KR101673059B1 - Pharmaceutical composition to promote hair growth or wound healing containing microvesicles from mesenchymal stem cell - Google Patents

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Abstract

본 발명은 줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하는 탈모 예방, 발모 촉진, 창상 개선 및 창상 치료용 조성물에 관한 것이다.The present invention relates to a composition for preventing hair loss, promoting hair growth, improving wounds, and treating wounds comprising stem cell-derived micro-vesicles as an active ingredient.

Description

중간엽줄기세포 유래 미세소포체를 포함하는 발모촉진 또는 창상 치료용 약제학적 조성물{Pharmaceutical composition to promote hair growth or wound healing containing microvesicles from mesenchymal stem cell}[0001] The present invention relates to a pharmaceutical composition for promoting hair growth or treating wounds comprising mesenchymal stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum,

본 발명은 줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하는 탈모 예방, 발모 촉진, 창상 개선 또는 창상 치료용 조성물에 관한 것이다.
The present invention relates to a composition for preventing hair loss, promoting hair growth, improving wounds, or treating wounds comprising stem cell-derived micro-vesicle as an active ingredient.

중간엽줄기세포(Mesenchymal Stem Cells; MSCs)는 자기-재생 및 중배엽 리니지(lineage) 및 내배엽 및 외배엽과 같은 다른 배아 리니지로 분화할 수 있는 능력을 갖는 줄기세포의 비균질 파퓰레이션을 갖는다. 또한, 중간엽줄기세포는 면역조절기능, 항염증 및 영양(trophic)을 위한 효과를 갖는다. 배아줄기세포(Embryonic stem cells; ESCs), 유도만능줄기세포(induced Pluripotent Stem Cells; iPSCs) 및 다른 조직 특이적인 줄기세포와 비교하여, 중간엽줄기세포는 우수한 이용가능성, 낮은 윤리적 문제 및 면역원성을 갖기 때문에, 재생의학의 임상적용을 위한 이상적인 후보이다. 중간엽줄기세포는 뇌, 간, 폐, 태아혈, 제대혈, 신장, 지방 조직 및 태반으로부터 분리할 수 있다. 이러한 전신에 이르는 넓은 분포는 중간엽줄기세포가 조직 항상성을 유지하는데 중요한 역할을 하는 것을 말한다. 수많은 연구는 중간엽줄기세포의 골, 연골, 힘줄 및 지방과 같은 중간엽 리니지 세포로의 생체 외 분화능을 보여준다. 이는 골 및 연골 재생의 전임상 및 임상 연구에 치료제 가능성을 보여준다. 또한, 중간엽줄기세포-기반 세포 치료제의 임상 연구는 알레르기성 골수이식 또는 조혈모세포 이식, 심근경식, 전신홍반성 낭창, 간경화증, 당뇨, 급성 신장손상 및 다양한 퇴행성 신경질환을 비롯해 대숙주성이식편명(Graft-versus-host disease; GvHD)를 포함하는 인간 질병의 넓은 스펙트럼에 가능한 치료제를 보여준다.Mesenchymal Stem Cells (MSCs) have a heterogeneous population of stem cells with the ability to differentiate into other embryonic lines such as self-renewing and mesenchymal lineage and endoderm and ectoderm. In addition, mesenchymal stem cells have effects for immunomodulatory, anti-inflammatory and trophic effects. Compared to embryonic stem cells (ESCs), induced pluripotent stem cells (iPSCs), and other tissue-specific stem cells, mesenchymal stem cells offer excellent availability, low ethical issues and immunogenicity , Is an ideal candidate for clinical applications in regenerative medicine. Mesenchymal stem cells can be isolated from the brain, liver, lung, fetal blood, cord blood, kidney, adipose tissue and placenta. This widespread distribution to the whole body implies that mesenchymal stem cells play an important role in maintaining tissue homeostasis. Numerous studies have demonstrated the ability of mesenchymal stem cells to differentiate into mesenchymal lineage cells such as bone, cartilage, tendons and fat. This shows the potential for therapeutic agents in preclinical and clinical studies of bone and cartilage regeneration. In addition, clinical trials of mesenchymal stem cell-based cell therapy have been conducted in allergic bone marrow or hematopoietic stem cell transplantation, myocardial stiffness, systemic lupus erythematosus, cirrhosis, diabetes, acute kidney injury and various degenerative neurological diseases, And Graft-versus-host disease (GvHD) in a wide spectrum of human diseases.

본 발명자는 중간엽줄기세포에 대한 계속적인 연구를 통해 중간엽줄기세포 유래 미세소포체를 이용하는 경우, 종래의 세포치료제에 대한 윤리적 문제 및 면역원성을 나타내지 않으면서 신경질환을 효과적으로 예방 또는 치료할 수 있다는 사실을 밝힌 바 있다(특허문헌 1). 그러나, 중간엽줄기세포 유래 미세소포체에 대한 연구는 아직 미미한 실정이다.
The inventors of the present invention have conducted continuous research on mesenchymal stem cells, and found that when mesenchymal stem cell-derived microemboli is used, neurological diseases can be effectively prevented or treated without showing ethical problems and immunogenicity against conventional cell therapeutic agents (Patent Document 1). However, the research on mesenchymal stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum is still insufficient.

1. 한국공개특허 제2013-0116552호1. Korean Patent Publication No. 2013-0116552

본 발명자들은 발모촉진과 창상치료를 위한 약제학적 조성물로 윤리적 문제가 없고, 면역원성을 갖지 않는 줄기세포 치료제를 개발하고자 노력한 결과, 중간엽줄기세포 유래의 미세소포체를 발견하였고 상기 효과를 입증하였다. 다양한 근원의 성체 줄기세포 배양액이나 농축 배양액을 사용한 경우는 우태아 혈청 및 동물세포 유래 단백질로 인한 부작용의 가능성이 있으나, 미세소포체를 이용하여 윤리적 문제 및 면역거부반응의 문제를 해결하였다. The present inventors have made efforts to develop a stem cell treatment agent having no ethical problems and no immunogenicity as a pharmaceutical composition for promoting hair growth and wounds, and as a result, they have found a mesoporous stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum and proved the above effect. Adult stem cell culture or enriched cultures of various origins have the potential to cause adverse effects due to the proteins derived from fetal calf serum and animal cells, but they solve the problem of ethical problems and immune rejection by using micro-endoplasmic reticulum.

따라서, 본 발명의 목적은 줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하는 탈모 예방, 발모 촉진, 창상 개선 또는 창상 치료용 조성물을 제공하는데 있다.
Accordingly, an object of the present invention is to provide a composition for preventing hair loss, promoting hair growth, improving wound, or treating wounds, which comprises a stem cell-derived micro-vesicle as an active ingredient.

본 발명에서는 줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하는 탈모 예방 또는 발모 촉진용 약제학적 조성물을 제공한다. The present invention provides a pharmaceutical composition for promoting hair loss prevention or hair growth comprising stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum as an active ingredient.

또한, 본 발명에서는 줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하는 탈모 예방 또는 발모 촉진용 화장료 조성물을 제공한다.In addition, the present invention provides a cosmetic composition for promoting hair loss prevention or hair growth comprising stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum as an active ingredient.

또한, 본 발명에서는 줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하는 창상 개선 또는 창상 치료용 약제학적 조성물을 제공한다.
In addition, the present invention provides a pharmaceutical composition for wound healing or wound healing, which comprises stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum as an active ingredient.

본 발명에 따른 조성물은 미세소포체를 유효성분으로 포함하므로, 윤리적 문제가 없고, 다양한 근원의 성체 줄기세포 배양액이나 농축 배양액을 사용할 경우와 비교하여 면역거부반응이 없으므로, 탈모 예방, 발모 촉진, 창상 개선 또는 창상 치료용으로 용이하게 사용할 수 있다.
Since the composition according to the present invention contains the micro-vesicle as an active ingredient, there is no ethical problem, and there is no immune rejection reaction as compared with the use of adult stem cell culture or enriched culture fluid of various origins. Therefore, hair loss prevention, hair growth promotion, Or for wound healing.

도 1은 인간 골수 중간엽줄기세포 유래 미세소포체의 정제 및 특성 분석 결과를 보여준다. 도 1a는 중간엽줄기세포의 방추형 형태를 보여준다(×100). 도 1b는 인간 골수 유래 중간엽줄기세포의 면역아형검사로 전형적인 중간엽줄기세포의 형태를 보여준다. 항-CD29, 항-CD44, 항-CD73, 항-CD90, 항-CD105, 항-CD31, 항-CD34, 항-CD45 및 CD106로 염색한 중간엽줄기세포의 히스토그램을 아이소타입 대조군과 겹치게 보여준다. 도 1c는 중간엽줄기세포의 다계열(multilineage) 분화를 보여준다. 지방세포성 분화는 오일 레드 O 로 지질 액포를 염색하여 분석하였다(맨 위, ×40 확대율); 연골세포성 분화는 사프라닌 O를 사용하여 프로테오글리칸을 양성염색하여 확인하였다(중간, ×200 확대율); 골세포성 분화는 본 코사(von Kossa) 염색으로 기질의 무기질화를 확인하였다(아래, ×40 확대율). 도 1d는 50 내지 200 ㎚ 범위의 다양한 사이즈를 갖는 정제 미세소포체를 전자현미경 이미지로 나타낸다. 시료는 세포 잔해 또는 단백질 응집체에 의해 오염되지 않았으며, 스케일 바는 200 또는 500 ㎚를 나타낸다. 도 1e는 전체-세포 용해물(중간엽줄기세포) 및 정제된 중간엽줄기세포의 미세소포체에서 갈렉틴-1, HSP90, β-액틴 및 CD63을 면역블럿으로 확인하였다.
도 2는 중간엽줄기세포 유래 미세소포체로부터 확인한 단백질을 나타낸다. 도 2a는 중간엽줄기세포 유래 미세소포체로의 스펙트라, 인증된 펩타이드 및 확인된 단백질의 총 수를 나타낸다. 도 2b는 3번의 독립적인 LC-MS/MS 분석으로 총 730의 단백질을 확인하였다. 도 2c는 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴은 중간엽줄기세포의 표면 마커 단백질을 포함하고, 중간엽줄기세포의 자기-재생 및 분화와 관련되어 있음을 나타낸다.
도 3은 중간엽줄기세포 유래 미세소포체 프로테옴의 기능 인리치먼트 분석을 보여준다. DAVID 소프트웨어를 사용하여 확인한 730 중간엽줄기세포 유래 미세소포체 단백질을 GOBPs(Gene Ontology Biological Processes, 도 3a), GOMFs(Gene Ontology Molecular Functions, 도 3b) 및 GOCCs(Gene Ontology Cellular Components, 도 3c) 분석하였다(p<0.05).
도 4는 중간엽줄기세포 유래 미세소포체 프로테옴과 중간엽줄기세포 조건배지 프로테옴 및 분화 세포, 탈분화세포 및 인간 중간엽줄기세포의 mRNA 자료를 통합한 결과를 보여준다. 도 4a는 인간 중간엽줄기세포의 분화세포 및 분화세포의 탈분화를 도식화하여 보여준다. 화살표는 자기-재생(녹색) 및 분화(붉은색) 관련 유전자의 발현 정도의 변화를 나타낸다. 도 4b는 중간엽줄기세포 유래 미세소포체 단백질과 자기-재생 및 분화-관련 유전자의 관계를 도표로 보여준다. 도 4c는 중간엽줄기세포-유래 미세소포체, 중간엽줄기세포-조건배지 프로테옴, 자기-재생 및 분화 관련 유전자를 비교하였다.
도 5는 모근이 제거된 마우스 모델에 PBS, 미녹시딜 및 미세소포체를 각각 처리하고, 시간별 발모 효과를 나타낸 사진이다.
도 6 및 7은 모근이 제거된 마우스 모델에 PBS, 미녹시딜 및 미세소포체를 각각 처리하고, 14일 후 마이스의 머리쪽, 몸통쪽 및 꼬리쪽 부위의 털의 두께를 촬영한 사진 및 두께를 측정한 그래프이다.
도 8은 모근이 제거된 마우스 모델에 PBS, 미녹시딜 및 미세소포체를 각각 처리하고, 시간에 따른 털 재생 면적을 비교한 그래프이다.
도 9 및 10은 모근이 제거된 마우스 모델에 PBS, 미녹시딜 및 미세소포체를 각각 처리하고, 0일차, 7일차, 14일차의 마우스의 등 피부 조직에 대해 H&E 염색을 수행하여 모낭 형성을 비교한 결과를 보여준다.
도 11은 모근이 제거된 마우스 모델에 PBS, 미녹시딜 및 미세소포체를 각각 처리하고, 각 군의 마우스의 등 피부 조직에서 모낭의 수를 계수하여 시간에 따른 모낭의 수 변화를 그래프로 나타낸 것이다.
도 12는 모근이 제거된 마우스 모델에 PBS 및 미세소포체를 각각 처리하고, 촬영한 사진 및 창상의 면적을 측정한 그래프이다.
Fig. 1 shows the results of purification and characterization of microembolisms derived from human bone marrow mesenchymal stem cells. Fig. 1A shows the spindle shape of mesenchymal stem cells (x100). FIG. 1B shows a typical mesenchymal stem cell morphology by immunohistochemistry of human bone marrow-derived mesenchymal stem cells. The histograms of the mesenchymal stem cells stained with anti-CD29, anti-CD44, anti-CD73, anti-CD90, anti-CD105, anti-CD31, anti-CD34, anti-CD45 and CD106 are shown overlapping with the isotype control. Figure 1c shows multilineage differentiation of mesenchymal stem cells. Adipocyte differentiation was analyzed by staining lipid vacuoles with Oil Red O (top, x40 magnification); Chondrocytic differentiation was confirmed by positive staining of proteoglycan using saffranin O (medium, × 200 magnification); Bone cell differentiation was confirmed by mineralization of the substrate by von Kossa staining (below, × 40 magnification). Figure 1d shows an electron microscope image of a tablet micro-vesicle having various sizes ranging from 50 to 200 nm. The sample was not contaminated by cell debris or protein aggregates, and the scale bar exhibits 200 or 500 nm. Figure 1e shows galectin-1, HSP90, beta-actin and CD63 in immunoblots in whole-cell lysates (mesenchymal stem cells) and in the microemboli of purified mesenchymal stem cells.
Fig. 2 shows the proteins identified from the mesenchymal stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum. Figure 2a shows the spectra, the number of authentic peptides and the number of identified proteins to mesenchymal stem cell-derived microvesicles. Figure 2b identifies a total of 730 proteins with three independent LC-MS / MS analyzes. Figure 2c shows that the mesenchymal stem cell-derived microfibrillar proteome contains surface marker proteins of mesenchymal stem cells and is involved in the self-renewal and differentiation of mesenchymal stem cells.
Fig. 3 shows the functional analysis of mesenchymal stem cell-derived microembologic proteomes. 3B) and GOCCs (Gene Ontology Cellular Components, Fig. 3C) were analyzed by using DAVID software, as shown in Fig. (p < 0.05).
FIG. 4 shows the results of integrating mRNA data of mesenchymal stem cell-derived micro-expanded proteome, conditioned medium and differentiated cells, dedifferentiated cells and human mesenchymal stem cells. FIG. 4A shows the differentiation of differentiated and differentiated cells of human mesenchymal stem cells. The arrows show changes in the degree of expression of self-regenerating (green) and differentiating (red) related genes. Fig. 4b is a graph showing the relationship between the mesenchymal stem cell-derived micro-vesicle protein and the self-renewal and differentiation-related genes. Figure 4c compares mesenchymal stem cell-derived microembodermes, mesenchymal stem cell-conditioned medium proteomes, self-renewal and differentiation related genes.
FIG. 5 is a photograph showing the effect of treatment of PBS, minoxidil and micro-endoplasmic reticulum on the mouse model from which the hair roots have been removed, respectively.
6 and 7 are photographs showing the photographs of the thickness of hair on the head side, trunk side and tail side of the mouse after treating the PBS model, the minoxidil and the micro-endoplasmic reticulum, respectively, Graph.
FIG. 8 is a graph comparing the hair regeneration area with time after treatment of PBS, minoxidil, and micro-endoplasmic reticulum, respectively, on a mouse model from which hair roots have been removed.
FIGS. 9 and 10 show the results of comparing the hair follicle formation by treating H & E staining of the dorsal skin tissues of the mice at day 0, day 7, and day 14 with PBS, minoxidil, and microvesicle, respectively, Lt; / RTI &gt;
FIG. 11 is a graph showing changes in the number of hair follicles over time by counting the number of hair follicles in the dorsal skin tissue of each group of mice treated with PBS, minoxidil, and micro-endoplasmic reticulum respectively.
FIG. 12 is a graph showing areas of photographed photographs and wound images of a mouse model in which hair roots have been removed and treated with PBS and microvesicles, respectively.

이하, 본 발명의 구성을 구체적으로 설명한다.
Hereinafter, the configuration of the present invention will be described in detail.

본 발명에서는 줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하는 조성물에 관한 것이다. The present invention relates to a composition comprising a stem cell-derived micro-vesicle as an active ingredient.

본 명세서에서 용어 “줄기세포 유래 미세소포체”는 줄기세포로부터 유래된 세포막 입자이다. 상기 미세소포체는 세포로부터 탈락된 100 ㎚ 내지 1000 ㎚의 원형질막을 갖는 부산물을 말한다. 상기 미세소포체는 세포 간의 mRNA, miRNA 및 단백질을 운송을 매개하고 세포 내외의 신호전달 및 상호작용에 중요한 역할을 한다. 미세소포체는 유래한 세포, 세포의 수, 세포의 크기 및 항원의 구성에 따라 이종개체군(Heterogeneous population)을 나타낸다. As used herein, the term &quot; stem cell-derived micro-vesicle &quot; is a cell membrane particle derived from stem cells. The microfilament refers to a by-product having a plasma membrane of 100 nm to 1000 nm removed from the cell. The microfilaments mediate the transport of mRNA, miRNA and protein between cells and play an important role in signal transduction and interaction inside and outside the cell. The micro-endoplasmic reticulum exhibits a heterogeneous population depending on the derived cells, the number of cells, the size of the cells and the composition of the antigen.

상기 “줄기세포”는 증식(자기-재생) 및 분화(가소성)할 수 있는 능력을 갖는 어떠한 미분화 세포 또는 부분적 미분화 세포를 포함한다. 이러한 줄기세포는 발생 과정 중 종점(endpoint) 단계의 세포인 특정 세포 리니지(lineage)의 성숙세포를 대체한다. 또한, 줄기세포는 무제한 자기-재생능 및 전분화능 가소성을 갖는 줄기세포 및, 다분화능 또는 단분화능 가소성을 갖는 전구세포를 포함한다.The term &quot; stem cell &quot; includes any undifferentiated or partially undifferentiated cells capable of proliferation (self-renewal) and differentiation (plasticity). These stem cells replace mature cells of specific cell lineage cells that are cells at the endpoint stage during development. In addition, the stem cells include stem cells having unlimited self-renewing ability and pre-differentiating ability plasticity, and progenitor cells having multipotential or monodisperse ability plasticity.

본 발명에서 상기 줄기세포는 중간엽줄기세포일 수 있으며, 상기 중간엽줄기세포는 뇌, 간, 폐, 제대혈, 태아혈, 신장, 지방 조직, 태반 또는 골수로부터 유래한 중간엽줄기세포일 수 있다. In the present invention, the stem cells may be mesenchymal stem cells, and the mesenchymal stem cells may be mesenchymal stem cells derived from the brain, liver, lung, cord blood, fetal blood, kidney, adipose tissue, placenta or bone marrow .

일 구체예에 따르면, 상기 줄기세포 유래 미세소포체는 중간엽줄기세포 유래 미세소포체이며, 구체적으로 인간 골수로부터 분리한 중간엽줄기세포 유래 미세소포체일 수 있다. According to one embodiment, the stem cell-derived microcell is a mesenchymal stem cell-derived microcell, and may be a mesenchymal stem cell-derived microcellular material isolated from human bone marrow.

본 발명의 주요한 특징 중 하나는 줄기세포 유래 미세소포체의 프로테옴을 분석하여 발모촉진 및 상처치료 효과를 조사하는 것이다. 본 발명자들은 줄기세포 유래 미세소포체의 LC-MS/MS(액체크로마토그래피-질량분석기, Liquid Chromatography-Mass Spectrometry) 분석을 통해 730개의 미세소포체 단백질을 규명하였다.One of the main features of the present invention is to analyze proteome of stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum to investigate hair growth promoting effect and wound healing effect. The present inventors have identified 730 micro-vesicle proteins through LC-MS / MS (Liquid Chromatography-Mass Spectrometry) analysis of microsomes derived from stem cells.

분석 결과에 따르면, 상기 미세소포체는 (a) CD13, CD29, CD44, CD73 및 CD105 표면항원에 대하여 양성의 면역학적 특성; 및 (b) CD10 및 CD90에 대하여 가변(variable)의 면역학적 특성을 갖는다.According to the analysis results, the microemporrtes exhibited (a) immunological characteristics positive for CD13, CD29, CD44, CD73 and CD105 surface antigens; And (b) variable immunological properties for CD10 and CD90.

일 구체예에 따르면, 줄기세포 유래 미세소포체의 프로테옴은 줄기세포의 자기-재생 및 분화와 관련된 신호전달 경로의 분자를 포함한다. 간단히 요약하면, 첫째, 미세소포체 프로테옴은 KEGG 경로 데이터베이스 및 GOBP 신호전달경로에 근거한 중간엽줄기세포의 자기-재생, 성장인자 수용체 및 Wnt 신호전달 경로에 관여하는 2가지 신호전달 경로와 관련된 13개 단백질들을 포함한다. 둘째, 중간엽줄기세포의 분화, TGFβ MAPK, PPAR 및 BMP 신호전달 경로에 관여하는 5개의 신호전달 경로와 관련된 38개 단백질들을 포함한다. Wnt 신호전달 경로는 중간엽줄기세포의 자기-재생 및 분화에 관련되는 것으로 보고된다. 이러한 결과는 중간엽줄기세포-유래 미세소포체가 중간엽줄기세포의 특징을 가지며, 이러한 미세소포체는 신호전달 경로에 관여하는 단백질을 통해 자기 재생 및 분화에 영향을 줄 수 있음을 말해준다.According to one embodiment, the proteome of the stem cell-derived microemboli includes molecules of the signal transduction pathway associated with self-renewal and differentiation of stem cells. Briefly, first, the microfibrillar proteome is composed of 13 proteins involved in two signaling pathways involved in the self-renewal, growth factor receptor and Wnt signaling pathways of mesenchymal stem cells based on the KEGG pathway database and the GOBP signaling pathway . Second, it includes 38 proteins involved in the differentiation of mesenchymal stem cells, the five signaling pathways involved in TGFβ MAPK, PPAR and BMP signaling pathways. The Wnt signaling pathway is reported to be involved in the self-renewal and differentiation of mesenchymal stem cells. These results suggest that the mesenchymal stem cell - derived microfilament is characterized by mesenchymal stem cells and that the microfilament may affect self regeneration and differentiation through proteins involved in the signal transduction pathway.

바람직하게, 상기 미세소포체는 PDGFRB(β-type Platelet-Derived Growth Factor Receptor), EGFR(Epidermal Growth Factor Receptor) 및 PLAUR(Plasminogen Activator, Urokinase Receptor)로 구성된 군으로부터 선택되는 최소 1종의 중간엽줄기세포 자기 재생관련 표면 수용체를 갖는다.Preferably, the micro-vesicle is at least one mesenchymal stem cell selected from the group consisting of Plasmin-Derived Growth Factor Receptor (PDGFRB), Epidermal Growth Factor Receptor (EGFR) and PLAUR (Plasminogen Activator, Urokinase Receptor) Have self-regenerating surface receptors.

상기 PEGFRB는 PDGF(Platelet-Derived Growth Factor) 패밀리에 대한 세포 표면 티로신키나제 수용체를 코딩한다. 이러한 성장인자는 중간엽성 기원의 세포에 대한 미토겐이다. 상기 EGFR은 세포 외 단백질 리간드의 EGF(Epidermal Growth Factor) 패밀리에 대한 세포-표면 수용체이다. EGFR은 EGFR(ErbB-1), HER2/c-neu(ErbB-2), Her 3(ErbB-3) 및 Her 4(ErbB-4)와 같은 ErbB 패밀리 중 하나이다. 상기 PLAUR은 세포막에 묶인 다중도메인 당단백질이다.The PEGFRB encodes a cell surface tyrosine kinase receptor for the PDGF (Platelet-Derived Growth Factor) family. These growth factors are mitogens for cells of mesenchymal origin. The EGFR is a cell-surface receptor for the EGF (Epidermal Growth Factor) family of extracellular protein ligands. EGFR is one of the ErbB families such as EGFR (ErbB-1), HER2 / c-neu (ErbB-2), Her3 (ErbB-3) and Her4 (ErbB-4). The PLAUR is a multi-domain glycoprotein bound to a cell membrane.

또한, 상기 미세소포체는 RRAS(Ras-related protein R-Ras)/NRAS(Neuroblastoma RAS viral oncogene homolog), MAPK1(Mitogen-activated Protein Kinase 1), GNA13(Guanine Nucleotide-binding protein subunit Alpha-13)/GNG12(Guanine Nucleotide-binding protein G(I)/G(S)/G(O) subunit Gamma-12), CDC42(Cell Division Control protein 42 homolog) 및 VAV2(Guanine nucleotide exchange factor VAV2)로 구성된 군으로부터 선택되는 최소 1종의 신호전달 분자를 갖는다.In addition, the micro-vesicles can be expressed by RRAS (Ras-related protein R-Ras) / NRAS (Neuroblastoma RAS viral oncogene homolog), MAPK1 (Mitogen-activated Protein Kinase 1), GNA13 (Guanine nucleotide-binding protein subunit Alpha-13) (Guanine Nucleotide-binding protein G (I) / G (S) / G (O) subunit Gamma-12), CDC42 (Cell Division Control protein 42 homolog) and VAV2 (Guanine nucleotide exchange factor VAV2) At least one signaling molecule.

상기 RRAS/NARS, MAPK1 및 VAV2는 RAS-MAPK(Ras/Mitogen-Activated Protein Kinase) 신호전달 경로에 관여하고, GNA13은 RHO(Rhodopsin) 신호전달 경로에 관여하며, GNG12 및 CDC42는 CDC42 신호전달 경로에 관여한다.The RRAS / NARS, MAPK1 and VAV2 are involved in the RAS-MAPK (Ras / Mitogen-Activated Protein Kinase) signaling pathway, GNA13 is involved in RHO (Rhodopsin) signaling pathway and GNG12 and CDC42 are involved in the CDC42 signaling pathway I am involved.

또한, 상기 미세소포체는 FN1(Fibronectin), EZR(Ezrin), IQGAP1(IQ motif containing GTPase Activating Protein 1), CD47, 인테그린 및 LGALS1(Galectin-1)/LGALS3(Galectin-3)으로 구성된 군으로부터 선택되는 최소 1종의 세포부착 분자를 갖는다.Also, the microemboli is selected from the group consisting of FN1 (Fibronectin), EZR (Ezrin), IQGAP1 (IQ motif containing GTPase Activating Protein 1), CD47, Integrin and LGALS1 (Galectin-1) / LGALS3 At least one cell adhesion molecule.

상기 FN1은 인테그린이라 불리는 막-스패닝 수용체 단백질에 결합하는 세포외 기질의 고분자 당단백질이다. FN1은 콜라겐, 프브린 및 헤파란 설페이트 프로테오글리칸(예컨대, 신데칸)과 같은 세포외 기질 요소와 결합한다. FN1은 이황화결합으로 연결된 동일 단량체로 이뤄진 이량체로 구성된다. 상기 EZR은 사이토빌린 또는 빌린-2로 알려진 인간 EZR 유전자를 코딩하는 단백질이다. EZR 유전자에 의해 코딩되는 세포질 주변막 단백질은 미세 융모에서 단백질-티로신 키나제 기질로 기능한다. ERM 단백질 패밀리의 한 종류로, EZR 단백질은 원형질막과 액틴 세포골격 간을 중개하는 역할을 한다. 상기 IQGAP1는 IQGAP1 유전자에 의해 코딩되고 편재하여 발현되는 단백질이다. IQGAP1은 액틴 세소골격의 조직, 전사 및 세포 주기를 조절하는 세포 부착에 이르는 다양한 세포 과정을 조절하는 스카프폴드 단백질이다. 상기 CD47은 세포외 기질에 세포부착 시, 세포 내의 칼슘 농도의 증가와 관련된 막 단백질이다. CD47은 또한 트롬보스폰딘의 C-말단 세포 결합도메인에 대한 수용체이고 막 수송 및 신호 변환에 중요한 역할을 한다. 인테그린은 세포와 그의 주변조직, 다른 세포 또는 세포외 기질 간의 부착을 중개하는 수용체이다. 상기 인테그린은 세포 신호전달 및 신호전달에 의한 세포의 모양, 운동성 및 세포 주기를 조절하는 역할을 한다. 상기 LGALS1 및 LGALS3은 베타-갈락토사이드-결합 단백질의 하나로 세포-세포 및 세포-기질 상호작용을 중개한다. LGALS1은 세포 증식을 조절하는 오토크라인(autocrine) 음성 성장인자로 작용한다.The FN1 is an extracellular matrix polymeric glycoprotein that binds to a membrane-spanning receptor protein called integrin. FN1 binds to extracellular matrix elements such as collagen, fibrin and heparan sulfate proteoglycans (e.g., cindecane). FN1 consists of a dimer consisting of the same monomers linked by disulfide bonds. The EZR is a protein that encodes a human EZR gene known as cytovillin or borin-2. The cytoplasmic membrane protein encoded by the EZR gene functions as a protein-tyrosine kinase substrate in the microvilli. One type of ERM protein family, the EZR protein acts as a mediator between the plasma membrane and the actin cytoskeleton. The IQGAP1 is a protein that is encoded by the IQGAP1 gene and is ubiquitously expressed. IQGAP1 is a scaffold protein that regulates a variety of cellular processes ranging from the organization of the actin fascia skeleton to the attachment of cells that regulate transcription and cell cycle. The CD47 is a membrane protein associated with an increase in intracellular calcium concentration upon cell attachment to the extracellular matrix. CD47 is also a receptor for the C-terminal cell binding domain of thrombospondin and plays an important role in membrane transport and signal transduction. Integrins are receptors mediating adhesion between cells and their surrounding tissues, other cells, or extracellular matrix. The integrins regulate cell shape, motility and cell cycle by cell signal transduction and signal transduction. The LGALS1 and LGALS3 are beta-galactoside-binding proteins mediating cell-cell and cell-substrate interactions. LGALS1 acts as an autocrine negative growth factor that regulates cell proliferation.

또한, 상기 미세소포체는 CD9, CD63, CD81, CD109, CD151, CD248 및 CD276으로 구성된 군으로부터 선택되는 최소 1종의 중간엽줄기세포-관련 항원을 갖는다.The microemboli also has at least one mesenchymal stem cell-associated antigen selected from the group consisting of CD9, CD63, CD81, CD109, CD151, CD248 and CD276.

상기 CD9, CD63, CD81 및 CD151은 테트라스패닌(tetraspanin) 패밀리로 알려진 [0023] 막통과 4 수퍼패밀리 중 하나이다. 이러한 패밀리의 구성원은 소수성 도메인을 갖는 세포-표면 단백질이다. 상기 세포-표면 단백질은 세포 발생, 활성화, 성장 및 이동과 관련된 신호를 전달한다. 상기 CD109는 CD34+ 급성 골수성 백혈구 세포주, T-세포주, 활성형 T 림프아세포, 내피 세포 및 활성형 혈소판에 의해 발현되는 GPI-연결 세포 표면 항원이다.The CD9, CD63, CD81 and CD151 are one of the transmembrane 4 superfamilies known as the tetraspanin family. A member of this family is a cell-surface protein with a hydrophobic domain. The cell-surface proteins carry signals associated with cell development, activation, growth and migration. The CD109 is a GPI-linked cell surface antigen expressed by CD34 + acute myeloid leukemia cell line, T-cell line, activated T lymphocyte, endothelial cell, and activated platelet.

상기 CD248은 XIV군의 하나로, 세포-세포 부착 과정 및 숙주 방어에 중요한 역할을 하는 C-형 렉틴 막통과 수용체의 하나이다. XIV군은 CD93 및 트롬보모듈린의 2 종류의 다른 구성원으로 구성된다. CD248은 배아, 자궁및 종양 발생 및 성장에 있어 혈관생성과 관련된다.
CD248 is one of the XIV family of C-type lectin transmembrane receptors which plays an important role in cell-cell adhesion process and host defense. The XIV group consists of two different members, CD93 and thrombomodulin. CD248 is involved in angiogenesis in embryonic, uterine, and tumorigenesis and growth.

본 발명의 줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하는 조성물은 탈모 예방 또는 발모 촉진 조성물로 사용될 수 있다.The composition comprising the stem cell-derived micro-vesicle of the present invention as an active ingredient can be used as a composition for preventing hair loss or promoting hair growth.

본 발명의 탈모 억제 및 발모 촉진용 조성물은 약제학적 조성물 또는 화장료 조성물로서, 의약품 또는 화장품으로 제조될 수 있다. 의약품으로 제조할 경우 경구적으로 또는 진피 내, 정맥 내, 피하, 비강 내 또는 복강 내 등에 비경구적으로 투여된다. 경구 투여는 설하 적용도 포함한다. 비경구적 투여는 피하주사, 근육 내 주사 및 정맥 주사와 같은 주사법 및 점적법을 포함한다. 또한, 일 구체예에서 외용제로 제조될 수 있는데, 외용제는 시트제, 액상도포제, 분무제, 로션제, 크림제, 파프제, 분제, 침투 패드제, 분무제, 겔제, 파스타제, 리니멘트제, 연고제, 에어로졸, 분말제, 현탁액제, 경피흡수제 등의 통상적인 외용제의 형태가 포함될 수 있다. The composition for suppressing hair loss and promoting hair growth of the present invention can be manufactured as pharmaceutical composition or cosmetic composition, medicine or cosmetic. In the case of pharmaceutical preparations, they are administered orally or intravenously, intravenously, subcutaneously, intranasally or intraperitoneally. Oral administration also includes sublingual administration. Parenteral administration includes injection and drip, such as subcutaneous, intramuscular, and intravenous. In addition, in one embodiment, the external preparation may be prepared as a sheet, a liquid coating, a spray, a lotion, a cream, a puff, a powder, a penetration pad, a spray, a gel, a pasta, a liniment, , Aerosols, powders, suspensions, transdermal absorbers, and the like.

구체적으로, 본 발명에 따른 조성물은 비경구적 투여, 예를 들어 주사법을 통해 투여될 수 있다. Specifically, the composition according to the present invention may be administered via parenteral administration, for example, by injection.

본 발명에 따른 조성물은 약제학적으로 허용되는 담체를 추가로 포함함으로써 각종 제형의 형태로 제조되어 투여될 수 있다. 상기 '약제학적으로 허용되는'이란 생리학적으로 허용되고 인간에 투여될 때, 통상적으로 위장 장애, 현기증 등과 같은 알레르기 반응 또는 이와 유사한 반응을 일으키지 않는 조성물을 말한다. 약제학적으로 허용되는 담체는 경구 투여시에는 결합제, 활탁제, 붕해제, 부형제, 가용화제, 분산제, 안정화제, 현탁화제, 색소 및 향료를 사용할 수 있으며, 주사제의 경우에는 완충제, 보존제, 무통화제, 가용화제, 등장제 및 안정화제를 혼합하여 사용할 수 있으며 국소투여용 제제의 경우에는 기제, 부형제, 윤활제 및 보존제를 사용할 수 있다. 본 발명의 약제학적 조성물의 제형은 상술한 바와 같은 약제학적으로 허용되는 담체와 혼합하여 다양하게 제조될 수 있다. 예를 들어, 경구 투여 시에는 정제, 트포키, 캡슐, 엘릭시르, 서스펜션, 시럽, 웨이퍼(wafer) 등의 형태로 제조할 수 있으며 주사제의 경우에는 단위 투약 앰플 또는 다수회 투약 포함제 형태로 제조할 수 있다. 이외에도 본 발명의 약제학적 조성물은 각종 제형의 형태로 통용되는 기법에 따라 제조할 수 있다.The composition according to the present invention may be manufactured and administered in the form of various formulations by further comprising a pharmaceutically acceptable carrier. The term &quot; pharmaceutically acceptable &quot; as used herein refers to a composition that is physiologically acceptable and does not normally cause an allergic reaction such as a gastrointestinal disorder, dizziness, or the like when administered to a human. The pharmaceutically acceptable carrier may be a binder, a lubricant, a disintegrant, an excipient, a solubilizing agent, a dispersing agent, a stabilizer, a suspending agent, a coloring matter and a perfume in the case of oral administration, and a buffering agent, a preservative, , A solubilizing agent, an isotonic agent and a stabilizing agent may be used in combination. In the case of a preparation for topical administration, a base, an excipient, a lubricant and a preservative may be used. Formulations of the pharmaceutical compositions of the present invention may be prepared in a variety of ways by mixing with pharmaceutically acceptable carriers as described above. For example, it can be prepared in the form of tablets, troches, capsules, elixirs, suspensions, syrups, wafers, etc. in the case of oral administration, and in the case of injections, . In addition, the pharmaceutical composition of the present invention can be prepared according to a conventional technique in the form of various formulations.

본 발명에 따른 탈모 예방 또는 발모 촉진용 조성물은 약제학적으로 유효한 양으로 투여될 수 있다. 본 발명에서 상기 '약제학적으로 유효한 양'이란 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 질환을 치료하기에 충분한 양을 의미한다. 유효 용량 수준은 환자의 질병 종류, 중증도, 연령, 성별, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료 기간, 동시 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다. 본 발명의 조성물은 단독 다른 치료제와 병용하여 투여될 수 있고 종래의 치료제와는 순차적 또는 동시에 투여될 수 있다. 상기 요소를 모두 고려하여 부작용 없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하며, 이는 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다. 특히, 상기 유효성분이 전체 탈모 예방 또는 발모 촉진용 조성물 100 중량부에 대하여 0.01 내지 30 중량부를 포함하는 것이 바람직하며, 0.1 내지 20 중량부를 포함하는 것이 보다 바람직하다.The composition for promoting hair loss prevention or hair growth according to the present invention may be administered in a pharmaceutically effective amount. The term "pharmaceutically effective amount" as used herein means an amount sufficient to treat a disease at a reasonable benefit / risk ratio applicable to medical treatment. Effective dose levels are well known to those skilled in the art, including the type of disease, severity, age, sex, drug activity, drug sensitivity, time of administration, route of administration and rate of release, duration of treatment, Can be determined according to the element. The composition of the present invention may be administered alone or in combination with other therapeutic agents, sequentially or concurrently with conventional therapeutic agents. It is important to take into account all of the above factors and to administer the amount in which the maximum effect can be obtained in a minimal amount without side effects, which can be easily determined by a person skilled in the art. In particular, it is preferable that the above-mentioned effective ingredient contains 0.01 to 30 parts by weight, more preferably 0.1 to 20 parts by weight, based on 100 parts by weight of the composition for preventing hair loss or promoting hair growth.

따라서, 본 발명은 줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하는 탈모 예방 또는 발모 촉진제를 포함할 수 있다.Therefore, the present invention may include a hair loss prevention or hair growth promoter comprising stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum as an active ingredient.

또한, 본 발명은 줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하는 탈모 예방 또는 발모 촉진용 화장료를 포함할 수 있다.In addition, the present invention can include a hair cosmetic or hair cosmetic cosmetic comprising the stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum as an active ingredient.

본 발명의 화장료는 화장학적으로 허용되는 담체를 추가로 함유하여, 크림, 로션, 토닉, 스프레이, 에어로졸, 오일, 용액, 현탁액, 젤, 연고, 에멀젼, 찰제, 페이스트 등의 통상적인 제형으로 제조될 수 있다. 본 발명의 조성물은 통상 기제(基劑)를 함유하고, 필요에 따라서 일반적으로 화장품 원료로서 사용되는 기타 성분이 적절히 배합될 수 있다. 본 발명의 조성물의 기제는 통상적으로 사용되는 한 어떠한 것도 사용 가능하며, 그 예는 정제수, 미네랄 워터, 에탄올, 글리세린, 스쿠알렌, 1,3-프로필렌글리콜, 1,3-부틸렌글리콜, 피마자유, 츠바키유 및 리퀴드 페트롤레이텀(liquid petrolatum)을 포함한다. 본 발명의 조성물에 배합되는 기타 성분의 예는 계면활성제, 유화제, 증점제, 방부제(예를 들어, 파라옥시안식향산메틸), 산화방지제, 향료 등을 포함하며, 이에 한정되는 것은 아니다.The cosmetic composition of the present invention may further comprise a cosmetically acceptable carrier and may be formulated into conventional formulations such as creams, lotions, tonics, sprays, aerosols, oils, solutions, suspensions, gels, ointments, emulsions, . The composition of the present invention usually contains a base and, if necessary, other ingredients generally used as cosmetic raw materials can be suitably blended. The base of the composition of the present invention can be any of those conventionally used, and examples thereof include purified water, mineral water, ethanol, glycerin, squalene, 1,3-propylene glycol, 1,3-butylene glycol, castor oil, Tsubaki oil and liquid petrolatum. Examples of other ingredients to be incorporated into the composition of the present invention include, but are not limited to, surfactants, emulsifiers, thickeners, preservatives (e.g., p-hydroxybenzoyl methyl), antioxidants, fragrances and the like.

본 발명의 화장료에는 상기 성분 이외에도 모낭에 영양소를 공급하는 역할을 할 수 있는 성분이나 통상적으로 사용되는 모발성장 촉진 보조성분을 포함할 수 있는 바, 예를 들면 비타민류, 아미노산류, 동식물유, 염화나트륨 등을 포함하지만, 이들로 한정되는 것은 아니다. 이들의 양은 전체 조성물의 0.0001 내지 10 중량%, 특히 0.01 내지 1 중량%가 바람직하다. 이 경우 비타민류는 비타민 A, 비타민 B1, 비타민 B2, 나이아신(니코틴산), 비타민 C, 비타민 E, 판토텐산 나트륨, 판토텐산 칼륨, 비오틴 H(비타민 H) 등을 포함하지만, 이들로 한정되는 것은 아니다. 아미노산류는 도파를 포함하지만, 이로 한정되는 것은 아니다. 동식물유는 마유, 난유, 올리브 유, 동백유, 유채기름, 참기름, 배아유 등을 포함하지만, 이들로 한정되는 것은 아니다.The cosmetic composition of the present invention may contain a component capable of supplying nutrients to the hair follicle or a commonly used hair growth promoting auxiliary component in addition to the above components. For example, vitamins, amino acids, animal and plant oils, sodium chloride But are not limited to these. The amount thereof is preferably 0.0001 to 10% by weight, particularly 0.01 to 1% by weight of the total composition. In this case, the vitamins include, but are not limited to, vitamin A, vitamin B1, vitamin B2, niacin (nicotinic acid), vitamin C, vitamin E, sodium pantothenate, potassium pantothenate and biotin H (vitamin H). Amino acids include, but are not limited to, dopa. Plant and animal oils include, but are not limited to, maize oil, egg oil, olive oil, camellia oil, rapeseed oil, sesame oil, embryo oil and the like.

본 발명의 화장료는 모발 또는 두피에 직접 도포 또는 산포하는 등의 방법에 의해 사용될 수 있다. 본 발명의 조성물이 적용되는 모발이란, 머리의 모근 및 모낭, 머리카락 및 속눈썹과 겉눈썹, 수염, 겨드랑이, 음모, 신체 전반에 모근 및 모낭이 있는 모든 부위를 포함한다. 따라서 본 발명은 헤어토닉, 헤어로션, 헤어크림, 헤어스프레이, 헤어무스, 헤어젤, 헤어컨디셔너, 헤어샴푸, 헤어린스, 헤어팩, 헤어트리트먼트, 눈썹발모제, 속눈썹발모제, 속눈썹영양제, 애완동물용 샴푸, 애완동물용 린스 등으로 사용될 수 있다.
The cosmetic of the present invention can be used by a method such as directly applying or spreading on hair or scalp. The hair to which the composition of the present invention is applied includes hair follicles and hair follicles, hair and eyelashes and eyelashes, beard, armpits, pubic hair, hair follicles and hair follicles. Accordingly, the present invention relates to hair tonic, hair lotion, hair cream, hair spray, hair mousse, hair gel, hair conditioner, hair shampoo, hair rinse, hair pack, hair treatment, eyebrow hair extender, eyelash hair extender, , Pet rinse, and the like.

또한, 본 발명의 줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하는 조성물은 창상 개선 또는 치료용 조성물로 사용될 수 있다.In addition, the composition comprising the stem cell-derived micro-vesicle of the present invention as an active ingredient can be used as a composition for wound healing or treating.

본 발명에서 “창상(wound)”은 생체가 손상된 상태를 의미하며, 생체 내부 또는 외부 표면을 이루는 조직, 예를 들면 피부, 근육, 신경조직, 뼈, 연조직, 내부기관 또는 혈관조직이 분단 또는 파괴된 병리학적 상태를 포괄한다. 창상의 예로는, 이들로 한정하는 것은 아니지만, 비-치유 외상성 창상, 방사선조사에 의한 조직의 파괴, 찰과상 (abrasion), 골괴저, 열상 (laceration), 결출상 (avulsion), 관통상 (penetrated wound), 총상 (gunshot wound), 절상, 화상, 동상, 타박상 (contusion or bruise), 피부궤양, 피부건조, 피부각화증, 갈라짐, 터짐, 피부염, 피부사상균증에 의한 통증, 수술상, 혈관질환 창상, 각막창상 등의 창상, 욕창, 와창, 당뇨성피부 미란과 같은 당뇨병 및 순환불량에 관련된 상태, 만성궤양, 성형수술 후 봉합부위, 척추상해성 창상, 부인과적 창상, 화학적 창상 및 여드름 등을 포함하며 개체의 어떠한 부분에 대한 손상이 포함될 수 있다.In the present invention, &quot; wound &quot; refers to a state in which a living body is damaged, and a tissue constituting an inner or outer surface of a living body such as skin, muscle, nerve tissue, bone, soft tissue, internal organs, Pathological conditions. Examples of wounds include, but are not limited to, non-healing traumatic wounds, destruction of tissue by irradiation, abrasion, osteogenesis, laceration, avulsion, penetrated wound, Corneal wound, surgical wound, vascular disease, wound due to dermatosis, dermatitis, dermatosis, skin dryness, skin keratosis, cracking, erythema, contusion or bruise, skin dryness, Chronic ulcers, stitches after plastic surgery, spinal trauma wounds, gynecological wounds, chemical wounds and acne, and the like, and the like, including, but not limited to, diabetic retinopathy, diabetic retinopathy, diabetic retinopathy, diabetic retinopathy, Damage to any part may be included.

본 발명의 창상 개선 또는 치료용 조성물은 약제학적 조성물로서, 의약품으로 제조될 수 있다. 의약품으로 제조할 경우 경구적으로 또는 정맥 내, 피하, 비강 내 또는 복강 내 등에 비경구적으로 투여된다. 경구 투여는 설하 적용도 포함한다. 비경구적 투여는 피하주사, 근육 내 주사 및 정맥 주사와 같은 주사법 및 점적법을 포함한다.The composition for improving or treating wound of the present invention may be manufactured as a pharmaceutical composition, as a pharmaceutical. It is administered orally, intravenously, subcutaneously, intranasally or intraperitoneally, etc., when manufactured into pharmaceutical products. Oral administration also includes sublingual administration. Parenteral administration includes injection and drip, such as subcutaneous, intramuscular, and intravenous.

일 구체예에서 상기 조성물은 외용제로 제조될 수 있다. 상기 외용제는 시트제, 액상도포제, 분무제, 로션제, 크림제, 파프제, 분제, 침투 패드제, 분무제, 겔제, 파스타제, 리니멘트제, 연고제, 에어로졸, 분말제, 현탁액제, 경피흡수제 등의 통상적인 외용제의 형태가 포함될 수 있다. 이들 제형은 모든 제약 화학에 일반적으로 공지된 처방서인 문헌 [Remington's Pharmaceutical Science, 15th Edition, 1975, Mack Publishing Company, Easton, Pennsylvania 18042 (Chapter 87: Blaug, Seymour)에 기술되어 있다.In one embodiment, the composition may be prepared with an external preparation. The external preparation may be in the form of a sheet, a liquid coating agent, a spray, a lotion, a cream, a puff, a powder, a penetration pad, a spray, a gel, a pasta, a liniment, an ointment, an aerosol, a powder, Of the present invention can be included. These formulations are described in Remington's Pharmaceutical Science, 15th Edition, 1975, Mack Publishing Company, Easton, Pennsylvania 18042 (Chapter 87: Blaug, Seymour), a formulation generally known in all pharmaceutical chemistries.

본 발명에 따른 조성물은 약제학적으로 허용되는 담체를 추가로 포함함으로써 각종 제형의 형태로 제조되어 투여될 수 있다. 상기 '약제학적으로 허용되는'이란 생리학적으로 허용되고 인간에 투여될 때, 통상적으로 위장 장애, 현기증 등과 같은 알레르기 반응 또는 이와 유사한 반응을 일으키지 않는 조성물을 말한다. 약제학적으로 허용되는 담체는 경구 투여시에는 결합제, 활탁제, 붕해제, 부형제, 가용화제, 분산제, 안정화제, 현탁화제, 색소 및 향료를 사용할 수 있으며, 주사제의 경우에는 완충제, 보존제, 무통화제, 가용화제, 등장제 및 안정화제를 혼합하여 사용할 수 있으며 국소투여용 제제의 경우에는 기제, 부형제, 윤활제 및 보존제를 사용할 수 있다. 본 발명의 약제학적 조성물의 제형은 상술한 바와 같은 약제학적으로 허용되는 담체와 혼합하여 다양하게 제조될 수 있다. 예를 들어, 경구 투여 시에는 정제, 트포키, 캡슐, 엘릭시르, 서스펜션, 시럽, 웨이퍼(wafer) 등의 형태로 제조할 수 있으며 주사제의 경우에는 단위 투약 앰플 또는 다수회 투약 포함제 형태로 제조할 수 있다. 이외에도 본 발명의 약제학적 조성물은 각종 제형의 형태로 통용되는 기법에 따라 제조할 수 있다.The composition according to the present invention may be manufactured and administered in the form of various formulations by further comprising a pharmaceutically acceptable carrier. The term &quot; pharmaceutically acceptable &quot; as used herein refers to a composition that is physiologically acceptable and does not normally cause an allergic reaction such as a gastrointestinal disorder, dizziness, or the like when administered to a human. The pharmaceutically acceptable carrier may be a binder, a lubricant, a disintegrant, an excipient, a solubilizing agent, a dispersing agent, a stabilizer, a suspending agent, a coloring matter and a perfume in the case of oral administration, and a buffering agent, a preservative, , A solubilizing agent, an isotonic agent and a stabilizing agent may be used in combination. In the case of a preparation for topical administration, a base, an excipient, a lubricant and a preservative may be used. Formulations of the pharmaceutical compositions of the present invention may be prepared in a variety of ways by mixing with pharmaceutically acceptable carriers as described above. For example, it can be prepared in the form of tablets, troches, capsules, elixirs, suspensions, syrups, wafers, etc. in the case of oral administration, and in the case of injections, . In addition, the pharmaceutical composition of the present invention can be prepared according to a conventional technique in the form of various formulations.

본 발명에 따른 창상 개선 또는 창상 치료용 조성물은 약제학적으로 유효한 양으로 투여될 수 있다. 본 발명에서 상기 '약제학적으로 유효한 양'이란 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 질환을 치료하기에 충분한 양을 의미한다. 유효 용량 수준은 환자의 질병 종류, 중증도, 연령, 성별, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료 기간, 동시 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다. 본 발명의 조성물은 단독 다른 치료제와 병용하여 투여될 수 있고 종래의 치료제와는 순차적 또는 동시에 투여될 수 있다. 상기 요소를 모두 고려하여 부작용 없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하며, 이는 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다. 특히, 상기 유효성분이 전체 탈모 예방 또는 발모 촉진용 조성물 100 중량부에 대하여 0.01 내지 30 중량부를 포함하는 것이 바람직하며, 0.1 내지 20 중량부를 포함하는 것이 보다 바람직하다.The composition for wound healing or wound treatment according to the present invention may be administered in a pharmaceutically effective amount. The term "pharmaceutically effective amount" as used herein means an amount sufficient to treat a disease at a reasonable benefit / risk ratio applicable to medical treatment. Effective dose levels are well known to those skilled in the art, including the type of disease, severity, age, sex, drug activity, drug sensitivity, time of administration, route of administration and rate of release, duration of treatment, Can be determined according to the element. The composition of the present invention may be administered alone or in combination with other therapeutic agents, sequentially or concurrently with conventional therapeutic agents. It is important to take into account all of the above factors and to administer the amount in which the maximum effect can be obtained in a minimal amount without side effects, which can be easily determined by a person skilled in the art. In particular, it is preferable that the above-mentioned effective ingredient contains 0.01 to 30 parts by weight, more preferably 0.1 to 20 parts by weight, based on 100 parts by weight of the composition for preventing hair loss or promoting hair growth.

또한, 상기 조성물은 창상에 직접 적용될 수 있다. 즉, 창상부위에 산포될 수 있다. 시트의 형태인 경우는 창상 부위에 도포하는데 이때 도포한 부위에 적절히 드레싱하여 창상을 보호하면서 활성 성분의 치료 효과가 감소하는 것을 방지한다. 드레싱은 시판되고 있거나 통상적으로 알려져 있는 어떠한 것도 사용 가능하다. 시판되고 있는 드레싱의 예로는 컴필 (Compeel), 듀우덤 (Duoderm), 타가덤 (Tagaderm) 및 옵사이트 (Opsite)를 들 수 있다.
In addition, the composition can be applied directly to the wound. That is, it can be spread on the wound area. In the case of the sheet form, it is applied to the wound area, where the wound area is appropriately dressed to protect the wound, thereby preventing the therapeutic effect of the active ingredient from being reduced. The dressing may be any commercially available or commonly known dressing. Examples of commercially available dressings include Compeel, Duoderm, Tagaderm and Opsite.

실시예Example

실시예 1. 미세소포체 분리Example 1: Isolation of microembolism

<재료 및 방법>&Lt; Materials and methods >

시약 및 화학제품Reagents and Chemicals

DMEM(Dulbecco modified Eagle's medium-low glucose) 및 수크로즈, 젤라틴, 본 코사(von Kossa) 염색, 오일 레드 O, 사프라닌 O 및 HEPES는 시그마 케미칼 사로부터 구매하였다. 인슐린-트랜스페린-셀레늄(Insulin-Transferrin-Selenium; ITS)은 론자사로부터 구매하였다. FBS(Fetal Bovine Serum), 페니실린/스트렙토마이신, 2-머캅토에탄올(×1000), 트립신/EDTA(0.05%) 및 트리판 블루(0.4%)는 인비트로젠사로부터 구매하였다. TGF-β3는 펩로테크사로부터 구매하였다. 브래드포드 다이(dye)는 바이오래드사로부터, bFGF(basic Fibroblast Growth Factor)는 CHA 바이오메드사로부터 구매하였다. 옵티프렙(OptiPrep)은 액시스-쉘드사로부터 구매하였다.
Dulbecco's modified Eagle's medium-low glucose and sucrose, gelatin, von Kossa stain, oil red O, sapranin O and HEPES were purchased from Sigma Chemical Company. Insulin-Transferrin-Selenium (ITS) was purchased from Lonza. FBS (Fetal Bovine Serum), penicillin / streptomycin, 2-mercaptoethanol (× 1000), trypsin / EDTA (0.05%) and trypan blue (0.4%) were purchased from Invitrogen. TGF-β3 was purchased from Pepro Tech. Bradford dye was purchased from BioRad, and bFGF (basic Fibroblast Growth Factor) was purchased from CHA Biomed. OptiPrep was purchased from Axis-Shells.

< 인간 골수 샘플로부터 중간엽줄기세포의 분리 및 특성분석><Isolation and Characterization of Mesenchymal Stem Cells from Human Bone Marrow Samples>

정상인의 장골릉으로부터 골수세포를 수집하였다. 기증자의 동의하에 비여과 골수 수집백을 사용하였다. 골수 샘플로부터 단핵세포(Mononuclear Cells; MNCs)의 제조는 공지된 방법으로 실시하였다. 간단하게, 단핵세포를 피콜-하이 파크(Ficoll-Hypaque) 밀도구배 원심분리(GE, 스웨덴)에 의해 분리하고, 저(low) 글루코오즈 DMEM, 10% FBS 및 페니실린-스트렙토마이신, 2-머캅토에탄올 및 FGF(4 ng/㎖)를 포함하는 중간엽줄기세포 배지에 현탁하여 젤라틴-코팅 75 ㎠ 플라스크에 1×106 세포/㎠로 배양하였다. 3일 후에, 배양물을 PBS로 세척하여 비부착 세포를 제거하고 남아있는 부착세포의 단일층을 새로운 배지에서 70-85%의 컨플루언스(confluence)로 배양하였다. 세포에 트립신 처리하여 모은후, 5000 세포/㎠로 계대배양 하였다. 매 3일 간격으로 배지 교환하였으며, 세포 배양물은 70-85%의 컨플루언스로 계대하고 3-4번째 계대를 실험에 사용하였다.Bone marrow cells were collected from the iliac crest of normal subjects. A non-filtered bone marrow harvest bag was used with the consent of the donor. Mononuclear cells (MNCs) from bone marrow samples were prepared by known methods. Briefly, mononuclear cells were separated by Ficoll-Hypaque density gradient centrifugation (GE, Sweden) and stained with low glucose DMEM, 10% FBS and penicillin-streptomycin, 2-mercapto Ethanol and FGF (4 ng / ml), and cultured in a gelatin-coated 75 cm 2 flask at 1 × 10 6 cells / cm 2. After 3 days, the cultures were washed with PBS to remove unattached cells and a single layer of remaining adherent cells was cultured in 70-85% confluence in fresh medium. Cells were trypsinized, collected, and subcultured at 5000 cells / cm2. The medium was changed every 3 days, and the cell cultures were passaged with confluence of 70-85% and the 3-4th passage was used for the experiment.

중간엽줄기세포의 면역표현형을 3 계대에서 조사하였다. 조사를 위해, 다음의 세포 표면 항원을 항-인간 항체 또는 적절한 마우스 아이소타입 항체(모두 BD-Pharmingen San Jose, 미국)로 염색하였다: CD29, CD31, CD34, CD44, CD45, CD73, CD90, CD105 및 CD106. 세포를 수집하고 유세포 분석기(Cytomic flow cytometer, Beckman Coulter, 미국)로 분석한 후, WinMDI를 사용하여 결과를 분석하였다.Immunophenotypes of mesenchymal stem cells were examined in three passages. For the investigation, the following cell surface antigens were stained with anti-human antibodies or appropriate mouse isotype antibodies (all BD-Pharmingen San Jose, USA): CD29, CD31, CD34, CD44, CD45, CD73, CD90, CD106. Cells were collected and analyzed with a flow cytometer (Beckman Coulter, USA) and analyzed using WinMDI.

3 계대의 세포에 분화유도배지를 처리하여 중간엽줄기세포의 지방세포, 골세포 및 연골세포 분화능을 확인하기 위해 공지된 방법에 따라 실시하였다. 중간엽줄기세포를 골세포 및 연골세포 분화를 위해 12-웰에 플레이트 5×104 세포/웰로 씨딩(seeding)하고, 지방세포 분화를 위해, 1×105 세포/웰로 씨딩하였다. 연골세포화는 중간엽줄기세포 단일층에 TGF-β3(10 ng/㎖)를 처리하여 배양하였다. 배양물은 2주 동안 95% 대기/5% CO2의 37℃ 조건에서 3-4일 간격으로 배지 교환하여 배양하였다. 연골세포화는 사포라닌-O 염색을 실시하여 확인하였다. 골세포화는 광화(mineralized) 인산칼슘의 축적을 본 코사 염색을 통해 확인하였다. 지방세포화는 지질-풍부 액포의 세포내 축적을 오일 레드 O 염색을 통해 확인하였다. 기저배양배지로 배양한 세포를 대조군으로 사용하였다.
3 &lt; / RTI &gt; cells were treated with a differentiation inducing medium to determine the ability of mesenchymal stem cells to differentiate into adipocytes, osteocytes and chondrocytes, according to a known method. Mesenchymal stem cells were seeded into 12-well plates at 5 × 10 4 cells / well for osteocyte and chondrocyte differentiation and seeded at 1 × 10 5 cells / well for adipocyte differentiation. Chondrocytes were cultured by treatment with TGF-β3 (10 ng / ml) in mesenchymal stem cell monolayers. The cultures were incubated for 2 weeks at 37 ° C in 95% air / 5% CO 2 at 3-4 days intervals. Chondrocytosis was confirmed by saponin-O staining. Osteocytosis was confirmed by the accumulation of mineralized calcium phosphate through the main staining. The lipid saturation was confirmed by the oil red O staining of intracellular accumulation of lipid - rich vacuole. Cells cultured in basal culture medium were used as a control.

<미세소포체의 분리>&Lt; Separation of micro-vesicles >

미세소포체(Microvesicles; MVs)를 공지된 방법을 수정하여 원심분리를 사용하여 조건 배지로부터 분리하였다. bFGF(4 ng/㎖), 1× ITS 및 2-머캅토에탄올을 포함하는 무혈청(serum-free) 저글루코오즈 DMEM에서 배양 후, 24시간에 500 g로 10분, 800 g로 15분 2회 원심분리를 실시하여 조건배지를 수집하였다. 상층액을 100 kda 막의 미니메이트(Minimate) TFF 캡슐 시스템(PALL Corporation, 미국)을 이용하여 농축하였다. 고질의 미세소포체를 위해, 농축 상층액을 0.8 및 2.7 M 수크로오즈 쿠션을 포함하는 20 mM HEPES/150 mM NaCl 버퍼(pH 7.2)에 얹고 100000 g에서 2시간 동안 초고속원심분리를 실시하였다. 원심분리 후, 0.8 및 2.7 M 수크로오즈 쿠션의 사이부분을 PBS에 희석하여 수집하였다. 미세소포체의 추가적인 정제를 위해, 옵티프렙 밀도구배 초고속원심 분리를 수행하였다. 간단하게, 수크로오즈-쿠션-풍부 미세소포체를 옵티프렙(최종 농도 30%)과 혼합하고 12 ㎖ 튜브의 바닥에 피펫으로 옮겼다. 다음, 20% 옵티프렙 3 ㎖ 및 5% 옵티프렙 2.5 ㎖을 포함하는 20 mM HEPES/150 mM NaCl 버퍼(pH 7.2)를 준비하고 층을 이룬 튜브를 200000 g로 3시간 동안 초고속 원심분리하였다. 동일한 부피의 10 분획을 튜브의 바닥으로부터 수집하여 9 ㎖ PBS로 희석하고 100000 g로 1시간동안 초고속 원심분리하였다. 마지막으로, 정제된 미세소포체를 증류수에 현탁하고 각 분획의 단백질 농도를 굴절계 측정 및 브래드포드 다이 분석으로 확인하였다. 모든 분획은 실험 시까지 -80℃에 보관하였다.
Microvesicles (MVs) were separated from conditioned media using centrifugation by modifying known methods. free low glucose DMEM containing bFGF (4 ng / ml), 1 x ITS and 2-mercaptoethanol, followed by 10 minutes at 500 g for 10 minutes, 15 minutes at 800 g for 2 hours The culture medium was collected by centrifugation. The supernatant was concentrated using a 100 kda membrane Minimate TFF capsule system (PALL Corporation, USA). For the microinfarnate of high quality, the concentrated supernatant was placed on 20 mM HEPES / 150 mM NaCl buffer (pH 7.2) containing 0.8 and 2.7 M sucrose cushion and subjected to ultra-high speed centrifugation at 100,000 g for 2 hours. After centrifugation, the interstices of 0.8 and 2.7 M sucrose cushions were collected by dilution in PBS. For further purification of the microvesicles, Opti-prep density gradient ultracentrifugation was performed. Briefly, sucrose-cushion-rich microvesicles were mixed with Opti prep (final concentration 30%) and pipetted to the bottom of a 12 ml tube. Next, 20 mM HEPES / 150 mM NaCl buffer (pH 7.2) containing 3 mL of 20% OptiPrep and 2.5 mL of 5% OptiPrep was prepared and the layered tube was ultracentrifuged for 3 hours at 200,000 g. 10 fractions of the same volume were collected from the bottom of the tube, diluted with 9 ml PBS and ultracentrifuged for 1 hour at 100000 g. Finally, the purified microvesicles were suspended in distilled water and the protein concentration of each fraction was determined by refractometer measurements and Bradford assay. All fractions were stored at -80 ° C until the experiment.

<투과 전자현미경><Transmission electron microscope>

정제 미세소포체를 글로우-배출 탄소-코팅 구리 그리드(EMS, 미국)에 적용하였다. 미세소포체를 8시간 동안 흡수시킨 후, PTA(Phosphor-Tungsten Acid) 염색을 10분 동안 실시하였다. 그리드를 증류수로 방울 세척하고 건조하였다. 투과 전자현미경 결과는 JEM 1011(Jeol, 일본)을 사용하여 가속전압 80 ㎸에서 기록하였다.
Tablet microvesicles were applied to a glow-out carbon-coated copper grid (EMS, USA). After the microvesicles were absorbed for 8 hours, PTA (Phosphor-Tungsten Acid) staining was performed for 10 minutes. The grid was washed with distilled water and dried. Transmission electron microscopy results were recorded at an acceleration voltage of 80 kV using JEM 1011 (Jeol, Japan).

<웨스턴블럿><Western Blot>

각 샘플에 대한 전(whole) 세포 용해물(10-20 ㎍) 및 미세소포체(0.5-2 ㎍)을 SDS 폴리아크릴아마이드 젤에 로딩하였다. 전기영동을 통해 단백질을 분리시키고, PVDF 막으로 250 ㎃로 90분 동안 전송하여 5% 탈지분유에 블로킹하였다. 블로킹 한 막을 항-CD81(BD-Pharmingen), CD63 및 항-액틴(Santa cruz, 미국)과 반응하고 TBST 버퍼로 10분 동안 3차례 세척하였다. 다음, 막을 HRT 결합된 항-고트 또는 항-마우스 IgG로 반응하였다. TBST 버퍼로 10분 동안 3차례 세척하고 화학발광 기질(인트론, 대한민국)을 처리하여 X-선 필름에 감광하였다.
Whole cell lysates (10-20 ㎍) and microvesicles (0.5-2 ㎍) for each sample were loaded onto SDS polyacrylamide gels. Proteins were separated by electrophoresis and transferred to PVDF membrane at 250 mA for 90 minutes to block 5% defatted milk powder. The blocked membranes were reacted with anti-CD81 (BD-Pharmingen), CD63 and anti-actin (Santa Cruz, USA) and washed three times with TBST buffer for 10 minutes. The membrane was then reacted with HRT-conjugated anti-goto or anti-mouse IgG. Washed three times for 10 minutes with TBST buffer, and treated with a chemiluminescent substrate (Intron, Korea) and sensitized to an X-ray film.

<SDS-PAGE 및 인-젤 분해>&Lt; SDS-PAGE and phosphorus-gel decomposition >

각 분리한 중간엽줄기세포-유래 미세소포체를 4-12% 구배 노벡스 비스-트리스 젤(인비트로젠)로 SDS-PAGE하여 분리하고 결과 단백질 밴드를 젤 코드 블루염색 시약(피어스, 미국)으로 염색하였다. 염색한 젤을 동일한 크기의 10 밴드로 슬라이스하고 인-젤 트립신 분해를 공지된 방법으로 수행하였다.
Each of the isolated mesenchymal stem cell-derived microvesicles was separated by SDS-PAGE with 4-12% gradient Novex bis-tris gel (Invitrogen) and the resulting protein bands were analyzed by Gelco-Blue staining reagent (Pierce, USA) Lt; / RTI &gt; The dyed gel was sliced into 10 bands of the same size and in-gel trypsin digestion was performed in a known manner.

<나노-LC-ESI-MS/MS 분석>&Lt; Nano-LC-ESI-MS / MS analysis >

인-젤 분해에 의해 제조한 펩타이드를 엑시젠트-나노-울트라-UPLC(Eksigent-Nano-Ultra Performance Liquid Chromatography, Eksigent Technologies, 미국)와 결합한 LTQ(Linear Trap Quadrupole) 질량 분광계(Thermo Finnigan, 미국)를 사용하여 분석하였다. 간단하게, 트립신 처리된 펩타이드를 C18 레귤러 5 ㎛ 사이즈 레진이 패킹된 자체제작 분석 컬럼(75 ㎛×11 ㎝)에 적용하였다.(Linear Trap Quadrupole) mass spectrometer (Thermo Finnigan, USA) in which peptides prepared by in-gel digestion were combined with Excipient-Nano-Ultra Performance Liquid Chromatography (Eksigent Technologies, USA) Respectively. Briefly, trypsinized peptides were applied to a self-made analytical column (75 μm × 11 cm) packed with C18 regular 5 μm size resin.

97% 용액 A(증류수에 0.1% 포름산)에서 60% 용액 B(아세토니트릴(Acetonitrile)에 0.1% 포름산)로 유속 0.3 ㎕/의 조건에서 분선형 45분 구배를 실시하였다. 분리된 펩타이드 이온을 나노-ESI(ElectroSpray Ionization) 소스로 전기분무(electrospray)를 실시하였다. MS/MS 분석에 사용된 전기분무 전압은 1.9 ㎸이고, 표준화 충돌 에너지는 35%이다. 모든 MS/MS 스펙트라는 전체 MS 스캔을 단편으로 선별하여 가장 많은 5가지 스펙트라를 결과-의존 스캔으로 구하였다. 동적 배제에 대한 반복 계수는 1로, 반복 기간은 30초, 동적 배제 기간은 180 초, 배제 질량 너비는 1.5 Da 및 동적 배제 리스트는 50으로 설정하였다.
A gradient of 45 minutes was performed on a 97% solution A (0.1% formic acid in distilled water) and a flow rate of 0.3 / / 60% solution B (0.1% formic acid in acetonitrile). The separated peptide ions were electrosprayed with a nano-ESI (Electro Spray Ionization) source. The electrospray voltage used in the MS / MS analysis is 1.9 kV and the standardized impact energy is 35%. All MS / MS spectra were segmented by total MS scans and the largest five spectra were obtained as result-dependent scans. The repetition factor for the dynamic exclusion was set to 1, the repetition period to 30 seconds, the dynamic exclusion period to 180 seconds, the exclusion mass width to 1.5 Da, and the dynamic exclusion list to 50.

<펩타이드 및 단백질의 확인>&Lt; Identification of peptides and proteins >

S/MS 스펙트라 결과를 ipi.HUMAN.v3.76 데이터베이스(89 378 엔트리)에서 터보-SEQUEST 알고리즘(Thermo Finnigan, 미국)을 사용하여 검색하였다. 다음의 SEQUEST 검색 파라미터를 사용하였다: ±2 Da 및 ±1 Da의 전구체 및 프래그먼트 이온 질량 허용, 2 오절단(miscleavage) 허용, 가변 모디피케이션에 의한 Met(+16 Da)의 산화 및 고정 모디피케이션에 의한 Cys(+57 Da)의 카르바미도메틸레이션. 데이터베이스 검색 후, 스카프폴드 2(Proteome Software, 미국)을 이용하여 확인된 펩타이드 및 단백질을 확인하였다. SEQUEST 검색으로부터 얻은 펩타이드 중, 0.95 이상의 펩타이드프로펫(PeptideProphet) 개연성을 갖는 한 세트의 펩타이드를 선별하였다. 또한, 0.99 이상의 프로테인프로펫(ProteinProphet) 개연성 및 2개 이상의 고유 펩타이드를 갖는 단백질 리스트를 구하였다.
The S / MS spectra results were retrieved using the turbo-SEQUEST algorithm (Thermo Finnigan, USA) in the ipi.HUMAN.v3.76 database (89 378 entries). The following SEQUEST search parameters were used: allow for precursor and fragment ion masses of ± 2 Da and ± 1 Da, allow miscleavage, oxidize and fix the Met (+16 Da) by variable modulation Carbamidomethylation of Cys (+57 Da) by. After database searching, identified peptides and proteins were identified using Scarfold 2 (Proteome Software, USA). Of the peptides from the SEQUEST search, a set of peptides with a probability of peptide peptides of 0.95 or greater was selected. Also, a list of proteins having a ProteinProphet probability of 0.99 or more and having two or more unique peptides was obtained.

<유전자 존재론(Gene Ontology; GO) 분석><Gene Ontology (GO) Analysis>

단백질 또는 유전자 세트가 풍부한 GO 생물학적 과정, 분자적 기능 및 세포 기관을 확인하기 위해, DAVID(Database for Annotation, Visualization and Integrated Discovery)를 이용하였다.
We used DAVID (Database for Annotation, Visualization and Integrated Discovery) to identify GO biological processes, molecular functions and cellular organs rich in proteins or gene sets.

<결과 및 토론><Results and Discussion>

<중간엽줄기세포-유래 미세소포체의 분리 및 분석><Isolation and Analysis of Mesenchymal Stem Cell-Derived Microemboli>

인간 골수-유래 중간엽줄기세포로부터 미세소포체를 분리하기 전에, 중간엽줄기세포를 확인하기 위해 유세포 분석법을 실시하였다. 세포는 균일한 방추형 파퓰레이션의 전형적인 중간엽줄기세포 형태 및 CD29, CD44, CD73, CD90 및 CD105를 양성으로 CD31, CD34, CD45 및 CD106을 음성으로 발현하는 면역 특성을 나타내었다(도 1a 및 도 1a). 중간엽줄기세포를 공지된 방법으로 지방세포, 연골세포 및 골세포로 다양한 리니지(lineage)로의 분화 가능성을 확인하여 줄기세포 특성을 확인하였다. 중간엽줄기세포로부터 미세소포체를 분리하기 위해, 세포를 bFGF 및 ITS를 포함하는 무혈청 DMEM에서 24시간 동안 배양하였다. 세포 및 세포 잔해를 제거한 후에, 조건 배지를 100-kDa 필터 및 수크로즈 구배를 이용한 연속적인 원심분리로 50배 농축하였다. 투과 전자현미경으로 관찰한 결과, 정제된 미세소포체는 직경 50-200 ㎚의 둥근 소낭 형태였다(도 1d). 24시간 배양한 약 80 백만 서브-컨플루언트 세포의 배지로부터 소낭 단백질을 최대 10 ㎍ 수득하였다. 미세소포체는 CD63, β-액틴 및 HSP90과 같은 미세소포체에서 흔히 발견되는 단백질의 집합으로 구성된다(도 1e). 불용성 면역 복합체와 같은 단백질 복합체는 유세포 분석에 의한 미세소포체의 정량 및 초고속원심분리에 의한 정제에 영향을 주는 미세소포체의 생물물리학적 특성(크기, 빛 산란 및 퇴적)이 유사하다. 불용성 단백질 복합체의 오염 가능성을 줄이기 위해, 중간엽줄기세포로부터 미세소포체를 분리하는데 무혈청 배지를 이용하였다.
Flow cytometry was performed to identify mesenchymal stem cells prior to the separation of the microvesicles from human bone marrow-derived mesenchymal stem cells. The cells exhibited immunostaining for negative expression of CD31, CD34, CD45 and CD106 in the positive mesenchymal stem cell form of a uniform fusiform population and positive for CD29, CD44, CD73, CD90 and CD105 (FIGS. 1A and 1A) . The ability of the mesenchymal stem cells to differentiate into various lineages as adipocytes, chondrocytes, and osteocytes was confirmed by known methods to confirm stem cell characteristics. To separate the microvesicles from mesenchymal stem cells, the cells were cultured in serum-free DMEM containing bFGF and ITS for 24 hours. After removal of cells and cell debris, conditioned medium was concentrated 50-fold by serial centrifugation using a 100-kDa filter and sucrose gradient. Transmission electron microscopy revealed that the purified microvesicles were round follicles with a diameter of 50-200 nm (Fig. 1d). A maximum of 10 mu g of vesicle protein was obtained from the medium of about 80 million sub-confluent cells cultured for 24 hours. The microvesicles consist of a collection of proteins commonly found in microembro- mytes such as CD63, beta-actin and HSP90 (Fig. 1e). Protein complexes such as insoluble immune complexes are similar in biophysical properties (size, light scattering and deposition) of micro-endoplasmic reticulum affecting the determination of micro-vesicles by flow cytometry and purification by ultrafast centrifugation. In order to reduce the possibility of contamination of the insoluble protein complex, serum-free medium was used to separate the microvesicles from the mesenchymal stem cells.

<중간엽줄기세포-유래 미세소포체의 단백질 프로테옴 분석><Protein Proteome Analysis of Mesenchymal Stem Cell-Derived Microemboli>

간연줄기세포-유래 미세소포체의 단백질 구성을 조사하기 위해, 미세소포체를 3회 독립적으로 분리하여 단백질 프로테옴 분석, 1D SDS-PAGE의 조합, 트립신에 의한 인-젤 분해 및 LC-MS/MS 분석을 실시하였다. 3회 독립적으로 분리된 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 샘플을 각각 LC-MS/MS 분석하였다. 3회의 LC-MS/MS 분석은 샘플에 대하여 각각 98 067, 110 051 및 93 134 MS/MS 스펙트라를 나타내었다. 3회의 MS/MS 스펙트라를 SEQUEST 알고리즘을 이용하여 IPI 데이터베이스(v.3.76, 89 378 엔트리)에 대하여 검색하였다. 신뢰성 있는 단백질 확인을 위해, 0.95 이상의 펩타이드프로펫 개연성을 갖는 펩타이드 및 0.99 이상의 프로테인프로펫 개연성을 갖는 단백질을 확인하였다. 이러한 기준을 적용하여, 3회 독립적인 실험 중 최소 2회 특이적인 펩타이드로부터 총 730개의 미세소포체 단백질을 확인하였다(도 2a 및 도 2b). 730 미세소포체 단백질 가운데, 최소 2번의 LCMS/MS로 424 단백질을 확인하고 3번의 분석으로 236 단백질을 확인하였다.
In order to investigate the protein composition of the hepatic stem cell-derived microemboli, three types of microembodiments were independently separated and analyzed by protein proteome analysis, 1D SDS-PAGE, phosphorylase degradation by trypsin and LC-MS / MS analysis Respectively. Three independent, isolated mesenchymal stem cell-derived microembeletic samples were analyzed by LC-MS / MS, respectively. Three LC-MS / MS analyzes showed 98 067, 110 051 and 93 134 MS / MS spectra for the samples, respectively. Three MS / MS spectra were searched for the IPI database (v.3.76, 89 378 entries) using the SEQUEST algorithm. For reliable protein identification, peptides with a peptide propetability of at least 0.95 and proteins with a protein propetability of at least 0.99 were identified. Applying this criterion, a total of 730 micro-vesicle proteins were identified from at least twice-specific peptides in three independent experiments (Figs. 2a and 2b). Of the 730 microembossed proteins, 424 proteins were identified with at least 2 LCMS / MS and 236 proteins were identified with 3 analyzes.

<중간엽줄기세포-유래 미세소포체 특징><Features of mesenchymal stem cells-derived microemboli>

발명자들은 이전에 인간 결장암 복수 및 인간 HT29 결장암 세포로부터 미세소포체 단백질의 구성을 보고하였다.The inventors previously reported the construction of microembodial protein from human colon cancer and human HT29 colon cancer cells.

중간엽줄기세포-유래 미세소포체가 미세소포체의 특징을 나타내는지 조사하기 위해, 보고된 미세소포체 프로테옴과 중간엽줄기세포-유래 미세소포체를 비교하였다. 730개의 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 단백질 가운데, 이전에 미세소포체 프로테옴에 보고된 420 단백질을 확인하였다. 미세소포체 프로테옴은 미세소포체 발생 및 운송과 같은 미세소포체의 본질적인 특성과 관련된 단백질을 포함한다. 이러한 발견과 일관되게, 420 단백질은 미세소포체의 도킹 및 융합의 조절뿐 아니라, 다양한 세포 소기관으로 미세소포체가 알맞게 타겟팅 하는 역할을 하는 15 RAB 단백질(예컨대, RAB1A, RAB2A, RAB5A/B/C, RAB7A 및 RAB8A)을 포함한다. 이러한 RAB 단백질은 원형질막에서 골지 전송, 그래뉼 분비, 융합막 형성 및 리간드 제거에 관련된다.
In order to investigate whether the mesenchymal stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum is characteristic of the micro-endoplasmic reticulum, the reported micro-endoplasmic reticulum protein and mesenchymal stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum were compared. Of the 730 mesenchymal stem cell-derived microembodial proteins, 420 proteins previously reported in the microembodiment proteome were identified. Microembodial proteomes include proteins that are associated with the essential properties of the microembroine, such as micro-embryonic development and transport. Consistent with this discovery, the 420 protein is able to regulate the docking and fusion of the micro-endoplasmic reticulum as well as the 15 RAB protein (e.g., RAB1A, RAB2A, RAB5A / B / C, RAB7A And RAB8A. These RAB proteins are involved in vesicular transport, granule release, fusion membrane formation and ligand removal in the plasma membrane.

<중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴의 미세소포체적 특징><Microembossed Characteristics of Mesenchymal Stem Cell-Derived Microembodiment Proteome>

이전의 연구는 미세소포체 프로테옴이 그 유래 세포의 특성을 반영함을 보여준다. 그러므로, 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴이 중간엽줄기세포와 관련된 단백질을 포함하는지 조사하였다. Kolf et al.에 의해 정리된 중간엽줄기세포의 표면 마커를 기초로 하여, 730 미세소포체 단백질이 중간엽줄기세포에 대한 5 양성 마커(CD13, CD29, CD44, CD73 및 CD105) 및 2 가변 마커(CD10 및 CD90)를 포함하고 음성 마커는 조사되지 않았다. 또한, 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴을 제대혈 유래 중간엽줄기세포(UCB-hMSCs) 및 인간 중간엽줄기세포의 프로테옴을 비교하고 122 단백질이 중복되는 것을 확인하였다. 이러한 결과는 본 발명의 미세소포체 분리 및 프로테오믹 분석의 유효성을 뒷받침한다. 미세소포체 프로테옴은 중간엽줄기세포의 자기-재생 및 분화와 관련된 신호전달 경로의 분자를 포함한다(도 2C). 첫째, 미세소포체 프로테옴은 KEGG 경로 데이터베이스 및 GOBP 신호전달경로에 근거한 중간엽줄기세포의 자기-재생, 성장인자 수용체 및 Wnt 신호전달 경로에 관여하는 2가지 신호전달 경로와 관련된 13 단백질을 포함한다. 둘째, 중간엽줄기세포의 분화, TGFβ, MAPK, PPAR 및 BMP 신호전달 경로에 관여하는 5 신호전달 경로와 관련된 38 단백질을 포함한다. Wnt 신호전달 경로는 중간엽줄기세포의 자기-재생 및 분화에 관련되는 것으로 보고된다. 이러한 결과는 중간엽줄기세포-유래 미세소포체가 중간엽줄기세포의 특징을 갖으며 이러한 미세소포체는 신호전달 경로에 관여하는 단백질을 통해 자기-재생 및 분화에 영향을 줄 수 있음을 말해준다.
Previous studies have shown that the microembodiment proteome reflects the characteristics of its derived cells. Therefore, we investigated whether the mesenchymal stem cell-derived microfibrillar proteome contains mesenchymal stem cell related proteins. On the basis of the surface markers of mesenchymal stem cells sorted by Kolf et al., 730 microembossed proteins were tested for the presence of 5 positive markers (CD13, CD29, CD44, CD73 and CD105) and 2 variable markers CD10 and CD90) and no negative markers were detected. In addition, the mesenchymal stem cell-derived microsomal proteome was compared with the proteomes of the umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells (UCB-hMSCs) and human mesenchymal stem cells, and it was confirmed that the 122 proteins were overlapped. These results support the effectiveness of the micro-vesicle separation and proteomic analysis of the present invention. The microfibrillar proteome contains molecules of the signaling pathway involved in self-renewal and differentiation of mesenchymal stem cells (Fig. 2C). First, microfibrillar proteomes include 13 proteins associated with the KEGG pathway database and two signaling pathways involved in self-renewal, growth factor receptors and Wnt signaling pathways of mesenchymal stem cells based on the GOBP signaling pathway. Second, it includes 38 proteins involved in the differentiation of mesenchymal stem cells, the five signaling pathways involved in the TGFβ, MAPK, PPAR, and BMP signaling pathways. The Wnt signaling pathway is reported to be involved in the self-renewal and differentiation of mesenchymal stem cells. These results suggest that the mesenchymal stem cell-derived microfibrils are characteristic of mesenchymal stem cells and that these microfibrils may affect self-regeneration and differentiation through proteins involved in signal transduction pathways.

<중간엽줄기세포-유래 미세소포체의 잠재적 기능><Potential Function of Mesenchymal Stem Cell-Derived Microemboli>

중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴과 다른 프로테옴의 비교 분석 결과는 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴이 미세소포체 및 중간엽줄기세포의 특징을 갖고 있음을 나타낸다. 그러나, 중간엽줄기세포-유래 미세소포체의 잠재적 기능에 대해서는 밝혀지지 않았다.The results of comparative analysis of mesenchymal stem cell-derived microsomal proteome and other proteomes indicate that the mesenchymal stem cell-derived microsomal proteome has the characteristics of microembodial and mesenchymal stem cells. However, the potential function of mesenchymal stem cell-derived microemboli was not disclosed.

중간엽줄기세포-유래 미세소포체의 기능을 체계적으로 조사하기 위해, DAVID 소프트웨어를 사용하여, 730 미세소포체 단백질의 기능 인리치먼트 분석을 수행하였다. GOBPs(Gene Ontology Biological Processes, 도 3a)는 소낭-매개 전송(10.7%), 세포 부착(8.4%), 세포 주기 및 증식(7.9% 및 4.7%), 세포 이동(4.0%), 세포 형태 형성(4.1%) 및 발생과정(예컨대, 외배엽 및 표피 발생) 포함하는 미세소포체 프로테옴을 유의하게 나타낸다. 또한, GOMFs(Gene Ontology Molecular Functions, 도 3b)은 미세소포체 프로테옴이 뉴클레오타이드 결합(25.5%), 칼슘 이온 결합(11.9%), 세포골격 단백질 결합(11.0%) 및 GTPase 활성(9.1%)을 가짐을 보여준다. 마지막으로, 미세소포체의 주요한 GOCCs(Gene Ontology Cellular Components, 도 3c)는 원형질막(38.7%), 세포 골격(23.1%), 소낭(15.6%), 시토졸(27.1%) 및 세포외 부분(11.7%)을 포함한다. 세포 과정의 넓은 스펙트럼 및 분자 기능은 중간엽줄기세포-유래 미세소포체의 치료효과를 예상할 수 있다.
To systematically investigate the function of the mesenchymal stem cell-derived microembellifer, the functional analysis of the 730 microembroite protein was performed using DAVID software. GOBPs (Gene Ontology Biological Processes, Fig. 3A) showed a significant increase in cell migration (10.7%), cell attachment (8.4%), cell cycle and proliferation (7.9% and 4.7% 4.1%) and developmental processes (e. G., Ectodermal and epidermal development). In addition, GOMFs (Gene Ontology Molecular Functions, Fig. 3B) showed that the microfibrillar proteome had a nucleotide binding (25.5%), calcium ion binding (11.9%), cytoskeletal protein binding (11.0%) and GTPase activity (9.1% Show. Finally, the major GOCCs (Gene Ontology Cellular Components, Fig. 3c) of the microemboli were found in 38.7% of the plasma membrane, 23.1% of the cytoskeleton, 15.6% of the follicles, 27.1% of the cytosol, ). The broad spectrum and molecular function of cellular processes can predict the therapeutic effect of mesenchymal stem cell-derived microemboli.

<중간엽줄기세포의 자기-재생 및 분화의 mRNA 시그니쳐의 통합 및 중간엽줄기세포-조건 배지><Integration of mRNA signature of self-renewal and differentiation of mesenchymal stem cells and mesenchymal stem cell-conditioned medium>

중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴의 세포 과정에 의해 확인된 중간엽줄기세포-유래 미세소포체의 치료효과를 알아보기 위해, 중간엽줄기세포의 치료효과와 밀접한 관련이 있는 자기-재생 및 분화와 관련된 것으로 알려진 유전자를 통합하여 중간엽줄기세포의 자기-재생 및 분화와 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴의 잠재적 관계를 조사하였다. Song et al.은 인간 중간엽줄기세포, 인간 중간엽줄기세포에서 분화된 3가지 세포(지방세포, 연골세포 및 골아세포) 및 분화세포로부터 탈분화된 세포의 유전자 발현 프로필을 구하였다. 중간엽줄기세포의 분화동안 발현 정도가 감소하고 탈분화시 발현이 증가하는 자기-재생과 관련된 유전자를 확인하고 반대의 경향을 나타내는 중간엽줄기세포 분화와 관련된 유전자를 확인하였다(도 4a). 730 중간엽줄기세포-미세소포체 단백질 가운데, 미세소포체 단백질은 중간엽줄기세포의 자기-재생 및 분화와 관련된 단백질과 각각 53(7.3%) 및 25(3.4%) 중복되었다(도 4b). 이러한 중간엽줄기세포-유래 미세소포체의 잠재적 관계의 중복은 분자 수준에서의 비교보다 세포 과정 수준에서의 비교가 유의한 해석이 가능할 것이다. 세포 과정 수준에서 중복을 조사하기 위해, 자기-재생 및 분화와 관련된 유전자의 기능 엔리치먼트 분석을 실시하고 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴의 것과 비교하였다(도 4c). 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴 및 자기-재생-관련 유전자는 세포 증식, 세포 부착 및 이동, 액틴 세포골격 조직, 발생과정(표피, 외배엽 및 혈관 발생), Ras 신호전달 경로 및 호르몬 자극에 대한 반응을 공유한다. 반면에, 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴 및 분화-관련 유전자는 산화정 스트레스에 대한 반응 및 공동인자 및 황 대사과정을 공유한다. 세포 부착 및 이동은 자기-재생 및 분화와 관련된 유전자를 공유한다. 이러한 결과는 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴이 중간엽줄기세포의 자기-재생 및 분화과정에 관여하는 단백질에 영향을 미침을 말한다.In order to investigate the therapeutic effect of the mesenchymal stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum confirmed by the cell process of the mesenchymal stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum, the self-regeneration and differentiation, which is closely related to the therapeutic effect of the mesenchymal stem cell, We investigated the potential relationship between self-renewal and differentiation of mesenchymal stem cells and mesenchymal stem cell-derived microsomal proteome by integrating genes known to be involved. Song et al. Determined the gene expression profiles of three differentiated cells (adipocytes, chondrocytes and osteoblasts) and demyelinated cells from human mesenchymal stem cells, human mesenchymal stem cells, and differentiated cells. During the differentiation of mesenchymal stem cells, the genes associated with self-renewal, in which the expression level decreased and the expression was increased during the differentiation, were identified, and genes related to the differentiation of mesenchymal stem cells were observed (Fig. 4A). Of the 730 mesenchymal stem cell-microembodial proteins, the microembodial proteins overlapped 53 (7.3%) and 25 (3.4%) of the proteins involved in self-renewal and differentiation of mesenchymal stem cells, respectively (FIG. Duplication of the potential relationship of these mesenchymal stem cell-derived micro-endoplasmic reticulum could be interpreted more meaningfully at the cellular level than at the molecular level. In order to investigate redundancy at the cellular process level, functional enrichment analysis of genes involved in self-renewal and differentiation was performed and compared with that of mesenchymal stem cell-derived microembologic proteomes (FIG. 4c). The mesenchymal stem cell-derived microsomal proteome and self-regenerating-related genes are involved in cell proliferation, cell adhesion and migration, actin cytoskeletal tissues, developmental processes (epidermis, ectoderm and angiogenesis), Ras signaling pathway and hormone stimulation Share the reaction. On the other hand, mesenchymal stem cell-derived microembelliferous proteome and differentiation-related genes share responses to oxidative stress and cofactor and sulfur metabolism. Cell adhesion and migration share genes associated with self-renewal and differentiation. These results indicate that the mesenchymal stem cell-derived microfibrillar proteome affects proteins involved in the self-renewal and differentiation process of mesenchymal stem cells.

중간엽줄기세포-유래 미세소포체는 중간엽줄기세포-유래 조건배지와 유사하게 심근허혈의 경색증 크기를 감소시키는 효과를 나타낸다. 그러므로, 중간엽줄기세포-유래 미세소포체와 인간 중간엽줄기세포-조건배지 프로테옴을 비교하여 중간엽줄기세포-유래 미세소포체-기반 치료적 측면에서 미세소포체 프로테옴의 잠재적 역할을 조사하였다. 730개의 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 단백질 중에서, 58 단백질(8.0%, 55 특이적 유전자 산물)은 중간엽줄기세포-조건배지 프로테옴과 중복되었다. 자기-재생 및 분화와 관련된 유전자의 분석을 위해, 중간엽줄기세포-조건 배지 단백질의 기능 엔리치먼트 분석을 실시하였다. 단백질 및 유전자를 다음의 4 군으로 나눠 세포 과정을 비교하였다(도 4c): (1) 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴; (2)자기-재생 및 (3) 분화-관련 유전자; 및 (4) 중간엽줄기세포-조건배지 프로테옴. 단백질 및 유전자의 4 군에 대한 세포 과정의 중복 패턴은 다음의 5 군으로 분류하였다:(1군) 세포 부착, 세포 이동 및 호르몬 자극에 대한 반응에 관련된 4 군의 단백질 및 유전자 중복군 ; (2군) 액틴 세포골격 조직, Ras 신호전달 및 3 발생 과정(혈관, 표피 및 외배엽 발생) 및 자기-재생-관련된 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 및 조건배지 프로테옴의 중복군; (3군) 해당과정, 세포 산화환원 항상성, Rho 신호전달, 세포 형태, 칼슘이온에 대한 반응 및 콜라겐 섬유 조직에 관련된 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 및 조건배지 프로테옴의 중복군; (4군) 세포 증식, 상피 발생, 단백질 폴딩 및 핵산 생합성에 관련된 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴 및 자기-재생-관련 유전가 중목군; (5군) 펩타이드/공인자/황 대사 과정 및 산화 스트레스에 대한 반응과 관련된 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 프로테옴 및 분화-관련 유전자의 중복군.The mesenchymal stem cell-derived micro-spermatocyte has the effect of reducing the infarct size of myocardial ischemia similar to the mesenchymal stem cell-derived conditioned medium. Therefore, we examined the potential role of microfibrillar proteomes in mesenchymal stem cell-derived microfibrillar-based therapeutic aspects by comparing mesenchymal stem cell-derived microfibrils with human mesenchymal stem cell-conditioned medium proteomes. Of the 730 mesenchymal stem cell-derived microembodid proteins, 58 protein (8.0%, 55 specific gene product) overlapped mesenchymal stem cell-conditioned medium proteome. For analysis of genes involved in self-renewal and differentiation, functional enrichment analysis of the mesenchymal stem cell-conditioned medium protein was performed. The proteins and genes were divided into the following four groups to compare the cell processes (Fig. 4c): (1) mesenchymal stem cell-derived microembologue proteome; (2) self-renewal and (3) differentiation-related genes; And (4) mesenchymal stem cell-conditioned medium proteomes. The overlapping patterns of cellular processes for the four groups of proteins and genes were classified into the following five groups: (Group 1) Four groups of proteins and gene duplication related to cell adhesion, cell migration and hormone stimulation; (Group 2) actin cytoskeletal tissue, Ras signaling and three developmental processes (vascular, epidermal and ectodermal development) and self-regenerating-associated mesenchymal stem cell-derived microembellites and conditioned medium proteomes; (Group 3) overlapping of the corresponding process, cell redox homeostasis, Rho signaling, cell morphology, response to calcium ion, and mesenchymal stem cell-derived microembellites and conditioned media proteases related to collagen fiber tissue; (Group 4) mesenchymal stem cell-derived microsomal proteomes and self-regeneration-related geneticist middle cerebral cells involved in cell proliferation, epithelial development, protein folding and nucleic acid biosynthesis; (Group 5) duplication of mesenchymal stem cell-derived microembologic proteome and differentiation-related genes involved in peptide / receptor / sulfur metabolism and response to oxidative stress.

결과는 자기-재생-관련 과정(1군 및 2군) 및 다른 분화-관련 과정(1군 및 3군)을 통한 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 단백질 중 일부는 중간엽줄기세포-유래 미세소포체의 치료적 효과와 관련될 수 있는 중간엽줄기세포-유래 미세소포체 및 조건배지 프로테옴에 의해 공유되는 과정(1군, 2군 및 3군)을 포함함을 보여준다.
The results show that some of the mesenchymal stem cell-derived microembellifer proteins through self-regeneration-related processes (group 1 and 2) and other differentiation-related processes (group 1 and group 3) are mesenchymal stem cell- (Group 1, group 2, and group 3) that are shared by the mesenchymal stem cell-derived microembodermes and conditioned medium proteomes that may be associated with the therapeutic effect of the cells.

실험예 1. 마우스를 이용한 발모 촉진 효과 확인 Experimental Example 1. Confirmation of Hair Promotion Effect Using a Mouse

마우스(C57BL/6 mouse)(군 당 n=6)의 등가죽 부위를 제모크림(Veet, 옥시레킷벤키저, 대한민국)을 바르고 3분 후에 spatula로 긁어 털과 모근을 제거한 후 완충용액 PBS로 닦아내었다. 마우스의 피부 표피 부분 표면을 밀어 각질을 제거한 후 투명 테이프를 이용하여 추가로 각질을 제거하였다. The epidermal cream of the mouse (C57BL / 6 mouse) (n = 6 per group) was applied to hair removal cream (Veet, Oxy-Riccber Kiezer, Korea) and scraped with a spatula after 3 minutes to remove hair and hair roots and wipe with PBS . The surface of the epidermis of the skin of the mouse was pushed to remove the dead skin cells, and then the dead skin cells were further removed using a transparent tape.

실험군으로서, 미세소포체(microvesicles) 10 ㎍을 PBS에 희석하여 20㎕/injection site의 용량으로 각질을 제거한 표피 8 곳(injection site)에 주사(injection)하였다(day 0). 이때, injection site는 도 5의 day0 MVs 군의 빨간색으로 표시된 부분이다. As an experimental group, 10 쨉 g of microvesicles were diluted in PBS and injected (injection day) into 8 injection sites where the skin was removed at a dose of 20 / / injection site. At this time, the injection site is a red portion of the day 0 MVs group in FIG.

또한, 대조군으로 PBS 처리군(무처리 대조군) 및 미녹시딜(Minoxidil) 1% 처리군(양성 대조군)도 동시에 실험하였다. 상기 PBS 처리군은 미세소포체에서와 같은 방법으로 PBS를 표피 8곳에 주사(20㎕/injection site)하였으며, 미녹시딜(Minoxidil) 1% 처리군은 마우스의 각질을 제거한 후 7일동안 미녹시딜 50 ㎕를 도포한 후 흡수되도록 두들겨 주었다. As a control group, PBS treatment group (untreated control group) and minoxidil 1% treatment group (positive control group) were also tested at the same time. In the PBS-treated group, PBS (20 μl / injection site) was applied to the skin by the same method as in the case of the micro-vesicle. Minoxidil 1% treatment group was treated with 50 μl of minoxidil for 7 days And then beaten to absorb.

3일 후부터 각 군 간의 발모의 차이를 육안으로 관찰할 수 있었다. Three days later, the difference in the hair growth between the groups was visually observed.

본 발명에서 도 5은 처리 직후, 3일 후, 7일 후, 10일 후, 12일 후 및 14일 후의 결과를 사진 촬영한 것이다. 도 5에 나타난 바와 같이, 미세소포체를 도포한 마우스가 가장 높은 발모 효과를 가진 것으로 나타났다. In the present invention, Fig. 5 shows photographs of the results immediately after the treatment, 3 days, 7 days, 10 days, 12 days, and 14 days after treatment. As shown in Fig. 5, it was found that the mouse coated with micro-endoplasmic reticulum had the highest hair growth effect.

또한, 도 6 및 7은 각 군의 마우스의 상, 중, 하의 털을 뽑아 두께를 촬영한 사진 및 두께를 측정한 그래프로, 미세소포체 처리군의 털의 두께가 가장 두꺼운 것을 확인할 수 있다. 6 and 7 are graphs showing the photographs of the thicknesses of the mice taken from the top, the middle and the bottom of each group and the thicknesses thereof, and it can be seen that the thickness of the fur of the group treated with the micro-endoplasmic reticulum is the thickest.

또한, 도 8은 각 군의 마우스의 시간에 따른 털 재생 면적을 비교한 그래프로, 털 재생 면적은 Image J를 사용하여 측정하였다. 상기 그래프에서 세로축은 시간에 따른 마우스의 사진에서 흰 부분에 대한 까만 부분의 비율을 나타내는 것으로서, 값이 증가할수록 털 재생 효율이 높은 것을 의미한다. 상기 도 8에 나타난 바와 같이, 미세소포체 처리군에서의 털 재생 효율이 높으며, 이는 미세소포체 처리군에서 발모 효과가 높은 것을 확인할 수 있다. FIG. 8 is a graph comparing the hair regeneration area with time of each mouse of each group, and the hair regeneration area was measured using Image J. FIG. In the graph, the vertical axis represents the ratio of the black portion to the white portion in the photograph of the mouse with respect to time, and the higher the value, the higher the hair regeneration efficiency. As shown in FIG. 8, the hair regeneration efficiency in the micro-endoplasmic reticulum-treated group was high, indicating that the hair end effect was high in the micro-endoplasmic reticulum-treated group.

육안으로의 관찰이 끝난 0일차, 7일차, 14일차 마우스 중 일부를 희생시키고, 조직 염색 및 모낭 수 확인을 위해 조직을 확보하였다. Some of the 0 day, 7 day, and 14 day mice that had been observed with the naked eye were sacrificed and tissues were secured for tissue staining and hair follicle counting.

도 9는 각 군의 마우스의 등 피부 조직을 떼어내어, 헤마톡실린 및 에오신(H&E) 염색을 수행하여 관찰한 사진(40X)을 보여준다. 마우스에서 채취한 등 피부 조직의 파라핀 절편을 제조한 후, H&E 염색을 수행한 결과, 도 9에서 볼 수 있는 바와 같이, 이미 7일차에 미세소포체 처리군이 미녹시딜 처리군에 비해 현저히 증가된 모낭수를 나타내어, 신속한 발모 효과를 나타내는 것을 확인할 수 있다. 또한, 도 9의 14일차 사진에서도, 여전히 미녹시딜 처리군에 비해 미세소포체 처리군의 모낭수가 현저히 증가되어 있음을 확인할 수 있어, 미녹시딜에 비한 본 발명의 미세소포체의 발모효과가 현저히 우수함을 알 수 있다. FIG. 9 shows a photograph (40X) in which the dorsal skin tissues of each group of mice were detached and observed by performing hematoxylin and eosin (H & E) staining. As shown in FIG. 9, H & E staining of the paraffin sections of skin tissues, such as those taken from mice, showed that the micro-endoplasmic reticulum-treated group on day 7 had significantly increased hair follicle number , Indicating a quick hair growth effect. In addition, in the photograph of the 14th day in Fig. 9, it was also confirmed that the number of hair follicles in the group treated with the micro-endoplasmic reticulum still increased significantly compared to the group treated with minoxidil, and it was found that the hair microbial effect of the micro- .

도 10은 상기 H&E 염색을 수행한 등 피부 조직 전체의 염색 결과 사진으로서, 미세소포체 처리군을 보면 미세소포체의 주사로 인한 것으로 추측되는 두꺼워진 피하조직과 많아진 모낭 수를 확인할 수 있다. FIG. 10 is a photograph of the result of staining of the entire dermis tissue subjected to the H & E staining. As shown in FIG. 10, in the micro-endoplasmic reticulum treatment group, thickened hypodermis and increased number of hair follicles, which are thought to be caused by injection of micro-

한편, 도 11은 도 9의 사진에서 볼 수 있는 각 군의 마우스의 등 피부 조직에서 모낭의 수를 계수하여 시간에 따른 모낭의 수 변화를 그래프로 나타낸 것이다. 각 군당 마우스 수는 3마리였고, 이들 마우스 등 피부 조직 내 모낭수를 평균하여 나타낸 것이다. On the other hand, FIG. 11 is a graph showing changes in the number of hair follicles over time by counting the number of hair follicles in the dorsal skin tissue of each group of mice as seen in the photograph of FIG. The number of mice per group was 3, and the number of hair follicles in the skin tissues such as mice was averaged.

실험예 2. 창상 효과 확인Experimental Example 2. Confirmation of wound effect

6주령의 Sprague Dawley Rat를 2군으로 나누어 2% 농도의 isoflurane으로 호흡마취 시킨 후 등허리 부위 털을 전기 클리퍼와 제모크림을 사용하여 제거하였다. 노출된 부위를 70%의 에탄올로 소독하고, 6㎜ 바이옵시 펀치 (biopsy punch)로 창상을 유도한 후, 근육층이 손상되지 않도록 가위로 창상면을 둥글게 오려내었다. 2군의 동물에 각각 미세소포체 20㎍, PBS을 유도된 창상에 처리하여 주었다.Sprague Dawley rats at 6 weeks of age were divided into two groups and respiration was anesthetized with 2% isoflurane. The hair was removed with electric clipper and hair removal cream. The exposed area was disinfected with 70% ethanol, and wounded with a 6 mm biopsy punch. The top of the wound was scraped off with scissors to prevent damage to the muscle layer. Group 2 animals were treated with 20 쨉 g microspheres and PBS-induced wound dressing, respectively.

본 발명에서 도 12는 처리 직후, 3일, 7일, 10일, 12일, 14일후의 결과를 사진 촬영한 사진 및 창상의 면적을 측정한 그래프이다.In the present invention, FIG. 12 is a graph of photographs of photographed photographs of the results immediately after the treatment, 3 days, 7 days, 10 days, 12 days and 14 days, and areas of the wound surfaces.

도 12에 나타난 바와 같이, 미세소포체를 처리한 마우스가 우수한 창상 치료 효과를 가진 것으로 나타났다.
As shown in Fig. 12, the mice treated with the microfibrillar body showed excellent wound healing effect.

Claims (11)

줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하며,
상기 미세소포체는 세포로부터 탈락된 100 ㎚ 내지 1000 ㎚의 원형질막을 갖는 부산물인 탈모 예방 또는 발모 촉진용 약제학적 조성물.
A stem cell-derived micro-vesicle as an active ingredient,
Wherein the micro-vesicle is a by-product having a plasma membrane of 100 nm to 1000 nm removed from the cell, which promotes hair loss prevention or hair growth.
제 1 항에 있어서,
줄기세포는 중간엽줄기세포인 약제학적 조성물.
The method according to claim 1,
Wherein the stem cell is a mesenchymal stem cell.
제 1 항에 있어서,
줄기세포는 뇌, 간, 폐, 제대혈, 태아혈, 신장, 지방 조직, 태반, 양막 또는 골수로부터 유래한 중간엽줄기세포인 약제학적 조성물.
The method according to claim 1,
Wherein the stem cell is a mesenchymal stem cell derived from brain, liver, lung, umbilical cord blood, fetal blood, kidney, adipose tissue, placenta, amniotic membrane or bone marrow.
제 1 항에 있어서,
미세소포체는 (a) CD13, CD29, CD44, CD73 및 CD105 표면항원에 대하여 양성의 면역학적 특성; 및 (b) CD10 및 CD90에 대하여 가변(variable)의 면역학적 특성을 갖는 약제학적 조성물.
The method according to claim 1,
The microemboli includes (a) immunological characteristics positive for CD13, CD29, CD44, CD73 and CD105 surface antigens; And (b) have variable immunological properties for CD10 and CD90.
제 1 항에 있어서,
미세소포체는 PDGFRB(β-type Platelet-Derived Growth Factor Receptor), EGFR(Epidermal Growth Factor Receptor) 및 PLAUR(Plasminogen Activator, Urokinase Receptor)로 구성된 군으로부터 선택되는 최소 1종의 중간엽줄기세포 자기-재생관련 표면 수용체를 갖는 약제학적 조성물.
The method according to claim 1,
The micro-endoplasmic reticulum is at least one type of mesenchymal stem cell self-renewal selected from the group consisting of Plasmin-Derived Growth Factor Receptor (PDGFRB), Epidermal Growth Factor Receptor (EGFR) and Plasminogen Activator, Urokinase Receptor A pharmaceutical composition having a surface receptor.
제 1 항에 있어서,
미세소포체는 RRAS(Ras-related protein R-Ras)/NRAS(Neuroblastoma RAS viral oncogene homolog), MAPK1(Mitogen-activated Protein Kinase 1), GNA13/GNG12(Guanine Nucleotide-binding protein subunit Alpha-13/Guanine Nucleotide-binding protein G(I)/G(S)/G(O) subunit Gamma-12), CDC42(Cell Division Control protein 42 homolog) 및 VAV2(Guanine nucleotide exchange factor VAV2)로 구성된 군으로부터 선택되는 최소 1종의 신호전달 분자를 갖는 약제학적 조성물.
The method according to claim 1,
The micro-endoplasmic reticulum is composed of RRAS (Ras-related protein R-Ras) / NRAS (Neuroblastoma RAS viral oncogene homolog), MAPK1 (Mitogen-activated Protein Kinase 1), GNA13 / GNG12 (Guanine Nucleotide-binding protein subunit Alpha-13 / Guanine Nucleotide- at least one selected from the group consisting of binding protein G (I) / G (S) / G (O) subunit Gamma-12), CDC42 (Cell Division Control protein 42 homolog) and VAV2 (Guanine nucleotide exchange factor VAV2) A pharmaceutical composition having signaling molecules.
제 1 항에 있어서,
미세소포체는 FN1(Fibronectin), EZR(Ezrin), IQGAP1(IQ motif containing GTPase Activating Protein 1), CD47, 인테그린 및 LGALS1(Galectin-1)/LGALS3(Galectin-3)으로 구성된 군으로부터 선택되는 최소 1종의 세포부착 분자를 갖는 약제학적 조성물.
The method according to claim 1,
The micro-endoplasmic reticulum contains at least one species selected from the group consisting of FN1 (Fibronectin), EZR (Ezrin), IQGAP1 (IQ motif containing GTPase Activating Protein 1), CD47, Integrin and LGALS1 (Galectin-1) / LGALS3 Of a cell adhesion molecule.
제 1 항에 있어서,
미세소포체는 CD9, CD63, CD81, CD109, CD151, CD248 및 CD276으로 구성된 군으로부터 선택되는 최소 1종의 중간엽줄기세포-관련 항원을 갖는 약제학적 조성물.
The method according to claim 1,
The micro-vesicle has at least one mesenchymal stem cell-associated antigen selected from the group consisting of CD9, CD63, CD81, CD109, CD151, CD248 and CD276.
줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하며,
상기 미세소포체는 세포로부터 탈락된 100 ㎚ 내지 1000 ㎚의 원형질막을 갖는 부산물인 탈모 예방 또는 발모 촉진용 화장료 조성물.
A stem cell-derived micro-vesicle as an active ingredient,
Wherein the micro-vesicle is a by-product having a plasma membrane of 100 nm to 1000 nm removed from the cell, which promotes hair loss prevention or hair growth.
제 9 항에 있어서,
화장료는 헤어토닉, 헤어로션, 헤어크림, 헤어스프레이, 헤어무스, 헤어젤, 헤어컨디셔너, 헤어샴푸, 헤어린스, 헤어팩, 헤어트리트먼트, 눈썹발모제, 속눈썹발모제, 속눈썹영양제, 애완동물용 샴푸 또는 애완동물용 린스인 화장료 조성물.
10. The method of claim 9,
Cosmetics include hair tonic, hair lotion, hair cream, hair spray, hair mousse, hair gel, hair conditioner, hair shampoo, hair rinse, hair pack, hair treatment, eyebrow hair extender, eyelash hair extender, eyelash nourishment, pet shampoo or pet A cosmetic composition which is an animal rinse.
줄기세포 유래 미세소포체를 유효성분으로 포함하며,
상기 미세소포체는 세포로부터 탈락된 100 ㎚ 내지 1000 ㎚의 원형질막을 갖는 부산물인 창상 개선 또는 창상 치료용 약제학적 조성물.
A stem cell-derived micro-vesicle as an active ingredient,
Wherein the micro-vesicle is a byproduct having a plasma membrane of 100 nm to 1000 nm removed from the cell.
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