KR101489844B1 - 14-3-3 sigma null mouse, development of in vivo septic shock research model using the same and use of the same - Google Patents
14-3-3 sigma null mouse, development of in vivo septic shock research model using the same and use of the same Download PDFInfo
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Abstract
본 발명은 14-3-3 시그마 유전자 결손 마우스, 이를 이용한 인 비보 패혈증 연구모델 개발 방법 및 그 응용에 관한 것이다.The present invention relates to a 14-3-3 sigma gene-deficient mouse, a method for developing an in vivo septicemia study model and its application.
Description
본 발명은 14-3-3 시그마 유전자 결손 마우스, 이를 이용한 인 비보 패혈증 연구모델 개발 방법 및 그 응용에 관한 것이다.The present invention relates to a 14-3-3 sigma gene-deficient mouse, a method for developing an in vivo septicemia study model and its application.
선천면역 및 염증은 병원체에 대응하는 일차적 방어기전이다. 이러한 방어기전을 담당하는 선천면역 및 염증반응의 비정상적인 조절은 패혈증, 천식, 자가면역질환 등 다양한 면역관련 질병의 원인으로 알려져 있음. 또한 선천면역 및 염증반응의 해소가 정확히 이루어지지 않으면 지속적인 세포손상이 일어나게 되고 이는 궁극적으로 암, 당뇨와 같은 만성질환의 중요한 원인을 제공하게 된다.Congenital immunity and inflammation are the primary defense mechanisms against pathogens. Abnormal regulation of innate immune and inflammatory responses responsible for these defenses is known to be responsible for a variety of immune-related diseases such as sepsis, asthma, and autoimmune diseases. In addition, if the innate immune and inflammatory responses are not precisely resolved, persistent cell damage will occur and ultimately provide an important cause of chronic diseases such as cancer and diabetes.
따라서 선천면역 및 염증제어 기술은 병원체의 감염성 질환 및 면역질환뿐만 아니라 만성 염증성 질환의 치료 및 예방을 위한 핵심 기술이다.Thus, innate immunity and inflammation control technology is a key technology for the treatment and prevention of chronic inflammatory diseases as well as infectious diseases and immune diseases of pathogens.
최근의 연구동향은 염증반응을 크게 두 가지 형태로 구분하고 있다. 즉 선천면역등이 관여하는 therapeutic inflammation과 만성적 염증반응에 의한 pathological inflammation으로 구분하고 있다. 즉 병원체의 침입 등에 의한 방어기전으로서 세포에 도움이 되는 therapeutic inflammation과 지속적이고 반복적인 염증반응에 의한 세포손상이 유발되어 당뇨나 암 등을 유발하는 pathological inflammation으로 구분되어 연구되고 있다(Aggawal et al., Biochem Pharmacol. 2006).Recent research trends distinguish two types of inflammatory reactions. In other words, it is classified into therapeutic inflammation involving innate immunity and pathological inflammation caused by chronic inflammatory reaction. (Aggawal et al., 1986). In this study, we investigated the pathogen-induced inflammation of the cell, which is induced by inflammatory cells. , Biochem Pharmacol., 2006).
실제 이러한 연구방향은 세포손상 및 질환의 발병 측면에서 상당한 타당성이 있는 것으로서 연구자들에게 받아 들여지고 있다. 그리고 이러한 개념은 실제 염증반응의 엄격한 조절이 질병의 예방에 중요한 역할을 할 것이라는 것을 시사하고 있으며 따라서 염증반응을 해소하는 항염증 신호가 어떻게 조절되는가 또는 염증반응에서 항염증으로 shift되는 근본적인 key protein들은 무엇인가가 중요한 이슈가 되고 있다.In fact, this research direction has been accepted by researchers as having considerable relevance in terms of the pathogenesis of cell damage and disease. This concept suggests that strict regulation of the actual inflammatory response will play an important role in the prevention of disease, and therefore fundamental key proteins that are altered in response to the anti-inflammatory signal that resolves the inflammatory response or that are shifted from inflammatory to anti- Something is becoming an important issue.
한편 14-3-3 sigma는 14-3-3 family에 속하는 어댑터 기능의 단백질로서 다른 isoform과는 다르게 암 억제 활성을 지니는 것으로 알려져 있다. 또한 14-3-3 sigma는 Akt의 활성을 억제함으로써 암세포의 항암제 내성 활성을 완화시키는 것으로 알려져 있다.14-3-3 sigma is an adapter function protein belonging to the 14-3-3 family. It is known that 14-3-3 sigma has cancer-inhibiting activity unlike other isoforms. It is also known that 14-3-3 sigma mitigates the anticancer drug resistance activity of cancer cells by inhibiting the activity of Akt.
[관련 선행특허 문헌][Related Prior Art Patent Literature]
유럽 특허 공개번호 1 127 942A1European Patent Publication No. 1 127 942A1
본 발명은 상기의 필요성에 의하여 안출된 것으로서 본 발명의 목적은 인 비보 패혈증 연구 모델을 개발하는 것이다. The present invention has been made in view of the above needs, and an object of the present invention is to develop a research model of in vivo sepsis.
상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명은 14-3-3 시그마 유전자를 결손시켜서 패혈증 치료용 형질전환 마우스를 제조하는 방법을 제공한다.In order to accomplish the above object, the present invention provides a method for producing a transgenic mouse for the treatment of sepsis by defeating the 14-3-3 sigma gene.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 14-3-3 시그마 유전자는 서열번호 1의 염기서열을 가지는 것이 바람직하나 해당 유전자에 하나 이상의 치환, 결손, 역위 및/또는 전좌 돌연변이를 유도하여 본 발명이 목적하고자 하는 효과를 달성하는 모든 돌연변이 유전자도 본 발명의 범위에 포함된다.In one embodiment of the present invention, the 14-3-3 sigma gene preferably has the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1, but it is preferable that the 14-3-3 sigma gene has at least one substitution, deletion, inversion and / or translocation mutation in the gene, All mutant genes that achieve the desired effect are also included within the scope of the present invention.
또한 본 발명은 14-3-3 시그마 유전자가 결손된 패혈증 치료용 형질전환 마우스를 제공한다.The present invention also provides a transgenic mouse for treating sepsis in which a 14-3-3 sigma gene is defective.
또한 본 발명은 테스트 물질로 14-3-3 시그마 유전자가 결손된 형질전환 마우스를 처리하는 단계; 및 상기 테스트 물질의 존재 하에서 상기 형질전환 마우스의 생존률을 측정하는 단계를 포함하며, 이때 상기 테스트 물질이 존재하지 않는 경우와 비교하여 테스트 물질이 존재하는 경우의 상기 형질전환 마우스의 생존률이 증가하는 경우에 상기 테스트 물질이 패혈증 치료용 후보 물질임을 시사하는 것을 포함하는 패혈증 치료용 후보 물질을 스크리닝하는 방법을 제공한다.The present invention also relates to a method for screening a 14-3-3 sigma gene for a transgenic mouse, And measuring the survival rate of the transgenic mouse in the presence of the test substance, wherein when the survival rate of the transgenic mouse is increased in the presence of the test substance as compared with the case where the test substance is not present Wherein the test substance is a candidate substance for treating septicemia.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 후보물질은 천연물 유래 추출물 또는 화합물인 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.In one embodiment of the present invention, the candidate substance is preferably an extract or compound derived from a natural product, but is not limited thereto.
본 발명의 다른 구현예에 있어서, 상기 방법은 후보물질 처리 전에 형질전환 마우스에 리포폴리사카라이드(LPS)를 처리하는 것을 더욱 포함하는 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.In another embodiment of the present invention, the method further comprises, but is not limited to, treating the transgenic mice with lipopolysaccharide (LPS) prior to candidate treatment.
또한 본 발명은 염증 치료용 후보 물질을 스크리닝하는 방법으로서,테스트 물질로 14-3-3 시그마 유전자가 결손된 형질전환 마우스를 처리하는 단계; 및 상기 테스트 물질의 존재 하에서 상기 형질전환 마우스의 염증성 사이토카인발현률을 측정하는 단계를 포함하며, 이때 상기 테스트 물질이 존재하지 않는 경우와 비교하여 테스트 물질이 존재하는 경우의 상기 형질전환 마우스의 염증성 사이토카인 발현률이 감소하는 경우에 상기 테스트 물질이 염증 치료용 후보 물질임을 시사하는 것을 포함하는 염증 치료용 후보 물질을 스크리닝하는 방법을 제공한다.The present invention also provides a method for screening candidate substances for the treatment of inflammation, comprising the steps of: treating a transgenic mouse lacking the 14-3-3 sigma gene as a test substance; And measuring the expression level of the inflammatory cytokine of the transgenic mouse in the presence of the test substance, wherein the inflammatory cytokine expression level of the transgenic mouse in the presence of the test substance as compared to the absence of the test substance Wherein the test substance is a candidate substance for treating inflammation when the expression level of the cancer is decreased.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 염증성 사이토카인은 인터루킨1-베타(IL-1beta), IL-6 및 싸이클로옥시게나제(Cycloxygenase)-2로 구성된 군으로부터 선택된 사이토카인인 것이 바람직하고, 싸이클로옥시게나제(Cycloxygenase)-2인것이 더욱 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.In one embodiment of the invention, the inflammatory cytokine is preferably a cytokine selected from the group consisting of IL-1beta, IL-6 and Cycloxygenase-2, More preferably Cycloxygenase-2, but is not limited thereto.
본 발명의 다른 구현예에 있어서, 상기 염증성 사이토카인 발현률은 mRNA 또는 조직면역염색학적 방법에 의하여 측정하는 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.In another embodiment of the present invention, the expression level of the inflammatory cytokine is preferably measured by mRNA or a tissue immunostaining method, but is not limited thereto.
또한 본 발명은 14-3-3 시그마 유전자가 결손된 형질전환 마우스를 포함하는 패혈증 치료용 키트를 제공한다.The present invention also provides a kit for treating sepsis comprising a transgenic mouse in which a 14-3-3 sigma gene is deficient.
또 본 발명은 14-3-3 시그마 유전자가 결손된 형질전환 마우스를 포함하는 염증성 사이토카인 분석용 키트를 제공한다.The present invention also provides a kit for the analysis of inflammatory cytokines including a transgenic mouse in which a 14-3-3 sigma gene is deleted.
본 발명의 마우스에 대해서 추가적으로 설명한다.The mouse of the present invention will be further described.
본 발명은 14-3-3 시그마 폴리펩타이드가 기능적으로 불활성화된 하나 이상의 세포를 포함한 14-3-3 시그마 넉아웃 포유류가 제공된다.본 발명의 14-3-3 시그마 넉아웃은 14-3-3 시그마 유전자의 기능적 분열 또는 14-3-3 시그마 유전자의 기능 돌연변이의 하나 이상의 손실을 포함하고, 14-3-3 시그마 유전자의 삭제 또는 교체를 포함한 유전자의 일부분의 결과로서 유발된다. 돌연변이는 단일 점돌연변이를 포함하고, 14-3-3 시그마의 코딩 또는 비-코딩 구역을 타겟한다.바람직하게는, 이러한 넉아웃 동물은 돼지, 양 또는 설치류와 같은 비-인간 포유류이다. 더욱 바람직하게는, 넉아웃 동물은 마우스 또는 래트이다. 이러한 넉아웃 동물은 14-3-3 시그마의 작용제 및/또는 길항제를 확인하는 스크리닝 절차에 이용될 뿐만 아니라 생체 내에서 질병 치료제로서 그들의 효능에 대해 시험하는데 이용된다.The present invention provides a 14-3-3 sigma knockout mammal comprising one or more cells in which the 14-3-3 sigma polypeptide is functionally inactivated. The 14-3-3 sigma knockout of the present invention is a 14-3-3 sigma knockout mammal, The functional division of the -3 sigma gene or the loss of one or more functional mutations of the 14-3-3 sigma gene and is caused as a result of a portion of the gene including deletion or replacement of the 14-3-3 sigma gene. Mutations include single point mutations and target coding or non-coding regions of 14-3-3 sigma. Preferably, such knockout animals are non-human mammals such as pigs, sheep or rodents. More preferably, the knockout animal is a mouse or rat. These knockout animals are used not only for screening procedures to identify agonists and / or antagonists of 14-3-3 sigma, but also for testing their efficacy as disease treatments in vivo.
비-인간 넉아웃 동물을 생성하는 상세한 방법은 하기에 더욱 상세히 기술된다. 형질전환 유전자 컨스트럭트는 넉아웃 포유류를 생성하기 위해 동물의 생식세포로 도입될 수 있다. 예를 들어 하나 또는 여러 개의 상기 컨스트럭트는 표준 형질전환 기술에 의해 포유류 배아의 게놈 내로 도입된다.예시적 실시태양에서 본 발명의 넉아웃 비-인간 동물은 비-인간 동물의 생식세포 내로 전이유전자를 도입시킴으로서 생성된다.Detailed methods for generating non-human knockout animals are described in further detail below. Transgenic constructs can be introduced into animal germ cells to produce knockout mammals. For example, one or more of the constructs are introduced into the genome of a mammalian embryo by standard transduction techniques. In an exemplary embodiment, the knockout non-human animal of the invention is transfected into the germ cells of a non- Lt; / RTI >
다양한 발단 단계에서의 배아 타겟 세포는 전이유전자를 도입시키는데 이용돌 수 있다. 다른 방법들은 배아 타겟 세포의 발달 단계에 따라 다르게 이용된다.Embryonic target cells at various stages of initiation can be used to introduce transgenes. Other methods are used differently depending on the stage of development of embryonic target cells.
본 발명을 실행하는데 이용된 동물의 특정한 라인(들)은 일반적인 양호한 건강, 양호한 배아 생산량, 배아 내에서의 양호한 전핵 시정도 및 양호한 생식 적합성에 대해 선택된다. 더욱이 일배체형은 유의적인 인자이다.The particular line (s) of the animal used to practice the present invention is selected for general good health, good embryo production, good prothrombin time in the embryo, and good reproductive fitness. Moreover, haplotype is a significant factor.
배아 내로의 전이유전자의 도입은 예를 들어 현미주사, 일렉트로포레이션 또는 리포펙션과 같은 당분야에 알려진 방법에 의해 달성될 수 있다. 예를 들어 14-3-3 시그마 전이유전자는 수정된 포유류 수정란(들)의 전핵 내로 컨스트럭트의 현미주사에 의해 포유류에 도입되어 컨스트럭트의 하나 이상의 카피가 발달하는 포유류(들)의 세포 내에서 유지되게 할 수 있다.Introduction of a transgene into an embryo can be accomplished by methods known in the art, such as, for example, injection, electroporation or lipofection. For example, a 14-3-3 sigma transgene may be introduced into mammals by microscopic injection of constructs into the nucleus of the modified mammalian embryo (s), and the cells of the mammalian (s) in which one or more copies of the construct are developed Or the like.
전이유전자 컨스트럭트의 수정란 내로의 도입 후 수정란은 다양한 시간 동은 시험관 내에서 인큐베이트되거나 대리 숙주 또는 둘 모두 내로 재이식된다. 성숙기로의 시험관 내에서의 인큐베이션은 본 발명의 범위 내에 있다. 일반적인 방법의 하나는 종에 따라 다르게 약 1∼7일간 시험관 내에서 배아를 인큐베이트한 후 대리 숙주 내로 이들을 재이식하는 것이다.After introduction of the transgene construct into the fertilized egg, the embryos are re-implanted into the in vitro fertilized or surrogate host, or both, for various periods of time. Incubation in vitro into mature phase is within the scope of the present invention. One common method is to incubate the embryos in vitro for about 1 to 7 days, depending on the species, and then reimplant them into the surrogate host.
형질전환적으로 조작된 배아의 자손은 조직 세그먼트의 서던 블럿 분석에 의해 컨스트럭트 존재에 대해 시험될 수 있다.외생적 클론된 컨스트럭트의 하나 이상의 카피가 넉아웃 배아와 같은 게놈 내로 통합되어 안정하게 유지되면 형질전환적으로 추가된 컨스트럭트를 지닌 영구적인 넉아웃 포유류 라인을 수립하는 것이 가능하다.The progeny of the transgenically engineered embryo can be tested for the presence of the construct by Southern blot analysis of the tissue segment. One or more copies of the exogenously cloned construct are integrated into the same genome as the knockout embryo Once stable, it is possible to establish a permanent knockout mammalian line with transgenically added constructs.
넉아웃 변호된 포유류의 새끼는 출생 후 자손 게놈 내로 컨스트럭트의 통합에 대해 분석될 수 있다. 바람직하게는, 본 분석은 자손으로부터의 염색체 물질 상에 원하는 재조합 단백질 생성물 또는 그의 세그먼트를 코드하는 DNA 서열에 상응하는 프로프를 하이브리다이즈함으로서 달성된다. 그의 게놈 내에 컨스트럭트의 적어도 하나 이상의 카피를 포함한 것으로 나타난 이들 포유류 자손은 성숙기로 생장된다.Knockout defended mammalian offspring can be analyzed for the integration of the construct into the postnatal offspring genome. Preferably, the assay is accomplished by hybridizing a probe corresponding to the DNA sequence encoding the desired recombinant protein product or segment thereof on the chromosomal material from the offspring. These mammalian offspring, which appear to contain at least one copy of the construct in their genome, are mature.
본 발명의 목적을 위해 접합체는 완전한 생물로 발달할 수 있는 이배체 세포의 형태가 실질적으로 된다. 일반적으로 접합체는 생식체 또는 생식체들로부터 2개의 반수체 핵의 융합에 의해 자연적으로 또는 인공적으로 형성된 핵을 포함한 난으로 구성될 것이다. 따라서 생식체 핵은 자연적으로 양립가능한 것 즉, 분화를 수행하고 기능적인 생물체로 발달할 수 있는 생존 가능한 접합체를 유발하는 것이어야 한다. 일반적으로 정배수성 접합체가 바람직하다. 이수성 접합체가 수득되면 염색체 수는 생식체 기원의 생물체의 정배수성 수에 대해 하나 이상까지 변화되지 않아야 한다.유사한 생물학적 고찰에 더하여 물리적인 고찰도 접합체의 핵 또는 접합체 핵의 일부를 형성하는 유전 물질에 첨가될 수 있는 외생적 유전 물질의 양(즉, 부피)을 좌우한다. 어떠한 유전 물질도 제거되지 않으면 첨가될 수 있는 외생적 유전 물질의 양은 물리적으로 분열되지 않는 한 흡수도리 수 있는 양까지로 제한된다. 일반적으로 삽입되는 외생적 유전 물질의 부피는 약 10 피코리터를 초과하지 않을 것이다. 첨가의 물리적 효과는 접합체를 물리적으로 파괴할 정도로 크지 않아야 한다. 수득되는 접합체의 외생적 유전 물질을 포함한 유전 물질은 기능성 생물체로 분화 및 발달을 생물학적으로 개시하고 유지시킬 수 있어야 하기 때문에 DNA 서열의 수 및 다양성의 생물학적 제한은 특정한 접합체 및 외생적 유전 물질의 기능에 따라 달라질 것이고, 당업자에게 용이하게 명백해질 것이다.For the purposes of the present invention, the conjugate is substantially in the form of diploid cells that can develop into complete organisms. In general, the conjugate will consist of eggs containing naturally occurring or artificially formed nuclei by fusion of two haploid nuclei from the gonads or gonads. Thus, the gonadal nuclei should be naturally compatible, that is, to induce viable zygotes capable of differentiation and development into functional organisms. In general, an electrophysiologic conjugate is preferred. When an isomeric conjugate is obtained, the number of chromosomes should not be altered by more than one to about the number of the organisms of genital origin. In addition to similar biological considerations, physical considerations may also apply to genetic material that forms part of the nucleus or junction nucleus of the conjugate (I.e., volume) of exogenous genetic material that can be added. Unless any genetic material is removed, the amount of exogenous genetic material that can be added is limited to an amount that can be absorbed unless physically disrupted. Generally, the volume of exogenous genetic material that is inserted will not exceed about 10 picoliters. The physical effect of the addition should not be large enough to physically destroy the conjugate. Since the genetic material, including the exogenous genetic material of the resulting conjugate, must be biologically capable of initiating and maintaining differentiation and development into a functional organism, the biological limitations of the number and diversity of the DNA sequence will depend on the function of the particular zygotic and exogenous genetic material And will be readily apparent to those skilled in the art.
접합체 내로 첨가되는 전이유전자 컨스트럭트 카피 수는 첨가되는 외생적 유전 물질의 총량에 따라 달라지고, 유전적 형질전환이 발생할 수 있게 하는 양이 될 것이다. 단지 이론적으로는 하나의 카피가 필요하다; 그러나 일반적으로 하나의 카피가 기능적임을 보증하기 위해 예를 들어 1,000∼20,000개 카피의 전이유전자 컨스트럭트와 같은 많은 카피가 이용된다.The number of transgene construct copies added into the conjugate will depend on the total amount of exogenous genetic material added and will be an amount that allows genetic transformation to occur. Theoretically, one copy is required; In general, however, a large number of copies are used, such as, for example, 1,000-20,000 copies of transgene constructs to ensure that one copy is functional.
본 발명에 있어서, 외생적 DNA 서열의 표현형적 발현을 증가시키기 위해 각각의 삽입된 외생적 DNA 서열의 하나 이상의 기능성 카피를 지니는 것이 이로울 것이다.In the present invention, it would be advantageous to have one or more functional copies of each inserted exogenous DNA sequence to increase the phenotypic expression of exogenous DNA sequences.
핵 유전 물질 내로의 외생적 유전 물질의 첨가를 가능하게 하는 기술은 세포, 핵막 또는 다른 존재하는 세포성 또는 유전성 구조물을 파괴하지 않는 한 이용될 수 있다. 외생적 유전 물질은 현미주사에 의해 핵 유전 물질 내로 우선적으로 삽입된다.Techniques that enable the addition of exogenous genetic material into the nuclear genetic material can be used as long as they do not destroy cells, nuclear membranes, or other existing cellular or dielectric constructs. Exogenous genetic material is preferentially inserted into the nuclear genetic material by microscopic injection.
세포 및 세포 구조물의 현미주사는 알려져 있고 당분야에 이용된다.Microscopic injections of cells and cell structures are known and used in the art.
재이식은 표준 방법을 이용하여 달성된다. 일반적으로 대리 숙주는 마취되고, 배아는 난관 내로 삽입된다. 특정 숙주 내로 이식되는 배아의 수는 종에 따라 달라질 것이나, 일반적으로 자연적으로 생성하는 종의 자손 수에 비교가능할 것이다.Reimplantation is achieved using standard methods. Generally, the surrogate host is anesthetized and the embryo is inserted into the fallopian tubes. The number of embryos transplanted into a particular host will vary from species to species, but will generally be comparable to the number of offspring of naturally occurring species.
대리 숙주의 넉아웃 자손은 적당한 방법에 의해 전이유전자의 존재 및/또는 발현에 대해 스크린된다. 스크리닝은 전이유전자의 적어도 일부분에 상보적인 프로브를 이용한 서던 블럿 또는 노던 블럿 분석에 의해 달성된다. 전이유전자에 의해 인코드된 단백질에 대한 항체를 이용한 웨스턴 블럿 분석은 전이유전자 생성물의 존재에 대한 스크리닝 방법에 대안적으로 또는 추가적으로 이용된다. 일반적으로, DNA는 말단 조직으로부터 제조되고 전이유전자에 대해 서던 분석 또는 PCR에 의해 분석된다. 대안으로, 어떠한 조직 또는 세포도 이러한 분석에 이용되더라도 가장 높은 수준에서 전이유전자를 발현하는 것으로 여겨지는 조직 또는 세포가 서던 분석 또는 PCR을 이용하여 전이유전자의 존재 및 발현에 대해 시험된다.The knockout offspring of the surrogate host are screened for the presence and / or expression of the metastatic gene by a suitable method. Screening is accomplished by Southern blot or Northern blot analysis using a probe complementary to at least a portion of the transgene. Western blot analysis using an antibody against a protein encoded by a transgene gene is alternatively or additionally used in screening methods for the presence of a transgene product. Generally, DNA is prepared from end tissues and analyzed by Southern analysis or PCR for the transgene. Alternatively, tissues or cells that are considered to express the transgene at the highest level, even if any tissue or cell is used for this assay, are tested for the presence and expression of the transgene using Southern analysis or PCR.
전이유전자의 존재를 평가하는 대안적인 또는 부가적인 방법은 제한없이 효소 및/또는 면역학적 분석과 같은 생화학적 분석, 특정한 마커 또는 효소 활성에 대한 조직학적 염색, 플로우 시토메트리 분석(flow cytometric analysis) 등을 포함한다. 또한 혈액의 분석이 혈액 내 전이유전자 생성물의 존재를 검출할 뿐만 아니라 다양한 형태의 혈액 세포 및 다른 혈액 성분의 수준 상에서의 전이유전자의 효과를 평가하는데 유용하다.Alternative or additional methods for assessing the presence of a transgene include, but are not limited to, biochemical assays such as enzymatic and / or immunological assays, histological staining for specific marker or enzyme activities, flow cytometric analysis, And the like. In addition, blood analysis is useful not only for detecting the presence of transgene products in the blood, but for evaluating the effects of transgene on the level of various types of blood cells and other blood components.
또한 레트로바이러스 감염이 비-인간 동물 내로 전이유전자를 도입시키는데 이용될 수 있다. 발달성 비-인간 배아는 배반포 단계로 시험관 내에서 배양될 수 있다. 이러한 시간 동안 할구는 레트로바이러스 감염에 대한 타겟이 될 수 있다(Jaenich, R. (1976) PNAS 73:1260-1264). 할구의 효과적인 감염은 투명대를 제거하는 효소 처리에 의해 수득된다(Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, 1986). 전이유전자를 도입하는데 이용되는 바이러스 벡터 시스템은 일반적으로 전이유전자를 운반하는 복제-결함성 레트로바이러스이다(Jahner et al. (1985) PNAS 82:6927-6931; Van der Putten et al. (1985) PNAS 82:6148-6152). 트랜스펙션은 바이러스-생성 세포의 단분자층 상에서 할구를 배양함으로서 용이하고 효과적으로 수득된다(Van der Putten, supra; Stewart et al. (1987) EMBO J. 6:383-388).Retroviral infection can also be used to introduce a transgene into a non-human animal. Developmental non-human embryos can be cultured in vitro in blastocyst stage. During this time, the haploid may be a target for retroviral infection (Jaenich, R. (1976) PNAS 73: 1260-1264). Effective infections of the bladder are obtained by enzymatic treatment to remove the zona pellucida (Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, 1986). The viral vector system used to introduce the transgene is generally a replication-defective retrovirus that carries a transgene (Jahner et al. (1985) PNAS 82: 6927-6931; Van der Putten et al. 82: 6148-6152). Transfection is easily and efficaciously obtained by culturing the cells on monolayers of virus-producing cells (Van der Putten, supra; Stewart et al. (1987) EMBO J. 6: 383-388).
대안으로 감염은 후기 단계에서 수행될 수 있다. 바이러스 또는 바이러스-생성 세포는 할구 내로 주입될 수 있다(Jahner et al. (1982) Nature 298:623-628). 통합은 형질전환 비-인간 동물을 형성한 세포의 서브세트 내에서만 발생하기 때문에 대부분의 조주물은 전이유전자에 대해 모자이크일 것이다. 또한 주조물은 일반적으로 자손 내에서 분리될 게놈 내의 다른 위치에서 전이유전자의 다양한 레트로바이러스 감염을 포함한다. 더욱이 잉태중간 배아의 자궁내 레트로바이러스 감염에 의해 생식세포 내로 전이유전자를 도입하는 것이 가능하다(Jahner et al. (1982) 상동).Alternatively, infection can be performed at a later stage. Virus or virus-producing cells can be injected into the recipient (Jahner et al. (1982) Nature 298: 623-628). Since integration occurs only within a subset of the cells that form the transgenic non-human animal, most crude castings will be mosaic of the transgene. The casting also typically includes a variety of retroviral infections of the metastatic gene at other locations within the genome to be isolated within the offspring. Moreover, it is possible to introduce a transgene into germ cells by intrauterine retroviral infection of the gestational middle embryo (Jahner et al. (1982) Homology).
전이유전자 도입을 위한 타겟 세포의 세 번째 형태는 배아 줄기 세포(ES)이다. ES 세포는 시험관 내에서 배양되고 배아로 융합된 이식-전 배아로부터 수득된다(Evans et al. (1981) Nature 292:154-156; Bradley et al. (1984) Nature 309:255-258; Gossler et al. (1986) PNAS 83: 9065-9069; and Robertson et al. (1986) Nature 322:445-448). 전이유전자는 DNA 트랜스펙션 또는 레트로바이러스-매개 형질도입에 의해 ES 세포 내로 효과적으로 도입될 수 있다. 이후,이러한 형질전환된 ES 세포는 비-인간 동물로부터의 배반포와 결합된다. 이후, ES 세포는 배아로 이주되고 수득되는 키메라 동물의 생식세포에 기여한다. Jaenisch, R. (1988) Science 240:1468-1474 참조.A third type of target cell for transgene transfer is embryonic stem cells (ES). ES cells are obtained from pre-implantation embryos cultured in vitro and fused to embryos (Evans et al. (1981) Nature 292: 154-156; Bradley et al. (1984) Nature 309: 255-258; Gossler et al. (1986) PNAS 83: 9065-9069; and Robertson et al. (1986) Nature 322: 445-448). The transgene can be effectively introduced into ES cells by DNA transfection or by retrovirus-mediated transduction. These transformed ES cells are then combined with blastocysts from non-human animals. The ES cells then migrate to the embryo and contribute to the germ cells of the resulting chimeric animal. Jaenisch, R. (1988) Science 240: 1468-1474.
본 발명의 실행에서 특별하게 기재되어 있지 않는 한 당업자의 능력 내에 있는 화학, 분자생물학, 미생물학, 재조합 DNA 및 면역학의 통상적인 기술을 이용할 것이다. 예를 들어 J. Sambrook, E. F. Fritsch, and T. Maniatis, 1989, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Second Edition, Books 1-3, Cold Spring Harbor Laboratory Press; Ausubel, F. M. et al.(1995 and periodic supplements; Current Protocols in Molecular Biology, ch. 9, 13, and 16, John Wiley & Sons,New York, N.Y.); B. Roe, J. Crabtree, and A. Kahn, 1996, DNA Isolation and Sequencing: Essential Techniques,John Wiley & Sons; J. M. Polak and James O'D. McGee, 1990, In Situ Hybridization: Principles and Practice;Oxford University Press; M. J. Gait (Editor), 1984, Oligonucleotide Synthesis: A Practical Approach , Irl Press;and, D. M. J. Lilley and J. E. Dahlberg, 1992, Methods of Enzymology: DNA Structure Part A: Synthesis andUnless specifically stated otherwise in the practice of the present invention, conventional techniques of chemistry, molecular biology, microbiology, recombinant DNA and immunology will be within the skill of those skilled in the art. For example, J. Sambrook, E. F. Fritsch, and T. Maniatis, 1989, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Second Edition, Books 1-3, Cold Spring Harbor Laboratory Press; Ausubel, F. M. et al. (1995 and periodic supplements; Current Protocols in Molecular Biology, ch. 9, 13, and 16, John Wiley & Sons, New York, N. Y.); B. Roe, J. Crabtree, and A. Kahn, 1996, DNA Isolation and Sequencing: Essential Techniques, John Wiley & J. M. Polak and James O'D. McGee, 1990, In Situ Hybridization: Principles and Practice, Oxford University Press; M. J. Gait (Editor), 1984, Oligonucleotide Synthesis: A Practical Approach, Irl Press, and D. M. J. Lilley and J. E. Dahlberg, 1992, Methods of Enzymology: DNA Structure Part A: Synthesis and
Physical Analysis of DNA Methods in Enzymology, Academic Press 참조. See Physical Analysis of DNA Methods in Enzymology, Academic Press.
이하 본 발명을 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described.
본 발명에서는 제작한 14-3-3 sigma 유전자 결손 마우스가 패혈증 유발 인자인 lipopolysaccharide (LPS)에 대해 정상 마우스보다 패혈증 관련 반응 민감도가 매우 높음을 증명하였다.In the present invention, the 14-3-3 sigma gene-deficient mice produced by the present invention showed a higher sensitivity for sepsis-related response to lipopolysaccharide (LPS), which is a cause of sepsis, than normal mice.
이하 본 발명을 상세하게 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail.
14-3-3 sigma wild type (14-3-3 s 14-3-3 sigma wild type (14-3-3 s +/++ / + )과 14-3-3 sigma null (14-3-3 s ) And 14-3-3 sigma null (14-3-3 s -/-- / - ) 마우스의 septic shock에 대한 민감도 분석Sensitivity analysis of mouse septic shock
Septic shock을 유발하는 lipopolysaccharide (LPS)를 3 mg/kg과 5 mg/kg 양으로 14-3-3 s +/+과 14-3-3 s -/- 마우스에 주입한 후, 6일 동안 24시간 간격으로 septic shock (패혈성 쇼크)에 의한 survival 정도를 분석하였다. 마우스는 그룹별로 6마리씩 사용하였다. 14-3-3 s +/+ 마우스는 3 mg/kg의 LPS 주입 조건에서 5일 후 83.4%의 생존율을 보였지만 14-3-3 s -/- 마우스의 경우, 주입 1일 후 83.4%의 생존율을 나타냈고 2 일후 50%, 3일후에는 0%의 생존율을 나타냈음 (도면 1). 5 mg/kg 양으로 LPS를 주입한 경우, 14-3-3 s +/+ 마우스는 1일 후 66.7%, 4일 후, 33.3%의 생존율을 보였고 14-3-3 s -/- 마우스의 경우, 주입 1일 후 16.7%의 생존율을 나타냈고 2 일후에는 0%의 생존율을 나타냈다(도면 1). 이러한 결과로부터 14-3-3 s 유전자가 결손 마우스가 septic shock에 대해 매우 낮은 생존율을 보임을 알 수 있다. Lipopolysaccharide (LPS), which induces a septic shock, was injected into 14-3-3 s + / + and 14-3-3 s - / - mice in the amounts of 3 mg / kg and 5 mg / The survival rate of septic shock was analyzed at time intervals. Six mice were used for each group. The 14-3-3 s + / + mouse Survival was 83.4% at 5 days after LPS injection of 3 mg / kg, but survival rate of 83.4% at 14 days after injection was 14.3-3 s - / - mice. Showed 0% survival rate (Figure 1). When LPS was injected at a dose of 5 mg / kg, the survival rate of 14-3-3 s + / + mice was 66.7% after 1 day, 33.3% after 4 days, and 14-3-3 s - / - mice , The survival rate was 16.7% after 1 day of injection and 0% after 2 days (FIG. 1). These results suggest that 14-3-3 s gene deficient mice have a very low survival rate for septic shock.
14-3-3 sigma wild type (14-3-3 s 14-3-3 sigma wild type (14-3-3 s +/++ / + )과 14-3-3 sigma null (14-3-3 s ) And 14-3-3 sigma null (14-3-3 s -/-- / - ) 마우스의 septic shock에 의한 조직 내 염증성 사이토카인 발현수준 분석) Expression levels of inflammatory cytokines in tissues by septic shock in mice
Septic shock을 유발하는 lipopolysaccharide (LPS)를 1 mg/kg과 3 mg/kg 양으로 14-3-3 s +/+과 14-3-3 s -/- 마우스에 주입하고 6 시간 후에 폐 조직으로부터 염증성 사이토카인인 interleukin1-beta (IL-1beta), IL-6 및 Cycloxygenase-2 (COX-2)의 mRNA 수준을 비교하였다. 14-3-3 s +/+ 마우스와 비교하여 14-3-3 s -/- 마우스에서 염증성 사이토카인의 발현이 현저하게 높음을 확인다(도면 2). 특별히, COX-2의 발현 차이는 매우 현저하였다. 또한 동일조건의 실험 마우스 비장으로부터 COX-2의 발현을 조직면역염색학적 방법으로 비교 분석한 결과에서도 동일한 차이를 확인하였다(도면 2). Lipopolysaccharide (LPS), which induces septic shock, was injected into 14-3-3 s + / + and 14-3-3 s - / - mice in the amounts of 1 mg / kg and 3 mg / kg, MRNA levels of the inflammatory cytokines interleukin1-beta (IL-1beta), IL-6 and Cycloxygenase-2 (COX-2) were compared. The expression of inflammatory cytokines was significantly higher in 14-3-3 s - / - mice compared to 14-3-3 s + / + mice (FIG. 2). In particular, the difference in the expression of COX-2 was remarkable. Also, the same difference was confirmed in the results of comparative analysis of expression of COX-2 from the mouse spleen of the same condition by tissue immunostaining (FIG. 2).
14-3-3 sigma wild type (14-3-3 s 14-3-3 sigma wild type (14-3-3 s +/++ / + )과 14-3-3 sigma null (14-3-3 s ) And 14-3-3 sigma null (14-3-3 s -/-- / - ) 마우스의 septic shock에 의한 혈청 내 염증성 사이토카인 생성 양 분석) Analysis of inflammatory cytokine production in serum by septic shock in mice
Septic shock을 유발하는 lipopolysaccharide (LPS)를 3 mg/kg 양으로 14-3-3 s +/+과 14-3-3 s -/- 마우스에 주입하고 0, 2, 6, 12시간 후에 혈청으로부터 염증성 사이토카인인 interleukin1-beta (IL-1beta), IL-6 및 Cycloxygenase-2 (COX-2)의 양을 ELISA assay 방법으로 비교분석하였다. 14-3-3 s +/+ 마우스와 비교하여 14-3-3 s -/- 마우스에서 염증성 사이토카인의 생성 양이 현저하게 높음을 확인하였다(도면 3).Lipopolysaccharide (LPS), which induces a septic shock, was injected into the 14-3-3 s + / + and 14-3-3 s - / - mice in a dose of 3 mg / kg, and after 0, 2, (IL-1beta), IL-6 and Cycloxygenase-2 (COX-2) were measured by ELISA assay. The production of inflammatory cytokines in 14-3-3 s - / - mice was significantly higher than that of 14-3-3 s + / + mice (FIG. 3).
이러한 실험 결과로부터 14-3-3 s -/- 마우스는 LPS에 의해 유도되는 패혈성 쇼크에 매우 민감하게 반응함을 알 수 있었다. 즉, 14-3-3 s 유전자의 발현 시스템의 이상으로 인해 유전자 발현이 되지 않으면 패혈증 쇼크와 같은 염증반응에 대처하는 생체조절 시스템에 문제가 생기게 되고 패혈증 유발의 중요한 원인으로 작용 할 수 있다.These results indicate that 14-3-3 s - / - mice are very sensitive to septic shock induced by LPS. In other words, if the expression of the 14-3-3 s gene is not expressed, gene expression may cause problems in the biological control system to cope with the inflammatory reaction such as septic shock and may play an important role in inducing sepsis.
본 발명의 의의는 14-3-3 s 유전자가 염증반응이 적절히 컨트롤 되는 선천면역 반응 (Innate immune response)에 있어서 핵심 역할을 담당하고 있음을 in vivo 동물모델을 사용하여 새롭게 규명한 것이며 궁극적으로 이러한 14-3-3 s -/- 마우스 동물모델이 항패혈증 및 항염증 소재를 탐색하고 발굴하기 위한 새로운 in vivo 시스템으로 활용될 수 있음을 제시한 것이다.
The significance of the present invention is that the 14-3-3 s gene plays a key role in the innate immune response in which the inflammatory response is appropriately controlled, using the in vivo animal model, and ultimately, Suggesting that the 14-3-3 s - / - mouse animal model could be used as a new in vivo system for exploring and identifying anti-septic and anti-inflammatory agents.
본 발명을 통하여 알 수 있는 바와 같이, 본 발명은 패혈증 관련 핵심 유전자인 14-3-3 sigma가 결손 된 동물 연구모델을 개발하여 염증질환의 in vivo 연구가 가능하게 하였으며, 패혈증 관련 치료소재 탐색 및 발굴의 효율성이 in vivo 상에서 가능하게 되었다. As can be seen from the present invention, the present invention has developed an animal study model in which 14-3-3 sigma deficiency is a key gene for sepsis, enabling in vivo investigation of inflammatory diseases, The efficiency of excavation became possible in vivo.
도 1은 LPS에 의해 유도되는 septic shock에 대한 14-3-3 s +/+와 14-3-3 s -/- 마우스의 민감도 (생존율) 비교분석,
도 2는 LPS에 의해 유도되는 septic shock에 대한 14-3-3 s +/+와 14-3-3 s -/- 마우스의 민감도 (조직 (폐 & 비장) 내 염증성 사이토카인 발현수준) 비교분석
도 3은 LPS에 의해 유도되는 septic shock에 대한 14-3-3 s +/+와 14-3-3 s -/- 마우스의 민감도 (염증성 사이토카인 생성수준) 비교분석Figure 1 shows a comparison of the sensitivity (survival rate) of 14-3-3 s + / + and 14-3-3 s - / - mice to septic shock induced by LPS,
FIG. 2 is a graph comparing the sensitivity of 14-3-3 s + / + and 14-3-3 s - / - mice to LPS-induced septic shock (inflammatory cytokine expression levels in tissues (lungs & spleen))
Figure 3 is a comparative analysis of the sensitivity (inflammatory cytokine production level) of 14-3-3 s + / + and 14-3-3 s - / - mice to septic shock induced by LPS
이하 비한정적인 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세하게 설명한다. 단 하기 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 의도로 기재된 것으로서 본 발명의 범위는 하기 실시예에 의하여 제한되는 것으로 해석되지 아니한다.The present invention will now be described in more detail by way of non-limiting examples. The following examples are intended to illustrate the invention and the scope of the invention is not to be construed as being limited by the following examples.
실시예Example 1: 14-3-3 시그마 유전자 결손 마우스 제조 1: Production of 14-3-3 sigma gene-deficient mice
14-3-3 시그마 유전자 결손 마우스는 Chen Ling, Dongmei Zuo, Bin Xue, 외.14-3-3 sigma gene deficient mice were obtained from Chen Ling, Dongmei Zuo, Bin Xue, et al.
Genes Dev . 2010 24: 947-956에 기재된 내용을 약간 변형하여 제조하였다. 따라서 기본적인 내용은 해당 논문에 상세하게 기재되어 있다.
Genes Dev . 2010 24: 947-956. Therefore, the basic contents are described in detail in the paper.
요약하면, 14-3-3s 로커스를 지닌 genomic BAC DNA 클론을 Ensembl 데이터베이스에서 찾아 확보하였다. 14-3-3s 유전자는 1개의 exon으로 구성되어 있기에 이 exon을 중심으로 5‘ 쪽으로 약 7.5 kb, 3’쪽으로 약 2.9 kb을 지닌 10.4 kb genomic DNA 절편을 negative selection에 사용될 thymidine kinase 유전자를 지닌 pLMJ235 vector에 클로닝하였다. 14-3-3s exon의 약 2.2 kb 앞에 loxP sequence를 클로닝하였다. loxP와 frt sequence를 양쪽에 지닌 neomycin-resistant (neoR) cassette를 14-3-3s exon의 약 160 bp 뒤에 클로닝하였다. 그 벡터를 NotI로 리니어화하고, 유전자 타겟팅을 배아 줄기세포주 J1을 사용하여 표준 기술에 따라 수행하였다. 정확한 삽입이 수행된 것을 포함하는 배아 줄기세포를 3' 외래 프로브로 서던 블럿팅을 하여 동정하였다.. 사용된 프로브는 Sfn3-F1, 5'-atccctttactctctctagttgct-3'; 및 Sfn3-R1, 5'-ccagtcttccacgttgacctgc-3' primer를 이용하여 클로닝하였다. 배아 줄기세포 클론을 이용하여 키메라를 제조하고 이어 germ-line transmission이 된 생쥐를 확보하였다. 이렇게 얻어진 생쥐를 생식세포를 포함한 모든 세포에서 Cre recombinase를 발현하는 베타-actin Cre 형질전환 생쥐와 교배하여 14-3-3 시그마 유전자 결손 마우스를 제조하였다.
In summary, genomic BAC DNA clones with 14-3-3s locus were identified and secured in the Ensembl database. Since the 14-3-3s gene consists of one exon, a 10.4 kb genomic DNA fragment having about 7.5 kb of the exon and about 2.9 kb of the 3 'toward the 5' end is inserted into the pLMJ235 vector. The loxP sequence was cloned before about 2.2 kb of the 14-3-3s exon. A neomycin-resistant (neo R ) cassette with both loxP and frt sequences was cloned approximately 160 bp downstream of the 14-3-3s exon. The vector was linearized with NotI and gene targeting was performed according to standard techniques using embryonic stem cell line J1. Embryonic stem cells containing the correct insertion were identified by Southern blotting with a 3 'foreign probe. The probe used was Sfn3-F1, 5'-atccctttactctctctagttgct-3'; And Sfn3-R1, 5'-ccagtcttccacgttgacctgc-3 'primers. The embryonic stem cell clones were used to produce chimeras and germ-line transmission mice were obtained. The mice thus obtained were crossed with beta-actin Cre transgenic mice expressing Cre recombinase in all cells including germ cells to prepare 14-3-3 sigma gene-deficient mice.
실험예 1:마우스 독성 실험Experimental Example 1: Mouse toxicity test
8주령 이하 C57/BL6 마우스(n=5)에 LPS (sigma E.coli 055:B5) 0, 1, 3, 5 mg/kg를 각각 복강 내 주입하여 하루 세번(AM 9:00, PM 3:00, PM 9:00) 마우스의 생존을 관찰하였다.(Sigma E. coli 055: B5) 0, 1, 3 and 5 mg / kg were intraperitoneally injected into C57 / BL6 mice (n = 5) 00, PM 9:00).
실험예 2:마우스 혈청내 cytokine분석Experimental Example 2: Cytokine analysis in mouse serum
3 mg/kg 의 LPS 를 마우스(n=3) 복강 내에 주입한 후 0, 2, 6, 12 hr 후에 심장으로부터 채혈한 후 혈청을 분리하였다. 혈청분리 방법은 채집한 혈액을 상온에 1시간정도 방치하여 굳힌 다음 2000 rpm 에 20분 원심분리하면 혈청이 상층액으로 분리된다. 이렇게 얻은 혈청을 50배로 희석하여 Quantikine Elisa kit (R&D system) 을 사용해 분석하였다.3 mg / kg of LPS was injected into the abdominal cavity of the mice (n = 3), and blood was collected from the heart at 0, 2, 6, 12 hours and serum was isolated. In the serum separation method, the collected blood is allowed to stand at room temperature for about 1 hour, and after hardening, the serum is separated into supernatant by centrifugation at 2000 rpm for 20 minutes. The serum thus obtained was diluted 50-fold and analyzed using a Quantikine Elisa kit (R & D system).
실험예 3:조직 면역 염색법Experimental Example 3: Tissue Immunostaining
마우스의 비장을 분리하여 10% 포르말린 용액에 고정 후 파라핀에 포매하고 4 mm 두께로 잘라 슬라이드에 부착시킴. xylene으로 3분간 3회 담궈 파라핀을 제거한 후, 100%, 85%, 70%, 50% 알코올에 3분씩 처리 후 증류수에 넣어 수화하였다. 10 mM Citrate pH 6.0 버퍼에 넣어 microwave 를 이용하여 15분 간 끓인 후 충분히 식힘. H2O2 에 10분간 반응시켜 peroxidase 를 blocking 시키고 1차 항체 Cox-2 (1200) (Santa cruz biotechnology, Cat#SC-1746) 를 이용하여 4℃ 에서 하룻밤 반응시켰다. PBS-T 용액으로 씻은 후 2차 항체인 biotinylated anti-goat (Vector, Cat#BA-9500)를 실온에서 1시간 반응시켜 PBS-T 용액으로 씻고 Vectastain ABC kit (Vector, Cat#PK-6102) 을 사용해 반응시켰다. PBS-T 용액으로 씻고 발색시약인 DAB (Vector, Cat#SK-4100) 으로 5분간 반응시킨 후 물로 세척하고 hematoxylin 으로 대조 염색한 후 알코올과 xylene 으로 탈수시켜 canada balsam으로 봉입하여 현미경으로 확인하였다.The mouse spleen was separated, fixed in 10% formalin solution, embedded in paraffin, and cut to a thickness of 4 mm to attach to the slide. xylene for 3 minutes for 3 minutes to remove paraffin, then treated with 100%, 85%, 70%, 50% alcohol for 3 minutes, and then added to distilled water for hydration. 10 mM Citrate pH 6.0 buffer and boil for 15 minutes using microwave. H 2 O 2 for 10 minutes to block the peroxidase and react overnight at 4 ° C using the primary antibody Cox-2 (1200) (Santa Cruz Biotechnology, Cat # SC-1746). After washing with PBS-T solution, the secondary antibody, biotinylated anti-goat (Vector, Cat # BA-9500) was reacted at room temperature for 1 hour, washed with PBS-T solution, . The cells were washed with PBS-T solution and reacted with DAB (Vector, Cat # SK-4100) for 5 minutes. The cells were washed with water, counterstained with hematoxylin, dehydrated with alcohol and xylene, and sealed with canada balsam.
실험예Experimental Example 4: 4: RTRT -- PCRPCR
RNARNA 추출 extraction
Liver, spleen조직을 분리하여 각각 멸균된 막자 사발에 담아 액체질소를 넣어 얼린다. 얼은 조직을 막자 사발에 미세하게 간다. 갈린 조직에 500 ul Trizol reagent를 첨가하여 상온에서 3 분간 방치하고 125 ul Chloroform을 넣어 15 초간 섞어주고 12,000 g에서 15 분간 원심분리하였다. 100 ul 상층액을 새로운 tube에 옮겨 담고 100 ul Isopropyl alcohol을 넣어 RNA를 침전시킨 후, 75 % 에탄올로 wash 하였다. RNA 침전물은 DEPC 용액을 넣어 녹이고 -70oC 에 보관하였다.
Liver and spleen tissues are separated and placed in a sterilized mulberry bowl and frozen with liquid nitrogen. Earl breaks the tissue and goes to the bowl finely. 500 μl of Trizol reagent was added to the gallin tissue, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 3 minutes, and 125 μl of chloroform was added thereto for 15 seconds, followed by centrifugation at 12,000 g for 15 minutes. 100 μl of the supernatant was transferred to a new tube and 100 μl of Isopropyl alcohol was added to precipitate the RNA, which was then washed with 75% ethanol. RNA precipitates were dissolved in DEPC solution and stored at -70 ° C.
cDNAcDNA 합성 synthesis
추출한 RNA 2 ug을 사용하여 20 ul 용량으로 역전사를 시행하였다. RNA 2 ug, oligo-(dT) 18 primer를 넣어 70 ℃에서 10 분간을 각각 반응시켜 oligo-(dT)를 RNA에 접합시키고 2.5 mM dNTP, 50 mM KCl, 10 mM Tris-HCl, 5 mM MgCl2, reverse transcriptase를 넣어 42 ℃에서 60 분, 70 ℃에서 15 분간을 각각 반응시켜 cDNA를 합성하였다.
Using 2 ug of extracted RNA, reverse transcription was performed in a volume of 20 μl. (DT) 18 primer was added to each well and reacted at 70 ° C for 10 minutes. The oligonucleotide (dT) was ligated to the RNA and reacted with 2.5 mM dNTP, 50 mM KCl, 10 mM Tris-HCl, 5
PCRPCR
2 ul의 cDNA, 10 pmol primer를 물과 함께 20 ul 용량으로 맞추어 PCR premix (Bioneer) 를 사용하여 증폭하였다. PCR cycle 조건은 94 ℃에서 30 분간 변성시키고, 60 ℃에서 30 초간 annealing한 다음, 72 ℃에 서 1 분간 extension을 시행하였으며, 35 cycles 증폭한 후 마지막 cycle은 72 oC에서 10 분간 반응시켰다. Primer sequence는 다음과 같이 합성하여 사용하였다.
2 μl of cDNA and 10 pmol of primer were mixed with water to a volume of 20 μl and amplified using PCR premix (Bioneer). The PCR cycle conditions were denaturation at 94 ° C for 30 min, annealing at 60 ° C for 30 sec, extension at 72 ° C for 1 min, amplification at 35 cycles, and final cycle at 72 ° C for 10 min. Primer sequences were synthesized as follows.
cox-2 cox-2
Fw : 5'- caa tga gta ccg caa acg ct - 3' Fw: 5'-caa tga gta ccg caa acg ct-3 '
Re : 5'- agg tgc tcg gct tcc agt at -3'
Re: 5'-agg tgc tcg gct tcc agt at -3 '
IL1 beta IL1 beta
Fw : 5'- gtt gac gga ccc caa aag at-3' Fw: 5'-gtt gac gga ccc caa aag at-3 '
Re : 5'- aag gtc cac ggg aaa gac ac-3'
Re: 5'-aag gtc cac ggg aaa gac ac-3 '
IL-6IL-6
Fw :5'- ttg gga ctg atg ctg gtg ac-3' Fw: 5'-ttg gga ctg atg ctg gtg ac-3 '
Re :5'- tgc aag tgc atc atc gtt gt-3'
Re: 5'-tgc aag tgc atc atc gtt gt-3 '
<110> KNU-Industry Cooperation Foundation Gachon University of Industry-Academic cooperation Foundation <120> 14-3-3 sigma null mouse, development of in vivo septic shock research model using the same and use of the same <160> 1 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 747 <212> DNA <213> Mouse <400> 1 atggagagag ccagtctgat ccagaaggcc aagttggctg aacaggccga acggtatgaa 60 gacatggcag ctttcatgaa gagcgccgtg gaaaagggcg aggagctctc ctgcgaggag 120 cgaaacctgc tttccgtagc ttacaagaac gtggtgggcg gccagagagc ggcctggagg 180 gtcctgtcca gcatcgagca gaagagcaac gaggaggggt cagaagagaa gggccccgag 240 gtgaaagagt accgggagaa ggtagagacc gagctcagag gtgtgtgcga caccgtactc 300 ggcctgctgg actcgcacct catcaaaggg gctggagatg cagagagccg cgtcttctac 360 ctgaagatga agggtgacta ctaccgctac ctagccgagg tggccactgg cgatgacaag 420 aagcgcatca tcgattctgc ccggtcagcc taccaggagg ccatggacat cagcaagaag 480 gagatgccgc ctaccaaccc catccgcctg ggcctggccc tgaacttttc agtcttccac 540 tacgagatag ccaacagccc cgaggaggcc atctcgctgg ccaagaccac cttcgacgag 600 gccatggccg acctgcacac cctcagtgag gactcctaca aggacagcac cctcatcatg 660 cagctcctga gagacaacct gacgctgtgg acagccgaca gtgctgggga agagggtggt 720 gaggctccgg aggagcccca gagctga 747 <110> KNU-Industry Cooperation Foundation Gachon University of Industry-Academic cooperation Foundation <120> 14-3-3 sigma null mouse, development of in vivo septic shock research model using the same and use the same <160> 1 <170> Kopatentin 1.71 <210> 1 <211> 747 <212> DNA <213> Mouse <400> 1 atggagagag ccagtctgat ccagaaggcc aagttggctg aacaggccga acggtatgaa 60 gacatggcag ctttcatgaa gagcgccgtg gaaaagggcg aggagctctc ctgcgaggag 120 cgaaacctgc tttccgtagc ttacaagaac gtggtgggcg gccagagagc ggcctggagg 180 gtcctgtcca gcatcgagca gaagagcaac gaggaggggt cagaagagaa gggccccgag 240 gtgaaagagt accgggagaa ggtagagacc gagctcagag gtgtgtgcga caccgtactc 300 ggcctgctgg actcgcacct catcaaaggg gctggagatg cagagagccg cgtcttctac 360 ctgaagatga agggtgacta ctaccgctac ctagccgagg tggccactgg cgatgacaag 420 aagcgcatca tcgattctgc ccggtcagcc taccaggagg ccatggacat cagcaagaag 480 gagatgccgc ctaccaaccc catccgcctg ggcctggccc tgaacttttc agtcttccac 540 tacgagatag ccaacagccc cgaggaggcc atctcgctgg ccaagaccac cttcgacgag 600 gccatggccg acctgcacac cctcagtgag gactcctaca aggacagcac cctcatcatg 660 cagctcctga gagacaacct gacgctgtgg acagccgaca gtgctgggga agagggtggt 720 gaggctccgg aggagcccca gagctga 747
Claims (17)
상기 테스트 물질의 존재 하에서 상기 형질전환 마우스의 생존률을 측정하는 단계를 포함하며, 이때 상기 테스트 물질이 존재하지 않는 경우와 비교하여 테스트 물질이 존재하는 경우의 상기 형질전환 마우스의 생존률이 증가하는 경우에 상기 테스트 물질이 패혈증 치료용 후보 물질임을 시사하는 것을 포함하는 패혈증 치료용 후보 물질을 스크리닝하는 방법.Treating a transgenic mouse lacking the 14-3-3 sigma gene as a test substance; And
And measuring the survival rate of the transgenic mouse in the presence of the test substance, wherein when the survival rate of the transgenic mouse is increased in the presence of the test substance as compared with the case where the test substance is not present Wherein the test substance is a candidate substance for treating sepsis.
테스트 물질로 14-3-3 시그마 유전자가 결손된 형질전환 마우스를 처리하는 단계; 및
상기 테스트 물질의 존재 하에서 상기 형질전환 마우스의 염증성 사이토카인발현률을 측정하는 단계를 포함하며, 이때 상기 테스트 물질이 존재하지 않는 경우와 비교하여 테스트 물질이 존재하는 경우의 상기 형질전환 마우스의 염증성 사이토카인 발현률이 감소하는 경우에 상기 테스트 물질이 염증 치료용 후보 물질임을 시사하는 것을 포함하는 염증 치료용 후보 물질을 스크리닝하는 방법.A method for screening candidate substances for the treatment of inflammation,
Treating a transgenic mouse lacking the 14-3-3 sigma gene as a test substance; And
Measuring the expression level of an inflammatory cytokine of the transgenic mouse in the presence of the test substance, wherein the inflammatory cytokine of the transgenic mouse in the presence of the test substance as compared to the absence of the test substance Wherein the test substance is a candidate substance for treating inflammation when the expression level is decreased.
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