RU2603255C9 - Strain a №2155/baikal/2013 of murrain virus aphtae epizooticae type a for control of antigenic and immunogenic activity and to produce biopreparations for diagnostics and specific prevention of murrain type a - Google Patents

Strain a №2155/baikal/2013 of murrain virus aphtae epizooticae type a for control of antigenic and immunogenic activity and to produce biopreparations for diagnostics and specific prevention of murrain type a Download PDF

Info

Publication number
RU2603255C9
RU2603255C9 RU2015115872A RU2015115872A RU2603255C9 RU 2603255 C9 RU2603255 C9 RU 2603255C9 RU 2015115872 A RU2015115872 A RU 2015115872A RU 2015115872 A RU2015115872 A RU 2015115872A RU 2603255 C9 RU2603255 C9 RU 2603255C9
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
virus
strain
type
foot
murrain
Prior art date
Application number
RU2015115872A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2603255C1 (en
Inventor
Дмитрий Анатольевич Лозовой
Алексей Владимирович Мищенко
Светлана Ревдитовна Кременчугская
Алексей Владимирович Щербаков
Дмитрий Валерьевич Михалишин
Тамара Константиновна Майорова
Наталия Николаевна Луговская
Ольга Сергеевна Румянцева
Вячеслав Иванович Диев
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ")
Priority to RU2015115872A priority Critical patent/RU2603255C9/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2603255C1 publication Critical patent/RU2603255C1/en
Publication of RU2603255C9 publication Critical patent/RU2603255C9/en

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/125Picornaviridae, e.g. calicivirus
    • A61K39/135Foot- and mouth-disease virus
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56966Animal cells
    • G01N33/56977HLA or MHC typing

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: veterinary science.
SUBSTANCE: invention relates to veterinary virology and biotechnology and concerns new murrain virus strain Aphtae epizooticae type A family of Picornaviridae, genus Aphtovirus, deposited in collection of FGBU “VNIIZZH” under registration number murrain strain A No. 2155/Baikal/2013 (industrial). Presented strain is reproduced in monolayer swine kidney cell culture (SC), continuous kidney cell cultures of siberian mountain goat (PSGK-30), VNK-21 and IB-RS-2 during 18÷24 hours of incubation of virus yield in said cell cultures reaches levels of 6.33÷7.5 lg TCD50/cm3. Multiplicity of infection (1÷10 TCD/cell) causes CPP after 5 hours, maintaining initial characteristics, when passaging in cell cultures throughout 5 passages.
EFFECT: presented strain may be used for control of antigenic and immunogenic activity and to produce biopreparations for diagnosis and specific prevention of murrain type A.
1 cl, 6 tbl, 7 ex

Description

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии, в частности к новому штамму вируса ящура Aphtae epizooticae, и может быть использовано для контроля антигенной и иммуногенной активности противоящурных вакцин, а также при разработке и изготовлении средств диагностики и специфической профилактики ящура типа А.The invention relates to the field of veterinary virology and biotechnology, in particular to a new strain of foot and mouth disease virus Aphtae epizooticae, and can be used to control antigenic and immunogenic activity of FMD vaccines, as well as in the development and manufacture of diagnostic tools and specific prevention of foot and mouth disease type A.

Ящур - это острое, контагиозное, вирусное заболевание парнокопытных животных, проявляющееся лихорадкой, везикулярными (афтозными) поражениями слизистой оболочки ротовой полости, бесшерстных участков кожи головы, вымени, венчика, межкопытной щели и сопровождающееся нарушением движения. Для этого возбудителя характерна тенденция к широкому распространению и эпизоотическому течению. Болезнь сопровождается большими потерями молока, мяса и других видов животноводческой продукции, затрудняет коммерческие операции и хозяйственную деятельность. Многолетний опыт показывает, что при эндемичном ящуре снижаются доходы в молочном и мясном животноводстве на (%): 30÷40.Foot and mouth disease is an acute, contagious, viral disease of artiodactyl animals, manifested by fever, vesicular (aphthous) lesions of the mucous membrane of the oral cavity, hairless areas of the scalp, udder, corolla, inter-hoof gap and accompanied by impaired movement. This pathogen is characterized by a tendency to widespread and epizootic course. The disease is accompanied by large losses of milk, meat and other types of livestock products, complicates commercial operations and economic activity. Years of experience show that with endemic foot and mouth disease, revenues in dairy and beef cattle breeding are reduced by (%): 30–40.

Вирус ящура относится к семейству Picornaviridae, роду Aphtovirus. Он имеет 7 антигенных типов, большое количество подтипов и множество штаммов.The foot and mouth disease virus belongs to the family Picornaviridae, the genus Aphtovirus. It has 7 antigenic types, a large number of subtypes and many strains.

Возбудитель ящура обладает значительной антигенной вариабельностью штаммов в пределах одного серотипа, которая выявляется в различные временные промежутки и на разных территориях и зависит от видового состава восприимчивого поголовья, его иммунного статуса и множества других различных факторов. Антигенная изменчивость вируса ящура обусловлена заменами аминокислот в полипептидных фрагментах (антигенных эпитопах), экспонированных на поверхности капсидных белков.The causative agent of foot and mouth disease has significant antigenic variability of strains within the same serotype, which is detected at different time intervals and in different territories and depends on the species composition of the susceptible population, its immune status and many other various factors. The antigenic variability of foot and mouth disease virus is caused by amino acid substitutions in polypeptide fragments (antigenic epitopes) exposed on the surface of capsid proteins.

Сдвиги антигенного спектра, соответствующие обновлению структуры нового полевого штамма, могут варьировать от незначительных, улавливаемых моноклональными антителами, до существенных, регистрируемых с помощью традиционных поликлональных иммуноглобулинов. Существенные изменения антигенных характеристик природного штамма с большой вероятностью вызывают ослабление специфического иммунитета, индуцированного негомологичным антигеном. Они вызывают также затруднения штаммоспецифической диагностики.The shifts of the antigenic spectrum corresponding to the renewal of the structure of a new field strain can vary from insignificant ones captured by monoclonal antibodies to significant ones recorded using traditional polyclonal immunoglobulins. Significant changes in the antigenic characteristics of a natural strain are very likely to weaken specific immunity induced by a non-homologous antigen. They also cause strain-specific diagnosis difficulties.

В результате возникает необходимость создания новых средств диагностики и специфической иммунопрофилактики.As a result, there is a need to create new diagnostic tools and specific immunoprophylaxis.

Известны штаммы вируса ящура типа А, использовавшиеся в качестве производственных на территории СССР и РФ в течение последних 50 лет.Type A foot and mouth disease virus strains have been used as production strains in the USSR and the Russian Federation for the past 50 years.

К ним относятся следующие штаммы: А7 №103, выделенный в 1962 году в Куйбышевской области; А7 №2, выделенный в 1965 году в Таджикской ССР; А №717/73, выделенный в 1973 году в Ставропольском крае.These include the following strains: A 7 No. 103, isolated in 1962 in the Kuibyshev region; A 7 No. 2, allocated in 1965 in the Tajik SSR; And No. 717/73, allocated in 1973 in the Stavropol Territory.

Указанные штаммы использовали для получения диагностикумов и противоящурных вакцин, применявшихся в различных регионах страны.These strains were used to obtain diagnosticums and FMD vaccines used in various regions of the country.

Однако после ликвидации ящура, вызываемого близкими им в антигенном отношении штаммами вируса, они были сняты с производства и в настоящее время поддерживаются лишь в музее штаммов ФГБУ «ВНИИЗЖ» [1, 2, 3].However, after the elimination of foot-and-mouth disease caused by strains of the virus that are closely related to them in antigenicity, they were discontinued and are currently only supported in the Museum of Strains of the Federal State Budget Scientific Institution VNIIZZh [1, 2, 3].

Известен штамм №550 вируса ящура А22, выделенный в 1964 году в Азербайджане и используемый в Российской Федерации в качестве производственного при изготовлении средств специфической профилактики и диагностики, применяемых на всей территории России и в странах постсоветского пространства.The known strain No. 550 of the foot and mouth disease virus A 22 , isolated in 1964 in Azerbaijan and used in the Russian Federation as an industrial one in the manufacture of specific prophylaxis and diagnostics, is used throughout Russia and in the countries of the former Soviet Union.

В 1990-2000-х годах в Центральной Азии и на Ближнем Востоке доминировали две генетические линии вируса ящура типа А: линия А/Иран/96 (к этой генетической группе относится российский производственный штамм А/Армения/98) и А/Иран/2005. Генетическая линия А/Иран/99 не получила такого широкого распространения, как две упомянутые выше. Штаммы из группы А/Иран/99 и А/Иран/96 не входят в настоящее время в первоочередной перечень рекомендуемых Всемирной референтной лабораторией МЭБ/ФАО по ящуру вакцинных штаммов, тогда как штамм А/Иран/2005 (А/Турция/06) относится к высоко приоритетным [4].In the 1990-2000s, two genetic lines of type A foot and mouth disease virus dominated in Central Asia and the Middle East: line A / Iran / 96 (the Russian production strain A / Armenia / 98 belongs to this genetic group) and A / Iran / 2005 . Genetic line A / Iran / 99 is not as widespread as the two mentioned above. The strains from group A / Iran / 99 and A / Iran / 96 are not currently included in the priority list of vaccine strains recommended by the OIE / FAO World Reference Laboratory for foot and mouth disease, while strain A / Iran / 2005 (A / Turkey / 06) is to high priority [4].

Известен штамм вируса ящура Aphtae epizooticae А №1707 «Армения-98» для изготовления диагностических и вакцинных препаратов [5].A known strain of foot and mouth disease virus Aphtae epizooticae A No. 1707 "Armenia-98" for the manufacture of diagnostic and vaccine preparations [5].

Выделение в 1998 г. в хозяйстве Охчик Амассийского района Армении от КРС вируса ящура типа А и изучение его филогенетического родства показало, что при сравнительном исследовании первичной структуры гена VP1 штамма вируса ящура типа А №1707 «Армения-98» с производственными штаммами и полевыми изолятами установлено, что изоляты Армения/98 идентичны между собой и родственны штаммам типа А Турция/97, Турция/98 и Иран/96. Также установлено, что исследованные изоляты существенно отличаются от всех выделенных ранее изолятов, в том числе и от вируса подтипа А22 (18% различий), куда относится и используемый для производства средств диагностики и специфической профилактики штамм А22 №550.Isolation of type A FMD virus from cattle in the Amassi region of Armenia from cattle in 1998 and a study of its phylogenetic relationship showed that in a comparative study of the primary structure of the VP 1 gene of FMD virus strain A No. 1707 “Armenia-98” with production strains and field isolates found that isolates Armenia / 98 are identical to each other and are related to type A strains Turkey / 97, Turkey / 98 and Iran / 96. It was also found that the studied isolates significantly differ from all previously isolated isolates, including the A 22 subtype virus (18% difference), which includes strain A 22 No. 550 used for the production of diagnostic tools and specific prophylaxis.

Производственный штамм А №1707 «Армения-98» применяли в составе противоящурных вакцин в буферной зоне Закавказья.Production strain A No. 1707 “Armenia-98” was used as part of FMD vaccines in the buffer zone of Transcaucasia.

Известен относящийся к этой же линии выделенный в 1999 г. от больных коров в частном секторе села Уде Адигенского района Республики Грузия штамм А (Грузия) 1999/№1721 [6].A strain A (Georgia) 1999 / No. 1721 isolated from the same line, isolated in 1999 from sick cows in the private sector of the village of Ude in the Adigen region of the Republic of Georgia, is known [6].

С 2003 года на территории Ирана был выделен изолят вируса ящура типа А, значительно отличающийся от ранее изученных штаммов этого типа. В течение 2005-2006 гг. ящур типа А получил широкое распространение в странах Западной Азии - Иране, Турции, Саудовской Аравии и Пакистане. В феврале 2006 года ящур типа А линии Иран/05 попал во Фракию - европейскую часть Турции, которая граничит с Болгарией и Грецией. Проведение 100% вакцинации всех жвачных с применением штамма А22 во Фракии в феврале-марте 2006 г. предотвратило распространение ящура в соседние Грецию и Болгарию, однако через 3-4 месяца появились свежие случаи заболевания [7].Since 2003, type A foot and mouth disease virus isolate has been isolated in Iran, significantly different from previously studied strains of this type. During 2005-2006 Type A foot and mouth disease has become widespread in West Asia - Iran, Turkey, Saudi Arabia and Pakistan. In February 2006, Type A foot and mouth disease of the Iran / 05 line came to Thrace, the European part of Turkey, which borders Bulgaria and Greece. The 100% vaccination of all ruminants with the use of strain A 22 in Thrace in February-March 2006 prevented the spread of foot and mouth disease to neighboring Greece and Bulgaria, but fresh cases appeared after 3-4 months [7].

Известен штамм вируса ящура А 2045/Киргизия/2007, выделенный в Киргизской Республике от больной ящуром телки в 2007 г., принадлежащий к генетической линии, получившей название А Иран/2005 [8].A known foot-and-mouth disease strain A 2045 / Kyrgyzstan / 2007, isolated in the Kyrgyz Republic from a foot-and-mouth disease heifer in 2007, belongs to a genetic line called A Iran / 2005 [8].

Недостатки вышеуказанных штаммов в том, что приготовленные на их основе вакцины обеспечивают эффективную защиту животных только против заражения гомологичным вирусом.The disadvantages of the above strains are that vaccines prepared on their basis provide effective protection of animals only against infection with a homologous virus.

Штамм, относящийся к настоящему изобретению, ранее на территории РФ не встречался.The strain related to the present invention, previously in the territory of the Russian Federation did not occur.

Вспышка ящура, вызванная вирусом типа А, была зарегистрирована в марте 2013 г. во дворах жителей поселка Молодежный сельское поселение «Молодежнинское» Приаргунского района в 25 км от границы с Китаем в буферной зоне, где КРС и MPC с профилактической целью вакцинировали против ящура типа О, А, Азия-1. Из имевшихся у жителей сельского поселения 30577 голов КРС разного возраста, MPC - 46591 голов, свиней - 19164 голов, заболело 378 голов КРС (1,5%), 8 голов свиней.An outbreak of foot and mouth disease caused by type A virus was recorded in March 2013 in the yards of the residents of the village of Molodezhny, the rural village of Molodezhninsky, Priargunsky District, 25 km from the border with China, in the buffer zone, where cattle and MPC were vaccinated against type O foot and mouth disease , A, Asia-1. Out of 30,577 head of cattle of different ages held by the inhabitants of the rural settlement, MPC - 46591 heads, pigs - 19164 heads, 378 heads of cattle (1.5%), 8 pigs fell ill.

Жвачные животные в 2013 году были иммунизированы вакциной, содержащей производственный штамм А22 №550.Ruminants in 2013 were immunized with a vaccine containing production strain A 22 No. 550.

Это свидетельствовало о недостаточной эффективности вакцины из указанного производственного штамма.This indicated the lack of effectiveness of the vaccine from the specified production strain.

В связи с этим возникла необходимость получить новый производственный штамм из эпизоотического вируса ящура серотипа А для обеспечения безопасности территории России и сопредельных государств от этого возбудителя.In this regard, it became necessary to obtain a new production strain from the epizootic virus of foot and mouth disease serotype A to ensure the safety of the territory of Russia and neighboring states from this pathogen.

Задача, на решение которой направлено настоящее изобретение, заключается в расширении арсенала производственных штаммов вируса ящура серотипа А, обладающих высокой инфекционной, антигенной и иммуногенной активностью в нативном виде и сохраняющих антигенную и иммуногенную активность после инактивации, пригодных для контроля антигенной и иммуногенной активности вакцин, изготовления чувствительных и высокоспецифичных диагностикумов и высокоиммуногенных вакцинных препаратов, гомологичных эпизоотическому вирусу, появившемуся на территории России.The problem to which the present invention is directed, is to expand the arsenal of production strains of foot and mouth disease virus serotype A, which have high infectious, antigenic and immunogenic activity in their native form and retain antigenic and immunogenic activity after inactivation, suitable for controlling the antigenic and immunogenic activity of vaccines, manufacturing sensitive and highly specific diagnosticums and highly immunogenic vaccine preparations homologous to the epizootic virus that appeared on ter Ithor Russia.

Указанная задача решена получением штамма А №2155/Забайкальский/2013 (авторское наименование) вируса ящура типа А для контроля антигенной и иммуногенной активности, а также для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа А.This problem was solved by obtaining strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 (author's name) of type A foot and mouth disease virus for monitoring antigenic and immunogenic activity, as well as for the manufacture of biological products for the diagnosis and specific prevention of foot and mouth disease type A.

Вирусный изолят, послуживший источником для получения штамма А №2155/Забайкальский/2013, был выделен в марте 2013 года от больного КРС в поселке Молодежный Приаргунского района Забайкальского края (экспертиза №2155). Штамм А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура типа А получен путем последовательных пассажей на чувствительных гетеро- и гомологичных культурах клеток.The viral isolate, which served as the source for strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013, was isolated in March 2013 from a cattle patient in the village of Molodezhny, Priargunsky District, Trans-Baikal Territory (examination No. 2155). Strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 of type A foot and mouth disease virus was obtained by successive passages on sensitive hetero- and homologous cell cultures.

Штамм А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура типа А депонирован 25 августа 2013 года в Коллекцию штаммов микроорганизмов Федерального государственного бюджетного учреждения «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»), под регистрационным номером (ссылкой): штамм вируса ящура А №2155/Забайкальский/2013 (производственный, контрольный, КРС).Strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013, type A foot-and-mouth disease virus was deposited on August 25, 2013 to the Collection of microorganism strains of the Federal State Budgetary Institution “Federal Center for Animal Health” (FSBI “ARRIAH”), under registration number (link): foot and mouth disease virus strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 (production, control, cattle).

По сравнению с известными штаммами штамм А №2155/Забайкальский/2013 обладает более высокой инфекционной, антигенной и иммуногенной активностью в нативном виде и после инактивации.Compared with the known strains, strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 has a higher infectious, antigenic and immunogenic activity in its native form and after inactivation.

Экспериментально подтверждена возможность использования вируса ящура А №2155/Забайкальский/2013 для контроля антигенной и иммуногенной активности, а также для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа А.The possibility of using foot-and-mouth disease virus No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 to control antigenic and immunogenic activity, as well as for the manufacture of biological products for the diagnosis and specific prevention of foot-and-mouth disease type A, has been experimentally confirmed.

Сущность изобретения пояснена на дендрограмме, отражающей филогенетические взаимоотношения штамма вируса ящура А №2155/Забайкальский/2013 с эпизоотическими и вакцинными штаммами вируса ящура серологического типа А. Дендрограмма основана на сравнении полных нуклеотидных последовательностей гена VP1.The invention is explained on a dendrogram reflecting the phylogenetic relationship of a strain of foot and mouth disease virus A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 with epizootic and vaccine strains of foot and mouth disease virus of serological type A. The dendrogram is based on a comparison of the complete nucleotide sequences of the VP1 gene.

Сущность изобретения пояснена в перечне последовательностей, в котором:The invention is explained in the list of sequences in which:

SEQ ID NO: 1 представляет последовательность нуклеотидов гена белка VP1 штамма А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура типа А;SEQ ID NO: 1 represents the nucleotide sequence of the VP1 protein gene of strain A No. 2155 / Transbaikal / 2013 of type A foot and mouth disease virus;

SEQ ID NO: 2 представляет последовательность аминокислот гена белка VP1 штамма А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура типа А.SEQ ID NO: 2 represents the amino acid sequence of the VP1 protein gene of strain A No. 2155 / Transbaikal / 2013 of type A foot and mouth disease virus.

Штамм А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура типа А характеризуется следующими признаками и свойствами.Strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 of type A foot and mouth disease virus is characterized by the following features and properties.

Морфологические признакиMorphological features

Штамм А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура типа А относится к семейству Picornaviridae, роду Aphtovirus, серотипу А и обладает морфологическими признаками, характерными для возбудителя ящура: форма вириона икосаэдрическая, размер 23÷25 нм. Вирион состоит из молекулы РНК, заключенной в белковую оболочку. Белковая оболочка состоит из 32 капсомеров, расположенных в кубической симметрии.Strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 of type A foot and mouth disease virus belongs to the family Picornaviridae, genus Aphtovirus, serotype A and has morphological characteristics characteristic of the causative agent of foot and mouth disease: the form of the virion is icosahedral, size 23 ÷ 25 nm. Virion consists of an RNA molecule enclosed in a protein coat. The protein shell consists of 32 capsomeres arranged in cubic symmetry.

Антигенные свойстваAntigenic properties

По своим антигенным свойствам штамм А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура относится к серотипу А. Вирус стабильно нейтрализуется гомологичной антисывороткой. Вирус не проявляет гемагглютинирующей активности (ГА-активности). У переболевших животных в сыворотке крови образуются антитела, выявляемые в иммуноферментном анализе (ИФА), и реакции микронейтрализации (РМН).According to its antigenic properties, strain A No. 2155 / Transbaikal / 2013 of foot and mouth disease virus belongs to serotype A. The virus is stably neutralized by homologous antiserum. The virus does not show hemagglutinating activity (GA activity). In sick animals, antibodies are formed in the blood serum that are detected in an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and microneutralization reactions (PMN).

При гипериммунизации морских свинок концентрированный антиген из инактивированного вируса ящура типа А №2155/Забайкальский/2013 индуцирует образование вирусспецифических антител, выявляемых в РСК в разведении 1:40.During hyperimmunization of guinea pigs, the concentrated antigen from inactivated foot and mouth disease virus type A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 induces the formation of virus-specific antibodies detected in CSC at a 1:40 dilution.

Методом нуклеотидного секвенирования была определена первичная структура гена VP1 вируса ящура типа А №2155/Забайкальский/2013 и выведена первичная структура белка VP1. Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей показал, что штамм вируса ящура типа А №2155/Забайкальский/2013 значительно отличается от производственных штаммов типа А. Степень нуклеотидных различий последовательностей штамма А №2155/Забайкальский/2013 со штаммами вируса ящура серологического типа А составила: А22 №550 - 21,27%, А22/Ирак/64 - 20,46%, А/Иран/96 - 22,80%, А/Турция/06 - 22,72%, А/Иран/05 - 22,93%.The nucleotide sequencing method was used to determine the primary structure of the type 1 FMD virus VP1 gene of FMD virus No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 and the primary structure of the VP1 protein was derived. A comparative analysis of the nucleotide sequences showed that the type A foot-and-mouth disease virus strain No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 significantly differs from the production strains of type A. The degree of nucleotide differences in the sequences of strain A No. 215 / Zabaykalsky / 2013 with the FMD virus strains of serological type A was: A 22 No. 550 - 21.27%, A 22 / Iraq / 64 - 20.46%, A / Iran / 96 - 22.80%, A / Turkey / 06 - 22.72%, A / Iran / 05 - 22.93 %

Таким образом, филогенетический анализ показал, что штамм А №2155/Забайкальский/2013 принадлежит к генетической линии Юго-Восточная Азия 97 (Sea-97) топотипа Азия.Thus, phylogenetic analysis showed that strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 belongs to the genetic line of Southeast Asia 97 (Sea-97) of the Asia topotype.

Антигенное родство штамма ВЯ А №2155/Забайкальский/2013 с имеющимися производственными штаммами ВЯ типа А исследовано серологическим методом в перекрестной реакции микронейтрализации (РМН). Штамм А №2187/Кути/2013 антигенно отличается от производственных штаммов А22 №550, А22/Ирак/64 А/Иран/97, А/Киргизия/07 (А/Иран/05). Штамм ВЯ А №2155/Забайкальский/2013 имеется слабо выраженное антигенное родство со штаммом А/Турция/06 (А/Иран/05).The antigenic affinity of strain VYA A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 with existing production strains of VYA A was studied by the serological method in the cross microneutralization reaction (RMN). Strain A No. 2187 / Kuti / 2013 antigenically differs from production strains A 22 No. 550, A 22 / Iraq / 64 A / Iran / 97, A / Kyrgyzstan / 07 (A / Iran / 05). Strain VIA A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 has a weak antigenic relationship with strain A / Turkey / 06 (A / Iran / 05).

Результаты исследований в РМН представлены в таблице 1. Антигенное соответствие (r1) составило для А22 №550 - 0,16, А22/Ирак/64 - 0,15, А/Иран/97 - 0,002, А/Турция/06 - 0,34, А №2045/Киргизия/07 - 0,13. При значении r1≥0,3 полевой изолят и производственный штамм являются близкородственными, и вакцина из производственного штамма будет защищать от эпизоотического вируса, при значении r1<0,3 полевой изолят отличается от производственного штамма, и вакцина из данного штамма не защищает от эпизоотического вируса [9, 10].The results of studies in the RMN are presented in table 1. Antigenic compliance (r 1 ) was for A 22 No. 550 - 0.16, A 22 / Iraq / 64 - 0.15, A / Iran / 97 - 0.002, A / Turkey / 06 - 0.34, A No. 2045 / Kyrgyzstan / 07 - 0.13. With a value of r 1 ≥0.3, the field isolate and the production strain are closely related, and the vaccine from the production strain will protect against epizootic virus, with a value of r 1 <0.3 the field isolate is different from the production strain, and the vaccine from this strain does not protect against epizootic virus [9, 10].

Биотехнологические характеристикиBiotechnological characteristics

Штамм А №2155/Забайкальский/2013 репродуцируется в первично-трипсинизированной монослойной культуре клеток почки свиньи (СП), перевиваемых культурах клеток почки сибирского горного козерога (ПСГК-30), BHK-21 и IB-RS-2, и в течение 18÷24 часов инкубирования вируса в указанных культурах клеток накапливается от 6,33 до 7,5 lg ТЦД50/см3. При высокой множественности заражения (1-10 ТЦД/клетка) вызывает ЦПД через 5 часов. Сохраняет исходные характеристики при пассировании в клеточных культурах на протяжении 10 пассажей (срок наблюдения).Strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 is reproduced in a primary trypsinized monolayer culture of pig kidney cells (SP), transplanted cultures of kidney cells of the Siberian mountain ibex (PSGK-30), BHK-21 and IB-RS-2, and for 18 ÷ 24 hours of incubation of the virus in these cell cultures accumulates from 6.33 to 7.5 lg TCD 50 / cm 3 . With a high multiplicity of infection (1-10 TCD / cell), it causes CPD after 5 hours. It retains its original characteristics when passaged in cell cultures for 10 passages (observation period).

Генотаксономическая характеристикаGenotaxonomic characteristic

Штамм А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура типа А является РНК-содержащим вирусом с молекулярной массой 7×106Д.Strain A No. 2155 / Trans-Baikal / 2013 type A foot and mouth disease virus is an RNA-containing virus with a molecular weight of 7 × 10 6 D.

Нуклеиновая кислота представлена одноцепочной линейной молекулой молекулярной массой 2,8×106Д. Вирион имеет белковую оболочку, состоящую из четырех основных белков VP1, VP2, VP3 и VP4. Липопротеиновая оболочка отсутствует.Nucleic acid is a single-chain linear molecule with a molecular weight of 2.8 × 10 6 D. The virion has a protein shell consisting of four basic proteins VP 1 , VP 2 , VP 3 and VP 4 . The lipoprotein membrane is absent.

Основным антигенным белком является VP1. В вирионе содержится приблизительно 31,5% РНК и 68,5% белка. Вирионная РНК является инфекционной и участвует в образовании белков-предшественников в инфицированных клетках. Предшественники, в свою очередь, расщепляются с образованием более стабильных структурных и неструктурных полипептидов вируса. Из 8 неструктурных полипептидов, накапливающихся в инфицированных клетках, один (VP66a) является РНК-зависимой РНК-полимеразой, участвующей в репликации РНК новых вирионов.The main antigenic protein is VP 1 . The virion contains approximately 31.5% RNA and 68.5% protein. Virionic RNA is infectious and is involved in the formation of precursor proteins in infected cells. The precursors, in turn, are cleaved to form more stable structural and non-structural virus polypeptides. Of the 8 non-structural polypeptides that accumulate in infected cells, one (VP 66a ) is an RNA-dependent RNA polymerase involved in RNA replication of new virions.

Физические свойстваPhysical properties

Масса вириона составляет 8,4×10-18 г. Коэффициент седиментации 146S в градиенте сахарозы. Плавучая плотность 1,45 г/см3. The virion mass is 8.4 × 10 −18 g. A sedimentation coefficient of 146S in the sucrose gradient. The floating density of 1.45 g / cm 3 .

Устойчивость к внешним факторамResistance to external factors

Штамм А №2155/Забайкальский/2013 устойчив к эфиру, хлороформу, фреону, ацетону и другим органическим растворителям и детергентам. Наиболее стабилен при рН 7,2÷7,6. Сдвиги рН как в кислую, так и в щелочную сторону ведут к инактивации вируса. Чувствителен к формальдегиду, УФ-облучению, γ-облучению, высоким температурам.Strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 is resistant to ether, chloroform, freon, acetone and other organic solvents and detergents. Most stable at pH 7.2 ÷ 7.6. PH shifts to both the acidic and alkaline sides lead to inactivation of the virus. It is sensitive to formaldehyde, UV radiation, γ-radiation, high temperatures.

Дополнительные признаки и свойстваAdditional features and properties

Иммуногенная активность - иммуногенен в составе инактивированной вакцины.Immunogenic activity - immunogen in the composition of an inactivated vaccine.

Антигенная активность - введение инактивированного антигена морским свинкам индуцирует образование вирусоспецифических антител.Antigenic activity - administration of an inactivated antigen to guinea pigs induces the formation of virus-specific antibodies.

Реактогенность - реактогенными свойствами не обладает.Reactogenicity - does not possess reactogenic properties.

Патогенность - патогенен для парнокопытных животных, новорожденных мышат, морских свинок.Pathogenicity - pathogenic for artiodactyl animals, newborn mice, guinea pigs.

Вирулентность - вирулентен для естественно-восприимчивых животных при контактном, аэрозольном и парентеральном заражении.Virulence - virulence for naturally susceptible animals with contact, aerosol and parenteral infection.

Стабильность - сохраняет исходные биологические свойства при пассировании в чувствительных биологических системах в течение 5 пассажей (срок наблюдения).Stability - retains the original biological properties when passaged in sensitive biological systems for 5 passages (observation period).

Сущность предлагаемого изобретения пояснена примерами его использования, которые не ограничивают объем изобретения. The essence of the invention is illustrated by examples of its use, which do not limit the scope of the invention.

Пример 1Example 1

Вирусный изолят, послуживший источником для получения штамма А №2155/Забайкальский/2013, был выделен в ФГБУ «ВНИИЗЖ» из проб афтозного материала, полученных в сентябре 2013 года от подозреваемого в заболевании ящуром КРС из сельского поселения Молодежный Приаргунского района Забайкальского края (экспертиза №2155/2013). Пробы афтозного материала поступили в ФГБУ «ВНИИЗЖ» 16 марта 2013 года.The viral isolate, which served as the source for strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013, was isolated from the VNIIZZh Federal State Budget Scientific Institution from samples of aphthous material obtained in September 2013 from cattle foot and mouth disease suspected of foot and mouth disease from the rural settlement of Youth Priargunsky district of the Transbaikal Territory (examination No. 2155/2013). Samples of aphthous material were received at the Federal State Budget Scientific Institution VNIIZZH on March 16, 2013.

При выделении вируса с целью получения его однородной популяции, обладающей оптимальными биотехнологическими свойствами, использовали комплекс биологических, вирусологических и биохимических методов, предусмотренных методическими указаниями по выявлению и идентификации штаммов вируса ящура [11].When isolating a virus in order to obtain a homogeneous population with optimal biotechnological properties, a complex of biological, virological, and biochemical methods was used, provided for by guidelines for identifying and identifying FMD virus strains [11].

Биологические и вирусологические методы включали выделение вируса, которое проводили на культуре первично трипсинизированных клеток СП, перевиваемых линиях клеток ПСГК-30, IB-RS-2 с последующей адаптацией (3 пассажа). Для постановки биопроб на первичных и перевиваемых культурах клеток их выращивали на соответствующих питательных средах, в стационарных условиях во флаконах с площадью поверхности 25 см2, отмывали от ростовой среды и заражали 10% суспензией афтозного материала (множественность заражения составляла 1÷10 ТЦД50 на клетку), приготовленной в растворе Хенкса с 0,5% гидролизата лактальбумина (ГЛА) и антибиотиками по стандартной рецептуре. Для удаления микрофлоры и балластных клеточных компонентов суспензию обрабатывали 10% хлороформа. После 30-минутного контакта при 37°C во флаконы вносили по 5 см3 поддерживающей среды и инкубировали при 37°C до появления ЦПД вируса. При наличии ЦПД (округление клеток, повышение их оптической плотности, дегенерация и отделение клеток от стекла) флаконы подвергали замораживанию-оттаиванию, очистке клеточной взвеси хлороформом и центрифугированию при 3000 g в течение 15 мин. Полученный вируссодержащий материал использовали для последующих пассажей и исследования в РСК на наличие вирусного антигена, при этом использовали коммерческие типоспецифические сыворотки, хранящихся в музее штаммов ФГБУ «ВНИИЗЖ». Вирус считался адаптированным к культурам клеток, если в течение 18÷24 часов проявлялось (%) 90÷100 ЦПД в монослое.Biological and virological methods included the isolation of the virus, which was carried out on a culture of primary trypsinized SP cells, transplanted PSGK-30, IB-RS-2 cell lines, followed by adaptation (3 passages). For bioassays on primary and transplantable cell cultures, they were grown on appropriate nutrient media, under stationary conditions in bottles with a surface area of 25 cm 2 , washed from the growth medium and infected with a 10% suspension of aphthous material (the multiplicity of infection was 1 ÷ 10 TCD 50 per cell ) prepared in a Hanks solution with 0.5% lactalbumin hydrolyzate (GLA) and antibiotics according to a standard formulation. To remove microflora and ballast cell components, the suspension was treated with 10% chloroform. After 30 minutes of contact at 37 ° C, 5 cm 3 of the support medium was added to the vials and incubated at 37 ° C until the appearance of the virus CPD. In the presence of CPD (rounding of cells, increasing their optical density, degeneration and separation of cells from glass), the bottles were subjected to freezing, thawing, purification of the cell suspension with chloroform and centrifugation at 3000 g for 15 min. The resulting virus-containing material was used for subsequent passages and studies in the CSC for the presence of a viral antigen, using commercial type-specific sera stored in the Museum of strains of the Federal State Budget Scientific Institution VNIIZZH. The virus was considered adapted to cell cultures if, within 18–24 hours, (%) 90–100 CPDs appeared in the monolayer.

Вирус, адаптированный к культурам клеток IB-RS-2, использовали для получения антигена для РСК.A virus adapted to IB-RS-2 cell cultures was used to produce antigen for CSC.

Эпизоотический изолят А №2155/Забайкальский/2013, адаптированный к культуре клеток ПСГК-30, был использован для заражения суспензии клеток ВНК-21 с целью получения антигена для изготовления экспериментальной серии вакцины, а также для гипериммунизации морских свинок и кроликов для использования в иммуноферментном анализе (ИФА).Epizootic isolate A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013, adapted to the PSGK-30 cell culture, was used to infect a suspension of BHK-21 cells in order to obtain antigen for the manufacture of an experimental vaccine series, as well as for hyperimmunization of guinea pigs and rabbits for use in enzyme immunoassay (IFA).

Результаты адаптации вируса к различным клеточным культурам представлены в таблице 2.The results of the adaptation of the virus to various cell cultures are presented in table 2.

Данные, приведенные в таблице 2, свидетельствуют о высокой адаптационной способности штамма А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура типа А к использованным клеточным культурам.The data shown in table 2 indicate the high adaptive ability of strain A No. 2155 / Transbaikal / 2013 of the disease of foot and mouth disease type A to the used cell cultures.

Изолированный с помощью перечисленных методов вирусный препарат был исследован в РСК с целью идентификации его типовой принадлежности (таблица 3). Проведена проверка штамма на отсутствие контаминации посторонними вирусами в ПЦР и ОТ-ПЦР.Isolated using the above methods, the viral preparation was studied in the CSC in order to identify its type affiliation (table 3). The strain was tested for the absence of contamination with extraneous viruses in PCR and RT-PCR.

Приведенные в таблице 3 результаты свидетельствуют о том, что в афтозном материале экспертизы А №2155/Забайкальский/2013 выявлен антиген вируса ящура типа А в разведении 1:2 в РСК. Контаминации бактериальной и грибной микрофлорой, микоплазмами и посторонними вирусами не обнаружено.The results shown in table 3 indicate that in the aphthous test material A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013, an FMD virus antigen of type A was detected at a 1: 2 dilution in CSC. No contamination with bacterial and fungal microflora, mycoplasmas and extraneous viruses was found.

Полученному штамму вируса ящура типа А присвоено авторское наименование: штамм А №2155/Забайкальский/2013.The resulting strain of FMD virus type A is assigned the copyright name: strain A No. 2155 / Trans-Baikal / 2013.

Пример 2Example 2

Для гипериммунизации морских свинок используют антиген из штамма А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура типа А, репродуцированный в монослойной культуре клеток ПСГК-30. Вируссодержащую суспензию концентрируют в 100 раз добавлением 8÷10% полиэтиленгликоля (ПЭГ) м.м. 6000, очищают от балластных примесей добавлением 10% хлороформа. Очищенный вирус инактивируют аминоэтилэтиленимином (АЭЭИ) в концентрации 0,025÷0,05% при значении рН 8,0÷8,3.For hyperimmunization of guinea pigs, the antigen from strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 of type A foot and mouth disease virus reproduced in a monolayer PSGK-30 cell culture is used. The virus-containing suspension is concentrated 100 times by adding 8 ÷ 10% polyethylene glycol (PEG) m.m. 6000, cleaned from ballast impurities by adding 10% chloroform. The purified virus is inactivated by aminoethylethyleneimine (AEEI) at a concentration of 0.025–0.05% at a pH of 8.0–8.3.

Инактивированный концентрат антигена в смеси с равным объемом масляного адъюванта типа неполного адъюванта Фрейнда вводят морским свинкам в объеме 1,0 см3 внутримышечно. Через 21 и 7 дней иммунизацию повторяют, и через 10 дней после последнего введения антигена животных обескровливают. Индивидуальные пробы сыворотки крови проверяют на типовую специфичность и активность в РСК в соответствии с методическими рекомендациями по выявлению и идентификации штаммов вируса ящура [11].The inactivated antigen in the concentrate was mixed with an equal volume type oil adjuvant incomplete Freund's adjuvant are administered to guinea pigs in a volume of 1.0 cm 3 intramuscularly. After 21 and 7 days, the immunization is repeated, and 10 days after the last administration of the antigen, the animals are bled. Individual blood serum samples are checked for type specificity and activity in CSCs in accordance with the guidelines for the identification and identification of foot and mouth disease virus strains [11].

После этого готовят серию путем смешивания типоспецифичных индивидуальных проб сыворотки одинаковой активности. Штаммовую специфичность серийного препарата определяют в одно- и двусторонних реакциях с гомо- и гетерологичными антигенами.After that, a series is prepared by mixing type-specific individual serum samples of the same activity. The strain specificity of a serial preparation is determined in one- and two-sided reactions with homo- and heterologous antigens.

После консервирования азидом натрия (1:5000) и выдерживания при температуре 4°C в течение 30 дней полученную сыворотку фасуют во флаконы по 0,5÷1,0 см3 и высушивают методом сублимации под вакуумом.After preservation with sodium azide (1: 5000) and holding at 4 ° C for 30 days, the resulting serum is Packed in bottles of 0.5 ÷ 1.0 cm 3 and dried by freeze-drying under vacuum.

Способом, описанным в примере 2, была приготовлена 1 серия гипериммунной сыворотки, характеристика которой представлена в таблице 4.By the method described in example 2, was prepared 1 series of hyperimmune serum, the characteristics of which are presented in table 4.

Данные, приведенные в таблице 4, свидетельствуют о том, что получена диагностическая сыворотка, по специфической активности отвечающая требованиям ГОСТа 25384-82.The data given in table 4 indicate that a diagnostic serum has been obtained that, according to its specific activity, meets the requirements of GOST 25384-82.

Пример 3Example 3

Чтобы получить антиген для серологических и иммунохимических реакций использовали вирус ящура типа А штамма А №2155/Забайкальский/2013, адаптированный к культуре клеток перевиваемых линий ПСГК-30 и IB-RS-2. Для адаптации используют вируссодержащий материал в виде 10% афтозной суспензии. Пассирование проводят в течение 3÷5 последовательных пассажей. Полученный вирус используют для наработки вирусного сырья. Заражение клеточных культур и сбор вирусного материала проводят по общепринятой методике.To obtain the antigen for serological and immunochemical reactions, FMD virus of type A strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 adapted to the cell culture of the transplantable PSGK-30 and IB-RS-2 lines was used. For adaptation, virus-containing material is used in the form of a 10% aphthous suspension. Passaging is carried out for 3 ÷ 5 consecutive passages. The resulting virus is used to produce viral raw materials. Infection of cell cultures and the collection of viral material is carried out according to standard methods.

Полученную вируссодержащую суспензию концентрируют в 100 раз добавлением (%) 8÷10 ПЭГ. Полученный концентрат инактивируют АЭЭИ, фасуют во флаконы и высушивают методом сублимации под вакуумом. Данные представлены в таблице 5. The resulting virus-containing suspension is concentrated 100 times by adding (%) 8 ÷ 10 PEG. The resulting concentrate is inactivated by AEEI, Packed in bottles and dried by sublimation under vacuum. The data are presented in table 5.

Пример 4Example 4

Для изготовления вакцины инактивированной сорбированной типа А из штамма А №2155/Забайкальский/2013 вирус ящура репродуцируют в суспензионной культуре клеток ВНК-21. В качестве поддерживающей среды используют раствор Эрла без сыворотки с добавлением ФГМС, ГБКС и антибиотиков при рН 7,2÷7,4. Культуру клеток заражают вирусом из расчета 0,001÷0,05 ТЦЦ50 на клетку. Культивирование вируса ведут при температуре (36°C)÷(37°C). Через 8÷10 часов культивирования проводят подсчет живых и мертвых клеток путем окраски трипановым синим. Если количество живых клеток составляет (%) 15÷20, то культивирование продолжают еще 2÷3 часа. При достижении количества мертвых клеток (%) 90÷95 культивирование прекращают и вируссодержащую суспензию контролируют на стерильность и содержание 146S и 75S компонентов.For the manufacture of an inactivated sorbed type A vaccine from strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013, foot and mouth disease virus is reproduced in a suspension culture of BHK-21 cells. As a supporting medium, an Earle solution without serum is used with the addition of FGMS, GBKS and antibiotics at a pH of 7.2–7.4. The cell culture is infected with a virus at the rate of 0.001 ÷ 0.05 SCC50 per cell. The cultivation of the virus is carried out at a temperature of (36 ° C) ÷ (37 ° C). After 8 ÷ 10 hours of cultivation, live and dead cells are counted by trypan blue staining. If the number of living cells is (%) 15 ÷ 20, then cultivation is continued for another 2 ÷ 3 hours. When reaching the number of dead cells (%) 90 ÷ 95, the cultivation is stopped and the virus-containing suspension is controlled for sterility and the content of 146S and 75S components.

Количество 146S и 75S компонентов в суспензии должно составлять не менее 0,5 мкг/см3. Сразу по окончании цикла репродукции вируса, не прекращая термостатирования, в вируссодержащую суспензию добавляют 15÷20%-ный раствор АЭЭИ, подкисленной ледяной уксусной кислотой до рН 8,0÷8,5. Конечная концентрация АЭЭИ в вируссодержащей суспензии должна быть равной (%) 0,025÷0,05. Инактивацию инфекционности вируса проводят в течение 12÷24 часов при (36°С)÷(37°С) и рН 7,2÷7,6 с перемешиванием через 5÷6 часов в течение 3÷5 минут. По окончании инактивации суспензию антигена охлаждают до (4°С)÷(8°С). В охлажденную суспензию добавляют 10%-ный раствор ПГМГ до концентрации 0,005÷0,007% для флокуляции балластных примесей и инактивации возможных контаминантов. Флокулированные балластные примеси подвергают седиментации с последующей декантацией. Полученный антиген контролируют на авирулентность, содержание вирусспецифического белка, 146S и 75S компонентов вируса и стерильность. Необходимую концентрацию 146S и 75S компонентов в прививной дозе адсорбированной вакцины получают путем концентрирования антигена гелем гидрата окиси алюминия (ГОА).The amount of 146S and 75S components in the suspension should be at least 0.5 μg / cm 3 . Immediately after the end of the virus reproduction cycle, without stopping thermostating, a 15–20% solution of AEEI, acidified with glacial acetic acid to pH 8.0–8.5, is added to the virus-containing suspension. The final concentration of AEEI in the virus-containing suspension should be equal (%) 0,025 ÷ 0,05. Inactivation of the infectiousness of the virus is carried out for 12 ÷ 24 hours at (36 ° C) ÷ (37 ° C) and a pH of 7.2 ÷ 7.6 with stirring after 5 ÷ 6 hours for 3 ÷ 5 minutes. At the end of inactivation, the antigen suspension is cooled to (4 ° C) ÷ (8 ° C). A 10% solution of PHMG is added to the cooled suspension to a concentration of 0.005–0.007% for flocculation of ballast impurities and inactivation of possible contaminants. Flocculated ballast impurities are subjected to sedimentation followed by decantation. The resulting antigen is monitored for avirulence, virus-specific protein content, 146S and 75S virus components, and sterility. The required concentration of 146S and 75S components in a graft dose of an adsorbed vaccine is obtained by concentrating the antigen with gel of aluminum oxide hydrate (GOA).

Расчетный объем геля ГОА 3%-ной концентрации добавляют в охлажденную суспензию антигена при работающей мешалке. Перемешивание ведут в течение 30 минут. После седиментации геля ГОА сливают расчетный объем оставшейся суспензии. Конечная концентрация ГОА должна быть в пределах 1,62±0,488 мг/см3 Р<0,01 n=10, а концентрация 146S и 75S компонентов вируса ящура не менее 3,0 мкг/см3. Затем в суспензию добавляют дополнительно 10%-ный раствор сапонина до конечной концентрации не менее 0,075%.The calculated volume of the GOA gel of 3% concentration is added to the cooled antigen suspension with the stirrer operating. Stirring is carried out for 30 minutes. After sedimentation of the GOA gel, the calculated volume of the remaining suspension is drained. The final concentration of GOA should be in the range of 1.62 ± 0.488 mg / cm 3 P <0.01 n = 10, and the concentration of 146S and 75S components of the FMD virus is not less than 3.0 μg / cm 3 . Then an additional 10% saponin solution is added to the suspension to a final concentration of at least 0.075%.

Полученную вакцину расфасовывают в стеклянные или полипропиленовые флаконы и проводят контроль стерильности по ГОСТ 28085-89.The resulting vaccine is packaged in glass or polypropylene bottles and sterility is controlled according to GOST 28085-89.

Авирулентность и безвредность вакцины проверяют на 5 головах КРС, вводя вакцину сначала под слизистую языка в дозе 2 см3, затем подкожно в дозе 10 см3. Наблюдение за клиническим состоянием животных ведут в течение 5 суток. Авирулентную, безвредную и стерильную вакцину проверяют на иммуногенную активность на КРС или морских свинках.The virulence and harmlessness of the vaccine is checked on 5 heads of cattle, introducing the vaccine first under the mucous membrane of the tongue at a dose of 2 cm 3 , then subcutaneously at a dose of 10 cm 3 . Observation of the clinical condition of the animals is carried out for 5 days. Avirulent, harmless and sterile vaccine is tested for immunogenic activity in cattle or guinea pigs.

Пример 5Example 5

Штамм А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура Aphtae epizooticae типа А, предназначенный для контроля иммуногенной активности противоящурных вакцин на КРС, готовят следующим образом. Полученный вирус предварительно освежают на КРС, заражая 1-2 животных массой 250÷300 кг, доставленных из благополучных по ящуру зон страны, где в течение последних 2-х лет не проводили вакцинацию животных против ящура. Количество пассажей вируса не должно превышать 20, начиная от исходного вируса. Суспензию вируса, содержащую 10000÷10000000 ИД50/1 см3 с антибиотиками, вводят по 0,2÷0,3 см3 в 20÷40 каналов интрадермалингвально по всей поверхности языка. Зараженных животных не кормят до снятия вируса. Через 20÷30 часов после заражения афты снимают по мере их созревания. Лимфу собирают шприцом. На основе собранного афтозного материала готовят 20%-ную суспензию вируса, которую очищают от балластных примесей с последующим добавлением в нее антибиотиков и равного объема глицерина. Полученную 10% суспензию вируса оценивают в РСК на типоспецифичность и методом ОТ-ПЦР с последующим проведением нуклеотидного секвенирования на соответствие исходному вирусу по первичной структуре гена VP1. Активность вируса в РСК должна быть не ниже 1:4.Strain A No. 2155 / Transbaikal / 2013 of the foot and mouth disease virus Aphtae epizooticae type A, designed to control the immunogenic activity of FMD vaccines in cattle, is prepared as follows. The resulting virus is preliminarily refreshed on cattle, infecting 1-2 animals weighing 250–300 kg delivered from the FMD zones of the country where animals have not been vaccinated for the past 2 years against foot and mouth disease. The number of passages of the virus should not exceed 20, starting from the original virus. The virus suspension containing 10,000 ÷ 10000000 PH 50/1 cm 3 with antibiotics administered at 0.2 ÷ 0.3 cm 3 of 20 ÷ 40 channels intradermalingvalno across the surface of the tongue. Infected animals are not fed until the virus is removed. After 20–30 hours after infection, the aphthae are removed as they mature. Lymph is collected by syringe. Based on the collected aphthous material, a 20% suspension of the virus is prepared, which is purified from ballast impurities, followed by the addition of antibiotics and an equal volume of glycerin. The resulting 10% virus suspension was evaluated in CSC for type-specificity and by RT-PCR followed by nucleotide sequencing to match the original virus according to the primary structure of the VP1 gene. The activity of the virus in CSC should not be lower than 1: 4.

Инфекционную активность вируса определяют на КРС и в первичной культуре клеток СП. Контрольный вирус должен иметь титр инфекционной активности не менее 104,0 ИД50/0,1 см3. Флаконы с суспензией вируса в присутствии глицерина хранят в холодильнике при температуре минус (70°С÷40°С).Infectious activity of the virus is determined on cattle and in the primary culture of SP cells. The control virus should have a titer of infectious activity of at least 10 4.0 ID 50 / 0.1 cm 3 . Vials with a suspension of the virus in the presence of glycerol are stored in the refrigerator at a temperature of minus (70 ° С ÷ 40 ° С).

Пример 6Example 6

Штамм А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура Aphtae epizooticae типа А, предназначенный для контроля иммуногенной активности противоящурных вакцин на свиньях, готовят следующим образом. Полученный вирус предварительно освежают на свиньях, заражая 1-2 животных массой 30÷50 кг, доставленных из благополучных по ящуру зон страны, где в течение последних 2-х лет не проводили вакцинацию скота против ящура. Суспензию вируса вводят под слизистую оболочку языка или внутрикожно в области венчика конечностей. Афты снимают по мере их созревания через 24÷72 часа после заражения. Лимфу собирают шприцом. На основе собранного афтозного материала готовят 20%-ную суспензию вируса, которую очищают от балластных примесей с последующим добавлением в нее антибиотиков и равного объема глицерина. Полученную 10% суспензию вируса оценивают в РСК на типоспецифичность и методом ОТ-ПЦР с последующим проведением нуклеотидного секвенирования на соответствие исходному вирусу по первичной структуре гена VP1. Активность вируса в РСК должна быть не ниже 1:4.Strain A No. 2155 / Transbaikal / 2013 of the foot and mouth disease virus Aphtae epizooticae type A, designed to control the immunogenic activity of FMD vaccines in pigs, is prepared as follows. The resulting virus is pre-freshened in pigs, infecting 1-2 animals weighing 30 ÷ 50 kg, delivered from the zones of the country safe for foot and mouth disease, where cattle against foot and mouth disease have not been vaccinated for the past 2 years. A suspension of the virus is administered under the mucous membrane of the tongue or intradermally in the corolla of the limbs. Aphthae is removed as they mature 24–72 hours after infection. Lymph is collected by syringe. Based on the collected aphthous material, a 20% suspension of the virus is prepared, which is purified from ballast impurities, followed by the addition of antibiotics and an equal volume of glycerin. The resulting 10% virus suspension was evaluated in CSC for type-specificity and by RT-PCR followed by nucleotide sequencing to match the original virus according to the primary structure of the VP1 gene. The activity of the virus in CSC should not be lower than 1: 4.

Инфекционную активность вируса определяют на свиньях путем введения разведений вируса внутрикожно в область венчика копытец в 4 точки по 0,1 см3 и в первичной культуре клеток СП. Контрольный вирус должен иметь титр инфекционной активности на свиньях не менее 104,0 ИД50/0,1 см3. Флаконы с суспензией вируса в присутствии глицерина хранят в холодильнике при температуре минус (70°C÷40°С).The infectious activity of the virus is determined in pigs by introducing dilutions of the virus intradermally into the corolla hoof in 4 points of 0.1 cm 3 and in the primary culture of SP cells. The control virus must have a titer of infectious activity in pigs of at least 10 4.0 ID 50 / 0.1 cm 3 . Vials with a suspension of the virus in the presence of glycerol are stored in the refrigerator at a temperature of minus (70 ° C ÷ 40 ° C).

Пример 7Example 7

Контроль иммуногенной и протективной активности вакцины инактивированной сорбированной из штамма вируса ящура типа А №2155/Забайкальский/2013 осуществляли следующим образом. Для проверки иммуногенной активности препарата использовали 17 голов КРС массой 200÷250 кг, доставленных из благополучных по ящуру зон. Первой группе животных из 5 голов КРС ввели вакцину подкожно в цельном виде. Второй группе животных из 5 голов КРС ввели подкожно разведение вакцины на фосфатно-буферном растворе в соотношении 1:4 и третьей группе из 5 голов в разведении 1:16. Четвертая группа из 2 голов осталась без вакцинации.Control of the immunogenic and protective activity of the vaccine inactivated adsorbed from a strain of FMD virus type A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 was carried out as follows. To test the immunogenic activity of the drug, 17 cattle were used weighing 200–250 kg, delivered from FMD-free zones. The first group of animals from 5 heads of cattle was administered the vaccine subcutaneously in their entirety. The second group of animals from 5 heads of cattle was injected subcutaneously with a vaccine dilution in phosphate-buffered saline in a ratio of 1: 4 and the third group of 5 animals at a dilution of 1:16. The fourth group of 2 goals was left without vaccination.

Объем прививной дозы составил 2,0 см3. На 21 день после вакцинации у 15 вакцинированных и 2 контрольных голов КРС взяли пробы крови и провели контрольное заражение животных введением под слизистую языка суспензии вируса ящура типа А №2155/Забайкальский/2013 в дозе 104,0 ИД50/0,2 см3.The vaccine dose volume was 2.0 cm 3 . On the 21st day after vaccination, blood samples were taken from 15 vaccinated and 2 control heads of cattle and animals were challenged by introducing a type A suspension of foot and mouth disease virus No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 at a dose of 4.0 4.0 ID 50 / 0.2 cm 3 .

Результаты испытания вакцины инактивированной сорбированной против ящура типа А из штамма вируса ящура типа А №2155/Забайкальский/2013 на КРС представлены в таблице 6.The test results of the vaccine inactivated adsorbed against foot and mouth disease type A from a strain of foot and mouth disease virus type A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 on cattle are presented in table 6.

Антигенную активность вакцины контролировали по уровню вируснейтрализующих антител в сыворотке крови в РН на монослое первично трипсинизированной культуры клеток СП. На 21 день после вакцинации уровень вируснейтрализующих антител в РН у КРС, привитых цельной вакциной, составил 5,40±0,33 log2.The antigenic activity of the vaccine was controlled by the level of virus-neutralizing antibodies in the blood serum in the pH on the monolayer of the primary trypsinized cell culture of the SP. At 21 days after vaccination, the level of virus-neutralizing antibodies in the pH of cattle vaccinated with a whole vaccine was 5.40 ± 0.33 log 2 .

Через 8 дней после заражения провели патологоанатомическое исследование КРС. Заболели 2 контрольных животных и 1 животное, привитое разведением вакцины 1:16.8 days after infection, a pathological examination of cattle was performed. 2 control animals and 1 animal vaccinated with a 1:16 vaccine dilution were ill.

ИмД50 вакцины составила 0,09 см3. Прививная доза вакцины содержала 22,0 ПД50 в прививном объеме 2,0 см3, что свидетельствует об эффективности препарата. Такая вакцина считается иммуногенной и пригодной для практического применения.ImD 50 of the vaccine was 0.09 cm 3 . The graft dose of the vaccine contained 22.0 PD 50 in the graft volume of 2.0 cm 3 , which indicates the effectiveness of the drug. Such a vaccine is considered immunogenic and suitable for practical use.

Источники информации, принятые во внимание при составлении описания изобретения к заявке на выдачу патента РФ на изобретение «Штамм А №2155/Забайкальский/2013 вируса ящура Aphtae epizooticae типа А для контроля антигенной и иммуногенной активности и для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа А»Sources of information taken into account when drawing up the description of the invention to the application for the grant of a patent of the Russian Federation for the invention “Strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 of foot and mouth disease virus Aphtae epizooticae type A for the control of antigenic and immunogenic activity and for the manufacture of biological products for the diagnosis and specific prevention of foot and mouth disease type BUT"

1. Рёрер X. Ящур: пер. с нем. Г.А. Сурковой / под ред. и с предисл. канд. вет. наук. П.В. Малярца. – М.: Колос, 1971. - 432 с. 1. Rörer X. Foot and mouth disease: Per. with him. G.A. Surkova / ed. and with the foreword. Cand. vet. sciences. P.V. Malyarets. - M .: Kolos, 1971. - 432 p.

2. Ящур. / А.Н. Бурдов, А.И. Дудников, П.В. Малярец [и др.]. – М.: Агропромиздат, 1990. - 320 с. 2. Foot and mouth disease. / A.N. Burdov, A.I. Dudnikov, P.V. Malyarets [et al.]. - M .: Agropromizdat, 1990 .-- 320 p.

3. Вирусные болезни животных / В.Н. Сюрин, А.Я. Самуйленко, Б.В. Соловьев [и др.]. - М.: ВНИИТИБП, 1998. - С. 532-548.3. Viral diseases of animals / V.N. Syurin, A.Ya. Samuilenko, B.V. Soloviev [et al.]. - M .: VNIITIBP, 1998 .-- S. 532-548.

4. WRLFMD Quarterly Report July-September 2013 - URL http://www.wrlfmd.org/ref_labs/ref_lab_reports/OIE-FAO4. WRLFMD Quarterly Report July-September 2013 - URL http://www.wrlfmd.org/ref_labs/ref_lab_reports/OIE-FAO

5. Пат. РФ №2140452, C12N 7/00, A61K 39/135, G01N 33/569, A61K 39/42, C07K 16/08, 27.10.1999 г. 5. Pat. RF No. 2140452, C12N 7/00, A61K 39/135, G01N 33/569, A61K 39/42, C07K 16/08, 10/27/1999

6. Пат. РФ №2242513, C12N 7/00, A61K 39/135, 20.12.2004 г. 6. Pat. RF №2242513, C12N 7/00, A61K 39/135, 12.20.2004

7. Foot-and-mouth Disease. Situation worldwide and major epidemiological events in 2005-2006 / K. Sumption, J. Lubroth, T. Murrai, S. De La Rocqe // EMPRESS/ Focus on..., 2007, №1, 11 P.7. Foot-and-mouth Disease. Situation worldwide and major epidemiological events in 2005-2006 / K. Sumption, J. Lubroth, T. Murrai, S. De La Rocqe // EMPRESS / Focus on ..., 2007, No. 1, 11 P.

8. Пат. РФ №2451745, C12N 7/00, A61K 39/135, 27.05.2012 г. 8. Pat. RF №2451745, C12N 7/00, A61K 39/135, 05.27.2012

9. OIE. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals - 7th Ed. - Paris, 2012. - Vol. 1, Chapter 2.1.5. - P. 166-169.9. OIE. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals - 7th Ed. - Paris, 2012 .-- Vol. 1, Chapter 2.1.5. - P. 166-169.

10. Selection of foot and mouth disease vaccine strains - a review / D.J. Paton, J.-F. Valacher, J. Bergman [et al.] // Rev. Sci. Tech. OIE. - 2005. - Vol.24(3). - P. 981-993.10. Selection of foot and mouth disease vaccine strains - a review / D.J. Paton, J.-F. Valacher, J. Bergman [et al.] // Rev. Sci. Tech. OIE. - 2005 .-- Vol.24 (3). - P. 981-993.

11. Методические указания по выявлению и идентификации штаммов вируса ящура / Гусев А.А., Захаров В.М., Шажко Ж.А. [и др.]. Владимир, 2002, 31 с. 11. Guidelines for the identification and identification of FMD virus strains / Gusev A.A., Zakharov V.M., Shazhko Zh.A. [and etc.]. Vladimir, 2002, 31 p.

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Figure 00000003
Figure 00000003

Figure 00000004
Figure 00000004

Figure 00000005
Figure 00000005

Figure 00000006
Figure 00000006

Claims (1)

Штамм вируса ящура Aphtae epizooticae типа А, сем. Picornaviridae, род Aphtovirus, депонированный в коллекцию штаммов микроорганизмов ФГБУ «ВНИИЗЖ» под регистрационным номером штамм вируса ящура А №2155/Забайкальский/2013 (производственный, контрольный, КРС) для контроля антигенной и иммуногенной активности и для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа А.The foot and mouth disease virus Aphtae epizooticae type A, fam. Picornaviridae, genus Aphtovirus, deposited in the collection of microorganism strains of FSBI VNIIZZH under registration number of foot and mouth disease virus strain A No. 2155 / Zabaykalsky / 2013 (production, control, cattle) for the control of antigenic and immunogenic activity and for the manufacture of biological products for the diagnosis and specific prevention of foot and mouth disease type A.
RU2015115872A 2015-04-28 2015-04-28 Strain a №2155/baikal/2013 of murrain virus aphtae epizooticae type a for control of antigenic and immunogenic activity and to produce biopreparations for diagnostics and specific prevention of murrain type a RU2603255C9 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015115872A RU2603255C9 (en) 2015-04-28 2015-04-28 Strain a №2155/baikal/2013 of murrain virus aphtae epizooticae type a for control of antigenic and immunogenic activity and to produce biopreparations for diagnostics and specific prevention of murrain type a

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015115872A RU2603255C9 (en) 2015-04-28 2015-04-28 Strain a №2155/baikal/2013 of murrain virus aphtae epizooticae type a for control of antigenic and immunogenic activity and to produce biopreparations for diagnostics and specific prevention of murrain type a

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2603255C1 RU2603255C1 (en) 2016-11-27
RU2603255C9 true RU2603255C9 (en) 2017-03-07

Family

ID=57774462

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015115872A RU2603255C9 (en) 2015-04-28 2015-04-28 Strain a №2155/baikal/2013 of murrain virus aphtae epizooticae type a for control of antigenic and immunogenic activity and to produce biopreparations for diagnostics and specific prevention of murrain type a

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2603255C9 (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2744791C1 (en) * 2020-05-26 2021-03-15 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровью животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") Strain asia-1 2356/14/2018 of the fmd virus aphtae epizooticae of asia-1 type for manufacture of biological products for the diagnosis and specific prevention of fmd type asia-1

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2242513C1 (en) * 2003-11-24 2004-12-20 Федеральное государственное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" Foot and mouth disease virus strain a(georgia)1999/ 1721 type a for preparing diagnostic and vaccine preparations
RU2451745C2 (en) * 2010-07-26 2012-05-27 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") A 2045/KYRGYZSTAN/ 2007 STRAIN OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE VIRUS Aphtae epizooticae TYPE A FOR ANTIGENIC AND IMMUNOGENIC PERFORMANCE CONTROL OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE VACCINES AND FOR PRODUCTION OF BIOPREPARATIONS FOR DIAGNOSIS AND SPECIFIC PREVENTION OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE TYPE A

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Забайкальский край: Забайкалье крайне благоприятно для развития свиноводства. - Россельхознадзор, 25.12.2013, URL: http://chita.meatinfo.ru/news/zabaykalskiy-kray-zabaykale-krayne-blagopriyatno-dlya-316175, найдено в И *
Краткий отчет о результатах научно-исследовательской деятельности ФГБУ "ВНИИЗЖ" за 2013 год, рассмотрен и принят на заседании ученого совета, протокол. *
Россельхознадзор / Пресса о нас, Забайкальский край: Край получил более 300 тыс. доз вакцины против забайкальского штамма ящура, 25 декабря 2013 г.. URL: http://www.fsvps.ru/fsvps/print/press/7461.html, найдено в И *
Россельхознадзор / Пресса о нас, Забайкальский край: Край получил более 300 тыс. доз вакцины против забайкальского штамма ящура, 25 декабря 2013 г.. URL: http://www.fsvps.ru/fsvps/print/press/7461.html, найдено в ИНТЕРНЕТ 04.07.2016. Забайкальский край: Забайкалье крайне благоприятно для развития свиноводства. - Россельхознадзор, 25.12.2013, URL: http://chita.meatinfo.ru/news/zabaykalskiy-kray-zabaykale-krayne-blagopriyatno-dlya-316175, найдено в ИНТЕРНЕТ 04.07.2016. Краткий отчет о результатах научно-исследовательской деятельности ФГБУ "ВНИИЗЖ" за 2013 год, рассмотрен и принят на заседании ученого совета, протокол. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2603255C1 (en) 2016-11-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US8277814B2 (en) Avian Astrovirus
RU2593718C1 (en) Inactivated emulsion vaccine against foot-and-mouth disease types a, o, asia-1
RU2451745C2 (en) A 2045/KYRGYZSTAN/ 2007 STRAIN OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE VIRUS Aphtae epizooticae TYPE A FOR ANTIGENIC AND IMMUNOGENIC PERFORMANCE CONTROL OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE VACCINES AND FOR PRODUCTION OF BIOPREPARATIONS FOR DIAGNOSIS AND SPECIFIC PREVENTION OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE TYPE A
RU2603003C1 (en) Inactivated sorptive vaccine to fmd types a, o, asia-1
EP2613807B1 (en) Foot and mouth disease virus with increased stabilitity and its use as vaccine
RU2699671C1 (en) Vaccine for early protection against foot-and-mouth disease of type o inactivated emulsion
RU2665849C1 (en) Inactivated emulsion vaccine against foot-and-mouth disease type o
RU2563522C1 (en) STRAIN O №2102/Zabaikalsky/2010 FMD VIRUS Aphtae epizooticae OF TYPE O FOR CONTROL OF ANTIGENIC AND IMMUNOGENIC ACTIVITY OF FMD VACCINES AND FOR PRODUCTION OF BIOLOGICAL PRODUCTS FOR DIAGNOSTICS AND SPECIFIC PROPHYLAXIS OF FMD OF TYPE O
RU2603255C9 (en) Strain a №2155/baikal/2013 of murrain virus aphtae epizooticae type a for control of antigenic and immunogenic activity and to produce biopreparations for diagnostics and specific prevention of murrain type a
RU2682876C1 (en) Inactivated emulsion vaccine for o-type aphthous fever
RU2297452C2 (en) Asia-1-type foot-and-mouth disease virus strain for producing of diagnostic and/or vaccine preparations
RU2242513C1 (en) Foot and mouth disease virus strain a(georgia)1999/ 1721 type a for preparing diagnostic and vaccine preparations
RU2604200C9 (en) Strain a №2166/krasnodarskiy/2013 murrain virus aphtae epizooticae type a for antigenic and immunogenic activity and to produce biopreparations for diagnosis and specific prevention of murrain type a
RU2553219C1 (en) STRAIN OF FMD VIRUS Aphtae epizooticae OF TYPE A FOR CONTROLLING ANTIGENIC AND IMMUNOGENIC ACTIVITY AND FOR PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATIONS FOR DIAGNOSTICS AND SPECIFIC PROPHYLAXIS OF FMD OF TYPE A
RU2708335C1 (en) Strain &#34;privolzhsky&#34; of a virus of nodular dermatitis in cattle dermatitis nodularis bovum, a genus capripoxvirus for manufacturing biopreparations for diagnostics and specific prevention of infectious dermatitis of bovine animals
RU2560268C1 (en) FOOT-AND-MOUTH DISEASE VIRUS STRAIN Aphtae epizooticae TYPE A FOR PRODUCING AND CONTROLLING BIOLOGICAL PREPARATION FOR DIAGNOSTICS AND SPECIFIC PREVENTION OF TYPE A FOOT-AND-MOUTH DISEASE
RU2640261C1 (en) A n2269/vniizzh/2015 strain of type a aphtae epizooticae foot-and-mouth disease virus for control of antigenic and immunogenic activity and for manufacture of biopreparations for diagnosis and specific prevention of type a foot-and-mouth disease
RU2204599C1 (en) Foot-and-mouth virus strain &#34;primorsky-2000&#34; 1734 of type o1 for diagnostic and vaccine preparation preparing
RU2526570C2 (en) Inactivated sorbent type a foot-and-mouth disease vaccine
RU2348690C2 (en) Amur strain no 1987 of asia-1 type murrain virus for antigenic and immunogenic performance control of vaccines and for production of medicines for diagnostics and specific prevention of asia-1 type murrain
RU2220744C1 (en) Vaccine against foot-and-mouth asia-1 type and method for it preparing
RU2658608C1 (en) Strain o n 2311/zabaikalsky/2016 foot and mouth disease virus type aphtae epizooticae type o for manufacturing of biologics for diagnosis and specific prevention of foot and mouth disease of type o
RU2563345C1 (en) Inactivated sorbed vaccine against fmd of type a
RU2681815C1 (en) Inactivated sorptive foot-and-mouth disease type a vaccine
RU2140452C1 (en) Foot and mouth virus disease type a strain n 1707 &#34;armenia-98&#34; used for preparing diagnostic and vaccine preparations

Legal Events

Date Code Title Description
TH4A Reissue of patent specification
TK4A Correction to the publication in the bulletin (patent)

Free format text: AMENDMENT TO CHAPTER -FG4A - IN JOURNAL: 33-2016 FOR TAG: (54)