【発明の詳細な説明】
免疫寛容の誘導における利用のための
クリプティックペプチド発明の背景
抗原を供給することは、免疫不応答又は経口寛容を誘導するための古典的方法
である(Asherson,G.L.等(1977)、Cell Immunol.,33:145; Asherson,G.L. 等(
1979)、Immunology,36:449; Challacombe,S.J. 及びTomasi, T.J.(1980),J.Exp
.Med.,152:1459; Bruce,M.G.及びFerguson,A.(1986),Immunology,57: 627; Mow
at, A.(1982),Immunology,45:105; 及びStrobel,S.等(1983)、Immunology,49:45
1)。食餌抗原に対する重要な生理学的応答であること(Mowat,A.M.(1987),Immu
nology Today,8:93)を考慮しても、経口寛容を利用して、自己免疫病において
見出されるような異所性免疫応答(Thompson,H.S.G. 及びStaines,A.(1990),Imm
unol.Today,11:396)及びアレルギーを制御することが出来ることが示唆された
。
最も広く研究された自己免疫疾患のモデル系は、実験用アレルギー性脳脊髄炎
(EAE)のモデル系である。感作前に寛容化量のミエリン塩基性蛋白質(MB
P)を与えられたラットはMBPでの脳脊髄炎チャレンジから保護され得ること
が示された(Miller,A.等(1991)、J.
Immunol.,147:2155 及びMiller,A.等(1992)、Proc.Natl.Acad.Sci.USA,89:421
)。しかしながら、経口寛容の誘導に関与する機構に関して相容れない見解が出
されている。例えば、Whitacre等 (1991)、J.Immunol.,147:2155は、それらが寛
容化した動物からのT細胞を用いて抑制をトランスファーすることが出来ないこ
とを見出したが、クローン化アネルギーがCD4+MBP反応性T細胞のエフェ
クター機能を下方制御するための重要な機構であり得ることを示した。或は、Mi
ller,A.等(1991)J.Exp.Med.,174:791は、抑制が寛容化した動物からCD8+T
細胞を受けた天然レシピエントにトランスファーされ得ることを示した。これら
のサプレッサー(T)細胞は、可溶性サイトカインの放出により、MBP特異的
CD+T細胞株のイン・ビトロ応答を阻止することが出来ると報告され、無関係
のT細胞の傍観者抑制(by-stander suppression)を引き起こすことも可能であ
ろう(Miller,A.(1991)前出)。T細胞により放出される免疫調節サイトカイン
は、後に、TGF−β1と定義された(Miller,A.等(1992) Proc.Natl.Acad.Sc
i.USA 89:421)。
細菌及びウイルス性病原体、自己抗体、アレルゲン及び他の実験的抗原例えば
ニワトリ卵リゾチーム(HEL)、オバルブミン(OVA)及びラムダリプレッ
サー(c1)を含む種々の蛋白質抗原から導かれたペプチドが、抗原特異的T細
胞を刺激する能力について試験され
た。広範囲のサイズスペクトルの蛋白質がT細胞エピトープとして働くことが報
告されている。例えば、B型肝炎表面抗原から導かれたペプチド(HBsAgア
ミノ酸残基19〜33)は、最近、組換えB型肝炎ワクチンで免疫化したヒト患
者の大部分においてT細胞応答を刺激することが示された(Schad,V.C.等(1991)
Seminars in Immunol.,3:217-224)。主要ミコバクテリア抗原の65kD蛋白
質も又、エピトープマップされた(Lamb,J.R.等(1987)EMBO J.,6(5):1245-1249
)。この65kD蛋白質の112〜132及び437〜459アミノ酸残基から
なるペプチドにおいてT細胞エピトープが同定されている。MBPも又、ヒト(
Ota,K.等(1990) Nature,346:183-187)及び篭歯類(Zamvil等(1986) Nature,324
:258-260)の両方においてエピトープマップされた。
アレルゲン性蛋白質中に存在するT細胞エピトープが極最近記載された(O'He
hir,R.等(1991)Ann.Rev.Immunol.,9:67-95)。室内塵ダニアレルゲンDerpIから
誘導された幾つかのペプチドがT細胞反応性であることが示された(Thomas,W.
R.等、アレルギー及び臨床免疫学の欧州学術会議 X IV(1989年9月、Berlin)
からのEpitopes of Atopic Allergens Proceedings of Workshop中の 77-82頁;
O'Hehir,R.E.(1991)Annual Review Immunology 9:67-95; Stewart,G.A.等、ア
レルギー及び臨床免疫学の欧州学術会議XIV(1989年9月、Berlin)からの Epi
topes of Atopic Allergens
Proceedings of Workshop 中の 41-47頁;及び Yessel,H.等、免疫と寛容の区別
の会議22-26(1990年9月、英国、Oxford在、Trinity College)T Cell Activat
ion in Health and Disease 中)。短ブタクサアレルゲンAmb aIから導いたT
細胞刺激性ペプチド(アミノ酸残基54〜65)も又報告された(Rothbard,J.B
. 等(1988)Cell,52:515-523)。ライグラスアレルギーの個人から導いたT細胞
クローンのパネルを用いて、Perez等は、T細胞エピトープが蛋白質アレルゲンL
olpIのアミノ酸残基191〜210内に含まれることを示した(Perez,M.等 (1
990) J.Biol.Chem.265(27):16210-16215)。発明の要約
この発明は、患者例えばヒト患者中の蛋白質抗原に対する免疫寛容を、その抗
原から導いた少なくとも1種のクリプティックペプチド及び製薬上許容し得るキ
ャリアーを含む組成物の寛容化量を投与することによって誘導する方法に関係す
る。蛋白質抗原例えばアレルゲン又は自己抗原から誘導したクリプティックペプ
チドを含む組成物を投与して未感作の又は予備感作された個人において寛容を誘
導することが出来る。好ましくは、この組成物を、経口投与して、個人における
アレルゲン又は自己抗原に対する感受性を治療する。図面の簡単な説明
図1は、DerpIで免疫化したマウスから単離して、DerpIから誘導した選択し
たペプチドに対する応答についてトリチウム化チミジンの取り込みにより分析し
たT細胞の応答のグラフ表示である。
図2a及び2bは、DerpIから誘導した選択したペプチドで免疫化したマウス
単離して、DerpI蛋白質(パネルa)又は適当なペプチド(パネルb)に対する
応答について分析したT細胞の応答のグラフ表示である。
図3は、マウスにより認識されるT細胞エピトープのDerpI蛋白質配列中の位
置の図式表示であり、ここに、免疫優性エピトープは平行線を引いた四角で表し
、クリプティックエピトープは点を打った四角で表し、エピトープのないことを
黒い四角で表してある。
図4は、緩衝液(パネルa)、ペプチドGEXp57−130(パネルb)、
ペプチドGEXp101−154(パネルc)、又は組換え蛋白質GEXDerpI
(1−222)(パネルd)を給餌し、その後にDerpIで免疫化したマウスから
単離し、イン・ビトロでのDerpIへの応答について、IL−3/GM−CSF(
パネルa〜d)又はIL−2産生(パネルe〜h)により分析したT細胞の応答
のグラフ表示である。
図5は、組換え蛋白質GEXDerpII(1−129)、ペプチドGEXp101
−154、又はペプチドGEXp188−222を給餌し、その後にDerpIで免
疫化し
たマウスから単離し、DerpI(パネルa及びd)、ペプチドp110−131(
パネルb及びe)、又はペプチドp78−100(パネルC及びf)に対する応
答について、IL−3/CSF(パネルa〜c)又はIL−2産生(パネルd〜
f)により分析したT細胞の応答のグラフ表示である。
図6は、緩衝液又は組換え融合ペプチド(GEXp131−187)の何れか
を給餌し、その後にDerpIで免疫化したマウスから単離し、DerpIIに対する応答
について、IL−2産生により分析したT細胞の応答のグラフ表示である。発明の詳細な説明
この発明は、患者内の蛋白質抗原に対する免疫寛容を、その抗原から誘導した
少なくとも1種のクリプティックペプチドを投与することによって誘導するため
の方法に関するものである。蛋白質抗原は、特定のクラスII主要組織適合複合体
(MHC)分子と共に提示された場合にその天然蛋白質抗原に対する曝露に際し
て患者のT細胞を活性化するある種の決定基又はエピトープを含むことが知られ
ている。T細胞応答は抗原上の1又は2の決定基の存在により制限されるのでは
なく、T細胞応答は選択された幾つかの決定基を優先的に利用するようである。
従って、T細胞決定基利用の階層が、多決定基蛋白質抗原について存在する。従
って、特定の蛋白質抗原
に対するT細胞決定基又はエピトープをイン・ビトロT細胞増殖アッセイに基づ
いてカテゴリーに分けることが出来、該増殖アッセイにおいては、蛋白質抗原プ
ライムしたT細胞をその蛋白質抗原から誘導した選択した濃度のペプチドと共に
培養し、そのペプチドに応答したT細胞による増殖の量を例えばトリチウム化チ
ミジンの取り込みにより測定する。
このアッセイにより、もしペプチドが、試験した患者において抗原プライムし
たT細胞における最高のT細胞増殖応答の一つを一貫して誘導するならば、その
ペプチドを免疫優性T細胞エピトープを含むカテゴリーに類別する。免疫優性エ
ピトープと比較して、マイナーT細胞エピトープを含むペプチドは、イン・ビト
ロで、一層変わり易く且つ低い程度のT細胞増殖を再生せしめる。培地だけのバ
ックグラウンドレベルの2倍未満のT細胞増殖を再生させるペプチドは、T細胞
エピトープを含まないか又はクリプティックT細胞エピトープを含むカテゴリー
に類別される。クリプティックエピトープは、天然蛋白質抗原のプロセッシング
及び適当なMHC分子への提示のために普通は免疫系に示されない蛋白質抗原中
の決定基である。しかしながら、クリプティックエピトープを含むペプチドは、
T細胞を寛容化することが出来、患者をそのペプチドでプライムするとその患者
から得たT細胞はそのペプチドが由来したペプチド又は蛋白質抗原に応答してイ
ン・ビトロで増殖する。蛋白質抗原から
誘導した少なくとも1つのクリプティックエピトープを含むペプチドを、ここで
は、クリプティックペプチドという。上記のアッセイにより類別したペプチド中
のクリプティックエピトープの存在を確認するために、抗原プライムされたT細
胞を、各ペプチドの別々の存在下でイン・ビトロで培養してペプチド反応性T細
胞株を樹立する。もし所定のペプチドを用いてT細胞株を樹立することが出来、
且つT細胞がそのペプチド又はそのペプチドが由来した蛋白質抗原でのチャレン
ジにおいて増殖し得るならば、そのペプチドは少なくとも1つのクリプティック
エピトープを含むと考えられる。
蛋白質抗原中のクリプティックエピトープの存在は、ある種のエピトープの免
疫系への曝露の欠如によるものであり、適当なクラスIIMHC分子に対してエピ
トープを示し得ない蛋白質抗原の正常なプロセッシングから生じ得る。或は、抗
原プロセッシングの最終生成物が、クリプティックエピトープを隠し、MHC分
子又はそのエピトープに対して特異的なT細胞上のT細胞レセプターへのアクセ
スを妨げる大型断片であり得る。更に、同じ蛋白質抗原上の他のエピトープは、
クリプティックエピトープと同じ制限要素への結合について競争し得るか、又は
異なる制限要素に対する一層高い親和性及び利用可能性を有することが出来、そ
れ故、MHCとのクリプティックエピトープの相互作用を阻止する。
この発明のクリプティックペプチドは、蛋白質抗原か
ら導いた少なくとも1つのクリプティックエピトープを含む(即ち、このペプチ
ドは、少なくとも約7アミノ酸残基を含む)。かかるペプチドは、所望するだけ
多くの蛋白質抗原のアミノ酸残基を含むことが出来、好ましくは少なくとも約7
、一層好ましくは少なくとも約15、更に一層好ましくは少なくとも約20及び
最も好ましくは少なくとも約25アミノ酸残基を含むことが出来る。20〜40
アミノ酸残基程のペプチドの長さが好適である。何故なら、ペプチド長の増大は
、ペプチド合成を困難にし、並びに、ペプチドと蛋白質抗原(例えば、それが由
来したアレルゲン)の間のコンホメーション類似性の保持による望ましくない特
性(例えば、免疫グロブリン結合活性又は酵素活性)の保持を生じ得るからであ
る。所望であれば、1種以上のペプチドのアミノ酸配列を生成し、リンカーによ
り結合して抗原提示細胞によるプロセッシングに対する感受性を増大させること
が出来る。かかるリンカーは、任意の非エピトープアミノ酸配列又は他の適当な
接合剤又は結合剤であってよい。例えば、2種のクリプティックペプチドを結合
することが出来、又はクリプティックペプチドと、蛋白質アレルゲンから導いた
免疫優性又はマイナーエピトープを含むペプチドとを繋ぐことが出来る。
クリプティックペプチドを、かかるペプチドをコードするヌクレオチド配列の
発現を指示する核酸ベクターでトランスフォームした宿主細胞において組換えD
NA技
術により、又は化学合成により、或はある限られた状況においてはアレルゲン等
の蛋白質抗原の化学的開裂によって生成することが出来る。組換え技術により生
成した場合には、ペプチドをコードするヌクレオチド配列の発現を指示する核酸
ベクターでトランスフォームした宿主細胞をその細胞に適した培地において培養
する。これらのペプチドは分泌され、細胞及び細胞培養培地の混合物から採取す
ることが出来る。或は、このペプチドは細胞質に保持され、それらの細胞を採取
し、溶解させて、ペプチドを単離精製することが出来る。ペプチドを、ペプチド
又は蛋白質を精製するための当分野で公知の技術を用いて単離することが出来、
該技術には、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、限
外濾過、電気泳動及びこのペプチドが由来したペプチド若しくは蛋白質抗原又は
その一部分に対して特異的な抗体を用いるイムノアフィニティー精製が含まれる
。ここに記載したクリプティックペプチドを、組換えDNA技術により生成する
場合には細胞性物質又は培養培地を実質的に含まず、化学合成する場合又は蛋白
質アレルゲン若しくは他の蛋白質抗原の化学的開裂により得る場合には化学的前
駆物質その他の化学物質を実質的に含まないように単離する。
蛋白質抗原のT細胞エピトープが未知又は不明確な場合にこの発明のクリプテ
ィックペプチドを得るために、その抗原の蛋白質構造を検討し、その配列を所望
の長さ
の少なくとも2つのペプチド断片に分割することが出来る。例えば、蛋白質抗原
の蛋白質配列を系統的に少なくとも2つの所望の長さの重複しない断片又は所望
の長さの重複する断片に分割することが出来る。説明のための例として、229
残基のアミノ酸配列(SEQ ID NO:1に示す)を有するDermatophagoides pterony ssinus
のDerpI主要アレルゲンの公知のアミノ酸配列を、約22〜35アミノ酸
残基長であって各断片が他の断片と約10アミノ酸だけ重複しているペプチド断
片に分割することが出来る。これらのペプチド断片中にT細胞エピトープを含む
可能性を最大にするために、アルゴリズムを用いて予想したT細胞エピトープの
存在を維持するように重複領域及び各断片の長さをデザインすることが出来る(
Rothbard,J. 及びTaylor,W.R.(1988) EMBO J.7:93-100;及びBerzofsky,J.A.(198
9) Philos.Trans.R.Soc.Lond.323:535-544)。好ましくは、蛋白質抗原中のヒト
T細胞エピトープを、公知のHLAクラスII結合特異的アミノ酸残基を用いて予
想することが出来る。その結果のペプチド断片を組換えDNA技術又は化学合成
によって生成することが出来る。
蛋白質抗原から誘導したペプチド断片を試験してT細胞刺激活性(即ち、増殖
、リンホカイン分泌及び/又はT細胞アネルギー/寛容の誘導)を有する断片を
決定した。例えば、ヒトT細胞刺激活性を、蛋白質抗原に感受性のヒト等の患者
(即ち、その蛋白質抗原に対する免疫
応答を有する患者)から得たT細胞を、この蛋白質抗原から誘導したペプチド断
片と共に培養し、その蛋白質に応答してT細胞による増殖の存在を測定すること
により試験することが出来る。T細胞による増殖の存在は、例えば、トリチウム
化チミジンの取込みにより測定することが出来る。
免疫優性T細胞エピトープ、マイナーT細胞エピトープ及びクリプティックエ
ピトープを実施例3に記載のように同定することが出来る。選択したペプチド中
のクリプティックエピトープの存在を確認するために、その蛋白質抗原に感受性
の個人からT細胞を得て、各クリプティックペプチドと共に別々に培養してペプ
チド反応性T細胞株を樹立する。ペプチド及びそのペプチドが由来した蛋白質抗
原に応答したT細胞増殖又はT細胞寛容の誘発の存在は、そのペプチド中の少な
くとも1つのクリプティックエピトープの存在を確実にする。
この発明のクリプティックペプチドは、アレルゲン又は自己抗原等の蛋白質抗
原から誘導することが出来る。アレルゲンから導く場合は、クリプティックペプ
チドを、例えば、下記の属のアレルゲン等の任意の公知の蛋白質アレルゲンから
誘導することが出来る:Dermatophagoides属、Felis 属、Ambrosia属、Lolium属
、Cryptomeria 属、Alternaria属、Alder 属、Betula属、Quercus 属、Olea属、Artemisia
属、Plantago属、Parietaria属、Canine属、Blattella 属、Apis属、Periplaneta
属、及びSorghum 属。Dermatophagoidespteronyssinus 種の主要ア
レルゲン、DerpI中のマウスにより認識されるクリプティックペプチドをマウス
において測定し、DerpI(SEq ID NO:1)の120〜143アミノ酸残基、Derp
I(SEQ ID NO:1)の144〜169アミノ酸残基及びDerpI(SEQ ID NO:1)
のアミノ酸残基131〜187を含む。
クリプティックペプチドは又、自己抗原に対する免疫寛容が望ましい場合に、
アレルゲン以外の蛋白質抗原から誘導することも出来る。クリプティックペプチ
ドが由来し得る自己抗原には、糖尿病治療用のインシュリン、グルタミン酸デカ
ルボキシラーゼ(64K)、PM−1及びカルボキシペプチダーゼ、多発性硬化
症治療用のミエリン塩基性蛋白質、胎児赤芽球症治療用のrh因子、重症筋無力
症治療用のアセチルコリンレセプター、グレーブズ病治療用の甲状腺レセプター
、グッドパスチャー症候群治療用の基底膜蛋白質、及び甲状腺炎治療用の甲状腺
蛋白質が含まれる。
この発明の一面により、蛋白質抗原から誘導したクリプティックペプチドを患
者に投与して、その患者においてその蛋白質抗原に対する免疫寛容を誘導する。
この患者という用語には、蛋白質抗原に対する免疫応答を高めることの出来る生
物体例えば哺乳動物が含まれる。患者の例には、ヒト、ラット、マウス、イヌ、
ネコ、ウマ、ウシ及びこれらのトランスジェニック種が含まれる。免
疫寛容とは、患者内の特定のリンパ球の発生、成長又は分化のブロックがこの発
明のクリプティックペプチドの寛容量の投与により生じた患者の状態をいう。寛
容は、リンパ球が活性化されずに削除され又は不応答性にされる条件下での抗原
のリンパ球上の抗原レセプターとの相互作用から生じる。寛容は又、特異的T若
しくはBリンパ球の作用又はリンパ球活性化を阻止する他の制御機構によること
もあり得る。免疫応答を阻止するための1つの機構は、サプレッサーT細胞と呼
ばれるリンパ球の1つのクラス(その主要な機能は、特定のT及びBリンパ球の
活性化を抑制することである)の刺激である。この状況において、阻止は、抗原
自身によってではなく抗原により誘導された制御細胞によって媒介される。他の
提案された寛容の機構は、リンパ球のユニーク若しくはイソタイプ決定基又は抗
原に特異的な抗体が標的とされる抗原に対する免疫系による応答である。この応
答は、この応答は、相補的イディオタイプのネットワーク及び抗原特異的細胞の
刺激をブロックする抗イディオタイプを生じる。最後に、B及びTリンパ球の活
性化の生成物、即ち抗体及びサイトカイン自身は、それぞれ、リンパ球の原理的
エフェクター分子として機能することに加えて特異的免疫を制御して寛容を生じ
ることが出来る。
患者において免疫寛容を誘導するために、蛋白質抗原から誘導したクリプティ
ックペプチドの寛容化量を患者に投与する。寛容化量を、ヒト等の患者において
クリプ
ティックペプチドが由来した抗原に対する免疫寛容を誘導するのに必要なクリプ
ティックペプチドの投薬量として定義する。患者における免疫寛容は、標準的臨
床手順で測定して、蛋白質抗原に対する非応答性又は症状の減少により示される
(例えば、Varney等(1990)British Medical Journal 302:265-269を参照された
い)。アレルゲンに対する寛容が求められる場合、かかる非応答性には、アレル
ゲン誘導されたアレルギー症状の減少が含まれる。ここでいう場合、アレルゲン
に対する症状の減少には、ヒト等の患者の、ここに記載したクリプティックペプ
チドでの治療養生法の後のアレルゲンに対するアレルギー応答の如何なる減少も
含まれる。この症状の減少は、ヒトにおいては主観的に測定することが出来(例
えば、患者がアレルゲンにさらされたときに一層快適に感じればよい)、或は、
標準皮膚試験を用いる等臨床的に測定することが出来る。
蛋白質抗原から誘導したクリプティックペプチドを、典型的には、患者に、製
薬上許容し得るキャリアー又は希釈剤を含む組成物の形態で投与する。患者にお
いて蛋白質抗原に対する免疫寛容を誘導するための本発明の組成物の投与は、公
知の手順を用いて、患者をその蛋白質抗原に対して寛容にするのに有効な投薬量
及び期間にて行なうことが出来る。この組成物の有効量は、患者の抗原に対する
感受性の程度、年齢、性別、及び体重等の因子、並びにクリプティックペプチド
の患者において寛容
を誘導する能力によって変化する。投薬量養生法は、最適治療応答を与えるよう
に調節することが出来る。例えば、幾つかに分割した投与量を日々投与し又は治
療状況の緊急度に応じて減らすことが出来る。
クリプティックペプチドは、慣用の方法、例えば注射(皮下、静脈等)、経口
投与、吸入、鼻腔内投与、経皮適用、又は直腸投与によって患者に投与すること
が出来る。患者における免疫寛容を誘導するための投与の好適経路は、経口投与
及び鼻腔内投与である。O'Hehir,R.E.等(1993)Eur.J.Clin.Invest.23(12):763-7
72参照。投与経路によって、活性化合物(即ち、クリプティックペプチド)を、
この化合物を不活性化し得る酵素、産その他の天然条件から保護する物質で被覆
することが出来る。
クリプティックペプチドを腸投与によって投与するためには、このペプチドを
その不活性化を阻止する物質で被覆するか又はその物質と同時投与する必要があ
り得る。例えば、クリプティックペプチドを、適当な希釈剤にて、患者に投与し
、酵素阻害剤と同時投与し、又はリポソーム等の適当なキャリアーにて投与する
ことが出来る。製薬上許容し得る希釈剤には、塩溶液及び緩衝剤水溶液が含まれ
る。酵素阻害剤には、膵臓トリプシンインヒビター、ジイソプロピルフルオロホ
スフェート(DEP)及びトラシロールが含まれる。リポソームには、水中油中
水CGFエマルジョン並びに従来のリポソームが
含まれる(Strejan 等(1984) J.Neuroimmunol.7:27)。寛容を誘導する目的のた
めには、この組成物を、好ましくは、非免疫原形態、例えばアジュバントを含ま
ない形態にて投与する。
活性化合物を、非経口投与することも出来る。グリセロール、液体ポリエチレ
ングリコール、及びそれらの混合物並びに油にて分散を調製することも出来る。
通常の貯蔵及び使用の条件下で、これらの調製物には、微生物の成育を阻止する
ための防腐剤を含ませることが出来る。
注射用に適した製薬組成物には、無菌の水溶液(水溶性の場合)又は分散及び
無菌の注射用溶液若しくは分散の即座の調製のための無菌粉末が含まれる。すべ
ての場合に、組成物は無菌でなければならず且つ容易に注射出来る程度に流動性
でなければならない。それは、製造及び貯蔵条件下において安定でなければなら
ず且つ細菌及びカビ等の微生物の夾雑に対して保護されなければならない。キャ
リアーは、溶媒又は分散媒であってよく、例えば、水、エタノール、ポリオール
(例えば、グリセロール、プロピレングリコール及び液体ポリエチレングリコー
ル等)、これらの適当な混合物及び植物油が含まれる。適当な流動性を、例えば
、レシチン等の被覆を用いることにより、分散の場合に必要な粒子サイズを維持
することにより、及び界面活性剤の利用によって維持することが出来る。微生物
の作用の阻止は、種々の抗細菌及
び抗カビ剤、例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、アスコルビン
酸、チメロサール等によって達成することが出来る。多くの場合、組成物中に、
等張剤例えば、糖質、ポリアルコール例えばマンニトール、ソルビトール、塩化
ナトリウムを含むことが好ましい。組成物に吸収を遅延させる薬剤例えばアルミ
ニウムモノステアレートびゼラチンを含有させることによって、注射可能組成物
の延長された吸収を達成することが出来る。
無菌の注射溶液を、活性化合物を必要な量で適当な溶媒中に上記の成分の1つ
又は組合せと共に混合し(必要ならば)、その後除菌濾過することにより調製す
ることが出来る。一般に、分散を、活性化合物を、基本的分散媒及び上記の内の
必要な他の成分を含む無菌ビヒクル中に混合することによって調製する。無菌注
射可能溶液の調製用の無菌粉末の場合、調製の好適方法は、活性成分(即ち、こ
の発明のペプチド)に上記の除菌濾過した溶液からの任意の所望の成分を加えた
粉末を生成する真空乾燥及び凍結乾燥である。
ここに記載のクリプティックペプチドを上記のように適当に保護すれば、その
ペプチドを、例えば不活性の希釈剤又は同化可能な食べられるキャリアーと共に
経口投与することが出来る。このペプチド及び他の成分を、硬い若しくは柔らか
い殻ゼラチンカプセルに封入し、錠剤に圧縮し、又は直接個人の食事に混ぜるこ
とも出来る。
経口投与用に、活性化合物を賦形剤と混ぜ、摂取可能な錠剤、口内錠剤、トロー
チ、カプセル、エリキシル、懸濁液、シロップ、ウエハース等の形態で使用する
ことが出来る。かかる組成物及び調製物は、少なくとも1重量%の活性化合物を
含むべきである。この組成物及び調製物のパーセンテージは、勿論、変えること
が出来、約5〜80重量%の単位が便利である。かかる組成物中の活性化合物の
量は、最適の投薬量が得られるようにする。本発明による好適組成物又は調製物
は、経口投薬量単位が約10〜200mgの活性化合物を含むように調製する。
ここで用いる場合、「製薬上許容し得るキャリアー」には、任意のすべての溶
媒、分散媒、コーティング、抗細菌剤及び抗カビ剤、等張剤並びに吸収遅延剤等
が含まれる。かかる製薬上活性な物質のための媒質及び薬剤は当分野において周
知である。慣用の媒質又は薬剤が活性化合物と相容れない場合を除いて、それら
の組成物における利用は企図される。補足的活性化合物をこれらの組成物に混ぜ
ることも出来る。
組成物を、投与しやすい投薬量単位形態及び均一の投薬量で配合するのが有利
であり得る。投薬量単位とは、ここで用いる場合、治療される哺乳動物患者に対
する単位投薬量として適した物理的に別々の単位をいい、各単位は、所望の効果
を生じるように計算された活性化合物の予め決められた量を必要な製薬用キャリ
アーと共に含
む。この発明の投薬量単位形態の仕様は、(a)活性化合物の独自の特性及び達
成すべき効果及び(b)患者の治療用のかかる活性化合物を合成する本質的技術
的限界により指示され且つ直接それらに依存する。
この発明の組成物は、ヒト等の患者に投与される1種以上のクリプティックペ
プチドを含むことが出来、或はクリプティックペプチド及び免疫優性又はマイナ
ーエピトープを含むペプチドを含むことが出来る(該患者は、このペプチドが由
来した蛋白質抗原に未感作又は予備感作されており、投薬量及び期間は、患者に
おいてこの抗原に対する寛容を誘導するのに十分なものとする)。例えば、一種
以上の同じ又は異なる組成物の患者における寛容を誘導するのに有効な量を同時
に又は順次的に投与することが出来る。少なくとも2種のペプチドを含む組成物
(例えば、少なくとも2種のペプチドの物理的混合物)も又、寛容化方法におい
て用いることが出来る。例えば、クリプティックペプチドと免疫優性エピトープ
を含むペプチドを同時投与することが出来る。
この発明のクリプティックペプチド(即ち、完全な蛋白質抗原を患者に与えた
場合に免疫化において認識されるエピトープを含まないペプチド)を投与するこ
とによって寛容を誘導することが出来るという事実は、重要である。免疫療法に
おいて有効なペプチドは、それ故、単にT細胞クローン又は感作された個人のポ
リクローナル応答により認識されるものに限らない。クリプティック
ペプチドの投与は、免疫優性エピトープを含むペプチドを感作された個人へ投与
することにおける潜在的な本質的限界を回避することが出来る。クリプティック
ペプチドの利用は、既にTh1及びTh2又は同等の経路に沿って進行しているT
細胞クローンの発生を向け直すことを必要とせずに免疫応答を改変する可能性を
も提供する。
溶解度を高め、治療若しくは防護効果又は安定性(例えば、生体外での棚持ち
及び生体内での蛋白質分解に対する抵抗性)を増大させる等の目的のためにこの
発明の方法において有用なクリプティックペプチドの構造を改変することも可能
である。ペプチドの寛容を誘導する能力を改変するためにアミノ酸置換、欠失又
は付加等によりアミノ酸配列を変えた、或は同じ目的のために成分を付加した改
変ペプチドを生成することが出来る。
例えば、ペプチドを、それがT細胞アネルギー又は寛容を誘導しMHC蛋白質
に結合する能力を維持するように改変することが出来る。この例において、T細
胞レセプターについて重要な結合性残基(即ち、クリプティックエピトープを含
むアミノ酸残基)を、公知技術(例えば、各残基の例えばアラニンでの置換及び
T細胞反応性の有無の測定)を用いて決定することが出来る。必須であることが
示された残基を、その必須アミノ酸を他の好ましくは類似アミノ酸残基(その存
在がT細胞反応性を増大させ、減少させるが排除せず又は影響するアミノ酸
残基)で置換する(保存的置換)ことによって改変することが出来る。更に、T
細胞相互作用に必須でないアミノ酸残基を他のアミノ酸(その取込みがT細胞反
応性を増大させ、減少させ又は該反応性に影響しないが、関連MHCへの結合を
排除しないアミノ酸)で置換することにより改変することが出来る。非必須アミ
ノ酸についての好適アミノ酸置換は、限定はしないが、アラニン、グルタミン酸
又はメチルアミノ酸での置換を含む。
ペプチドの改変の他の例は、ジスルフィド結合による2量体形成を最小化する
ためのシステイン残基の好ましくはアラニン又はグルタミン酸、或はセリン又は
スレオニンでの置換である。
安定性及び/又は反応性を増大させるために、ペプチドを改変して、天然の対
立遺伝子変異から生じる蛋白質抗原のアミノ酸配列における1つ以上の多型を取
込むことも出来る。更に、D−アミノ酸、非天然アミノ酸又は非アミノ酸アナロ
グを代用とし又は付加してこの発明の範囲内の改変ペプチドを生成することが出
来る。更に、ペプチドを、A.Sehon と共同研究者(Wie 等、前出)のポリエチレ
ングリコール(PEG)法を用いて改変してPEGと結合したペプチドを生成す
ることが出来る。ペプチドの改変は、還元/アルキル化(Tarr:Methods of Prot
ein Microcharacterization,J.E.Silver編、ニュージャージー、Clifton 在、Humana Pre
ss,155-194頁 (1986)中)、アシル化(Tarr,前出)、エステル化(Tarr,前
出)、適当なキャリアーへの化学的カップリング(Mishell 及び Shiigi 編、Sel
ected Methods in Cellular Immunology,カリフォルニア、San Francisco 在、WH Free
man (1980);米国特許第4,939,239号)、又は温和なホルマリン処理(M
arsh,(1971)International Archives of Allergy and Applied Immunology 41:
199-215)を含むことも出来る。
ペプチドの精製を容易にし、それらの溶解度を潜在的に増大させるために、レ
ポーター基をペプチド主鎖に加えることが出来る。例えば、ポリヒスチジンをペ
プチドに加えてそのペプチドを固定化金属イオンアフィニティークロマトグラフ
ィー(Hochuli,E.等 (1988) Bio/Technology,6:1321-1235)にて精製することが
出来る。更に、所望であれば、特異的なエンドプロテアーゼ開裂部位をレポータ
ー基とペプチド配列との間に導入して、無関係な配列を含まないペプチドの単離
を容易にすることが出来る。上首尾に患者を蛋白質抗原に対して寛容化するため
には、ペプチドに官能基を付加し又はペプチド中に疎水性領域を導入しないこと
によってペプチドの溶解度を増すことが必要であり得る。
ペプチド内のT細胞エピトープの適当な抗原プロセッシングを潜在的に助成す
るために、標準的プロテアーゼ感受性部位をペプチド内に組換えにより又は合成
によって工作することが出来る。例えば、KK又はRR等の帯電したアミノ酸対
を、ペプチドの組換え構築中に、ペプ
チド内に導入することが出来る。その結果生成するペプチドを、カテプシン及び
/又は他のトリプシン様酵素開裂に感受性にして1つ以上のT細胞エピトープを
含むペプチドの部分を生成することが出来る。更に、かかる帯電アミノ酸残基は
、ペプチドの溶解度の増加を生じ得る。
ペプチドをコードするDNAの位置指定突然変異導入法を用いて、ペプチドの
構造を改変することが出来る。かかる方法は、PCR(Ho等 (1989) Gene 77:51
-59)又は変異遺伝子の全合成(Hostomsky,Z.等 (1989)Biochem.Biophys.Res
.Comm.161:1056-1063)を含んでよい。細菌の発現を増大させるために、上記
の方法を他の手順と共に用いて、ペプチドをコードするDNA構築物中の真核生
物用コドンを、大腸菌、酵母、哺乳動物又は他の真核生物細胞において優先的に
用いられるものに変えることが出来る。
この発明を、更に、下記の非制限的実施例により説明する。この出願中で引用
されているすべての参考文献及び公表された特許出願を参考として本明細書中に
援用する。下記の材料及び方法の節に記載した方法を、後述の実施例において用
いた。
材料及び方法動物及び抗原
雌のB10及びBALBコンジェニックマウス及び同
系交配のC57BL/6J(6〜8週齢)を、オーストラリア国、ウエスタン、Murdo
ch在、Animal Resource Centreから購入した。
室内塵ダニアレルゲンDerpIを消耗したダニ媒質(SMM)から、前に記載さ
れた技術(Hoyne,G.F.等(1993)前出;Lombardo等 J.Immunol.144:1353-1360及び
Chapman (1989) Advances in Biosciences 74:281-295)を用いて、アフィニテ
ィー精製した。結晶オバルブミン(OVA)第V等級を、ミズーリ、St.Louis在
、Sigma Chemical社から購入した。公表されたDerpI配列(Chua等(1988)J.Ex
p.Med.167:175-182)から誘導した重複合成ペプチドを、標準t−BOC化学を
用いて合成し、ペプチドを逆相高性能液体クロマトグラフィー(HPLC)によ
り精製して、個々のペプチドの配列をチェックして正体を確認した。この研究で
使用したペプチドは、DerpI配列(Chua等 (1988) 前出)から誘導した下記のア
ミノ酸残基を含んだ:1〜20、13〜39、21〜49、40〜60、50〜
71、61〜84、78〜100、85〜109、101〜119、110〜1
31、120〜143、132〜157、144〜169、158〜180、1
70〜191、181〜204、197〜222。組換え蛋白質の調製
全DerpI又はDerpII蛋白質をコードするインサート(オーストラリア国、Melb
ourne 在、Commonwealth
Serum Laboratories,消耗ダニ媒質からのもの)又は組換え構築物(関連cDN
Aの制限エンドヌクレアーゼ断片から形成したもの;Chua等(1990) Int.Arch.Al
lergy Appl.Immunol.91:118-123参照)をpGEXベクターにライゲートして大
腸菌中にトランスフォームした(Smith,D.B.及びJohnson,K.S.(1988)Gene,67:31
)。これらの生成物の分子クローニングの手順は、他所に記載されている(Chua
,K.Y.等(1988) J.Exp.Med.,167:175及びChua,K.Y.等(1990)Int.Arch.Allergy
Appl.Immunol.,91:124)。pGEXベースの蛋白質又はペプチド構築物でトラン
スフォームした対数期大腸菌を、0.1mM イソプロピルチオガラクトシダー
セ(IPTG)(Promega)を培養に加えて37℃で60分間震盪することによ
り、組換え蛋白質の発現を誘導した。多量の融合ペプチドが必要であったので、
それらを可溶化含有物から調製した。細菌ペレットを、1mM EDTAを含有
するトリス緩衝塩溶液中に再懸濁し、0.1mmガラスビーズを含むホモジェナ
イズ用ボトルに移して、Braun MSK ホモジェナイザーを用いて5分間ホモジェナ
イズした。10,000gで、4℃で10分間の超遠心分離の後に溶菌液を取り
出した。ペレットを、1MNaCl及び1%トリトン−X100(BDH Chemical
s)を含む1.75M グアニジンHCLで、ピペットで入念に吸うことにより
、2回洗い、次いで遠心分離した。次いで、ペレットを、50mM NaCl及
び1mM
エチレンジアミン四酢酸(EDTA)を含む8M 尿素中で37℃で2時間イン
キュベートすることにより溶解させた。この試料を、3−(シクロヘキシルアミ
ノ)−プロパンスルホン酸(CAPS)緩衝液(pH10.7)にて透析し、pHを
ゆっくりと9.6に調節した。次いで、組換え物質を、10000gの遠心分離
により清澄化し、可溶性物質の濃度をウシ血清アルブミン(BSA)の標準量に
対してSDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)及びクー
マシーブルーでの染色を用いて評価した。この研究で使用した組換ペプチドは、
GEXDerpI(アミノ酸残基1〜222)、GEXDerpII(アミノ酸残基1〜1
29)、GEXp1−14(DerpIのアミノ酸残基1〜14)、GEXp60−
111(DerpIのアミノ酸残基60〜111)、GEXp98−140(DerpI
のアミノ酸残基98〜140)、GEXp101−154(DerpIのアミノ酸残
基101〜154)、GEXp57−130(DerpIのアミノ酸残基57〜13
0)、GEXp188−222(DerpIのアミノ酸残基188〜222)。経口寛容の誘導
マウスをエーテル下で軽く麻酔し、胃内にチューブで3mgの蛋白質又はペプ
チドを3日連続で供給した。抗原をCAPS緩衝液に溶解させて0.2mlの容
積にて投与した。マウスを、最後の給餌の7日後に、尾の基部に、容積0.2m
lにて完全フロイントアジュバント
(CFA)中に乳化した100mgの天然蛋白質で皮下に免疫化した。培養培地
リンパ節細胞を、2%ウシ胎児血清(FCS)、50mM 2−ME、2mM
L−グルタミン及び20mg/mlゲンタマイシンを補ったダルベッコ改変イ
ーグル培地(DME)中で培養した。FDC−P1細胞(Kelso,A.(1990),J.Imm
unol.,145:2167)をDME+5%FCS中に維持し、他方CTLL−2細胞(Kr
illis,S.(1978) J.Immunol.120:20)をRosewall Park Memorial Institute(
RPMI)培地+10%FCS中に維持した。T細胞アッセイ
大動脈周囲及び鼠径リンパ節を免疫化したマウスから採取し、これらの節をス
テンレス鋼ワイヤーメッシュを通すことにより単離細胞浮遊液を調製した。細胞
を洗って、96ウェル平底組織培養プレートにて、0.2mlの容積のDME培
養培地中で4×105細胞にて培養した。蛋白質又はペプチド抗原を種々の濃度
で加え、細胞を37℃で24時間インキュベートした。上清を集めて必要がある
まで−20℃に保存した。すべてのイン・ビトロアッセイに使用されたDerpIは
、消耗ダニ媒質(SMM)から単離したアレルゲンであった。リンホカインアッセイ
FDC−P1細胞は、IL−3及びGM−CSFに応
答して最も増殖し、IFN−γ又はIL−4に対してそれに次いで増殖する(Ke
lso,A.(1990)前出)。2×103細胞を、50μlDME+5%FCSにて、9
6ウェル平底組織培養プレート中の50μlの培養上清に加えた。これらの細胞
を、40時間37℃でインキュベートし、次いで、1μCiの3H−チミジンで
更に4〜6時間37℃でパルス標識した。次いで、細胞をガラス繊維フィルター
マット上に採取して、試料を、液体シンチレーションスペクトロメトリーを用い
て、又は後の実験用にそれを獲得するためにPackardマトリックス9600直接ベー
タカウンター(コネチカット、Meriden在、Packard Instruments)にて、3H−
チミジンの取込みについて計数した。
CTLL−2細胞株は、IL−2で最大に増殖するが、IL−4の存在下では
僅かしか増殖しない(Kelso,A.(1990)J.Immunol.145:2167)。上清を、ウェル当
り5000のCTLL−2細胞と共に24時間37℃で培養し、1μCiの3H
−チミジン(3H−Tdr)でパルス標識した。細胞を、ガラス繊維フィルター
マット上に採取して、取込まれた放射能の量を上記のように測定した。実施例1
マウスにより認識されるDerpI中の
免疫優性、マイナー及びクリプティック
T細胞エピトープの測定
H2bマウスはDerpIに対する高応答動物であるが、H2k、H2d及びH2qマ
ウスは低応答動物であることが以前に示された(Hoyne,G.(1992) Ph.D.Thesis,T
cell Recognition During Mucosal and Systemic Responses,Western Austral
ia大学)。DerpI上のT細胞エピトープの位置を決定するために、B10マウス
を100μgのCFA中のDerpIで皮下に免疫化し、8日後に大動脈周囲及び鼠
径リンパ節を、重複ペプチドのパネルを用いて、抗原特異的リンホカイン放出(
IL−3/GM−CSF)について調べた。3つの別々の実験において、最大応
答はペプチドp110−131(DerpIのアミノ酸残基110〜131)に対し
て見出され、他方、最低応答もペプチドp78−100(DerpIのアミノ酸残基
78〜100)及びp21−49(DerpIのアミノ酸残基21〜49)に対して
見られた。他のペプチドは、応答を刺激することが出来なかった。かかる実験の
1つの結果の例を図1に示すが、ここでは次のペプチドを用いた:ペプチドp1
10−131(□)、ペプチドp78−100(△)及びペプチドp21−49
(●)。
クリプティックエピトープについて試験するために、マウスをすべてのペプチ
ドで免疫化し、DerpI及び免疫
化ペプチドに対する応答を、脾臓接着細胞の存在下で測定した。ペプチドp12
0−143(DerpIのアミノ酸残基120〜143)及びペプチドp144−1
69(DerpIのアミノ酸残基144〜169)は、マウスを感作して、それらが
完全なDerpI蛋白質(図2a)及びペプチド(図2b)の両者に対してそれぞれ
応答を再生するようにすることが出来る。図2の結果は、3重の試料の平均IL
−3/GM−CSF応答を示している。この図には、次のペプチドを示してある
:ペプチドp120−143(□)、ペプチドp144−169(△)、ペプチ
ドp132−157(○)及びペプチドp158−180(×)。実施例2
融合蛋白質の投与によるマウスにおける
経口寛容の誘導
幾つかの組換えペプチドを、DerpIcDNAの制限酵素消化により生成した。
これらの断片を上記のようにpGEX発現ベクター中にクローン化して大腸菌中
にトランスフォームした。この研究用に選択した組換えペプチドは、Schistosom a
japonicum のグルタチオン−S−トランスフェラーゼ蛋白質に付着した融合体
として発現した。これらの融合蛋白質及びペプチドを細菌細胞ペレットから可溶
化してCAPS緩衝液(pH9.6)中に透析した。図3に列挙したこれらの組
換えペプチドを、上記の公知のT細胞エピトープデータに基づいて選択し
た。組換えペプチドを、その配列内の免疫優性(平行線を引いた四角)、クリプ
ティックエピトープ(点を打った四角)の存在又はT細胞エピトープの不在(黒
い四角)について選択した。従って、対照ペプチドGEXp1−23(DerpIの
アミノ酸残基1〜23)及びGEXp188−222(DerpIのアミノ酸残基1
97〜222)は、如何なるT細胞エピトープをも含んでいなかった。GEXp
57−130(DerpIのアミノ酸残基57〜130)は、2つのエピトープを含
んだが、他方、GEXp101−154(DerpIのアミノ酸残基101〜154
)及びGEXp98−140(DerpIのアミノ酸残基57〜130)は単一免疫
優性エピトープ(アミノ酸残基110〜131)を含み、GEXp131−18
7(DerpIのアミノ酸残基131〜187)はクリプティックエピトープを含ん
でいる。
以前に特性表示された経口寛容の誘導のための養生法(Hoyne,G.F.(1993),Imm
unology 78:534-540)に従って、マウスに、3mgの融合ペプチドを3日連続で
与え、更に7日後に、CFA中の天然蛋白質で皮下に免疫化した。次いで、7日
後に、蛋白質又は合成ペプチドの何れかで刺激した大動脈周囲及び鼠径リンパ節
を用いてイン・ビトロリンホカインアッセイを行なった。マウスにCAPS緩衝
液又は組換えGEXDerpI(1−222)融合蛋白質を与えることが、CFA中
のOVAの皮下注射に対するマウスのIL−2又はIL−3/G
M−CSF応答に影響を有しないことを示すための実験を行なった。
経口投与したペプチドが寛容を誘導し得るか否かを試験するために、対照用マ
ウスにCAPS緩衝液を与え(図4、パネルa及びe)、他方、試験用動物には
、3mgのGEXDerpI(1−222)(図4パネルd及びh)又は融合ペプチ
ドGEXp57−130(図4、パネルb及びf)又はGEXp101−154
(図4、パネルc及びg)を、3日連続で与えた。1週間後に、CFA中の天然Derp
Iでの免疫化に対する応答を測定した。CAPS緩衝液を与えられたマウス
は、DerpI蛋白質に対する強い応答、TCRトリガーリングに応答してIL−3
/GM−CSF(図4、パネルa)及びIL−2(図4、パネルe)の両者のイ
ン・ビトロ分泌を示した。他方において、GEXDerpI(1−222)又は2つ
のペプチドGEXp57−130若しくはGEXp101−154の何れかを与
えられたマウスは、IL−2応答を低下させた(図4、パネルf−h)。IL−
2応答の一層顕著な阻止は、この性質のすべての実験の一貫した特徴であった。
マウスにGEXp98−140を与えたところ、このペプチドにより誘導された
同程度の寛容が見出された。
経口寛容の発達がアレルゲン上のT細胞エピトープに対する応答にどの程度影
響したかを調べるために、3mgのGEXp101−154又はGEXp188
−
222及びGEXDerpII(1−129)(対照用)を、3日連続でマウスに与え
た。1週間後に、マウスをDerpIで免疫化し、リンパ節細胞を涸渇させる応答を
イン・ビトロで蛋白質及びペプチドに対して測定した。データは、次の抗原濃度
での各群における個々のマウスについての応答を示す:DerpI、20μg/ml
;ペプチドp110−131及びペプチドp78−100、10μM。図5に示
したように、マウスにGEXp188−222又はGEXDerpII(1−129)
の何れかを与えることは、蛋白質又は免疫原性ペプチドp110−131又はp
78−100でのイン・ビトロでのチャレンジにおいて、それらのリンパ節細胞
のIL−3/GM−CSF又はIL−2を分泌する能力に影響しない。しかしな
がら、対照的に、GEXp101−154を与えられたマウスのリンホカイン応
答は著しく減少し、従って、全蛋白質に対して寛容化されたようである(図5)
。1つのエピトープの給餌により誘導される寛容は、アレルゲン上の他のエピト
ープに対して特異的なT細胞に影響を与えるようである。引き続く1つのエピト
ープを含むGEXp61−100及び融合ペプチドGEXp1−23(対照用)
を用いる実験は、同じ結果を与えた。
クリプティックエピトープを含むペプチドが免疫応答に影響し得るか否かを測
定するために、マウスに、3mgのペプチド144〜169に見出されたクリプ
ティ
ックエピトープを含むGEXp131−187(図6(●))を3日連続で与え
、他方、対照用マウスには、CAPS緩衝液(図6(□))を与えた。1週間後
に、マウスを、CFA中のDerpIで免疫化した。リンパ節細胞を、イン・ビトロ
でDerpIと共に培養し、上清をIL−2についてアッセイした。図6の各データ
点は、群当り5匹の動物の平均応答±標準偏差を示す。クリプティックペプチド
を与えられたマウスの応答は、統計的に異なった(p<0.05 t検定)。図
6に示したように、対照用マウスからのリンパ節細胞は、IL−2分泌によりイ
ン・ビトロでDerpIに対する強い応答を示したが、クリプティックエピトープを
与えられたマウスは、ずっと弱いリンホカイン応答をイン・ビトロで示した。
ここに提供したこれらの結果は、優性又はクリプティックT細胞エピトープを
含む融合ペプチドを給餌することは、全抗原での皮下免疫化に対するT細胞応答
を阻止し得ることを示している。優性エピトープを含む融合ペプチドの場合には
、この阻止は顕著であり、全アレルゲン又は免疫優性ペプチドでイン・ビトロで
チャレンジされたリンパ節細胞涸渇からの低下したIL−2及びGM−CSF放
出により測定される。これは、給餌に用いた融合体上に存在しない残基を含むペ
プチドへの応答を含んだ。例えば、融合ペプチドGEXp101−154を給餌
することは、DerpI免疫化の、全アレルゲン及び合
成ペプチドp110−131及びp78−100と反応するT細胞を誘導する能
力を阻止した。従って、この効果は、可溶性因子によって媒介され得る。或は、
この阻止は、DerpII融合蛋白質によっては誘導し得ないので特異的である。類似
のデータが、Miller,A.等(1991)J.Exp.Med.,174:791; Whitacre,C.C.等(1990)
J.Immunol.147:2155; 及び Miller,A.等(1992) Proc.Natl.Acad.Sci.USA,89:421
によって得られており、MBPに対する経口寛容がTGF−β1により媒介され
、イン・ビトロモデルにて傍観者応答を抑制することを示し得ることが見出され
た。
T細胞エピトープを含まない2種の融合蛋白質を給餌することは、免疫応答を
阻止しなかった。しかしながら、ペプチドp144−169に見出されたクリプ
ティックエピトープを含む融合ペプチドGEXp131−187を給餌すること
は、有意に阻止した。阻止の程度は、優性エピトープを含む融合体については著
しくなかったが、恐らく給餌養生法を延長し又は投与量を増すことによって増大
させ得るであろう。これらの融合ペプチドを給餌することは又、MLNにおいて
T細胞を感作して、それらが、ペプチドGEXp131−187を給餌した後にDerp
I又はクリプティックペプチドp144−169を含む合成ペプチドでイン
・ビトロで刺激したときにGM−CSFを放出するようにすることも見出された
。経口寛容におけるこれらの感作された細胞の存在
は、最近、OVAについて記載された(Hoyne,G.F.等(1993),Immunology 78:534
-540)。実施例3
アレルギー性の個体により認識される
DerpI中の免疫優性、マイナー及び
クリプティックT細胞エピトープの決定
アレルギー性の個体により認識されるDerpI蛋白質配列中のT細胞エピトープ
を決定するために、ダニアレルギー患者の末梢血液白血球を、完全培地にて、2
×106/mlで、20μg/mlの精製した天然DerpIの存在下で培養するこ
とによりT細胞株を樹立することが出来る。湿潤化CO2インキュベーター中で
37℃で7日間の培養した後に、生存可能細胞を、リンパ球分離用培地(LSM
、ノースカロライナ、Durham在、Organon Technica)を用いる遠心分離によって
単離し、組換えIL−2及び組換えIL−4を含む完全培地にて更に2〜3週間
培養することが出来る。T細胞が「休止」していてもはや成長因子に対して応答
性でない場合は、2×104のT細胞を、200μlの完全培地中で、5×104
のガンマー線照射(3500ラド)した末梢白血球(抗原提示細胞)と共に、種
々の濃度の完全な蛋白質から誘導したペプチドの存在下で培養することによる第
2増殖アッセイを行なうことが出来る。これらの培養を、次いで、3日目に、ト
リチウム化チミジン(1μCi/ウェル)でパルス標識し、4日目に、ガラス繊
維
フィルター上に採取することが出来る。トリチウムの取込みを培地対照の少なく
とも2倍より多く刺激するペプチドを、完全蛋白質(即ち、ペプチドは、少なく
とも1つのマイナー又は免疫優性エピトープを含む)を与えたときに、天然にお
いてT細胞に曝露されるT細胞エピトープを含むと規定する。培地対照の2倍よ
り少ないトリチウム取込みを刺激するペプチドは、T細胞エピトープを含まない
か又はクリプティックペプチド(即ち、完全な蛋白質が与えられたときに、通常
、T細胞に曝露されないエピトープ)を含む。これらのペプチド中のクリプティ
ックエピトープの存在を確認するために、同じ個体からの末梢白血球を、各ペプ
チドの存在下で、ペプチド反応性T細胞株を樹立するために別々に培養すること
によって、T細胞株を樹立することが出来る。次いで、「休止」T細胞を、各ペ
プチド及びDerpI蛋白質でチャレンジすることが出来る。少なくとも1つのクリ
プティックエピトープを含むペプチドは、そのペプチド又は完全な蛋白質の存在
下で、培地対照の少なくとも2倍より高レベルでT細胞株の増殖を刺激すること
が出来、又はT細胞を寛容化することが出来る。同等物
当業者は、ここに記載した発明の特定の具体例の多くの同等物を認識し、又は
常例的実験を用いて確認することが出来る。かかる同等物は、後述の請求の範囲
に含ま
れるものである。
Detailed Description of the Invention
For use in inducing immune tolerance
Cryptic peptideBackground of the Invention
Providing antigens is a classical way to induce immune unresponsiveness or oral tolerance
(Asherson, G.L. et al. (1977), Cell Immunol., 33: 145; Asherson, G.L. et al.
1979), Immunology, 36: 449; Challacombe, S.J. and Tomasi, T.J. (1980), J. Exp.
.Med., 152: 1459; Bruce, M.G. and Ferguson, A. (1986), Immunology, 57: 627; Mow.
at, A. (1982), Immunology, 45: 105; and Strobel, S. et al. (1983), Immunology, 49:45.
1). An important physiological response to dietary antigens (Mowat, A.M. (1987), Immu
nology Today, 8:93), taking oral tolerance into account in autoimmune diseases.
Ectopic immune response as found (Thompson, H.S.G. and Staines, A. (1990), Imm
unol.Today, 11: 396) and allergies have been suggested.
.
The most widely studied model system for autoimmune disease is experimental allergic encephalomyelitis.
(EAE) model system. Tolerizing amount of myelin basic protein (MB
P) fed rats can be protected from encephalomyelitis challenge with MBP
(Miller, A. et al. (1991), J.
Immunol., 147: 2155 and Miller, A. et al. (1992), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 89: 421.
). However, conflicting views have emerged regarding the mechanisms involved in the induction of oral tolerance.
Have been. For example, Whitacre et al. (1991), J. Immunol., 147: 2155
Inability to transfer suppression using T cells from domesticated animals
, But cloned anergy CD4+MBP-reactive T cell effect
It has been shown that it may be an important mechanism for down-regulating tractor function. Or Mi
ller, A. et al. (1991) J. Exp. Med., 174: 791, CD8 from suppression-tolerized animals.+T
It has been shown that the cells can be transferred to a natural recipient. these
Suppressor (T) cells of MBP are specific for MBP due to the release of soluble cytokines.
CD+Reportedly able to block the in vitro response of T cell lines, irrelevant
Can also cause by-stander suppression of T cells in
Deaf (Miller, A. (1991) supra). Immunomodulatory cytokines released by T cells
Was later defined as TGF-β1 (Miller, A. et al. (1992) Proc. Natl. Acad. Sc.
i.USA 89: 421).
Bacterial and viral pathogens, autoantibodies, allergens and other experimental antigens such as
Chicken egg lysozyme (HEL), ovalbumin (OVA) and lambda repress
Peptides derived from various protein antigens including sir (c1)
Tested for their ability to stimulate vesicles
Was. It has been reported that proteins with a wide size spectrum act as T cell epitopes.
It has been tell. For example, peptides derived from hepatitis B surface antigen (HBsAg
Minoic acid residues 19-33) were recently identified in human patients immunized with recombinant hepatitis B vaccine.
Have been shown to stimulate T cell responses in the majority of individuals (Schad, V.C. et al. (1991)
Seminars in Immunol., 3: 217-224). 65kD protein of major mycobacterial antigen
The quality was also epitope mapped (Lamb, J.R. et al. (1987) EMBO J., 6 (5): 1245-1249.
). From the 112-132 and 437-459 amino acid residues of this 65 kD protein
T-cell epitopes have been identified in the following peptides. MBP is also human (
Ota, K. et al. (1990) Nature, 346: 183-187) and rodents (Zamvil et al. (1986) Nature, 324).
: 258-260).
The T cell epitopes present in allergenic proteins have been most recently described (O'He
hir, R. et al. (1991) Ann. Rev. Immunol., 9: 67-95). Indoor dust mite allergenDerpFrom I
Several derived peptides were shown to be T cell reactive (Thomas, W.
R. et al., European Conference on Allergy and Clinical Immunology X IV (September 1989, Berlin)
From Epitopes of Atopic Allergens Proceedings of Workshop, pages 77-82;
O'Hehir, R.E. (1991) Annual Review Immunology 9: 67-95; Stewart, G.A. Etc.
Epi from European Academic Conference XIV on Allergy and Clinical Immunology (September 1989, Berlin)
topes of Atopic Allergens
41-47 in Proceedings of Workshop; and Yessel, H. et al.
Conference 22-26 (September 1990, Trinity College, Oxford, UK) T Cell Activat
ion in Health and Disease). T derived from the short ragweed allergen AmbaI
A cell stimulating peptide (amino acid residues 54-65) was also reported (Rothbard, J.B.
Et al. (1988) Cell, 52: 515-523). T cells derived from individuals with ryegrass allergy
Using a panel of clones, Perez et al. Show that the T cell epitope is the protein allergen L
It was shown to be contained within amino acid residues 191-210 of olpI (Perez, M. et al. (1
990) J. Biol. Chem. 265 (27): 16210-16215).Summary of the Invention
This invention improves the tolerance of a protein antigen in a patient, for example, a human patient, to its immunological tolerance.
At least one cryptic peptide derived from a source and a pharmaceutically acceptable key
Related to a method of inducing by administering a tolerizing amount of a composition containing a carrier
You. Cryptic peptides derived from protein antigens such as allergens or self-antigens
Administration of a composition containing tid induces tolerance in naive or presensitized individuals.
You can guide. Preferably, this composition is administered orally to administer in an individual.
Treat sensitivity to allergens or self-antigens.Brief description of the drawings
Figure 1DerpIsolated from mice immunized with I,DerpSelect from I
For the response to specific peptides by tritiated thymidine incorporation.
3 is a graphical representation of T cell response.
2a and 2b showDerpMice immunized with selected peptides derived from I
Isolated,DerpTo I protein (panel a) or the appropriate peptide (panel b)
3 is a graphical representation of T cell responses analyzed for response.
FIG. 3 shows T cell epitopes recognized by mice.DerpPosition in the I protein sequence
A schematic representation of the location where immunodominant epitopes are represented by parallel-lined squares.
, Cryptic epitopes are represented by dotted squares, indicating that there is no epitope.
It is represented by a black square.
FIG. 4 shows buffer (panel a), peptide GEXp57-130 (panel b),
Peptide GEXp101-154 (panel c), or recombinant protein GEXDerpI
(1-222) (panel d) was fed and thenDerpFrom mice immunized with I
Isolated and in vitroDerpRegarding the response to I, IL-3 / GM-CSF (
Response of T cells analyzed by panels a-d) or IL-2 production (panels e-h)
Is a graph display.
FIG. 5 shows the recombinant protein GEXDerpII (1-129), peptide GEXp101
-154, or the peptide GEXp188-222, followed byDerpFree with I
Quarantine
Isolated from theDerpI (panels a and d), peptide p110-131 (
Panel b and e) or the response to peptide p78-100 (panels C and f).
Regarding the answer, IL-3 / CSF (panels a to c) or IL-2 production (panels d to c)
FIG. 6 is a graphical representation of T cell responses analyzed according to f).
Figure 6 shows either buffer or recombinant fusion peptide (GEXp131-187)
Feed and thenDerpIsolated from mice immunized with I,DerpResponse to II
Is a graphical representation of the response of T cells analyzed by IL-2 production.Detailed description of the invention
This invention induced immunological tolerance to a protein antigen in a patient from that antigen
To induce by administering at least one cryptographic peptide
Method. Protein antigens are specific class II major histocompatibility complex
Upon exposure to its native protein antigen when presented with the (MHC) molecule
Known to contain certain determinants or epitopes that activate T cells in patients
ing. The T cell response may be limited by the presence of one or two determinants on the antigen
Nonetheless, the T cell response appears to preferentially utilize some of the selected determinants.
Thus, a hierarchy of T cell determinant utilization exists for multideterminant protein antigens. Obedience
A specific protein antigen
Based on an in vitro T cell proliferation assay
Can be divided into categories, and in the proliferation assay, protein antigen
Lyme T cells with selected concentrations of peptides derived from their protein antigens
In culture, the amount of proliferation by T cells in response to the peptide can be determined, eg
It is measured by the incorporation of midine.
This assay showed that if the peptide was antigen primed in the patients tested,
If one consistently induces one of the best T cell proliferative responses in
The peptides are categorized into categories containing immunodominant T cell epitopes. Immunodominance d
Compared to pitopes, peptides containing minor T cell epitopes are
B) regenerates more variable and low levels of T cell proliferation. Medium only
Peptides that regenerate T cell proliferation less than twice background levels are T cells
Categories without epitopes or with Cryptic T cell epitopes
Classified into. Cryptic epitopes process natural protein antigens
And in protein antigens not normally presented to the immune system due to presentation to the appropriate MHC molecule
Is the determinant of. However, peptides containing cryptic epitopes
Patients that can tolerize T cells and prime the patient with the peptide
T cells obtained from E. coli in response to the peptide or protein antigen from which the peptide was derived.
Proliferate in vitro. From protein antigen
A peptide containing at least one cryptic epitope derived is
Is called a cryptic peptide. In peptides classified by the above assay
In order to confirm the presence of a cryptic epitope of
Cells were cultured in vitro in the presence of each peptide separately and the peptide-reactive T cells were incubated.
Establish a cell line. If you can establish a T cell line using a given peptide,
And T cells are charen with the peptide or the protein antigen from which the peptide is derived
If the peptide is capable of growing in
It is considered to contain an epitope.
The presence of cryptic epitopes in protein antigens is exempt from certain epitopes.
Due to lack of exposure to the epidemiological system, epidemics against suitable class II MHC molecules
It may result from the normal processing of protein antigens that may not exhibit a taupe. Or anti
The final product of the original processing hides the cryptic epitopes,
Access to T cell receptors on T cells specific for offspring or epitopes thereof
It can be a large piece that interferes with scanning. In addition, other epitopes on the same protein antigen are:
Can compete for binding to the same restriction element as the cryptic epitope, or
Can have a higher affinity and availability for different restriction elements,
Therefore, it blocks the interaction of cryptic epitopes with MHC.
Is the cryptic peptide of this invention a protein antigen?
From at least one cryptic epitope (ie, this peptic
Contains at least about 7 amino acid residues). Such peptides are as desired
It may contain amino acid residues of many protein antigens, preferably at least about 7
, More preferably at least about 15, even more preferably at least about 20 and
Most preferably it can comprise at least about 25 amino acid residues. 20-40
A peptide length of about amino acid residues is preferable. Because the increase in peptide length
, Peptide synthesis is difficult, and peptide and protein antigens (such as
Undesired features due to the retention of conformational similarities between the incoming allergens)
Because it can result in retention of sex (eg, immunoglobulin binding activity or enzymatic activity).
You. If desired, the amino acid sequence of one or more peptides can be generated and
Binding to increase susceptibility to processing by antigen-presenting cells
Can be done. Such linker may be any non-epitope amino acid sequence or other suitable
It may be a binder or binder. For example, linking two types of cryptic peptides
Can or can be derived from protein allergens with cryptic peptides
It can be linked to peptides containing immunodominant or minor epitopes.
A cryptic peptide is a nucleotide sequence encoding such a peptide.
Recombinant D in host cells transformed with a nucleic acid vector directing expression
NA technique
Allergens, etc. by surgery, by chemical synthesis, or in some limited circumstances
Can be produced by chemical cleavage of the protein antigen of Raw by recombinant technology
Nucleic acid which, if made, directs the expression of the nucleotide sequence encoding the peptide.
Culturing a host cell transformed with a vector in a medium suitable for that cell
I do. These peptides are secreted and taken from the mixture of cells and cell culture medium.
Rukoto can. Alternatively, the peptide is retained in the cytoplasm and the cells are harvested
Then, the peptide can be isolated and purified by dissolving. Peptide, peptide
Or can be isolated using techniques known in the art for purifying proteins,
The techniques include ion exchange chromatography, gel filtration chromatography, and
Ultrafiltration, electrophoresis and peptide or protein antigens from which this peptide was derived or
Includes immunoaffinity purification using antibodies specific for that portion
. The cryptic peptides described herein are produced by recombinant DNA technology
In some cases, it does not contain cellular substances or culture medium,
Chemical allergen or other protein antigen, if obtained by chemical cleavage
Isolate to be substantially free of precursors and other chemicals.
When the T cell epitope of the protein antigen is unknown or unclear, the crypte of the present invention is used.
The protein structure of the antigen and obtain the desired sequence in order to obtain the desired peptide.
Length of
Can be divided into at least two peptide fragments. For example, protein antigen
Protein sequences of at least two non-overlapping fragments of desired length or desired
Can be divided into overlapping pieces of length. As an example for explanation, 229
Has the amino acid sequence of the residue (shown in SEQ ID NO: 1)Dermatophagoides pterony ssinus
ofDerpThe known amino acid sequence of the I major allergen is approximately 22-35 amino acids.
Peptide fragments that have a residue length and each fragment overlaps with other fragments by about 10 amino acids.
Can be divided into pieces. Include T cell epitopes in these peptide fragments
To maximize the likelihood of the T cell epitopes predicted using the algorithm
Overlapping regions and the length of each fragment can be designed to maintain their presence (
Rothbard, J. and Taylor, W.R. (1988) EMBO J. 7: 93-100; and Berzofsky, J.A. (198
9) Philos.Trans.R.Soc.Lond.323: 535-544). Preferably human in the protein antigen
The T cell epitopes are pre-defined using known HLA class II binding specific amino acid residues.
I can think. Recombinant DNA technology or chemical synthesis of the resulting peptide fragments
Can be generated by
Peptide fragments derived from protein antigens were tested for T cell stimulatory activity (ie, proliferation).
, Lymphokine secretion and / or induction of T cell anergy / tolerance)
Decided. For example, patients such as humans who have a human T cell stimulating activity and are sensitive to protein antigens.
(Ie immunity to the protein antigen
T cells obtained from patients with a response) were treated with peptide fragments derived from this protein antigen.
Measuring the presence of proliferation by T cells in response to the protein in culture with strips
Can be tested by The presence of proliferation by T cells can be determined, for example, by tritium.
It can be measured by the incorporation of thymidine chloride.
Immunodominant T cell epitope, minor T cell epitope and cryptic enzyme
The pitope can be identified as described in Example 3. In selected peptides
Sensitive to its protein antigen to confirm the presence of a cryptic epitope in
Cells from each individual and cultured separately with each cryptogenic peptide
Establish a Tide reactive T cell line. Peptides and proteins derived from the peptides
The presence of an induction of T cell proliferation or T cell tolerance in response to a primordial phenotype is a minor
Ensure the presence of at least one cryptic epitope.
The cryptic peptide of this invention is a protein anti-protein such as an allergen or an autoantigen.
It can be derived from Hara. If you derive from an allergen, Cryptic Pep
Tide from any known protein allergen, such as allergens of the following genera
You can induce:DermatophagoidesGenus,Felis Genus,AmbrosiaGenus,LoliumGenus
,Cryptomeria Genus,AlternariaGenus,Alder Genus,BetulaGenus,Quercus Genus,OleaGenus,Artemisia
Genus,PlantagoGenus,ParietariaGenus,CanineGenus,Blattella Genus,ApisGenus,Periplaneta
Genus, andSorghum Genus.Dermatophagoidespteronyssinus Major species
Allergen,DerpThe cryptic peptide recognized by the mouse in I
Measured atDerp120-143 amino acid residues of I (SEq ID NO: 1),Derp
144-169 amino acid residues of I (SEQ ID NO: 1) andDerpI (SEQ ID NO: 1)
Amino acid residues 131-187 of
Cryptic peptides can also be used when tolerance to self-antigens is desired.
It can also be derived from protein antigens other than allergens. Cryptic Peptic
The autoantigens from which the liver can be derived include insulin for the treatment of diabetes and deca-glutamate.
Ruboxylase (64K), PM-1 and carboxypeptidase, multiple sclerosis
Basic protein for the treatment of dementia, rh factor for the treatment of fetal erythroblastosis, myasthenia gravis
Acetylcholine Receptor for the treatment of Graves 'disease, Thyroid Receptor for the treatment of Graves' disease
, Basement membrane protein for the treatment of Goodpasture's syndrome, and thyroid for the treatment of thyroiditis
Contains proteins.
According to one aspect of the present invention, a cryptic peptide derived from a protein antigen is
To induce immunological tolerance to the protein antigen in that patient.
The term patient refers to a patient who is able to mount an immune response to a protein antigen.
An object such as a mammal is included. Examples of patients include humans, rats, mice, dogs,
This includes cats, horses, cows and transgenic species thereof. Exemption
Epidemiological tolerance refers to the block of development, growth or differentiation of specific lymphocytes within a patient.
Refers to the condition of a patient caused by the administration of a tolerated dose of a clear cryptic peptide. Generous
Is the antigen under conditions in which lymphocytes are deleted or rendered unresponsive without being activated.
Resulting from the interaction with the antigen receptors on lymphocytes. Tolerance is also a specific T
Or by other regulatory mechanisms that block the action of B lymphocytes or lymphocyte activation
There is also a possibility. One mechanism for blocking the immune response is called suppressor T cells.
One class of lymphocytes that are exposed (the main function of which is the specific T and B lymphocytes
Suppressing activation) is a stimulus. In this situation, blocking is the antigen
It is mediated by regulatory cells that are induced by the antigen but not by themselves. other
The proposed mechanism of tolerance is the unique or isotypic determinants of lymphocytes or
The original specific antibody is the response by the immune system to the targeted antigen. This response
The answer is that this response consists of a network of complementary idiotypes and antigen-specific cells.
It produces an anti-idiotype that blocks irritation. Finally, the activity of B and T lymphocytes
The products of sexualization, the antibody and the cytokine itself, are the principle of lymphocytes, respectively.
In addition to functioning as an effector molecule, it regulates specific immunity and causes tolerance
Rukoto can.
Crypti derived from protein antigens to induce immune tolerance in patients
A tolerizing amount of luc peptide is administered to the patient. Tolerizing dose in patients such as humans
Krip
Clips required to induce tolerance to the antigen from which the tick peptide was derived
Defined as the dose of tick peptide. Immune tolerance in patients is standard
Unresponsiveness to protein antigens or reduced symptom as measured by bed procedure
(See, for example, Varney et al. (1990) British Medical Journal 302: 265-269.
No). If tolerance to an allergen is sought, such non-responsiveness may include alleles.
Includes a reduction in gen-induced allergic symptoms. In this case, allergen
The symptom reduction for
Any reduction in allergic response to allergens after treatment regimen with tide
included. This reduction in symptoms can be subjectively measured in humans (eg.
If, for example, the patient feels more comfortable when exposed to the allergen), or
It can be measured clinically such as by using a standard skin test.
Cryptic peptides derived from protein antigens are typically produced in patients.
It is administered in the form of a composition containing a pharmaceutically acceptable carrier or diluent. To the patient
Administration of the compositions of the invention to induce immune tolerance to protein antigens
Effective dose to tolerate a patient to its protein antigens using known procedures
And can be done during the period. An effective amount of this composition is for the patient's antigen.
Factors such as degree of susceptibility, age, sex, and weight, and cryptic peptides
Tolerance in patients with
It depends on the ability to induce. Dosage regimen to give optimal therapeutic response
Can be adjusted to For example, daily or divided doses
It can be reduced depending on the urgency of the medical treatment situation.
Cryptic peptides can be prepared by conventional methods, such as injection (subcutaneous, intravenous, etc.), oral
Administration to patients by administration, inhalation, intranasal administration, transdermal application, or rectal administration
Can be done. The preferred route of administration for inducing immune tolerance in a patient is oral administration.
And intranasal administration. O'Hehir, R.E. et al. (1993) Eur.J.Clin.Invest.23 (12): 763-7
See 72. Depending on the route of administration, the active compound (ie, the cryptic peptide)
Coated with an enzyme that can inactivate this compound, a substance that protects it from production and other natural conditions
You can do it.
In order to administer a cryptic peptide by enteral administration,
Must be coated or co-administered with a substance that blocks its inactivation.
Can be For example, the cryptic peptide may be administered to a patient in a suitable diluent.
, Co-administered with enzyme inhibitors, or in a suitable carrier such as liposomes
You can Pharmaceutically acceptable diluents include salt solutions and aqueous buffer solutions.
You. Enzyme inhibitors include pancreatic trypsin inhibitor, diisopropyl fluorophore.
Includes sulfate (DEP) and trasilol. Liposomes in oil-in-water
Water CGF emulsion and conventional liposome
Included (Strejan et al. (1984) J. Neuroimmunol. 7:27). For the purpose of inducing tolerance
For this purpose, the composition preferably comprises a non-immunogenic form, for example an adjuvant.
Do not administer
The active compound may also be administered parenterally. Glycerol, liquid polyethylene
Dispersions can also be prepared with glycols, and mixtures thereof, and oils.
Under ordinary conditions of storage and use, these preparations inhibit the growth of microorganisms.
Preservatives for can be included.
Pharmaceutical compositions suitable for injection include sterile aqueous solutions (where water soluble) or dispersions and
Included are sterile powders for the extemporaneous preparation of sterile injectable solutions or dispersion. Everything
In all cases, the composition must be sterile and should be fluid to the extent that easy syringability exists.
Must. It must be stable under the conditions of manufacture and storage.
And must be protected against contamination by microorganisms such as bacteria and mold. Cat
The rear may be a solvent or dispersion medium, for example water, ethanol, polyol.
(Eg glycerol, propylene glycol and liquid polyethylene glycol
Etc.), suitable mixtures thereof and vegetable oils. Suitable fluidity, for example
The particle size required for dispersion is maintained by using a coating such as lecithin
And by the use of surfactants. Microorganism
The inhibition of the action of
And antifungal agents such as paraben, chlorobutanol, phenol, ascorbine
It can be achieved by acid, thimerosal and the like. Often in the composition,
Isotonic agents such as sugars, polyalcohols such as mannitol, sorbitol, chloride
It is preferable to include sodium. Agents that delay absorption in the composition, such as aluminum
Injectable composition containing aluminum monostearate and gelatin
Prolonged absorption of can be achieved.
Sterile injectable solutions of the active compound in the required amount in the appropriate solvent in one of the ingredients
Alternatively, it can be prepared by mixing (if necessary) with the combination and then sterilizing filtration.
Rukoto can. In general, the dispersion comprises the active compound, the basic dispersion medium and any of the above.
Prepared by mixing in a sterile vehicle containing the other required ingredients. Aseptic injection
In the case of sterile powders for the preparation of sprayable solutions, the preferred method of preparation is the active ingredient (ie
Peptide of the invention) to which any desired ingredient from the above sterile filtered solution was added.
Vacuum drying and freeze drying to produce a powder.
The cryptic peptides described herein, if properly protected as described above,
Peptides, eg with an inert diluent or an assimilable edible carrier
It can be administered orally. This peptide and other ingredients may be hard or soft
Encapsulate shell gelatin capsules, compress into tablets, or mix directly into your personal diet.
You can do it.
For oral administration, the active compound is mixed with excipients and ingestible tablets, buccal tablets, troches
Used in the form of chi, capsules, elixirs, suspensions, syrups, wafers, etc.
You can Such compositions and preparations should contain at least 1% by weight of active compound.
Should be included. The percentages of this composition and preparation may, of course, vary.
The unit of about 5 to 80% by weight is convenient. Of the active compound in such compositions
The amount should be such that an optimum dosage will be obtained. Preferred compositions or preparations according to the invention
Are prepared so that an oral dosage unit contains about 10-200 mg of active compound.
As used herein, "pharmaceutically acceptable carrier" includes any and all soluble ingredients.
Media, dispersion media, coatings, antibacterial and antifungal agents, isotonic agents, absorption delaying agents, etc.
Is included. Media and agents for such pharmaceutically active substances are well known in the art.
Is knowledge. Except where the conventional medium or drug is incompatible with the active compound.
Is contemplated for use in the composition. Mixing supplementary active compounds with these compositions
You can also.
It is advantageous to formulate the composition in dosage unit form for ease of administration and uniform dosage.
Can be. Dosage unit, as used herein, refers to the mammalian patient being treated.
A physically separate unit suitable as a unit dosage to achieve the desired effect.
A predetermined amount of the active compound calculated to produce
Including with Ah
No. The specification of the dosage unit form of this invention is defined by (a) the unique properties and reach of the active compound.
The effects to be achieved and (b) the essential technique of synthesizing such active compounds for the treatment of patients.
Dictated by the limits and directly dependent on them.
The composition of this invention comprises one or more cryptographic peptides to be administered to a patient such as a human.
Can include a peptide, or a cryptic peptide and an immunodominant or minor
-A peptide containing an epitope can be included (the patient is
The patient has been unsensitized or presensitized to the protein antigen that has arrived, and the dosage and duration are
And sufficient to induce tolerance to this antigen). For example, a kind
Simultaneously administer an effective amount of the same or different compositions to induce tolerance in a patient.
Or sequentially. Composition comprising at least two peptides
(Eg, a physical mixture of at least two peptides) is also a method of tolerization.
Can be used. For example, cryptic peptides and immunodominant epitopes
Can be co-administered.
The cryptic peptide of this invention (ie, the complete protein antigen was given to the patient
Peptide containing no epitope recognized in immunization).
The fact that tolerance can be induced by and is important. For immunotherapy
Peptides that are effective in, therefore, are simply T-cell clones or the po- sition of sensitized individuals.
It is not limited to the one recognized by the reclonal response. Cryptic
Peptide administration to individuals sensitized with peptides containing immunodominant epitopes
It avoids potential inherent limitations in doing things. Cryptic
The use of peptides is alreadyh1 and ThT going along 2 or an equivalent route
The possibility of modifying the immune response without the need to redirect the development of cell clones
Also provide.
Increased solubility, therapeutic or protective effect or stability (eg in vitro shelf life)
And to increase the resistance to proteolysis in vivo).
It is also possible to modify the structure of cryptic peptides useful in the method of the invention
It is. Amino acid substitutions, deletions or deletions to modify the ability of the peptide to induce tolerance.
Is a modification in which the amino acid sequence has been changed by addition, or a component has been added for the same purpose.
A modified peptide can be produced.
For example, a peptide that induces T cell anergy or tolerance induces MHC protein
Can be modified to maintain the ability to bind to. In this example,
Binding residues important for vesicle receptors (ie
Amino acid residues) by known techniques (eg, substitution of each residue with, for example, alanine, and
It can be determined by measuring the presence or absence of T cell reactivity). To be mandatory
The indicated residues are replaced by their essential amino acids and other, preferably similar amino acid residues (where
Amino acids whose presence increases or decreases T cell reactivity but is not eliminated or affects
It can be modified by substitution with (residue) (conservative substitution). Further, T
Amino acid residues that are not essential for cell interaction are replaced by other amino acids
Increase, decrease or do not affect the reactivity, but increase binding to relevant MHC
It can be modified by substituting non-excluded amino acids). Nonessential net
Suitable amino acid substitutions for non-acids include, but are not limited to, alanine, glutamic acid.
Or includes substitution with a methyl amino acid.
Another example of peptide modification minimizes dimer formation by disulfide bonds
A cysteine residue for preferably alanine or glutamic acid, or serine or
Substitution with threonine.
To increase stability and / or reactivity, the peptides can be modified to
Taking one or more polymorphisms in the amino acid sequence of a protein antigen resulting from a genetic mutation
It can be crowded. Furthermore, D-amino acids, unnatural amino acids or non-amino acid analogs
Can be substituted or added to produce modified peptides within the scope of this invention.
come. In addition, the peptide was synthesized by A. Sehon and a collaborator (Wie et al.
Modified to produce PEG-conjugated peptides using the glycol glycol (PEG) method
Rukoto can. Peptide modification is performed by reduction / alkylation (Tarr: Methods of Prot
ein Microcharacterization, edited by J.E.Silver, New Jersey, Clifton, Humana Pre
ss, pages 155-194 (1986)), acylation (Tarr, supra), esterification (Tarr, supra).
), Chemical coupling to a suitable carrier (edited by Mishell and Shiigi, Sel
ected Methods in Cellular Immunology, San Francisco, CA, WH Free
man (1980); U.S. Pat. No. 4,939,239) or mild formalin treatment (M
arsh, (1971) International Archives of Allergy and Applied Immunology 41:
199-215) can also be included.
To facilitate purification of peptides and potentially increase their solubility, the
Porter groups can be added to the peptide backbone. For example, polyhistidine
Metal ion affinity chromatography with immobilized peptide in addition to peptide
(Hochuli, E. et al. (1988) Bio / Technology, 6: 1321-1235)
I can do it. In addition, if desired, a specific endoprotease cleavage site may be reported.
Of peptides containing no irrelevant sequence by introducing between peptide group and peptide sequence
Can be facilitated. To successfully tolerize patients to protein antigens
In addition, do not add a functional group to the peptide or introduce a hydrophobic region into the peptide.
It may be necessary to increase the solubility of the peptide.
Potentially aids in proper antigen processing of T cell epitopes within peptides
Standard protease sensitive sites in order to recombinantly or synthetically
Can be crafted by For example, a pair of charged amino acids such as KK or RR
During the recombinant construction of the peptide
Can be introduced in Chid. The resulting peptide is cathepsin and
/ Or other sensitizing trypsin-like enzyme cleavage to one or more T cell epitopes
A portion of the containing peptide can be generated. Furthermore, such charged amino acid residues are
, Can result in increased solubility of the peptide.
Using the site-directed mutagenesis method of the DNA encoding the peptide,
The structure can be modified. Such a method is described in PCR (Ho et al. (1989) Gene 77:51.
-59) or total synthesis of mutant genes (Hostomsky, Z. et al. (1989) Biochem. Biophys. Res.
. Comm. 161: 1056-1063). In order to increase bacterial expression,
Method in combination with other procedures to eukaryotes in DNA constructs encoding peptides.
Preferential codons in E. coli, yeast, mammalian or other eukaryotic cells
It can be changed to the one used.
The invention is further illustrated by the following non-limiting examples. Cited in this application
All cited references and published patent applications are incorporated herein by reference.
Incorporate. The methods described in the Materials and Methods section below are used in the examples below.
Was.
Materials and methodsAnimals and antigens
Female B10 and BALB congenic mice and the same
Inbred C57BL / 6J (6-8 weeks old) at Murdo, Western Australia
I bought it from Animal Resource Center, ch.
Indoor dust mite allergenDerpFrom the tick-depleted mite medium (SMM), previously described
Technology (Hoyne, G.F. et al. (1993) supra; Lombardo et al. J. Immunol. 144: 1353-1360 and
Chapman (1989) Advances in Biosciences 74: 281-295).
E. Crystalline ovalbumin (OVA) Grade V, St. Louis, Missouri
Purchased from Sigma Chemical Company. PublishedDerpI sequence (Chua et al. (1988) J.Ex.
p.Med. 167: 175-182), using overlapping synthetic peptides as standard t-BOC chemistry.
The peptide was synthesized by reverse phase high performance liquid chromatography (HPLC).
After purification, the sequence of each peptide was checked to confirm its identity. In this study
The peptide used isDerpI sequence (Chua et al. (1988) supra)
Contains mino acid residues: 1-20, 13-39, 21-49, 40-60, 50-
71, 61-84, 78-100, 85-109, 101-119, 110-1
31, 120-143, 132-157, 144-169, 158-180, 1
70-191, 181-204, 197-222.Preparation of recombinant protein
allDerpI orDerpII protein-encoding insert (Melb, Australia)
ourne, Commonwealth
Serum Laboratories, from exhausted mite media) or recombinant constructs (related cDNA)
Formed from restriction endonuclease fragments of A; Chua et al. (1990) Int. Arch. Al
lergy Appl.Immunol. 91: 118-123) was ligated to the pGEX vector.
Transformed into enterobacteria (Smith, D.B. and Johnson, K.S. (1988) Gene, 67:31.
). Procedures for molecular cloning of these products are described elsewhere (Chua.
, K.Y. (1988) J. Exp. Med., 167: 175 and Chua, K.Y. Et al. (1990) Int. Arch. Allergy
Appl.Immunol., 91: 124). pGEX-based protein or peptide constructs
The transformed logarithmic phase E. coli was treated with 0.1 mM isopropyl thiogalactosider.
By adding IPTG (Promega) to the culture and shaking at 37 ° C for 60 minutes.
Induced expression of recombinant protein. Since a large amount of fusion peptide was needed,
They were prepared from solubilized contents. Bacterial pellet containing 1 mM EDTA
Resuspend in Tris-buffered saline and homogenize with 0.1 mm glass beads
Transfer to an Iz bottle and homogenize for 5 minutes using a Braun MSK homogenizer.
I did it. After ultracentrifugation at 10,000g for 10 minutes at 4 ° C, collect the lysate.
Issued. The pellet was washed with 1 M NaCl and 1% Triton-X100 (BDH Chemical
s) containing 1.75M guanidine HCL by careful pipetting
Washed twice, then centrifuged. The pellet was then washed with 50 mM NaCl and
And 1 mM
2 hours at 37 ° C in 8M urea containing ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)
It was dissolved by incubating. This sample was treated with 3- (cyclohexylamido).
No) -Propane sulfonic acid (CAPS) buffer solution (pH 10.7) is dialyzed to adjust the pH.
Adjusted slowly to 9.6. The recombinant material is then centrifuged at 10,000 g
Clarified by the standard method, and the concentration of the soluble substance was changed to the standard amount of bovine serum albumin (BSA).
For SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and
Evaluation was performed using staining with Macy Blue. The recombinant peptides used in this study were:
GEXDerpI (amino acid residues 1-222), GEXDerpII (amino acid residues 1 to 1
29), GEXp1-14 (DerpI amino acid residues 1-14), GEXp60-
111 (DerpI amino acid residues 60-111), GEXp98-140 (DerpI
Amino acid residues 98-140), GEXp101-154 (DerpI amino acid residue
Groups 101-154), GEXp57-130 (DerpAmino acid residues 57 to 13 of I
0), GEXp188-222 (DerpI amino acid residues 188-222).Induction of oral tolerance
The mice were lightly anesthetized under ether and the tube was intragastrically administered with 3 mg of protein or peptide.
Cide was fed for 3 consecutive days. Dissolve antigen in CAPS buffer and add 0.2 ml
It was administered as a product. Mice were placed at the base of the tail 7 days after the last feeding, with a volume of 0.2 m.
Complete Freund's adjuvant at l
Immunized subcutaneously with 100 mg of native protein emulsified in (CFA).Culture medium
Lymph node cells were supplemented with 2% fetal calf serum (FCS), 50 mM 2-ME, 2 mM
Dulbecco's modified ai supplemented with L-glutamine and 20 mg / ml gentamicin
The cells were cultured in a medium (DME). FDC-P1 cells (Kelso, A. (1990), J. Imm
unol., 145: 2167) in DME + 5% FCS, while CTLL-2 cells (Kr
illis, S. (1978) J. Immunol. 120: 20) Rosewall Park Memorial Institute (
RPMI) medium + 10% FCS.T cell assay
Peraortic and inguinal lymph nodes were taken from immunized mice and these nodes were scanned.
An isolated cell suspension was prepared by passing through a stainless steel wire mesh. cell
Wash the cells in a 96-well flat bottom tissue culture plate,
4 × 10 in nutrient mediumFiveCultured in cells. Protein or peptide antigen at various concentrations
And the cells were incubated at 37 ° C. for 24 hours. Need to collect supernatant
Stored at -20 ° C. Used for all in vitro assaysDerpI is
, An allergen isolated from exhausted mite medium (SMM).Lymphokine assay
FDC-P1 cells respond to IL-3 and GM-CSF.
In response, it proliferated most, followed by IFN-γ or IL-4 (Ke
lso, A. (1990) supra). 2 × 10ThreeCells were incubated with 50 μl DME + 5% FCS for 9
Added to 50 μl culture supernatant in a 6-well flat bottom tissue culture plate. These cells
Were incubated for 40 hours at 37 ° C., then 1 μCiThreeWith H-thymidine
Pulse labeling was performed at 37 ° C. for another 4 to 6 hours. The cells are then filtered through a glass fiber filter
Collect on a mat and use a sample using liquid scintillation spectrometry.
Or Packard Matrix 9600 Direct Base to acquire it for later experiments.
At Counter (Connecticut, Meriden, Packard Instruments),ThreeH-
The uptake of thymidine was counted.
The CTLL-2 cell line grows maximally on IL-2, but in the presence of IL-4.
It grows only slightly (Kelso, A. (1990) J. Immunol. 145: 2167). Transfer the supernatant to a well
Cultivated with 5,000 CTLL-2 cells for 24 hours at 37 ° C.ThreeH
-Thymidine (ThreeH-Tdr) was pulse-labeled. Cells, glass fiber filter
The amount of radioactivity incorporated was measured on a mat and measured as above.Example 1
In Der p I recognized by the mouse
Immunodominance, minor and cryptic
Measurement of T cell epitope
H2bMouseDerpH2 is a high response animal to Ik, H2dAnd H2qMa
Usu was previously shown to be a poor responder (Hoyne, G. (1992) Ph.D. Thesis, T.
cell Recognition During Mucosal and Systemic Responses, Western Austral
ia university).DerpTo determine the location of T cell epitopes on I, B10 mice
In 100 μg of CFADerpImmunized subcutaneously with I, and 8 days later, around the aorta and rat
Radial lymph nodes, using a panel of overlapping peptides to release antigen-specific lymphokine (
IL-3 / GM-CSF). Maximum response in three separate experiments
The answer is peptide p110-131 (DerpFor amino acid residues 110 to 131) of I
On the other hand, the lowest response is also the peptide p78-100 (DerpAmino acid residue of I
78-100) and p21-49 (DerpFor amino acid residues 21 to 49) of I
I was seen. Other peptides were unable to stimulate the response. Of such an experiment
An example of one result is shown in Figure 1, where the following peptide was used: peptide p1
10-131 (□), peptide p78-100 (Δ) and peptide p21-49
(●).
Mice were tested for all peptides to test for cryptotic epitopes.
Immunize withDerpI and immunity
Responses to activated peptides were measured in the presence of splenic adherent cells. Peptide p12
0-143 (DerpI amino acid residues 120-143) and peptide p144-1
69 (DerpAmino acid residues 144 to 169) of I sensitize mice and
CompleteDerpFor I protein (Fig. 2a) and peptide (Fig. 2b) respectively
The response can be played back. The results in Figure 2 show the average IL of triplicate samples.
-3 / GM-CSF response is shown. The following peptides are shown in this figure:
: Peptide p120-143 (□), peptide p144-169 (Δ), pepti
Do p132-157 (o) and peptide p158-180 (x).Example 2
In mice by administration of fusion protein
Induction of oral tolerance
Some recombinant peptides,DerpIt was generated by restriction enzyme digestion of IcDNA.
These fragments were cloned into pGEX expression vector as described above and transformed into E. coli.
Was transformed into. The recombinant peptides selected for this study wereSchistosom a
japonicum Fused to the glutathione-S-transferase protein of Escherichia coli
Was expressed as. Soluble these fusion proteins and peptides from bacterial cell pellets
And was dialyzed into CAPS buffer (pH 9.6). These sets listed in FIG.
A replacement peptide was selected based on the known T cell epitope data above.
Was. Recombinant peptide is immunodominant within its sequence (paralleled squares), clip
Presence of tick epitope (dotted square) or absence of T cell epitope (black)
Selected square). Therefore, the control peptide GEXp1-23 (DerpOf I
Amino acid residues 1 to 23) and GEXp188-222 (DerpAmino acid residue 1 of I
97-222) did not contain any T cell epitopes. GEXp
57-130 (DerpAmino acid residues 57-130 of I) contain two epitopes.
However, on the other hand, GEXp101-154 (DerpI amino acid residues 101-154
) And GEXp98-140 (DerpAmino acid residues 57-130 of I are a single immunity
Containing a dominant epitope (amino acid residues 110 to 131), GEXp131-18
7 (DerpAmino acid residues 131-187 of I contain a cryptic epitope
I'm out.
A previously characterized regimen for induction of oral tolerance (Hoyne, G.F. (1993), Imm.
unology 78: 534-540), mice received 3 mg of fusion peptide for 3 consecutive days.
After 7 days of challenge, the mice were immunized subcutaneously with native protein in CFA. Then 7 days
Later, periaortic and inguinal lymph nodes stimulated with either protein or synthetic peptides
Was used to perform the in vitro lhokine assay. CAPS buffer for mice
Liquid or recombinant GEXDerpProviding an I (1-222) fusion protein in CFA
IL-2 or IL-3 / G in mice for subcutaneous injection of OVA
Experiments were performed to show that it had no effect on the M-CSF response.
To test whether orally administered peptides can induce tolerance, control mice were tested.
Mice were given CAPS buffer (FIG. 4, panels a and e), while test animals were given
3 mg of GEXDerpI (1-222) (Fig. 4 panels d and h) or fusion pepti
GEXp57-130 (FIG. 4, panels b and f) or GEXp101-154
(FIG. 4, panels c and g) were given for 3 consecutive days. One week later, natural in CFADerp
The response to immunization with I was measured. Mice given CAPS buffer
IsDerpA strong response to I protein, IL-3 in response to TCR triggering
/ GM-CSF (FIG. 4, panel a) and IL-2 (FIG. 4, panel e)
In vitro secretion was demonstrated. On the other hand, GEXDerpI (1-222) or two
GEXp57-130 or GEXp101-154
The resulting mice had a decreased IL-2 response (Figure 4, panels fh). IL-
The more pronounced inhibition of the 2 response was a consistent feature of all experiments of this nature.
When mice were given GEXp98-140, they were induced by this peptide.
A similar degree of tolerance was found.
How Oral Tolerance Development Affects Responses to T Cell Epitopes on Allergens
3 mg of GEXp101-154 or GEXp188 to see if it resonated
−
222 and GEXDerpII (1-129) (for control) was given to the mice for 3 consecutive days.
Was. One week later,DerpImmunize with I to produce a depleting lymph node cell response
Measured in vitro for proteins and peptides. Data are for the next antigen concentration
Shown are responses for individual mice in each group at:DerpI, 20 μg / ml
Peptide p110-131 and peptide p78-100, 10 μM. Shown in Figure 5
As described above, the mouse was treated with GEXp188-222 or GEX.DerpII (1-129)
Giving either a protein or immunogenic peptide p110-131 or p
In vitro challenge with 78-100 those lymph node cells
Does not affect its ability to secrete IL-3 / GM-CSF or IL-2. But
However, in contrast, lymphokine responses of mice fed GEXp101-154.
The answers were significantly reduced and therefore appeared to be tolerized to all proteins (Fig. 5).
. Tolerance induced by feeding one epitope is associated with other epitopes on the allergen.
Seems to affect T cells specific to the loop. One subsequent epitome
Group containing GEXp61-100 and fusion peptide GEXp1-23 (for control)
Experiments with gave the same results.
Determine whether peptides containing cryptic epitopes can influence the immune response
In order to determine the amount of crypts found in 3 mg of peptide 144-169,
Tea
GEXp131-187 (Fig. 6 (●)) containing the epitope for 3 consecutive days
On the other hand, the control mouse was given the CAPS buffer (FIG. 6 (□)). One week later
, Mice in CFADerpImmunized with I. Lymph node cells in vitro
soDerpCultured with I and the supernatant was assayed for IL-2. Each data in Figure 6
Points represent mean response ± standard deviation of 5 animals per group. Cryptic peptide
The response of the mice given a difference was statistically different (p <0.05 t-test). Figure
As shown in Fig. 6, lymph node cells from control mice were stimulated by IL-2 secretion.
In vitroDerpI showed a strong response to
A given mouse displayed a much weaker lymphokine response in vitro.
These results provided here indicate that either dominant or cryptotic T cell epitopes have been identified.
Feeding a fusion peptide containing a T cell response to subcutaneous immunization with whole antigen
It can be prevented. In the case of a fusion peptide containing a dominant epitope
, This inhibition is significant, with allergens or immunodominant peptides in vitro
Reduced IL-2 and GM-CSF release from challenged lymph node cell depletion
Measured by expulsion. This is a pattern containing residues that are not present on the fusion used for feeding.
Included a response to Petit. For example, feeding the fusion peptide GEXp101-154
What to do isDerpI immunization of allergens and total
Ability to induce T cells that react with adult peptides p110-131 and p78-100
Stopped the power. Therefore, this effect may be mediated by soluble factors. Or,
This prevention isDerpIt is specific because it cannot be induced by the II fusion protein. Similar
Miller, A. et al. (1991) J. Exp. Med., 174: 791; Whitacre, C.C. et al. (1990).
J. Immunol. 147: 2155; and Miller, A. et al. (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 89: 421.
And oral tolerance to MBP is mediated by TGF-β1
Found that it could be shown to suppress bystander responses in an in vitro model.
Was.
Feeding two fusion proteins that do not contain T-cell epitopes enhances the immune response.
Didn't stop. However, the clip found in peptide p144-169
Feeding a fusion peptide GEXp131-187 containing a tick epitope
Blocked significantly. The degree of inhibition is significant for fusions containing dominant epitopes.
Not bad, probably increased by extending feeding regimen or increasing dose
Could be done. Feeding these fusion peptides also resulted in MLN
After sensitizing T cells, they fed the peptide GEXp131-187Derp
I or a synthetic peptide containing the cryptic peptide p144-169
-It was also found to release GM-CSF when stimulated in vitro.
. Presence of these sensitized cells in oral tolerance
Have recently been described for OVA (Hoyne, G.F. et al. (1993), Immunology 78: 534.
-540).Example 3
Recognized by allergic individuals
Immunodominance in Derpl, minor and
Determination of cryptotic T cell epitopes
Recognized by allergic individualsDerpT cell epitope in the I protein sequence
In order to determine the
× 106/ Ml, 20 μg / ml purified naturalDerpCulture in the presence of I.
The T cell line can be established by Moistening CO2In the incubator
After culturing at 37 ° C for 7 days, the viable cells were treated with lymphocyte separation medium (LSM).
, Organon Technica, Durham, North Carolina)
Isolated and further for 2-3 weeks in complete medium containing recombinant IL-2 and recombinant IL-4
Can be cultured. T cells are "resting" and no longer respond to growth factors
2 × 10 if not sexFour5 × 10 5 T cells in 200 μl complete medium.Four
With gamma-irradiated (3500 rad) peripheral leukocytes (antigen presenting cells) of
By culturing in the presence of peptides derived from different concentrations of the complete protein.
Two proliferation assays can be performed. These cultures were then cultured on day three.
Pulse labeled with lithiated thymidine (1 μCi / well) and on day 4, glass fiber
Wei
Can be collected on the filter. Less tritium uptake than medium controls
A peptide that stimulates more than twice as much as a complete protein (ie, less peptide
With one minor or immunodominant epitope).
And includes T cell epitopes that are exposed to T cells. Twice as much as the medium control
Peptides that stimulate less tritium uptake do not contain T cell epitopes
Or a cryptic peptide (ie, usually given the complete protein,
, Epitopes that are not exposed to T cells). Crypti in these peptides
Peripheral leukocytes from the same individual to confirm the presence of
Separate culturing to establish peptide-reactive T cell lines in the presence of tide
Can establish a T cell line. The "resting" T cells are then added to each pellet.
Petit andDerpYou can challenge with I protein. At least one chestnut
Peptide containing a petit epitope is the existence of the peptide or complete protein.
To stimulate the proliferation of T cell lines at levels at least two times higher than the medium control under
Or T cells can be tolerized.Equivalent
One of ordinary skill in the art will recognize many equivalents of the specific embodiments of the invention described herein, or
This can be confirmed using routine experiments. Such equivalents are defined in the claims below.
Included in
It is what is done.
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(81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE,
DK,ES,FR,GB,GR,IE,IT,LU,M
C,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF,CG
,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE,SN,
TD,TG),AT,AU,BB,BG,BR,BY,
CA,CH,CN,CZ,DE,DK,ES,FI,G
B,GE,HU,JP,KG,KP,KR,KZ,LK
,LU,LV,MD,MG,MN,MW,NL,NO,
NZ,PL,PT,RO,RU,SD,SE,SI,S
K,TJ,TT,UA,UZ,VN────────────────────────────────────────────────── ───
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, CI, CM, GA, GN, ML, MR, NE, SN,
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CA, CH, CN, CZ, DE, DK, ES, FI, G
B, GE, HU, JP, KG, KP, KR, KZ, LK
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