PL215513B1 - Nowe boranofosforanowe analogi dinukleotydów, ich zastosowanie, czasteczka RNA, sposób otrzymywania RNA oraz sposób otrzymywania peptydów lub bialka - Google Patents

Nowe boranofosforanowe analogi dinukleotydów, ich zastosowanie, czasteczka RNA, sposób otrzymywania RNA oraz sposób otrzymywania peptydów lub bialka

Info

Publication number
PL215513B1
PL215513B1 PL385388A PL38538808A PL215513B1 PL 215513 B1 PL215513 B1 PL 215513B1 PL 385388 A PL385388 A PL 385388A PL 38538808 A PL38538808 A PL 38538808A PL 215513 B1 PL215513 B1 PL 215513B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
formula
group
rna
independently
borate phosphate
Prior art date
Application number
PL385388A
Other languages
English (en)
Other versions
PL385388A1 (pl
Inventor
Joanna Kowalska
Jacek Jemielity
Edward Darżynkiewicz
Maciej Roman Łukaszewicz
Joanna Żuberek
Original Assignee
Univ Warszawski
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Warszawski filed Critical Univ Warszawski
Priority to PL385388A priority Critical patent/PL215513B1/pl
Priority to JP2011512643A priority patent/JP5715560B2/ja
Priority to AU2009256131A priority patent/AU2009256131B2/en
Priority to PCT/US2009/046249 priority patent/WO2009149253A2/en
Priority to US12/996,243 priority patent/US8519110B2/en
Priority to PL09759412T priority patent/PL2297175T3/pl
Priority to EP09759412.1A priority patent/EP2297175B1/en
Priority to CA2727091A priority patent/CA2727091C/en
Priority to ES09759412T priority patent/ES2425781T3/es
Publication of PL385388A1 publication Critical patent/PL385388A1/pl
Publication of PL215513B1 publication Critical patent/PL215513B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H21/00Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/08Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis
    • A61P3/10Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis for hyperglycaemia, e.g. antidiabetics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H21/00Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids
    • C07H21/02Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids with ribosyl as saccharide radical
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/67General methods for enhancing the expression
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/02Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Emergency Medicine (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Obesity (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku są nowe boranofosforanowe analogi dinukleotydów, ich zastosowanie, cząsteczka RNA, sposób otrzymywania RNA oraz sposób otrzymywania peptydów lub białka.
W organizmach eukariotycznych koniec 5' większości matrycowych RNA (mRNA) jest blokowany lub „kapowany”. Kapowane są także pewne inne formy RNA, na przykład krótkie jądrowe RNA (snRNA). Oznacza to, że cząsteczka RNA ma na 5' końcu strukturę kapu, czyli mostek 5'-5'-trifosforanowy pomiędzy dwoma nukleozydowymi ugrupowaniami i 7-metyloguanozynę. Kapowanie mRNA i snRNA wspomaga ich normalne funkcje w komórkach.
Możliwość syntezy kapowanych cząsteczek RNA in vitro jest więc użyteczna, ponieważ pozwala uzyskać cząsteczki RNA zachowujące się odpowiednio w różnych biologicznych zastosowaniach. Takie zastosowania obejmują zarówno prace badawcze, jak i komercyjną produkcję polipeptydów, np. produkcję w układzie translacji bezkomórkowej polipeptydów zawierających w specyficznym miejscu „nienaturalny” aminokwas lub produkcję w hodowlach komórkowych polipeptydów, które ze względu na aktywność i stabilność wymagają potranslacyjnej modyfikacji. W tych drugich układach synteza przebiega w znacznie dłuższym czasie i dlatego otrzymuje się więcej białka.
Najczęściej stosowanym sposobem otrzymywania kapowanego RNA in vitro jest synteza RNA na matrycy DNA za pomocą bakteryjnej lub bakteriofagowej polimerazy RNA w obecności wszystkich czterech trifosforanów rybonukleozydów oraz dinukleotydu kapu, takiego jak m7G(5')ppp(5')G (m7GpppG). Polimeraza inicjuje transkrypcję przez nukleofilowy atak 3'-OH ugrupowania Guo w m7GpppG na α-fosforan następnego transkrybowanego trifosforanu nukleozydu, dając jako początkowy produkt m7GpppGpN. Alternatywny produkt inicjowany przez GTP - pppGpN jest powstrzymywany przez ustalenie stosunku m7GpppG do GTP w transkrypcyjnej mieszaninie reakcyjnej od 5 do 10.
Ilość białka produkowanego przez syntetyczny mRNA wprowadzony do hodowli komórek ssaczych jest ograniczona przez degradację mRNA w naturalnym obiegu. Degradacja mRNA in vivo jest inicjowana głównie przez usunięcie kapu z nienaruszonego mRNA przez specyficzną pirofosfatazę, Dcp 1/2, która rozszczepia wiązanie pomiędzy α i β fosforanami. W publikacji E. Grudzien et al. „Differential inhibition of mRNA degradation pathways by novel cap analogs”, J. Biol. Chem., vol. 281, pp. 1857-1867 (2006) opisano właściwości analogu kapu, w którym grupa metylenowa zastępuje atom
7,3'-O
O pomiędzy grupami α and β fosforanowymi, m27,3'-OGppCH2pG. mRNA kapowane tym analogiem były odporne na hydrolizę in vitro rekombinowanym ludzkim Dcp2.
7,3'-O
Po wprowadzeniu do hodowli komórkowych mRNA kapowane za pomocą m27,3'-OGppCH2pG były 7,3'-O bardziej stabilne niż kapowane za pomocą m2 7,3'-OGpppG.
7,3'-O
Chociaż mRNA kapowane za pomocą m27,3'-OGppCH2pG były bardziej stabilne w hodowlach komórkowych, dawały mniejszą wydajność w procesie translacji, przypuszczalnie ze względu na znacznie
7,3'-O 7,3'-O mniejsze powinowactwo wiązania m2 7,3'-OGppCH2pG do eIF4E in vitro w porównaniu z m2 7,3'-OGpppG. Tak więc, chociaż były bardziej stabilne w hodowlach komórkowych, ta korzyść była dla wydajności syntetyzowanego białka wyrównana przez niższą wydajność translacji.
Poprawę tej sytuacji przedstawiono w publikacji J. Kowalska, et al. „Synthesis and characterization of mRNA cap analogs containing phosphorothioate substitutions that bind tightly to elF4E and are resistant to the decapping pyrophosphatase DcpS” RNA vol. 14, pp. 1119-31 (2008).
Opisano tu syntezę trzech analogów kapu typu ARCA, gdzie O zastąpiono przez S w resztach fosforanowych α, β, lub γ (nazwanych S-ARCA). Każdy z nich zsyntetyzowano w dwu formach izomerycznych, które mogły być rozdzielone chromatograficznie. Stwierdzono, że wszystkie z otrzymanych analogów silnie oddziałują z białkiem eIF4E (nie słabiej niż m7GpppG).
mRNA zakończone analogiem S-ARCA modyfikowanym w pozycji β były odporne na hydrolizę in vitro rekombinowanym ludzkim Dcp2, wydłużały czas półtrwania mRNA w komórkach ssaczych oraz znacznie zwiększały wydajność translacji elektoroporowanego do komórek mRNA. E. Grudzien et al. „Phosphorothioate Cap Analogs Stabilize mRNA and Increase Translational Efficiency in Mammalian Cells” RNA, vol. 13, str. 1745-1755 (2007).
Innym zastosowaniem analogów kapu jest ich użycie w badaniach nad inhibicją translacji zależnej od kapu w systemach bezkomórkowych. Stwierdzono, że analogi kapu efektywnie hamują translację poprzez konkurowanie z mRNA o miejsce wiązania białka eIF4E. [A. Cai et al, „Quantitative assessment of mRNA cap analogues as inhibitors of in vitro translation”. Biochemistry vol. 38, pp. 8538-8547 (1999), E. Grudzien, „Novel cap analogs for in vitro synthesis of mRNAs with high translational efficiency”. RNA vol. 10, pp. 1479-1487(2004).]
PL 215 513 B1
Zdolność analogów kapu do inhibicji translacji ma także potencjalne znaczenie terapeutyczne, gdyż jak wykazano, białko eIF4E jest nadeksprymowane w wielu rodzajach komórek nowotworowych, a jego nadekspresja prowadzi selektywnie do nadekspresji czynników białkowych związanych z nowotworzeniem i metastazą [A. De Benedetti, J. R. Graff „eIF-4E expression and its role in malignancies and metastases” ONCOGENE vol. 23, pp. 3189-3199 (2004)].
Pokazano również, że wyciszenie ekspresji eIF4E za pomocą siRNA lub oligonukleotydów antysensownych [J. R. Graff et al. „Therapeutic suppression of translation initiation factor eIF4E expression reduces tumor growth without toxicity”, J. Clin. Investigation, vol. 117, pp. 2638-2648 (2007)], jak również zahamowanie jego aktywności poprzez ekspresję specyficznego represora, może zahamować proces nowotworzenia [Herbert et al. „Rapid induction of apoptosis by peptides that bind initiation factor eIF4E”. Curr. Biol. vol. 10, pp. 793-796 (2000)].
Syntetyczne analogi kapu stanowią grupę specyficznych inhibitorów eIF4E, mogą zatem znaleźć zastosowanie w leczeniu chorób nowotworowych. Działanie, analogów kapu jako inhibitorów translacji nie zostało jednak do tej pory zademonstrowane in vivo, głównie ze względu na ich nietrwałość w warunkach komórkowych. Rozwiązaniem tego problemu może być synteza analogów modyfikowanych w łańcuchu oligofosforanowym.
Oprócz modyfikacji metylenobisfosfonianowej (zamiana O na CH2) oraz tiofosforanowej (zamiana O na S) znane są również inne modyfikacje, które mogą chronić nukleotydy przed degradacją enzymatyczną. Jedną z nich jest modyfikacja boranofosforanowa, polegająca na zastąpieniu jednego z niemostkowych atomów O w grupie fosforanowej, grupą boranową (BH3-).
Modyfikacja boranofosforanowa jest najczęściej spotykana w chemicznie, bądź enzymatycznie syntetyzowanych oligonukleotydach, ale znane są również przykłady syntezy boranofosforanowych analogów mononukleotydów [Li P, et al. „Nucleoside and oligonucleoside boranophosphates: Chemistry and properties” Chemical Reviews vol. 107, pp. 4746-4796 (2007)], a nawet boranofosforanowych analogów polifosforanów dinukleozydów.
Boranofosforanowe analogi polifosforanów dinukleozydów przedstawiono w opisie zgłoszenia US 2006/0287271. Są nimi zwłaszcza opisane w przykładach diadenozyny i diurydyny użyteczne do leczenia i zapobiegania chorobom modulowanym przez receptory P2Y, jak cukrzyca typu 2 i nowotwór.
Boranofosforanowe analogi nukleotydów wykazują podobieństwo do tiofosforanów, ze względu na budowę przestrzenną, wartości pKa, oraz występowanie P-diastereoizomerii. Jednakże wykazano, że boranofosforany są nawet 10-krotnie bardziej odporne na hydrolizę enzymatyczną niż ich tiofosforanowe odpowiedniki. Są one również bardziej lipofilowe od tiofosforanów, co ułatwia ich przenikanie przez błony biologiczne. Kolejna zaletą analogów boranofosforanowych jest możliwość użycia ich w terapii BNCT (boron neutron capture therapy).
Przedmiotem wynalazku są nowe analogi kapu modyfikowane resztą boranofosforanową. Analogi te mają zastosowanie zwłaszcza jako 5' koniec mRNA, jako inhibitory zależnej od kapu translacji, np. do inhibicji translacji w komórkach nowotworowych, jak również jako reagenty do otrzymywania kapowanego mRNA o zwiększonym czasie życia w warunkach in vivo. W nowych pochodnych połączono BH3 - podstawienie przy różnych resztach fosforanowych z podstawieniem grupą 2' - i/lub 3'-O-alkilową, korzystnie metylową w celu zapewnienia prawidłowej orientacji podczas syntezy RNA in vitro, otrzymując nowe analogi nazywane BH3-analogi kapu lub BH3-ARCA dla analogów wbudowywanych do 5' końca RNA w prawidłowej orientacji. Modyfikacja analogów ARCA (anty-odwrotne analogi kapu, tj. dinukleotydowe analogi kapu modyfikowane na rybozie 7-metyloguanozyny, które są wbudowywane wyłącznie w poprawnej orientacji w procesie translacji in vitro, katalizowanej przez polimerazę RNA) zapewnia precyzyjne umiejscowienie boranofosforanowych grup α, β i γ w miejscach aktywnych białka wiążącego kap zarówno w procesie translacji, jak i usuwania kapu.
Nieoczekiwanie stwierdzono, że nowe 3-BH3-ARCA nie ulegają degradacji w reakcji katalizowanej przez enzym DcpS.
Nowe boranofosforanowe analogi dinukleozydów mają wzór ogólny 1,
PL 215 513 B1
w którym Y1, Y2, Y3, Y4 oznaczają niezależnie O lub BH3, przy czym co najmniej jeden Y oznacza BH3, n wynosi 0 lub 1,
N oznacza grupę o wzorze 6 lub grupę o wzorze 7,
w których
R1 i R2 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3, i OCH2CH3,
X oznacza metyl, etyl, propyl, butyl, benzyl, podstawiony benzyl, naftylometyl lub podstawiony naftylometyl,
B oznacza grupę o wzorze 2a, 2b, 3, 4 lub 5,
R3 i R4 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3 lub OCH2CH3 Związki o wzorze 1 mogą być w postaci wolnej lub w postaci soli.
Wynalazek obejmuje także diastereoizomery związków o ogólnym wzorze 1 i mieszaniny diastereoizomerów.
Do związków o ogólnym wzorze 1 należą związki o wzorach 8, 9, 10, 11, 12, i 13,
PL 215 513 B1
PL 215 513 B1
Do przykładowych korzystnych analogów należą związki o wzorze 1, w którym B oznacza grupę o wzorze 2a lub 2b; związki ogólnym wzorze 1, w którym B oznacza grupę o wzorze 2a, 2b, 3, 4, lub 5, zwłaszcza 2a, 2b, R3 i R4 oznaczają OH, N oznacza grupę o wzorze 6 lub 7, X oznacza metyl, etyl, propyl, butyl, benzyl, podstawiony benzyl, naftylometyl lub podstawiony naftylometyl, zwłaszcza metyl, a R1 i R2 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3, i OCH2CH3, przy czym jeżeli B oznacza grupę o wzorze 2a, 3, 4, lub 5, wówczas jeden spośród R1 i R2 ma znaczenie inne niż OH.
Przykładami tych korzystnych związków są związki w których N oznacza grupę o wzorze 6, R2 oznacza OH, R1 oznacza H lub CH3, X oznacza metyl, n wynosi 0, a jeden spośród Y1, Y2, Y3 oznacza BH3 o wzorze ogólnym 14 podane w tabeli 1.
Tabela I
OR OH
Ύη .ol z 0 II -o—PI. Y 0 II -o—pI. X N P
N<?· 0“ CH, Wzór 14 y β a OH OH
Związek X Y z R N
m7GpppBH3G (D1) bh3 0 0 H Gua
m7GpppBH3G (D2) bh3 0 0 H Gua
m7GppBH3pG (D1) 0 bh3 0 H Gua
m7GppBH3pG (D2) 0 bh3 0 H Gua
m7GppBH3pm7G 0 bh3 0 H m7Gua
m7GpBH3PpG (D1) 0 0 bh3 H Gua
m7GpBH3ppG (D2) 0 0 bh3 H Gua
m2720GpppBH3G (D1) bh3 0 0 ch3 Gua
m27.2'-°GpppBH3G (D2) bh3 0 0 ch3 Gua
m27.2'-OGppBH3pG (D1) 0 bh3 0 ch3 Gua
rri2720GppBH3pG (D2) 0 bh3 0 ch3 Gua
m272'°GpBH3ppG (D1) 0 0 bh3 ch3 Gua
m272'-°GpBH3PpG (D2) 0 0 bh3 ch3 Gua
Gua oznacza guanozynę o wzorze 2a, a m7Gua oznacza 7-metyloguanozynę o wzorze 2b, w którym X oznacza CH3.
Ze względu na zastosowanie, jako struktury kapu do korzystnych należą β-ΒΗ3- analogi kapu.
Nowe boranofosforanowe analogi dinukleozydów mogą być w postaci wolnej lub w postaci soli na przykład z kationem metali alkalicznych lub metali ziem alkalicznych, NH4+, N(R)3H+, gdzie R oznacza grupę alkilową o 1-6 atomach węgla, np. etylową, butylową i podobne.
Wynalazek dotyczy także zastosowania nowych boranofosforanowych analogów dinukleozydów o ogólnym wzorze 1, w którym symbole mają wyżej podane znaczenie jako inhibitora zależnej od kapu translacji, np. jako inhibitora translacji w komórkach nowotworowych.
Ze względu na zastosowanie do inhibicji zależnej od kapu translacji korzystne są β i γ analogi.
PL 215 513 B1
Przedmiotem wynalazku jest ponadto cząsteczka RNA zawierająca na końcu 5' nowy boranofosforanowy analog o ogólnym wzorze 1, w którym B oznacza grupę o wzorze 2a, 2b, 3, 4, lub 5, N oznacza grupę o wzorze 6 lub 7, X oznacza metyl, etyl, propyl, butyl, benzyl, podstawiony benzyl, naftylometyl lub podstawiony naftylometyl, a R1 i R2 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3, i OCH2CH3, R3 i R4 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3, i OCH2CH3, z tym że, jeżeli B oznacza grupę o wzorze 2a, 3, 4, lub 5, wówczas jeden spośród R1 i R2 ma znaczenie inne niż OH, natomiast R3 i R4 oznaczają OH, a jeżeli B oznacza grupę o wzorze 2b, wówczas albo R1 i R2, albo R3 i R4 oznaczają OH, ich diastereoizomery lub mieszaniny diastereoizomerów.
Sposób otrzymywania RNA zawierającego na końcu 5' nowy boranofosforanowy analog o ogólnym wzorze 1, w którym podstawniki mają wyżej podane znaczenie, in vitro, polega według wynalazku na tym, że na polinukleotydowej matrycy w obecności polimerazy RNA poddaje się reakcji ATP, CTP, UTP, GTP oraz wyżej zdefiniowany analog o wzorze 1 w warunkach zapewniających transkrypcję polinukleotydowej matrycy przez polimerazę RNA.
W procesie tym do co najmniej części kopii RNA włącza się wyżej zdefiniowany analog o wzorze 1.
Nowy analog zazwyczaj stosuje się w nadmiarze w stosunku do GTP w zakresie od 2:1 do 50:1.
Sposób otrzymywania peptydu, białka lub peptydowego antygenu in vitro polega według wynalazku na tym, że translacji w układzie bezkomórkowym poddaje się cząsteczkę RNA zawierającą na końcu 5' nowy boranofosforanowy analog o wyżej zdefiniowanym wzorze 1, przy czym cząsteczka RNA ma otwartą ramkę odczytu, a proces prowadzi się w warunkach sprzyjających translacji otwartej ramki odczytu RNA do peptydu, białka lub peptydowego antygenu kodowanego przez otwartą ramkę odczytu
Sposób otrzymywania peptydu, białka lub peptydowego antygenu w hodowli komórkowej polega według wynalazku na tym, że do hodowli komórkowej wprowadza się cząsteczkę RNA zawierającą na końcu 5' nowy boranofosforanowy analog o wyżej zdefiniowanym wzorze 1, przy czym cząsteczka RNA ma otwartą ramkę odczytu, a proces prowadzi się w warunkach sprzyjających translacji otwartej ramki odczytu RNA do peptydu, białka lub peptydowego antygenu kodowanego przez otwartą ramkę odczytu.
Chemiczną syntezę boranofosforanowych analogów kapu przeprowadzono z wykorzystaniem metod podobnych do opracowanych dla syntezy analogów niemodyfikowanych w mostku 5',5'-polifosforanowym [M. Kadokura et al., „Efficient synthesis of γ-methyl-capped guanosine 5'-triphosphate as a 5'-terminal unique structure of U6 RNA via a new triphosphate bond formation involving activation of methyl phosphorimidazolidate using ZnCl2 as a catalyst in DMF under anhydrous conditions”, Tetrahedron Lett., vol. 38, pp. 8359-8362 (1997); J. Stępinski et al, Synthesis and properties of mRNAs containing the novel anti-reverse cap analogues 7-methyl(3'-O-methyl)GpppG and 7-methyl(3'-deoxy)GpppG”, RNA, vol. 7, pp. 1486-1495 (2001), i J. Jemielity et al., „Novel anti-reverse cap analogues with superior translational properties”, RNA, vol. 9, pp. 1108-1122 (2003)], a także analogów kapu modyfikowanych resztą metylenobisfosfonianową [M. Kalek et al. „Enzymatically stable 5' mRNA cap analogs” (2006) Bioorg. Med. Chem. vol. 14, 3223-3230] oraz tiofosforanową [J. Kowalska et al. „Synthesis and characterization of mRNA cap analogs containing phosphorothioate substitutions that bind tightly to elF4E and are resistant to the decapping pyrophosphatase DcpS” (2008) RNA, vol. 14, 1119-1131]. Według tego podejścia dwa mononukleotydy, z których jeden uprzednio zaktywowano w postaci odpowiedniego imidazolidu, są sprzęgane w DMF. Reakcja jest w dużym stopniu ułatwiona przez zastosowanie 8-molowego nadmiaru ZnCl2, który jednocześnie znacząco zwiększa rozpuszczalność reagentów w medium organicznym, zapobiega hydrolizie imidazolowych pochodnych, oraz przyspiesza szybkość reakcji. Inne chlorki metali np. MnCl2, CdCl2, MgCl2 są również zdolne do promowania tworzenia wiązania pirofosforanowego jednak zazwyczaj z mniejszą wydajnością niż ZnCl2 [M. Kadokura et al., „Efficient synthesis of γ-methyl-capped guanosine 5'-triphosphate as a 5'-terminal unique structure of U6 RNA via a new triphosphate bond formation involving activation of methyl phosphorimidazolidate using ZnCl2 as a catalyst in DMF under anhydrous conditions”, Tetrahedron Lett., vol. 38, pp. 8359-8362 (1997)]. Podobną do opisanej metodologię, z kilkoma modyfikacjami, zastosowaliśmy do syntezy różnych analogów kapu zawierających mieszane bezwodnikowe wiązanie fosforano-boranofosforanowe. Najlepsze rezultaty w reakcjach sprzęgania otrzymaliśmy jednak z zastosowaniem MgCl2, a nie ZnCl2. W obecności chlorku cynku reakcje sprzęgania również zachodziły,
PL 215 513 B1 ale towarzyszyły im w znacznej mierze procesy uboczne związane z rozszczepieniem wiązania P-BH3 w środowisku kwaśnym (generowanym przez ZnCl2).
Drogi syntezy prowadzące do otrzymania różnych analogów kapu zawierających modyfikację boranofosforanową w pozycjach α, lub β mostka trifosforanowego przedstawiono odpowiednio na fig. 1, fig. 2, fig. 3 i fig. 4.
Synteza analogów modyfikowanych grupą boranofosforanową w pozycji α przedstawiona jest na fig. 1. W celu dokonania tej syntezy, opracowano najpierw metodę syntezy kluczowego związku pośredniego - 5'-O-boranofosforanu guanozyny. Materiałem wyjściowym do syntezy był 5'-H-fosfonian odpowiedniego nukleozydu, który poddano sililowaniu za pomocą BSA (N,O-bis(trimetylosililo)acetamidu), a otrzymany pośredni bis(trimetylosililo)fosforyn bez izolacji, poddano boranowaniu za pomocą kompleksu BH3 · SMe2. Następcza hydroliza i oczyszczanie za pomocą chromatografii jonowymiennej, prowadziły do pożądanego 5'-O-boranofosforan nukleozydu z wydajnością około 30%. W celu otrzymania analogu kapu m7 GpppBH3G oraz analogu kapu typu ARCA m27,2'-O GpppBH3G, 5'-O-boranofosforan guanozyny sprzęgano odpowiednio z imidazolową pochodną m7GDP lub m27,2'-OGDP w mieszaninie woda/DMF 9:1 w obecności nadmiaru chlorku magnezu. W obu przypadkach pożądany analog kapu powstaje jako mieszanina dwóch P-diastereoizomerów, które można rozdzielić techniką HPLC. Diastereoizomerom przypisano oznaczenia D1 i D2, zgodnie z kolejnością elucji z kolumny RP HPLC.
Synteza analogów modyfikowanych grupą boranofosforanową w pozycji β przedstawiona jest na fig. 2. Sól trietyloamoniową boranofosforanu zsyntetyzowano według zmodyfikowanej procedury opracowanej przez Nahum i wsp [V. Nahum i B. J. Inorg. Chem. vol. 20, 4124-4131 (2004)]. Według oryginalnej procedury, tris(trimetylosililo)fosforyn poddawany jest reakcji boranowania za pomocą kompleksu BH3 · SMe2, następcza solwoliza w metanolu w obecności odpowiedniej zasady (np. NH3. NBu3 etc.), pozwala na otrzymanie boranofosforanu w postaci soli (odpowiednio amonowej, tributyloamoniowej itd.), po uprzednim odparowaniu pozostałych, lotnych składników mieszaniny reakcyjnej. Jednakże, otrzymany przez nas w ten sposób boranofosforan był znacznie (nawet do 20%, jak stwier31 dzono za pomocą 31P NMR) zanieczyszczony fosforanem (III), który w trakcie dalszych eksperymentów okazał się niepożądanym produktem, przeszkadzającym w reakcji sprzęgania. Obecność fosforanu (III) wynikała prawdopodobnie z tego, że tris(trimetylosililofosforyn) częściowo hydrolizuje w warunkach reakcji do bis(trimetylosililo)fosforynu, którego równowaga tautomeryczna przesuniętą jest zdecydowanie w stronę formy H-fosfonianowej i dlatego nie ulega on reakcji boranowania. Rozwiązaniem tego problemu okazało się dodanie do mieszaniny reakcyjnej nadmiaru odczynnika sililującego (BSA), który zapobiegał tworzeniu się bis(trimetylosililo)fosforynu. Otrzymaną sól trietyloamoniową boranofosforanu sprzęgano z nadmiarem imidazolowej pochodnej 5'-monofosforanu guanozyny otrzymując symetryczny 5', 5”-O,O-(2-boranotrifosforan) diguanozyny (GppBH3pG, fig. 2). Związek został następnie poddany działaniu jodku metylu w DMSO, w celu wprowadzenia grupy metylowej w pozycję N7 guanozyny (fig. 2, krok ii). W reakcji tej powstaje mieszanina mono- i dimetylowanego analogu kapu (m7GppBH3pG i m7GppBH3pm7G). Wzajemny stosunek otrzymanych produktów mono- i dimetylowanych, może być kontrolowany poprzez staranne dobranie warunków reakcji. W obecności około 4-krotnego nadmiaru CH3I jako główny produkt powstaje m7GppBH3pG (ok. 70% wydajności HPLC), natomiast przy zastosowaniu większego nadmiaru CH3I (8-10eq.) m7GppBH3pm7G jest produktem przeważającym (ok. 50% w. HPLC). Jednakże, w przypadku tego związku bardziej efektywną, jednoetapową drogą syntezy jest sprzęganie boranofosforanu z imidazolową pochodną 5'-O-monofosforanu
7-metyloguanozyny, pozwalające na wyizolowanie go z 34% wydajnością (fig. 3).
W celu otrzymania modyfikowanego w pozycji β analogu typu ARCA przeprowadzono kilka prób otrzymania kluczowego dla tej syntezy związku pośredniego, 5'-O-(2-boranodifosforanu) 7,2'-O-di7,2'-Ο metyloguanozyny (m2 7 - GDPβΒΗ3). Mimo, iż analiza MS ESI (-) produktów sprzęgania imidazolowej
7,2'-Ο pochodnej m2 7 - GMP-Im z nadmiarem soli trietyloamoniowej boranofosforanu w DMF w obecności MgCI2 wskazywała na powstawanie pożądanego produktu, to jednak związku tego nie udało się wyizolować w zadowalających ilościach. Prawdopodobną przyczyną jest jego zaobserwowana nietrwa772'-Ο łość w roztworach wodnych (hydrolizuje do m2 7 - GMP), uniemożliwiająca oczyszczanie w procesie
772'-Ο chromatografii jonowymiennej. Syntezy dokonano zatem, otrzymując m2 7 - GDPBBH3 w reakcji
772'-Ο m2 7 - GMP-Im z nadmiarem soli trietyloamoniowej boranofosforanu i tak otrzymany związek, bez izolacji, poddano następczej reakcji z nadmiarem imidazolowej pochodnej GMP (fig. 4).
Inne analogi objęte wzorem ogólnym 1 otrzymuje się w reakcjach analogicznych do przedstawionych na fig. 17 27 3 i 4.
PL 215 513 B1
Na załączonych rysunkach fig. 1 do fig. 4 przedstawiają syntezę otrzymanych nowych analogów, fig. 5 pokazuje wydajność translacji, fig. 6 pokazuje inhibicję translacji przez boranofosforanowe analogi kapu, fig. 7 pokazuje inhibicję translacji po 60 minutach preinkubacji analogu kapu w lizacie z retikulocytów króliczych przed startem translacji.
Opisane niżej eksperymenty i przykłady bliżej ilustrują wynalazek.
Syntezy boranofosforanowych analogów kapu
Nukleotydowe związki pośrednie były oczyszczane przy użyciu kolumnowej chromatografii jo3nowymiennej na DEAD-Sephadex A-25 (HCO3- forma) przy użyciu liniowego gradientu wodorowęglanu trietyloamoniowego (TEAB) w dejonizowanej wodzie. W wyniku oczyszczania otrzymywano produkty w postaci soli trietyloamoniowych po uprzednim odparowaniu roztworu z dodatkiem etanolu pod zmniejszonym ciśnieniem. Finalne produkty (analogi kapu) były rozdzielane przez półpreparatywne HPLC, a następnie liofilizowane w wyniku czego otrzymywano produkty końcowe w postaci soli amonowych. Analityczne HPLC wykonywano na aparacie Agilent 1100 Series wyposażonym w kolumnę Supelcosil LC-18-T RP (4.6 x 250 mm, przepływ 1.3 ml/min) stosując 0-25% metanolu w 0.05 M octanie amonu pH 5.9 i detekcję UV przy 260 nm oraz detekcję fluorescencyjną stosując wzbudzanie przy 280 nm i detekcję fluorescencji przy 337nm. Półpreparatywne HPLC przeprowadzano na aparacie Waters 600E Multisolvent Delivery System wyposażonym w kolumnę RP Waters HR-C-18 (19 x 300 mm, przepływ 5.0 ml/min) stosując liniowy gradient metanolu w 0.05 M octanie amonu, pH 5.9, i detekcję 1 31
UV przy 260 nm. Widma H NMR i P NMR były zarejestrowane w temperaturze 25°C na aparacie
Varian UNITY-plus odpowiednio przy 399.94 MHz i 161.90 MHz. Przesunięcia chemiczne w 1H NMR podano w odniesieniu do 3-trimetylosilylo-[2,2,3,3-D4]-propionianu sodu (TSP) w D2O jako wzorca 31 wewnętrznego. Przesunięcia chemiczne w 31P NMR podano w odniesieniu do 20% kwasu fosforowego w D2O jako wzorca zewnętrznego. Widma masowe rejestrowano na aparacie Micromass QToF 1 MS stosując jonizację elektrosprej w trybie jonów ujemnych (ESI (-)).
Rozpuszczalniki oraz inne odczynniki zakupiono z Sigma-Aldrich i używano bez dalszej obróbki chyba, że w tekście zaznaczono inaczej. Acetonitryl i aceton przed użyciem destylowano znad P2O5 i przechowywano nad sitami molekularnymi 4A. GMP i GDP zakupiono z Sigma-Aldrich i przekształ7,2'-Ο cono w sól trietyloamoniową stosując żywicę jonowymienną Dowex 50 WX 8. m2 , - GMP
7,2'-Ο i m2 , - GDP otrzymano stosując metody opisane wcześniej [J. Jemielity et al. „Novel 'anti-reverse' cap analogues with superior translational properties”, RNA, vol. 9, pp. 1108-1122 (2003)]. 2'-O-metyloguanozyna została otrzymana według procedury opisanej wcześniej. [J. Kusmierek et al. „A new route to 2'(3')-O-alkyl purine nucleosides”, Nucleic Acids Res. vol. 1, pp. 73-77, Special Publication
No. 4 (1978).]. 2',3'-O,O-izopropylidenoguanozynę otrzymano według procedury opisanej wcześniej.
7,2'-Ο
Ogólna procedura otrzymywania imidazolowych pochodnych (GMP-Im, m2 , - GMP-Im,
7,2'-Ο
GDP-Im, and m2 , - GDP-Im) [T. Mukaiyama, et al. „Phosphorylation by oxidation-reduction condensation. Preparation of active phosphorylating reagents”, M. Bull. Chem. Soc. Jpn, vol. 44, 2284 (1971)].
Odpowiedni nukleotyd (1 mmol, TEA salt), imidazol (8 mmol), i 2,2'-dithiodipirydyna (3 mmol) zostały zmieszane w DMF (około 10 ml). Następnie dodano trietyloaminę (2 mmol) i trifenylfosfinę (3 mmol) i całość mieszano przez 6-8 h. Produkt wytrącono z mieszaniny reakcyjnej roztworem nadchloranu sodu w bezwodnym acetonie (1 mmol na ładunek ujemny) (50 ml). Po ochłodzeniu do 0°C osad przesączono, i kilkakrotnie przemyto bezwodnym acetonem, a następnie osad suszono nad P4O10. Wydajności 80-100%.
P r z y k ł a d I
5'-H-fosfonian guanozyny [M. Yoshikawa et al. „Studies of phosphorylation. IV. The phosphorylation of nucleosides with phosphorus trihalide”, Bull. Chem. Soc. Jpn, vol. 43, 456-461 (1970)].
2',3'-0,0-izopropylidenoguanozynę (1,3 g, 4,0 mmol) zawieszono w 19,5 ml fosforanu trimetylu i mieszaninę ochłodzono na łaźni lodowej. Następnie dodano PCI3 (1,06 ml, 12,1 mmol) i mieszano na łaźni lodowej do osiągnięcia klarownego roztworu (ok. 60 min). Następnie mieszaninę reakcyjną rozcieńczono wodą (80 ml) i doprowadzono za pomocą stałego NaHCO3 do pH ok. 1,5. Otrzymany roztwór ogrzewano przez 40-60 min w temp. 70°C, pozostawiono do ochłodzenia do temp. pokojowej, doprowadzono do pH ok. 5 za pomocą stałego NaHCO3, rozcieńczono dwukrotnie wodą, po czym naniesiono na kolumnę jonowymienną Sephadex i rozdzielano stosując 0-0,9 M gradient TEAB. Frakcje wymyte przy stężeniu buforu 0,6-0,65 M zawierające 39,5 tys. jednostek optycznych produktu
PL 215 513 B1 połączono, odparowano i wysuszono w eksykatorze próżniowym nad P2O5. Otrzymano 1,34 g (3,0 mmol) soli trietyloamoniowej 5'-H-fosfonianu guanozyny (wydajność 74%).
ESI MS (-) m/z: 346,08 (wartość obliczona dla C10H13N5O7P: 346,06);
1H NMR δ (ppm): 8,08 (1H, s, H8); 6,73 (1H, d, J = 640 Hz, H-P); 5,93 (1H, d, J = ~5,4 Hz, H1'); 4,77 (1H, t, J = ~5,4 Hz); 4,48 (1H, t, J = 3,2 Hz); 4,32 (1H, m, H4'); 4,11 (2H, m, H5' i H5) 31P NMR δ (ppm): 7,07 (1P, dt, J = 640 Hz, J = 6,0 Hz).
5'-O-boranofosforan guanozyny (GMPBH3, sól trietyloamoniowa)
5'-H-fosfonian guanozyny (1,03 g, 2,30 mmol) umieszczono w kolbie okrągłodennej zawieszono w 30 ml suchego acetonitrylu, kolbę zamknięto gumowym septum zaopatrzonym w dwie igły i przez mieszaninę przepuszczano argon przez ok. 30 min. Następnie do zawiesiny dodano za pomocą strzykawki BSA (11,3 ml, 46 mmol) i intensywnie mieszano do momentu otrzymania klarownego roztworu i dodatkowo przez 30 min. Po tym czasie kolbę umieszczono w łaźni lodowej, dodano za pomocą strzykawki 5,7 ml 2M roztworu BH3 · SMe2 w THF (11,5 mmol BH3), po 5 min łaźnię usunięto i kontynuowano mieszanie przez 30 min. Roztwór odparowano pod zmniejszonym ciśnieniem do oleistej pozostałości, po czym ponownie umieszczono na łaźni lodowej i dodano 60 ml metanolu i 3 ml 2M roztworu NH3 w etanolu i mieszano przez 2h w temp pokojowej. Roztwór odparowano pod zmniejszonym ciśnieniem do sucha, po czym rozpuszczono w 100 ml wody i przeekstrahowano jednokrotnie 20 ml eteru dietylowego. Resztki eteru z warstwy wodnej odpędzono pod zmniejszonym ciśnieniem i roztwór naniesiono na kolumnę jonowymienną Sephadex i rozdzielano stosując 0-0,9 M gradient TEAB. Z połączonych frakcji zawierających 13,2 tys. j. optycznych produktu po odparowaniu do sucha i liofilizacji otrzymano 410 mg soli trietyloamoniowej 5'-O-boranofosforanu guanozyny (Wydajność 32%).
ESI MS (-) m/z: 360,13 (wartość obliczona dla C10H16N5O7P11B: 360,09) 1H NMR δ (ppm): 8,17 (1H, s, H8); 5,82 (1H, d, J=6,0 Hz, H1'); 4,74 (1H, t, H2'); 4,47 (1H, t, H3'); 4,32 (1H, m, H4'), 4,03 (2H, m, H5' i H5) 31P NMR δ (ppm): 79,05 (1P, ~qq, J= 158 Hz, J= 22,5 Hz).
Synteza m7GpppBH3G
Do GMPBH3 (50 mg, 0,089 mmol, sól TEA) i m7GDP-Im (100 mg, 0,18 mmol, sól Na) w 2,5 ml mieszaniny DMF/H2O (9:1), dodano, niewielkimi porcjami, bezwodny MgCl2 (110 mg, 1,16 mmol), po czym mieszaninę intensywnie wytrząsano do momentu rozpuszczenia reagentów. Następnie roztwór mieszano przez 3 dni w temperaturze pokojowej. Reakcję zakończono dodając roztwór EDTA (430 mg, l, 16 mmol) w 25 ml wody i doprowadzono do pH ok. 6 za pomocą stałego NaHCO3. Produkty oczyszczono za pomocą chromatografii jonowymiennej stosując 0-1,2 M gradient TEAB. Otrzymano 685 jednostek optycznych (λ = 260 nm) diastereomerycznej mieszaniny m7GpppBH3G. Diastereoizomery rozdzielono następnie za pomocą półpreparatywnego HPLC, a zebrane frakcje trzykrotnie zliofilizo7,2'-Ο 7,2'-Ο wano. Wydajność po rozdziale HPLC: m2 , - GpppBH3G (D1) 13,4 mg i oraz m2 , - GpppBH3G (D2) 7,3 mg w postaci soli amonowych (odpowiednio 18% i 9,8%).
ESI MS (-) m/z: 799,22 (wartość obliczona dla C21H31N10O17P3B: 799,12)
D1 = 1H NMR δ (ppm): 8,93 (1H, s. H8 m7G); 7,99 (1H, s, H8 G); 5,79 (1H, d, J=3,2 Hz, Η1' m7G); 5,73 (1H, d, J=6,0 Hz, Η1' G); 4,59 (1H, ~t, H2' G); 4,48 (1H, dd, J=4,4 Hz, J= 3,2 Hz, H2' m7G); 4,40 (1H, m, H3; G); 4,37 (1H, m, H3' m7G); 4,27 (3H, nałożone m, H4', H5', H5); 4,13 (3H, nałożone m, H4', H5', H5); 3,95 (3H, s, CH3); 0,34 (3H, szeroki m, BH3) 31P NMR δ (ppm): 84,07 (1P, m, Pα (Pbhs)); -11,29 (1P, d, J=19,4 Hz, PY); -22,95 (1P, dd, J=19,4 Hz, J=30,0 Hz, Ρβ)
D2: 1H NMR δ (ppm): 8,87 (1H, s, H8 m7G); 7,95 (1H, s, H8 G); 5,79 (1H, d, J=~ 2 Hz, H1'm7G); 5,68 (1H, d, J = 5,4 Hz, Η1' G); 4,62 (1H, ~t, H2' G); 4,50 (1H, ~t, H2' m7G); 4,41 (1H, m, H3' G); 4,37 (1H, m, H3' m7G); 4,25 (3H, nałożone m, H4', H5', H5); 4,15 (3H, nałożone m, H4', H5', H5); 3,93 (3H, s, CH3); 0,34 (3H, szeroki m, BH3) 31PNMR δ (ppm): 84,0 (1Ρ, m, Ρα (Pbh3)); -11,38 (1Ρ, s, Ργ); -22,88 (1Ρ, s, Ρβ).
P r z y k ł a d II
7,2'-Ο
Synteza m2- GpppBH3G
Do zawiesiny GMPBH3 (30 mg, 0,053 mmol, sól TEA) i m2 7,2-°GDP-im (60 mg, 0,11 mmol, sól Na) w 1,5 ml mieszaniny DMF/H2O (9:1), dodano, niewielkimi porcjami, bezwodny MgCI2 (80 mg, 0,85 mmol) po czym mieszaninę intensywnie wytrząsano do momentu rozpuszczenia reagentów. Następnie roztwór mieszano przez 4 dni w temperaturze pokojowej. Reakcję zakończono poprzez dodanie roztworu EDTA (320 mg, 0,85 mmol) w 15 ml wody i doprowadzono do pH ok. 6 za pomocą stałego NaHCO3. Produkty oczyszczono za pomocą chromatografii jonowymiennej stosując 0-1,2 M graPL 215 513 B1 dient TEAB. Otrzymano 520 jednostek optycznych (λ=260 nm) diastereomerycznej mieszaniny
7,2'-Ο m2 , - GpppBH3G. Diastereoizomery rozdzielono następnie za pomocą półpreparatywnego HPLC,
7,2'-Ο zebrane frakcje trzykrotnie zliofilizowano. Wydajność po rozdziale HPLC: m2 , - GpppBH3G (D1) 6,1 mg
7,2'-Ο i oraz m2 , - GpppBH3G (D2) 3,7 mg w postaci soli amonowych (odpowiednio 13,4% i 8%).
ESI MS (-) m/z: 813,15 (wartość obliczona dla C22H33N10O17P311B: 813,13)
D1 = 1H NMR δ (ppm): 9,03 (1H, s, H8 m7G); 8,09 (1H, s, H8G); 5,95 (1H, d, J=2,7 Hz, H1' m7G); 5,84 (1H, d, J=6,0 Hz, H1' G); 4,70 (1H, dd, J=6,0 Hz, J=5,1 Hz, H2' G); 4,56 (1H, ~t, H3' m7G); 4,50 (1H, dd, J=3,5 Hz, 5,1 Hz, H3' G); 4,41 (1H, m, H5' G); 4,34 (2H, m, nałożone H4' m7G, H4'G); 4,27 (2H, m nałożone, H2' m7G, H5G); 4,24 (2H, m, H5', H5 m7G); 4,08 (3H, s, N-CH3); 3,60 (3H, s, O-CH3), 0,40 (3H, m, BH3).
31P NMR δ (ppm): 83,7 (1P, m, Pα (Pbh3)), -11,30 (1P, d, J=19,5 Hz, Ργ); -22,91 (1P, dd, J=19,5 Hz, J=30,0 Hz, Pp)
D2: 1H NMR δ (ppm): 8,98 (1H, s, H8 m7G); 8,06 (1H, s, H8G); 5,96 (1H, d, J=2,7 Hz, H1' m7G);
5,79 (1H, d, J=5,9 Hz, H1' G); 4,61 (1H, ~t, H2' G); 4,50 (1H, ~t, H3' m7G); 4,45 (1H, dd, J=3,5 Hz, 5,1 Hz, H3' G); 4,34 (2H, m (nałożone), H4' m7G, H5' G); 4,26 (3H, m (nałożone), H2' m7G, H4' G, H5G); 4,20 (2H, m, H5', H5 m7G); 4,06 (3H, s, N-CH3); 3,61 (3H, s, O-CH3), 0,40 (3H, m, BH3).
31P NMR δ (ppm): 83,7 (1Ρ, m, Ρα (Pbhs)), - 11,41 (1Ρ, d, J=19,0 Hz, Ργ); -22,87 (1Ρ, dd, J=19,0 Hz, J=32,0 Hz Ρβ).
P r z y k ł a d III
Sól trietyloamoniowa kwasu boranofosforanowego [zmodyfikowana procedura opisana wcześniej przez V. Nahum i B. Fischer w publikacji „Boranophosphate Salts as an Excellent Mimic of Phosphate Salts: Preparation, Characterization, and Properties” J. lnorg. Chem. vol. 20, 4124-4131 (2004)].
Tris(trimetyiosililo)fosforyn (600 pi, 1,8 mmol) umieszczono w kolbie okrągłodennej zawierającej 5 ml suchego acetonitrylu. Kolbę zamknięto gumowym septum zaopatrzonym w dwie igły i przez mieszaninę przepuszczano argon przez ok. 30 min. Następnie za pomocą strzykawki dodano do roztworu BSA (1,5 ml, 5,4 mmol). Po ok. 30 min kolbę umieszczono w łaźni lodowej, dodano za pomocą strzykawki 1,35 mi 2M roztworu BH3 · SMe2 w THF, po 5 min łaźnię usunięto i kontynuowano mieszanie przez 30 min. Roztwór odparowano pod zmniejszonym ciśnieniem do oleistej pozostałości, po czym ponownie umieszczono na łaźni lodowej i dodano 20 ml metanolu oraz 500 pi (3,6 mmoi) trietyioaminy, po czym mieszano przez 2 h w temp. pokojowej. Roztwór odparowano pod zmniejszonym ciśnieniem do sucha i pozostałość wysuszono w eksykatorze próżniowym nad P2O5. Otrzymano 530 mg (17,8 mmoi) [HN(CH2CH3)3]2HPO3BH3 (wydajność 97%) Tak otrzymaną sól trietyloamoniową boranofosforanu przechowywano w szczelnie zamkniętym naczyniu w temperaturze 4°C i w tej postaci używano do daiszych reakcji.
1H NMR δ (ppm): 0,33 (~dq, JB-H = 87,8 Hz, JP-H = 22,3 Hz) 31P NMR δ (ppm): 84,3 (~qq, JP-B = 147 Hz, JP-H = 22,3 Hz).
Synteza GppBH3pG
Imidazlolową pochodną GMP (GMP-Im) (200 mg, 0,46 mmol) oraz sól trietyloamoniową boranofosforanu (70 mg, 0,23 mmoi) w 4 mi DMF i dodano (380 mg, 4 mmoi) bezwodnego MgCi2. Po 1h reakcję zakończono poprzez dodanie roztworu EDTA (1,48 g, 4 mmol) w 40 ml H2O i doprowadzono do pH 6 za pomocą stałego NaHCO3. Produkt oczyszczono za pomocą chromatografii jonowymiennej stosując 0-1,2 M gradient TEAB. Po odparowaniu otrzymano 165 mg (4000 j.opt) GppBH3pG w postaci soli trietyloamoniowej. Wydajność ~65%
ESI MS (-) m/z: 785,12 (wartość obliczona dla C20H29N10O17P3B: 785,10) 1H NMR δ (ppm): 8,11 (1H, s, H8 GA*); 8,09 (1H, s, H8 GB); 5,84 (2H, d, J=5,2 Hz, Η1' GAB); 4,69 (2H, ~t, J=5,1 Hz, H2' GAB); 4,50 (1H, ~t, H3' GAiubB); 4,49 (1H, ~t, H3' GAiubB); 4,31 (2H, m, H4' GAB); 4,24 (4H, m, H5' GAB, H5 GAB). *Indeksy A i B oznaczają protony diastereotopowe.
31P NMR δ (ppm): 75,10 (1Ρ, m, Ρβ(ΡΒΗ3)), -11,20 (1Pa*, ~dt, J=30,2 Hz, J=~5Hz), -11,28 B (1PB*, ~dt, J=30,2 Hz, J=~5Hz). *Indeksy A i B oznaczają jądra diastereotopowe.
Synteza m7GppBH3pG
GppBH3pG (35 mg, 800 j. opt.) rozpuszczono w 1,5 ml DMSO i dodano 20 pi jodku metyiu. Po ~4h rekcje zakończono poprzez dodanie 15 ml H2O i doprowadzono do pH 7 za pomocą stałego NaHCO3. Produkt oczyszczono za pomocą chromatografii jonowymiennej stosując 0-1,2 M gradient TEAB. Zebrano 550 jednostek optycznych diastereomerycznej mieszaniny m7GppBH3pG. Po połączeniu i odparowaniu frakcji zawierających pożądany produkt rozpuszczono je w niewielkiej ilości wody i zamieniono w sól sodową na złożu Dowex. Następnie, diastereoizomery rozdzielono za pomocą
PL 215 513 B1 półpreparatywnego HPLC, zebrane frakcje trzykrotnie zliofilizowano. Wydajność po rozdziale HPLC: m7GppBH3pG (D1) 10,2 mg i oraz m27GppBH3pG (D2) 9,8 mg w postaci soli amonowych (odpowiednio 37,2% i 35,6%).
ESI MS (-) m/z: 799,3 (wartość obliczona dla C21H31N10O17P3B: 799,12).
D1: 1H NMR δ (ppm): 8,02 (1H, s, H8G); 5,89 (1H, d, J=3,0 Hz, H8 m7G); 5,80 (1H, d, J=6,2 Hz, H8G); 4, 68 (1H, ~t, H2' G); 4,51 (1H, ~t, H2' m7G); 4,50 (1H, ~t, H3' G);
4,42 (1H, ~t, H3' G); 4,35 (3H, m (nałożone), H4', H5', H5 G); 4,22 (3H, m (nałożone), H4', H5', H5 m7G), 4,06 (3H, s, CH3), 0,53 (3H, m, BH3);
31P NMR δ (ppm): 75,1 (1P, m, Pp(Pbh3)), - 11,3 (2P, ~d, JPc(-pp = 30,7 Hz, 2 x Pa).
D2: 1H NMR δ (ppm): 8,04 (1H, s, H8G); 5,92 (1H, d, J=3,0 Hz, H8 m7G); 5,82 (1H, d, J=6,2 Hz, H8G); 4, 68 (1H, ~t, H2' G); 4,51 (1H, ~t, H2' m7G); 4,50 (1H, ~t, H3' G);
4,42 (1H, ~t, H3' G); 4,35 (3H, m (nałożone), H4', H5', H5 G); 4,22 (3H, m (nałożone), H4', H5', H5 m7G), 4,06 (3H, s, CH3); 0,53 (3H, m, BH3);
31P NMR δ (ppm): 75,13 (1P, m, Pp(Pbh3)), -11,31 (2P, ~d, Jpa.pp = 30,7 Hz, 2 x Pa).
P r z y k ł a d IV
Synteza m7GppBH3pm7G
GppBH3pG (sól trietyloamoniowa, 50 mg, 570 j. optycznych) rozpuszczono w 1 ml DMSO i dodano 30 μΐ jodku metylu. Po ok. 2h dodano jeszcze 30 μΐ jodku metylu. Po kolejnych dwóch godzinach reakcję zakończono poprzez dodanie roztworu H2O i doprowadzono do pH 7 za pomocą stałego NaHCO3. Produkt oczyszczono za pomocą chromatografii jonowymiennej stosując 0-1,2 M gradient TEAB. Otrzymano 200 j. optycznych produktu, który zamieniono następnie w sól sodową na złożu Dowex. Po wytrąceniu etanolem i wysuszeniu nad P2O5 otrzymano 22 mg soli sodowej m7GppBH3pm7G (~54%).
ESI MS (-) m/z: 813,10 (wartość obliczona dla C22H33N10O17P311B: 813,13) 1H NMR δ (ppm): 9,02 (2H, s, H8 m7G); 6,04 (2H, d, J=3,7 Hz, H2' G); 4,67 (2H, ~t, H2' m7G); 4,53 (2H, ~t, H3' m7G); 4,40 (2H, m, H4' m7G); 4,36 (2H, m, H5' m7G); 4,23 (2H, m, H5 m7G); 4,13 (6H, s, CH3); 0,44 (3H, m, BH3) 31P NMR δ (ppm): 74,90 (1P, m, Pp(PBH3)), -11,33 (1PA*, ~d, JPc-Pp = 31,0 Hz), -11,36 (1PB*, ~d, JPc-Pp = 31,0 Hz). * Indeksy A i B oznaczają protony diastereotopowe.
P r z y k ł a d V
Synteza m7GppBH3pm7G (Wariant II)
Imidazlolową pochodną m7GMP (m7GMP-Im sól sodowa, 225 mg, 0,5 mmol) oraz sól trietyloamoniową boranofosforanu (75 mg, 0,25 mmol) zawieszono w 4 ml DMF i dodano (380 mg, 4 mmol) bezwodnego MgCl2. Po 1h reakcję zakończono poprzez dodanie roztworu EDTA (1,48 g, 4 mmol) w 40 ml H2O i doprowadzono do pH 6 za pomocą stałego NaHCO3. Produkt oczyszczono za pomocą chromatografii jonowymiennej stosując 0-1,1 M gradient TEAB. Po połączeniu i odparowaniu frakcji zawierających pożądany produkt rozpuszczono je w niewielkiej ilości wody i zamieniono w sól sodową na złożu Dowex. Po wytrąceniu etanolem i wysuszeniu w eksykatorze próżniowym nad P2O5 uzyskano 150 mg soli sodowej m7GppBH3pm7G (wydajność 34%). Dane spektralne - jak wyżej.
P r z y k ł a d VI
7,2'-Ο
Synteza m2- GppBH3pG
Do zawiesiny m2 , - GMP-Im (15 mg, 0,03 mmol, sól Na) i PBH3 (30 mg, 1 mmol, sól TEA) w 0,5 ml DMF, dodano, niewielkimi porcjami, bezwodny MgCl2 (40 mg, 0,4 mmol) po czym mieszaninę intensywnie wytrząsano do momentu rozpuszczenia reagentów (1-2 min). Następnie do mieszaniny reakcyjnej dodano GMP-Im (40 mg, 0,09 mmol) oraz 40 mg MgCl2. Reakcję zakończono po ok. 5h poprzez dodanie roztworu EDTA (300 mg, 0,8 mmol) w 10 ml wody i doprowadzono do pH 6 za pomocą stałego NaHCO3. Produkty oczyszczono za pomocą półpreparatywnego HPLC, a zebrane frakcje
7,2'-Ο 7,2'-Ο trzykrotnie zliofilizowano. Otrzymano: m2 , - GppBH3pG (D1) 5,1 mg oraz m2 , - GppBH3pG (D2) 4,8 mg w postaci soli amonowych (wydajność odpowiednio 18 i 17%).
ESI MS (-) m/z: 813,14 (wartość obliczona dla C22H33N10O17P311B: 813,13)
D1: 1H NMR δ (ppm): 9,04 (1H, s, H8 m7G); 8,10 (1H, s, H8G); 5,97 (1H, d, J=2,9 Hz, H1'm7G);
5,80 (1H, d, J=5,9 Hz, H1' G); 4,70 (1H, ~t, H2' G); 4,56 (1H, ~t, H3' m7G); 4,50 (1H, ~t Hz, H3' G);
4,41 (1H, m, H5' G); 4,34 (2H, m, nałożone H4' m7G, H4'G); 4,27 (2H, m nałożone, H2' m7G, H5G);
4,24 (2H, m, H5', H5 m7G); 4,08 (3H, s, N-CH3); 3,59 (3H, s, O-CH3), 0,45 (3H, m, BH3).
31P NMR δ (ppm): 75,12 (1P, m, Pp(PBH3)), -11,09 (2P, ~d, JPc-Pp = 30,7 Hz, 2 x Pc)
PL 215 513 B1
D2: 1H NMR δ (ppm): 9,00 (1H, s, H8 m7G); 8,08 (1H, s, H8G); 5,96 (1H, d, J=2,9 Hz, H1 m7G);
5,81 (1H, d, J=5,9 Hz, H1' G); 4,70 (1H, ~t, H2' G); 4,55 (1H, ~t, H3' m7G); 4,48 (1H, ~t, H3' G); 4,40 (2H, m (nałożone), H4' m7G, H5' G); 4,30 (3H, m (nałożone), H2' m7G, H4' G, H5 G); 4,25 (2H, m, H5', H5 m7G); 4,07 (3H, s, N-CH3); 3,62 (3H, s, O-CH3), 0,45 (3H, m, BH3).
31P NMR δ (ppm): 75,12 (1P, m, Pp(Pbh3)), -11,11 (2P, ~d, JPa-Pp = 30,7 Hz, 2 x Pa)
P r z y k ł a d VII
Wyznaczanie stałych asocjacji z białkiem eIF4E
Pomiary miareczkowania fluorescencyjnego zostały przeprowadzone przy użyciu spektrofluorymetru LS-50B (Perkin Elmer Co.) w buforze 50 mM HEPES/KOH (pH 7,2), 100 mM KCl, 0,5 mM
EDTA, 1 mM DTT w temperaturze 20,0 ± 0,2°C. Jednomikrolitrowe roztwory analogu kapu o zwiększającym się stężeniu były dodawane do 1,4 ml roztworu białka o stężeniu 0,1 μΜ. Intensywności fluorescencji (wzbudzenie przy 280 nm, szerokość spektralna szczeliny 2,2 nm, detekcja przy 337 nm, szerokość szczeliny 4 nm i 290 nm fitr cut-off) zostały skorygowane tak, by uwzględniały rozcieńczenie próbki i efekt filtra wewnętrznego. Równowagowe stałe asocjacji (KAS) zostały wyznaczone poprzez dopasowanie teoretycznej zależności intensywności fluorescencji od całkowitego stężenia analogu kapu, do eksperymentalnych punktów danych, zgodnie z wcześniej opisanym równaniem (A. Niedźwiecka et al. „Biophysical Studies of eIF4E Cap-binding Protein: Recognition of mRNA 5' Cap Structure and Synthetic Fragments of eIF4G and 4E-BP1 Proteins” J. Mol. Biol. (2002) vol. 312, 615-635). Stężenie białka zostało dopasowane jako wolny parametr równania równowagi pokazując ilość „aktywnego” białka. Ostatecznie podane wartości KAS zostały podane jako średnie ważone z 3-10 niezależnych miareczkowań, przy czym wagą były odwrotności kwadratów odchyleń standardowych. Numerycznie, nieliniowe dopasowania metodą najmniejszych kwadratów zostały przeprowadzone przy użyciu programu ORGIN 6.0 (Microcal Software Inc., USA).
Swobodne energie Gibbsa wiązania kapu do eIF4E zostały obliczone z wartości KAS zgodnie z równaniem standardowym AG° = - RT1 nKAS.
Badanie podatności na hydrolizę enzymem DcpS
Ekspresję ludzkiego enzymu DcpS przeprowadzono w Escherichia coli według opisanych
2,2,7 wcześniej procedur (L. Cohen et al. „Nematode m7GpppG and m32,2,7GpppG decapping: Activities in Ascaris embryos and characterization of C. elegans scavenger DcpS (2004), vol. 10, 1609-1624). Białko przechowywano w temp. -80°C w 20 mM buforze Tris, pH 7,5, zawierającym 50 mM KCl, 0,2 mM EDTA, 1 mM DTT, 0,5 mM PMSF oraz 20% glicerol.
Reakcje enzymatyczne prowadzono w temperaturze 30°C, w 50 mM buforze Tris, pH=7,9, zawierającym 20 mM of MgCl2 i 60 mM of (NH4)2SO4. Do 40 μΜ roztworu odpowiedniego analogu kapu w buforze dodawano 5 μΐ enzymu DcpS i inkubowano przez 120 min. Po 10, 30, 60 oraz 120 min od rozpoczęcia reakcji, z mieszaniny reakcyjnej pobierano próbki o objętości 100 μ|, dezaktywowano enzym przez 2 min w 90°C, po czym skład mieszaniny poreakcyjnej analizowano przy użyciu analitycznego HPLC stosując do elucji liniowy gradient metanolu w 0,1 M buforze KH2PO4 (0-50% w ciągu 15 min).
P r z y k ł a d VIII
Wydajność translacji mRNA kapowanych boranofosforanowymi analogami kapu
a. transkrypcja in vitro
Matrycą DNA do transkrypcji in vitro był produkt PCR zawierający sekwencję kodującą lucyferazę świetlika ('firefly luciferase') poprzedzoną bezpośrednio sekwencją 5'UTR mRNA b-globiny króliczej i promotorem dla DNA-zależnej polimerazy RNA SP6 (SP6p-5'UTR^globin-LUCiferase).
Reakcja transkrypcji in vitro prowadzona była standardowo w 50 μΙ mieszaniny reakcyjnej. Skład mieszaniny reakcyjnej (końcowe stężenia): bufor do transkrypcji przez polimerazę SP6-Fermentas, matryca DNA 2 μg (0,04 μg/μl), inhibitor RNaz - RiboLock - Fermentas (2υ/μΙ), ATP/CTP/UTP (2 mM), GTP (0,1 mM), dinukletydowy analog kapu (1 mM) [10-krotny nadmiar kapu w stosunku do GTP pozwala na przyłączenie struktury kapu do 5'-końca mRNA przez polimerazę RNA; poziom GTP jest następnie uzupełniany, aby uzyskać pełnej długości transkrypty]. Mieszanina była inkubowana przez 5 minut w 37°C przed dodaniem polimerazy SP6 - Fermentas (st. końcowe 2U^l). Reakcje prowadzono przez 30 minut w 37°C, a następnie dodano GTP do stężenia 1 mM i kontynuowano reakcję przez kolejne 90 minut.
Po reakcji transkrypcji wytrawiano matrycę DNA dodając do próbki DNazę (RQ1 DNase, RNase-free, Promega) w ilości 1U na 1 μg DNA. Reakcję prowadzono w buforze transkrypcyjnym przez 20 minut w 37°C.
PL 215 513 B1
Transkrypty RNA oczyszczono na złożu Sephadex G-50 ('spin kolumn chromatography'). Stężenie oznaczono spektrofotometrycznie. Wodne roztwory transkryptów przechowywano w -80°C.
b. wydajność translacji kapowanego mRNA w lizacie z retikulocytów króliczych (RRL) Reakcję translacji standardowo prowadzono w objętości 10 ul przez 60 minut w 30°C, dla warunków ustalonych dla kap-zależnej translacji. W skład mieszaniny translacyjnej wchodziły: lizat z retikulocytów króliczych - Promega7 Flexi RRL- (40% w końcowej objętości), mieszanina aminokwasów (0,01 mM), octan magnezu (1.2 mM), octan potasu (170 mM) i mRNA. Reakcja translacji prowadzona była dla 5 stężeń mRNA: 0.25/0.5/1/2 i 4 ng/μΗ Aktywność powstałej lucyferazy mierzono w luminometrze, wyniki naniesiono na wykres i do punktów dopasowano prostą (regresja liniowa). Wydajność translacji charakteryzowano poprzez współczynnik nachylenia dopasowanej prostej7 a wyniki porównywano do mRNA kapowanego in vitro m7GpppG (wydajność translacji = 1).
T a b e l a 2
Wydajność translacji in vitro mRNA lucyferazy kapowanego modyfikowanymi dinukleotydowymi analogami kapu w odniesieniu do m7GpppG-LUC-RNA.
Rodzaj kapu na 5' końcu LUC-RNA Wydajność translacji w odniesieniu do m7GpppG-kapowanego RNA
Numer eksperymentu 1 2 3 4 Średnia (+/- SD)
ApppG— 0734 0755 0753 0748 0748 ( 0709)
m7GpppG— 1 1 1 1 1
m7,3'O-GpppG— 2753 2792 2796 2750 2773 ( 0725)
m7GppBH3pG--- 1766 1742 1714 - 1741 (0726)
m7GppBH3pm7G--- - 2763 2791 2789 2781 (0716)
P r z y k ł a d IX
Inhibicja zależnej od kapu translacji w lizacie z retikulocytów króliczych przez boranofosforanów dinukleotydowe analogi kapu
Reakcję translacji in vitro standardowo prowadzono w objętości 12.5 μl przez 60 minut w 30°C, dla warunków ustalonych dla kap-zależnej translacji. Mieszanina reakcyjna była inkubowana przez 60 minut przed dodaniem inhibitora (kapu) i mRNA lucyferazy. W celu analizy stabilności badanych kapów w lizacie retikulocytów króliczych (rabbit reticulocyte lysate, RRL) dany analog był inkubowany w mieszaninie reakcyjnej przez 60 minut w 30°C, i następnie dodawano mRNA lucyferazy.
W skład mieszaniny translacyjnej wchodziły: lizat z retikulocytów króliczych - Promega7 Flexi RRL - (58% w końcowej objętości), mieszanina aminokwasów (0.01 mM), octan magnezu (1.2 mM), octan potasu (170 mM)> RiboLock inhibitor RNaz (0.32υ/μΟ, analog kapu (1/10 objętości reakcji) i mRNA lucyferazy. mRNA lucyferazy wykapowane m773'O-GpppG zostało otrzymane podczas transkrypcji in vitro. Otrzymane transkrypty m773'O-GpppG_rb-bglobin-UTR_LUC nie były poliadenylowane na końcu 3' RNA. Reakcje przeprowadzono dla zakresu stężeń inhibitora od 0.12 μΜ do 100 μΜ.
Aktywność lucyferazy w poszczególnych próbkach mierzono w luminometrze. Otrzymane wyniki analizowano na wykresie, i wyznaczano wartość IC50 przez dopasowanie do otrzymanych punktów krzywej o wzorze: y = Z/(1+x/IC50)+N (gdzie: y - cała translacja, Z - komponent kap-zależnej translacji, N - komponent kap-niezależnej translacji, x - stężenie inhibitora).
Badania biofizyczne i biochemiczne
Powinowactwo analogów kapu do białkowego czynnika inicjującego translację 4E (eIF4E; ang. eukaryotic initiation factor 4E), zostało wyznaczone metodą miareczkowania fluorescencyjnego. Stwierdzono, że wszystkie z badanych boranofosforanowych analogów kapu charakteryzują się stałymi asocjacji (KAS) nie mniejszymi lub większymi niż ich niemodyfikowane odpowiedniki (tabela 2).
Zbadano także podatność nowych analogów kapu na hydrolizę ludzkim enzymem DcpS. Postęp reakcji enzymatycznych monitorowano, za pomocą wysokosprawnej chromatografii cieczowej (HPLC). Stwierdzono, że wszystkie analogi zmodyfikowane w pozycji β łańcucha trifosforanowego, są odporne na hydrolizę enzymem DcpS (tabela 2).
Wydajność translacji mRNA kapowanych boranofosforanowymi analogami kapu testowano in vitro w lizatach z reticulocytów króliczych (rabbit reticulocyte lysate, RRL). mRNA zakończone boranofosforanowymi analogami kapu wykazują zwiększoną wydajność translacyjną w stosunku
PL 215 513 B1 do niemodyfikowanych mRNA, szczególnie w przypadku analogów mających zdolność do wbudowywania się do mRNA wyłącznie w prawidłowej orientacji (jak np. m7GppBH3pm7G oraz analogi metylowane w pozycji 2'- lub 3'- rybozy w obrębie 7-metyloguanozyny). Ze względu na ich zwiększoną odporność enzymatyczną, efekt ten będzie jeszcze bardziej widoczny in vivo.
Właściwości boranofosforanowych analogów kapu jako inhibitorów zależnej od kapu translacji, również testowano w lizatach z reticulocytów króliczych. Przeprowadzono dwa rodzaje eksperymentów, w których analog kapu dodawany był do RRL bądź razem z mRNA (warunki A), bądź też był preinkubowany w RRL przez 60 min przed dodaniem mRNA. W obu eksperymentach boranofosforanowe analogi kapu były dobrymi inhibitorami translacji (bądź lepszymi bądź porównywalnymi z m7GpppG). Co więcej, w przeciwieństwie do m7GpppG, preinkubacja tychże analogów w RRL nie osłabiała ich właściwości inhibitorowych (tabela 2, fig. 5 i fig. 6), co prawdopodobnie jest związane z ich zwiększoną odpornością na degradację przez enzymy o aktywności pirofosfataz.
T a b e l a 3
Biofizyczne właściwości boranofosforanowych analogów kapu
Analog kapu K.\s kap- eIF4E“ (μΜ1) Podatność na DcpS Względna wydajność translacji w odniesieniu do m7GpppG- kapowanego RNA Wartość IC50 w lizatach z retikulocytów króliczych (warunki A, bez preinkubacji) Wartość IC50 w lizatach z retikulocytów króliczych (warunki B, preinkubacja kapu przez 60 min)
m7GpppG 9.4 ± 0.4 hydrolizowany 1 9,75 ± 2,75 35,1 ± 10,8
m7Gpppm7G 5.0 ± 0.2 hydrolizowany N.B. N.B. N.B.
rr/GpppBmG (Dl) 14.5 ± 0.2 hydrolizowany N.B. N.B. N.B.
m'GpppBH3G (D2) 14.4 ± 0.6 hydrolizowany N.B. N.B. N.B.
m'GppBH3pG (Dl) 44 ±2 odporny 1.41 ±0.26 (dla mieszaniny Dl i D2) 1,70 ±0,60 1,49 ±0,68
m'GppBH3pG (D2) 13.0 ± 0.2 odporny 13 ± 8 3,9 ± 2,78
m7GppBH3pm7G 11.1 ± 0.2 odporny 2.81 ±0.16 9±3 2,66 ± 1,35
°GpppBH3G 10,8 ± 0,3 hydrolizowany N.B. N.B. N.B.
m27 3 ’ °GpPPBH3G 10,2 ± 0,3 hydrolizowany 2.73 ±0.25* N.B. N.B.
PL 215 513 B1

Claims (13)

1. Nowe boranofosforanowe analogi dinukleotydów o wzorze ogólnym 1, w którym Y1, Y2, Y3, Y4 oznaczają niezależnie O lub BH3, przy czym co najmniej jeden Y oznacza BH3, n wynosi 0 iub 1,
N oznacza grupę o wzorze 6 lub grupę o wzorze 7, w których:
R1 i R2 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3 iub OCH2CH3,
X oznacza metyi, etyi, propyi, butyi, benzyi, podstawiony benzyi, naftyiometyi iub podstawiony naftyiometyi,
B oznacza grupę o wzorze 2a, 2b, 3, 4 lub 5,
R3 i R4 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3 iub OCH2CH3 w postaci wolnej lub w postaci soli, ich diastereoizomery i mieszaniny diastereoizomerów.
2. Nowe boranofosforanowe analogi według zastrz. 1, w których B oznacza grupę o wzorze 2a iub 2b.
3. Nowe boranofosforanowe analogi według zastrz. 1, w których R3 i R4 oznaczają OH, N oznacza grupę o wzorze 6 lub 7, X oznacza metyl, etyl, propyl, butyl, benzyl, podstawiony benzyl, naftylometyi iub podstawiony naftyiometyl, B oznacza grupę o wzorze 2a, 2b, 3, 4, lub 5, a R1 i R2 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3, i OCH2CH3, przy czym jeżeli B oznacza grupę o wzorze 2a, 3, 4 lub 5 wówczas jeden spośród R1 i R2 ma znaczenie inne niż OH.
4. Nowe boranofosforanowe analogi według zastrz. 3, w których N oznacza grupę o wzorze 6, R2 oznacza OH, R1 oznacza H iub CH3, X oznacza metyi, n wynosi 0, a jeden spośród Y1, Y2, Y3 oznacza BH3.
5. Nowe boranofosforanowe analogi według zastrz. 1, w których grupa BH3 jest w pozycji β lub γ.
6. Nowe boranofosforanowe analogi dinukleozydów o wzorze ogólnym 1, w którym Y1, Y2, Y3, Y4 oznaczają niezależnie O lub BH3, przy czym co najmniej jeden Y oznacza BH3, n wynosi 0 iub 1,
PL 215 513 B1
N oznacza grupę o wzorze 6 lub grupę o wzorze 7, R1 i R2 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3 lub OCH2CH3, X oznacza metyl, etyl, propyl, butyl, benzyl, podstawiony benzyl, naftylometyl lub podstawiony naftylometyl, B oznacza grupę o wzorze 2a, 2b, 3, 4 lub 5, R3 i R4 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3 lub OCH2CH3 do zastosowania jako inhibitory zależnej od kapu translacji.
7. Nowe boranofosforanowe analogi według zastrz. 5 do zastosowania jako inhibitor translacji w komórkach nowotworowych.
8. Cząsteczka RNA zawierająca na końcu 5' nowy boranofosforanowy analog o ogólnym wzorze 1, w którym B oznacza grupę o wzorze 2a, 2b, 3, 4, lub 5, N oznacza grupę o wzorze 6 lub 7, X oznacza metyl, etyl, propyl, butyl, benzyl, podstawiony benzyl, naftylometyl lub podstawiony naftylometyl, a R1 i R2 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3, i OCH2CH3, R3 i R4 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3, i OCH2CH3, z tym że, jeżeli B oznacza grupę o wzorze 2a, 3, 4, lub 5, wówczas jeden spośród R1 i R2 ma znaczenie inne niż OH, natomiast R3 i R4 oznaczają OH, a jeżeli B oznacza grupę o wzorze 2 b, wówczas albo R1 i R2, albo R3 i R4 oznaczają OH, jego diastereoizomer lub mieszaninę diastereoizomerów.
9. Cząsteczka RNA według zastrz. 8, zawierająca na końcu 5' nowy boranofosforanowy analog, w którym grupa BH3 jest w pozycji β.
10. Cząsteczka RNA według zastrz. 8, zawierająca na końcu 5' nowy boranofosforanowy analog, w którym w których B oznacza grupę o wzorze 2a lub 2b.
11. Sposób otrzymywania in vitro RNA zawierającego na końcu 5' nowy boranofosforanowy analog o ogólnym wzorze 1, w którym B oznacza grupę o wzorze 2a, 2b, 3, 4, lub 5, N oznacza grupę o wzorze 6 lub 7, X oznacza metyl, etyl, propyl, butyl, benzyl, podstawiony benzyl, naftylometyl lub podstawiony naftylometyl, a R1 i R2 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3, i OCH2CH3, R3 i R4 oznaczają niezależnie H, OH, OCH3, i OCH2CH3, z tym że, jeżeli B oznacza grupę o wzorze 2a, 3, 4, lub 5, wówczas jeden spośród R1 i R2 ma znaczenie inne niż OH, natomiast R3 i R4 oznaczają OH, a jeżeli B oznacza grupę o wzorze 2 b, wówczas albo R1 i R2, albo R3 i R4 oznaczają OH, jego diastereoizomer lub mieszaninę diastereoizomerów, znamienny tym, że na polinukleotydowej matrycy w obecności polimerazy RNA poddaje się reakcji ATP, CTP, UTP, GTP oraz związek o wzorze 1 w warunkach zapewniających transkrypcję polinukleotydowej matrycy przez polimerazę RNA.
12. Sposób otrzymywania peptydu, białka lub peptydowego antygenu in vitro, znamienny tym, że translacji w układzie bezkomórkowym poddaje się cząsteczkę RNA zawierającą na końcu 5' nowy boranofosforanowy analog o wzorze 1 według zastrz. 8, przy czym cząsteczka RNA ma otwartą ramkę odczytu, a proces prowadzi się w warunkach sprzyjających translacji otwartej ramki odczytu RNA do peptydu, białka lub peptydowego antygenu kodowanego przez otwartą ramkę odczytu
13. Sposób otrzymywania peptydu, białka lub peptydowego antygenu w hodowli komórkowej, znamienny tym, że do hodowli komórkowej wprowadza się cząsteczkę RNA zawierającą na końcu 5' nowy boranofosforanowy analog o wzorze 1 według zastrz. 8, przy czym cząsteczka RNA ma otwartą ramkę odczytu, a proces prowadzi się w warunkach sprzyjających translacji otwartej ramki odczytu RNA do peptydu, białka lub peptydowego antygenu kodowanego przez otwartą ramkę odczytu.
PL385388A 2008-06-06 2008-06-06 Nowe boranofosforanowe analogi dinukleotydów, ich zastosowanie, czasteczka RNA, sposób otrzymywania RNA oraz sposób otrzymywania peptydów lub bialka PL215513B1 (pl)

Priority Applications (9)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL385388A PL215513B1 (pl) 2008-06-06 2008-06-06 Nowe boranofosforanowe analogi dinukleotydów, ich zastosowanie, czasteczka RNA, sposób otrzymywania RNA oraz sposób otrzymywania peptydów lub bialka
JP2011512643A JP5715560B2 (ja) 2008-06-06 2009-06-04 mRNA CAP類似体
AU2009256131A AU2009256131B2 (en) 2008-06-06 2009-06-04 mRNA cap analogs
PCT/US2009/046249 WO2009149253A2 (en) 2008-06-06 2009-06-04 Mrna cap analogs
US12/996,243 US8519110B2 (en) 2008-06-06 2009-06-04 mRNA cap analogs
PL09759412T PL2297175T3 (pl) 2008-06-06 2009-06-04 Analogi czapeczki mRNA
EP09759412.1A EP2297175B1 (en) 2008-06-06 2009-06-04 Mrna cap analogs
CA2727091A CA2727091C (en) 2008-06-06 2009-06-04 Mrna cap analogs
ES09759412T ES2425781T3 (es) 2008-06-06 2009-06-04 Análogos de CAP de ARNm

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL385388A PL215513B1 (pl) 2008-06-06 2008-06-06 Nowe boranofosforanowe analogi dinukleotydów, ich zastosowanie, czasteczka RNA, sposób otrzymywania RNA oraz sposób otrzymywania peptydów lub bialka

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL385388A1 PL385388A1 (pl) 2009-12-07
PL215513B1 true PL215513B1 (pl) 2013-12-31

Family

ID=41398862

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL385388A PL215513B1 (pl) 2008-06-06 2008-06-06 Nowe boranofosforanowe analogi dinukleotydów, ich zastosowanie, czasteczka RNA, sposób otrzymywania RNA oraz sposób otrzymywania peptydów lub bialka
PL09759412T PL2297175T3 (pl) 2008-06-06 2009-06-04 Analogi czapeczki mRNA

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL09759412T PL2297175T3 (pl) 2008-06-06 2009-06-04 Analogi czapeczki mRNA

Country Status (8)

Country Link
US (1) US8519110B2 (pl)
EP (1) EP2297175B1 (pl)
JP (1) JP5715560B2 (pl)
AU (1) AU2009256131B2 (pl)
CA (1) CA2727091C (pl)
ES (1) ES2425781T3 (pl)
PL (2) PL215513B1 (pl)
WO (1) WO2009149253A2 (pl)

Families Citing this family (212)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012019168A2 (en) 2010-08-06 2012-02-09 Moderna Therapeutics, Inc. Engineered nucleic acids and methods of use thereof
DE19177059T1 (de) 2010-10-01 2021-10-07 Modernatx, Inc. N1-methyl-pseudouracile enthältendes ribonucleinsäuren sowie ihre verwendungen
DE12722942T1 (de) 2011-03-31 2021-09-30 Modernatx, Inc. Freisetzung und formulierung von manipulierten nukleinsäuren
US9464124B2 (en) 2011-09-12 2016-10-11 Moderna Therapeutics, Inc. Engineered nucleic acids and methods of use thereof
JP6113737B2 (ja) 2011-10-03 2017-04-12 モデルナティエックス インコーポレイテッドModernaTX,Inc. 修飾型のヌクレオシド、ヌクレオチドおよび核酸、ならびにそれらの使用方法
MX2014007233A (es) 2011-12-16 2015-02-04 Moderna Therapeutics Inc Composiciones de nucleosidos, nucleotidos y acidos nucleicos modificados.
WO2013143555A1 (en) * 2012-03-26 2013-10-03 Biontech Ag Rna formulation for immunotherapy
EP2834259A4 (en) 2012-04-02 2016-08-24 Moderna Therapeutics Inc MODIFIED POLYNUCLEOTIDES
US9283287B2 (en) 2012-04-02 2016-03-15 Moderna Therapeutics, Inc. Modified polynucleotides for the production of nuclear proteins
US9572897B2 (en) 2012-04-02 2017-02-21 Modernatx, Inc. Modified polynucleotides for the production of cytoplasmic and cytoskeletal proteins
US10501512B2 (en) 2012-04-02 2019-12-10 Modernatx, Inc. Modified polynucleotides
CA2892529C (en) 2012-11-26 2023-04-25 Moderna Therapeutics, Inc. Terminally modified rna
EP2931319B1 (en) 2012-12-13 2019-08-21 ModernaTX, Inc. Modified nucleic acid molecules and uses thereof
CN103254260B (zh) * 2013-02-07 2015-11-11 江西科技师范大学 由核苷氢亚磷酸单酯合成对称双核苷二磷酸二钠盐的方法
US10258698B2 (en) 2013-03-14 2019-04-16 Modernatx, Inc. Formulation and delivery of modified nucleoside, nucleotide, and nucleic acid compositions
EP2983804A4 (en) 2013-03-15 2017-03-01 Moderna Therapeutics, Inc. Ion exchange purification of mrna
WO2014152031A1 (en) 2013-03-15 2014-09-25 Moderna Therapeutics, Inc. Ribonucleic acid purification
US10077439B2 (en) 2013-03-15 2018-09-18 Modernatx, Inc. Removal of DNA fragments in mRNA production process
US8980864B2 (en) 2013-03-15 2015-03-17 Moderna Therapeutics, Inc. Compositions and methods of altering cholesterol levels
EP3578663A1 (en) * 2013-03-15 2019-12-11 ModernaTX, Inc. Manufacturing methods for production of rna transcripts
JP7019233B2 (ja) 2013-07-11 2022-02-15 モデルナティエックス インコーポレイテッド CRISPR関連タンパク質をコードする合成ポリヌクレオチドおよび合成sgRNAを含む組成物ならびに使用方法
EP3041934A1 (en) 2013-09-03 2016-07-13 Moderna Therapeutics, Inc. Chimeric polynucleotides
EP3041938A1 (en) 2013-09-03 2016-07-13 Moderna Therapeutics, Inc. Circular polynucleotides
WO2015048744A2 (en) 2013-09-30 2015-04-02 Moderna Therapeutics, Inc. Polynucleotides encoding immune modulating polypeptides
EP3052511A4 (en) 2013-10-02 2017-05-31 Moderna Therapeutics, Inc. Polynucleotide molecules and uses thereof
CA2926218A1 (en) 2013-10-03 2015-04-09 Moderna Therapeutics, Inc. Polynucleotides encoding low density lipoprotein receptor
SG10201805660WA (en) 2013-12-30 2018-08-30 Curevac Ag Methods for rna analysis
EP3540060A1 (en) 2013-12-30 2019-09-18 CureVac AG Methods for rna analysis
CN106661621B (zh) 2014-06-10 2020-11-03 库尔维科公司 用于增强rna产生的方法和工具
US10286086B2 (en) 2014-06-19 2019-05-14 Modernatx, Inc. Alternative nucleic acid molecules and uses thereof
US10407683B2 (en) 2014-07-16 2019-09-10 Modernatx, Inc. Circular polynucleotides
US20170204152A1 (en) 2014-07-16 2017-07-20 Moderna Therapeutics, Inc. Chimeric polynucleotides
WO2016014846A1 (en) 2014-07-23 2016-01-28 Moderna Therapeutics, Inc. Modified polynucleotides for the production of intrabodies
EP3041948B1 (en) 2014-11-10 2019-01-09 Modernatx, Inc. Alternative nucleic acid molecules containing reduced uracil content and uses thereof
WO2016098028A1 (en) 2014-12-16 2016-06-23 Novartis Ag End capped nucleic acid molecules
EP4019635A1 (en) 2015-03-25 2022-06-29 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods, compositions and components
RU2749113C2 (ru) 2015-04-22 2021-06-04 Куревак Аг Содержащая рнк композиция для лечения опухолевых заболеваний
WO2016183236A1 (en) 2015-05-11 2016-11-17 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating hiv infection and aids
JP7030522B2 (ja) 2015-05-11 2022-03-07 エディタス・メディシン、インコーポレイテッド 幹細胞における遺伝子編集のための最適化crispr/cas9システムおよび方法
CN107873055B (zh) 2015-05-29 2021-09-17 库瑞瓦格房地产有限公司 包括至少一个切向流过滤步骤的产生和纯化rna的方法
CN116334142A (zh) 2015-06-09 2023-06-27 爱迪塔斯医药公司 用于改善移植的crispr/cas相关方法和组合物
EP4239080A3 (en) 2015-07-01 2023-11-01 CureVac Manufacturing GmbH Method for analysis of an rna molecule
EP3350333B1 (en) 2015-09-17 2021-10-27 ModernaTX, Inc. Polynucleotides containing a stabilizing tail region
RS63030B1 (sr) 2015-09-17 2022-04-29 Modernatx Inc Jedinjenja i kompozicije za intracelularno isporučivanje terapeutskih sredstava
US11434486B2 (en) 2015-09-17 2022-09-06 Modernatx, Inc. Polynucleotides containing a morpholino linker
AU2016336344A1 (en) 2015-10-05 2018-04-19 Modernatx, Inc. Methods for therapeutic administration of messenger ribonucleic acid drugs
WO2017066789A1 (en) * 2015-10-16 2017-04-20 Modernatx, Inc. Mrna cap analogs with modified sugar
WO2017066781A1 (en) * 2015-10-16 2017-04-20 Modernatx, Inc. Mrna cap analogs with modified phosphate linkage
US11866754B2 (en) 2015-10-16 2024-01-09 Modernatx, Inc. Trinucleotide mRNA cap analogs
AU2016341919A1 (en) 2015-10-21 2018-04-19 Editas Medicine, Inc. CRISPR/CAS-related methods and compositions for treating hepatitis b virus
CN109312338B (zh) 2015-10-30 2022-09-27 爱迪塔斯医药公司 治疗单纯疱疹病毒的crispr/cas相关方法及组合物
JP7114465B2 (ja) 2015-12-22 2022-08-08 モデルナティエックス インコーポレイテッド 薬剤の細胞内送達のための化合物および組成物
EP3394280A1 (en) 2015-12-23 2018-10-31 CureVac AG Method of rna in vitro transcription using a buffer containing a dicarboxylic acid or tricarboxylic acid or a salt thereof
EP3394093B1 (en) 2015-12-23 2022-01-26 Modernatx, Inc. Methods of using ox40 ligand encoding polynucleotides
MA43587A (fr) 2016-01-10 2018-11-14 Modernatx Inc Arnm thérapeutiques codant pour des anticorps anti-ctla-4
PL415967A1 (pl) * 2016-01-29 2017-07-31 Univ Warszawski 5'-tiofosforanowe analogi końca 5' mRNA (kapu), sposób ich otrzymywania i zastosowanie
EP3417069A1 (en) 2016-02-15 2018-12-26 CureVac AG Method for analyzing by-products of rna in vitro transcription
US11920174B2 (en) 2016-03-03 2024-03-05 CureVac SE RNA analysis by total hydrolysis and quantification of released nucleosides
WO2017162266A1 (en) 2016-03-21 2017-09-28 Biontech Rna Pharmaceuticals Gmbh Rna replicon for versatile and efficient gene expression
WO2017162265A1 (en) 2016-03-21 2017-09-28 Biontech Rna Pharmaceuticals Gmbh Trans-replicating rna
WO2017180917A2 (en) 2016-04-13 2017-10-19 Modernatx, Inc. Lipid compositions and their uses for intratumoral polynucleotide delivery
WO2017191258A1 (en) 2016-05-04 2017-11-09 Curevac Ag Influenza mrna vaccines
MX2018013445A (es) 2016-05-06 2019-09-09 Juno Therapeutics Inc Celulas diseñadas geneticamente y metodos para obtener las mismas.
CA3024917A1 (en) 2016-05-18 2017-11-23 Modernatx, Inc. Combinations of mrnas encoding immune modulating polypeptides and uses thereof
WO2017201332A1 (en) 2016-05-18 2017-11-23 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding acyl-coa dehydrogenase, very long-chain for the treatment of very long-chain acyl-coa dehydrogenase deficiency
WO2017201346A1 (en) 2016-05-18 2017-11-23 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding porphobilinogen deaminase for the treatment of acute intermittent porphyria
US11001861B2 (en) 2016-05-18 2021-05-11 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding galactose-1-phosphate uridylyltransferase for the treatment of galactosemia type 1
EP3458107B1 (en) 2016-05-18 2024-03-13 ModernaTX, Inc. Polynucleotides encoding jagged1 for the treatment of alagille syndrome
CA3024507A1 (en) 2016-05-18 2017-11-23 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding .alpha.-galactosidase a for the treatment of fabry disease
JP7246930B2 (ja) 2016-05-18 2023-03-28 モデルナティエックス インコーポレイテッド インターロイキン-12(il12)をコードするポリヌクレオチドおよびその使用
AU2017268396B2 (en) 2016-05-18 2023-05-18 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding citrin for the treatment of citrullinemia type 2
EP3468537A1 (en) 2016-06-14 2019-04-17 Modernatx, Inc. Stabilized formulations of lipid nanoparticles
SG11201811432WA (en) 2016-08-19 2019-03-28 Curevac Ag Rna for cancer therapy
JP7289265B2 (ja) 2016-10-26 2023-06-09 キュアバック エスイー 脂質ナノ粒子mRNAワクチン
US11583504B2 (en) 2016-11-08 2023-02-21 Modernatx, Inc. Stabilized formulations of lipid nanoparticles
US11524066B2 (en) 2016-12-23 2022-12-13 CureVac SE Henipavirus vaccine
US11141476B2 (en) 2016-12-23 2021-10-12 Curevac Ag MERS coronavirus vaccine
JP2020508056A (ja) 2017-02-22 2020-03-19 クリスパー・セラピューティクス・アクチェンゲゼルシャフトCRISPR Therapeutics AG 遺伝子編集のための組成物および方法
SG11201907916TA (en) 2017-03-15 2019-09-27 Modernatx Inc Compounds and compositions for intracellular delivery of therapeutic agents
JP7332478B2 (ja) 2017-03-15 2023-08-23 モデルナティエックス インコーポレイテッド 脂質ナノ粒子製剤
AU2018270111B2 (en) 2017-05-18 2022-07-14 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding tethered interleukin-12 (IL12) polypeptides and uses thereof
US11485972B2 (en) 2017-05-18 2022-11-01 Modernatx, Inc. Modified messenger RNA comprising functional RNA elements
WO2018232006A1 (en) 2017-06-14 2018-12-20 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding coagulation factor viii
WO2018231990A2 (en) 2017-06-14 2018-12-20 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding methylmalonyl-coa mutase
EP3638678A1 (en) 2017-06-14 2020-04-22 Modernatx, Inc. Compounds and compositions for intracellular delivery of agents
US10034951B1 (en) 2017-06-21 2018-07-31 New England Biolabs, Inc. Use of thermostable RNA polymerases to produce RNAs having reduced immunogenicity
BR112019028280A2 (pt) 2017-07-04 2020-07-14 Curevac Ag moléculas de ácido nucleico
US20200362382A1 (en) 2017-08-18 2020-11-19 Modernatx, Inc. Methods of preparing modified rna
WO2019038332A1 (en) 2017-08-22 2019-02-28 Curevac Ag VACCINE AGAINST BUNYAVIRUS
EP3675817A1 (en) 2017-08-31 2020-07-08 Modernatx, Inc. Methods of making lipid nanoparticles
WO2019053056A1 (en) 2017-09-13 2019-03-21 Biontech Cell & Gene Therapies Gmbh RNA REPLICON FOR EXPRESSING A T CELL RECEPTOR OR ARTIFICIAL LYMPHOCYTIC T CELL RECEPTOR
JP7424968B2 (ja) 2017-09-13 2024-01-30 バイオエヌテック エスエー 細胞におけるrna発現を増強する方法
EP3681993A1 (en) 2017-09-13 2020-07-22 BioNTech RNA Pharmaceuticals GmbH Rna replicon for reprogramming somatic cells
CN111511924A (zh) 2017-11-08 2020-08-07 库瑞瓦格股份公司 Rna序列调整
JP7424976B2 (ja) 2017-11-22 2024-01-30 モダーナティエックス・インコーポレイテッド プロピオン酸血症の治療用のプロピオニルCoAカルボキシラーゼアルファ及びベータサブユニットをコードするポリヌクレオチド
WO2019104160A2 (en) 2017-11-22 2019-05-31 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding phenylalanine hydroxylase for the treatment of phenylketonuria
MA50803A (fr) 2017-11-22 2020-09-30 Modernatx Inc Polynucléotides codant pour l'ornithine transcarbamylase pour le traitement de troubles du cycle de l'urée
US11931406B2 (en) 2017-12-13 2024-03-19 CureVac SE Flavivirus vaccine
SG11202005760PA (en) 2017-12-21 2020-07-29 Curevac Ag Linear double stranded dna coupled to a single support or a tag and methods for producing said linear double stranded dna
US11802146B2 (en) 2018-01-05 2023-10-31 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding anti-chikungunya virus antibodies
US20210361761A1 (en) 2018-04-05 2021-11-25 Curevac Ag Novel yellow fever nucleic acid molecules for vaccination
EP3773745A1 (en) 2018-04-11 2021-02-17 ModernaTX, Inc. Messenger rna comprising functional rna elements
EP4227319A1 (en) 2018-04-17 2023-08-16 CureVac SE Novel rsv rna molecules and compositions for vaccination
FR3081169B1 (fr) * 2018-05-15 2020-06-19 Messenger Biopharma Substitution de la coiffe des arn messagers par deux sequences d'arn introduites a leur extremite 5'
EP3813874A1 (en) 2018-06-27 2021-05-05 CureVac AG Novel lassa virus rna molecules and compositions for vaccination
WO2020023390A1 (en) 2018-07-25 2020-01-30 Modernatx, Inc. Mrna based enzyme replacement therapy combined with a pharmacological chaperone for the treatment of lysosomal storage disorders
US20220110966A1 (en) 2018-09-02 2022-04-14 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding very long-chain acyl-coa dehydrogenase for the treatment of very long-chain acyl-coa dehydrogenase deficiency
MA53608A (fr) 2018-09-13 2021-07-21 Modernatx Inc Polynucléotides codant pour les sous-unités e1-alpha, e1-beta et e2 du complexe alpha-cétoacide déshydrogénase à chaîne ramifiée pour le traitement de la leucinose
WO2020056147A2 (en) 2018-09-13 2020-03-19 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding glucose-6-phosphatase for the treatment of glycogen storage disease
MA53615A (fr) 2018-09-14 2021-07-21 Modernatx Inc Polynucléotides codant pour le polypeptide a1, de la famille de l'uridine diphosphate glycosyltransférase 1, pour le traitement du syndrome de crigler-najjar
WO2020061367A1 (en) 2018-09-19 2020-03-26 Modernatx, Inc. Compounds and compositions for intracellular delivery of therapeutic agents
JP2022501367A (ja) 2018-09-20 2022-01-06 モデルナティエックス インコーポレイテッドModernaTX, Inc. 脂質ナノ粒子の調製及びその投与方法
WO2020069169A1 (en) 2018-09-27 2020-04-02 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding arginase 1 for the treatment of arginase deficiency
EP3861108A1 (en) 2018-10-04 2021-08-11 New England Biolabs, Inc. Methods and compositions for increasing capping efficiency of transcribed rna
US11072808B2 (en) * 2018-10-04 2021-07-27 New England Biolabs, Inc. Methods and compositions for increasing capping efficiency of transcribed RNA
EP3897702A2 (en) 2018-12-21 2021-10-27 CureVac AG Rna for malaria vaccines
US20220073962A1 (en) 2018-12-21 2022-03-10 Curevac Ag Methods for rna analysis
KR20210133218A (ko) 2019-01-31 2021-11-05 모더나티엑스, 인크. 볼텍스 믹서 및 연계된 방법, 시스템 및 이의 장치
AU2020214843A1 (en) 2019-01-31 2021-08-19 Modernatx, Inc. Methods of preparing lipid nanoparticles
EP3920950A1 (en) 2019-02-08 2021-12-15 CureVac AG Coding rna administered into the suprachoroidal space in the treatment of ophtalmic diseases
US20220370354A1 (en) 2019-05-08 2022-11-24 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding methylmalonyl-coa mutase for the treatment of methylmalonic acidemia
EP3965797A1 (en) 2019-05-08 2022-03-16 AstraZeneca AB Compositions for skin and wounds and methods of use thereof
US20220313813A1 (en) 2019-06-18 2022-10-06 Curevac Ag Rotavirus mrna vaccine
EP3986480A1 (en) 2019-06-24 2022-04-27 ModernaTX, Inc. Messenger rna comprising functional rna elements and uses thereof
US20220251577A1 (en) 2019-06-24 2022-08-11 Modernatx, Inc. Endonuclease-resistant messenger rna and uses thereof
CA3150061A1 (en) 2019-08-07 2021-02-11 Modernatx, Inc. Compositions and methods for enhanced delivery of agents
CN114502204A (zh) 2019-08-14 2022-05-13 库尔维科公司 具有降低的免疫刺激性质的rna组合和组合物
WO2021076811A1 (en) 2019-10-15 2021-04-22 Moderna TX, Inc. Mrnas encoding granulocyte-macrophage colony stimulating factor for treating parkinson's disease
WO2021123332A1 (en) 2019-12-20 2021-06-24 Curevac Ag Lipid nanoparticles for delivery of nucleic acids
EP4147717A1 (en) 2020-02-04 2023-03-15 CureVac SE Coronavirus vaccine
US11576966B2 (en) 2020-02-04 2023-02-14 CureVac SE Coronavirus vaccine
CN114206827B (zh) 2020-04-09 2023-05-23 苏州艾博生物科技有限公司 脂质纳米颗粒组合物
CN113874507A (zh) 2020-04-09 2021-12-31 苏州艾博生物科技有限公司 冠状病毒的核酸疫苗
MX2022013254A (es) 2020-04-22 2023-01-24 BioNTech SE Vacuna contra el coronavirus.
CA3182920A1 (en) 2020-05-14 2021-11-18 Modernatx, Inc. Lnp compositions comprising an mrna therapeutic and an effector molecule
WO2021239880A1 (en) 2020-05-29 2021-12-02 Curevac Ag Nucleic acid based combination vaccines
EP4157217A1 (en) 2020-06-01 2023-04-05 Modernatx, Inc. Lipid nanoparticles containing polynucleotides encoding glucose-6-phosphatase and uses thereof
EP4158005A1 (en) 2020-06-01 2023-04-05 ModernaTX, Inc. Phenylalanine hydroxylase variants and uses thereof
AU2021286169A1 (en) 2020-06-04 2023-01-19 BioNTech SE RNA replicon for versatile and efficient gene expression
AU2021297248A1 (en) 2020-06-23 2023-02-02 Modernatx, Inc. LNP compositions comprising mRNA therapeutics with extended half-life
CN114206463A (zh) 2020-06-30 2022-03-18 苏州艾博生物科技有限公司 脂质化合物和脂质纳米颗粒组合物
CN116710079A (zh) 2020-07-24 2023-09-05 斯特兰德生物科技公司 包含经修饰的核苷酸的脂质纳米颗粒
US20230272052A1 (en) 2020-07-31 2023-08-31 CureVac SE Nucleic acid encoded antibody mixtures
CN114391008B (zh) 2020-08-20 2024-05-03 苏州艾博生物科技有限公司 脂质化合物和脂质纳米颗粒组合物
US20240066114A1 (en) 2020-08-31 2024-02-29 CureVac SE Multivalent nucleic acid based coronavirus vaccines
WO2022104131A1 (en) 2020-11-13 2022-05-19 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding cystic fibrosis transmembrane conductance regulator for the treatment of cystic fibrosis
US20230414516A1 (en) 2020-11-16 2023-12-28 BioNTech SE Enhanced formulation stabilization and improved lyophilization processes
CA3201552A1 (en) 2020-12-09 2022-06-16 Thomas ZIEGENHALS Rna manufacturing
MX2023007574A (es) 2020-12-22 2023-09-29 CureVac SE "vacuna de arn contra variantes de sars-cov-2.
WO2022137133A1 (en) 2020-12-22 2022-06-30 Curevac Ag Rna vaccine against sars-cov-2 variants
WO2022135993A2 (en) 2020-12-22 2022-06-30 Curevac Ag Pharmaceutical composition comprising lipid-based carriers encapsulating rna for multidose administration
US20240166707A1 (en) 2021-01-08 2024-05-23 Strand Therapeutics Inc. Expression constructs and uses thereof
WO2022152109A2 (en) 2021-01-14 2022-07-21 Suzhou Abogen Biosciences Co., Ltd. Lipid compounds and lipid nanoparticle compositions
CN116615472A (zh) 2021-01-14 2023-08-18 苏州艾博生物科技有限公司 聚合物缀合的脂质化合物和脂质纳米颗粒组合物
EP4087938A2 (en) 2021-01-27 2022-11-16 CureVac AG Method of reducing the immunostimulatory properties of in vitro transcribed rna
CA3210878A1 (en) 2021-02-12 2022-08-18 Modernatx, Inc. Lnp compositions comprising payloads for in vivo therapy
JP2024512026A (ja) 2021-03-24 2024-03-18 モデルナティエックス インコーポレイテッド オルニチントランスカルバミラーゼ欠損症の治療を目的とした脂質ナノ粒子及びオルニチントランスカルバミラーゼをコードするポリヌクレオチド
WO2022204380A1 (en) 2021-03-24 2022-09-29 Modernatx, Inc. Lipid nanoparticles containing polynucleotides encoding propionyl-coa carboxylase alpha and beta subunits and uses thereof
WO2022204369A1 (en) 2021-03-24 2022-09-29 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding methylmalonyl-coa mutase for the treatment of methylmalonic acidemia
WO2022204371A1 (en) 2021-03-24 2022-09-29 Modernatx, Inc. Lipid nanoparticles containing polynucleotides encoding glucose-6-phosphatase and uses thereof
WO2022204390A1 (en) 2021-03-24 2022-09-29 Modernatx, Inc. Lipid nanoparticles containing polynucleotides encoding phenylalanine hydroxylase and uses thereof
JP2024511206A (ja) 2021-03-26 2024-03-12 グラクソスミスクライン バイオロジカルズ ソシエテ アノニム 免疫原性組成物
CA3171429A1 (en) 2021-03-31 2022-09-30 Alexander SCHWENGER Syringes containing pharmaceutical compositions comprising rna
WO2022212710A1 (en) 2021-03-31 2022-10-06 Modernatx, Inc. PURIFICATION AND RECYCLING OF mRNA NUCLEOTIDE CAPS
AU2022249357A1 (en) 2021-04-01 2023-10-12 Modernatx, Inc. Methods for identification and ratio determination of rna species in multivalent rna compositions
EP4334446A1 (en) 2021-05-03 2024-03-13 CureVac SE Improved nucleic acid sequence for cell type specific expression
WO2022234416A1 (en) 2021-05-03 2022-11-10 Pfizer Inc. Vaccination against pneumoccocal and covid-19 infections
EP4333880A1 (en) 2021-05-03 2024-03-13 Pfizer Inc. Immunogenic composition against influenza
CA3218544A1 (en) 2021-05-03 2022-11-10 Pfizer Inc. Vaccination against bacterial and betacoronavirus infections
WO2022246020A1 (en) 2021-05-19 2022-11-24 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding methylmalonyl-coa mutase for the treatment of methylmalonic acidemia
AU2022281746A1 (en) 2021-05-24 2023-09-14 Suzhou Abogen Biosciences Co., Ltd. Lipid compounds and lipid nanoparticle compositions
WO2022266083A2 (en) 2021-06-15 2022-12-22 Modernatx, Inc. Engineered polynucleotides for cell-type or microenvironment-specific expression
WO2022271776A1 (en) 2021-06-22 2022-12-29 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding uridine diphosphate glycosyltransferase 1 family, polypeptide a1 for the treatment of crigler-najjar syndrome
WO2023287751A1 (en) 2021-07-12 2023-01-19 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding propionyl-coa carboxylase alpha and beta subunits for the treatment of propionic acidemia
WO2023009499A1 (en) 2021-07-27 2023-02-02 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding glucose-6-phosphatase for the treatment of glycogen storage disease type 1a (gsd1a)
WO2023007019A1 (en) 2021-07-30 2023-02-02 CureVac SE Cap analogs having an acyclic linker to the guanine derivative nucleobase
CA3171750A1 (en) 2021-07-30 2023-02-02 Tim SONNTAG Mrnas for treatment or prophylaxis of liver diseases
WO2023031392A2 (en) 2021-09-03 2023-03-09 CureVac SE Novel lipid nanoparticles for delivery of nucleic acids comprising phosphatidylserine
WO2023031394A1 (en) 2021-09-03 2023-03-09 CureVac SE Novel lipid nanoparticles for delivery of nucleic acids
WO2023056044A1 (en) 2021-10-01 2023-04-06 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding relaxin for the treatment of fibrosis and/or cardiovascular disease
CN116064598B (zh) 2021-10-08 2024-03-12 苏州艾博生物科技有限公司 冠状病毒的核酸疫苗
AU2022361755A1 (en) 2021-10-08 2024-04-04 Pfizer Inc. Immunogenic lnp compositions and methods thereof
AR127312A1 (es) 2021-10-08 2024-01-10 Suzhou Abogen Biosciences Co Ltd Compuestos lipídicos ycomposiciones de nanopartículas lipídicas
AU2022358824A1 (en) 2021-10-08 2024-04-11 Suzhou Abogen Biosciences Co., Ltd. Lipid compounds and lipid nanoparticle compositions
AU2022372325A1 (en) 2021-10-18 2024-05-02 BioNTech SE Methods for determining mutations for increasing modified replicable rna function and related compositions and their use
AU2022369342A1 (en) 2021-10-18 2024-03-14 BioNTech SE Modified replicable rna and related compositions and their use
WO2023077170A1 (en) 2021-11-01 2023-05-04 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding integrin beta-6 and methods of use thereof
WO2023092060A1 (en) 2021-11-18 2023-05-25 Cornell University Microrna-dependent mrna switches for tissue-specific mrna-based therapies
WO2023111907A1 (en) 2021-12-17 2023-06-22 Pfizer Inc. Polynucleotide compositions and uses thereof
WO2023138786A1 (en) 2022-01-21 2023-07-27 BioNTech SE Analysis of rna molecules using catalytic nucleic acids
WO2023144330A1 (en) 2022-01-28 2023-08-03 CureVac SE Nucleic acid encoded transcription factor inhibitors
TW202345864A (zh) 2022-02-18 2023-12-01 美商現代公司 編碼檢查點癌症疫苗之mRNA及其用途
US20230279376A1 (en) 2022-03-01 2023-09-07 Crispr Therapeutics Ag Methods and compositions for treating angiopoietin-like 3 (angptl3) related conditions
WO2023180904A1 (en) 2022-03-21 2023-09-28 Crispr Therapeutics Ag Methods and compositions for treating lipoprotein-related diseases
WO2023183909A2 (en) 2022-03-25 2023-09-28 Modernatx, Inc. Polynucleotides encoding fanconi anemia, complementation group proteins for the treatment of fanconi anemia
WO2023196399A1 (en) 2022-04-06 2023-10-12 Modernatx, Inc. Lipid nanoparticles and polynucleotides encoding argininosuccinate lyase for the treatment of argininosuccinic aciduria
WO2023201294A1 (en) 2022-04-14 2023-10-19 Modernatx, Inc. Rna polymerase variants
WO2023212618A1 (en) 2022-04-26 2023-11-02 Strand Therapeutics Inc. Lipid nanoparticles comprising venezuelan equine encephalitis (vee) replicon and uses thereof
WO2023213378A1 (en) 2022-05-02 2023-11-09 BioNTech SE Replicon compositions and methods of using same for the treatment of diseases
WO2023215498A2 (en) 2022-05-05 2023-11-09 Modernatx, Inc. Compositions and methods for cd28 antagonism
WO2023227608A1 (en) 2022-05-25 2023-11-30 Glaxosmithkline Biologicals Sa Nucleic acid based vaccine encoding an escherichia coli fimh antigenic polypeptide
US11878055B1 (en) 2022-06-26 2024-01-23 BioNTech SE Coronavirus vaccine
WO2024017479A1 (en) 2022-07-21 2024-01-25 BioNTech SE Multifunctional cells transiently expressing an immune receptor and one or more cytokines, their use and methods for their production
WO2024026254A1 (en) 2022-07-26 2024-02-01 Modernatx, Inc. Engineered polynucleotides for temporal control of expression
WO2024026490A1 (en) 2022-07-28 2024-02-01 Sqz Biotechnologies Company Polynucleotides encoding linked antigens and uses thereof
WO2024037578A1 (en) 2022-08-18 2024-02-22 Suzhou Abogen Biosciences Co., Ltd. Composition of lipid nanoparticles
WO2024056856A1 (en) 2022-09-15 2024-03-21 BioNTech SE Systems and compositions comprising trans-amplifying rna vectors with mirna
WO2024057209A1 (en) 2022-09-15 2024-03-21 Pfizer Inc. Coaxial flow device for nanoparticle preparation and manufacturing equipment including such device
WO2024068545A1 (en) 2022-09-26 2024-04-04 Glaxosmithkline Biologicals Sa Influenza virus vaccines
WO2024084397A1 (en) 2022-10-19 2024-04-25 Pfizer Inc. Vaccination against pneumoccocal and covid-19 infections
WO2024089638A1 (en) 2022-10-28 2024-05-02 Glaxosmithkline Biologicals Sa Nucleic acid based vaccine
WO2024097639A1 (en) 2022-10-31 2024-05-10 Modernatx, Inc. Hsa-binding antibodies and binding proteins and uses thereof

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6060456A (en) * 1993-11-16 2000-05-09 Genta Incorporated Chimeric oligonucleoside compounds
AU687492B2 (en) * 1993-11-16 1998-02-26 Genta Incorporated Synthetic oligomers having phosphonate internucleosidyl linkages of undefined chirality mixed with non-phosphonate internucleosidyl linkages
US7074596B2 (en) * 2002-03-25 2006-07-11 Board Of Supervisors Of Louisiana State University And Agricultural And Mechanical College Synthesis and use of anti-reverse mRNA cap analogues
US7368439B2 (en) * 2005-06-15 2008-05-06 Bar - Ilan University Dinucleoside poly(borano)phosphate derivatives and uses thereof

Also Published As

Publication number Publication date
US20110092574A1 (en) 2011-04-21
WO2009149253A3 (en) 2010-03-25
PL2297175T3 (pl) 2014-01-31
AU2009256131B2 (en) 2013-05-30
US8519110B2 (en) 2013-08-27
EP2297175A4 (en) 2011-06-15
JP2011522542A (ja) 2011-08-04
AU2009256131A1 (en) 2009-12-10
WO2009149253A2 (en) 2009-12-10
JP5715560B2 (ja) 2015-05-07
PL385388A1 (pl) 2009-12-07
EP2297175B1 (en) 2013-08-07
CA2727091A1 (en) 2009-12-10
CA2727091C (en) 2017-05-09
ES2425781T3 (es) 2013-10-17
EP2297175A2 (en) 2011-03-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL215513B1 (pl) Nowe boranofosforanowe analogi dinukleotydów, ich zastosowanie, czasteczka RNA, sposób otrzymywania RNA oraz sposób otrzymywania peptydów lub bialka
AU2008265683B2 (en) Synthesis and use of anti-reverse phosphorothioate analogs of the messenger RNA cap
CN109311925A (zh) 立体限定的氧杂氮杂磷杂环戊烷亚磷酰胺单体与核苷或寡核苷酸的增强的偶联
Johannsen et al. Amino acids attached to 2′-amino-LNA: synthesis and excellent duplex stability
JP7144050B2 (ja) 5’-ホスホロチオラート mRNA 5’-末端(キャップ)類似体、それを含むmRNA、それらを得る方法およびそれらの使用方法
Rydzik et al. Synthetic dinucleotide mRNA cap analogs with tetraphosphate 5′, 5′ bridge containing methylenebis (phosphonate) modification
CA3167563A1 (en) Novel mrna 5&#39;-end cap analogs modified within phosphate residues, rna molecule incorporating the same, uses thereof and method of synthesizing rna molecule or peptide
Ziemniak et al. Phosphate-modified analogues of m7GTP and m7Gppppm7G—Synthesis and biochemical properties
Wojtczak et al. Clickable trimethylguanosine cap analogs modified within the triphosphate bridge: synthesis, conjugation to RNA and susceptibility to degradation
Kowalska et al. Synthesis and properties of mRNA cap analogs containing phosphorothioate moiety in 5′, 5′-triphosphate chain
EP3484907A1 (en) Novel phosphotriazole mrna 5&#39;-end cap analogs, composition comprising the same, rna molecule incorporating the same, uses thereof and method of synthesizing rna molecule, protein or peptide
WO2023282245A1 (ja) ヌクレオチド類の精製方法及びヌクレオチド類の精製装置並びに疎水性試薬及び疎水性基質
WO2023199261A1 (en) Rna molecule containing modified cap analogs at the 5 &#39; end, use of rna molecule in in vitro protein or peptide synthesis, rna molecule for use in medicine, and use of modified cap analogs for rna capping
Shipitsyn et al. Synthesis of [bis (Inosine-5′)]-tetraphosphate and [bis (Inosine-5′)]-pentaphosphate Analogues Bearing the Residues of Methylenediphosphonic Acid
Linjalahti et al. Intra‐and Intermolecular Interactions Influence the Reactivity of RNA Oligonucleotides
PL214850B1 (pl) Cząsteczka RNA, sposób otrzymywania RNA oraz sposób otrzymywania peptydów lub białka