JPH0833398B2 - Method and kit for measuring human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator inhibitor complex - Google Patents

Method and kit for measuring human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator inhibitor complex

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JPH0833398B2
JPH0833398B2 JP63327998A JP32799888A JPH0833398B2 JP H0833398 B2 JPH0833398 B2 JP H0833398B2 JP 63327998 A JP63327998 A JP 63327998A JP 32799888 A JP32799888 A JP 32799888A JP H0833398 B2 JPH0833398 B2 JP H0833398B2
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plasminogen activator
antibody
human
fab
tissue plasminogen
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Teijin Ltd
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【発明の詳細な説明】 a.産業上の利用分野 本発明は、サンドイッチ法による免疫学的測定方法に
おいて、標識抗体として抗ヒト組織プラスミノーゲンア
クチベーター抗体あるいは抗ヒトプラスミノーゲンアク
チベーターインヒビター抗体のFab′フラグメントを用
いることを特徴とするヒト組織プラスミノーゲンアクチ
ベーター・ヒトプラスミノーゲンアクチベーターインヒ
ビター複合体を高感度に測定する方法及びその測定キッ
トに関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION a. Field of Industrial Application The present invention relates to an anti-human tissue plasminogen activator antibody or an anti-human plasminogen activator inhibitor antibody as a labeled antibody in an immunological assay method by the sandwich method. And a kit for measuring the human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator-inhibitor complex with high sensitivity, which comprises using the Fab 'fragment of

b.従来技術及び発明が解決しようとする課題 フィブリンを溶解する酵素であるプラスミンは、プラ
スミノーゲンが組織プラスミノーゲンアクチベーターに
より変換されて生成する。近年、この組織プラスミノー
ゲンアクチベーターに対するインヒビター(ヒトプラス
ミノーゲンアクチベーターインヒビター)が血管内皮細
胞,血小板,胎盤などに存在しており、速やかに組織プ
ラスミノーゲンアクチベーターと複合体を形成し組織プ
ラスミノーゲンアクチベーター活性を抑制することがわ
かった(M.Philips et al,Blochem Biophys Acta,802,9
9-110,1984,S.Thorsen,Biochem Biophys Acta,802,111-
118,1984,T.Wun et al,J.Biol Chem.262,3646-3653,198
7,M.A.Sanzo et al Biochem,26,7443-7449,1987,Y.Saka
taet al,J.Biol Chem.263,1960-1969,1988)。また血中
プラスミノーゲンアクチベーターインヒビター活性値と
疾患との関係が明らかになりつつあり(B.Wiman et al.
Scand.J.Clin Lad Invest45,43-43,1985,P.Vague et a
l,Metabolism35,250-253,1986,A.Hamsten,Lancet 8549,
3-8,1987)、プラスミノーゲンアクチベーターインヒビ
ターは血液凝固線溶系の開始機構の重要な制御因子であ
ることが示唆されている。従って、プラスミノーゲンア
クチベーターインヒビター,組織プラスミノーゲンアク
チベーターや組織プラスミノーゲンアクチベーター・プ
ラスミノーゲンアクチベーターインヒビター複合体の血
中濃度を知れば、線溶系の異常をモニターすることがで
きる可能性が大である。
b. Prior Art and Problems to be Solved by the Invention Plasmin, which is an enzyme that dissolves fibrin, is produced by converting plasminogen by a tissue plasminogen activator. In recent years, inhibitors of this tissue plasminogen activator (human plasminogen activator inhibitor) have been present in vascular endothelial cells, platelets, placenta, etc., and rapidly form a complex with tissue plasminogen activator It was found to suppress plasminogen activator activity (M.Philips et al, Blochem Biophys Acta, 802 , 9
9-110,1984, S.Thorsen, Biochem Biophys Acta, 802, 111-
118,1984, T.Wun et al, J. Biol Chem. 262 , 3646-3653,198
7, MASanzo et al Biochem, 26 , 7443-7449,1987, Y.Saka
taet al, J. Biol Chem. 263 , 1960-1969, 1988). Furthermore, the relationship between blood plasminogen activator inhibitor activity and disease is becoming clear (B. Wiman et al.
Scand.J.Clin Lad Invest 45 , 43-43,1985, P.Vague et a
l, Metabolism 35 , 250-253,1986, A. Hamsten, Lancet 8549,
3-8, 1987), plasminogen activator inhibitors have been suggested to be important regulators of the initiation mechanism of the blood coagulation / fibrinolysis system. Therefore, if the blood level of plasminogen activator inhibitor, tissue plasminogen activator or tissue plasminogen activator-plasminogen activator inhibitor complex is known, it is possible to monitor abnormalities of the fibrinolytic system. The nature is great.

現在、ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーターの測
定法としてはサンドイッチ エンザイムイムノアッセイ
による方法(特開昭59-174759号公報)や市販キット
(バイオプール社IMULYSE t-PA)などがあり、一方ヒト
プラスミノーゲンアクチベーターインヒビターを測定す
る方法としては放射性物質を用いる方法(R.R.Schlef e
t al,J.Lab Clin Med 106,408,1985)やモノクローナル
抗体を用いたサンドイッチ エンザイムイムノアッセイ
キット(バイオプール社IMULYSE PAI-I)などがあ
る。
Currently, as a method for measuring human tissue plasminogen activator, there are a sandwich enzyme immunoassay method (Japanese Patent Laid-Open No. 59-174759), a commercial kit (Biopool IMULYSE t-PA), and the like, while human plasminogen is used. As a method for measuring activator inhibitors, a method using radioactive substances (RRSchlefe
al., J. Lab Clin Med 106 , 408, 1985) and a sandwich enzyme immunoassay kit using a monoclonal antibody (Biopool IMULYSE PAI-I).

しかしながら、ヒト組織プラスミノーゲンアクチベー
ター・ヒトプラスミノーゲンアクチベーターインヒビタ
ー複合体は血漿中に微量存在すると言われながら、従来
ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーター・ヒトプラス
ミノーゲンアクチベーターインヒビター複合体を測定し
た例は見あたらない。
However, while the human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator inhibitor complex is said to be present in a trace amount in plasma, the conventional human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator inhibitor complex was measured. I can't find any examples.

本発明者らは、この点に鑑み鋭意研究した結果、標識
抗体として該抗体に標識物質を標識したものを用いた場
合には、非特異的吸着が大きいために検出感度が不十分
で正確な測定は困難であった。そこで更に研究を重ねた
結果、標識抗体として該抗体のFab′フラグメントを用
いることにより、高感度にヒト組織プラスミノーゲンア
クチベーター・ヒトプラスミノーゲンアクチベーターイ
ンヒビター複合体のみだけを、正確に測定できることを
見い出し本発明に到達したものである。
The present inventors have conducted extensive studies in view of this point, and as a result of using a labeled antibody labeled with a labeling substance as the labeled antibody, detection sensitivity is insufficient and accurate because of large non-specific adsorption. The measurement was difficult. Therefore, as a result of further studies, it was possible to accurately measure only the human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator inhibitor complex with high sensitivity by using the Fab ′ fragment of the antibody as the labeled antibody. They have found the present invention and reached the present invention.

c.課題を解決するための手段 すなわち本発明は、サンドイッチ法による免疫学的測
定法において、不溶性担体に固定された抗体と標識抗体
のいずれか一方が抗ヒト組織プラスミノーゲンアクチベ
ーター抗体で他方が抗ヒトプラスミノーゲンアクチベー
ターインヒビター抗体であり、かつ該標識抗体として該
抗体のFab′フラグメントを用いることを特徴とするヒ
ト組織プラスミノーゲンアクチベーター・ヒトプラスミ
ノーゲンアクチベーターインヒビター複合体の測定方法
である。
c. Means for solving the problem That is, the present invention, in the immunoassay by the sandwich method, one of the antibody immobilized on an insoluble carrier and the labeled antibody is an anti-human tissue plasminogen activator antibody and the other Is an anti-human plasminogen activator inhibitor antibody, and the Fab ′ fragment of the antibody is used as the labeled antibody, and the measurement of human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator inhibitor complex is characterized. Is the way.

本発明で使用される抗ヒト組織プラスミノーゲンアク
チベーター抗体および抗ヒトプラスミノーゲンアクチベ
ーターインヒビター抗体としては、ポリクローナル抗体
またはモルクローナル抗体あるいはこれらのフラグメン
トが挙げられる。かかる抗体を得るための抗原としての
ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーターあるいはヒト
プラスミノーゲンアクチベーターインヒビターは原則的
には天然の材料から抽出した天然型のものと遺伝子組換
え技術によるリコンビナント型のものが用いられるが、
ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーターまたはヒトプ
ラスミノーゲンアクチベーターインヒビターの天然型と
同等の免疫学的性質を持つ物であれば、遺伝子工学的手
法によってえられるものでもよい。天然型のヒト組織プ
ラスミノーゲンアクチベーターまたはヒトプラスミノー
ゲンアクチベーターを得る材料としては細胞培養液が好
んで用いられる。分離,精製は、通常用いられる蛋白分
離技術、例えば塩析,抽出,遠心分離,限外過,各種
のクロマトグラフィーなどを組み合わせて行うことがで
きる。このようにして得られたヒト組織プラスミノーゲ
ンアクチベーターまたはヒトプラスミノーゲンアクチベ
ーターインヒビターを抗原としてポリクローナル抗体あ
るいはモノクローナル抗体を作成することができる。
Examples of the anti-human tissue plasminogen activator antibody and anti-human plasminogen activator inhibitor antibody used in the present invention include a polyclonal antibody, a morclonal antibody, or a fragment thereof. Human tissue plasminogen activator or human plasminogen activator inhibitor as an antigen for obtaining such an antibody is basically a natural type extracted from a natural material and a recombinant type by gene recombination technology. Used,
Those obtained by genetic engineering techniques may be used as long as they have immunological properties equivalent to those of the natural form of human tissue plasminogen activator or human plasminogen activator inhibitor. A cell culture medium is preferably used as a material for obtaining a natural human tissue plasminogen activator or a human plasminogen activator. Separation and purification can be performed by a combination of commonly used protein separation techniques such as salting out, extraction, centrifugation, ultrafiltration and various chromatographies. A polyclonal antibody or a monoclonal antibody can be prepared using the thus obtained human tissue plasminogen activator or human plasminogen activator inhibitor as an antigen.

本発明で用いられる抗ヒト組織プラスミノーゲンアク
チベーター抗体あるいは抗ヒトプラスミノーゲンアクチ
ベーターインヒビター抗体のポリクローナル抗体は通常
行なわれている方法で得ることができる。例えば「日本
生化学会編、続生化学実験講座,5巻,1-10頁,東京化学
同人,1986年」に記載されているように、免疫動物、例
えばモルモット,ウサギ,ラット,マウス,ヤギなど抗
体産生能力のある動物を用い通常の方法で免疫した後、
採血し、抗血清を得る。抗血清より通常用いられる方
法、例えば、塩析,抽出,遠心分離,限外過,各種の
クロマトグラフィーなどを組み合わせて精製抗体を得る
ことができる。
The anti-human tissue plasminogen activator antibody or anti-human plasminogen activator inhibitor antibody polyclonal antibody used in the present invention can be obtained by a commonly used method. For example, as described in "Biochemical Society, edited by Bioscience Chemistry, Vol. 5, 1-10, Tokyo Kagaku Dojin, 1986", immunized animals such as guinea pig, rabbit, rat, mouse, goat, etc. After immunizing in a normal manner with an animal capable of producing antibodies,
Blood is collected to obtain antiserum. Purified antibodies can be obtained by combining methods commonly used for antisera, for example, salting out, extraction, centrifugation, ultrafiltration, various chromatographies and the like.

一方、モノクローナル抗体は、ケーラーとミルシュタ
インによる細胞融合法(G.Kohler and Mulstein,Nature
(London),256,495-497(1975)により作成されたハイ
ブリドーマを培養して分泌させ、その培養液から分離す
ることにより得ることができる。すなわち、ヒト組織プ
ラスミノーゲンアクチベーターまたはヒトプラスミノー
ゲンアクチベーターインヒビターでマウスを免疫した
後、このマウスの脾臓細胞とマウスミエローマ細胞と融
合させハイブリドーマを作成する。このようにして得た
ハイブリドーマは融合された種々のリンパ球に応じて種
々のモノクローナル抗体を産生するので、目的とするモ
ノクローナル固体を産生するハイブリドーマをクローニ
ングによってクローン化されたハイブリドーマとして単
離する。このクローン化されたハイブリドーマをイン・
ビトロまたはマウス腹腔内で培養してモノクローナル抗
体を分泌させる。この培養液から抗ヒト組織プラスミノ
ーゲンアクチベーター抗体または抗ヒトプラスミノーゲ
ナクチベーターインヒビター抗体を分離する。
On the other hand, the monoclonal antibody is a cell fusion method by G. Kohler and Mulstein, Nature.
(London), 256, 495-497 (1975), a hybridoma prepared by culturing and secreting the hybridoma, and separating from the culture solution. That is, after immunizing a mouse with a human tissue plasminogen activator or a human plasminogen activator inhibitor, a spleen cell of this mouse is fused with a mouse myeloma cell to prepare a hybridoma. The hybridoma thus obtained produces various monoclonal antibodies in response to various fused lymphocytes, so that the hybridoma producing the desired monoclonal solid is isolated as a cloned hybridoma by cloning. This cloned hybridoma
The monoclonal antibody is secreted by culturing in vitro or mouse peritoneal cavity. An anti-human tissue plasminogen activator antibody or an anti-human plasminogen activator inhibitor antibody is separated from this culture medium.

このような方法で得られるモノクローナル抗体として
具体的には、例えば抗ヒト組織プラスミノーゲンアクチ
ベーター・モノクローナル抗体は、特願昭63-81366号
(昭和63年4月4日出願:発明の名称「プラスミノーゲ
ンアクティベーターに対するモノクローナル抗体」)に
記載された方法で得られた、ヒト組織プラスミノーゲン
アクチベーターのH鎖あるいはヒト組織プラスミノーゲ
ンアクチベーター・プラスミノーゲンインヒビター複合
体を認識し、サブクラスIgG1で、組織プラスミノーゲン
アクチベーター中和活性を有しないJTA-1,JTA-2,JTA-4
あるいはヒト組織プラスミノーゲンアクチベーターのH
鎖を認識しないJTA-3が挙げられる。また抗ヒト・プラ
スミノーゲンアクチベーターインヒビター・モノクロー
ナル抗体は、特願昭63-81367号(昭和63年4月4日出
願:発明の名称「プラスミノーゲンアクティベーターイ
ンヒビターに対するモノクローナル抗体」)に記載され
た方法で得られた、プラスミノーゲンアクチベーターイ
ンヒビターとヒト組織プラスミノーゲンアクチベーター
・プラスミノーゲンインヒビター複合体を認識し、サブ
クラスがIgG1であって、かつプラスミノーゲンアクチベ
ーターインヒビター阻害活性の中和活性を有するJTI-3
又は有しないJTI-1,JTI-2,JTI-4が挙げられる。
Specifically, as a monoclonal antibody obtained by such a method, for example, an anti-human tissue plasminogen activator monoclonal antibody is disclosed in Japanese Patent Application No. 63-81366 (filed on Apr. 4, 1988: title of invention). A monoclonal antibody against plasminogen activator ”), which recognizes the H chain of human tissue plasminogen activator or the human tissue plasminogen activator-plasminogen inhibitor complex, and subclass IgG 1 , JTA-1, JTA-2, JTA-4, which has no tissue plasminogen activator neutralizing activity
Or H of human tissue plasminogen activator
An example is JTA-3, which does not recognize chains. The anti-human plasminogen activator inhibitor monoclonal antibody is described in Japanese Patent Application No. 63-81367 (filed on Apr. 4, 1988: "Monoclonal antibody against plasminogen activator inhibitor"). Recognizing the plasminogen activator inhibitor and human tissue plasminogen activator-plasminogen inhibitor complex obtained by the method, the subclass is IgG 1 , and the plasminogen activator inhibitor inhibitory activity is JTI-3 with Japanese activity
Or JTI-1, JTI-2, and JTI-4 which do not have are mentioned.

本発明の抗ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーター
抗体またはヒトプラスミノーゲンアクチベーターインヒ
ビター抗体のFab′フラグメントは、このようにして得
られたポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体を
公知の方法、例えば該抗体をペプシンで分解して得られ
るF(ab′)2フラグメントを還元処理することにより
得ることができる(A.Nisonoff et al.,Arch Biochem B
iophys,89,230(1960);P.Parham.J.Immunolo,131,2895
(1983)など)。
The Fab ′ fragment of the anti-human tissue plasminogen activator antibody or human plasminogen activator inhibitor antibody of the present invention can be prepared by a known method such as polyclonal antibody or monoclonal antibody thus obtained with pepsin. It can be obtained by reducing the F (ab ′) 2 fragment obtained by decomposition (A. Nisonoff et al., Arch Biochem B.
iophys, 89,230 (1960); P.Parham.J.Immunolo, 131,2895
(1983) etc.).

また、かかるFab′フラグメントと結合させる標識物
質としては、酵素,蛍光物質,発光物質または放射性物
質などがある。酵素には例えばリゾチームマレート・デ
ヒドロゲナーゼ,グルコース−6−フォスフェート・デ
ヒドロゲナーゼ,ペルオキシダーゼ,グルコース・オキ
シダーゼ,アルカリフォスファターゼ,ルシフェラー
ゼ,ベーターガラクトシダーゼなど;蛍光物質には例え
ばフルオレセイン,ローダミン,ウンブベリフェロン,
ランタニド・キレートなど;発光物質には例えばルミノ
ール,アクリニジウム・エステル,ルシフェリンなど;
また放射性物質には例えばヨウ素−125,ヨウ素−131,ト
リチウム,炭素−13などを例示することができる。これ
らのなかでも標識物質としては、酵素が好ましい。これ
ら標識物質とFab′フラグメントとの結合方法は、グル
タルアルデヒド法,過ヨーソ酸法,マレイミド法など通
常の方法に従うことが、マレイミド法が好ましく用いら
れる。
The labeling substance to be bound to the Fab ′ fragment may be an enzyme, a fluorescent substance, a luminescent substance or a radioactive substance. Examples of the enzyme include lysozyme malate dehydrogenase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, peroxidase, glucose oxidase, alkaline phosphatase, luciferase, beta-galactosidase, and the like;
Lanthanide chelates, etc .; luminescent materials such as luminol, acrinidinium ester, luciferin, etc .;
Examples of radioactive substances include iodine-125, iodine-131, tritium and carbon-13. Among these, enzymes are preferable as the labeling substance. As a method for binding these labeling substances to Fab ′ fragments, the usual methods such as the glutaraldehyde method, the periodoic acid method, and the maleimide method are used, and the maleimide method is preferably used.

酵素のマレイミド化は公知の方法(石川栄治編「酵素
免疫測定法」,医学書院),例えばサクシンイミジル
4−(N−マレイミドメチル)シクロヘキサン カーボ
ネート(SMCC),スルホサクシンイミジル 4−(N−
マレイミドメチル)シクロヘキサン カーボネート(ス
ルホSMCC),サクシンイミジル−メタ マレイミドベン
ゾエート(MBS),サクシンイミジル 6−マレイミド
ヘキサノエート(EMCS)などにより行うことができる。
A known method (maleimidization of an enzyme) (“Enzyme Immunoassay” edited by Eiji Ishikawa, Medical Institute), for example, succinimidyl
4- (N-maleimidomethyl) cyclohexane carbonate (SMCC), sulfosuccinimidyl 4- (N-
Maleimidomethyl) cyclohexane carbonate (sulfo SMCC), succinimidyl-metamaleimidobenzoate (MBS), succinimidyl 6-maleimidohexanoate (EMCS) and the like can be used.

Fab′フラグメントとマレイミド化標識物質との反応
は一般に前記記載の方法(石川栄治編「酵素免疫測定
法」,医学書院)例えば反応温度4〜30℃,Fab′フラグ
メントとマレイミド化標識物質のモル比は1:1,反応時間
20時間の条件に従うことができる。この場合には主とし
て、抗体のFab′フラグメントの硫黄原子を介して標識
物質がFab′フラグメント1分子当り1分子標識された
ものを得ることができる。
The reaction between the Fab ′ fragment and the maleimidated labeling substance is generally carried out by the method described above (“Enzyme Immunoassay” edited by Eiji Ishikawa, Medical Institute), for example, reaction temperature of 4 to 30 ° C., Fab ′ fragment and maleimidated labeling substance in molar ratio Is 1: 1, reaction time
Can comply with the requirement of 20 hours. In this case, it is possible to obtain a labeling substance in which one molecule is labeled per Fab ′ fragment molecule mainly through the sulfur atom of the Fab ′ fragment of the antibody.

本発明においては、抗体のFab′フラグメントの硫黄
原子を介して、Fab′フラグメント1分子当り、平均1.5
分子以上の標識物質で標識されたものを標識抗体として
用いるのが本発明の測定の高感度化を達成できるので好
ましい。1.5以下では酵素の結合量が少なく、活性が低
いため高感度化測定には向かず好ましくは1.8以上であ
る。上限は特に限定しないが5までが好ましい。かかる
多標識抗体は、前記反応により反応液から分離精製する
ことにより得られるが、収率よく多標識抗体を得るため
には反応温度25℃以上、Fab′フラグメントとマレイミ
ド化標識物質のモル比は1:4以上、反応時間は24時間以
上で行うことが好ましい。反応を行う際の緩衝液として
は反応を阻害しない限りどのような緩衝液でもよいが0.
01から0.5リン酸緩衝液pH5.5〜8.0が好ましく用いら
れ、Fab′フラグメントの安定化のため1から10mモル程
度のEDTAを含めば更によい。このようにして得られた多
標識抗体はゲルクロマトグラフィーにより分離精製する
ことができる。該ゲルクロマトグラフィーに用いられる
担体としてはウルトロゲルAcA44などがあげられるが、T
SKGel-3000SW(東ソー),DIOL-200(YMC)カラムなどを
用いたHPLCのほうが分離に優れているため好ましく用い
られる。
In the present invention, an average of 1.5 molecules per Fab ′ fragment molecule is obtained through the sulfur atom of the Fab ′ fragment of the antibody.
It is preferable to use, as the labeled antibody, one labeled with a labeling substance of a molecule or more, because the sensitivity of the measurement of the present invention can be increased. If it is 1.5 or less, the amount of enzyme bound is small and the activity is low, so that it is not suitable for highly sensitive measurement, and preferably 1.8 or more. The upper limit is not particularly limited, but is preferably up to 5. Such a multi-labeled antibody can be obtained by separating and purifying from the reaction solution by the above reaction, but in order to obtain the multi-labeled antibody with good yield, the reaction temperature is 25 ° C. or higher, and the Fab ′ fragment and the maleimidated labeling substance have a molar ratio of The reaction time is preferably 1: 4 or more and the reaction time is 24 hours or more. As the buffer solution for carrying out the reaction, any buffer solution may be used as long as it does not inhibit the reaction.
A 01 to 0.5 phosphate buffer pH 5.5 to 8.0 is preferably used, and it is even better to include about 1 to 10 mmol of EDTA for stabilizing the Fab ′ fragment. The multi-labeled antibody thus obtained can be separated and purified by gel chromatography. Examples of the carrier used in the gel chromatography include Ultrogel AcA44.
HPLC using a SKGel-3000SW (Tosoh), DIOL-200 (YMC) column or the like is preferable because it is superior in separation.

分離精製された該多標識抗体における標識物質の標識
数は、分子量の測定や吸光度,蛍光強度,酵素活性など
の測定などにより求めることができる。例えば、標識物
質がベルオキシダーゼの場合には、Fab′フラグメント
とペルオキシダーゼに由来する280nmの吸光度と、ベル
オキシダーゼに由来する430nmの吸光度を測定すること
により標識数を求めることができる。
The number of labels of the labeling substance in the separated and purified multi-labeled antibody can be determined by measuring the molecular weight, the absorbance, the fluorescence intensity, the enzyme activity and the like. For example, when the labeling substance is peroxidase, the number of labels can be determined by measuring the absorbance at 280 nm derived from the Fab ′ fragment and peroxidase and the absorbance at 430 nm derived from peroxidase.

かくして、本発明のヒト組織プラスミノーゲンアクチ
ベーター・ヒトプラスミノーゲンアクチベーターインヒ
ビター複合体を高感度に測定するための、標識物質で標
識された抗ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーターFa
b′フラグメントまたは抗ヒトプラスミノーゲンアクチ
ベーターインヒビターFab′フラグメントを得ることが
できる。
Thus, the anti-human tissue plasminogen activator Fa labeled with a labeling substance for highly sensitively measuring the human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator inhibitor complex of the present invention
b'fragments or anti-human plasminogen activator inhibitor Fab 'fragments can be obtained.

次に、このようにして得られる標識化Fab′フラグメ
ントを用いてヒトの体液に存在する組織プラスミノーゲ
ンアクチベーター・プラスミノーゲンアクチベーターイ
ンヒビター複合体を免疫反応を利用して測定することを
特徴とする本発明のヒト組織プラスミノーゲンアクチベ
ーター・ヒトプラスミノーゲンアクチベーターインヒビ
ター複合体の測定方法について説明する。
Next, the labeled Fab ′ fragment thus obtained is used to measure the tissue plasminogen activator-plasminogen activator inhibitor complex present in human body fluids by utilizing an immune reaction. The method for measuring the human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator inhibitor complex of the present invention will be described below.

本発明のヒト組織プラスミノーゲンアクチベーター・
ヒトプラスミノーゲンアクチベーターインヒビター複合
体の測定方法は免疫反応を利用した測定法であって、い
わゆるサンドイッチ法である。本発明のサンドイッチ法
とは通常行なわれている方法、すなわち、測定しようと
する抗原,不溶性担体に固定された第1抗体,標識物質
を標識した第2抗体を反応溶液中に共存させて、一定時
間インキュベーション後洗浄操作を行い発色反応させる
一段反応と、測定しようとする抗原と不溶性担体に固定
された第1抗体とを反応させ洗浄後、標識物質を標識し
た第2抗体を反応させ、洗浄後、発色反応させる2段反
応とがある。本発明では、1段反応又は2段反応のいづ
れでも抗原としてのヒト組織プラスミノーゲンアクチベ
ーター・ヒトプラスミノーゲンアクチベーター・インヒ
ビター複合体の測定は可能であるが、測定しようとする
検体中にヒト組織プラスミノーゲンアクチベーターが多
量に存在すると予想される場合には、2段反応が好まし
い。
Human tissue plasminogen activator of the present invention
The method for measuring the human plasminogen activator inhibitor complex is a so-called sandwich method, which is an assay method utilizing an immune reaction. The sandwich method of the present invention is a commonly used method, that is, the antigen to be measured, the first antibody immobilized on an insoluble carrier, and the second antibody labeled with a labeling substance are allowed to coexist in a reaction solution and are kept constant. After incubation for a period of time, a one-step reaction in which a washing reaction is performed to cause a color reaction and the antigen to be measured are reacted with the first antibody immobilized on the insoluble carrier, and after washing, the second antibody labeled with a labeling substance is reacted and then washed , There is a two-step reaction that causes a color reaction. In the present invention, it is possible to measure the human tissue plasminogen activator-human plasminogen activator-inhibitor complex as an antigen in either one-step reaction or two-step reaction. The two-step reaction is preferred if the abundance of human tissue plasminogen activator is expected.

本発明では、第1抗体と第2抗体のいずれか一方が抗
ヒト組織プラスミノーゲン抗体であり、他方が抗ヒトプ
ラスミノーゲンアクチベーターインヒビター抗体であ
り、かつ第2抗体として該抗体のFab′フラグメントを
用いる。例えば第1抗体に抗ヒトプラスミノーゲンアク
チベーターインヒビター抗体を用いた場合、第2抗体と
しては抗ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーター抗体
のFab′フラグメントを用いる。
In the present invention, one of the first antibody and the second antibody is an anti-human tissue plasminogen antibody, the other is an anti-human plasminogen activator inhibitor antibody, and the Fab ′ of the antibody is the second antibody. Use fragments. For example, when an anti-human plasminogen activator inhibitor antibody is used as the first antibody, a Fab ′ fragment of the anti-human tissue plasminogen activator antibody is used as the second antibody.

かかる第1抗体を固定する不溶性担体としては、天然
から得られる重合体とその誘導体、合成重合体とその誘
導体を挙げることができる。前者には、多糖類とその誘
導体、たとえばセルロース,セファデックスセルロー
ス,カルボキシメチルセルロース,ニトロセルロース,
酢酸セルロース,デキストランなど、あるいはガラス,
シリカゲルなどの無機重合体などがある。また後者には
ビニル系重合体、たとえばポリスチレン,ポリエチレ
ン,ポリプロピレン,ABS,ポリフッ化ビニル,ポリアミ
ンメチルビニルエーテル−マレイン酸共重合体、エチレ
ン−マレイン酸共重合体など縮合系重合体、たとえば6
−ナイロン,6,6−ナイロンなどのポリアミド,ポリエチ
レン,テレフタレートなどのポリエステル,アミノ酸重
合体などがある。また、その形状は、試験管,マイクロ
タイタープレート,ビーズあるいはメンブレンなどがあ
げられる。なかでも鏡面化された材質の不溶性担体を用
いると非特異的吸着が低くなり、測定感度が向上するの
で好ましい。かかる鏡面化された不溶性担体としては例
えばポリスチレンビーズ、その表面の中心線平均粗さ
(Ra)が1.5μm以下のものがあげられる。かくなる不
溶性担体に固定される第1抗体としては、抗体分子,抗
原結合能が失われないそのフラグメントたとえばF(a
b′)2,Fab,Facbなどあるいは抗原結合能が失われない
抗体分子またはそのフラグメントの誘導体である。これ
らの第1抗体を不溶性担体へ固定する方法は、物理的吸
着法たとえばポリスチレンの担体を該第1抗体の溶液に
浸漬する方法など;イオン結合法たとえばイオン交換樹
脂あるいはアミノ基,カルボン酸基,スルホン酸基,リ
ン酸基などのイオン化する官能基をもった担体を用いる
方法など;あるいは化学反応による共有結合法たとえば
カルボキシ・クロライド法,カルボジイミド法,無水マ
レイン酸誘導体法,イソシアナート誘導体法,臭化シア
ン活性化多糖法,ジアゾ法,活性エステル法,架橋試薬
による担体結合法(架橋試薬としてグルタールアルデヒ
ド,ヘキサメチレンイソシアナート,コハク酸イミド・
マレイミド化合物など)など;更にはヒト組織プラスミ
ノーゲンアクチベーターまたはヒトプラスミノーゲンア
クチベーターインヒビターに対しては結合能はないが第
1抗体に対し生物学的反応により結合しえる物質を介し
て結合する方法たとえばプロテインA結合担体を用いる
方法などである。
Examples of the insoluble carrier for immobilizing the first antibody include naturally occurring polymers and their derivatives, and synthetic polymers and their derivatives. The former include polysaccharides and their derivatives such as cellulose, sephadex cellulose, carboxymethyl cellulose, nitrocellulose,
Cellulose acetate, dextran, etc., or glass,
There are inorganic polymers such as silica gel. The latter includes vinyl polymers such as polystyrene, polyethylene, polypropylene, ABS, polyvinyl fluoride, polyamine methyl vinyl ether-maleic acid copolymer, ethylene-maleic acid copolymer, and other condensation polymers such as 6
-Nylon, polyamide such as 6,6-nylon, polyester such as polyethylene and terephthalate, and amino acid polymer. The shape may be a test tube, microtiter plate, beads or membrane. Above all, it is preferable to use an insoluble carrier made of a mirror-finished material because non-specific adsorption is reduced and the measurement sensitivity is improved. Examples of such mirror-finished insoluble carrier include polystyrene beads and those having a center line average roughness (Ra) of 1.5 μm or less on the surface thereof. As the first antibody immobilized on the insoluble carrier which becomes hard, an antibody molecule, a fragment thereof which does not lose the ability to bind to an antigen, such as F (a
b ′) 2 , Fab, Facb, etc., or a derivative of an antibody molecule or a fragment thereof that does not lose its antigen-binding ability. Methods for immobilizing these first antibodies on insoluble carriers include physical adsorption methods such as immersing a polystyrene carrier in a solution of the first antibody; ion binding methods such as ion exchange resins or amino groups, carboxylic acid groups, A method using a carrier having an ionizable functional group such as a sulfonic acid group or a phosphoric acid group; or a covalent bond method by a chemical reaction, such as a carboxy chloride method, a carbodiimide method, a maleic anhydride derivative method, an isocyanate derivative method, an odor Cyanide activated polysaccharide method, diazo method, active ester method, carrier binding method by cross-linking reagent (glutaraldehyde, hexamethylene isocyanate, succinimide
Maleimide compounds, etc.) and the like; further, binding via a substance that has no binding ability to human tissue plasminogen activator or human plasminogen activator inhibitor, but can bind to the first antibody by a biological reaction There is a method of using a protein A binding carrier.

本発明の測定方法においては、免疫反応溶液に分子量
1.6万〜5.0万、好ましくは2.0〜4.6万及び等電点1.0〜
5.0、好ましくは1.2〜4.8である蛋白質を存在せしめ、
この蛋白質の免疫反応溶液における最終濃度が0.002〜
0.9重量%となるように調整するのが、非特異的吸着が
抑制され、従ってバックグランドが著しく低くなり高感
度が得られやすいので好ましい。かかる物質としては、
例えばカゼイン,βカゼイン,αカゼイン,ペプシン,
オボグリコプロテイン,オロソムコイドなどが挙げられ
る。あるいはまた、かかる蛋白質はその混合物を使用す
ることもできる。このような混合物としては、例えば主
成分として前記蛋白質10〜60重量%、好ましくは20〜50
重量%、糖(例えば乳糖)30〜80重量%、好ましくは40
〜60重量%、その他脂肪(例えば0.5〜2重量%)、灰
分(例えば5〜12重量%)、水分(例えば2〜8重量
%)などを含むことができる。このような混合物として
典型的なのはスキムミルクである。スキムミルクは蛋白
質としてカゼインを含むものであるが、カゼインを単独
で使用した場合に比べて、スキムミルクは、免疫反応溶
液中における分散性がよく、蛋白質単位重量当りのNBS
(Non-specific binding)効果が高く、温度4℃におけ
る保存性がよい(沈澱が生じにくい)という特長を有す
る。なお、本発明に用いるスキムミルクとしては、脱脂
したミルクであれば何の由来の乳であってもよい。すな
わち、免疫反応溶液にスキムミルクを存在せしめ免疫反
応溶液におけるその最終濃度が0.002〜0.8重量%となる
ように調整するのも、同様に高感度が得られるので好ま
しい。0.002重量%より低濃度では十分な抑制効果が得
られず、また、スキムミルクの場合には0.8重量%、上
記蛋白の場合には0.9重量%より高濃度とすると、特異
的反応も抑制されるので好ましくない。
In the measuring method of the present invention, the molecular weight of the immune reaction solution is
16,000-50,000, preferably 2.0-46,000 and isoelectric point 1.0-
The presence of a protein of 5.0, preferably 1.2 to 4.8,
The final concentration of this protein in the immunoreaction solution is 0.002-
It is preferable to adjust to 0.9% by weight because non-specific adsorption is suppressed, the background is remarkably lowered, and high sensitivity is easily obtained. Such substances include
For example, casein, β-casein, α-casein, pepsin,
Examples include ovoglycoprotein and orosomucoid. Alternatively, such proteins can be used as a mixture. Such a mixture includes, for example, 10 to 60% by weight of the protein as a main component, preferably 20 to 50% by weight.
% By weight, sugar (eg lactose) 30-80% by weight, preferably 40
-60% by weight, other fats (e.g. 0.5-2% by weight), ash (e.g. 5-12% by weight), water (e.g. 2-8% by weight) and the like can be contained. A typical example of such a mixture is skim milk. Skim milk contains casein as a protein, but skim milk has better dispersibility in an immunoreaction solution than NSA per unit weight of protein as compared to the case of using casein alone.
(Non-specific binding) effect is high, and the storability at 4 ° C is good (precipitation does not easily occur). The skim milk used in the present invention may be milk of any origin as long as it is defatted milk. That is, it is also preferable to allow skim milk to be present in the immune reaction solution so that the final concentration in the immune reaction solution is 0.002 to 0.8% by weight, since high sensitivity can be obtained in the same manner. If the concentration is lower than 0.002% by weight, sufficient inhibitory effect is not obtained, and if the concentration is higher than 0.8% by weight for skim milk and 0.9% by weight for the above proteins, the specific reaction is also suppressed. Not preferable.

上記における測定系に用いられる溶媒としては、反応
に悪影響を与えない通常の各種のものいずれであっても
よい。たとえばリン酸緩衝液,トリス塩酸緩衝液,酢酸
緩衝液などのpHが6.0から8.0程度のものを用いるのが好
ましい。
The solvent used in the above measurement system may be any of various ordinary solvents that do not adversely affect the reaction. For example, it is preferable to use a phosphate buffer, Tris-HCl buffer, acetate buffer or the like having a pH of about 6.0 to 8.0.

測定に際しての免疫反応温度条件は、構成要素である
蛋白質の性質を変性させず、かつ免疫反応を著しく抑制
しないかぎり制限はないが、一般には、50℃以下、好ま
しくは約4〜45℃程度の温度条件下に約5分から20時間
程度を要して反応を行えばよい。
The temperature of the immune reaction at the time of measurement is not limited as long as it does not denature the properties of the protein as a constituent element and significantly suppresses the immune reaction, but it is generally 50 ° C or lower, preferably about 4 to 45 ° C. The reaction may be performed under temperature conditions for about 5 minutes to 20 hours.

また本発明測定法における検体としては、通常の臨床
サンプル、例えば血清あるいは血漿形態の血液,関節
液,リンパ液,胸腺水,腹水,羊水,細胞組織液,骨髄
液,尿などの体液のいずれであってもよい。
The sample used in the assay method of the present invention may be any of ordinary clinical samples such as blood in the form of serum or plasma, synovial fluid, lymph, thymus fluid, ascites fluid, amniotic fluid, cell tissue fluid, bone marrow fluid, and urine. Good.

d.発明の効果 かくして、本発明方法によれば、臨床サンプルなどの
微量のヒト組織プラスミノーゲンアクチベーター・ヒト
プラスミノーゲンアクチベーターインヒビター複合体を
含む試料を検体として、該検体中のヒト組織プラスミノ
ーゲンアクチベーター・ヒトプラスミノーゲンアクチベ
ーターインヒビター複合体を高感度,高精度に、しかも
簡便な操作で定量することができる。
d. Effect of the Invention Thus, according to the method of the present invention, a sample containing a trace amount of human tissue plasminogen activator-human plasminogen activator inhibitor complex such as a clinical sample is used as a sample, and the human tissue in the sample is used. The plasminogen activator / human plasminogen activator-inhibitor complex can be quantified with high sensitivity, high accuracy, and simple operation.

以下実施例により本発明を詳細に説明する。実施例
中、%表示は重量%を示す。
The present invention is described in detail below with reference to examples. In the examples, "%" indicates "% by weight".

実施例1 [酵素標識抗体の作成] ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーターに対するモ
ノクローナル抗体(JTA-1)のFab′フラグメントをニソ
ノフの方法に準じて調整し、常法によりペルオキシダー
ゼと結合してペルオキシダーゼ標識Fab′を得た(日本
生化学会編、続生化学実験講座,5巻,109-112頁,東京化
学同人,1986年)。すなわち、該モノクローナル抗体の
1.0mg/ml溶液(0.01M PBSpH7.2)の2mlに40μgのペプ
シンを加え、1Mクエン酸緩衝液(pH3.5)でpHを3.7に調
整したあと37℃で1時間消化分解した。反応液に1N-NaO
Hを滴下し、pH8として反応を停止した。TSK Gel G-3000
SWカラム−HPLCで溶出液に5mM EDTA-0.1Mリン酸緩衝液
(pH6.0)を用いて、この反応液から分子量10万のF(a
b′)2フラグメントを分離した。
Example 1 [Preparation of Enzyme-Labeled Antibody] A Fab ′ fragment of a monoclonal antibody (JTA-1) against human tissue plasminogen activator was prepared according to the method of Nisonov, and was linked to peroxidase by a conventional method to form Fab labeled with peroxidase. ′ (Edited by The Biochemical Society of Japan, sequel to biochemistry experimental course, Vol. 5, pages 109-112, Tokyo Kagaku Dojin, 1986). That is, the monoclonal antibody
40 μg of pepsin was added to 2 ml of a 1.0 mg / ml solution (0.01 M PBS pH7.2), the pH was adjusted to 3.7 with 1 M citrate buffer (pH 3.5), and then digested and decomposed at 37 ° C. for 1 hour. 1N-NaO in the reaction solution
H was added dropwise to adjust the pH to 8 to stop the reaction. TSK Gel G-3000
In SW column-HPLC, 5 mM EDTA-0.1 M phosphate buffer (pH 6.0) was used as the eluent, and F (a
b ') 2 fragments were separated.

これを限外過器により濃縮した。これに0.1M 2−メ
ルカプトエチルアミン200μlを加え、37℃で2時間還
元処理した。この反応液を限外過器によって、濃縮
後、F(ab′)2と同様にHPLCによって分子量5万のFa
b′を分離し1.07mg/mlのFab′フラグメントの液を1.0ml
得た。
This was concentrated with an ultrafilter. To this, 200 μl of 0.1 M 2-mercaptoethylamine was added, and reduction treatment was carried out at 37 ° C. for 2 hours. This reaction solution was concentrated by an ultrafiltration device, and then concentrated by HPLC in the same manner as F (ab ') 2 by HPLC to obtain Fa with a molecular weight of 50,000.
b'is separated and 1.07 mg / ml of Fab 'fragment is added to 1.0 ml.
Obtained.

一方、西洋ワサビペルオキシダーゼ(東洋紡)の6.0m
gを0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.0)0.9mlに溶解
し、N−サクシンイミジル−3−マレイミドメチル−シ
クロヘキサンカルボネートのジメチルホルムアミド溶液
を60μl(2.9mg/80μl)滴下し、30℃で1時間反応し
た。この反応液をセファデックスG-25カラムに添加、0.
1Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH6.0)を流してマレイミ
ド化パーオキシダーゼを分離した。かくして得られた5.
28mg/mlのマレイミド−パーオキシダーゼ200μlを上記
のFab′フラグメント液に滴下、4℃で20時間反応し
た。この反応液を限外過器で濃縮した後、TSK Gel G-
3000SWカラム−HPLCでPBS(pH7.2)溶出液として分離
し、分子量9万のパーオキシダーゼ標識したFab′を得
た。この標識Fab′を以下の検量線作成に用いた。
On the other hand, horseradish peroxidase (Toyobo) 6.0m
g was dissolved in 0.9 ml of 0.1 M sodium phosphate buffer (pH 7.0), and 60 μl (2.9 mg / 80 μl) of N-succinimidyl-3-maleimidomethyl-cyclohexanecarbonate in dimethylformamide was added dropwise at 30 ° C. Reacted for 1 hour. Add the reaction mixture to a Sephadex G-25 column, 0.
The maleimidated peroxidase was separated by running 1M sodium phosphate buffer (pH 6.0). Thus obtained 5.
200 μl of 28 mg / ml maleimide-peroxidase was added dropwise to the above Fab ′ fragment solution and reacted at 4 ° C. for 20 hours. After concentrating the reaction solution with an ultrafilter, TSK Gel G-
It was separated as a PBS (pH 7.2) eluate by a 3000SW column-HPLC to obtain a peroxidase-labeled Fab 'having a molecular weight of 90,000. This labeled Fab 'was used for preparing the following calibration curve.

[固体抗体の作成] 抗ヒトプラスミノーゲンアクチベーターインヒビター
のモノクローナル抗体(JTI-4)を、濃度20μg/mlの0.1
Mリン酸/クエン酸緩衝液(pH3.0)の溶液としてマイク
ロプレートにウエル当り200μlずつ分配し、4℃で一
昼夜放置して固定化した。これをPBSで洗浄後1.0%BSA-
PBSをウエル当り250μlずつ加えて4℃で一昼夜放置し
アフターコートを行い、次いでPBSにて洗浄して抗体固
定マイクロプレートを調整した。
[Preparation of solid antibody] Anti-human plasminogen activator inhibitor monoclonal antibody (JTI-4) was added at a concentration of 20 μg / ml to 0.1%.
As a solution of M phosphate / citrate buffer (pH 3.0), 200 μl was distributed per well in a microplate, and left at 4 ° C. overnight to be immobilized. After washing this with PBS, 1.0% BSA-
PBS was added in an amount of 250 μl per well, left to stand at 4 ° C. for one day for aftercoating, and then washed with PBS to prepare an antibody-immobilized microplate.

[検量線の作成] 次に、ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーター・ヒ
トプラスミノーゲンアクチベーターインヒビター複合体
の0,0.3,0.6,1.25,2.5,5,10ng/mlの希釈系列を最終濃度
0.25%スキムミルク−10mMリン酸−0.5M,NaCl(pH7.2)
にて作成し、該抗体固定プレートにウエル当り200μl
ずつ加えて室温で2時間反応させた。10mMリン酸−0.5M
NaCl-0.05%ツイーン20(洗浄バッファー)で洗浄後、
ペルオキシダーゼ標識Fab′成分の濃度が0.3μg/mlであ
るように洗浄バッファーで希釈,調整した該標識Fab′
液をウエル当り200μlずつ配分して室温で1時間反応
させた。洗浄バッファーにて洗浄後、ペルオキシダーゼ
用基質液(2.5mM H2O2‐0.025% 3,3′,5,5′−テトラ
メチルベンチジンを含む)を200μl加え室温で1時間
発色させ、8N−硫酸溶液25μlを加えて停止反応を行
い、450nmでプレートリーダーにて吸光度を測定した。
[Preparation of calibration curve] Next, a dilution series of human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator inhibitor complex at 0, 0.3, 0.6, 1.25, 2.5, 5, 10 ng / ml was used as the final concentration.
0.25% skim milk-10mM phosphoric acid-0.5M, NaCl (pH7.2)
Prepared in the above, and 200 μl per well on the antibody-immobilized plate
Each of them was added and reacted at room temperature for 2 hours. 10 mM phosphoric acid-0.5 M
After washing with NaCl-0.05% Tween 20 (wash buffer),
The labeled Fab ′ diluted and washed with a washing buffer so that the concentration of the peroxidase-labeled Fab ′ component was 0.3 μg / ml.
The solution was distributed at 200 μl per well and reacted at room temperature for 1 hour. After washing with a washing buffer, 200 μl of a substrate solution for peroxidase (containing 2.5 mM H 2 O 2 -0.025% 3,3 ′, 5,5′-tetramethylbenzidine) was added, and color was developed for 1 hour at room temperature. 25 μl of a sulfuric acid solution was added to stop the reaction, and the absorbance was measured with a plate reader at 450 nm.

その結果得られた検量線を第1図に(イ)として示し
た。この図から、測定下限は0.3ng/mlであった。
The calibration curve obtained as a result is shown as (a) in FIG. From this figure, the lower limit of measurement was 0.3 ng / ml.

検体液としてヒト正常人血漿を測定した結果を第1表
にまとめた。
Table 1 shows the results of measurement of normal human plasma as a sample solution.

比較例 実施例1においてFab′の代わりに抗ヒト組織プラス
ミノーゲンアクチベーター・モノクローナル抗体(JTA-
1)を用いて、Nakaneの方法(P.K.Nakane et al,J.Hist
ochem.Cytochem.,22,1084,1974)により酵素標識抗体を
作成した。実施例1と同様の条件で(酵素標識抗体は本
標識抗体をIgG濃度として0.6μg/mlに調整し、実施例1
と同じ濃度にした)検量線を作成した。
Comparative Example In Example 1, instead of Fab ′, an anti-human tissue plasminogen activator monoclonal antibody (JTA-
1) using the method of Nakane (PKNakane et al, J. Hist
ochem.Cytochem., 22 , 1084, 1974) to prepare an enzyme-labeled antibody. Under the same conditions as in Example 1 (the enzyme-labeled antibody was adjusted to 0.6 μg / ml with this labeled antibody as the IgG concentration,
A calibration curve was prepared (at the same concentration as the above).

その結果得られた検量線を第1図の(ロ)に示した。 The calibration curve obtained as a result is shown in (b) of FIG.

第1図から標識抗体としてFab′フラグメント−HRPを
用いた場合((イ)−実施例1)の方が、全抗体−HRP
を用いた場合((ロ)−比較例)よりも、非特異的吸着
が低く、いことが明らかである。
From FIG. 1, when Fab ′ fragment-HRP was used as the labeled antibody ((a) -Example 1), whole antibody-HRP was found.
It is clear that non-specific adsorption is lower than that in the case of using ((b) -Comparative Example).

実施例2 [Fab′フラグメント/ペルオキシダーゼ 1:2結合酵素
標識抗体の作成] 実施例1で得られたFab′フラグメント(0.1mg)とマ
レイミド化ペルオキシダーゼ(3.2mg)を25℃で24時間
反応させてTSK Gel 3000SWによるHPLC(溶離液0.01M PB
S)にて分離精製したところ分子量約13万の標識抗体が
0.35mg得られた。得られた標識抗体の280nmと403nmの吸
光度よりFab′フラグメントとペルオキシダーゼの結合
モル比は1:2であった。以下Fab′‐(HRP)2と略記する。
Example 2 [Preparation of Fab ′ fragment / peroxidase 1: 2 binding enzyme-labeled antibody] The Fab ′ fragment (0.1 mg) obtained in Example 1 was reacted with maleimidated peroxidase (3.2 mg) at 25 ° C. for 24 hours. HPLC with TSK Gel 3000SW (eluent 0.01M PB
After separation and purification with S), a labeled antibody with a molecular weight of about 130,000
0.35 mg was obtained. Based on the absorbance at 280 nm and 403 nm of the obtained labeled antibody, the molar ratio of Fab ′ fragment-peroxidase binding was 1: 2. Hereinafter, it is abbreviated as Fab ′-(HRP) 2 .

実施例3 [固定抗体の作成] ポリスチレンビーズ(積水化学6.35mmφ#80)をマウ
ス抗ヒトプラスミノーゲンアクチベーターインヒビター
抗体(JTI-4)の濃度20μg/mlの0.1Mリン酸緩衝液(pH
9.0)の溶液にいれ、4℃で20時間静置した。ビーズを
0.01M PBSで3回洗浄したあと1%BSA-PBS溶液に室温で
2時間静置後、再度0.01M PBSで3回洗浄し固定抗体を
得た。
Example 3 [Preparation of Immobilized Antibody] Polystyrene beads (Sekisui Chemical 6.35 mmφ # 80) were used as a 0.1 M phosphate buffer solution (pH: 20 μg / ml) of mouse anti-human plasminogen activator inhibitor antibody (JTI-4).
It was put in the solution of 9.0) and allowed to stand at 4 ° C. for 20 hours. Beads
After washing three times with 0.01 M PBS, the mixture was left standing in a 1% BSA-PBS solution at room temperature for 2 hours, and then washed again with 0.01 M PBS three times to obtain a fixed antibody.

[検量線の作成] ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーター・プラスミ
ノーゲンアクチベーターインヒビター複合体を最終濃度
0.25%スキムミルクを含む0.01Mリン酸−0.5M NaCl緩衝
液(pH7.2)で希釈して25.5,6.25,3.125,Ong/mlのスタ
ンダード溶液を作成した。スタンダード溶液0.3mlと固
定ビーズを小試験管にいれ37℃で2時間インキュベーシ
ョンした。次に0.01M PBS-0.05%ツイーン20(pH7.2)
で3回洗浄した。実施例1(Fab′‐HRP)と実施例2
(Fab′‐(HRP)2)で得られたベルオキシダーゼ標識抗
ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーター抗体Fab′フ
ラグメントをFab′フラグメント濃度として0.6μg/mlで
あるように0.01M PBS-0.05%ツイーン20(pH7.2)で調
整し0.3ml加え37℃で30分間インキュベーションした。
0.01M PBS-0.05%ツイーン20で3回洗浄し0.3mlのペル
オキシダーゼ用基質液(2.5mM H2O2‐0.025% 3,3′,5,
5′テトラメチルベンチジンを含む)を加え37℃で30分
間発色させ、1N−硫酸で発色を停止し、450nmでの吸光
度を測定した。
[Creation of calibration curve] Human tissue plasminogen activator-plasminogen activator-inhibitor complex final concentration
A standard solution of 25.5, 6.25, 3.125, Ong / ml was prepared by diluting with 0.01M phosphate-0.5M NaCl buffer (pH 7.2) containing 0.25% skim milk. 0.3 ml of the standard solution and fixed beads were placed in a small test tube and incubated at 37 ° C for 2 hours. Next, 0.01M PBS-0.05% Tween 20 (pH7.2)
And washed three times. Example 1 (Fab'-HRP) and Example 2
The peroxidase-labeled anti-human tissue plasminogen activator antibody Fab 'fragment obtained with (Fab'-(HRP) 2 ) was adjusted to 0.01 μM PBS-0.05% Tween 20 at a Fab 'fragment concentration of 0.6 μg / ml. (PH7.2), 0.3 ml was added, and the mixture was incubated at 37 ° C for 30 minutes.
Wash three times with 0.01M PBS-0.05% Tween 20, and 0.3 ml of substrate solution for peroxidase (2.5 mM H 2 O 2 -0.025% 3,3 ′, 5,
5'tetramethylbenzidine was added), color was developed at 37 ° C for 30 minutes, color development was stopped with 1N-sulfuric acid, and the absorbance at 450 nm was measured.

その結果得られた検量線を第2図に示す。 The calibration curve obtained as a result is shown in FIG.

第2図から実施例2で得られたペルオキシダーゼ標識
抗体(Fab′‐(HRP)2)は実施例1で得られたペルオキ
シダーゼ標識抗体(Fab′‐HRP)よりも約4倍の活性を
示したことが判る。
As shown in FIG. 2, the peroxidase-labeled antibody (Fab ′-(HRP) 2 ) obtained in Example 2 exhibited about 4 times the activity of the peroxidase-labeled antibody (Fab′-HRP) obtained in Example 1. I understand.

実施例4 EIA用ポリスチレンビーズとして表面粗さの異なるビ
ーズを用い、実施例3と同様に抗体を固定し、スタンダ
ード(Std)濃度0,25ng/ml,標識抗体はFab′‐(HRP)2
用いる以外は実施例3と同様にして測定を行った。
Example 4 Beads having different surface roughness were used as polystyrene beads for EIA, the antibody was immobilized in the same manner as in Example 3, the standard (Std) concentration was 0,25 ng / ml, and the labeled antibody was Fab ′-(HRP) 2 . The measurement was performed in the same manner as in Example 3 except that it was used.

を第3図に示す。 Is shown in FIG.

第3図より表面粗さ計サーフコム(東京精密(株)
製)で測定した場合、中心線平均粗さ(Ra)が1.5μm
以下のポリスチレンビーズの場合に特異的吸着が低く、
本発明の測定に有効であることがわかる。
From Figure 3 Surface roughness meter Surfcom (Tokyo Seimitsu Co., Ltd.)
Center line average roughness (Ra) is 1.5 μm
Low specific adsorption for the following polystyrene beads,
It turns out that it is effective for the measurement of the present invention.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

第1図は標識抗体としてFab′‐HRP(実施例1)と全抗
体−HRP(比較例)を用いた場合の検量線を示す。 図中(イ)は実施例1,(ロ)は比較例の検量線である。 第2図は、標識抗体とてFab′‐(HRP)2(実施例2)とF
ab′‐HRP(実施例1)を用いた場合の検量線を示す。 第3図は、不溶性担体の平均中心線粗さの程度と、非特
異的吸着との関係を示す。
FIG. 1 shows a calibration curve when Fab′-HRP (Example 1) and whole antibody-HRP (Comparative Example) were used as labeled antibodies. In the figure, (a) is the calibration curve of Example 1 and (b) is the calibration curve of Comparative Example. FIG. 2 shows Fab ′-(HRP) 2 (Example 2) and F as labeled antibodies.
The calibration curve when ab'-HRP (Example 1) is used is shown. FIG. 3 shows the relationship between the average centerline roughness of the insoluble carrier and nonspecific adsorption.

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】サンドイッチ法による免疫学的測定法にお
いて、不溶性担体に固定された抗体と標識抗体のいずれ
か一方が抗ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーター抗
体で他方が抗ヒトプラスミノーゲンアクチベーターイン
ヒビター抗体であり、かつ該標識抗体が抗体のFab′フ
ラグメントの硫黄原子を介してFab′フラグメント1分
子当り、平均1.5分子以上の酵素で標識された酵素標識
抗体であり、さらに免疫反応溶液に分子量1.6万〜5.0万
及び等電点1.0〜5.0である蛋白質を存在せしめ、免疫反
応溶液における該蛋白質の最終濃度が0.002〜0.9重量%
となるように調整することを特徴とするヒト組織プラス
ミノーゲンアクチベーター・ヒトプラスミノーゲンアク
チベーターインヒビター複合体の測定方法。
1. In an immunoassay by the sandwich method, one of an antibody immobilized on an insoluble carrier and a labeled antibody is an anti-human tissue plasminogen activator antibody and the other is an anti-human plasminogen activator inhibitor. The antibody is an enzyme-labeled antibody that is labeled with an average of 1.5 molecules or more of enzyme per molecule of Fab 'fragment through the sulfur atom of Fab' fragment of the antibody, and further has a molecular weight of 1.6 in the immunoreaction solution. Protein having an isoelectric point of 1.0 to 5.0 and a final concentration of 0.002 to 0.9% by weight of the protein in the immune reaction solution.
A method for measuring a human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator inhibitor complex, which is characterized by adjusting so that
【請求項2】免疫反応溶液にスキムミルクを存在せし
め、免疫反応溶液における該スキムミルクの最終濃度が
0.002〜0.8重量%となるように調整することを特徴とす
る請求項1記載のヒト組織プラスミノーゲンアクチベー
ター・ヒトプラスミノーゲンアクチベーターインヒビタ
ー複合体の測定方法。
2. Skim milk is allowed to exist in the immune reaction solution, and the final concentration of the skim milk in the immune reaction solution is
The method for measuring a human tissue plasminogen activator / human plasminogen activator inhibitor complex according to claim 1, wherein the amount is adjusted to 0.002 to 0.8% by weight.
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