JPS58225024A - Glycoprotein, its preparation and remedy for tumor - Google Patents

Glycoprotein, its preparation and remedy for tumor

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JPS58225024A
JPS58225024A JP57108046A JP10804682A JPS58225024A JP S58225024 A JPS58225024 A JP S58225024A JP 57108046 A JP57108046 A JP 57108046A JP 10804682 A JP10804682 A JP 10804682A JP S58225024 A JPS58225024 A JP S58225024A
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JP
Japan
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cells
reaction
glycoprotein
aqueous solution
sulfuric acid
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JP57108046A
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Japanese (ja)
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Haruo Onishi
治夫 大西
Kazuo Yamaguchi
和夫 山口
Yasuo Suzuki
泰雄 鈴木
Suguru Mochida
持田 英
Nobuo Mochida
持田 信夫
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Mochida Pharmaceutical Co Ltd
Original Assignee
Mochida Pharmaceutical Co Ltd
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
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Abstract

NEW MATERIAL:Glycoprotein CBX3. Molecular weight: 7,000-9,000; color reactions: positive to Lowry's reaction showing the presence of protein, ninhydrin reaction showing the presence of peptide linkages and aminoacids after hydrochloric acid hydrolysis and phenol-sulfuric acid reaction showing the presence of saccharides; description: white powder; solubility: soluble in water, sodium chloride aqueous solution or the like, insoluble in benzene and others; saccharide content: 8-15%; stable in aqueous solution of 2, 7, and 11pH for more than 24hr, stable in aqueous solution of 7pH at 60 deg.C for more than 3hr; the aminoacid sequence on the N-terminal side is alanine-alanine-. USE:Remedy for tumors. PREPARATION:CBX3 is obtained directly from the extract of reticuloendothelia, lymphoblasts, leukemia cells or fibroblasts or after they are propagated by cultivation. Further, a large amount of CBX3 is desired, an inducer such as phytohemagglutinin is made to act on these cells directly and CBX3 is collected from its suspension.

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は温血動物の網内系細胞、リンパ1球、白血病細
胞もしくは繊緒芽細胞の抽出液または培養上清から取1
ηした新規な糖蛋白質およびその!llll法、ならび
にこの糖蛋白質を有効成分どしで含伯づる肚瘍冶療剤に
関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention provides methods for extracting extracts or culture supernatants from reticuloendothelial cells, lymphocytes, leukemia cells, or cordoblasts of warm-blooded animals.
A novel glycoprotein with η and its properties! The present invention relates to the 1llll method and a therapeutic agent for ulcers containing this glycoprotein as an active ingredient.

現在、腫瘍の完全な薬物治療法はなく、これまでlj界
各国の多数の研究者により多くの腫瘍治療剤が開発され
て来たにもかかわらず、依然として臨床に1メいては新
しい治療薬ヤ)多剤併用療法が試みられている。腫瘍の
治療剤は、熱化学療法剤ど癌免疫療法剤に大別されてい
る。熱化学療法剤は、いわゆる細胞毒であり、細胞の増
殖を非特異的に抑制することにより作用を発現するので
、lI!II瘍細胞ばかりでなく正常細胞にも作用して
、白血球減少症、不妊、脱毛、11¥奇形、発癌など極
めて重篤な副作用を示すため、その使用量には厳密な制
限が設けられている。
Currently, there is no complete drug treatment for tumors, and although many tumor therapeutic agents have been developed by many researchers from all over the world, there are still very few new therapeutic agents in clinical practice. ) Multidrug therapy has been attempted. Tumor therapeutic agents are broadly classified into thermal chemotherapeutic agents and cancer immunotherapeutic agents. Thermochemotherapy agents are so-called cytotoxins and exert their effects by non-specifically suppressing cell proliferation. II It acts not only on tumor cells but also on normal cells, causing extremely serious side effects such as leukopenia, infertility, hair loss, malformations, and carcinogenesis, so strict limits are placed on its usage. .

また、癌免疫療法剤は、直接に肝癌細胞の増殖を抑制す
るのrはなく、生体防御機能に働ぎかけて間接的に腫瘍
の増殖を抑制することにより治療作用を発現づるので熱
化学療法剤に比して重篤な副作用の発現は極めて少ない
が、腫瘍患者においては生体防御機能が充分残っていな
い場合も多く、その治療効果(よ熱化学療法剤に比して
必り“しも充分ではない。
In addition, cancer immunotherapy agents do not directly suppress the proliferation of liver cancer cells, but exert their therapeutic effects by indirectly suppressing tumor growth by acting on the body's defense function, so thermochemotherapy Although the occurrence of serious side effects is extremely low compared to chemotherapy drugs, in many cases tumor patients do not have sufficient biological defense functions, and their therapeutic effects (compared to hot chemotherapy drugs) Not enough.

本発明者らは、生体防御機能の中で重要な役割を果して
いる網内系細胞が腫瘍を治療しつる物質を産生じている
可能性があると考え、多年にわたり研究を続けて来た。
The present inventors have continued their research for many years, believing that reticuloendothelial cells, which play an important role in the body's defense function, may produce substances that can treat tumors.

既に網内系細胞からはリンホトキシン、腫瘍壊死因子、
インターフェロンなどと称する腫瘍治療効果の期待でき
る因子が採取され、それぞれ、グランシト−ら( G 
ranger, Q 、A 、  etal.、Cel
lular l+no+unology 、 3 8巻
、388・〜402頁、1978年)、カースウェルら
(Carswell,  F’.△. et al.、
P roc,N al。
Already from reticuloendothelial cells, lymphotoxin, tumor necrosis factor,
Factors that can be expected to have a therapeutic effect on tumors, such as interferon, have been collected, and Grancito et al.
ranger, Q, A, etal. ,Cel
Carswell, F'.△. et al.
Proc, N al.

A  catl.3  ci.   L) 、S.A.
   、  72  巻 、 3 6 6 6・〜36
70頁、1975年)およびイサツクら( Issac
s,  A.、Proc.  Roy. Soc, S
er。
A catl. 3 ci. L), S. A.
, Volume 72, 3 6 6 6・~36
70, 1975) and Issac et al.
s, A. , Proc. Roy. Soc, S
Er.

B.、147巻、268頁、1957年〉により報告さ
れている。また、最近、本発明者らは免疫能を弱めたハ
ムスターに増殖させたリンパ舅球の培養液中から、前述
したリンホトキシンおよび腫瘍壊死因子などをOII!
含有する混合組成物として腫瘍破壊因子( C arc
ino− B reakinO F actor.、以
下CBFと略称する。)を多邑に、かつ、容易に分取す
るごとに成功し、このCBFが動物に移植した実験腫瘍
に有効であると発表(読売新聞、1981年、11月2
2日、朝刊)して来た。本発明者らは、このCBFの研
究過程において、抗腫瘍性糖蛋白質(till破峨物質
x,xl、x2すなわち、(’, arcino−Br
eaker  x 、 x 、 、x2 、以下CBx
 %CBX+、CBx2と略称する。)なる抗腫瘍作用
をイ]づる糖蛋白質を見出したが、さらに、瀉血fIJ
物の網内系細胞、リンパ芽球、白血病細胞らしく番よ繊
維芽細胞の抽出液または培養上清に、前記した物質と蓄
よ異なる糖蛋白質を見出し、この糖蛋白質が極めて強力
かつ選択的なIIl瘍細胞陣害作用に,1こり特徴づけ
られる胛瘍冶療作用を有りることを児出し、本発明を完
成した。
B. , vol. 147, p. 268, 1957). Recently, the present inventors have also detected the above-mentioned lymphotoxin and tumor necrosis factor from the culture solution of lymphoid bulbs grown in immunocompromised hamsters.
The mixed composition containing tumor-destructive factor (C arc
ino- BreakinO factor. , hereinafter abbreviated as CBF. ), and it was announced that this CBF was effective against experimental tumors transplanted into animals (Yomiuri Shimbun, November 2, 1981).
(Morning edition) on the 2nd. In the course of research on CBF, the present inventors discovered that antitumor glycoproteins (till rupture substances x, xl, x2, i.e., (', arcino-Br
eeker x, x, , x2, hereinafter CBx
It is abbreviated as %CBX+ and CBx2. We have discovered a glycoprotein that has an antitumor effect (a), but we also found that phlebotomy fIJ
In extracts or culture supernatants of reticuloendothelial cells, lymphoblasts, and leukemia-like fibroblasts, we found a glycoprotein that was different from the above-mentioned substances. The present invention has been completed by discovering that the IIl tumor cell-killing action has a therapeutic action that can be characterized by one characteristic.

本発明の糖蛋白質(以F、本発明を腫瘍破壊物質×3、
すなわちCarcino−Breaker  x 3ど
称し、CBX 3と略称Jる。)の物理的、化学的なら
びに生物学的諸v1質を訂述Jる。
The glycoprotein of the present invention (hereinafter referred to as F, the present invention is a tumor-destroying substance x 3,
That is, it is called Carcino-Breaker x 3 and abbreviated as CBX 3. ) describes the physical, chemical, and biological properties of v1.

c℃分分子; 5OS−ゲル電気泳動法を用いて分子量
を測定したところ、その分子量は、7゜000〜9,0
00である。
c℃ minute molecule; When the molecular weight was measured using 5OS-gel electrophoresis, the molecular weight was 7°000 to 9.0
It is 00.

■甲邑反応;C[3X3の水溶液について呈色反応を試
験した結果を第1表に示す。なd’3、ローリ−および
ニンヒドリン反応は、生化学実験講座、1巻、蛋白質定
量法、1971年記載の方法、フェノール硫酸法、アン
スロン硫酸、ナフトール硫酸、インドール硫酸および1
−リプ1〜ファン硫酸反応は、([化学実験鯖座、4巻
、糖質定品法、1971年記載の方法。
(2) Komura reaction; Table 1 shows the results of testing the color reaction of an aqueous solution of C[3×3. The d'3, Lowry and ninhydrin reactions are described in Biochemistry Experiment Course, Volume 1, Protein Assay, 1971, phenol sulfuric acid method, anthrone sulfuric acid, naphthol sulfuric acid, indole sulfuric acid and 1
- Lip 1 - Fan sulfuric acid reaction is ([Method described in Kagaku Jikken Sabaza, Volume 4, Carbohydrate Standard Method, 1971.

小ルノ反応は、1」ヒ学実験講座、3巻、脂質定は法、
1971年記載の方法に従って行なった。
The small reaction is 1, Higaku Experimental Course, Volume 3, Lipid Determination Method,
It was carried out according to the method described in 1971.

以トのように、csx 3は蛋白質および糖質の呈色を
示し、脂質の呈色は示さない。
As shown above, csx 3 exhibits protein and carbohydrate coloration, but not lipid coloration.

■性状・溶解1/I;白色粉末であり、水、塩化゛)I
・リウへ水溶液およびリン酸緩廟液に可溶であり、ベン
1!ン、ヘギサンおよびクロロホルムに(ユどんど溶げ
、イTい。
■Properties/Solubility 1/I: White powder, water, chloride ゛)I
・It is soluble in aqueous solution and phosphoric acid solution, and Ben 1! It melts in water, hegisan, and chloroform.

■糖含有量:cBX3の糖含有m J5 Jζびその組
成をスビD (S piro、 if 、Δ2、 Me
tllOdSin E nzvmolooy 、 8巻
、3−□ 26頁、1966年)の方法に準じて測定し
た結果、本物質の糖含右帛は8〜15%であり、ざらに
その糖成分はヘキソース6〜10%、ヘキソ9ミン1〜
・2%、シアル酸1へ・3%である。
■Sugar content: Sugar content m of cBX3
The sugar content of this substance was 8 to 15%, and the sugar content was roughly 6 to 10% hexose. %, hexo9mine 1~
・2%, sialic acid 1・3%.

φ)カルボキシメチルセルロース 5Mリン酸M衝液(p t−16. 4 )下にお()
るrΔン交換クロマトクラフィーにJ5いてカルボキシ
メチルセルロースに吸着↑1である。
φ) Carboxymethyl cellulose under 5M phosphate M buffer (pt-16.4) ()
In rΔn exchange chromatography, J5 was adsorbed to carboxymethyl cellulose ↑1.

■pLI2.O,pH7.0もしくはrlLl 1 1
 。
■pLI2. O, pH 7.0 or rlLl 1 1
.

0の水溶液中、4℃にJ5いて24時間以ト、J、た、
IN−1 7 、 0の水溶液中、60℃において3時
間以し、C B X 3のゲル濾過法による分子mおよ
び腫瘍細胞障害活v1が安定である。
0 in an aqueous solution of J5 for 24 hours at 4°C.
Molecule m and tumor cell cytotoxic activity v1 of C B

(す11−常細胞には実質的に障害を句えず、肺癌細胞
に選択的に障害を与える。C B ×3の細胞障害層は
、10’個の細胞(4二本物質添加干に、37℃、5%
炭酸ガス含有酸素ガス通気下に(48時間培養し、1−
リパンブルーによって染色されない生残細胞数を61数
し、50%増殖抑制濃度で示した。本物質の1単位は1
05個のKB細胞の増殖を50%抑制Jるf!i#度で
ある。
(S11- It does not substantially damage normal cells, but selectively damages lung cancer cells. The cytotoxic layer of C B , 37℃, 5%
Under aeration of oxygen gas containing carbon dioxide gas (cultured for 48 hours, 1-
The number of surviving cells that were not stained by lipan blue was counted as 61 and expressed as a 50% growth-inhibiting concentration. 1 unit of this substance is 1
50% inhibition of KB cell proliferation! It is i# degree.

Φ)蛋白質のN末端側のアミノ酸配列が、アラニン−ア
ラニン−、である。
Φ) The amino acid sequence on the N-terminal side of the protein is alanine-alanine-.

本発明の糖蛋白質、1なりもC B X 3は網内系細
胞、リンパ芽球、白血病細胞らしくは繊組l!細胞から
取1qされるリンホトキシンやII瘍壊死因子などある
いはCBF,またインターフエ「)ンやC11×.CB
X + 、CBX 2とは次の点で明確に18別する口
とができ、明らかに異なる物71である。リンホト4ニ
シンは、その分子fttからαーリンホトギシン70.
On(’)へ・90,000、βーリンホ1ーキシンご
35,000〜50。
The glycoprotein of the present invention, 1 or CB Lymphotoxin, tumor necrosis factor II, or CBF, which is removed from cells (1q), interferon (), C11×.CB
There is a clear distinction between X + and CBX 2 in the following points, and they are clearly different 71. Lymphoto4 herring is derived from its molecule ftt by α-lymphotogycin 70.
On(') 90,000, β-lympholinoxin 35,000-50.

000、γーリンホ1〜キシン10,000〜2r)、
000の314i1が存在することが知られている( 
C ohenら編[Biology  of tide
 1. y+nphokinans J 、Δcada
mic P ress, 1 9 7 9年)が、ぞの
分子量から明らかにCBX 3と異なる。
000, γ-lymph 1-xin 10,000-2r),
It is known that 314i1 of 000 exists (
Edited by Cohen et al. [Biology of tide]
1. y+nphokinans J, Δcada
mic Press, 1979) is clearly different from CBX 3 based on its molecular weight.

さらに、リンホト4ニシンはルーツjスら( 1− u
cas、 ;l, J, et al 、 J.  r
mmunology 、 1 09巻、1233頁、1
972年)が報告しているようにその細胞障害性におい
て選択性がな(、肺癌細胞および正常細胞を同様に障害
する。しかしCB X 3はその細胞障害性において腫
瘍選択f11であり、明らかにリンホトキシンと異4T
つている。
In addition, the lymphoto-4 herring was identified by Rootsj et al. (1-u
cas, ;l, J, et al, J. r
mmunology, vol. 109, p. 1233, 1
972) reported that CB Lymphotoxin and different 4T
It's on.

腫瘍壊死因子の物理化学的性質は報告に」;って異なっ
ているが、選択的にIl#瘍細胞に対して障害作用を示
し、ぞの分子用)j33,000〜63.000.糖含
有量は0%(CarswOl l 、 E、△、 cl
 ill、、P roc、N atl、Δcad、3 
ci、 IJ 。
Although the physicochemical properties of tumor necrosis factor are different from those reported, it selectively exerts a damaging effect on Il# tumor cells, and its molecular properties range from 33,000 to 63,000. Sugar content is 0% (CarswOll, E, △, cl
ill,, Proc, N atl, Δcad, 3
ci, IJ.

S、Δ1.72巻、3666〜3670頁、11.  
   975年)と報告されており、CBXとは糖含有
量d−3J:び分子量とも明らかに異なる。また、ミカ
I/し、!ニジa−シ(Micbael、 R,R,a
nclGeOr(le   、   E、   G、 
  、   J、   rnltnunolor+y 
  、   125巻、1671〜1677頁、198
0年)によれば、SDSゲル電気泳動法による分子量は
68,000であり、等電熱は5.1であり、pl−1
3以下では不安定な土、Con△−セファロースには吸
着しないと報告している。この結果もCBX 3とは、
分子量、安定性および等電点においC異なっているほか
、CBx 3はCon、A。
S, Δ1.72 volume, pages 3666-3670, 11.
975) and is clearly different from CBX in sugar content and molecular weight. Also, Mika I/shi! Micbael, R,R,a
nclGeOr(le, E, G,
, J, rnltnunolor+y
, vol. 125, pp. 1671-1677, 198
According to SDS gel electrophoresis method, the molecular weight is 68,000, the isoelectric heating is 5.1, and the pl-1
It has been reported that if it is less than 3, it will not adsorb to unstable soil and Con△-Sepharose. This result is also CBX 3,
In addition to differing from C in molecular weight, stability, and isoelectric point, CBx 3 is Con, A.

−セファロースに吸着するので、この点でも異なってい
る。他の報告(Matthews 、 N、 &Wat
kins、 J、 F、 、 Dr目、 J 、 ca
ncer 138巻、302・〜315頁、1978年
)によれば、腫瘍壊死因子の分子量は30,000〜5
0.000であり、さらなる検討では(Mat+:he
ws   、   N、   、   Ot    a
t 、  B rit   、  、) 、   c 
ancer  、42巻、416〜422頁、1980
年)、その分子量はゲル゛市気泳動法により67,00
0であり、等電点は5.1〜5.2であり、糖はほとん
ど含まない蛋白質である。この結果もC13x3どは、
分子量、等電点および糖含有mとも明らかに異なってい
る。また、分子量39゜000、軸台6串40%との報
告(E1本経済新聞、1981年、8月23 Fl、朝
刊)もあるが、これし分子量if; J:び糖含有量に
おいてC’ 11 x 3ど(よ¥?、なっている。
-They are different in this respect as they adsorb to Sepharose. Other reports (Matthews, N. & Wat
kins, J., F., Dr., J., ca.
According to Ncer Vol. 138, pp. 302-315, 1978), the molecular weight of tumor necrosis factor is 30,000-5.
0.000, and in further study (Mat+:he
ws, N, , Ota
t, Brit, ,), c
ancer, vol. 42, pp. 416-422, 1980
), its molecular weight was determined to be 67,000 by gel electrophoresis.
0, the isoelectric point is 5.1 to 5.2, and it is a protein that contains almost no sugar. This result is also C13x3,
The molecular weight, isoelectric point and sugar content m are also clearly different. There is also a report (E1 Honkeizai Shimbun, August 23, 1981, Fl, morning edition) that the molecular weight is 39°000 and 6 skewers 40%, but this molecular weight if; J: C' in sugar content. It's 11 x 3.

さらに、CBFは、分子量かイン9−)TITIンより
人きく(静岡新聞、1981年11月221−1.9月
刊)、約35,000(F1本軽済新聞、1981年1
1月22F1、IJI I’ll ) °cあり、明ら
かに本発明の糖蛋白質と異なっている。
Furthermore, CBF has a molecular weight of about 35,000 (in 9-) TITIIN (Shizuoka Shimbun, November 221-1.9, 1981), and about 35,000 (F1 Hon Kousai Shimbun, 1981-1).
January 22F1, IJI I'll ) °c, which is clearly different from the glycoprotein of the present invention.

また、本発明の糖蛋白質はインターフェロンとは抗ウィ
ルス作用のない点で、C13x 、 G Rx1.CB
X2とは分子量の点で明らかに異なっている。CBx 
、C13x I 、Cl5X 2の分子量は、それぞれ
12,000 ・17.(100,70,000−一・
90,000.40,000−5り0.00(1−(’
ある。
Furthermore, the glycoprotein of the present invention differs from interferon in that it does not have an antiviral effect, and is different from C13x, G Rx1. C.B.
It is clearly different from X2 in terms of molecular weight. CBx
, C13x I and Cl5X 2 have molecular weights of 12,000 and 17. (100,70,000-1・
90,000.40,000-5ri0.00(1-('
be.

本発明のCRX 3の軸台イ1…は、特り′1請求の範
囲に記載したとおり、8・〜・15%であり、での組成
は、ヘキ゛ノース6・、・10%、lX4−ソ1Jミン
1へ一2%、シアルM1〜3%であり、糖含有量が9−
114%であり、イの組成が、l\1ソース6〜・9%
、ヘキソザミント〜・2%、シアル酸2・・3%のもの
、軸台4」jlが9・−・・1/I%−(・あり、イの
組成がヘキソース7へ・10%、ヘキソサミン1〜2%
、ジノJル酸1−2%のものなどが含まれる。また、C
B X ]のN末端側からのアノ酸配列は、特許請求の
範囲に記載したどおり、アラニンーアうニンーであり、
N末端側からのj′ミノ酸配夕1jか、ン′ラニンーア
ラニンー廿すン〜スレAニンーア°フニンーのもの、ア
ラニンーアラニンーメブAニンースレオニン−アラニン
−の6の、t3とが含まれる。CRX 3の等電白に−
)いては、6.3へ−7,8のものやE3.〇−9,2
のbのイ1どがある。
The axle stock I1 of the CRX 3 of the present invention has a composition of 8...15%, as described in the first claim, and has a composition of 6...10% hexane, lX4-sol. 1 J min 1 to 2%, Sial M 1 to 3%, and the sugar content is 9-
114%, and the composition of A is 6 to 9% for l\1 sauce.
, hexosamint ~・2%, sialic acid 2・・3%, abutment 4''jl is 9・・・・1/I%−(・Yes, the composition of A is hexose 7・10%, hexosamine 1 ~2%
, those containing 1-2% of dinofluoric acid, etc. Also, C
The amino acid sequence from the N-terminal side of B
From the N-terminal side, the j′ amino acid sequence 1j, the one from the N'lanine to the alanine to the one from the N-terminal side to the one from the N-terminal side to the one from the N-terminal side to the 6th t3 of alanine-alanine-mebA-nin-threonine-alanine- and is included. To the isoelectric white of CRX 3-
) are 6.3 to 7, 8 and E3. 〇-9,2
There are b, a, and so on.

次に本発明に用いた細胞について)ホl\る。Next, regarding the cells used in the present invention).

本発明(5二おいて使用されるヒトまlζ(、艮ヒ1へ
以外の温血動物由来の細胞は、S瀾内糸細胞、リンパ材
球、白血病細胞もしくは繊眉1芽細胞であれば良く、初
代Ji’4 養または培養株化された細胞のいずれを用
いること6でき、好ましくは、ヒ]・の治療にCI”l
X 3を供JるにI31、ヒ1〜山来の細胞(゛あるこ
とが、治療十に生じる抗原性イ1どの副作用面において
安全である。このような細胞どして(ま、例えif 1
ミヨシ(M 1yoshi、  I 、、N8ture
 、267巻、8’13−4344頁、1977年)に
より報告されたB A I L −I Ill胞、TA
L L −I II胞、NA3−1−−−1細胞、ジi
−−ナル・オブ・クリニカルマイクロバイAOジー(J
 、 CIin 、 M 1crobiol1.1巻、
116〜117頁、1975年)に記載されたNao+
alWa細胞、ジャーナル・オブ・イムノnジー(J、
I n+munolooy  、1 13 ’l!−1
1334〜1345頁、1974年)に記載されたM−
7002細胞、B−7101細胞、フ[レジ7000細
胞(フロラ召)、rllJi培養」 (6巻、527〜
546頁、1980年)に記載されているJ BL細胞
、EF3V−8a Ill胞、E B V −Wa細胞
、E8V−1+011[1胞や、その他B A 1.、
 M 2111胞、CCRF−8B細胞(ΔTCCGC
I−120>などの株化細胞、ヒト由来のリンパ球、マ
クロファージ、さらには、ヒI−由来のリンパ球、マク
ロファージを各種ウィルス、薬剤、放射線などで処理し
培養株化させた@胞などが自由に使用できる。
The cells derived from warm-blooded animals other than human ζ used in the present invention (52) may be S-cells, lymphoid cells, leukemia cells or fibroblasts. Either primary Ji'4 cells or cultured cells can be used, preferably CI'1 for the treatment of humans.
When X3 is supplied, it is safe to use I31, human to human cells (') in terms of side effects such as antigenicity and other side effects that occur during treatment. 1
Miyoshi (M 1yoshi, I,, N8ture
267, pp. 8'13-4344, 1977).
L L -I II cell, NA3-1---1 cell, dii
--Naru of Clinical Microbiology AOG (J
, CIin, M 1crobiol 1.1 volume,
116-117, 1975)
alWa cells, Journal of Immunology (J,
I n+munolooy, 1 13 'l! -1
1334-1345, 1974)
7002 cells, B-7101 cells, Flora 7000 cells, rllJi culture'' (Volume 6, 527-
JBL cells, EF3V-8a Ill cells, EBV-Wa cells, E8V-1+011[1 cells, and other B A 1. ,
M2111 cells, CCRF-8B cells (ΔTCCGC
I-120> and other established cell lines, human-derived lymphocytes, macrophages, and human I-derived lymphocytes and macrophages treated with various viruses, drugs, radiation, etc. and cultured to form @ cells. Free to use.

また、ヒ1−1ス外の濡面動物由来の細胞としては、例
えば、マウスBALB/C3T3細胞(]nつ判)、マ
ウス白血病細胞であるl−1210m1121(J、 
Natl、  Cancer l nst、、13巻、
1328頁、1953年)やP388細胞(3cien
tNic p roceedings、 P atho
logists&  l”3acteriologis
ts133巻、603頁、1957年)、マウス黒色腫
瘍C1one  M−3(フロラン1)、ラット挿瘍L
IC−WRC256(゛)日つネ])、ハムスター黒色
腫瘍RPM11846(フロラ召)の他、リンパ球、マ
クロファージなどが使用できるが、本発明で用い得る細
胞は、前記の−6のに限定されるものではない。
In addition, examples of cells derived from wet animals outside of H1-1 include mouse BALB/C3T3 cells (]n size), mouse leukemia cells l-1210m1121 (J,
Natl, Cancer lnst, vol. 13,
1328, 1953) and P388 cells (3cien
tNic proceedings, Patho
logists & l”3acteriology
ts vol. 133, p. 603, 1957), mouse black tumor C1one M-3 (floran 1), rat incision L
IC-WRC256 (゛) Japan]), hamster melanoma RPM11846 (Flora), lymphocytes, macrophages, etc. can be used, but the cells that can be used in the present invention are limited to the above-6. It's not a thing.

次に本発明のCBX 3の生成方法を述べる。Next, a method for producing CBX 3 of the present invention will be described.

前記したヒ1〜またはヒ1〜以外の濡面動物由来の細胞
よりCBX:・′3を生成さぜる方法は自由であり、細
胞より直接そのまま、または、培養増     1パ殖
さI! −’CG 1B ×sを採取することもできる
が、さらに多量のCBX 3を所望するなら、誘導剤を
それらの細胞に作用させることもできる。例えば、ヒ1
〜またはヒト以外の濡面動物由来の細胞を適当な培地に
浮遊さ「、誘導剤を直接細胞に作用させてCB X 3
を誘導生成させ、その浮遊液からCBx 3を採取り−
れば良い。
There is no limit to the method of producing CBX:・'3 from cells derived from animals other than the above-mentioned Hi1~ or Hi1~, and CBX:・'3 can be produced directly from the cells or grown in culture. -'CG 1B ×s can be collected, but if a larger amount of CBX 3 is desired, an inducing agent can be applied to those cells. For example,
~ Or cells derived from non-human wet animals are suspended in an appropriate medium and an inducing agent is directly applied to the cells to induce CB
CBx3 was induced to be produced and CBx3 was collected from the suspension.
That's fine.

CBX sの誘導剤としては、通常、例えば、フィ]〜
へマグルチニン、コンノJナバリン△、ポークウィード
ミ1〜−ゲン、リボボリリツカリドなどのレクチン、ボ
スホマンプン、デキストランリン酸などの多糖類、■ン
1:1〜キシン、菌体成分、■1菌、ウィルス、核酸お
よびボリヌクレオーチドなどの一種もしくは二種以トが
用いられる。また、感作化された細胞にとっては抗原も
CBx 3 H導剤である。
Inducers for CBX s typically include, for example,
Hemagglutinin, Konno J Navarin △, Pork Weed Mi1--gen, lectins such as riboboriritukalide, polysaccharides such as bosphomanpun, dextran phosphate, ■N1:1~Xin, bacterial cell components, ■1 bacteria, One or more of viruses, nucleic acids, and vorinucleotides are used. Furthermore, antigens are also CBx 3 H conductors for sensitized cells.

このようにして生成されたC f3 X 3は公知のl
ii製分離法、例えば、塩析、透析、濾過、遠心力ml
、濃縮、凍結乾燥などを行なうことによって容易に採取
できる。ざらに高度には、−7オン交換体への吸着、溶
出、ゲル濾過、電気泳動、または、抗体もしくはウレツ
クス・ヨーロベウス・アグルチニン結合セファデックス
などを用0たアフィニティクロマ1へグラフィーを用い
ても良い。
C f3
ii separation methods, such as salting out, dialysis, filtration, centrifugal force ml
It can be easily collected by performing , concentration, freeze-drying, etc. At a more advanced level, adsorption to a -7 ion exchanger, elution, gel filtration, electrophoresis, or affinity chroma 1 using an antibody or Sephadex conjugated to Urexus/Eurobeus/Agglutinin may be used. .

次に培養株化された細胞を濡面動物の体内で増殖させる
方法について述べる。
Next, we will describe a method for proliferating cultured cells in the body of a eutrophic animal.

A(ブを明において使用されるヒl〜またはと1〜以外
の濡面動物由来の培養株化された細胞は網内系細胞、リ
ンパ芽球、白血病細胞もしくは繊維芽細胞であれば良く
、好ましくは、ヒ]・の治療に(CI3X3を供するに
は、ヒ1−由来の細胞であることが、治療上に生じる抗
原性などの副作用面において安全である。このような細
胞としては、先に述べたように、例えば、B△L L 
−1細胞、TAI+−1細胞、N A l−1−1細胞
、Nama1wa細胞、M−7002細胞、13−71
011Il胞、)1]つ7000細胞、B△l−R/ 
C3′F3劃11.L、1210細胞、l〕388 m
胞、リンパ球、マク1゛−1フアージなどが自由に使用
できる。
The cultured cells derived from animals other than Hi-I or I-- used in A (A) may be reticuloendothelial cells, lymphoblasts, leukemia cells, or fibroblasts; Preferably, to provide CI3X3 for the treatment of humans, cells derived from humans are safe in terms of side effects such as antigenicity that occur during treatment. As mentioned in, for example, B△L L
-1 cells, TAI+-1 cells, N A l-1-1 cells, Namalwa cells, M-7002 cells, 13-71
011Il cells, ) 1] 7000 cells, BΔl-R/
C3'F3 section 11. L, 1210 cells, l] 388 m
Cells, lymphocytes, Mac1-1 phages, etc. can be used freely.

また、かかる細胞を直接移植づるか、ま1.l:4よ、
1     細胞を拡散チトンバーに接種して植込む温
血動物は、これらのし1−またはヒl〜以外の温血動物
由来の16養株化された細胞が増殖し得るものであれば
、同種または異種の動物であっても良く、例エバ、ニワ
1〜す、ハ1〜などの鳥類、イヌ、ネ二1、リル、ウリ
ギ、ヤギ、ブタ、ウマ、ウシ、モルモット、ラツ1〜、
ハムスター、鵡通マウス、ヌードマウスイイどの吐乳類
が使用できる。
In addition, such cells can be directly transplanted, or 1. l: 4,
The warm-blooded animal to be implanted by inoculating the cells into a diffusion chiton bar is the same type or one that is derived from a warm-blooded animal other than these 1- or HiI-, as long as the cultured cells can proliferate. Animals of different species may be used, such as birds such as ebay, chickens, birds, dogs, lil, eels, goats, pigs, horses, cows, guinea pigs, rats, etc.
Mammals such as hamsters, snail mice, and nude mice can be used.

<r J’;、これらの動物に異種の動物由来の培養化
された細胞を移植づる鴎合には、好ましくない免疫反応
を生じるおイれがあるの(・、イの反応をでさるだ(J
抑えるため、使用覆る動物はできるだt夕幼若な状態、
すなわち、卵、肝、胎児、または新生期、幼少期のもの
のhが好適である。
<r J';, The transplantation of cultured cells derived from a different species of animal into these animals has the potential to cause an unfavorable immune reaction (・, I will not be able to explain the reaction of I). (J
To suppress the use of caps, animals can be kept in their juvenile state,
That is, eggs, liver, fetuses, or those in the newborn stage or infant stage are suitable.

また、これらの動物に例えば、200−600レム程麿
の1ツクス線、ししくに1、免疫抑制剤イ「とを注射J
るなどの前処理4−1aどこし、免疫反応を抑えること
もできる。
In addition, these animals may be injected with, for example, 200-600 rem of 1 tux, 1 ml, and an immunosuppressant.
Pretreatment 4-1a, such as pretreatment, can also suppress immune reactions.

使用づる動物がヌードマウスまたはヒト以外の温血動物
由来の培養株化された細胞にとっても同種である場合に
は、成長したものであっても免疫反応が弱いので、前記
した前処置を必要どJることなく、ヒ1〜またはヒ1〜
以外の温血動物由来の培養株化された細胞が移植でき、
急速に増殖さびることができるので、特に好都合で・あ
る。
If the animal to be used is homologous to nude mice or cultured cells derived from warm-blooded animals other than humans, the immune response will be weak even if the cells are grown, so the pretreatment described above may not be necessary. Hi1~ or Hi1~ without J
Cultured cells from other warm-blooded animals can be transplanted,
It is particularly advantageous because it can rapidly grow and rust.

また、ヒトまたはヒI−以外の温血動物由来の細胞を、
例えば、まず、ハムスターに移植して増りβさせた後、
この細胞をざらにヌードマウスに移植するなどのように
、ヒト以外の温血動物間(゛移植して細胞の増り1をJ
ζり安定化したり、ざらにそれから生成されるCRX 
3114を増加さUることも自由で′ある。
In addition, cells derived from warm-blooded animals other than humans or humans,
For example, first, after transplanting it to a hamster and increasing β,
These cells can be transplanted into warm-blooded animals other than humans (such as by transplanting them into nude mice).
CRX stabilized or generated from it
You are also free to increase 3114.

この場合、同イ小間、同族間は勿論のこと同綱間、同門
間移植であってしよい。ヒ1へ由来の細胞を移植づるf
h動物体内部位は、移植した細胞が増夕めしうる部位ぐ
あればよく、例えば尿液腔、静脈、II!2腔、皮下な
ど自由に選ばれる。
In this case, it is possible to transfer not only between the same booth or the same family, but also between the same class or class. Transplanting cells derived from human 1
h The site within the animal body may be any site where the transplanted cells can proliferate, such as the allantoic cavity, vein, II! You can choose freely, such as 2 cavities or subcutaneous.

また、直接動物体内にヒl〜またはヒト以外の温血動物
由来の18養株化された細胞を移植することイ1く、動
物細胞の通過を肝i tllシミる多孔性の舗過膜、例
えば、孔径的10−7−・10“311を有づるメンブ
ランフィルタ−1限外瀘過膜または]1口−−ノアイバ
ーなどを設(」た公知の各種形状、大きさの拡散チトン
バーを動物体内、例え(、f腹腔内に埋設して、動物体
からの栄養物を含む体液の供給を受【〕つ゛つ、そのチ
ャンバー内で前述の培養株化されたヒト由来の細胞を何
れ1−)増殖さUることができる。
In addition, it is possible to directly transplant cultivated cells derived from humans or warm-blooded animals other than humans into the animal body, and a porous pavement membrane that prevents the passage of animal cells, For example, a membrane filter with a pore diameter of 10-7-. For example, the human-derived cells cultured as described above are grown in a chamber that is implanted in the peritoneal cavity and receives a supply of body fluids containing nutrients from the animal body. You can use it.

また、必要に応じて、このチャンバー内の栄養物を含む
溶液を動物体内の体液と接続し、潅流させるように()
たチャンバーを、例えば動物体表に取F目J1チ亀?ン
バー内のヒ1〜由来の細胞の増殖状態を透視できる」:
うにすることも、また、このチ髪・ンバ一部分のみを着
脱交換できるようにして動物を屠殺せずにメi命〜杯細
胞を増殖させて、動物個体当りの細胞生産間を更に高め
ることもできる。
Also, if necessary, the solution containing nutrients in this chamber can be connected to the body fluids inside the animal and perfused ()
For example, place a chamber on the surface of an animal's body. It is possible to see through the proliferation state of human-derived cells within the chamber.
It is also possible to make only part of the hair and hair part removable and replaceable, allowing goblet cells to proliferate without slaughtering the animal, thereby further increasing cell production per individual animal. can.

これらの拡散チトンバーを利用する方法は、ヒトまたは
ヒト以外の馬面動物由来の株化された細胞が動物細胞と
直接接触しないので、この細胞のみが容易に採取できる
だけでなく、好ましくない免疫反応を起す心配も少ない
ので、免疫反応を抑制J“る前処置の必要もなく、各種
温血動物を自由に利用できる特徴を有している。
Methods using these diffusion chiton bars do not allow the established cell lines derived from humans or non-human equine animals to come into direct contact with animal cells, so not only can these cells be easily harvested, but they can also cause undesirable immune reactions. Since there are few concerns, there is no need for pretreatment to suppress immune reactions, and various warm-blooded animals can be used freely.

移植した動物の維持管理は、イの動物の通常の飼育管1
!+を続りればよく、移植後といえども特別の取1及い
は何ら必要としないので好都合である。
The maintenance and management of the transplanted animals is as follows: 1.
! This is convenient because all you have to do is follow +, and no special steps are required even after transplantation.

ヒ1〜またはヒト以外の温血動物の培養株化された細胞
を増殖させるための期間は通常1〜10週の期間で目的
を達成することができる。このようにして得られるヒ1
〜またはヒ]〜以外の温血動物由来のJ(1養株化され
た細胞数は動物個体当り107へ・1012個、または
イれ以I−に達することも見出した。
The period for growing cultured cells of humans or warm-blooded animals other than humans can usually achieve the objective within a period of 1 to 10 weeks. Hi1 obtained in this way
It was also found that the number of cells cultivated in one cultured cell line reached 10 to 1012 cells per animal, or more than I-, derived from warm-blooded animals other than .

(条g−at’tば、木光明て使用JるCRX3の製造
方法にJ:り増殖させたヒ1へ以外の温血動物由来のj
8養株化された細胞数は、動物個体当り移植した細胞数
の約102〜107倍、またはそれ以上にも達し、生体
外の栄養培地に接種して増殖させる場合の約10・〜・
106倍、またはそれ以上にも達して、CB X 3の
製造のために極めて好都合である。
(If the method for producing CRX3 used by Akira Kokumitsu is not limited to the production method of CRX3, it should be noted that
8 The number of cultivated cells is about 102 to 107 times the number of cells transplanted per individual animal, or more, and about 10 to 10 times more than the number of cells transplanted per animal, and about 10 to 10 times more than the number of cells transplanted per animal.
106 times or even more, which is extremely favorable for the production of CB X 3.

このようにして増殖させた、ヒ1〜またはヒト以外の温
血動物由来の、培養株化された細胞から、CB X 3
を精製さける方法は自由である。
CB
You are free to decide how to avoid refining it.

イれが増殖した動物体内のままで採取することもできる
。例えば、腹腔内の腹水に浮tl状で増殖した、ヒトま
たはヒ1〜以外の温血動物由来の培養株化された細胞に
、または皮下に増殖させた細胞より、直接そのままCB
X 3を採取すればよい。
It can also be collected from the animal's body where the disease has grown. For example, CB can be used directly from cultured cells derived from humans or warm-blooded animals other than humans, grown in floating form in ascitic fluid in the peritoneal cavity, or from cells grown subcutaneously.
All you have to do is collect X3.

また、ヒ1〜またはと1〜以外の温血動物由来のj8養
株化された細胞を動物体内に増殖させたまJl、または
、体外に取り出し、生体外で誘導剤を作用さけてCB 
X 3を誘導生成さけることもできる。例えば、腹水中
で増殖したヒトまたはヒ]〜以外の温血動物由来の培養
株化された細胞を分取し、また、皮下に生じたと1〜ま
たはヒ1−以外の温血動物由来の培養株化された細胞を
含むIIt瘍を摘出、分散し、得られる細胞を約20−
40て;に保った栄養培地に、細胞濃度が約105〜1
0’/mlに(2るように浮遊させ、これにCB X 
3の誘導剤を作用させることにJ:ってCB X 3を
誘導生成させ、これを採取すればよい。
In addition, J8 cultured cells derived from warm-blooded animals other than human 1~ or 1~ can be grown in the animal's body, or taken out of the body, and incubated with CB while avoiding the action of an inducing agent in vitro.
You can also avoid induced generation of X3. For example, cultured cells derived from a warm-blooded animal other than humans or humans grown in ascites are separated, and cells grown subcutaneously are cultured from a warm-blooded animal other than humans or humans. The IIIt tumor containing established cell lines is excised and dispersed, and the obtained cells are divided into approximately 20-
In a nutrient medium maintained at 40°C, the cell concentration was approximately 105-1
0'/ml (2), and add CB
CB x 3 can be induced and produced by applying the inducing agent No. 3, and then collected.

ざらに、ヒ1〜またはヒト以外の温血動物由来の培養株
化された細胞を拡散チャンバー内で増殖させた場合は、
増殖させた細胞をチャンバー内のままで、またはチャン
バー内イ取り出して、直接そのまま、または、誘導剤を
作用さt!’CB×3を採取することらできる。
In general, when cultured cells from humans or other warm-blooded animals are grown in a diffusion chamber,
The proliferated cells can be left in the chamber, or taken out from the chamber and directly left, or treated with an inducing agent! 'You can collect CB x 3.

また、例えば増殖させたヒトまたはヒI〜以外の温血動
物由来の培養株化された細胞にまず動物体内のままでC
BX3を誘導生成させたのら、ついで同−動物側・・、
体の特定の部位または全体から採取したヒi・またはヒ
1〜以外の温血動物由来     1゛の培養株化され
た細胞に動物体外でCRx 3を誘導生成させる方法、
また再度CBX 3の誘導生成に使用覆る方法、または
動物体内に埋設、もしくは接続するチャンバーを交換し
て得られる細胞数を増加させる方法などによって、使用
する動物個体当りのCB X 3生成量を更に高めるこ
とも自由である。
In addition, for example, cultured cells derived from humans or warm-blooded animals other than humans may be first cultured while in the animal body.
Once BX3 was induced to be produced, the same animal side...
A method for inducing and producing CRx 3 outside an animal body in cultured cells derived from a warm-blooded animal other than a human or a human, collected from a specific part or the whole body,
In addition, the amount of CBX3 produced per individual animal used can be further increased by covering the cells used for induced production of CBX3, or by increasing the number of cells obtained by replacing the chamber buried or connected to the animal body. You are also free to increase it.

h4メ、CB X 3を誘導生成づるには、先に述べた
CBX 3の誘導剤を用いれば良く、このようにして生
成されたC B X 3も先に述べた公知の生成分離法
、さらに高度な生成分離法などを用いても良い。
In order to produce CB Advanced production separation methods may also be used.

後述Jる実験例から明らかなように、CF3 X3は腫
瘍細胞に選択的な増殖抑制作用を示し、しかt)癌転移
を著明に抑制するばかりでなく、極めて多種多様の1f
fi瘍に右ダ1であ・つたにもかかわらず、これらの薬
理作用を承り用量に比して充分高い用量にa5いてち、
まつI(り安全であり、例えば、ヒ1〜の白血病、消化
器癌、食道癌、咽頭癌、肝癌、皮膚癌、脳腫瘍、肉腫、
肺癌、腺癌、乳癌、子宮癌などの腫瘍の治療【J用いて
極めて有用である。CBX 3は、通常用いられる投与
法であるtJ: gFJ剤、点眼剤、点鼻剤、吸入剤、
外用剤、経口投与用剤、直腸投与用剤、膣内投与用剤な
どに用いることができる。また、CBX3の成人1日当
りの治療量は、その安全性から考λで、特に限定するま
でもないが、0.5〜500,000単位であり、ざら
に好ましくは、局所適用においては0.5〜5.000
単位、静脈t:I:制、筋肉i1剣などの全身注射にお
いては20〜1r)0.000単位、経口投与において
(ま、50・〜500,000500,000単あるい
は症状に応じて適宜増減することができる。
As is clear from the experimental examples described below, CF3
Even though I had a five-year-old fissure, I received these pharmacological effects and took a dose that was sufficiently high compared to the dose.
It is safe and effective for example, human leukemia, gastrointestinal cancer, esophageal cancer, pharyngeal cancer, liver cancer, skin cancer, brain tumor, sarcoma,
It is extremely useful in the treatment of tumors such as lung cancer, adenocarcinoma, breast cancer, and uterine cancer. CBX 3 can be administered using the commonly used administration methods: gFJ preparations, eye drops, nasal drops, inhalants,
It can be used for external preparations, oral administration preparations, rectal administration preparations, intravaginal administration preparations, and the like. In addition, the daily therapeutic dose of CBX3 for adults is 0.5 to 500,000 units, although it is not particularly limited, considering its safety, and more preferably 0.5 to 500,000 units for topical application. 5-5.000
unit, intravenous t:I: 20-1r for systemic injection such as intramuscular injection, 0.000 unit for oral administration (50-500,000,500,000 unit, or increase or decrease as appropriate depending on symptoms) be able to.

CB X 3は任意慣用の製薬用担体、基剤あるいは賦
形剤とともに慣用の方法で医薬用製剤とすることができ
る。絆[1投与剤としてはカプセル剤、錠剤、散剤など
の賜溶製剤、直賜内投与剤としては直腸坐剤、注射剤ど
しては水溶性注射剤あるいは用量においr tl−射用
蒸留水に溶解しで使用Jる凍結乾燥注射剤、外用剤とし
ては軟膏剤あるい(よローションとして用いるのが好ま
しい。このほか、点]IIq剤、点鼻剤ししくは吸入剤
として用いることもできる。
CB X 3 can be formulated into pharmaceutical formulations in a conventional manner with any conventional pharmaceutical carriers, bases or excipients. Bonds [1 Administration: soluble formulations such as capsules, tablets, powders, etc. Direct administration: rectal suppositories; injections: water-soluble injections or distilled water for injection. Freeze-dried injections can be used by dissolving them in water, and for external use, they are preferably used as ointments or lotions.In addition, they can also be used as topical preparations, nasal drops, or inhalants. .

以下、本発明の糖蛋白質、づ゛なわちCBX 3の実験
例および実施例について述べる。
Hereinafter, experimental examples and examples of the glycoprotein of the present invention, namely CBX 3, will be described.

実験例11111!!障害作用の選択性腫瘍細胞である
KB(鼻咽腔症〉細胞、M×−1(乳癌)細胞(癌研究
会、塚越茂博士より分!”4. ) 、l−l L: 
+〕−2(咽頭癌) 、l−I E L−(肝癌)細胞
(フロラ召)、正常細胞である小腸(intestin
e) /I ()7細胞、ジラルデイ心臓(Girar
di  l−1eart)細胞、チトング肝(Chan
g  l !Ver)細胞、べrl (V ero 、
リル腎)細胞、Mr)CK(イヌ腎)細胞(70つ社)
を、それぞれ、10s個あらかじめ24時間培養後、P
388および11210(白血病〉細胞(癌1i1]究
会、塚越茂階十より分与)105個を直ちに、被検物質
を添加しIC10%仔牛血清含有イーグルIP8地1 
…1中で、37℃、5%炭酸ガスを含む酸素ガス通気下
に48時間18差した。培養終了後、トリパンフルーで
染色されない生残細胞数を光学顕微鏡下にt1致し、対
照を100として被検物質の50%細胞死滅S度を削算
した。被検物質としては、侵述する実施例2(製造例)
で得たC B X 3または実施例5(“製造例)で得
たC13×3ならびにマイトマイシンCを用いた。結果
を第2表おJ:び第3表に示した。
Experimental example 11111! ! KB (nasopharyngeal disease) cells, Mx-1 (breast cancer) cells, which are selective tumor cells with damaging effects (from Cancer Research Society, Dr. Shigeru Tsukagoshi! "4.), l-l L:
+]-2 (pharyngeal cancer), l-IEL- (liver cancer) cells (flora), normal cells in the small intestine (intestin
e) /I ()7 cells, Girardi heart (Girar
di l-1eart) cells, Chitong liver (Chan
GL! Ver) cell, Verl (V ero,
Lil kidney) cells, Mr) CK (canine kidney) cells (70tsusha)
After incubating for 10 s for 24 hours, P
Immediately, 105 cells of 388 and 11210 (donated by Shigeshina Tsukakoshi, Leukemia Cells (Cancer 1i1) Study Group) were added with the test substance, and then mixed with Eagle IP8-1 containing IC 10% calf serum.
... 1 for 48 hours at 37° C. under aeration of oxygen gas containing 5% carbon dioxide gas. After completion of the culture, the number of surviving cells that were not stained with trypan flu was counted under an optical microscope, and the 50% cell killing S degree of the test substance was subtracted from the control value as 100. The test substance is Example 2 (manufacturing example)
C B

第 2 表  (第1実験群) 汀1)実施例2(WA造例)で冑たに13×3第 3 
表  (第2実験酊) ン11)実施例5(製)6例)で得たC13X 3以1
−の結果から明らかなとおり、CB X 3は正常細胞
に実質的には障害を与えることなく、腫瘍細胞に選択的
に障害を与えた。これに対し、マイ1〜ンイシンCは、
正常細胞および腫瘍細胞に夕・l L、)パ択i11の
2Tい障害作用を示した。
Table 2 (1st experimental group) 1) Example 2 (WA example)
Table (Second Experiment) N11) C13X obtained in Example 5 (6 examples)
As is clear from the results of -, CB X 3 selectively damaged tumor cells without substantially damaging normal cells. On the other hand, My1~NishinC,
2T showed a detrimental effect on normal cells and tumor cells.

実験例2 ザル]−7180およびT−リッヒ癌趙 移植マウス及ばず影響 ザルローフ180細胞、エーリッヒ癌細胞を体重25−
3 (”) 0のdd’、’丞相マウスに1匹当り3X
10’個を腹腔内移植し、生存日数を観察しIC,、後
述する実施例2(製j告例)または実施例5(製造例)
で得たCBX3を、1群5匹のマウス(JII!瘍移植
翌II J:り死亡直前まで連[1静脈)iq−f し
た。結果を対照群の平均生存日数を100どして第1表
および第5表に示した。
Experimental Example 2 Monkey]-7180 and T-Rich cancer Zhao transplanted mice had no effect on monkey loaf 180 cells, Ehrlich cancer cells weighed 25-
3 ('') 0 dd', 3X per mouse
10' cells were implanted intraperitoneally, and the number of survival days was observed.
The CBX3 obtained in 1 was administered to 5 mice per group (1 vein) until just before death. The results are shown in Tables 1 and 5, with the average survival days of the control group divided by 100.

f゛ り14 表   (第1実験[Y) 注1)実施例2(製造例)で得たCBX 3第 5 表
   (第2実験群) 以−Iの結果J、す、CRXxlまりル=+−7180
#3よびT−リツと癌のいずれを移植したマウスにおい
ても、明らかな抗胛瘍作用を示した。
Table 14 (First experiment [Y) Note 1) CBX obtained in Example 2 (manufacturing example) Table 5 (Second experimental group) Result of I-I J, S, CRXxl Marill = + -7180
Mice transplanted with both #3 and T-ritsu and cancer showed a clear anti-tumor effect.

実験例3 白血病マウスの生存日数に及ぼす影響体Φ2
0・〜・21)gのRD F +糸紐マウスの腹腔内に
1匹当り105個のマウス白血病11210又は101
個のマウス白血病P388を移桶し、生存日数を観察し
た。1群を5匹として後)ホする実施例2(!ll造例
)また(51実施例5(製造例>テ’i*たC B X
 3を、移(「1翌日に1同腹腔内投与した。結果を対
照群の平均/4(を日数を100として第6表および第
7表に示した。
Experimental Example 3 Influencer Φ2 on survival days of leukemia mice
0.~.21) g of RD F + string mouse intraperitoneally 105 murine leukemias 11210 or 101 per mouse
Mouse leukemia P388 cells were transferred to a tube, and the number of days of survival was observed. (51 Example 5 (Manufacturing example)
3 was intraperitoneally administered on the next day. The results are shown in Tables 6 and 7, with the average of the control group/4 (days being 100).

?11)実施例2(製造例)で得たCl5X3以りの結
果にす、CB X sはマウス白血病1−1210おに
びl]388のいずれの担癌マウスにおいても、明らか
な抗腫瘍作用を示した。
? 11) Based on the results of Cl5X3 obtained in Example 2 (Production Example), CB Indicated.

実験例4 肺癌マウスの生存日数に及はす影響体重2〇
−・25(lのBDFt系紺マ糸紐の右大腿部筋肉内に
2X10@個のルイス肺癌細胞を移植し、生存11数を
観察した。1群を6匹として、後述する実施例21M3
i!i例)または実施例5(製造例)で得たC I’3
 x 3を移植翌日より北面11前まで連1−1静脈注
射lノた。結果を、対照Uの平均生存日数を100とし
て、第8表および第9表に示した。
Experimental Example 4 Effect on survival days of lung cancer mice 2×10 Lewis lung cancer cells were transplanted into the right thigh muscle of a BDFt-based navy blue thread with a body weight of 20-25 (l), and 11 survived. was observed.One group was made up of 6 animals, and Example 21M3, which will be described later.
i! C I'3 obtained in Example i) or Example 5 (Production Example)
From the day after the transplant, 1-1 intravenous injections of x3 were administered until 11 days before the north face. The results are shown in Tables 8 and 9, with the average survival time of control U being 100.

ン11)実施例2(製)ろ例)で得IこC13x3注1
)実施例5(製造例)で1qだC13X3以上の結果よ
りCBX3は、肺癌に対して明らかに抗腫瘍作用を示し
た。
11) Example 2 (manufactured filter example) obtained from IkoC13x3 Note 1
) In Example 5 (manufacturing example), CBX3 clearly showed an antitumor effect against lung cancer, based on the results of 1q C13X3 or more.

実験例5 乳癌マウスに及ぼJ−影響 体重20〜25(lのB A L、 B / c系ヌー
ドマウスの背部皮下に、じ1−乳癌(MX−1>2n+
m角片を移植し、14日後より1411間、後述1−る
実施例2(’!!造例)で1ηたまたは実施例5(製造
例)で得たC RX 3を1日1回静脈汗射し、投与開
始後15日後に原発果睡瘍体積を測定した。結果を第1
0表および第11表に示ず。
Experimental Example 5 J- Effect on Breast Cancer Mice Body weight 20-25 (l) BAL, B/c nude mice were subcutaneously treated with breast cancer (MX-1>2n+).
After 14 days of transplantation of the m-square piece, 1η of Example 2 ('!! fabrication example) or CRX 3 obtained in Example 5 (manufacturing example) was intravenously administered once a day for 1411 days. After sweating, the volume of the primary ulcer was measured 15 days after the start of administration. Results first
Not shown in Table 0 and Table 11.

ン41)平均信士標準誤差 注2)実施例2(製造例)で得たCBX 3* 危険率
5%以下で対照群に比し、推計学的に有意の差あり。
41) Average Shinshi standard error Note 2) CBX3* obtained in Example 2 (manufacturing example) There is a statistically significant difference compared to the control group with a risk rate of 5% or less.

ホ1; 危険率1%以五で対照群に比し、推計学的にh
息の差あり。
E1; At a risk rate of 1% or higher, compared to the control group, h
There is a difference in breath.

2.1:1)平均信士標準誤差 注2)実施例5(製造例)C得たCBX 3;1;  
危険率5%以下で対照群に比し、推h1学的に有意の差
あり。
2.1:1) Average Shinshi standard error Note 2) Example 5 (Production example) C Obtained CBX 3;1;
There is a statistically significant difference compared to the control group with a risk rate of 5% or less.

ニド:F、危険率1%以下で対照群に比し、lff17
+学的に有意の差あり。
Nido: F, lff17 compared to the control group with a risk rate of 1% or less
+ There is a scientifically significant difference.

実験例6 メチル71ランi・レン誘発腫瘍に及ばず影
響 体重20・〜25gのdd’/系マウスの側段部皮下に
3−メチルコラン1〜レン(オリーブ油溶液)を0.5
mg、/マウス・皮下注射し、約60日後」:す21日
間、後述する実施例2(製造例)または実施例55(製
造例)で得たC B X 3を1目1回静脈注銅し、投
Ij開始後21日目の腫瘍体積を測定した。結果を第1
2表d’3よび第13表に示1゜ 第 12 表  (第1実験群) 注1)平均1直に標欅4貝差 注2〉実施例2(IIJ造例)で得たCBX 3* 危
険率5%以1−で対照群に比し、JLil学的に有意の
差あり。         ′1;1;  危険率1%
以下で対照群に比し、推計学的に有意の差あり。
Experimental Example 6 No effect on methyl 71 run i/ren induced tumors. 0.5 ml of 3-methylcholan 1-ren (olive oil solution) was subcutaneously applied to the lateral part of dd'/strain mice weighing 20-25 g.
About 60 days after subcutaneous injection of CB Then, the tumor volume was measured on the 21st day after the start of Ij injection. Results first
Shown in Table 2 d'3 and Table 13 Table 12 (1st experimental group) Note 1) Average 1 direct mark 4 shell difference Note 2> CBX obtained in Example 2 (IIJ model) 3 *There is a statistically significant difference compared to the control group with a risk rate of 5% or higher. '1;1; Risk rate 1%
There are statistically significant differences compared to the control group in the following cases.

第 13 表  (第2実験群) 注1)平均1110標準誤差 ン12)実ll1色例5(製造例> −cqyたCr5
x 3;1z  危険キ゛5%Iス下で対照BYに比し
、推81学的に有意の差あり。
Table 13 (Second Experimental Group) Note 1) Average 1110 Standard Error 12) Actual 1 Color Example 5 (Production Example> -cqy Cr5
x 3; 1z There is a theoretically significant difference compared to the control BY under a 5% risk condition.

:l::l:  危険率1%Jス下で対照群に比し、l
it泪学的に有意の差あり。
:l::l: Compared to the control group at a risk rate of 1%,
There is a statistically significant difference.

以1−の結果より、CBx 3は自家腫瘍に対しで明ら
かに抗ll11i瘍作用を示した。
From the results in 1- above, CBx 3 clearly showed an anti-lllli tumor effect against autologous tumors.

実′験例7 黒色腫マウスの生存]]数に及ぼす影響体
重20−25 gのBnF+系MIマウスの背部皮下に
10’個のマウス黒色Bφ1316を移植し、生存日数
を観察した。1肝7四として、後述づる実施例2(製造
例)J:たけ実施例5(製造例)で得たCox 3を移
植翌日より死亡直前まて連1:1静脈(IQlした。結
果を対!!’、4 In’の平均生#It @を100
として、第14表および第15表に示した。
Experimental Example 7 Survival of Melanoma Mice] Effect on Number 10' mouse black Bφ1316 were subcutaneously implanted on the back of BnF+ MI mice weighing 20-25 g, and the number of survival days was observed. As 1 liver 74, Cox 3 obtained in Example 2 (manufacturing example) J:take described later was administered 1:1 intravenously (IQl) from the day after transplantation until immediately before death.The results were compared. !!', 4 In' average raw #It @100
As shown in Tables 14 and 15.

第 14 表  (第1実験BY) 第 15  表  (第2実験l!y>注1)実施例5
(製造例)で冑だCBX 3以上の結果JこりCB X
 3は、黒色腫に対して明らかに抗腫瘍作用を示した。
Table 14 (First experiment BY) Table 15 (Second experiment l!y>Note 1) Example 5
(Manufacturing example) CBX 3 or more result J stiff CB
3 clearly showed antitumor activity against melanoma.

実験例8 毒性試験 (1回投与) 体重20〜25Qのf3 D F +系卸マウスを1群
10匹とし、後述する実施例2(%J逃例)または実施
例5(製造例)で得1.:CBx3をそれぞれ静脈注射
して7日間の死亡四数を観察した。
Experimental Example 8 Toxicity test (single administration) A group of 10 f3 D F + strain mice weighing 20 to 25Q were used to test the mice obtained in Example 2 (%J missed case) or Example 5 (manufacturing example), which will be described later. 1. : CBx3 was intravenously injected and the number of deaths was observed for 7 days.

その結果、いずれのCBX 3100,0001位/K
(lを投与しても、体重、一般症状に変化イfく、10
匹全例が生存した。
As a result, which CBX 3100,0001st/K
(Even if 1 was administered, there was no change in body weight or general symptoms.
All animals survived.

実験例9 毒性試験 (308間連続投与)体重20・
〜2513のF31) F +系趙マウスを1群10匹
とし、後述する実施例2(製造例)また(ユ実施例5(
製造例)で得たOB X 3を、それぞれ30日間静脈
注射し、死亡V1数、体重変化、一般症状の観察を行な
った。体重は、午前9時から10時の間に測定し、一般
症状の観察4     は、アーウィンの方法(S c
ience、136巻、123頁、1962年)に準じ
、10.20゜30日1に行なった。結果として、いず
れのCBXiを、10,000171位/Kg、/11
投与によって30日間に死亡例1まなく、体重増加曲線
し対照群と差がみられなかった。また、一般症状におい
ても対煕詳と同様に、異常を認めなかつ Iご 。
Experimental Example 9 Toxicity test (Continuous administration for 308 days) Body weight 20.
~2513 F31) F + strain Zhao mice were set at 10 mice per group, and Example 2 (manufacturing example) and (Yu Example 5 (
The OB Body weight was measured between 9:00 a.m. and 10:00 a.m., and general symptoms were observed using the Irwin method (S c
136, p. 123, 1962), on the 30th day 1 at 10.20°. As a result, any CBXi is 10,000171st/Kg,/11
There was no death within 30 days after administration, and the weight gain curve showed no difference from the control group. Also, as with the case study, no abnormalities were observed in general symptoms.

実施例1(製造例) ヒ1〜末梢血リンパ球2 X 1Q +o個を4.0e
の10%仔牛血清含有イーグル培地に浮遊させ、フィj
・ヘマグルチニン(ディフコ召)を50 pg2′mΩ
とイするJ:う添加し、37℃、5%炭酸ガス含有酸素
ガス通気士、48時間培養号−る。18養終了後、ト清
を0.01Mリンリン酸緩衝液l」7.2)に透析後、
40−80%硫安塩析画分を得る。この両分を再び前記
のリン酸緩衝液に透析後、レファデックスG−100(
ファルマシア社ンを用いてゲル濾過を行イTい、分子f
f17゜000−〜.9 、000の分画をIF7 、
粗CB x 3両分とした、7 1JCf3X3両分を、フィ1−へマグルチニン(丸首
6油)結合セファn−スに吸着ざぜ、0゜5M  N−
アセデル−θ−刀−Iりトリミン含右0.01Mリン酸
緩衝液(pti7.2>で溶出後、透析によりN −j
’ t?ブルー[)−刀うクl−IJ−ミンを除いた後
、カルボキシメチルセルロースに0.05Mリン酸緩衝
液(pH6,11)下で吸着させ、その1*0.5M塩
化11〜リウ11含有0.05MリンM緩m液(pL1
6.4 >で吸着画分を溶出さiz’o、  1muの
CBx 3を1qた。
Example 1 (Production Example) 1 human to 2 peripheral blood lymphocytes x 1Q +o 4.0e
of Eagle's medium containing 10% calf serum, and
・Hemagglutinin (Difco) 50 pg2'mΩ
Incubate at 37°C for 48 hours in an oxygen gas venter containing 5% carbon dioxide. After 18 days of incubation, the supernatant was dialyzed against 0.01M phosphoric acid buffer (7.2).
A 40-80% ammonium sulfate salting out fraction is obtained. After dialyzing both of these fractions again against the phosphate buffer mentioned above, Rephadex G-100 (
Gel filtration was performed using Pharmacia, and the molecule
f17゜000-~. 9,000 fractions with IF7,
Three volumes of 71JCf3X, which were made up of three volumes of crude CB, were adsorbed onto a fi-1-hemagglutinin (round-necked 6 oil)-bound Sephas, and 0°5M N-
After elution with a 0.01M phosphate buffer containing acedel-θ-I tritrimine (pti 7.2), N-j was eluted by dialysis.
't? After removing blue [)-trichloride-IJ-mine, it was adsorbed to carboxymethyl cellulose under 0.05M phosphate buffer (pH 6,11), and the 1*0.5M chloride 11-11 containing .05M phosphorus M solution (pL1
The adsorbed fraction was eluted at >6.4 mL and 1 q of 1 mu of CBx3 was eluted.

このJ:うにしてjqられた(CI”3 X 3の活↑
4は5゜000単位であった。
This J: I got jqed (CI"3 X 3's life ↑
4 was 5°000 units.

実施例2(製造例) 新ぐ1−児のへl\スターに、ウサギから公知の方法で
調製した抗血清を往側して、へ11スターの免疫反応を
弱めた後、その皮下にヒトB△1.. l−1細胞(M
 *VoslN、Nature t’ 267 i、8
43へ、844頁、197フイ1)を移植し、イの後通
常の方法で3週間飼育した。皮下に生じた約15oの腫
瘤を・摘出して細切し、生理食塩水中で分散させてほぐ
した。得られた細胞を血清無添加のイーグル培地で洗浄
した後、その細胞1 X 10 ” L?tlを150
.eの10%仔牛面清含有イーグル培地に浮遊させ、セ
ンダイウィルスを9 x 106pfu添加し、37℃
、5%炭酸ガス含有酸素ガス通気下、48時間培養後、
培養上清をC)、(ンI N4リン酸緩鮨液(pl−1
7,2)に透析後、7IO〜・80%硫安塩析画分を冑
る。この画分を11■び6i+記のリン酸緩衝液に透析
後、ヒファテックスG100(ファルマシア召)を用い
てゲルー過を行ない、分子ft17.000−1゜9.
000の分画を1q、相CBx 3画分とした    
  l粗C1IX3両分をConA(シグマネ1)結合
セノ1ロースに吸着させ、0.5M α・メ°fルーD
 ?ンノシド含有0.01MリンM籾物故(rlN7.
2)F溶出後、透析によりα−メチル−1〕 マンノシ
ドを除いて、カルボキシメチ/lz t= ルEE −
スに0.05Mす> R11M 績i液(+1116 
、0 ) ’l吸t’i 8 u、 0 、05 M 
!J ン酸[衝液(pl−17,8)で溶出させて0.
2mgのCB×3を1qた。このJ:うにして得られた
0Bx3の活性(ま12.000単位であり、ぞの等電
点は6.3・−・7.8であった。
Example 2 (Manufacturing Example) Antiserum prepared from rabbits by a known method was injected into a newborn baby's heel star to weaken the immune response of the heel star, and then human inoculation was administered subcutaneously. B△1. .. l-1 cells (M
*VoslN, Nature t' 267 i, 8
43, p. 844, 197 (1), and reared for 3 weeks in the usual manner after A. A subcutaneous tumor measuring approximately 15° was removed, cut into small pieces, and dispersed in physiological saline to loosen it. After washing the obtained cells with serum-free Eagle's medium, 1 x 10" L?tl of the cells was washed with 150
.. 9x106 pfu of Sendai virus was added, and incubated at 37°C.
, after culturing for 48 hours under oxygen gas aeration containing 5% carbon dioxide,
The culture supernatant was diluted with N4 phosphoric acid solution (pl-1)
7. After dialysis in 2), remove the 7IO~.80% ammonium sulfate salting out fraction. This fraction was dialyzed against the phosphate buffer described in Sections 11 and 6i+, and then subjected to gel filtration using Hifatex G100 (Pharmacia).
000 fraction was made into 1q, and phase CBx was made into 3 fractions.
Three volumes of crude C1IX were adsorbed onto ConA (sigmane 1)-conjugated seno-lose, and 0.5M α・meroD
? Because of the 0.01M phosphorus M rice grain containing linnoside (rlN7.
2) After elution of F, dialysis was performed to remove α-methyl-1] mannoside, and to obtain carboxymethy/lz t=le EE −
0.05M in > R11M liquid (+1116
, 0 ) 'l suckt'i 8 u, 0 , 05 M
! Elute with J acid solution (pl-17,8) to 0.
2 mg of CB×3 was added to 1 q. The activity of 0Bx3 obtained by this method was 12,000 units, and its isoelectric point was 6.3.-.7.8.

実施例3(製造例) と1〜繊[細胞)11つ7000  細胞(70つ?1
)3x10’°個を1.Oeの10%仔牛而清面何イー
グル培地に浮遊さ往、フィトヘマグルチニンを終a度5
 (1Pg 、、−’ mgにイするように添加し−(
,37℃、5%炭炭酸ガス含酸酸素ガス気下、48時間
培rR後、十漬を実施例1の方法に従って精製した。こ
のJ:うにしてCF3X30゜1  m(Iを得ること
ができる。このようにして得られたC RX 3の活1
21は3,100単位であった。
Example 3 (manufacturing example) and 1 to 11 fibers [cells] 7000 cells (70?1
) 3x10'° pieces as 1. Phytohemagglutinin was suspended in 10% Oe of Eagle's medium at 5°C.
(Add to 1 Pg,,-' mg-(
After culturing for 48 hours at 37° C. under 5% carbon dioxide-containing oxygen gas, the tozuke was purified according to the method of Example 1. This J: CF3X30゜1 m (I can be obtained in this way.
21 was 3,100 units.

実施例4(製造例) ウシ末梢血リンパ球5x10I0個を10ノの10%仔
牛血清含有イーグル培地に浮遊させ、37℃、5%炭酸
カス含自M索)Jス通気下、48時間培培養る。培養終
了後、培養ト清を実施例1の方法に従って精製し1、=
。このようにしてCBX 30.1  In(lを冑る
ことができる。このようにして冑られたC B X 3
の活性は1.70実施例5(製造例) 細胞Jfr、贅で増り巨ぎぜたヒトB A L L−1
1胞(Miyos旧、N ature 、  267巻
、843−844頁、1977年)5X10”個を10
0 、/の10%仔牛而清面有イーグル培地に浮遊させ
、37℃、55%炭酸ガス含有酸素ガス通気下、48時
間培養する。培養終了後、培養1清を0゜01Mリン酸
緩衝液(pi−17,2)に透析後、710〜80%硫
安塩析画分を得る。この両分を再び前記のリン酸M衝液
に透析後、ヒファデックスG、100(ファルマシア社
)を用いてゲル濾過をi−jイfい、分子量7,000
−9.000の分画を得た。この両分を、ライ1〜ヘマ
グルヂニン(先哲?)油)結合セノアロースに吸着さぜ
、0.5MN−アセチル−D−ガラクトサミン含有0 
、0.:l:、I Mリン酸M衝液(11117,2)
で溶出後、透析によりN−アセチル−1)−ガラ   
 1゛り1〜リミンを除いた1炎、カルボキシメチルセ
ルロース 下で吸着さけ、その後0.5M塩化−J− l−リウム
含有0.05M1〜リス緩衝液(11118.(’))
で2R 出すμテ0 、 1  mgのC/ B X 
3を得た。このにうにして1qられたC B X 3の
活性は、8,200m位であり、その等電点IJ8. 
O =・9.2であった。
Example 4 (Production Example) 5 x 10 I0 bovine peripheral blood lymphocytes were suspended in 10 volumes of Eagle's medium containing 10% calf serum, and cultured for 48 hours at 37°C under aeration of 5% carbon dioxide. Ru. After the completion of the culture, the culture supernatant was purified according to the method of Example 1.
. In this way, CBX 30.1 In(l) can be removed.
The activity of 1.70 Example 5 (manufacturing example) Cell Jfr, human BAL L-1 enlarged with warts
1 cell (old Miyos, Nature, vol. 267, p. 843-844, 1977) 5 x 10'' cells
The cells were suspended in Eagle's medium containing 10% calf water and cultured at 37° C. for 48 hours under aeration of oxygen gas containing 55% carbon dioxide. After completion of the culture, the culture supernatant is dialyzed against 0.01M phosphate buffer (PI-17,2) to obtain a 710-80% ammonium sulfate salt fraction. Both fractions were dialyzed again against the aforementioned phosphate M solution, and then subjected to gel filtration using Hifadex G, 100 (Pharmacia) to obtain a molecular weight of 7,000.
-9.000 fractions were obtained. These two components were adsorbed onto senoalose bound to Lai 1 to hemagludinin (Saintets?) oil, and 0.5M N-acetyl-D-galactosamine was added.
,0. :l:, IM phosphate M buffer (11117,2)
After elution with
1 flame excluding limine, adsorbed under carboxymethyl cellulose, then 0.05M 1~lith buffer containing 0.5M chloride-J-Lium (11118.('))
2R gives μTE0, 1 mg of C/B
I got 3. The activity of C B
O = 9.2.

実施例6(水溶性注射剤) G[3X 3         20(1.00(l 
 中位塩化ナトリウム       18  (1注躬
用魚留水にて全量  2.00O  n+j実施例2(
製造例)で得たCBX3および塩化すトリウlえを秤量
して混合した後、if kJ用熱蒸留水1OOOn1ρ
に溶解し、史に注射用蒸留水で仝吊を2,000m.l
lとづる。この水溶液を、メン1ランフイルターを用い
て無菌的(こ濾過し,、濾液を滅菌したガラス容器に2
,Qm.L?l”つ充填して密栓し、水溶性注射剤とし
lC0 実施例7(凍結乾燥注射剤) 0 13 x 3200,000  単位20%ヒト血
清アルブミン  20  mB1B化す]〜リウム  
     i8g往銅用蒸留水ニテ仝m2,000  
mjl実施例5(製造例)で得たCBX 3および塩化
゛ノ1−リウムを秤部して混合し1〔後、注射用蒸留水
1,000mΩに所定量のヒト面端アルブミンを加えた
水溶液に溶解し、更に24QJ用蒸留水で全量を2,O
OOmgとする。この水溶液を、メン1ランフイルター
を用いて無菌的に濾過し、2、(’>mUずつ滅菌した
ガラス容器1こ充填し、凍結乾燥Jる。これを密栓し、
凍結乾燥粉末製剤どしIこ。
Example 6 (water-soluble injection) G [3X 3 20 (1.00 (l)
Moderate sodium chloride 18 (total amount 2.00 O in 1 fish water) n+j Example 2 (
After weighing and mixing CBX3 obtained in Production Example) and trichloride, add 1OOOn1ρ of hot distilled water for if kJ.
Dissolve in water and suspend with distilled water for injection for 2,000 m. l
Spelled out as l. This aqueous solution was filtered aseptically using a Menn 1 run filter, and the filtrate was placed in a sterilized glass container for 2 hours.
,Qm. L? Example 7 (lyophilized injection) 0 13 x 3,200,000 units 20% human serum albumin 20 mB1B]~Rium
Distilled water for i8g round trip m2,000
After weighing and mixing CBX 3 obtained in Example 5 (manufacturing example) and mono-lium chloride, an aqueous solution was prepared by adding a predetermined amount of human albumin to 1,000 mΩ of distilled water for injection. Dissolve in 2,O
Let it be OOmg. This aqueous solution is aseptically filtered using a membrane filter, filled into a sterilized glass container with 2 mU each, and lyophilized. This is tightly stoppered.
Freeze-dried powder formulation.

実施例8(点眼剤) 実施例2(製造例) で1!1だC l−3 X 3      200,0
00  中位塩化プトリウム       10  g
9目[1ブクノール      10  (17、1’
 aJ 用a Cji /l( ニ’( 全M   2
 、 000  m lL記各成分を秤吊して、1,9
00 …Iの注射用蒸留水に溶解する。全量を2,00
0mlにして、メン7ランフイルターを用い、無菌的に
濾過して点眼剤とした。
Example 8 (eye drops) Example 2 (manufacturing example) 1!1 Cl-3 X 3 200,0
00 medium puttrium chloride 10 g
9th [1 Buknor 10 (17, 1'
aJ for a Cji /l(ni'(total M2
, 000 mL Weigh and hang each component, 1.9
00...I dissolved in distilled water for injection. The total amount is 2,000
The volume was reduced to 0 ml and aseptically filtered using a Menn 7 run filter to obtain eye drops.

実施例9(平削) CBX 3               10,00
0中位ポリ]−ブレングリ]−ル150(125gポリ
■チレングリニ]−ル=1000   約75j100
0 曳     十記成分を秤量し、実施例1(製造例)で
得たCnXgおよびボリエブレングリー1−ル1500
の全量、およびポリエチレングリコール4000の50
(Iをよく仙和し、さらに残りのポリTチレングリ゛]
−ル4000を加えて全量を100 oどしてよ< t
ill和して溶811法にJ、す5゜00On1gの直
腸平削とした。
Example 9 (planing) CBX 3 10,00
0 medium poly]-Blengri]-ru 150 (125g polyethylene glycine]-ru = 1000 approx. 75j100
0 Hiki Weigh the following ingredients, and add CnXg obtained in Example 1 (manufacturing example) and Boliethylene Green 1-L 1500.
total amount of, and 50 of polyethylene glycol 4000
(Small I well and add remaining poly T ethylene green)
- Add 4,000 ml of water to bring the total amount back to 100 oz.<t
The rectal plane was prepared using the Melt 811 method to obtain a rectal plane of 5°00 On1g.

実施例10(点鼻剤) 実施例5(製造例) て’  l!f  た CB X   3      
        200,0(to    11  (
QIM化プトリウム       10  リフ1:1
0アタノール      109蒸留水にて全量   
   2,000  、ntll上記各成分を秤量し、
1,900m、Gの蒸留水に溶解1〕てhり冷後、全量
2,000mj!に希釈し、点鼻剤とする。
Example 10 (nasal drop) Example 5 (manufacturing example) Te'l! f CB X 3
200,0(to 11(
QIM Putrium 10 Riff 1:1
0 Athanol 109 Total amount with distilled water
2,000, ntll Weigh each of the above ingredients,
1,900 m, dissolved in G distilled water 1] After cooling, the total amount was 2,000 mj! Dilute to make a nasal spray.

実施例11(腸溶性錠剤) 実施例5(製造例) r 11t、= c口x 3     210,000
  単位乳糖            12.8 (1
ボフ1〜iyI粉        約6.OQポリビニ
ールアルコール  600  mgス1)7リン酸マグ
ネシウl\ 600  Ill (120、Og −1−記成分をイれぞれ秤量した後、実施例5(製造例
)でl* −/’CCB X 3 J3J:び乳糖の各
全量、J5よひボテ1〜澱粉の約半量を混合し、さらに
残りのポテト澱粉を加えて全量を18.80として゛均
一に混合づる1、この混合物にポリビニールアルコール
の永溶液を加え、湿式顆粒造粒法により顆粒を調製−づ
る。この顆粒を乾燥し、ステアリン酎マグネシウムを混
和した後圧縮打錠して、宙吊200m0の錠剤を製造J
−る。これにメヂルセルロースフタレートを=1−チー
fングして腸溶性錠剤とした。
Example 11 (enteric coated tablet) Example 5 (manufacturing example) r 11t, = c mouth x 3 210,000
Unit lactose 12.8 (1
Bofu 1-iyI powder approx. 6. OQ polyvinyl alcohol 600 mg S1) 7 Magnesium phosphate l\ 600 Ill (120, Og -1- After weighing each component, l* -/' CCB X in Example 5 (manufacturing example) 3 J3J: Mix the whole amount of lactose and about half of the starch from J5 Yohibote 1, and then add the remaining potato starch to make the total amount 18.80% and mix evenly 1. Add polyvinyl alcohol to this mixture. Add a permanent solution of and prepare granules using a wet granulation method.The granules are dried, mixed with stearin and magnesium, and then compressed into tablets with a suspended size of 200m0.
-ru. Enteric-coated tablets were prepared by 1-chewing methyl cellulose phthalate to this.

実施例12(軟膏剤) CB X 3       10,000  単位流動
パラフrン       1.0gリレリン     
   約9’J  g00g L記成分をそれぞれ秤量した後、実施例1(製造例)で
得たCBX 3を流す)Iパラフィンに研和し、50g
の「ノヒリンを加えてよく混合する。これに残りのワセ
リンを加えてゆき、金石を1000どし、よ(混和しく
軟膏剤どした。
Example 12 (Ointment) CB
Approximately 9'J g00g After weighing each of the components listed in L, pour the CBX 3 obtained in Example 1 (manufacturing example))I Tritify with paraffin and add 50g
``Add Nohirin and mix well. Add the remaining Vaseline to this, add 1,000 ounces of Kinishi, and mix well to make an ointment.''

特許用願人  持田製薬株式会社Patent applicant: Mochida Pharmaceutical Co., Ltd.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1)次の性質を有する糖蛋白質: ■分子間: 7.000−=9.000■呈色反応;ロ
ーリー反応により蛋白質の呈色を示し、塩酸加水分Pi
I後のニンヒドリン反応においてペプチド結合d5よび
アミノ酸の9邑を示し、フェノール硫酸反応、アンスロ
ン硫酸反応、インドール硫酸反応、1〜リプ1〜ファン
IlliIwi反応により糖類の呈色を示づ一0■性状
・溶解性;白色粉末であり、水、塩化ナトリウム水溶液
およびリンMts衝液に可溶であり、ベンゼン、ヘキサ
ジおよびクロロホルムにほとんど溶Gプない。 ■糖含有−が8〜15%であり、ぞの組成が、へ↑ソー
ス6〜10%、ヘキソサミン1〜2%、シアルi!1〜
3%である。 ■/Jルホキシメチルセルロースを用いた0、05Mリ
ン酸緩衝液(p t−1’6.4 )下におけるイオン
交換り【]マドグラフィーにおいてカルボキシメチルセ
ルロースに吸着性である。 ■l1ii 2 、0、pl−17,0もしくはI)l
−111。 0の水溶液中、4℃において24時時間上安定であり、
また、pH7、0の水溶液中、60℃において3時間以
ト安定である。 ■1[常細胞には実質的に障害をhえず、腫瘍細胞に選
択的に障害を与える。 ■蛋白質のN末端側のアミノ酸配シリが、アラニンーア
うニンー、である。 2)下記のt(1質: ■分子量;7,000〜9,000、 ■♀色反応:ローリー反応により蛋白質のり色を示1)
、塩酸加水分解後のニンヒドリン反応にJ5いてペプチ
ド結合J5よびアミノ酸の呈色を示し、フコノール硫酸
反応、アンスロン硫酸反応、インドール硫酸反応、]・
]リプ1−ファン硫酸反にJ、り糖類の呈色を示す、■
性状・溶解性:白色粉末であり、水、塩化す1〜リウム
水溶液およびリン酸緩衝液に可溶であり、ベンゼン、ベ
キ4J−ンおよびり1]ロホルムにはどんと溶【ノない
、 ■糖含有量が8〜15%であり、その組成が、ヘキソー
ス6〜10%、ヘキソ1ノミン1〜2%、シアル酸1へ
・3%である、 ■カルボキシメチル1?/レロースを用いた0、05M
リン酸緩衝液(pf−16,4>下にお#プるイオン交
換クロマトグラフィーにJ3いてカルボキシメチルセル
ロースに吸着性である、■pI−12,0、I]H7,
0もしくは1)Hll。 0の水溶液中、4℃において24時間以、l−安定であ
り、また、pH7,0の水溶液中、60℃において3時
間以上安定である、 ■正常細胞には実質的に障害を与えず、腫瘍細胞に選択
的に障害を与える、 ■蛋白質のN末端側のアミノ酸配列が、アラニン−アラ
ニン−1である。 を有する抗腫瘍性糖蛋白質の産生能を右するヒトまたは
ヒト以外の温血動物由来の細胞より、直接そのまま、ま
たは培養増殖させて該糖蛋白質を採取することを特徴と
する抗腫瘍性糖蛋白質の製造lj法。 3〉濡面動物由来の細胞が、培養株化されたものである
特許請求の範囲第2項記載の抗腫瘍性糖蛋白質の製造方
法。 4〉温血動物由来の細胞に誘導剤を作用さじる特許請求
の範囲第2項記載の抗腫瘍11糖蛋白質のり!I造方法
。 5)下記の性質; ■分子量ニア、000〜9.0001 ■?邑反応;ローリー反応により蛋白質の呈色を示しッ
、」n酸加水分解後のニンヒドリン反応においてペプチ
ド結合およびアミノ酸の呈色を示し、フェノール硫酸反
応、アンスロン硫酸反応、インドール硫酸反応、1ヘリ
ブトフア(+ ン硫酸反応により糖類の呈色を示す、 (→)1/1状・溶解↑11;白色粉末であり、水、塩
化す1〜リウム水溶液およびリンWjJM函液に可溶で
あり、l\ンげン、へ4ニリンおよびクロロホルムにほ
とんど溶けない、 ■糖含有量が8・へ・15%であり、ぞの組成が、ヘキ
ソース6・〜・10%、ヘキソサミン1〜2%、シアル
酸1〜3%である、 (Φカルボキシメヂルセルロースを用いたo、05Mリ
ンリン酸緩衝液) 1−16.11 ) l’にd’3
けるイオン交換クロマトグラフr−においてカルボキシ
メチルセルロースに吸着性である、■吐12.0.11
1−17.0もしくは叶111゜0の水溶液中、4℃に
おいて24時間以−に安定であり、また、1)l−17
,0の水溶液中、60℃において3時間以上安定である
、 (り正當細n〜には実質的に障害を与えず、腫瘍細胞に
選択的に障害を与える、 +iit m白質のN末端側のアミノ酸配列/)\、ア
ラニン−アラニン−1である、 を有する抗腫瘍性糖蛋白質の産生能を有するヒ1〜また
はヒ1〜以外の濡面動物由来の18b株化された細胞を
、ヒト以外の同種もしくは異種の温血動物体内に直接移
41I′1′1jるが、または、その温血動物の体液の
供給を受は得るようにこの細胞を接種した拡ffkチt
Iンバーを動物に植込み、増りめざUて得られる細胞よ
り、直接そのまま、または培養増殖さけて該糖蛋白質を
採取することを特徴どづる抗腫瘍性糖蛋白質の製造方法
。 6)温血動物由来のj8養株化された細胞に誘導剤を作
用させる特許請求の範囲第5項記載の抗腫瘍11糖蛋白
質の製造方法。 7)次の性質を有する糖蛋白質を有効成分として含有す
る肝癌治療剤: ■分子1: 7.000〜9,000 ■〒色反応;口−り一反応により蛋白質の呈色を示し、
塩酸加水分解後のニンヒドリン反応においてペプチド結
合l113よびアミノ酸の呈色ヲ示、し、フェノール1
ijlt 1反応、アンスロン硫酸反応、インドール硫
酸反応、1〜リプトフ7ン硫酸反応により糖類の呈色を
示す。 ■1シ1状・溶解性;白色粉末であり、水、塩化ナトリ
ウム水溶液およびリン酸緩衝液に可溶であり、ベンゼン
、ヘキサンおよびクロロホルムにほとんど溶けない。 ■糖含有量が8〜15%であり、その組成が、ヘキソー
ス6〜10%、ヘキソ(ノミン1〜2%、シアル酸1−
・3%である。 ■カルボキシメチルセルローレス 5Mリン酸M衝液(p l−1 6. ”I )−ト−
にお1ノるイオン交換り0マドグラフイーにおいて、カ
ルボキシメチルレル[1−スに吸着性である。 ■11+−12.0、flH7.0bL,<はI)l−
111。 0の水溶液中、4℃において24時間以ト安定であり、
また、l)l−17.0の水溶液中、60℃において3
時間以上安定である。 ■正常細胞には実質的に障害を与えず、腫瘍細胞に選択
的に障害を与える。 ■蛋白質のN末端側のアミノ酸配列が、アラニン−アラ
ニン−、である。
[Claims] 1) Glycoprotein having the following properties: ■ Intermolecular: 7.000-=9.000 ■ Color reaction: The protein exhibits coloration due to the Lowry reaction, and hydrochloric acid hydrolysis Pi
In the ninhydrin reaction after I, the peptide bond d5 and 9 amino acids were shown, and the coloration of sugars was shown by the phenol-sulfuric acid reaction, the anthrone sulfuric acid reaction, the indole-sulfuric acid reaction, and the 1-lip 1-fan IlliIwi reaction. Solubility: White powder, soluble in water, aqueous sodium chloride solution, and phosphorus Mts buffer, and almost insoluble in benzene, hexadiene, and chloroform. ■Sugar content is 8-15%, and the composition is 6-10% of sauce, 1-2% of hexosamine, and cialis! 1~
It is 3%. (2) Ion exchange under 0.05M phosphate buffer (pt-1'6.4) using /J sulfoxymethyl cellulose [] Adsorbent to carboxymethyl cellulose in [] adsorption. ■l1ii 2,0,pl-17,0 or I)l
-111. Stable for 24 hours at 4°C in an aqueous solution of
Furthermore, it is stable in an aqueous solution of pH 7.0 at 60° C. for more than 3 hours. ■1 [Selectively damages tumor cells without substantially damaging normal cells. ■The amino acid sequence on the N-terminal side of the protein is alanine. 2) The following t (1 quality: ■Molecular weight; 7,000 to 9,000, ■♀Color reaction: Shows protein color due to Lowry reaction 1)
, J5 shows coloration of peptide bond J5 and amino acid in ninhydrin reaction after hydrochloric acid hydrolysis, fuconol sulfuric acid reaction, anthrone sulfuric acid reaction, indole sulfuric acid reaction, ]・
] Lip 1-fan sulfate anti-J shows coloration of saccharides,■
Properties/Solubility: White powder, soluble in water, aqueous solution of sodium to lithium chloride, and phosphate buffer, and not very soluble in benzene, benzene, and dichloroform. The content is 8 to 15%, and its composition is 6 to 10% hexose, 1 to 2% hexo1nomine, and 3% to sialic acid 1. ■Carboxymethyl 1? /0,05M using rerose
Phosphate buffer (pI-12,0, I]H7, which is adsorbent to carboxymethyl cellulose in ion-exchange chromatography under pf-16,4)
0 or 1) Hll. It is l-stable in an aqueous solution of pH 7.0 at 4°C for more than 24 hours, and stable in an aqueous solution of pH 7.0 at 60°C for more than 3 hours, ■Does not substantially damage normal cells; (2) The amino acid sequence on the N-terminal side of the protein that selectively damages tumor cells is alanine-alanine-1. An anti-tumor glycoprotein, characterized in that the glycoprotein is collected from cells derived from humans or non-human warm-blooded animals that have the ability to produce anti-tumor glycoproteins, either directly or by culturing and proliferating the glycoprotein. production lj method. 3> The method for producing an antitumor glycoprotein according to claim 2, wherein the cells derived from a wet animal are cultured. 4> Anti-tumor 11 glycoprotein glue according to claim 2, which acts on cells derived from warm-blooded animals with an inducing agent! I-building method. 5) The following properties; ■Molecular weight near, 000-9.0001 ■? Ou reaction: Shows the coloration of proteins by the Lowry reaction, shows the coloration of peptide bonds and amino acids in the ninhydrin reaction after n-acid hydrolysis, phenol sulfuric acid reaction, anthrone sulfuric acid reaction, indole sulfuric acid reaction, (→) 1/1 form/dissolution ↑11; White powder, soluble in water, 1- to 2-lium chloride aqueous solution, and phosphorus WjJM box solution; It is almost insoluble in hexane and chloroform, and has a sugar content of 8.15%, and a composition of hexose 6-10%, hexosamine 1-2%, and sialic acid 1-15%. 3%, (o, 05M phosphate buffer using Φ carboxymethylcellulose) 1-16.11) d'3 to l'
12.0.11 adsorbent to carboxymethyl cellulose in ion exchange chromatography
In an aqueous solution of 1-17.0 or 111°0, it is stable at 4°C for more than 24 hours, and 1) l-17
, is stable for more than 3 hours at 60°C in an aqueous solution of 0, (does not substantially damage normal cells, selectively damages tumor cells, +iit m on the N-terminal side of white matter. Amino acid sequence /)\, alanine-alanine-1, is a non-human cell line 18b derived from human 1 ~ or a wet animal other than hi 1 ~ that has the ability to produce an antitumor glycoprotein having the following: directly into the body of a warm-blooded animal of the same or different species, or an expanded cell inoculated with these cells so as to receive a supply of body fluids from that warm-blooded animal.
1. A method for producing an anti-tumor glycoprotein, which comprises the steps of implanting Inver into an animal and collecting the glycoprotein directly from the cells obtained with the aim of propagation, either directly or without culturing. 6) The method for producing anti-tumor 11 glycoprotein according to claim 5, which comprises causing an inducer to act on cultured J8 cells derived from warm-blooded animals. 7) A therapeutic agent for liver cancer containing a glycoprotein having the following properties as an active ingredient: ■Molecular 1: 7,000 to 9,000 ■Color reaction; shows coloration of the protein by a lip reaction;
In the ninhydrin reaction after hydrolysis with hydrochloric acid, the peptide bond 113 and the amino acid showed coloration, and phenol 1
The coloring of sugars is shown by the ijlt 1 reaction, anthrone sulfuric acid reaction, indole sulfuric acid reaction, and 1 to lipophon 7 sulfuric acid reaction. (1) Solubility: White powder, soluble in water, aqueous sodium chloride solution and phosphate buffer, and almost insoluble in benzene, hexane and chloroform. ■The sugar content is 8-15%, and its composition is 6-10% hexose, 1-2% hexo(nomine, 1-2% sialic acid)
・3%. ■Carboxymethylcellulose-less 5M phosphoric acid M solution (pl-1 6."I)-to-
It is adsorbent to carboxymethylyl[1-s] in ion-exchange media. ■11+-12.0, flH7.0bL, < is I) l-
111. stable for more than 24 hours at 4°C in an aqueous solution of
In addition, l) in an aqueous solution of l-17.0 at 60°C
Stable over time. ■Selectively damages tumor cells without substantially damaging normal cells. (2) The amino acid sequence on the N-terminal side of the protein is alanine-alanine-.
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