JPS63214668A - Method for measuring cell - Google Patents
Method for measuring cellInfo
- Publication number
- JPS63214668A JPS63214668A JP4824287A JP4824287A JPS63214668A JP S63214668 A JPS63214668 A JP S63214668A JP 4824287 A JP4824287 A JP 4824287A JP 4824287 A JP4824287 A JP 4824287A JP S63214668 A JPS63214668 A JP S63214668A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- cells
- cell
- antibody
- labeled
- microcapsule
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 16
- 239000003094 microcapsule Substances 0.000 claims abstract description 30
- 239000004816 latex Substances 0.000 claims abstract description 8
- 229920000126 latex Polymers 0.000 claims abstract description 8
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims abstract description 8
- 238000000149 argon plasma sintering Methods 0.000 claims abstract description 4
- 230000031700 light absorption Effects 0.000 claims abstract description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 28
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims description 15
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 abstract description 7
- 238000002372 labelling Methods 0.000 abstract description 5
- 238000012545 processing Methods 0.000 abstract description 5
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 abstract description 3
- 230000005684 electric field Effects 0.000 abstract description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 abstract 2
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 98
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 14
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 14
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 14
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 9
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 5
- MHMNJMPURVTYEJ-UHFFFAOYSA-N fluorescein-5-isothiocyanate Chemical compound O1C(=O)C2=CC(N=C=S)=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 MHMNJMPURVTYEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 5
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 210000001744 T-lymphocyte Anatomy 0.000 description 4
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 4
- 238000000691 measurement method Methods 0.000 description 4
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 4
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 4
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 3
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 3
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 3
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 3
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 2
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 2
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 2
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 description 2
- 210000004698 lymphocyte Anatomy 0.000 description 2
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 2
- 210000005087 mononuclear cell Anatomy 0.000 description 2
- 238000010791 quenching Methods 0.000 description 2
- 230000000171 quenching effect Effects 0.000 description 2
- PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N rhodamine B Chemical compound [Cl-].C=12C=CC(=[N+](CC)CC)C=C2OC2=CC(N(CC)CC)=CC=C2C=1C1=CC=CC=C1C(O)=O PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 210000003705 ribosome Anatomy 0.000 description 2
- 239000011550 stock solution Substances 0.000 description 2
- 210000001239 CD8-positive, alpha-beta cytotoxic T lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- 229920001917 Ficoll Polymers 0.000 description 1
- 208000007536 Thrombosis Diseases 0.000 description 1
- XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N argon Substances [Ar] XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052786 argon Inorganic materials 0.000 description 1
- -1 argon ion Chemical class 0.000 description 1
- 229940125782 compound 2 Drugs 0.000 description 1
- 239000003431 cross linking reagent Substances 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N fluorescein Chemical compound O1C(=O)C2=CC=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000000411 inducer Substances 0.000 description 1
- 230000001678 irradiating effect Effects 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- MIKKOBKEXMRYFQ-WZTVWXICSA-N meglumine amidotrizoate Chemical compound C[NH2+]C[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO.CC(=O)NC1=C(I)C(NC(C)=O)=C(I)C(C([O-])=O)=C1I MIKKOBKEXMRYFQ-WZTVWXICSA-N 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 1
- 229940043267 rhodamine b Drugs 0.000 description 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 1
- 238000005211 surface analysis Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/58—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances
- G01N33/585—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances with a particulate label, e.g. coloured latex
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
- G01N33/56966—Animal cells
Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は細胞測定方法に係り、特に雑多な細胞群から目
的とする細胞のみを正確に検知することができるフロー
サイトメトリに関するものである。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [Industrial Application Field] The present invention relates to a method for measuring cells, and particularly to flow cytometry that can accurately detect only target cells from a miscellaneous group of cells.
従来の細胞測定方法は、細管の中に細胞を流し、細胞に
レーザを照射し、細胞の散乱から細胞を検知している。The conventional cell measurement method involves flowing cells into a thin tube, irradiating the cells with a laser, and detecting the cells from the scattering of the cells.
または被験細胞と特異的に反応する抗体に螢光マーカー
を直接あるいは間接的に結合させ、この螢光マーカーで
押識された抗体を被験細胞と反応させることにより、螢
光量から目的とする細胞であるかを判断している。すな
わち後者の方法によれば、目的細胞が螢光マーカーで標
識化され、他の無標識細胞と区別できることになる6後
者の従来例において、螢光マーカーを抗体に結合させる
方法については、フローサイトメトリ(手技と実際)、
蟹書房、編集太田−男他、1984年4月21日、第1
10頁〜第121頁に記載されている。Alternatively, by directly or indirectly binding a fluorescent marker to an antibody that specifically reacts with the test cell, and allowing the antibody labeled with the fluorescent marker to react with the test cell, it is possible to identify the target cell based on the amount of fluorescence. I am determining whether there is. In other words, according to the latter method, target cells are labeled with a fluorescent marker and can be distinguished from other unlabeled cells6. metrics (procedural and practical),
Kani Shobo, edited by Ota-O et al., April 21, 1984, No. 1
It is described on pages 10 to 121.
なお、フローサイトメトリに使用する測定装置として、
特rjM昭60−209141号に記載されたものが存
在する。In addition, as a measuring device used for flow cytometry,
There is one described in Special rjM No. 60-209141.
しかし、抗体に螢光物質を結合させる従来例では、抗体
に結合できる螢光物質の絶対量が充分でない。そのため
に螢光量が不充分であり、螢光物質で標識化された細胞
を正確に検知し、更にその螢光量から正確に細胞を定量
あるいは細胞表面の抗原量を明確に測定することができ
なかった。However, in the conventional method of binding a fluorescent substance to an antibody, the absolute amount of the fluorescent substance that can be bound to the antibody is not sufficient. As a result, the amount of fluorescence is insufficient, making it impossible to accurately detect cells labeled with fluorescent substances, and furthermore, it is not possible to accurately quantify cells or clearly measure the amount of antigen on the cell surface from the amount of fluorescence. Ta.
さらに光散乱を用いる従来の細胞測定方法においても、
細胞の大きさが充分でないために散乱強度が弱いという
問題点があった。Furthermore, in the conventional cell measurement method using light scattering,
There was a problem in that the scattering intensity was weak because the cells were not large enough.
したがって散乱強度から正確に細胞を検知することがで
きなかった。Therefore, it was not possible to accurately detect cells from the scattering intensity.
本発明は、上記問題点を解決するために、目的とする細
胞を正確に検知することができる細胞測定方法を提供す
ることを目的とする。In order to solve the above-mentioned problems, the present invention aims to provide a cell measurement method that can accurately detect target cells.
〔問題点を解決するための手段〕
上記目的を達成するために、本発明はマイクロカプセル
またはラテックス粒子に被験細胞と特異的に反応する抗
体を結合し、次いで該被験細胞とマイクロカプセルまた
はラテックス粒子で標識化した前記抗体とを反応させ、
光散乱、光吸収または螢光を用いて前記被験細胞の検知
をおこなうことを特徴とする細胞測定方法である。[Means for Solving the Problems] In order to achieve the above object, the present invention binds an antibody that specifically reacts with a test cell to a microcapsule or latex particle, and then combines the test cell with the microcapsule or latex particle. react with the antibody labeled with
This cell measurement method is characterized in that the test cells are detected using light scattering, light absorption, or fluorescence.
上記本発明によれば、被検細胞と特異的に結合する抗体
を、マイクロカプセルまたはラテックス粒子に結合させ
ているため、次のような作用がある。すなわち、ラテッ
クス粒子またはマイクロカプセルが結合した細胞の大き
さが結合前のものと比べて大きくなることにより、散乱
光の強度が増す。また、マイクロカプセル内に光吸収物
質あるいは螢光物質を内包させることにより、光吸収物
質または螢光物質の絶対量が増大する。そのために吸収
信号あるいは螢光信号が増大する。According to the present invention, since antibodies that specifically bind to test cells are bound to microcapsules or latex particles, the following effects are achieved. In other words, the intensity of the scattered light increases as the size of the cell to which the latex particles or microcapsules are bound becomes larger than that before binding. Moreover, by incorporating a light-absorbing substance or a fluorescent substance into the microcapsules, the absolute amount of the light-absorbing substance or fluorescent substance is increased. This increases the absorption or fluorescence signal.
次に本発明の実施例を添付図面に従って詳説する。 Next, embodiments of the present invention will be described in detail with reference to the accompanying drawings.
第1図は一実施例の工程を示すものである。FIG. 1 shows the steps of one embodiment.
第1図において、マイクロカプセル1内には標識化合物
2が内包されている。標識化合物としては、光吸収物質
でも螢光物質でもよい。螢光物質が、内包されることに
より、螢光物質の量が、抗体1個に螢光物質が結合する
従来法に比べ、103倍多い。この結果、細胞を検知す
るための信号量が103倍増加することになる。信号量
増加に伴い目的とする細胞を他の細胞群から区別して正
確に検知する感度が増加する。In FIG. 1, a labeled compound 2 is encapsulated within a microcapsule 1. The labeling compound may be a light-absorbing substance or a fluorescent substance. By encapsulating the fluorescent substance, the amount of fluorescent substance is 103 times greater than in the conventional method in which the fluorescent substance is bound to one antibody. As a result, the amount of signal for detecting cells increases by 103 times. As the signal amount increases, the sensitivity for accurately detecting target cells by distinguishing them from other cell groups increases.
吸収物質の場合は、螢光物質の場合と同様に吸収物質の
絶対量が増加するため、吸収強度が増す。In the case of an absorbing substance, as in the case of a fluorescent substance, the absolute amount of the absorbing substance increases, so the absorption intensity increases.
この結果他の細胞群から区別して目的とする細胞の吸収
量を正確に求めることができ、目的とする細胞の検知及
び定量が可能となる。As a result, it is possible to accurately determine the absorbed amount of the target cells by distinguishing them from other cell groups, and it becomes possible to detect and quantify the target cells.
次に、標識物質を内包したマイクロカプセルに。Next, it is made into microcapsules containing the labeling substance.
抗体3を結合させる。この標識抗体4と被験細胞5とを
反応させ抗原抗体反応を起こさせる。このとき、目的と
する細胞(例えば癌細胞)に特異的に反応する抗体を用
いたならば、目的とする細胞の抗原と抗体が反応し、目
的とする細胞が螢光マーカーあるいは吸収物質で標識さ
れたことになる。Bind antibody 3. This labeled antibody 4 is reacted with the test cell 5 to cause an antigen-antibody reaction. At this time, if an antibody that specifically reacts with the target cell (for example, a cancer cell) is used, the antigen of the target cell will react with the antibody, and the target cell will be labeled with a fluorescent marker or absorbing substance. It means that it was done.
このようにして得た標識細胞7を細胞自動解析装置(第
2図)に注入する。The labeled cells 7 thus obtained are injected into an automatic cell analyzer (FIG. 2).
第2図においてシース2内に細胞21の流れが形成され
、フローセル24内に細胞の一つ一つの流れが生ずる。In FIG. 2, a flow of cells 21 is formed within the sheath 2, and an individual flow of cells is generated within the flow cell 24.
フローセルの途中に光源23が設けられ光源の他端側に
はスリット5が存在する。A light source 23 is provided in the middle of the flow cell, and a slit 5 is present at the other end of the light source.
スリット25を通り抜けた光は検知器26に入り、検出
器6からの検出信号が27の信号処理装置に送られる。The light passing through the slit 25 enters a detector 26, and a detection signal from the detector 6 is sent to a signal processing device 27.
信号処理装置27では螢光量または光吸収量から目的と
する細胞の検知及びその定量をおこなうための処理をす
る。The signal processing device 27 performs processing for detecting target cells and quantifying them based on the amount of fluorescence or light absorption.
被験細胞は細かい管の中(フローセル)を流れ、光源2
3からのレーザが照射される。ごのレーザ照射によって
引き起こされた螢光量吸収量から目的とする細胞である
かが判断できる。定量をおこなうこともできる。さらに
散乱を調べることにより、細胞の検知及び定量をおこな
うごともできる。The test cells flow through a small tube (flow cell) and are exposed to light source 2.
Laser from 3 is irradiated. It can be determined whether the cells are the target cells based on the amount of fluorescence absorbed by the laser irradiation. Quantification can also be performed. Furthermore, by examining scattering, cells can be detected and quantified.
第2図に示される細胞自動解析装置に細胞分集装置つま
りセルソータを付加することができる。目的とする細胞
がジェット流にのって下降し、丁度水流が水滴に変わる
地的にきたとき、ジェット水柱にプラスまたはマイナス
の電荷をかける。仮にマイナスに細胞が荷電されると、
マイナスの荷電をもった目的の細胞が荷電されると、マ
イナスの荷電をもった目的の細胞を含んだ水滴は高電圧
によって作られた電界28を通過する間に、プラス極側
に引き寄せられプラス極側に水滴の落下方向が曲げられ
る。このようにして、試料収取容器29に目的とする細
胞を分取することもできる。A cell sorting device, that is, a cell sorter can be added to the automatic cell analysis device shown in FIG. The target cell descends on the jet stream, and just when it reaches the ground where the water stream turns into water droplets, a positive or negative charge is applied to the jet water column. If a cell becomes negatively charged,
When the target cell with a negative charge is charged, the water droplet containing the target cell with a negative charge is attracted to the positive electrode side while passing through the electric field 28 created by the high voltage. The falling direction of water droplets is bent toward the pole side. In this way, target cells can also be sorted into the sample collection container 29.
次に第1図に示した実施例の具体的な実験例について説
明する。Next, a specific experimental example of the embodiment shown in FIG. 1 will be explained.
マイクロカプセルの調整法は、Hsia等の方法〔メゾ
ラド イン エンザイムオロジイ。The method for preparing microcapsules is the method of Hsia et al. [Mezorad in Enzymeology.
(Methad j、n Enzymol、ogy、v
oQ、 74 、152頁)〕を応用できる。マイクロ
カプセル中に収容する標識物質としては、螢光物質であ
れば何でもよくたとえばF I T C(fluore
sce in 1sotiocyonate)。(Methad j,n Enzymol,ogy,v
oQ, 74, p. 152)] can be applied. The labeling substance to be accommodated in the microcapsules may be any fluorescent substance, such as FIT C (fluorescein).
sce in 1 sotiocyonate).
RI T C(rhodamine 1sothioc
yanate)、5RITC(substituted
rhoda+*ine 1sothiocyanat
a) 、ローダミンBが用いられる。FITCは高精度
になるどクエンチング(消光現象)が起きるため、調製
の濃度を考慮する必要がある。RI T C (rhodamine 1 sothioc
yanate), 5RITC(substituted
rhoda+*ine 1sothiocyanat
a) Rhodamine B is used. As FITC becomes more precise, quenching (quenching phenomenon) occurs, so it is necessary to consider the concentration of preparation.
またリボソームに抗体を結合させる方法としては、常法
に従い〔ネチャー(Nature (1980)voQ
、288,602−604))により調製とた。すなわ
ち、抗体とリボソームとを架橋剤を用いて結合するもの
である。In addition, as a method for binding antibodies to ribosomes, a conventional method [Nature (1980) voQ
, 288, 602-604)). That is, antibodies and ribosomes are bonded using a crosslinking agent.
次に被験細胞たとえば血液から細胞浮遊液を調製する方
法を説明する。10mQの血液を抗凝固刻入試験管に採
取する。これを遠心(700Xg)にかけ、血漿とバツ
フイコートを分離する。血漿を捨て、バツフイコートを
ペスツールピペットで採取する。採取したものにサスペ
ンションメディウムを加え容量を10 m Qとする。Next, a method for preparing a cell suspension from test cells, such as blood, will be explained. Collect 10 mQ of blood into anticoagulated tubes. This is centrifuged (700Xg) to separate plasma and bathycoat. Discard the plasma and collect the blood clot with a Pestool pipette. Suspension medium was added to the sample to make the volume 10 mQ.
これに15mQ遠心管中で、5mfiのFicoll
−Hypaqueに重層し、700Xgで20分間遠心
をかける。これによりサスペンションメディウム層とF
icoll −Hypaque層の間に単核細胞層が生
じる。単核細胞層をピペットで採取し、15m12試験
管に移し、サスペンションメディウムで浮遊させ、10
分遠心を2回程かけ遠心洗浄を行なう。洗浄後サスペン
ションメディウムで5〜1OX10Bcell /mQ
に調製する。調製した細胞浮遊液100μQにマイクロ
カプセルで標識化された、モノクローナル抗体原液を5
〜10μQ加える。このときマイクロカプセル中には先
に述べた螢光物質が収容されている。抗体と細胞表面の
抗原を反応させる温度は4℃でおこない30分針数置す
る。抗原抗体反応させた後リン酸緩衝液で遠心洗浄を3
回おこない、最終的にはリン酸緩衝液で4〜500μQ
に再浮遊させ、第2図の細胞自動解析装置にかける。Add 5 mfi Ficoll to this in a 15 mQ centrifuge tube.
- Overlay on Hypaque and centrifuge at 700Xg for 20 minutes. This allows the suspension medium layer and F
A mononuclear cell layer occurs between the icoll-Hypaque layers. The mononuclear cell layer was collected with a pipette, transferred to a 15 m12 test tube, suspended in suspension medium, and incubated for 10 min.
Perform centrifugal washing by centrifuging twice. 5-1OX10Bcell/mQ with suspension medium after washing
Prepare to. Add 55 μl of the monoclonal antibody stock solution labeled with microcapsules to 100 μQ of the prepared cell suspension.
Add ~10μQ. At this time, the above-mentioned fluorescent substance is contained in the microcapsule. The reaction temperature between the antibody and the antigen on the cell surface is 4°C, and the needle is left in place for 30 minutes. After antigen-antibody reaction, centrifugal washing with phosphate buffer for 3
Finally, add 4 to 500μQ of phosphate buffer.
The cells were resuspended and subjected to the automatic cell analyzer shown in Figure 2.
前述に記した方法に従い、T細胞中の癌細胞の膜表面抗
原の横築をおこなった。まずモノクローナル抗体として
、抗L e u 3 a (Thelper/1ndu
eer )抗体を用い、螢光物質としてFITCをマイ
クロカプセル化した。常法に従いFIT’Cが収容され
たマイクロカプセルに抗体Leu3aモノクローナル抗
体を結合させた。FITCにより標識化されたモノクロ
ーナル抗体を先に述べた血液から細胞浮遊液に調製する
方法に従い抗原抗体反応させ、細胞表面を標識化する。According to the method described above, membrane surface antigens of cancer cells were translocated in T cells. First, as a monoclonal antibody, anti-L eu 3a (Telper/1ndu
FITC was microencapsulated as a fluorescent substance using an antibody. The Leu3a monoclonal antibody was bound to the microcapsule containing FIT'C according to a conventional method. The FITC-labeled monoclonal antibody is reacted with the antigen and antibody according to the above-described method for preparing a cell suspension from blood to label the cell surface.
このようにして、細胞表面を標識化した細胞を細胞自動
解析装置に注入する。細胞は、細い管の中を1個ずつ順
番に一定速度で通過する。この細胞に光源から特定波長
があてられる。IN識化合物としてFITCを用いてい
るため、アルゴン・イオンレーザ−の488nmが適当
である。レーザ光により励起された光は、直角方向にあ
る検知器6に螢光量としてとらえられる。検知器6に到
達した信号は信号処理装置7において、光電子増倍管に
より電気信号に変えられ、増幅される。また検知器に入
りこんだ信号の回数が、細胞数になる。このようにして
得られた信号をY軸に螢光量、Y軸に細胞数を置くこと
により、ヒストグラフが表わせる。抗−Leu3a+の
リンパ球のヒストグラムを第3図に示す。一方モツクロ
ーナル抗体に直接螢光物質を結合させた従来法のヒスト
グラムを、第4図に示す。The cells whose cell surfaces have been labeled in this manner are injected into an automatic cell analyzer. Cells pass through the thin tube one by one at a constant speed. Specific wavelengths are applied to these cells from a light source. Since FITC is used as the IN-sensing compound, 488 nm of the argon ion laser is appropriate. The light excited by the laser beam is detected by the detector 6 in the perpendicular direction as an amount of fluorescent light. The signal reaching the detector 6 is converted into an electrical signal by a photomultiplier tube and amplified in the signal processing device 7. The number of times the signal enters the detector is the number of cells. The signals thus obtained can be expressed as a histogram by plotting the amount of fluorescence on the Y-axis and the number of cells on the Y-axis. A histogram of anti-Leu3a+ lymphocytes is shown in FIG. On the other hand, a histogram of a conventional method in which a fluorescent substance is directly bound to a motuclonal antibody is shown in FIG.
第4図は、従来法のヒストグラムであり、モノクローナ
ル抗体に直接螢光物質を結合させた場合に得られる。FIG. 4 is a histogram of a conventional method, which is obtained when a fluorescent substance is directly bound to a monoclonal antibody.
従来法は、モノクローナル抗体と結合していない細胞つ
まり細胞表面にLeu3aの抗原を持たない細胞の螢光
が約10あり、標識細胞のピークと1桁しか螢光強度が
違わない。In the conventional method, there is approximately 10 fluorescence from cells that are not bound to the monoclonal antibody, that is, cells that do not have Leu3a antigen on the cell surface, and the fluorescence intensity differs by only one order of magnitude from the peak of labeled cells.
しかし、本実施例で調製し、マイクロカプセルで標識し
た方法によると、Leu3a+抗原を持たない細胞の螢
光を比較すると、確実に2桁以上螢光量が多い。これに
より、従来法より高感度に細胞を検知定量することがで
きる。さらには、細胞表面に少ない抗原でも検知するの
が可能となり、細胞の表面解析にも有効である。However, according to the method of preparing and labeling with microcapsules in this example, when comparing the fluorescence of cells that do not have Leu3a+ antigen, the amount of fluorescence is certainly more than two orders of magnitude higher. Thereby, cells can be detected and quantified with higher sensitivity than conventional methods. Furthermore, it is possible to detect even small amounts of antigens on the cell surface, making it effective for cell surface analysis.
次に本発明の他の実施例を添付図面に従って詳説する。Next, other embodiments of the present invention will be described in detail with reference to the accompanying drawings.
第5図はその実施例の工程図を示すものである。本実施
例では、異なった抗原と結合する複数のモノクローナル
抗体でマイクロカプセルを標識化しているものである。FIG. 5 shows a process diagram of this embodiment. In this example, microcapsules are labeled with multiple monoclonal antibodies that bind to different antigens.
マイクロカプセル1に、複数の異なった抗体を結合させ
る。31はある抗体が結合したマイクロカプセルであり
、32はそれと異なる抗体が結合したマイクロカプセル
である。これら標識化された抗体と複数の抗原を有する
細胞3を結合させる。A plurality of different antibodies are bound to the microcapsule 1. 31 is a microcapsule bound to a certain antibody, and 32 is a microcapsule bound to a different antibody. These labeled antibodies are combined with cells 3 having multiple antigens.
この反応で標識された抗体は、目的とする細胞の各々の
抗原部位と結合する。各々の抗体にはそれぞれマイクロ
カプセルが結合していることにより前記第1図の実施例
に比べてマイクロカプセル内に含まれる光吸収物質量及
び螢光物質量の絶対量が増大する。この結果さらに信号
量が増加し、目的とする細胞の検知及び定量がより精度
よくおこなうことができる。散乱の場合も測定する細胞
に多くのマイクロカプセルが結合し、細胞が大きくなる
ため散乱強度も増加する。The antibody labeled in this reaction binds to each antigen site of the target cell. Since each antibody is bound to a microcapsule, the absolute amount of light-absorbing substance and fluorescent substance contained in the microcapsule is increased compared to the embodiment shown in FIG. As a result, the signal amount is further increased, and target cells can be detected and quantified with higher accuracy. In the case of scattering, many microcapsules bind to the cells to be measured, and as the cells grow larger, the scattering intensity also increases.
次に本実施例の具体的な実験例について説明する。前記
第1図で示した場合の実験例と同様に細胞浮遊液を調製
し、100μαとする。複数のモノクローナル抗体を含
む溶液を5〜10μαを加え、4℃で反応させる。30
分後、リン酸緩衝液を2mQ加え遠心洗浄を3回おこな
う。洗浄後はリン酸緩衝液で4〜500μQに再浮遊さ
せる。Next, a specific experimental example of this embodiment will be explained. A cell suspension is prepared in the same manner as in the experimental example shown in FIG. 1, and the volume is 100 μα. Add 5 to 10 μα of a solution containing multiple monoclonal antibodies and react at 4°C. 30
After a minute, add 2 mQ of phosphate buffer and perform centrifugal washing three times. After washing, resuspend at 4-500 μQ with phosphate buffer.
ここで示す複数のモノクローナル抗体というのは、例え
ばリンパ球表面上にある抗原と特異的に反応しうるもの
であれば何でもよく、例えば、0KTs+Leulの分
子はすべてのT細胞膜上に表現されており、0KT4は
ヘルパー、インデューサーT細胞に、Leu2a、0K
T8はサプレッサー、キラーT細胞表面上にある。これ
らの抗原に対するモノクローナル抗体を複数種用いてお
こなえば、機能的T細胞を感度よくカウントすることが
できる。The plurality of monoclonal antibodies shown here may be any antibody as long as it can specifically react with the antigen on the surface of lymphocytes.For example, the 0KTs+Leul molecule is expressed on the membrane of all T cells, 0KT4 is a helper, inducer T cell, Leu2a, 0K
T8 is a suppressor, found on the surface of killer T cells. Functional T cells can be counted with high sensitivity by using multiple types of monoclonal antibodies against these antigens.
抗Leul、○KT3モノクローナル抗体を用いた場合
、それぞれの抗体原液10ILQずつを、細胞浮遊液1
00μQに加えて反応させる。あらかじめこのモノクロ
ーナル抗体にFITC入りのマイクロカプセルを結合さ
せておく。When using anti-Leul and ○KT3 monoclonal antibodies, add 10 ILQ of each antibody stock solution to 1 cell suspension.
00 μQ and react. FITC-containing microcapsules are bound to this monoclonal antibody in advance.
モノクローナル抗体結合マイクロカプセルと、細胞を反
応させた後は、前記第1図の実施例と同様の操作をおこ
ない、細胞自動解析装置にかける。After reacting the monoclonal antibody-bound microcapsules with the cells, the same operations as in the embodiment shown in FIG. 1 above are performed, and the microcapsules are subjected to an automatic cell analyzer.
この被験細胞のヒストグラムを第6図に示す。第6図に
おいてピークが二つに別れているのは抗体力価の違いに
よるものと考えられる。第6図において1は細胞自身に
よる螢光であり、2及び3は標識細胞による螢光である
。第7図によれば前記第3図のヒストグラムと比べて各
螢光強度に相当する細胞数が多くなっていることがわか
る。これは信号強度が増すことにより定量の精度が向上
した結果である。A histogram of the test cells is shown in FIG. The reason why the peak is divided into two in FIG. 6 is thought to be due to the difference in antibody titer. In FIG. 6, 1 is the fluorescence caused by the cells themselves, and 2 and 3 are the fluorescence caused by the labeled cells. According to FIG. 7, it can be seen that the number of cells corresponding to each fluorescence intensity is greater than the histogram of FIG. 3. This is the result of improved quantitative accuracy due to increased signal strength.
本発明によれば、標識化された細胞の測定精度が向上す
る。According to the present invention, the measurement accuracy of labeled cells is improved.
第1図は、本発明の一実施例の工程図、第2図は、細胞
自動分析装置の構成図、第3図は第1図の実施例により
処理された検体の螢光強度と細胞数の関係を示すヒスト
グラフ、第4図は被検細胞に直接螢光物質を結合させた
従来法の場合の螢光強度と細胞数との関係を示すグラフ
、第5図は本発明の他の実施例を示す工程図、第6図は
本発明の第5図に示した実施例によって求めた螢光強度
と細胞数との関係を示すグラフである。
1・・・マイクロカプセル、2・・・標識化合物、3・
・・抗体、4・・・標識抗体、5・・・細胞、6・・・
抗原、7・・・標識細胞。Figure 1 is a process diagram of an embodiment of the present invention, Figure 2 is a configuration diagram of an automatic cell analyzer, and Figure 3 is the fluorescence intensity and cell number of a specimen processed according to the embodiment of Figure 1. FIG. 4 is a graph showing the relationship between fluorescence intensity and cell number in the conventional method in which a fluorescent substance is directly bound to the test cells. FIG. 5 is a graph showing the relationship between fluorescence intensity and cell number in another embodiment of the present invention. FIG. 6, a process chart showing an example, is a graph showing the relationship between the fluorescence intensity and the number of cells determined according to the embodiment shown in FIG. 5 of the present invention. 1... Microcapsule, 2... Labeled compound, 3.
...Antibody, 4...Labeled antibody, 5...Cell, 6...
Antigen, 7...labeled cells.
Claims (1)
と特異的に反応する抗体を結合し、次いで該被験細胞と
マイクロカプセルまたはラテックス粒子で標識化した前
記抗体とを反応させ、光散乱、光吸収または螢光を用い
て前記被験細胞の検知をおこなうことを特徴とする細胞
測定方法。 2、特許請求の範囲第1項において、前記マイクロカプ
セル中に光吸収物質あるいは螢光を発する物質が収容さ
れてなることを特徴とする細胞測定方法。 3、特許請求の範囲第1項において、前記マイクロカプ
セルがリボソームであることを特徴とする細胞測定方法
。[Claims] 1. An antibody that specifically reacts with a test cell is bound to a microcapsule or latex particle, and then the test cell is reacted with the antibody labeled with the microcapsule or latex particle, and light scattering is performed. , a method for measuring cells, characterized in that the test cells are detected using light absorption or fluorescence. 2. The cell measuring method according to claim 1, characterized in that the microcapsules contain a light-absorbing substance or a fluorescent substance. 3. The cell measuring method according to claim 1, wherein the microcapsule is a ribosome.
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4824287A JPS63214668A (en) | 1987-03-03 | 1987-03-03 | Method for measuring cell |
DE19883806558 DE3806558A1 (en) | 1987-03-03 | 1988-03-01 | Method for cell measurement |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4824287A JPS63214668A (en) | 1987-03-03 | 1987-03-03 | Method for measuring cell |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63214668A true JPS63214668A (en) | 1988-09-07 |
Family
ID=12797970
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP4824287A Pending JPS63214668A (en) | 1987-03-03 | 1987-03-03 | Method for measuring cell |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63214668A (en) |
DE (1) | DE3806558A1 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH04252957A (en) * | 1990-08-07 | 1992-09-08 | Becton Dickinson & Co | One-step test for absolute count |
JPH06230010A (en) * | 1993-02-03 | 1994-08-19 | Nitsusui Seiyaku Kk | Immunity agglutination reagent and immunity analysis method |
WO2007004288A1 (en) * | 2005-07-04 | 2007-01-11 | Sonopore, Ltd. | Method for labeling/separation of cells and reagent for labeling/separation of cells |
Families Citing this family (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5264341A (en) * | 1989-08-30 | 1993-11-23 | Eli Lilly And Company | Selective cloning for high monoclonal antibody secreting hybridomas |
EP0488152A3 (en) * | 1990-11-30 | 1992-11-25 | Hitachi, Ltd. | Method for immunoassay and apparatus therefor |
DE4114131C2 (en) * | 1991-04-30 | 1994-04-07 | Bernhard Dr Koch | Azure B - Eosin - APAAP staining, a method for the simultaneous hematological and immunological characterization of cells |
AUPN214095A0 (en) * | 1995-04-03 | 1995-04-27 | Australian Water Technologies Pty Ltd | Method for detecting microorganisms using flow cytometry |
WO1999047933A1 (en) * | 1998-03-13 | 1999-09-23 | Procrea Biosciences Inc. | Flow cytometry with non-fluorescent microbeads |
AU3347900A (en) * | 1999-01-23 | 2000-08-07 | Minerva Biotechnologies Corporation | Interaction of colloid-immobilized species with species on non-colloidal structures |
EP2045601A1 (en) * | 2007-03-26 | 2009-04-08 | Koninklijke Philips Electronics N.V. | Use of microcarrier beads for detection and/or isolation of cells by flow cytometry and/or dielectrophoresis |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4499052A (en) * | 1982-08-30 | 1985-02-12 | Becton, Dickinson And Company | Apparatus for distinguishing multiple subpopulations of cells |
US4545677A (en) * | 1984-03-05 | 1985-10-08 | Becton, Dickinson And Company | Prismatic beam expander for light beam shaping in a flow cytometry apparatus |
-
1987
- 1987-03-03 JP JP4824287A patent/JPS63214668A/en active Pending
-
1988
- 1988-03-01 DE DE19883806558 patent/DE3806558A1/en not_active Withdrawn
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH04252957A (en) * | 1990-08-07 | 1992-09-08 | Becton Dickinson & Co | One-step test for absolute count |
JPH07101218B2 (en) * | 1990-08-07 | 1995-11-01 | ベクトン・ディッキンソン・アンド・カンパニー | One-step test for absolute counting |
JPH06230010A (en) * | 1993-02-03 | 1994-08-19 | Nitsusui Seiyaku Kk | Immunity agglutination reagent and immunity analysis method |
WO2007004288A1 (en) * | 2005-07-04 | 2007-01-11 | Sonopore, Ltd. | Method for labeling/separation of cells and reagent for labeling/separation of cells |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE3806558A1 (en) | 1988-09-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0121442B1 (en) | Fluorescent multiparameter particle analysis | |
US4713348A (en) | Fluorescent multiparameter particle analysis | |
FI75676C (en) | Method and apparatus for identifying and counting specific blood cell subclasses. | |
US5028545A (en) | Biospecific multianalyte assay method | |
JPH0754324B2 (en) | Test agent for measuring antigen and / or antibody in liquid sample | |
EP0132064A2 (en) | Method for elimination of interference of selected cell populations in analytic cytology | |
Kailashiya | Platelet-derived microparticles analysis: Techniques, challenges and recommendations | |
CA2158839A1 (en) | Immunoassay for determination of cells | |
JPH0447265B2 (en) | ||
JPH04252957A (en) | One-step test for absolute count | |
EP1982176A1 (en) | High-speed quantification of antigen specific t-cells in whole blood by flow cytometry | |
JP2003506710A (en) | Method and apparatus for sorting and counting leukocytes | |
JPS63214668A (en) | Method for measuring cell | |
JPH0823557B2 (en) | Method for improving the cell-layer interface of a centrifuged blood sample | |
US5071774A (en) | Multiparameter particle analysis | |
US6933106B2 (en) | Platelet immunoglobulin bead suspension and flow cytometry | |
EP1766401B1 (en) | Method for the simple and rapid detection of cells and biomolecules by means of paramagnetic particles | |
Neumüller et al. | Demonstration by flow cytometry of the numbers of residual white blood cells and platelets in filtered red blood cell concentrates and plasma preparations | |
EP0241042A2 (en) | A method for cell analysis | |
JPS6281567A (en) | Quantification method using particle agglutination reaction | |
KR101424720B1 (en) | A Novel Method for Measuring Platelet Activation and Apparatus Using It | |
JPS6281566A (en) | Quantification method by measurement of fluorescent intensity of fine particle | |
JP4054500B2 (en) | Multi-item inspection method using nucleic acids such as antigens, antibodies and DNA as probes for detection | |
Naicker | Evaluating the Potential of Kode Technology to Attach Nucleic Acids onto Red Cells and Create Reticulocyte Mimics | |
CA1324499C (en) | Multiparameter particle analysis |