgicos aos componentes do kit ou aqueles com doenças que causam reação cruzada, como doença de Chagas, esporotricose, hanseníase, tuberculose, entre outras, podem também ter seus resultados falseados positiva ou negativamente. Também, o teste pode ser interpretado como negativo nos indivíduos fraco-reativos, naqueles precocemente tratados e em pacientes com LCD (BERN, C. et al. Loss of leishmanin skin test antigen sensitivity and potency in a longitudinal study of visceral leishmaniasis in Bangladesh. Am J Trop Med Hyg, v. 75, n. 4, p. 744-8, 2006).
[010] O diagnóstico laboratorial baseando-se na presença de anticorpos específicos por parte do hospedeiro infectado constitui-se em uma alternativa, com a sensibilidade variando em torno de 62% a 100% dos casos, dependendo da preparação antigênica utilizada. Uma das desvantagens de testes de sorodiagnóstico tem sido baseada na baixa especificidade dos mesmos, causada pelos baixos títulos de anticorpos específicos e pela reatividade cruzada com antígenos presentes em agentes infecciosos causando outras doenças relacionadas (GUIMARAES, M. C.; CELESTE, B. J.; FRANCO, E. L. Evaluation of dot enzyme-linked immunosorbent assay for mucocutaneous leishmaniasis and comparison with microplate enzyme immunoassay. J Clin Microbiol, v. 24, n. 3, p. 364-7, 1986. VALLI, L. C. et al. Humoral immune responses among mucosal and cutaneous leishmaniasis patients caused by Leishmania braziliensis. J Parasitol, v. 85, n. 6, p. 1076-83, 1999).
[011] A resposta humoral na LT é de intensidade baixa a moderada, quando comparada com a resposta imune observada em pacientes com leishmaniose visceral (LV). O teste de imunofluorescência indireta (IFAT), apesar de algumas limitações, possui uma sensibilidade superior a 80%. Os títulos da IFAT são influenciados pela espécie do parasito, pelo tipo de lesão e pelo tempo de ocorrência da mesma. O uso do IFAT para o diagnóstico apresenta melhor desempenho em relação ao de IDRM, pois as infecções antigas têm menor influência em seu desempenho, apresentando melhores valores preditivos positivos e negativos (PASSOS, V. M. et al. American cutaneous leishmaniasis: use of a skin test as a predictor of relapse after treatment. Bull World HeaLT Organ, v. 78, n. 8, p. 968-74, 2000. BRITO, M. E. et al. Dynamics of the antibody response in patients with therapeutic or spontaneous cure of American cutaneous leishmaniasis. Trans R SocTrop Med Hyg, v. 95, n. 2, p. 203-6, 2001).
[012] A técnica de ELISA vem substituindo o IFAT por apresentar melhores valores de sensibilidade e especificidade (GOTO, H.; LINDOSO, J. A. Current diagnosis and treatment of cutaneous and mucocutaneous leishmaniasis. Expert Rev Anti Infect Ther, v. 8, n. 4, p. 419-33, 2010). Essa técnica é considerada uma ferramenta importante para o diagnóstico da LT e monitoramento da exposição dos indivíduos em áreas endêmicas da doença. Geralmente, esses testes utilizam antígenos obtidos de frações brutas e/ou moléculas semi-purificadas do parasito, bem como proteínas recombinantes e/ou peptídeos sintéticos derivados dos mesmos. Essa técnica permite o melhoramento da especificidade, com o objetivo de diferenciar os pacientes com LT daqueles com doença de Chagas, malária e outras doenças que apresentam reatividade cruzada (JUNQUEIRA-PEDRAS, M. et al. Antibody subclass profile against Leishmania braziliensis and Leishmania amazonensis in the diagnosis and follow-up of mucosal leishmaniasis. Diagn Microbiol Infect Dis, v. 47, n. 3, p. 477-85, 2003).
[013] Outras razões para que a técnica de ELISA tenha um enorme potencial como método de diagnóstico é a possibilidade de inovações tecnológicas que melhorem sua efetividade. O uso de frações sub-celulares, de novos substratos para detecção e o emprego de proteínas recombinantes tem permitido melhorias na técnica, com vistas ao aumento de sua sensibilidade e especificidade. Atualmente, a proteína recombinante mais importante no diagnóstico da LV é a rk39, que tem sido empregada para o diagnóstico de pacientes e para estudos epidemiológicos com humanos e cães (SUNDAR, S. et al. Comparative evaluation of parasitology and serological tests in the diagnosis of visceral leishmaniasis in India: a phase III diagnostic accuracy study. Trop Med Int HeaLT, v. 12, n. 2, p. 284-9, 2007). No entanto, sua validação para detecção dos casos de infecção por L. infantum tem variado de acordo com a cepa e o cultivo dos parasites, a produção da proteína recombinante e a variabilidade clínica e sorológica dos pacientes, além da variabilidade genética observada entre cepas diferentes da mesma espécie, principalmente quando se avalia cepas isoladas de localizações distantes (Zijlstra EE, Nur Y, Desjeux P, Khalil EA, El-Hassan AM, Groen J. Diagnosing visceral leishmaniasis with the recombinant K39 strip test: experience from the Sudan. Trop Med Int Health. 2001 ;6(2):108-13). Tais problemas têm também sido observados quando a proteína recombinante é usada para diagnóstico da LT (Adams ER, Versteeg I, Leeflang MM. Systematic Review into diagnostics for post-kala-azar dermal leishmaniasis (PKDL). J Trop Med. 2013; 2013: 150746).
[014] Dessa forma, urn teste sorológico ideal para o diagnóstico da LC deve ser baseado no uso de antigenos que sejam reconhecidos por amostras de soros de todos os pacientes infectados, independente da sintomatologia clínica e dos níveis de anticorpos antileishmaniais existentes. Ao mesmo tempo, esses antígenos não podem ser reconhecidos por indivíduos não infectados pelo parasita Leishmania.
[015] A heterogeneidade da resposta humoral observada em pacientes com LC indica que, para um sorodiagnóstico efetivo da doença, uma combinação de antígenos em uma mesma técnica de ELISA poderia ser desejável; quando comparada à utilização de antígenos isolados dos parasitas. Uma combinação de diferentes antígenos com valor diagnóstico também poderia detectar infecções assintomáticas sendo, dessa forma, altamente desejável para o sorodiagnóstico da doença.
[016] O monitoramento da eficácia do tratamento e a prevenção de recidivas à doença são considerados fundamentais para o controle da doença. Apesar dos avanços científicos, a LC constitui um problema de Saúde Pública. Até o presente momento, o diagnóstico da doença é realizado pela associação de parâmetros clínicos, epidemiológicos e laboratoriais. Particularmente, em relação aos métodos imunológicos de diagnóstico, a falta de um padrão-ouro para a detecção da doença é uma importante limitação para o controle efetivo da mesma. Além disso, resultados falso-negativos podem retardar o início do tratamento, contribuindo, assim, para a manutenção dos reservatórios e, como consequência, mantendo os parasitas no ambiente doméstico.
[017] A tecnologia de phage display é baseada na expressão de peptídeos, proteínas ou fragmentos de anticorpos associados a proteínas presentes na superfície externa de bacteriófagos recombinantes. A sequência de nucleotídeos codificadora dos peptídeos inseridos é geneticamente fundida a uma sequência codificadora de algumas proteínas do bacteriófago, originando um produto híbrido, que é então exposto na superfície externa das partículas virais (Smith G.P. Filamentous fusion phage: novel expression vectors that display cloned antigens on the virion surface. Science, v. 228, p. 1315-1317, 1985). Bibliotecas de bacteriófagos expressando peptídeos exógenos têm sido usadas na identificação de diversos receptores celulares, facilitando a identificação de pequenas moléculas que se ligam com alta afinidade e mimetizam a interação com seus ligantes naturais, bem como na identificação de peptídeos que interagem com anticorpos, sem a necessidade do conhecimento prévio da região antigênica reconhecida pelo anticorpo.
[018] A seleção de moléculas de alta afinidade em relação a um determinado receptor-alvo, aderido a uma superfície sólida, é realizada por etapas consecutivas de seleção denominadas de “ciclos de bio-panning". O número de ciclos de bio- pannings realizados em phage display determina o grau de enriquecimento dos fagos que se ligam a um receptor-alvo. Uma população de clones de fagos com elevada afinidade em relação a um dado receptor pode ser obtida com a realização de 3 a 5 ciclos de bio-pannings (Crameri R, Suter M. Display of biologically active proteins on the surface of filamentous phages: a cDNA cloning system for selection of functional gene products linked to the genetic information responsible for their production. Gene 1993; 137:69-75, 1993). Metodologicamente, os ciclos de bio-panning podem ser adaptados de acordo com o grupo de pesquisa que domina tal tecnologia. Por exemplo, no caso da presente invenção, anticorpos da classe IgG provenientes de soros dos pacientes a serem investigados foram fundidas à superfície de microesferas magnéticas (denominadas de "beads") e tal híbrido foi submetido então a processos de captação (seleção) negativa ou positiva em relação aos clones de fagos presentes na biblioteca recombinante utilizada.
[019] A tecnologia de phage display vem sendo utilizada em diversos trabalhos para a pesquisa de novos antígenos que, sob a forma de clones de bacteriófagos expressando os peptídeos de interesse, ou dos próprios peptídeos individuais produzidos sinteticamente; possam ser testados no diagnóstico laboratorial de várias doenças, como nas infecções virais, no câncer e em doenças auto-imunes; bem como na produção de vacinas recombinantes. A identificação dos peptídeos reativos na superfície dos fagos permite sua utilização ou a construção sintética posterior dos mesmos, seguida pelo seu emprego nos testes laboratoriais, objetivando o diagnóstico laboratorial e/ou o desenvolvimento de vacinas contra as diversas doenças (Manoutcharian K, Terrazas LI, Gevorkian G, Acero G, Petrossian P, Rodrigues M, et al. Phage-displayed T-cell epitope grafted into immunoglobulin heavy-chain complementarity-determining regions: an effective vaccine design tested in murine cysticercosis. Infect Immun 1999; 67:4764-4770. Manoutcharian K, Diaz-Orea A, Gevorkian G, Fragoso G, Acero G, González E, et al. Recombinant bacteriophage-based multiepitope vaccine against Taenia solium pig cysticercosis. Vet Immunol Immunopathol 2004; 99:11-24. Noya, O.; Patarroyo, M.E.; Guzman, F.; Alarcon De Noya, B.; Immunodiagnosis of parasitic diseases with synthetic peptides. Curr. Prot. Peptide Sci., v. 4, p. 299-308, 2003. Sartorius R, Pisu P, D'Apice L, Pizzella L, Romano C, Cortese G, Giorgini A, Santoni A, Velotti F, De Berardinis P. The use of filamentous bacteriophage fd to deliver MAGE-A10 or MAGE-A3 HLA-A2-restricted peptides and to induce strong antitumor CTL responses. J Immunol. 2008 Mar 15;180(6):3719-28).
[020] O documento de patente BR102013027542, intitulado “Composição vacinai contra leishmaniose visceral canina, peptídeos sintéticos e uso”, descreve uma composição vacinai para prevenção e ou tratamento da leishmaniose visceral canina, utilizando, como antígenos, peptídeos expressos na superfície externa de bacteriófagos não nocivos ao hospedeiro mamífero, ou sintetizados, sendo utilizados isolados ou associados. A tecnologia descreve também o uso desses peptídeos na preparação de composições vacinais contra leishmaniose visceral. Esses peptídeos foram selecionados pela técnica phage display e induzem resposta imune específica do tipo Th1, destacada pela maior produção de IFN- gama. Essa tecnologia se difere da presente invenção por compreender peptídeos diferentes dos seis peptídeos aqui descritos. Além disso, na presente invenção, tais antígenos foram identificados utilizando soros de pacientes humanos, o que amplia o leque de possibilidades de se utilizar os mesmos tanto no homem quanto em outros mamíferos.
[021] O documento de patente BR102013033627, intitulado “Peptídeos sintéticos, método e kit para imunodiagnóstico da leishmaniose visceral canina e das leishmanioses tegumentar e visceral humana", descreve peptídeos, um método e Kit para imunodiagnóstico das leishmanioses, em seres humanos e/ou cães, e uso de peptídeos derivados de epitopos de célula B na identificação de indivíduos e animais infectados por leishmaniose visceral e tegumentar em método diagnóstico e kit diagnóstico. Essa tecnologia se difere da presente invenção por compreender peptídeos diferentes dos seis peptídeos aqui descritos. Conforme descrito acima, na presente invenção, os 6 antígenos foram identificados utilizando soros de pacientes humanos, o que amplia o leque de possibilidades de se utilizar os mesmos tanto no homem quanto em outros mamíferos. Na patente citada, ainda que a mesma reivindique proteção intelectual para uso humano, a triagem experimental foi realizada utilizando soros de cães.
[022] O documento de patente PI0804859-2, intitulado “Peptídeos sintéticos para a obtenção de polímero proteico para imunização contra leishmaniose, produtos e seus usos” refere-se a dois peptídeos sintéticos antigênicos (epitopos/mimotopos), selecionados e sintetizados pelas técnicas de phage display e spot synthesis, e ao processo de obtenção de polímero proteico obtido através da conjugação destes peptídeos, o uso desse polímero proteico, a composição vacinai com ele produzida, método de vacinação, método de diagnóstico da doença e kit diagnóstico. Essa tecnologia se difere da presente invenção por compreender peptídeos diferentes dos seis peptídeos aqui descritos. Também, como descrito, na presente invenção, os antígenos foram identificados utilizando soros de pacientes humanos. Na invenção supracitada, foram utilizados soros de cães na seleção dos peptídeos de interesse.
[023] A presente tecnologia trata de 6 (seis) peptídeos sintéticos altamente específicos e reativos com amostras de pacientes com leishmaniose cutânea humana, além de um método e um kit para diagnóstico da leishmaniose cutânea sintomática e assintomática, que utilizam como antígenos os 6 peptídeos sintéticos, isolados ou associados; ou clones de bacteriófagos expressando tais peptídeos, isolados ou associados.
[024] No estado da técnica não foi encontrada nenhuma tecnologia para diagnóstico da leishmaniose cutânea humana que compreenda o uso dos seis peptídeos selecionados pela técnica subtrativa de phage display descritos na presente invenção. Os 6 peptídeos apresentam 100% de sensibilidade e especificidade para detectar pacientes com leishmaniose cutânea por meio de ensaios sorológicos.
[025] A presente tecnologia trata de 6 (seis) peptídeos sintéticos altamente específicos e reativos com amostras de pacientes com leishmaniose cutânea humana, além de um método e um kit para diagnóstico da leishmaniose cutânea sintomática e assintomática, que utilizam como antígenos os 6 peptídeos sintéticos, isolados ou associados; ou clones de bacteriófagos expressando tais peptídeos, isolados ou associados.
[026] Mais especificamente, a presente invenção trata dos peptídeos identificados pelas seguintes sequências de aminoácidos KQEDKPI (Seq ID N° 1), YLLCISP (Seq ID N° 2), HLFLSSF (Seq ID N° 3), SVMIPQK (Seq ID N° 4), SFINSHG (Seq ID N° 5), PGIGSIY (Seq ID N° 6); de bacteriófagos capazes de expressar tais peptídeos; e do uso de tais peptídeos e/ou bacteriófagos no diagnóstico da leishmaniose cutânea humana e em um kit para diagnóstico da doença.
[027] O método proposto para o diagnóstico de leishmaniose cutânea humana caracteriza-se por compreender as seguintes etapas: a. exposição de uma amostra a pelo menos um dos peptídeos definidos pelas sequências de aminoácidos SEQ ID N° 1 a 6, ou a pelo menos um dos clones de bacteriófagos expressando cada um dos peptídeos definidos pelas sequências de aminoácidos SEQ ID N° 1 a 6, estando tais peptídeos ou bacteriófagos ligados a um suporte sólido ou a um carreador; b. adição de um anticorpo secundário ou uma proteína, que estejam conjugados a uma enzima ou a um marcador e que se liguem aos anticorpos da amostra da etapa (a); c. detecção dos anticorpos específicos para leishmaniose cutânea humana na amostra citada na etapa (a), utilizando-se reagentes capazes de detectar a enzima ou o marcador citados na etapa (b).
[001] Na etapa “a”, as amostras utilizadas são selecionadas do grupo consistindo de sangue, soro, plasma e/ou outro fluído corporal.
[028] Na etapa “b”, o anticorpo secundário pode ser IgG, IgM, IgA, IgE ou respectivas subclasses; a proteína pode ser a Proteína A e/ou a Proteína G; e a enzima que está conjugada ao anticorpo secundário ou à proteína é selecionada do grupo compreendendo peroxidase, fosfatase alcalina, beta-galactosidase, urease, xantina oxidase, glicose oxidase e penicilinase. Já o marcador é selecionado do grupo compreendendo enzimas, radioisótopos, biotina, cromóforos, fluoróforos e quimioluminescentes. Por fim, na etapa “c”, o reagente para detectar a enzima ou o marcador é selecionado do grupo compreendendo qualquer substrato cromógeno que seja reconhecido por alguma das enzimas supracitadas, ou algum dos marcadores supracitados.
[029] O kit para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana caracteriza-se por compreender: a. suporte sólido ou carreador contendo pelo menos um dos peptídeos sintéticos definidos pelas sequências de aminoácidos SEQ ID N° 1 a 6 ou pelo menos um dos clones de bacteriófagos expressando pelo menos um dos peptídeos definidos pelas sequências de aminoácidos SEQ ID N°1 a 6; b. anticorpo secundário ou uma proteína, conjugados a uma enzima ou a um marcador; c. reagente para detectar a enzima ou marcador.
[030] O suporte sólido do item “a” pode ser selecionado do grupo de materiais compreendendo nitrocelulose, nylon, látex, polipropileno e/ou poliestireno. Preferencialmente, deve consistir em placas de microtitulação de 96 poços, tubos, esferas ou papéis de nitrocelulose e/ou nylon.
[031] No item “b” o anticorpo secundário pode ser IgG, IgM, IgA, IgE e/ou suas respectivas subclasses e a proteína pode ser a proteína A e/ou proteína G.
[032] Para os itens “b” e “c”, a enzima que está conjugada ao anticorpo secundário ou proteína pode ser selecionada do grupo compreendendo peroxidase, fosfatase alcalina, beta-galactosidase, urease, xantina oxidase, glicose oxidase e penicilinase. Já o marcador pode ser selecionado do grupo compreendendo enzimas, radioisótopos, biotina, cromóforos, fluoróforos e/ou quimioluminescentes.
[033] O reagente para detectar a enzima ou o marcador do item “c" pode ser selecionado do grupo compreendendo substratos cromógenos que sejam reconhecidos por alguma das enzimas supracitadas, ou algum dos marcadores supracitados.
[034] A presente invenção pode ser mais bem compreendida através dos exemplos que se seguem, não limitantes.
[035] Amostras de soros - As seguintes amostras de soro foram utilizadas para a realização dos ciclos de bio-pannings na técnica de phage display e nos ensaios de ELISA para seleção de bacteriófagos expressando peptídeos específicos para o sorodiagnóstico da leishmaniose cutânea: (1) soros de indivíduos sadios e residentes em área não-endêmica de LT, n=20; (2) soros de pacientes com doença de Chagas, DC, (n=20); (3) soros de pacientes com leishmaniose cutânea, LC, n=20; e soros de pacientes com leishmaniose muco-cutânea, LMC, n=20. Pools de soros foram preparados usando quantidades iguais de cada amostra coletada e utilizados nos ciclos de bio-pannings.
[036] Purificação de anticorpos IgGs por acoplamento em microesferas de proteína-G - A purificação das imunoglobulinas da classe IgG a partir dos pools de soros listados acima foi realizada por meio de seu acoplamento em microesferas magnéticas (beads magnéticos) conjugadas à proteína G (Dynabeads, Invitrogen). Para tal, 2x109 partículas de microesferas foram lavadas por 3 vezes em tampão MES 0.1 M pH 5.0 e foram adicionados às mesmas: (a) 200 μL do pool de soros de pacientes com LMC, para um volume final de 400 μL; (b) 200 μL do pool de soros de pacientes com LC, para um volume final de 400 μL; (c) 200 μL do pool de soros de pacientes com DC, para um volume final de 400μL e (d) 200 μL do pool de soros de pacientes sadios (controles negativos), para um volume final de 400 μL. A proporção de anticorpos para a quantidade das microesferas em todos os casos foi de 1:1.
[037] Em seguida, foi realizada uma incubação por 40 min sob agitação constante e à temperatura ambiente. As microesferas adsorvidas com os anticorpos foram lavadas por 3 vezes em tampão MES 0.1 M pH 5.0, com a finalidade de retirar os anticorpos IgGs não-aderidos. Para a finalização da ligação covalente entre as microesferas e os anticorpos, o sistema “beads-anticorpo” foi lavado 2 vezes com 1 ml_ de tampão trietanolamina 0.2M pH 8.2 e ressuspendido em 1 ml_ de tampão de ligação covalente (20 mM de dimetilpimelinidato/HCI em tampão trietanolamina) por 30 min, sob agitação constante à temperatura ambiente. A neutralização da reação foi feita pela incubação do sistema com 1 ml_ de tampão Tris 50 mM pH 7.5, por 15 min à temperatura ambiente.
[038] Em seguida, as microesferas incorporadas foram lavadas por 3 vezes em tampão TBS-T 0.1% de Tween 20 e bloqueadas com solução de bloqueio (5% de BSA em TBS-T 0.05% de Tween 20) por 1 h e a 37°C, sendo então ressuspendidas em 200 μL de tampão TBS. Para certificação do acoplamento, 5 μL dos beads cobertos pelas IgGs foram incubados por 1 h e a 37°C com o anticorpo anti-lgG de humano (diluição de 1:5.000). Após a incubação, os beads foram lavados por 3 vezes com TBS-Tween 0.1% e a reação foi revelada pela adição do substrato tetrametilbenzidina. A reação foi então interrompida pela adição de ácido sulfúrico 2 N e a leitura da absorbância foi efetuada a 450 nm, em leitor de microplacas (Titertek Multiskan Plus, Flow Laboratories, USA).
[039] Ciclos de bio-pannings - Para a realização das seleções negativa e positiva dos ciclos de bio-pannings, 1x1011 partículas virais de uma biblioteca recombinante contendo peptídeos fusionados em fagos filamentosos (biblioteca comercial Ph.D.-C7C obtida da empresa New England, BioLabs®, USA) foram utilizadas. As mesmas foram diluídas em 190 μL de TBS-Tween 0,1% para a seleção dos ligantes nas microesferas incorporadas pelos anticorpos IgG.
[040] Para a seleção negativa, a biblioteca de bacteriófagos recombinantes foi incubada por 30 minutos à temperatura ambiente com 100 μl_ das microesferas acopladas com as IgGs de indivíduos sadios. Em seguida, as microesferas foram precipitadas por atração magnética ao suporte Dynal Biotech (no. 12020), sendo o sobrenadante, contendo os clones que não se aderiram às IgGs, transferido para novo tubo contendo 100 μL das microesferas acopladas com as IgGs do grupo de pacientes com DC. Em seguida, as microesferas foram precipitadas por atração magnética ao suporte Dynal Biotech (no. 12020), sendo o sobrenadante, contendo apenas os clones de fagos que não se aderiram a tais anticorpos, recuperado.
[041] Para a seleção positiva, o sobrenadante coletado e recuperado durante a seleção negativa foi transferido para um novo tubo contendo as microesferas acopladas com as IgGs de pacientes com LMC, e incubado por 30 minutos à temperatura ambiente. As microesferas contendo o sistema beads-anticorpos precipitado nos tubos dos bio-panning dos anticorpos de pacientes com LMC, contendo os fagos de interesse, foram lavadas por 10 vezes com TBS-Tween 20 0.1% e eluídas em 500 μL de tampão glicina 0.2 M pH 2.0, sendo tal solução neutralizada pela adição de 75 μL de Tris-base pH 9.0. Os clones de fagos foram recuperados para realizar a segunda etapa do processo de seleção positiva. Estes clones recuperados e eluídos foram passados para um novo tubo contendo as microesferas acopladas com as IgGs de pacientes com LC. As microesferas contendo o sistema beads-anticorpos precipitado nos tubos dos bio-panning dos anticorpos de pacientes com LC, contendo os fagos de interesse, foram lavadas por 10 vezes com TBS-Tween 20 0.1% e eluídas em 500 μL de tampão glicina 0.2 M pH 2.0, sendo tal solução neutralizada pela adição de 75 μL de Tris-base pH 9.0. O processo foi repetido mais duas vezes, totalizando 3 ciclos de bioseleção. Após tal procedimento, os clones foram titulados de forma individualizada.
[042] Titulações dos clones de fagos selecionados - Ao final do 3o ciclo de bioseleção positiva, os clones de fagos recuperados foram titulados. Para tal, os mesmos foram submetidos a diluições seriadas exponenciais (log10) em meio LB líquido com ampicilina, sendo as diluições de 10‘1 até 10'4 para os eluatos não amplificados e de 108 a 10 11 para os eluatos amplificados. A cada diluição, 200 μl_ da cultura de E. coli ER2738 na fase mid-log (OD6oonm~0,5) foram acrescentados. Após a infecção das bactérias pelos fagos, a cultura foi transferida para novos tubos contendo 3 ml_ de ágar Top (10 g de Bacto-Triptona, 5 g de extrato de levedura, 5 g de NaCI, 7 g de agarose, 1 g de MgCI2.6H2O, por 1 L de água deionizada) e espalhadas em placa de Petri contendo meio LB sólido acrescido de IPTG (0.5 mM)/Xgal (40 μg/mL) e ampicilina (100 mg/mL). Para cada titulação, uma placa de cultura foi confeccionada. As placas foram incubadas a 37°C por 16 h. Após, as colônias que se apresentavam azuis e individualizadas foram quantificadas manualmente. Para estimar os valores dos títulos, o número total de colônias contadas foi multiplicado pelo fator de diluição de cada placa.
[043] As colônias de E. coli ER2738 individualizadas contendo os bacteriófagos selecionados foram coletadas para a extração do DNA. Para a amplificação dos fagos, 1,2 mL da cultura de células E. coli ER2738 em fase early-log (OD6oonm~0,3) foram distribuídos em cada poço de uma placa deepwell. Com palitos de dente esterilizados, 96 colônias azuis foram retiradas da placa de Petri e transferidas para a placa de cultura. A cada poço, apenas uma colônia de fago foi adicionada, totalizando 96 colônias na placa. A mesma foi vedada e incubada por 5 h, sob agitação constante e a 37°C. Após a incubação, a placa foi centrifugada por 20 min a 2.250 x g, sendo o sobrenadante transferindo para outra placa. A essa 2a placa, foi adicionado PEG/NaCI (1/6 do volume total do sobrenadante), sendo a mesma incubada por 14 h e a 4°C. Após, a placa foi centrifugada por 1 h, o sobrenadante foi retirado e o precipitado foi ressuspendido em tampão iodeto (10 mM de Tris HCI pH 8.0, 1 mM de EDTA e 4 M de Nal). As placas foram agitadas vigorosamente e, em seguida, adicionou-se etanol absoluto. Após uma incubação de 10 min, as placas foram centrifugadas (2.250 x g a 4°C e por 10 min), sendo o sobrenadante descartado. O precipitado contendo o DNA foi lavado com 500 μL de etanol 70% e novamente centrifugado. Finalmente, o DNA foi diluído em 20 μL de água ultra-pura e sua qualidade foi avaliada após uma corrida eletroforética realizada em gel de agarose 0,8%, corado com uma solução de brometo de etídio.
[044] Sequenciamento dos clones de bacteriófagos selecionados - A reação de sequenciamento utilizando o DNA dos 96 clones selecionados foi realizada com 500 ng do DNA de cada fago, 5 pmol do Primer 96 gill (5'-OH CCC TCA TAG TTA GCG TAA CG-3’-Biolabs) e o pré-mix (DYEnamic ET Dye Terminator Cycle Kit-Amersham Biosciences). A reação de 35 ciclos ocorreu em um termociclador de placas, nas seguintes condições: desnaturação a 95°C por 20 seg, anelamento a 58°C por 15 seg e extensão a 60°C por 60 seg. Os amplicons gerados da reação de sequenciamento foram precipitados com 1 pL de acetato de amónio e 27,5 pL de etanol absoluto. A placa foi centrifugada por 45 min a 2.432 x g e o sobrenadante descartado. Adicionou-se 150 pL de etanol 70% ao precipitado e o material foi centrifugando novamente por 10 min a 2.432 x g, sendo o sobrenadante descartado. A placa permaneceu invertida sobre um papel toalha e nesta posição foi centrifugada a 486 x g, durante 1 min. Em seguida, a placa foi coberta com papel alumínio, permanecendo por 5 min, para a evaporação completa do etanol remanescente. O precipitado foi ressuspendido em tampão de diluição (DYEnamic ET Dye Terminator Cycle Kit-Amersham Biosciences) e o sequenciamento foi realizado no sequenciador automático MegaBace 1000 (Amersham Biosciences). A dedução in silico das sequências de aminoácidos, para a identificação dos peptídeos exógenos, foi realizada pelo programa DNA2PRO12, que é designado para a dedução de sequências de insertos das bibliotecas da New England Biolabs fPh.D.-12TM ou Ph.D.-C7CTM), como de outras bibliotecas de interesse que contenham as sequências inicial e final do vetor. O programa automaticamente localiza a posição do inserto, traduz o mesmo e indica os possíveis erros na tradução (tais como códons inesperados ou erros na sequência próxima). As sequências que não puderam ser traduzidas pelo programa foram analisadas manualmente.
[045] Dos 96 clones coletados, 48 tiveram suas sequências recuperadas e seus DNAs foram extraídos e armazenados.
[046] Os 48 clones sequenciados foram individualizados e testados no sorodiagnóstico da LC em experimentos de ELISA, com o propósito de selecionar os bacteriófagos específicos para o sorodiagnóstico da doença.
[047] Para tal, placas de ELISA (Jet Biofil) foram sensibilizadas por 16 h a 37°C com 100 μL de uma solução contendo 1x109 fagos de cada clone, sendo diluídos em tampão carbonato/bicarbonato pH 9,6. Após, as placas foram lavadas por 3 vezes com solução de lavagem (PBS 1x e Tween 20 0,05%) e bloqueadas com a solução de bloqueio (BSA 5% diluída em PBS 1x) por 1 h a 37°C. Após, as placas foram lavadas 5 vezes com solução de lavagem e amostras contendo um pool de soros de pacientes com LC (pool positivo) e um pool de soros de indivíduos sadios residentes em área não-endêmica (pool negativo) foram adicionadas na diluição de 1:100 em solução de bloqueio (BSA 5% diluída em PBS 1x). A reação ocorreu por 1 h a 37°C. Após, as placas foram lavadas 5 vezes com a solução de lavagem e o anticorpo anti-lgG humano conjugado à peroxidase (Sigma; diluído 1:5.000 em tampão de incubação) foi acrescentado. A reação foi desenvolvida pela adição de 100 μL de uma solução composta por orto-fenilenodiamino (0.33 mg/mL), 4 μL de H2O2 e 10 mL de tampão citrato/fosfato, pH 5.0. Após 30 min de incubação ao abrigo da luz, a reação foi interrompida pela adição de 25 μL de ácido sulfúrico 2 N. A leitura das absorbâncias foi realizada no comprimento de onda de 492 nm, em leitor de ELISA (Molecular Devices, Spectra Max Plus, Canada).
[048] As reações individuais dos 48 clones frente às amostras de soro dos pacientes com LC e dos indivíduos sadios são mostradas nas Tabelas 1 e 2, respectivamente. Na Tabela 3 é mostrada a razão entre os valores de absorbância obtidos com os pools de soros positivo e negativo, para cada clone avaliado.
[049] Tendo em vista a razão Obtida usando o extrato proteico solúvel (SLA) de L. braziliensis como antígeno sensibilizador das placas de ELISA ter sido de 1,8, adotou-se esse valor como preditivo para a seleção dos clones de bacteriófagos específicos para o diagnóstico de LC, de forma que os clones que apresentassem razão entre os valores obtidos usando o pool de soro positivo e os valores obtidos usando o pool de soro negativo igual ou superior a 1,8 seriam selecionados.
[050] Os resultados levaram à identificação de 6 clones de bacteriófagos específicos para o sorodiagnóstico da leishmaniose cutânea humana. As sequências desses 6 clones são mostradas na Tabela 4.
[051] Tabela 1: Resultados das absorbâncias encontradas para cada clone de fago testado em reação com um pool de soros constituídos por amostras de pacientes com LC (positivo). O resultado obtido usando um clone de fago selvagem, como controle, foi utilizado. Tal clone não expressa peptídeos exógenos de interesse, e serve como controle de fago. O valor considerado “real” foi obtido pela diferença encontrada entre o valor de absorbância encontrada para cada clone menos o valor obtido pela reação do fago selvagem com o pool de soros positivos. Como os testes de ELISA foram realizados no mesmo dia e ao mesmo tempo, o valor encontrado para o clone selvagem foi único.
[052] Tabela 2: Resultados das absorbâncias encontradas para cada clone de fago testado em reação com um pool de soros constituídos por amostras de indivíduos sadios (negativo). O resultado obtido usando um clone de fago selvagem, como controle, foi utilizado. Tal clone não expressa peptídeos exógenos de interesse, e serve como controle de fago. O valor considerado “real” foi obtido pela diferença encontrada entre o valor de absorbância encontrada para cada clone menos o valor obtido pela reação do fago selvagem com o pool de soros negativos. Como os testes de ELISA foram realizados no mesmo dia e ao mesmo tempo, o valor encontrado para o clone selvagem foi único.
[053] Tabela 3: Razão entre os valores reais de absorbância para cada clone de fago avaliado. A razão foi determinada pela divisão entre os valores de reação com os pools de soros positivos e negativos, para cada clone avaliado. O SLA L braziliensis foi usado como controle. Os clones que apresentaram razão maior ou igual à encontrada para o SLA (1,8), foram selecionados (*).
[054] Pode-se observar que, dos 48 clones avaliados, 6 foram reconhecidos, com maiores valores de absorbâncias, pelos soros de pacientes com LC em relação ao grupo controle. Os valores da razão das absorbâncias entre os resultados obtidos usando pools de soros positivos e negativos de tais clones foram maiores ou iguais ao encontrado para o uso do SLA L. braziliensis, esse, com índice de razão de 1,8. As sequências dos 6 peptídeos expressos por cada um dos 6 clones selecionados estão apresentadas na Tabela 4.
[055] Tabela 4: Sequência dos 6 peptídeos específicos para o sorodiagnóstico da LC humana.
[056] Os 6 clones de bacteriófagos (A3, A4, B1, C4, E3 e E4) foram testados usados no sorodiagnóstico por ELISA para a LC humana. Foram utilizadas amostras de soros de indivíduos não-infectados residentes em área nâo-endêmica da doença, n=40; soros de pacientes com doença de Chagas, DC, n=20; com esquistossomose, n=15; ou leishmaniose visceral, LV, n=50; além dos soros de pacientes com leishmaniose cutânea, LC. Os resultados obtidos estão representados na Tabela 5.
[057] Tabela 5: Resultados de análises sorológicas obtidas usando os clones de bacteriófagos selecionados para o sorodiagnóstico da leishmaniose cutânea humana. Abreviaturas: Se: sensibilidade. Sp: especificidade. J: índice Youden. VPP: valor preditivo positivo. VPN: valor preditivo negativo. FS: fago selvagem.
[058] Na análise dos resultados, observa-se que todos os 6 clones apresentaram 100% de sensibilidade e especificidade para detectar pacientes com LC por meio dos ensaios sorológicos e, dessa forma, apresentam-se como novos antígenos para compor um método e um kit para diagnóstico da LC humana.
Claims (11)
1. Método para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana, caracterizado por compreender as seguintes etapas: a) exposição de uma amostra ao peptídeo definido pela sequência de aminoácidos SEQ ID No 1, ou a pelo menos um clone de bacteriófagos expressando o peptídeo definido pela sequência de aminoácidos SEQ ID No 1, estando tal peptídeo ou bacteriófago ligado a um suporte sólido ou a um carreador; b) adição de um anticorpo secundário ou uma proteína, que estejam conjugados a uma enzima ou a um marcador e que se liguem aos anticorpos da amostra da etapa (a); c) detecção dos anticorpos específicos para leishmaniose cutânea humana na amostra citada na etapa (a), utilizando- se reagentes capazes de detectar a enzima ou o marcador citados na etapa (b).
2. Método para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado por, na etapa “a”, as amostras utilizadas serem selecionadas do grupo compreendendo sangue, soro, plasma e/ou outro fluído corporal.
3. Método para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado por, na etapa “b”, o anticorpo ser selecionado do grupo compreendendo IgG, IgM, IgA, IgE e/ou respectivas subclasses.
4. Método para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado por, na etapa “b”, a proteína ser a Proteína A e/ou Proteína G.
5. Método para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado por, na etapa “b”, a enzima ser selecionada do grupo compreendendo peroxidase, fosfatase alcalina, beta-galactosidase, urease, xantina oxidase, glicose oxidase e penicilinase.
6. Método para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado por, na etapa “b”, o marcador ser selecionado do grupo compreendendo enzimas, radioisótopos, biotina, cromóforos, fluoróforos e quimioluminescentes.
7. Método para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado por, na etapa “c”, a detecção do anticorpo secundário ou proteína especificamente ligados aos anticorpos anti-leishmania ser feita utilizando reagentes selecionados do grupo compreendendo substratos cromógenos que sejam reconhecidos por alguma das enzimas da reivindicação 5 ou algum dos marcadores da reivindicação 6.
8. Kit para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana, caracterizado por compreender: a) suporte sólido ou carreador contendo o peptídeo sintético definido pela sequência de aminoácidos SEQ ID No 1 ou pelo menos um clone de bacteriófago expressando o peptídeo definido pela sequência de aminoácidos SEQ ID No1; b) anticorpo secundário ou uma proteína, conjugados a uma enzima ou a um marcador; c) reagente para detectar a enzima ou marcador.
9. Kit para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana, de acordo com a reivindicação 8, caracterizado pelo suporte sólido ser selecionado do grupo de materiais compreendendo nitrocelulose, nylon, látex, polipropileno e/ou polistireno.
10. Kit para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana, de acordo com a reivindicação 8, caracterizado pelos anticorpos secundários, proteínas, enzimas, marcadores e reagentes serem selecionados dos grupos definidos nas reivindicações 3 a 7.
11. Uso do peptídeo definido pela SEQ ID No1, caracterizado por ser no diagnóstico e/ou em kits para diagnóstico de leishmaniose cutânea humana.
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