KR20000002473A - Medication for preventing and curing degenerative cerebral neural disease - Google Patents

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KR20000002473A
KR20000002473A KR1019980023250A KR19980023250A KR20000002473A KR 20000002473 A KR20000002473 A KR 20000002473A KR 1019980023250 A KR1019980023250 A KR 1019980023250A KR 19980023250 A KR19980023250 A KR 19980023250A KR 20000002473 A KR20000002473 A KR 20000002473A
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정규용
조황성
마진열
주혜정
이미영
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신민규
한국 한의학 연구원
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Abstract

PURPOSE: A medication for preventing and curing a degenerative cerebral neural disease such as a dementia senilis is provided to improve an energy metabolism and to postpone a progress of aging. CONSTITUTION: A material for preventing and curing a dementia senilis comprises: 1.6-2.4 wt% of ginseng; 0.7-1.3 wt% of astragalus; 0.7-1.3 wt% of white atractylis; 0.7-1.3 wt% of white paeonia; 0.7-1.3 wt% of Korean angelica root; 0.7-1.3 wt% of cnidium; 0.7-1.3 wt% of corium; 0.7-1.3 wt% of liquorice; 0.7-1.3 wt% of wilfordi root; and 0.7-1.3 wt% of broiler.

Description

퇴행성 대뇌 신경계 질환의 예방 및 치료제Prevention and treatment of degenerative cerebral nervous system disease

본 발명은 퇴행성 대뇌 신경계 질환인 노인성 치매, 혈관성 치매, 알츠하이머형 치매 등의 예방 및 치료제에 관한 것이다.The present invention relates to a prophylactic and therapeutic agent for degenerative cerebral nervous system diseases such as senile dementia, vascular dementia, and Alzheimer's dementia.

한의학적 관점에서 인간을 관찰함에 있어 인체의 여러 질병은 정신과 신체의 부조화에서부터 기인된 것이라고 보고 있다. 정, 기, 신, 혈(精, 氣, 神, 血) 측면에서 정, 기, 신(精, 氣, 神)은 인체를 구성하는 중요한 기본 요소로써 정(精)은 형성의 단위이며, 기(氣)는 인간의 생리 활동과 외부 활동을 하는 생명 에너지이고, 신(神)은 생명의 정화(精華)로서의 정신(精神)이며, 혈(血)은 혈액을 포괄하는 생체 물질의 개념으로 보고 있다. 이에 상응하는 사상의학적(四象醫學的) 이론이 사해론(四海論)으로써, 사해(四海)는 진(津), 고(膏), 유(油), 액(液)을 말한다. 즉, 사해론(四海論)은 수곡(水穀)의 "사기(四氣)"가 체내에서 진(津), 고(膏), 유(油), 액(液)을 가리키는 4대 영양물질의 순환과 주요한 기능을 설명하는 학설이다. 수곡(水穀)의 온, 량, 한, 열(溫, 凉, 寒, 熱) 사기(四氣)가 체내에서 연변을 시작할 때, 제1 단계에서는 진(津), 고(膏), 유(油), 액(液) 4대 영양물질로 되고 "전사해(前四海)" 즉, 진해, 고해, 유해, 액해(津海, 膏海, 油海, 液海)를 거쳐 제2 단계로 들어가 신, 기, 혈, 정(神, 氣, 血, 精) 4대 혈기물질(四大氣血物質)로 변하며 "후사해(後四海)" 즉, 니해, 막해(膜海), 혈해(血海), 정해(精海)를 거쳐 유기체 각 기관의 정상 활동을 유지한다고 보고 있다. 이와 같이 한의학적 이론이나 사상학적 이론(四象醫學的 理論)에서는 정, 기, 혈(精, 氣, 血)을 보호하므로써 신(神)의 기능을 유지할 수 있다고 보고 있다. 혈(血)과 기(氣)를 서양 의학적 관점에서 볼 때 각각 에너지 공급원과 에너지 대사(생산)의 과정에 해당하는 것으로 이해할 수 있다. 따라서 뇌 신경계를 신(神)으로 보고 기(氣)와 혈(血)을 도와 신(神)의 에너지 대사 기능을 유지할 수 있다는 것을 생각할 수 있다.In observing humans from the point of view of oriental medicine, many diseases of the human body are attributed to the disharmony of mind and body. Jeong, qi, god, blood (精, 氣, 神, 血) in terms of jeong, qi, god (精, 氣, 神) is an important basic component of the human body, jeong (精) is a unit of formation, Ki (氣) is the life energy of human physiological and external activities, deity is the spirit as the purification of life, and blood is regarded as the concept of biological material encompassing blood. have. The corresponding ideological theory is the Dead Sea Theory, where the Dead Sea refers to Qin, Ancient, Yu, and Liquid. In other words, the Dead Sea Theory is the four major nutrients in which the "Sagi" of Sugok refers to Jin, Go, Yu, and Liquid. It is a theory that explains the cycle and its main functions. When the temperature, quantity, heat, heat, heat, heat, and heat of grains start Yanbian in the body, in the first stage, Jin, Go, Yu (油), four major nutrients and liquids ("quasi sea"), namely Jinhae, Gohae, Hazardous, and Liquid Sea (Juhai, 膏 海, 油 海, 液 海) to the second stage Into God, Ki, blood, Jeong (神, 氣, 血, 精) into four major blood substances (四大 氣血 物質), "Fusa Sea (後 四海), that is, the Ni Sea, the Mak Sea (膜 海), blood sea ( It is believed that it maintains the normal activities of each organ through the sea and the sea. Thus, in oriental medicine theory or ideological theory, it is believed that the function of deity can be maintained by protecting jeong, qi, blood (精, 氣, 혈). From the point of view of Western medicine, blood and blood can be understood as corresponding energy sources and processes of energy metabolism (production), respectively. Therefore, the brain's nervous system can be considered as a god, and it can be considered that energy and metabolic function of the god can be maintained by helping Gi and blood.

사상 병증(四象 病症)은 크게 표병(表病)과 이병(裏病)으로 구분되며, 이병(表病)은 결과적으로 인체의 피, 근, 육, 골(皮, 筋, 肉, 骨)에 소모를 일으키는 병증이며 이병(裏病)은 영양물 대사에 장애를 일으키는 병증(病症) 즉, 위완(식도 부위), 위, 소장, 대장 등에 장애를 일으킨다. 노화나 치매의 개념을 사상의학(四象醫學)에서는 표병과 이병(裏病)의 진행 결과로 나타나는 질환으로 보고 있다.Sasang disease is divided into two types: the surface disease and the disease, and the disease results in the blood, muscle, meat, bone, and bone of the human body. This disease causes consumption and dysfunction (이) causes disorders in nutrient metabolism (病症), namely the gastrointestinal (esophageal region), stomach, small intestine, and bowel disorders. The concept of aging or dementia is regarded as a disease that appears as a result of the progression of epidemic and disease in ideology.

종래에는 소음인 십전대보탕(少陰人 十全大補湯)은 동의보감(허준), 동의수세보원(이제마) 및 태평혜민화제국방(진사문) 등에 기재되어 있듯이 사상(四象)처방의 하나로써 소음인 표병증(表病症)에 쓰였는데, 구체적으로 약효가 소음인의 표기(소음인의 선천적 저항력)을 강화시키고 보정강근골(補精强筋骨)하여, 퇴행성 관절염, 불임증, 생리불순, 생리통, 편도선 비대, 피부병, 자궁 질환의 증상에 적용하는 것으로만 알려져 있었다. 본 발명자들은 소음인 십전대보탕 처방을 응용하여 퇴행성 대뇌 신경계 질환에 대한 치료 및 예방에 사용하고자 하는 것이다.In the past, the noise of Jeopjeondaebo-tang (Su-Jin-Dae-Bon-Tang) is one of Sasang's prescriptions, as described in Dong Bo-gam (Ho Jun), Dong-Suse Suwon (Ijema), and Taepyeong Hyemin-hwa National Defense (Jinsamun). It has been used in the etiology of the pathopathy, specifically, the drug's effect is to enhance the expression of the noise person (the innate resistance of the noise person) and corrective ganglia (補 精 强 筋骨), degenerative arthritis, infertility, menstrual disorders, dysmenorrhea, tonsils, Only known to apply to the symptoms of skin diseases, uterine disease. The inventors of the present invention intend to use it for the treatment and prevention of degenerative cerebral nervous system disease by applying the noise of Junction.

노화가 진행됨에 따라 뇌도 심한 위축 현상을 나타낸다. 가장 많이 위축하는 부분은 대뇌인데, 알츠하이머(Alzheimer)형 치매 환자의 뇌는 현저한 위축을 보이는 것으로 알려져 있다. 노화에 의한 뇌의 위축에 있어서 대뇌 피질의 위축은 표면적의 감소에 의한 것이라고 볼 수 있으며, 알츠하이머(Alzheimer)형 치매에 의한 대뇌 피질의 위축은 표면적과 두께 모두의 감소에 의한 것이라고 알려져 있다.As aging progresses, the brain develops severe atrophy. The most atrophic part is the cerebrum, which is known to show significant atrophy in Alzheimer's dementia patients. Atrophy of the cerebral cortex in the atrophy of the brain due to aging can be considered to be due to a decrease in surface area, and atrophy of the cerebral cortex by Alzheimer's type dementia is known to be due to a decrease in both surface area and thickness.

노화에 따른 뇌의 수축과 동시에 에너지 대사의 감소도 일어난다. 노인성 치매 질환자의 대뇌 피질부에서 포도당(glucose)의 대사는 50-70% 정도의 감소를 보인다고 알려져 있다. 뇌에서 주된 에너지 공급원인 포도당(glucose)는 여러 단계의 생화학적 대사 과정을 통하여 아세틸콜린(Ach : acetylcholine), 글루타민(glutamate), 아스파라진산(aspartate), 감마아미노낙산(GABA : γ-aminobutyric acid), 글리신(glycine), 아데노신삼인당(ATP : adenosine triphosphate) 그리고 아세틸 CoA(acetyl CoA)등을 생산하게 되고 이들은 신경 세포의 생리적 기능 유지에 필요한 신경 전달 물질과 에너지원으로 작용하게 된다. 대뇌의 여러 가지 기능들 중 인지 및 기억의 기능은 세포내 콜린성 활성화(cholinergic activity)와 직접적인 연관성이 있고, 노인성 치매에서 관찰되는 콜린성 활성화의 부족(cholinergic deficit)은 포도당대사의 장해로 나타나는 결과이며, 포도당 대사회전(glucose turnover)와 ATP 생산의 저하 현상은 치매성 뇌 질환의 특이적 증후로 알려져 있다. 따라서 치매성 뇌 질환에서 콜린성 활성화의 부족(cholinergic deficit), 신경 세포의 위축, 아밀로이드(amyloid) 침착등은 에너지 대사의 저하에 기인된 2차적인 현상이라고 생각할 수 있다.As the brain contracts with aging, energy metabolism decreases. In the cerebral cortex of senile dementia patients, glucose metabolism is known to decrease by 50-70%. Glucose, the main source of energy in the brain, has several stages of biochemical metabolic processes, leading to acetylcholine (Ach: acetylcholine), glutamine (glutamate), aspartate, and gamma aminobutyric acid (GABA). ), Glycine (glycine), adenosine triphosphate (ATP) and acetyl CoA (acetyl CoA) to produce such a neurotransmitter and energy source necessary to maintain the neuronal physiological function. Among the various functions of the cerebral function, cognitive and memory functions are directly related to intracellular cholinergic activity, and cholinergic deficit observed in senile dementia is a result of glucose metabolism disorder. Glucose turnover and decreased ATP production are known as specific symptoms of dementia brain disease. Therefore, cholinergic deficit, neuronal atrophy, amyloid deposition, etc. in dementia brain disease can be considered as a secondary phenomenon due to the degradation of energy metabolism.

한편, 노화에 관한 이론에는 단백질의 합성 과정과 기능 이상에 기인한다고 주장하는 학설이 있다. 이에 관련하여 신경계 세포를 비롯한 노화 세포에서는 비정상 기능을 가지는 단백질이 축적되게 되는데 그중 하나가 메틸화된 단백질이다. 이러한 변형 단백질의 기능 회복에 관련하는 것이 단백질 메틸화효소 II(PM II : protein methylase II)이며, 이는 노화에 관련한 단백질의 기능 회복에 중요한 역할을 하는 것으로 알려져 있다.On the other hand, there is a theory in aging that claims to be due to protein synthesis and dysfunction. In this regard, senescent cells, including nervous system cells, accumulate abnormally functioning proteins, one of which is methylated protein. Related to the functional recovery of these modified proteins is protein methylase II (PM II), which is known to play an important role in the functional recovery of proteins related to aging.

대뇌 신경계 세포를 죽음에 이르게 하는 여러 가지의 요인이 있지만, 세포 형태학적으로 죽음의 경로는 애팝토시스(apoptosis)와 네크로시스(necrosis)로 나누어 질 수 있다. 이들은 서로 다른 형태학적 특징으로 관찰될 수 있으나 일반적으로 애팝토시스(apoptosis)는 능동적, 생리적 과정이고 네크로시스(necrosis)는 수동적, 병리적인 반응으로 알려져 있다. 그러나, 이러한 두 가지의 서로 다른 과정에서 발견할 수 있는 공통점은 세포 성장력(cell viability)의 저하를 초래한다는 것이다.There are a number of factors that lead to death of cerebral nervous system cells, but in the cellular morphology the path of death can be divided into apoptosis and necrosis. They can be observed with different morphological features, but in general, apoptosis is an active and physiological process and necrosis is known as a passive and pathological response. However, one thing that can be found in these two different processes is that they cause a decrease in cell viability.

도 1a 내지 도 1d는 본 발명 조성물이 글루타민에 의해 유도된 초대 배양한 대뇌 피질 세포의 애팝토시스(apoptosis)에 미치는 영향을 나타낸 사진;Figure 1a to 1d is a photograph showing the effect of the composition of the present invention on the apoptosis (apoptosis) of primary cultured cerebral cortical cells induced by glutamine;

도 2a 내지 도 2d는 당귀 작약산이 글루타민에 의해 유도된 초대 배양한 대뇌 피질 세포의 애팝토시스(apoptosis)에 미치는 영향을 나타낸 사진;2a to 2d are photographs showing the effect of Angelica peony peony on apoptosis of primary cultured cerebral cortical cells induced by glutamine;

도 3은 본 발명 조성물이 글루타민에 유도된 대뇌 피질 신경세포의 염색체 DNA 절편화에 미치는 영향을 나타낸 사진;3 is a photograph showing the effect of the composition of the present invention on chromosomal DNA fragmentation of glutamine-induced cortical neurons;

도 4a 내지 도 4f는 성장 인자가 첨가되지 않은 초대 배양한 대뇌 피질 세포의 성장을 나타낸 사진;4A to 4F are photographs showing growth of primary cultured cerebral cortical cells without addition of growth factors;

도 5a 내지 도 5c는 본 발명 조성물과 당귀 작약산이 배양 신경 세포의 자연 발생적 퇴행에 미치는 영향을 나타낸 사진;5a to 5c are photographs showing the effect of the composition of the present invention and Angelica peony mountain on the spontaneous degeneration of cultured neurons;

도 6a 내지 도 6f는 본 발명 조성물이 초대 배양한 신경세포의 자연 발생적 퇴행에 미치는 영향을 이중 형광 염색법에 의해 나타낸 사진;6a to 6f are photographs showing the effect of the composition of the present invention on the spontaneous degeneration of neurons cultured in primary culture by double fluorescence staining;

도 7은 본 발명 조성물을 처치한 SAM R1 마우스의 체중 변화를 도시한 도면;7 shows body weight changes of SAM R1 mice treated with the present compositions;

도 8은 본 발명 조성물을 투여한 SAM P8 마우스의 체중 변화를 도시한 도면;8 is a diagram showing the weight change of SAM P8 mice administered the composition of the present invention;

도 9는 본 발명 조성물을 투여한 SAM R1 마우스와 SAM P8 마우스의 대뇌 피질내 ATP량 변화를 도시한 도면이고,9 is a view showing changes in the amount of ATP in the cerebral cortex of SAM R1 mice and SAM P8 mice administered the composition of the present invention,

도 10a 내지 도 10f는 본 발명 조성물을 투여한 SAM P8 마우스의 뇌에 나타난 병리조직학적 변화를 나타낸 사진이다.10A to 10F are photographs showing pathological changes in the brain of SAM P8 mice to which the composition of the present invention was administered.

본 발명 조성물의 구성 성분 및 구성비를 표 1에 요약하였다. 성인(60 kg) 1회 복용량은 45g이 적당하다.The composition and the ratio of the composition of the present invention are summarized in Table 1. An adult dose (60 kg) is suitable for 45g.

약재의 채집, 건조, 저장 및 약재의 법제(法製)는 약재에 따라 상이한데, 통상의 방법으로 한다.Collection, drying, storage of medicines and the law of the medicine (法製) is different depending on the medicine, it is in the usual way.

표 1. 본 발명 조성물의 약재구성Table 1. Medicinal composition of the present invention composition

사용약재 중량비Pharmaceutical weight ratio 인 삼 1.6 - 2.4황 기 0.7 - 1.3백 출 0.7 - 1.3백 작 0.7 - 1.3당 귀 0.7 - 1.3천 궁 0.7 - 1.3진 피 0.7 - 1.3감 초 0.7 - 1.3백하수오 0.7 - 1.3육 계 0.7 - 1.3Ginseng 1.6-2.4 Yellow 0.7-1.3 White 0.7-1.3 White 0.7-1.3 Ears 0.7-1.3 Cheong 0.7-1.3 True Blood 0.7-1.3 Persimmon 0.7-1.3 White sewage 0.7-1.3 Broiler 0.7-1.3

제재화는 약재 총 중량에 대한 10배의 정제수로 1시간 동안 열을 가하여 전탕액으로 조제할 수 있다. 엑기스로도 제조할 수 있는 바, 10회 복용량(450 g)의 경우라면 5,000 ml의 라운드 플래스크(round flask)에 넣고 3,000 ml의 정제수를 가하여 냉각기를 부착하고 2시간 가열 전탕한 후 여과한 여액을 회전 증발기(rotary evaporator)로 감압 농축한 후 섭씨 40도 감압건조기에서 완전 건조시켜 엑기스 110.5 g을 얻거나, 3시간 가열전탕하여 엑기스 90.0 g을 얻을 수 있다. 엑기스로 제조하고자 하는 약재의 양에 따라서 상기 정제수의 양과 가열전탕 시간을 조절한다. 약재의 형태는 상기 전탕액과 엑기스의 1회 복용량을 드링크제로 제조할 수 있다.Sanctions can be prepared with a hot water for 1 hour with purified water 10 times the total weight of the medicine. It can also be prepared as an extract. For 10 doses (450 g), place in a 5,000 ml round flask, add 3,000 ml of purified water, attach a cooler, heat and warm for 2 hours, and filter the filtrate. It was concentrated under reduced pressure in a rotary evaporator (rotary evaporator) and then completely dried in a 40 ° C. decompression dryer to obtain an extract 110.5 g, or 3 hours of heating and heating to obtain an extract 90.0 g. According to the amount of medicine to be prepared by the extract is adjusted the amount of the purified water and the heating hot water. In the form of medicines, a single dose of the medicated liquid and extract may be prepared as a drink.

또한 약재를 정제수로 세척 후 건조하여 분말(산제)로 제조할 수 있다. 약제의 형태는 분말 형태로 두거나, 캡슐, 과립, 타블렛 및 당의정 등으로 제조할 수 있다.In addition, the medicinal herbs can be washed with purified water and dried to prepare a powder (powder). The form of the medicament may be in powder form, or may be prepared in capsules, granules, tablets and dragees.

또 다른 방법으로는 상기 분말로 만든 후 풀이나 꿀 등으로 반죽하여 적당한 크기로 둥그렇게 하여 환(丸)으로 제조할 수 있다. 기타 결정체로 제조할 수도 있다.As another method, the powder may be made into a round shape by kneading with a paste or honey after making the powder. It may also be prepared from other crystals.

상기 형태의 약재의 1회 복용량을 1일 3회 경구 투여한다. 환자의 증상에 따라 투여 기간이 조절된다.A single dose of this type of medicine is administered orally three times a day. The duration of administration is adjusted according to the patient's symptoms.

이러한 본 발명 조성물의 투여로 공지의 효능과 다른 퇴행성 대뇌 신경계 질환인 노인성 치매, 혈관성 치매, 알츠하이머형 치매 등의 예방 및 치료효과를 나타낸다.Administration of the composition of the present invention exhibits known efficacy and preventive and therapeutic effects of other degenerative cerebral nervous system diseases such as senile dementia, vascular dementia, and Alzheimer's dementia.

상기 약재의 퇴행성 대뇌 신경계 질환에 대한 효능을 증명하기 위한 초대 배양신경세포를 이용한 생체외(In Vitro) 실험과 질환 모델 동물을 이용한 생체내(In Vivo) 실험 방법은 다음과 같다.In Vitro experiments using primary cultured neurons and in vivo experiments using disease model animals to demonstrate the efficacy of the medicinal herbs for degenerative cerebral nervous system diseases are as follows.

먼저, 생체외 (In Vitro)실험 방법을 본다.First, look at the in vitro experiment method.

한의학과 서양 의학의 관점에서 노화 현상은 자연 발생적 생리 기능의 퇴화라고 여겨지는 것과 같이 신경계 세포는 배양 시간이 경과함에 따라 자연적 죽음에 이르게 된다. 이러한 현상을 세포 수준에서 볼 때 애팝토시스(apoptosis) 와(혹은) 네크로시스(necrosis)에 의한 것이라 생각할 수 있다.From the point of view of oriental medicine and western medicine, aging is considered to be a degeneration of naturally occurring physiological functions, and neural cells die naturally. At the cellular level, this phenomenon can be thought to be caused by apoptosis and / or necrosis.

첫째, 이와 같은 배경에서 글루타민(glutamate) 투여(0.7-1.0 mM)에 의해 인위적으로 유도된 애팝토시스(apoptosis)와 자연 발생적인 세포의 치사에 대해 한약재가 미치는 영향을 조사하였다.First, the effects of herbal medicine on apoptosis induced by glutamine administration (0.7-1.0 mM) and lethality of naturally occurring cells were investigated.

둘째, 애팝토시스의 특징적 변화로써는 DNA 제한효소(endonuclease)의 활성화에 의해 180bp 정도 크기의 염색체 DNA 절편(chromosomal DNA fragment) 형성이 알려져 있으므로, 본 발명 조성물의 투여에 의한 글루타민(glutamate)에 의해 유도된 신경계 세포의 애팝토시스에 대한 세포 보호 작용을 관찰하기 위하여 DNA 절편 성상을 관찰하였다.Second, as a characteristic change in apoptosis, the formation of chromosomal DNA fragments of about 180 bp is known by activation of DNA endonuclease, and thus induced by glutamine by administration of the composition of the present invention. In order to observe the cellular protective action against apoptosis of the neuronal cells, DNA fragmentation was observed.

셋째, 배양 대뇌 피질 신경계 세포의 자연 퇴행에 대해 본 발명 조성물의 지연(개선) 효과를 관찰하였다.Third, the delayed (improvement) effect of the composition of the present invention was observed for spontaneous degeneration of cultured cerebral cortical nervous system cells.

넷째, 신경 세포의 자연 퇴행에 대해 본 발명 조성물의 지연(개선) 효과를 애팝토시스(apoptosis)와 네크로시스(necrosis)를 포함하는 특정적인 형태학적 변화면에서 이중 형광(double fluorescence) 염색법을 이용하여 관찰하였다.Fourth, the delayed (improvement) effect of the composition of the present invention on the natural regression of neurons using double fluorescence staining in terms of specific morphological changes including apoptosis and necrosis. Was observed.

다섯째, 세포질에 존재하는 젖산 탈수소 효소(LDH : lactate dehydrogenase)는 네크로시스(necrosis) 혹은 세포 유해 물질에 의해 세포막의 손상이 있을 때 세포막 밖으로 배출되게 된다. 그러므로 세포 기능의 자연적 퇴화(노화)에 대한 약재의 효능을 검색하고 세포막의 손상 상태를 평가하기 위하여 배양액에 함유된 LDH량을 측정하였다.Fifth, lactate dehydrogenase (LDH) in the cytoplasm is discharged out of the cell membrane when there is damage to the cell membrane by necrosis or cytotoxic substances. Therefore, the amount of LDH contained in the culture was measured in order to search for the efficacy of medicinal herbs on the natural deterioration (aging) of cell function and to evaluate the damage state of the cell membrane.

상기 관찰에서 글루타민에 유도된 애팝토시스를 개선한다고 알려져 있는 당귀 작약산을 양성 대조 약재로 사용하였다.In this observation, Angelica peony acid known to improve glutamine-induced apoptosis was used as a positive control medicine.

한편, 생체외 실험에서 공통적인 신경계 세포를 얻기위한 대뇌 피질의 분리 방법과 세포 배양 방법은 이하와 같다.On the other hand, the cerebral cortex separation method and cell culture method for obtaining common nervous system cells in an in vitro experiment are as follows.

생후 1-2일령 마우스의 대뇌 피질부를 분리하여 0.5mm3정도의 불럭으로 만든 후, 신경계 조직을 단일 세포로 분리하기 위하여 0.1% BSA, 0.025% 트립신(trypsin)을 함유한 변형 인공 뇌척수용액(ACSF : modified artificial cerebrospinal fluid, 136mM NaCl, 5.4mM KCl, 0.4mM KH2PO4, 0.5mM MgCl2, 0.4mM MgSO4, 0.3mM Na2HPO4, 15mM 트리(하이드록시메칠)아미노메탄, pH 7.4 )에서 37oC, 15분 동안 투여하였다. 분리된 단일 세포의 순도를 높이기 위하여 BSA와 트립신을 함유하지 않은 ACSF 용액으로 분쇄되지 않은 조직 절편을 침전, 제거하였다. 이와 같은 세척 과정을 3회 반복하고 세포 수가 106/ml로 되게 조절하여 35mm 배양용 플래이트에 2ml을 분주하였다. 분리한 대뇌피질은 95% 공기/5% CO2,가습의 조건에서 10% 피틀카프시럼(fetal calf serum), 100U/ml 페니실린, 100μg/ml 스트렙토마이신을 함유한 DMEM(Dulbecco의 수정된 이글 배양액, 글루타민은 미첨가)을 사용하여 세포 배양을 실시하였다. 신경계 세포의 퇴행이 빨리 일어나는 조건을 이용하기 위하여 성장 인자를 첨가하지 않은 조건에서 실시하였으며, 실험의 목적에 따라 배양 시간을 조정하였다. 또한, neuron의 수를 높이기 위하여 세포 배양을 시작한 2일째 5μM 사이토신 아라비노시드(cytosine arabinoside)를 배양액 중에 넣어 24시간 투여한 후 정상 배지로 교체하였다.Deformed cerebral cortex of mice 1-2 days old to make a block of about 0.5 mm 3 , and then modified artificial cerebrospinal fluid (ACSF) containing 0.1% BSA and 0.025% trypsin to separate neural tissue into single cells. : modified artificial cerebrospinal fluid, 136mM NaCl, 5.4mM KCl, 0.4mM KH 2 PO 4 , 0.5mM MgCl 2 , 0.4mM MgSO 4 , 0.3mM Na 2 HPO 4 , 15mM tri (hydroxymethyl) aminomethane, pH 7.4) At 37 ° C. for 15 minutes. In order to increase the purity of the isolated single cells, unfractionated tissue sections were precipitated and removed with an ACSF solution containing no BSA and trypsin. This washing process was repeated three times and the cell number was adjusted to 10 6 / ml to dispense 2ml into a 35mm culture plate. The isolated cerebral cortex was DMEM (Dulbecco's modified Eagle culture solution containing 95% air / 5% CO 2, 10% fetal calf serum, 100 U / ml penicillin, and 100 μg / ml streptomycin under humidified conditions). , Glutamine was not added), and cell culture was performed. In order to use the conditions in which the degeneration of the nervous system cells occurs quickly, it was performed under the condition that no growth factor was added, and the incubation time was adjusted according to the purpose of the experiment. In addition, in order to increase the number of neurons, 5 μM cytosine arabinoside was added to the culture solution on the 2nd day of cell culture, and then replaced with normal medium for 24 hours.

다음으로, 생체내(In Vivo) 실험방법을 본다.Next, look at the in vivo experimental method.

질환 모델 동물로써 노인성 치매에서 볼 수 있는 학습 및 기억 능력의 장해, 스폰지폼(spongiform) 퇴행성 병변, PAS 염색성 과립 구조 그리고 β/A4 단백질성 과립 구조와 같은 임상적, 병리학적 특징을 나타내는 24주령의 SAM P8 마우스(선천성 노화 촉진 마우스)와 정상적인 동물모델로써 24주령의 SAM R1을 선택하였다. 표 1의 약재 총 중량에 대한 10배의 물로 1시간 동안 열을 가하여 전탕액을 조제한다. 투여량은 동물 체중에 대한 경구 투여 용량비(마우스: 2ml/Kg)에 따라 결정하고, 여기에 임상적 사용 용량인 상기 경구 투여량의 3배의 양을 12주 동안 주 6회 경구 투여한다.As a disease model animal, a 24-week-old patient with clinical and pathological features such as learning and memory impairment in dementia, spongiform degenerative lesions, PAS staining granule structure, and β / A4 proteinaceous granule structure SAM P8 mice (congenital aging promoting mice) and 24 week old SAM R1 were selected as normal animal models. Pre-heated liquid is prepared by applying heat for 1 hour with water 10 times the total weight of the medicine of Table 1. Dosage is determined according to the ratio of oral dose to mouse body weight (mouse: 2 ml / Kg), wherein three times the oral dose, the clinical use dose, is administered orally six times a week for 12 weeks.

상기 투여후 첫째, 체중 및 뇌중량의 변화를 보았다.First, the body weight and brain weight were changed after the administration.

둘째, 세포내 에너지 대사의 변화는 외부로부터 에너지원의 섭취와 세포의 에너지 생산 능력과 밀접한 연관성을 가진다고 할 수 있다. 그래서 이에 대한 보다 구체적 결과를 증명하기 위하여 혈중 포도당 농도의 변화를 평가하였다.Second, changes in cellular energy metabolism are closely related to the intake of energy sources from outside and the energy production capacity of cells. Therefore, the change of blood glucose concentration was evaluated to prove more specific result.

셋째, 세포 생존에 필요한 에너지 생산을 위해 요구되는 필수적인 량의 에너지원 공급은 세포의 항상성 유지에 있어서 매우 중요하며, 이를 평가하기 위한 기준으로 혈당과 조직의 기질 이용률을 생각할 수 있다. 그러므로 이를 위해, 소양인 십이미지황탕을 투여한 동물의 상기한 혈중 포도당 측정과 아울러 대뇌 피질 세포내 포도당함량을 관찰하였다Third, the supply of the necessary amount of energy source required for the production of energy required for cell survival is very important in maintaining the homeostasis of the cell, the blood glucose and tissue substrate utilization can be considered as a criterion for evaluating this. Therefore, for this purpose, we observed the blood glucose level in the cerebral cortex as well as the above-mentioned blood glucose measurement in animals treated with Goyang image tang.

넷째, 본 발명 조성물이 대뇌 피질부의 에너지 대사에 미치는 영향을 조사하기 위하여 실험 종료시 대뇌 피질을 분리하여 세포내 ATP 함량을 측정하였다. 에너지 대사는 신경계 세포를 비롯한 모든 세포에서 생리 기능의 유지를 위해 절대 필요한 과정으로써, 치매를 나타내는 신경계 세포의 퇴행성 병변에 있어서 에너지 대사의 감소는 잘 알려져 있으며, 이는 치매 조직에서 관찰할 수 있는 여러 가지 병변의 형성에 대한 일차적 병인으로도 여겨지고 있기 때문이다.Fourth, in order to investigate the effect of the composition of the present invention on the energy metabolism of the cerebral cortex, the cerebral cortex was separated and the intracellular ATP content was measured. Energy metabolism is an essential process for the maintenance of physiological function in all cells, including nervous system cells, and the reduction of energy metabolism is well known in the degenerative lesions of neurological cells that represent dementia. This is because it is also considered as the primary etiology for the formation of lesions.

다섯째, SAM P8(선천성 노화 촉진 마우스)에 대한 PM II 활성의 변화를 조사하고 이에 대한 본 발명 조성물의 영향을 관찰하였다. 그 배경을 보면 다음과 같다. PM II는 노화에 의한 세포내 비정상 단백질의 복귀나 제거에 관여하며 포유동물의 뇌 조직에 고농도로 존재하는 것으로 알려져 있다. 그리고 알츠하이머(Alzheimer)병이나 알츠하이머(Alzheimer)형 치매에서는 세포내 신경섬유의 엉킴현상(neurofibrillary tangle)과 세포외 아밀로이드 플래크(amyloid plaque)와 같은 비정상적 단백질이 침착하는 병인이 알려져 있다. 이와 같이 노화나 치매성 신경 세포에서 일어나는 병리, 생화학적 변화와 동시에 세포 생화학적 측면에서 볼 때 단백질은 세포 기능의 표현에 있어서 중추적 역할을 하므로 다음과 같은 가설을 설정할 수 있었다. 비록 SAM 모델 동물에 있어서 단백질 메틸화(protein methylation)의 관련성이나 병리, 생화학적 의의에 대한 보고는 없으나, 본 발명의 본 발명 조성물이 세포 에너지 대사의 개선에 따른 생리적 기능 유지에 대한 효능을 가진다면 이차적으로 단백질의 기능(형태)에도 영향을 미칠 수 있다고 생각할 수 있다.Fifth, the change in PM II activity on SAM P8 (congenital aging promoting mouse) was investigated and the effect of the composition of the present invention was observed. The background is as follows. PM II is involved in the recovery or removal of abnormal proteins in cells by aging and is known to be present in high concentrations in mammalian brain tissue. In Alzheimer's disease or Alzheimer's type dementia, there are known etiologies in which abnormal proteins such as intracellular neurofibrillary tangle and extracellular amyloid plaque are deposited. As described above, the protein plays a pivotal role in the expression of cellular functions, as well as the pathologies and biochemical changes occurring in aging and dementia neurons. Although there is no report on the relationship, pathology, and biochemical significance of protein methylation in SAM model animals, it is secondary if the composition of the present invention has an effect on maintaining physiological function according to improvement of cellular energy metabolism. It can be considered that this may also affect the function (form) of the protein.

여섯째, 치매 환자의 뇌에서 관찰 할 수 있는 퇴행성 병변과 SAM P8의 뇌 조직을 비교하고, 동시에 본 발명의 본 발명 조성물이 뇌 신경계 세포의 퇴행에 미치는 영향을 조사하기 위하여 병리조직학적 검사를 실시하였다. 실험 배경을 보면다음과 같다. SAM P8의 3가지의 중요한 병리 형태학적 소견은 주로 뇌간 부위의 스폰지폼 퇴행(spongiform degeneration), 해마 부위의 PAS-양성 과립(PAS-positive granules)의 형성 그리고 β/A4 단백질양 과립(β/A4 protein-like immuno-reactive granules)의 형성인데, 인간의 노인성, 알츠하이머(Alzheimer)형 치매와 유사한 병리학적 소견을 가지고 있다.Sixth, the degenerative lesions observed in the brain of patients with dementia and brain tissues of SAM P8 were compared, and at the same time, histopathological examination was performed to investigate the effect of the composition of the present invention on the degeneration of brain neuronal cells. . The experimental background is as follows. Three important pathological morphological findings of SAM P8 were mainly sponge sponge degeneration in the brainstem region, formation of PAS-positive granules in the hippocampus and β / A4 protein granules (β / A4). protein-like immuno-reactive granules are formed, with pathological findings similar to those of human senile, Alzheimer's dementia.

하기의 실시예들로써 본 발명을 상세히 설명하겠다.The present invention will be described in detail by the following examples.

<실시예 1><Example 1>

-본 발명 조성물에 의한 글루타민(glutamate)에 의해 유도된 애팝토시스(apoptosis)의 개선Improvement of apoptosis induced by glutamine with the composition of the present invention

글루타민을 16 - 24시간 투여한 후, 본 발명 조성물(0.01, 0.1mg/ml)을 배양 신경계 세포에 투여하였다. 도 1a는 1mM의 글루타민만을, 도 1b는 1mM의 십전대보탕만을, 도 1c는 1mM의 글루타민 + 0.1mg/ml의 십전대보탕을, 도 1d는 1mM의 글루타민 + 1.0mg/ml의 십전대보탕을 투여한 결과이다(글루타민은 16 - 24시간 투여). 그 결과 글루타민(glutamate)에 의해 유발되는 뉴런양 신경 세포의 퇴행이 현저히 저하됨을 알수있다. 특히, 글루타민(glutamate)에 의한 뉴라이트의 변성이 현저히 저하하였다. 본 발명 조성물 대한 결과는 하기 비교예 1의 당귀작약산의 효능과 매우 유사하였다.After 16 to 24 hours administration of glutamine, the compositions of the invention (0.01, 0.1 mg / ml) were administered to cultured nervous system cells. FIG. 1A shows only 1 mM glutamine, FIG. 1B shows only 1 mM glutathione, and FIG. 1C shows 1 mM glutamine + 0.1 mg / ml of zonazitanbotang, and FIG. 1D shows 1 mM glutamine + 1.0 mg / ml of zonazibotan Result (glutamine is administered 16-24 hours). As a result, it can be seen that the degeneration of neuronal neurons induced by glutamine is significantly reduced. In particular, the denaturation of neurites due to glutamine was significantly reduced. The results for the composition of the present invention were very similar to the efficacy of the glycojaxak acid of Comparative Example 1 below.

<비교예 1>Comparative Example 1

배양 신경계 세포에 대하여 당귀작약산(當歸 芍藥散)은 글루타민(glutamate)에 의한 애팝토시스(apoptosis)를 개선시킨다고 알려져 있다. 따라서, 본 발명 조성물에 대한 양성 대조 약재로써 당귀작약산을 사용하였다. 도 2b는 글루타민을 투여안한 것이며, 도 2a는 1mM의 글루타민만을, 도 2c는 1mM의 글루타민 + 0.1mg/ml의 당귀작약산을, 도 2d는 1mM의 글루타민 + 1.0mg/ml의 당귀작약산을 투여한 결과이다(글루타민은 16 - 24시간 투여). 결과는 당귀작약산이 글루타민(glutamate) 투여에 의한 뉴런(neuron)과 뉴라이트(neurite)의 변성(퇴행)을 현저히 개선하였다.For cultured nervous system cells, Angelica sacrum is known to improve apoptosis by glutamine. Therefore, Donggui Pakjaksan was used as a positive control medicine for the composition of the present invention. Figure 2b is not administered glutamine, Figure 2a is only 1mM glutamine, Figure 2c is 1mM glutamine + 0.1mg / ml glycomic pelican acid, Figure 2d is 1mM glutamine + 1.0mg / ml of Dongguk Paksan Results of dosing (glutamine is administered 16-24 hours). The results showed that Dangwi Paksan significantly improved the degeneration (degeneration) of neurons and neurites by the administration of glutamine.

<실시예 2><Example 2>

-DNA 절편(fragmemt) 양상DNA fragmentation aspect

관찰방법을 보면, 마우스 대뇌 피질 신경계 세포를 배양후 5일부터 본 발명 조성물을 0.1, 1.0 mg/ml의 농도로 2일간 먼저 투여한후 0.7 mM 글루타민을 24시간 투여하였다. 이후 세포를 분리하여 35 mm 플래이트에 300 μl 다이제스쳔 버퍼(digestion buffer : 100mM NaCl, 25mM EDTA, 0.5% sodium dodesylsulfate, 10mM Tris/HCl, 0.1mg/ml protenase K, pH 8.0)를 가하여 DNA를 분리하였다. 이소아밀알콜/메탄올/클로로포름(25:24:1), 70% 에탄올 그리고 100% 에탄올로 게놈(genomic) DNA를 침전시킨 후 1.5% 아가로우스 겔(agarose gel) 상에서 전기영동으로 DNA 분획을 분리하여 이티디움 브로마이드(ehtidium bromide) 염색에 의해 DNA 성상을 관찰하였다.In the observation method, the mouse cerebral cortical nervous system cells were first administered for 2 days after the culture of the present invention at a concentration of 0.1, 1.0 mg / ml from the 5th day from the culture, and then 0.7 mM glutamine was administered for 24 hours. Cells were then separated and 300 μl digestion buffer (100 mM NaCl, 25 mM EDTA, 0.5% sodium dodesylsulfate, 10 mM Tris / HCl, 0.1 mg / ml protenase K, pH 8.0) was added to the 35 mm plate to separate DNA. It was. Precipitating genomic DNA with isoamyl alcohol / methanol / chloroform (25: 24: 1), 70% ethanol and 100% ethanol, and then separating the DNA fractions by electrophoresis on a 1.5% agarose gel. The DNA properties were observed by ethidium bromide staining.

관찰 결과는 도 3에서 볼 수 있는 것과 같이 글루타민(glutamate) 투여에 의해 180∼200 bp 크기의 많은 DNA 절편을 관찰할 수 있었다. 이와 같은 변화는 본 발명 조성물 투여에 의하여 현저히 억제됨을 알 수 있었다. 이는 알려져있는 글루타민(glutamate)에 의한 염색체 DNA 절편(chromosomal DNA fragmentation)에 대한 당귀 작약산의 억제 효과와 일치한다.As shown in FIG. 3, many DNA fragments of 180-200 bp size could be observed by glutamine administration. This change was found to be significantly suppressed by the administration of the composition of the present invention. This is consistent with the inhibitory effect of Angelica peony acid on chromosomal DNA fragmentation by known glutamine.

<실시예 3><Example 3>

-신경세포의 자연 발생적 퇴행에 미치는 영향-Effects on spontaneous degeneration of neurons

도 4는 인슐린(insulin), 트랜스페린(transferrin), 셀레니움(selenium)을 첨가하지 않은 DMEM 배양액에서 세포 성장을 관찰한 결과이다(도 4a 내지 4f는 배양한지 각각 2, 4, 6, 8, 10, 13일째 관찰한 것임). 7∼8일 까지는 뉴라이트가 활발한 성장을 보이는데, 8일경에 최고의 성장을 보였다. 이후 퇴행을 시작하여10일 이후에는 급격한 퇴화를 보여 엑손(axon)세포의 형태만이 관찰되는데, 11일경에는 현미경하에서 세포의 퇴행을 확실히 판별할 수 있을 정도의 성상을 나타내었다. 따라서 배양 신경계 세포의 자연 발생적 퇴행에 대한 양성 대조 약재로써 당귀 작약산과 본 발명 조성물의 영향을 조사하기 위하여 배양 7일부터 11일 동안 1 mg/ml의 농도로 각 약재를 배양액에 첨가하여 세포의 자연 발생적 퇴행에 미치는 영향을 조사하였다. 도 5는 실험 종료 시기인 배양 11일에 관찰한 결과이다. 약재를 투여하지 않은 대조군(도 5a)에서는 뉴런과 뉴라이트등 신경계 세포의 현저한 퇴행을 관찰할 수 있었다.FIG. 4 shows the results of cell growth in DMEM culture medium without insulin, transferrin, and selenium (FIGS. 4A to 4F show 2, 4, 6, 8, 10, Observed on day 13). Newlite showed active growth from 7 to 8 days, with the best growth around 8 days. After 10 days after the start of the degeneration showed a sharp degeneration of only axon (axon) cell morphology was observed around 11 days, the appearance of the cell was able to clearly determine the degeneration of the cells. Therefore, in order to investigate the effects of Angelica peony peony and the composition of the present invention as a positive control medicine against spontaneous degeneration of cultured nervous system cells, each medicine was added to the culture medium at a concentration of 1 mg / ml for 7 to 11 days of culture. The effect on developmental degeneration was investigated. Figure 5 is the result observed on the culture day 11, the end of the experiment. In the control group not administered the drug (FIG. 5a), remarkable degeneration of neuronal cells such as neurons and neurons was observed.

이러한 세포의 변성은 본 발명 조성물(도 5c)의 투여에 의해 유의하게 개선되었다. 이러한 세포의 자연적 퇴행에 미치는 지연(개선)의 정도는 본 발명 조성물이 양성 대조 약재인 당귀 작약산(도 5b)보다 큰 것으로 나타났으며, 이러한 결과는 하기 실시예 8에서 관찰된 대뇌피질부 에너지 생산능(生産能)에 대한 결과와 매우 일치한다.Degeneration of these cells was significantly improved by administration of the composition of the present invention (FIG. 5C). The degree of delay (improvement) on the natural regression of these cells was found to be greater than that of the present invention composition, Angelica peony peony (Fig. 5b), which is a positive control drug, and these results were cortical energy observed in Example 8 below. Very consistent with the results for production capacity.

<실시예 4><Example 4>

-이중 형광 염색법을 통해 본 신경세포의 자연 발생적 퇴행에 따른 형태학적 변화에 미치는 영향Effect on the Morphological Changes of Naturally Degenerative Neurons by Dual Fluorescence Staining

이용한 이중 형광(double fluorescence) 염색법은 이하와 같다. 세포 활성도에 대한 애팝토시스(apoptosis)와 네크로시스(necrosis)의 관련을 구분하기 위하여 아크리딘 오렌지(acridine orange)와 이티디움 브로마이드(ethidium bromide)를 이용한 형광 염색법을 사용하였다. 대뇌 피질부 신경계 세포를 배양 개시후 6일부터 14일 동안 0.1mg/ml 농도로 본 발명 조성물을 처리하였다. 젖산 탈수소 효소(LDH)를 측정하기 위해 배양액을 제거, 수집한 후, 인산 버퍼 셀린(PBS)으로 3회 세척하였다. 아크리딘 오렌지(acridine orange)와 이티디움 브로마이드(ethidium bromide)를 2 μl/ml 농도로 조정하여 실온에서 2-3분 염색하여 관찰하였다. 아크리딘 오렌지(Acridine orange) 염색법은 일정 빈도의 세포 수에 대하여 생존 세포와 비생존 세포에 따라 형광성 DNA 결합 염색 시약의 세포막 투과 정도에 따라 결정된다. 그러므로 아크리딘 오렌지(acridine orange) 염색법은 세포의 애팝토시스(apoptosis) 진행 여부와 애팝토시스(apoptosis)의 정도 (초기 혹은 후기)를 평가할 수 있다. 아크리딘 오렌지(acridine orange)는 DNA에는 결합과 삽입(intercalation)이 되나 RNA에는 결합만이 이루어 질 수 있고 DNA에 결합된 염색약은 녹색을 나타내고 RNA에 결합된 시약은 붉은 오렌지(red-orange)색을 나타내게 된다. 이티디움 브로마이드는 오직 세포막에 이상이 있을 경우(예로 죽은 세포)에만 세포내로 유입되게 된다. 그래서 죽은 세포에서 핵은 밝은 오렌지(bright orange)색을 나타내고 세포질은 어두운 붉은색(dark red)로 관찰된다. 반면에 죽은 세포에서 정상 혹은 애팝토시스(apoptosis) 양상의 핵은 밝은 오렌지(bright orange)로 보이게 된다. 이와같은 형광의 차이로부터 초기, 후기 애팝토시스(apoptosis)와 네크로시스(necrosis)를 구분할 수 있다.The double fluorescence staining method used was as follows. Fluorescence staining using acridine orange and ethidium bromide was used to distinguish the relationship between apoptosis and necrosis on cell activity. Cortical neuronal cells were treated with the composition of the present invention at a concentration of 0.1 mg / ml for 6-14 days after the start of the culture. Cultures were removed and collected to measure lactic acid dehydrogenase (LDH), and then washed three times with phosphate buffered celine (PBS). Acridine orange and ethidium bromide were adjusted to a concentration of 2 μl / ml and observed for 2-3 minutes at room temperature. Acridine orange staining is determined by the extent of cell membrane penetration of fluorescent DNA-binding staining reagents for viable and non-viable cells for a certain number of cells. Therefore, acridine orange staining can assess whether the cells have undergone apoptosis and the degree of apoptosis (early or late). Acridine orange is bound to and intercalated with DNA, but can only be bound to RNA, dyes bound to DNA appear green, and reagents bound to RNA are red-orange. It will show color. Itidinium bromide will enter the cell only if there is an abnormality in the cell membrane (eg dead cells). Thus, in dead cells, the nucleus is bright orange and the cytoplasm is dark red. On the other hand, in the dead cells, the nucleus of normal or apoptosis appears to be bright orange. From these differences in fluorescence, early and late apoptosis (apoptosis) and necrosis (necrosis) can be distinguished.

도 6a은 대조군을, 도 6c은 0.1 mg/ml의 당귀약산을 투여한것을, 6e은 0.1 mg/ml의 본 발명 조성물을 투여한 것을 각각 광학 현미경 관찰한 것이며, 도 6b는 대조군을, 도 6d는 0.1 mg/ml의 당귀약산을 투여한것을, 6f는 0.1 mg/ml의 본 발명 조성물을 투여한 것을 각각 이중 형광 염색법에 의한 결과이다.(첨부 자료로 칼라 사진 첨부)6a shows a control group, FIG. 6c shows a 0.1 mg / ml glycomic acid, 6e shows a 0.1 mg / ml administration of the present invention, and FIG. 6b shows a control group, FIG. 6d. Is the result of the administration of 0.1 mg / ml glycomic acid, 6f was administered 0.1 mg / ml of the composition of the present invention, respectively, by double fluorescence staining (attached color photo as an attachment).

그 결과는 도 6a에서 볼 수 있는 것과 같이 배양 14일에 뉴런양 세포는 현저한 퇴행을 보여 엑손의 잔존만 확인할 수 있는 상태였다. 이를 이중 형광(double fluorescence)법에 의한 염색을 실시하였을 때, 뉴런을 비롯한 다수의 신경계 세포는 오랜지색을 나타냄과 동시에 절편(fragments)의 염색성을 관찰할 수 있었다. 이는 많은 세포가 배양 14일에는 후기 애팝토시스(apoptosis)나 네크로시스(necrosis)의 상태에 있음을 명확히 증명한다. 반면에 0.1 mg/ml의 본 발명 조성물과 당귀작약산을 배양 6일부터 14일에 걸쳐 9일 동안 배양액에 투여한 결과, 세포의 퇴행이 현저히 개선되었다(도 6e, 6c). 더욱이 이중 형광(double fluorescence)법에 의한 염색을 이들 세포에 적용하였을 때, 본 발명의 조성물 등을 투여하지 않은 대조군과는 다르게 뉴런(neuron)을 포함한 다수의 신경계 세포가 청색의 염색성과 절편(fragments)를 보였다(도 6f, 6d). 이는 본 발명의 조성물 등을 투여하지 않은 세포와는 달리 많은 수의 세포가 정상이거나 초기 애팝토시스(apoptosis) 상태에 있음을 증명한다. 즉, 배양 신경계 세포에 있어서 당귀작약산과 본 발명 조성물은 애팝토시스(apoptosis)나 네크로시스(necrosis)에 의한 세포의 퇴행을 지연하는 효과를 가진다고 볼 수 있다.As a result, as shown in FIG. 6a, neuronal sheep cells showed significant regression at 14 days of culture, and only the exon remained. When stained by double fluorescence method, many neuronal cells including neurons showed orange color and staining of fragments was observed. This clearly demonstrates that many cells are in the state of late apoptosis or necrosis on day 14 of culture. On the other hand, 0.1 mg / ml of the present invention composition and glycozac acid were administered to the culture solution for 9 days over 6 to 14 days of culture, and cell degeneration was significantly improved (FIGS. 6E and 6C). Furthermore, when staining by double fluorescence was applied to these cells, many neuronal cells including neurons were stained with blue staining and fragments, unlike the control group not administered the composition of the present invention. ) (Figures 6f, 6d). This demonstrates that a large number of cells are normal or in early apoptotic state, unlike cells that have not been administered compositions, etc. of the present invention. That is, in cultured nervous system cells, the Angelica sacrum and the composition of the present invention can be considered to have an effect of delaying cell degeneration due to apoptosis or necrosis.

<실시예 5>Example 5

-젖산 탈수소 효소(LDH : lactate dehydrogenase)의 유리Free of lactate dehydrogenase (LDH)

LDH는 사랑체 단백질(tetrameric protein)으로 산화/환원 반응에 의한 젖산(lactate) 혹은 파이루빈산(pyruvate)으로의 전환에 관련하는 기능을 가진다. 파이루빈산(pyruvate)가 환원될 동안 동일 mol 농도의 환원형 니코틴아마이드-아데닌 다이뉴클레오타이드(NADH)의 산화가 일어나 산화형 니코틴아마이드-아데닌 다이뉴클레오타이드(NAD+)를 형성하게 된다. NADH의 산화 정도에 따라 340nm의 흡광도가 감소하며 이는 시료내에 함유된 LDH의 양에 비례한다.LDH is a tetrameric protein and has a function related to the conversion to lactate or pyruvate by oxidation / reduction reactions. While pyruvate is reduced, oxidation of reduced nicotineamide-adenine dinucleotide (NADH) at the same mol concentration occurs to form oxidized nicotinamide-adenin dinucleotide (NAD +) . Depending on the degree of oxidation of NADH, the absorbance at 340 nm decreases, which is proportional to the amount of LDH contained in the sample.

표 2. 각 처방에 따른 유리된 LDH량Table 2. Free LDH Volume for Each Prescription

처 방 mg/ml 평균±표준편차 중요도Prescription mg / ml Mean ± Standard Deviation Importance 대조군 31.6 ± 1.13당귀작약산0.1 20.6 ± 0.80 **1.0 21.7 ± 1.06 **본 발명 조성물0.1 16.7 ± 2.33 **1.0 21.5 ± 0.27 **Control 31.6 ± 1.13 glycozac acid 0.1 20.6 ± 0.80 ** 1.0 21.7 ± 1.06 ** composition of the present invention 0.1 16.7 ± 2.33 ** 1.0 21.5 ± 0.27 **

**는 대조군에 대해서 유의차 p<0.01을 나타낸다.** indicates significant difference p <0.01 for control.

표 2는 배양 6일째부터 9일 동안 본 발명 조성물을 처리한 군과 무처치군으로 나누어 실험 종료 마지막 1일 동안에 배양액으로 유리된 LDH의 양을 나타낸 결과이다. 본 발명 조성물 0.1∼1.0 mg/ml을 배양액 중에 첨가하였을 때 무처치 대조군과 현저한 LDH의 차이를 관찰할 수 있었다. 이는 무투여 대조군에서 관찰된 LDH의 양에 비하여 유의한 차이(p<0.01)를 보였던 양성 대조 약재인 당귀작약산(0.1∼1.0 mg/ml)보다 높은 효능을 가지는 것으로 나타났다. 이와 같은 결과는 형태학적 관찰(도 6)에서 얻어진 결과와 매우 일치하며, 본 발명 조성물이 배양 세포의 자연 발생적 퇴행을 지연, 억제하는 효과를 가지는 것을 증명한다.Table 2 shows the amount of LDH released into the culture solution during the last 1 day of the experiment divided into the group treated with the composition of the present invention and the untreated group for 6 to 9 days of culture. When 0.1 to 1.0 mg / ml of the composition of the present invention was added to the culture solution, a significant difference between the untreated control group and the LDH was observed. It was shown to have higher efficacy than Dangwi Paksan (0.1-1.0 mg / ml), a positive control drug that showed a significant difference (p <0.01) compared to the amount of LDH observed in the non-administered control group. These results are in good agreement with the results obtained from morphological observation (FIG. 6), demonstrating that the composition of the present invention has the effect of delaying and inhibiting spontaneous degeneration of cultured cells.

<실시예 6><Example 6>

-체중 및 뇌중량의 변화Changes in body weight and brain weight

실험 시작과 그후 매주 체중을 측정하여 각 동물의 체중 변화에 따라 약재의 투여 용량을 변화시켰다. 또한, 투여군과 무투여군의 모든 동물에 대한 임상 관찰을 주 6회 실시하여 모든 동물에 대한 건강 상태를 조사하였다. 실험 종료시 동물 개체에 대한 체중을 측정하고 에칠 에텔(ethyl ether)로 마취, 뇌를 적출 하여 수분을 제거한 후, 뇌의 중량을 측정하여 체중에 대한 상대중량비를 평가하였다. SAM R1 마우스는 9 마리, SAM P8 마우스는 18 마리가 사용되었다.Body weights were measured at the beginning of the experiment and then weekly to change the dosage of the medicinal herbs according to the change in body weight of each animal. In addition, clinical observations of all animals in the administration group and the no-administration group were conducted six times a week to investigate the health status of all animals. At the end of the experiment, animals were weighed, anesthetized with ethyl ether, and brains were removed to remove water, and then brain weights were measured to evaluate the relative weight to weight ratio. Nine SAM R1 mice and 18 SAM P8 mice were used.

그 결과를 보면 다음과 같다.The results are as follows.

12주 동안 임상 용량으로 본 발명 조성물(少陰人 十全大補湯)의 투여에 의해 실험 전기간에 걸쳐 투여군 동물은 무투여 대조군 동물에 비하여 현저한 활동력의 증가를 보였다. 이러한 차이는 SAM R1에서 보다 SAM P8에서 더욱 현저한 차이를 보였다. 도 7과 8에 나타난 것과 같이 36주령 SAM P8 마우스의 체중은 대조 동물인 SAM R1에 비하여 낮은 수치를 보였다. 본 발명 조성물을 SAM R1(도 7)과 SAM P8(도 8)에 12주 동안 경구 투여한 결과, 투여 개시 1주일후부터 체중의 변화를 보이기 시작하여 실험 종료 12주에는 무투여 대조 동물에 비하여 체중의 증가를 관찰할 수 있었다. 그런데 체중 증가에 대한 변화율은 SAM R1에서 보다 SAM P8에서 더욱 현저한 차이를 보였다. 이러한 본 발명 조성물 투여에 의한 정상 동물(SAM R1)과 비정상 동물(SAM P8) 간의 임상 관찰의 차이 및 체중 증가율의 차이는 한방 처방의 기본 이론인 신체 기능의 항상성을 유지하고자 하는 한방 약효 작용에 기인된 것으로 보인다.한편, 노화의 진행에 따른 뇌 조직의 위축은 여러 가지 생리 기능의 이상을 초래한다고 알려져 있다.By administration of the composition of the present invention at a clinical dose for 12 weeks, the animals treated in the administration showed a significant increase in activity compared to the non-administered control animals throughout the experimental period. This difference was more pronounced in SAM P8 than in SAM R1. As shown in FIGS. 7 and 8, the body weight of the 36-week-old SAM P8 mouse was lower than that of the control animal, SAM R1. When the composition of the present invention was orally administered to SAM R1 (FIG. 7) and SAM P8 (FIG. 8) for 12 weeks, body weight began to be changed after 1 week of administration, and at 12 weeks after the end of the experiment, body weight was compared with that of no-administration control animals. An increase in was observed. However, the rate of change in weight gain was more pronounced in SAM P8 than in SAM R1. Differences in clinical observations and weight gain rates between normal animals (SAM R1) and abnormal animals (SAM P8) by administration of the composition of the present invention are attributable to the effect of herbal medicine to maintain homeostasis of body function, which is the basic theory of herbal medicine. On the other hand, atrophy of brain tissue with aging progress is known to cause abnormal physiological functions.

표3. SAM의 뇌중량 변화Table 3. SAM brain weight change

동 물 동물수 뇌중량(g) 체중(g) 뇌/체중(x100)Animal Animals Brain Weight (g) Weight (g) Brain / Weight (x100) SAM R1대조군 9 0.45±0.005 33.9±1.73 1.34±0.07실험군 9 0.46±0.004*34.5±0.94 1.35±0.04SAM P8대조군 18 0.45±0.003 32.1±1.04 1.41±0.04실험군 18 0.48±0.004**33.4±0.98 1.44±0.03SAM R1 Control 9 0.45 ± 0.005 33.9 ± 1.73 1.34 ± 0.07 Experiment 9 0.46 ± 0.004 * 34.5 ± 0.94 1.35 ± 0.04 SAM P8 Control 18 0.45 ± 0.003 32.1 ± 1.04 1.41 ± 0.04 Experiment 18 0.48 ± 0.004 ** 33.4 ± 0.98 1.44 ± 0.03

*는 대조군에 대해서 유의차 p<0.05를, **는 유의차 p<0.01를 의미한다.* Means significant difference p <0.05 and ** means significant difference p <0.01 for the control group.

상기 값 및 이하 실시예에서 나오는 값은 평균±표준 편차를 나타낸다The above values and the values given in the examples below represent mean ± standard deviations.

표 3은 본 발명 조성물 투여에 의한 36주령 SAM R1과 SAM P8의 뇌 중량 변화를 나타낸 것이다. 본 발명 조성물을 투여하지 않은 SAM R1과 SAM P8 사이에서 뇌 중량의 차이는 관찰 할 수 없었다. 그러나 본 발명 조성물을 12주 동안 경구 투여함에 따라 SAM R1과 SAM P8에서 뇌 중량의 증가를 관찰 할 수 있었다(p<0.05 혹은 p<0.01). 이와 같은 뇌 중량의 증가는 체중 변화에서도 볼 수 있었던 것과 같이 SAM R1에서 보다 SAM P8에서의 변화가 현저하게 나타났다. 그리고 뇌 중량을 동물 개체의 체중에 대한 상대적 중량으로 환산하였을 때, 본 발명 조성물 투여군에서 높은 수치를 볼 수 있었다.Table 3 shows the changes in brain weight of 36-week-old SAM R1 and SAM P8 by administration of the composition of the present invention. No difference in brain weight was observed between SAM R1 and SAM P8 without administration of the composition of the present invention. However, after oral administration of the composition of the present invention for 12 weeks, an increase in brain weight in SAM R1 and SAM P8 was observed (p <0.05 or p <0.01). This increase in brain weight was more pronounced in SAM P8 than in SAM R1, as seen by weight change. And when the brain weight is converted to the relative weight with respect to the weight of the animal subject, high values were seen in the composition-administered group of the present invention.

<실시예 7><Example 7>

-혈중 포도당(Glucose)함량의 변화Changes in Glucose Content in the Blood

에칠 에텔(Ethyl ether) 마취후 동물의 복강을 열고 상부 복대 정맥을 통하여 채혈하였다. 혈액을 상온에 방치하여 응고 시킨후, 4oC에서 8000rpm, 10분간의 원심분리에 의해 혈청을 분리하여 측정 시까지 -70oC에서 냉동 보관하였다. 포도당(glucose)는 헥소키나제/당-6-인산 탈수소효소(hexokinase/glucose-6-phosphate dehydrogenase)법에 의해 340nm에서 흡광도를 측정하였다.After anesthesia with Ethyl ether, the animal's abdominal cavity was opened and blood was collected through the upper abdominal vein. After allowed to stand for clotting blood to room temperature, at 4 o C to remove the serum by centrifugation of 8000rpm, 10 min and stored frozen at -70 o C until measurement. Glucose was measured for absorbance at 340 nm by hexokinase / glucose-6-phosphate dehydrogenase.

측정 결과를 요약한 표 4는 본 발명 조성물 투여후 13주째 SAM R1과 SAM P8의 혈중 포도당 농도 변화를 나타낸 것이다. 약재를 투여하지 않은 SAM R1과 SAM P8간의 혈중 포도당 농도는 SAM R1에서 다소 높은 수치로 관찰되었으나 두군간에 통계학적 유의성은 발견되지 않았다. 본 발명 조성물을 투여한 SAM R1과 SAM P8의 혈중 포도당 농도는 무처치 대조군에 비하여 낮은 결과를 보였다. SAM R1의 혈중 포도당 농도가 SAM P8에서 보다 다소 높은 것은 활동성의 증가와 관련한 사료 섭취량의 증가에 기인된 것으로 사료되나, 본 발명 조성물의 투여에 의한 혈당의 저하는 포도당 이용률의 증가에 기인된 것으로 보인다.Table 4 summarizes the measurement results and shows the change in blood glucose concentrations of SAM R1 and SAM P8 at 13 weeks after the administration of the present composition. Serum glucose concentrations between SAM R1 and SAM P8 without medicinal herbs were found to be somewhat higher in SAM R1, but no statistical significance was found between the two groups. The blood glucose concentrations of SAM R1 and SAM P8 administered the present invention showed lower results than the untreated control group. The slightly higher blood glucose concentration of SAM R1 in SAM P8 may be due to an increase in feed intake associated with increased activity, but the decrease in blood glucose by administration of the composition of the present invention may be due to an increase in glucose utilization. .

표 4. 혈중 포도당(glucose) 함량Table 4. Blood Glucose Content

동 물 동물수 조 건 당(mg/dl)Per animal animal condition (mg / dl) SAM R1 (9) 대조군 211.8±15.85SAM R1 (9) 실험군 200.4±5.91SAM P8 (9) 대조군 198.5±10.83SAM P8 (16) 실험군 190.4±8.32SAM R1 (9) Control 211.8 ± 15.85 SAM R1 (9) Experimental 200.4 ± 5.91 SAM P8 (9) Control 198.5 ± 10.83 SAM P8 (16) Experimental 190.4 ± 8.32

<실시예 8><Example 8>

-세포내 포도당 함량 및 ATP 함량의 변화Changes in Cellular Glucose Content and ATP Content

세포내 포도당 함량의 측정 방법은 다음과 같다. SAM 마우스로부터 분리된 대뇌 피질의 처리를 위해 0.1% 트리톤(Triton) X-100를 함유한 인산버퍼샐린(phosphate buffered saline) 600μl을 완충액으로 사용하였다. 조직의 분쇄는 유리-테플론 호모지나이저(homogenizer)(1ml용)를 이용하여 얼음으로 차게한(ice-cold) 상태에서 20회 반복에 의해 모든 시료에 대해 균일하게 이루어졌다. 완충액으로 유리된 포도당과 조직 절편의 분리를 위하여 8,000 rpm에 10분간 원심을 가하였다. 원심 분리후 상층액을 취하여 포도당 및 단백질의 측정에 이용하였다. 포도당의 측정은 혈중 포도당측정과 동일한 방법에 의해 이루어 졌다. 각 시료의 포도당 함량은 측정된 동일 시료의 단백질 량에 대한 비율로 환산하여 표기하였다.The measurement method of the intracellular glucose content is as follows. For treatment of the cerebral cortex isolated from SAM mice, 600 μl of phosphate buffered saline containing 0.1% Triton X-100 was used as the buffer. The grinding of the tissues was done uniformly for all samples by 20 repetitions in an ice-cold state using a glass-teflon homogenizer (for 1 ml). Centrifugation was performed at 8,000 rpm for 10 minutes to separate glucose and tissue sections freed from buffer. After centrifugation, the supernatant was taken and used for the measurement of glucose and protein. Glucose was measured by the same method as blood glucose. The glucose content of each sample was expressed in terms of the ratio of the measured protein amount of the same sample.

한편, ATP 함량의 측정 방법을 보면 다음과 같다. 투여 종료시 SAM R1과 SAM P8의 대뇌 피질부 조직을 1mM 에치렌디아민테트라아세트산(EDTA : ethylenediaminetetraacetic acid)와 10% 트리클로로아세트산(TCA : trichloroacetic acid)로 분쇄하여, 세포내 ATP를 완충액 중으로 유리시켰다. 유리된 ATP를 조직 파편과 분리하기 위하여 15,000rpm에서 10분간 원심 분리하였다. 상층액을 취하여 단백질과 ATP 함량을 측정하기 위한 시료로 이용하였다. ATP의 측정은 Jung 등의 방법을 다소 개량한 화학적발광(chemiluminescence)법에 의해 행하여 졌다. 시료에 함유된 ATP 량에 비례하여 생산된 빛의 양을 발광측정기(luminometer)에 의해 측정하였다. 사용된 동물수는 SAM R1과 SAM P8이 각각 9, 18 마리이다.On the other hand, the method of measuring the ATP content is as follows. At the end of the administration, cerebral cortical tissues of SAM R1 and SAM P8 were ground with 1 mM ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) and 10% trichloroacetic acid (TCA) to release intracellular ATP into the buffer. Free ATP was centrifuged at 15,000 rpm for 10 minutes to separate tissue debris. The supernatant was taken and used as a sample for measuring the protein and ATP content. The measurement of ATP was performed by the chemiluminescence method which slightly improved the method of Jung et al. The amount of light produced in proportion to the amount of ATP contained in the sample was measured by a luminometer. The number of animals used was 9 and 18 SAM R1 and SAM P8, respectively.

도 9는 세포내 ATP 함량의 측정결과를 나타내는데, 각 칼럼은 평균 ± 표준편차을 표시하고 있으며, **은 대조군에 대해서 유의차 p<0.01을 나타낸다. 36주령의 SAM R1과 SAM P8에 있어서 세포내 ATP 함량은 상호 차이를 나타내었는데, SAM P8 대뇌 피질부의 ATP 함량이 SAM R1에서 보다 다소 낮은 결과를 볼 수 있었다. 그러나 두 군간의 통계학적 유의성은 발견되지 않았다. 무처치 대조군의 동물에 비하여 본 발명 조성물을 12주 투여함에 의해 SAM R1과 SAM P8 모두 유의한(p<0.01) 대뇌 피질내 ATP 함량의 증가를 볼 수 있었다. 이와 같은 상승은 정상 동물인 SAM R1에서 보다 학습/기억 장해 모델인 SAM P8에서 더욱 현저하였다. 따라서 본 발명 조성물은 대뇌 피질부의 신경계 세포에 대하여 에너지 생산 능력을 개선하며 그 효과는 정상 상태에서 보다 병적 상태에서 더욱 크게 나타난다고 할 수 있다.Figure 9 shows the results of the measurement of intracellular ATP content, each column shows the mean ± standard deviation, ** indicates a significant difference p <0.01 for the control. The intracellular ATP contents of 36-week-old SAM R1 and SAM P8 were different. The ATP content of the SAM P8 cerebral cortex was somewhat lower than that of SAM R1. However, no statistical significance was found between the two groups. 12 weeks of administration of the composition of the present invention compared to animals in the untreated control group showed a significant (p <0.01) increase in ATP content in cerebral cortex. This rise was more pronounced in SAM P8, a learning / memory disorder model than in SAM R1, a normal animal. Therefore, the composition of the present invention improves the energy production capacity for the nervous system cells of the cerebral cortex, and the effect can be said to be greater in the pathological state than in the normal state.

한편, 세포내 포도당 함량의 변화는 표 5와 같이 무처치 동물에서와 유의한 차이를 보이지 않았다.On the other hand, the change in the glucose content of the cell did not show a significant difference from that in the untreated animals as shown in Table 5.

표5. 대뇌 피질 세포내 포도당 함량Table 5. Glucose content in cerebral cortex

동 물 동물수 조 건 당(mg/dl)Per animal animal condition (mg / dl) SAM R1 (9) 대조군 6.68±0.18SAM R1 (9) 실험군 6.61±0.29SAM P8 (18) 대조군 7.11±0.20SAM P8 (16) 실험군 7.36±0.25SAM R1 (9) Control 6.68 ± 0.18 SAM R1 (9) Experiment 6.61 ± 0.29 SAM P8 (18) Control 7.11 ± 0.20SAM P8 (16) Experiment 7.36 ± 0.25

이러한 포도당 함량의 결과를 상기 실시예 7의 혈중 포도당의 변화 결과 및 상기 ATP 함량의 증가와 연관시켜 볼 때, 세포막을 통한 포도당 이용량 및 그의 이용율 증가와 밀접한 연관성이 있는 것으로 볼 수 있다.When the result of glucose content is related to the result of change in the blood glucose of Example 7 and the increase of the ATP content, it can be seen that it is closely related to the increase in glucose utilization and its utilization rate through the cell membrane.

<실시예 9>Example 9

-단백질 메틸화 효소II(PM II : Protein methylase II)에 미치는 영향Effect on protein methylase II (PM II)

PM II 활성도의 측정은 Gingras 등의 방법을 다소 개량하여 이용하였다. 20 μl 구연산염인산 버퍼(citratephosphate buffer) (pH 6.0), 20㎕ 감마 글로블린(γ-globulin) (30mg/ml)과 50μl 시료를 혼합하여 37oC에서 30분간 전 반응 한후, 10μl의〔methyl-3H〕SAM(Amersham)을 가하여 37oC에서 15분간 반응시켰다. 반응 정지를 위해 100μl의 붕산염 버퍼(borate buffer) (pH 11.0)를 반응액에 가하였고 생성된 메칠 에텔(methyl ester)는 37oC에서 5분간 가수화 하였다. (3H)-메탄올 1ml의 이소아밀알콜(isoamylalcohol)로 분리하여 유기 페이지(organic phage)를 동위원소 양의 측정에 사용하였다.The PM II activity was measured by using a slightly improved method of Gingras et al. 20 μl citrate phosphate buffer (pH 6.0), 20 μl gamma globulin (γ-globulin) (30 mg / ml) and 50 μl sample were mixed for 30 minutes at 37 o C, followed by 10 μl of [methyl- 3 H] SAM (Amersham) was added and reacted at 37 ° C. for 15 minutes. To stop the reaction, 100 μl borate buffer (pH 11.0) was added to the reaction solution, and the resulting methyl ether was methylated at 37 ° C. for 5 minutes. (3 H) - was used as an organic page (organic phage) to measure the isotope amount and separated by isoamyl alcohol (isoamylalcohol) 1ml of methanol.

그 결과는 표6에 요약하였다.The results are summarized in Table 6.

노화 촉진 마우스인 SAM P8의 PM II 활성도는 정상 동물인 SAM R1의 것에 비하여 2.7배 높게 나타나 통계학적 현저한 유의 차가 확인되었다(p<0.01). 이는 노화의 진행에 따른 이상 단백질의 형성과 축적이 많다는 것을 가리킨다. SAM P8에서 관찰된 높은 PM II의 활성도는 본 발명 조성물 투여에 의해 유의하게 감소되었으나(p<0.01), 정상 동물인 SAM R1에서는 본 발명 조성물 투여에 의한 PM II 활성도의 변화를 볼 수 없었다.The PM II activity of SAM P8, an age-promoting mouse, was 2.7 times higher than that of SAM R1, a normal animal, and a statistically significant difference was found (p <0.01). This indicates that there is a lot of abnormal protein formation and accumulation as aging progresses. The high PM II activity observed in SAM P8 was significantly reduced by administration of the composition of the present invention (p <0.01), but no change in PM II activity was observed in the normal animal SAM R1.

표 6. PM II의 활성도 변화Table 6. Changes in activity of PM II

동물 동물수 조건 PM II(unit.mg protein)Animal Animal Water Condition PM II (unit.mg protein) SAM R1 (9) 대조군 1.55±0.069SAM R1 (9) 실험군 1.47±0.046SAM P8 (18) 대조군 4.20±0.343##SAM P8 (16) 실험군 2.32±0.102**SAM R1 (9) Control 1.55 ± 0.069 SAM R1 (9) Experiment 1.47 ± 0.046 SAM P8 (18) Control 4.20 ± 0.343 ## SAM P8 (16) Experiment 2.32 ± 0.102 **

##은 SAM R1대조군에 대해서 유의차 p<0.01을, **는 SAM P8대조군에## indicates significant difference p <0.01 for SAM R1 control, ** for SAM P8 control

대해서 유의차 p<0.01을 의미한다.Mean significant difference p <0.01.

이러한 결과로부터, 노화의 진행에 따라 대뇌 피질부 조직에는 PM II의 기질로 작용하는 단백질의 메틸화가 증가됨을 알 수 있으며, 이에 대해 본 발명 조성물은 감소 효과를 나타내는 것을 알 수 있다From these results, it can be seen that the methylation of the protein acting as a substrate of PM II is increased in the cerebral cortical tissue as aging progresses, and the composition of the present invention shows a reducing effect.

<실시예 10><Example 10>

-병리조직학적 관찰Histopathological observation

검사 방법을 보면 이하와 같다. 에칠 에텔로 마취된 동물의 혈액을 방혈시킨 후, 대뇌부의 손상이 없게 두개골을 제거하였다. 소뇌를 제외한 뇌 조직을 10% 중성 포르말린에 고정하여 현미경하 조직 검사의 재료로 사용하였다. 미세 세포 구조의 명확한 판독을 꽤 하기 위하여 조직의 처리 과정중 에탄올 포매를 24시간으로 하였다. 3μm 두깨로 조직 절편을 제작하여 헤마톡실린 & 에오신(hematoxiline & eosin) 염색으로 신경계 세포의 일반적 성상을 관찰하였으며, 엑손(axon)의 퇴행, 아밀로이드(amyloid) 침착과 같은 병변을 관찰하기 위하여 은 염색과 PAS 염색을 실시하였다.The inspection method is as follows. After bleeding the blood of anesthetized animals with Ethyl ether, the skull was removed without damage to the cerebrum. Brain tissues other than the cerebellum were fixed in 10% neutral formalin and used as a material for histological microscopic examination. Ethanol embedding was set to 24 hours during the treatment of the tissue to allow for a clear reading of the fine cell structure. Tissue sections were prepared with 3μm thickness and hematoxyline & eosin staining was used to observe the general characteristics of the nervous system cells.Staining was performed to observe lesions such as degeneration of axon and amyloid deposition. And PAS staining were performed.

도 10은 SAM P8의 병리조직학적 결과를 나타낸 것이다.Figure 10 shows the pathological results of SAM P8.

십전대보탕을 투여하지 않은 동물의 대뇌 피질부에서 괴사 성상의 뉴런 (도 10a 40x), 퇴행성 뉴런 (도 10b 400x) 그리고 시상하부에서 리포퓨진(lipofusin)의 침착 (도 10c 400x)을 관찰할 수 있었다. 도 10d는 본 발명 조성물을 투여한 동물의 대뇌 피질과 해마상 융기를 나타낸 것이다. 본 발명 조성물을 투여한 동물의 중앙의 편도모양의 뉴런(medial amygdaloid neuron)에서 호산성 세포(好酸性 細胞)의 침착을 볼 수 있었다 (도 10e 200x, 도 10f : 도 10e`의 확대도 400x). 이러한 결과로 보아 본 발명 조성물은 뇌 신경계 세포에 직접 작용하여 형태학적, 기능적 퇴행을 개선시키는 것으로 보인다.Necrotic neurons (Fig. 10a 40x), degenerative neurons (Fig. 10b 400x) and lipofusin deposition in the hypothalamus (Fig. 10c 400x) were observed in the cerebral cortex of animals that had not been administered Sipjeondaebotang. . Figure 10d shows the cerebral cortex and hippocampus elevation of the animal to which the composition of the present invention was administered. The deposition of eosinophilic cells in the median amygdaloid neuron of the animal to which the composition was administered was observed (Fig. 10E 200x, Fig. 10F: Magnification 400x of Fig. 10E). . From these results, the composition of the present invention seems to act directly on brain neuronal cells to improve morphological and functional degeneration.

본 발명 조성물은 대뇌 피질 신경계 세포에 대하여 포도당(glucose)를 이용하는 에너지 대사 기능을 개선하고, 이는 신경 세포에서 노화나 질환에 의한 에너지 대사 기능의 저하를 개선하여 노화의 진행(신경 세포의 퇴행)을 지연시키므로 퇴행성 대뇌 신경계 질환의 예방 및 치료에 효과가 있다. 즉 본 발명 조성물은 대뇌 신경계 세포의 에너지 대사를 개선하여 노화에 따른 생화학적 및 세포 형태학적 증상의 개선과 노인성 치매, 혈관성 치매 및 알츠하이머형 치매 증상의 예방 및 개선효과를 나타낸다. 그리고, 이러한 효과는 대뇌 피질의 ATP 함량의 변화와 메틸화된 단백질의 양에서 볼 수 있듯이 정상 상태보다 병적 상태에서 더욱 크게 나타난다.The composition of the present invention improves the energy metabolism function using glucose (glucose) to the cerebral cortical nervous system cells, which improves the progression of aging (degeneration of nerve cells) by improving the degradation of energy metabolism function by aging or disease in nerve cells It is effective in preventing and treating degenerative cerebral nervous system diseases. In other words, the composition of the present invention improves the energy metabolism of cerebral nervous system cells, thereby improving biochemical and cellular morphological symptoms according to aging, and preventing and improving symptoms of senile dementia, vascular dementia and Alzheimer's dementia. This effect is greater in the pathological state than in the normal state, as can be seen in the changes in the ATP content of the cerebral cortex and the amount of methylated protein.

Claims (4)

인삼 1.6 - 2.4 중량부, 황기 0.7 - 1.3 중량부, 백출 0.7 - 1.3 중량부, 백작 0.7 - 1.3 중량부, 당귀 0.7 - 1.3 중량부, 천궁 0.7 - 1.3 중량부, 진피 0.7 - 1.3 중량부, 감초 0.7 - 1.3 중량부, 백하수오 0.7 - 1.3 중량부 및 육계 0.7 - 1.3 중량부를 포함하는 퇴행성 대뇌 신경계 질환의 예방 및 치료제.Ginseng 1.6-2.4 parts by weight, Astragalus 0.7-1.3 parts by weight, Baekchul 0.7-1.3 parts by weight, Count 0.7-1.3 parts by weight, Angelica 0.7-1.3 parts by weight, Cheongung 0.7-1.3 parts by weight, Dermis 0.7-1.3 parts by weight, Licorice A prophylactic and therapeutic agent for degenerative cerebral nervous system disease, comprising 0.7-1.3 parts by weight, 0.7-1.3 parts by weight, 0.7-1.3 parts by weight and broilers 0.7-1.3 parts by weight. 제 1항에 있어서,The method of claim 1, 노인성 치매의 예방 및 치료제.Prevention and treatment of senile dementia. 제 1항에 있어서,The method of claim 1, 알츠하이머형 치매의 예방 및 치료제.Prevention and treatment of Alzheimer's dementia. 인삼 1.6 - 2.4 중량부, 황기 0.7 - 1.3 중량부, 백출 0.7 - 1.3 중량부, 백작 0.7 - 1.3 중량부, 당귀 0.7 - 1.3 중량부, 천궁 0.7 - 1.3 중량부, 진피 0.7 - 1.3 중량부, 감초 0.7 - 1.3 중량부, 백하수오 0.7 - 1.3 중량부 및 육계 0.7 - 1.3 중량부를 포함하는 대뇌 신경 세포의 에너지 대사 개선제.Ginseng 1.6-2.4 parts by weight, Astragalus 0.7-1.3 parts by weight, Baekchul 0.7-1.3 parts by weight, Count 0.7-1.3 parts by weight, Angelica 0.7-1.3 parts by weight, Cheongung 0.7-1.3 parts by weight, Dermis 0.7-1.3 parts by weight, Licorice An energy metabolism improving agent of cerebral neurons comprising 0.7-1.3 parts by weight, 0.7-1.3 parts by weight and 0.7-1.3 parts by weight of broilers.
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