JPH07265065A - Transformant of copolymer by synthetic gene and production of copolymer - Google Patents

Transformant of copolymer by synthetic gene and production of copolymer

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JPH07265065A
JPH07265065A JP6084084A JP8408494A JPH07265065A JP H07265065 A JPH07265065 A JP H07265065A JP 6084084 A JP6084084 A JP 6084084A JP 8408494 A JP8408494 A JP 8408494A JP H07265065 A JPH07265065 A JP H07265065A
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JP
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copolymer
transformant
oil
strain
acid
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JP6084084A
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Hisafumi Shiomi
尚史 塩見
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Kanegafuchi Chemical Industry Co Ltd
Original Assignee
Kanegafuchi Chemical Industry Co Ltd
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Publication date
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Abstract

PURPOSE:To produce a copolymer comprising a 3-hydroxybutyrate and a 3- hydroxyhexanoate from inexpensive fats and oils or a fatty acid as a raw material in high yield. CONSTITUTION:This transformant is obtained by transfecting or transducing a vector plasmid containing a synthetic gene for a copolymer comprising a 3-hydroxybutyrate and a 3-hydroxyhexanoate into a host microbial cell, especially the microbial cell of the genus Aeromonas. Furthermore, this transformant is prepared by transfecting or transducing the vector plasmid in which a beta- ketothiolase gene or an acetoacetyl-CoA reductase gene or both are integrated into the host microbial cell. This method for producing the copolymer is to use the resultant transformant.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は共重合体ポリエステルお
よびこれを醗酵合成する微生物に関し、自然環境(土
中、河川、海中)の下で微生物の作用を受けて分解する
プラスチック様高分子の製造方法に関するものである。
さらに詳しくは、共重合体ポリエステルを醗酵合成する
能力の改善された形質転換体、さらには、その形質転換
体を利用した共重合体ポリエステルの製造方法に関す
る。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a copolymer polyester and a microorganism which fermentatively synthesizes the same, and to produce a plastic-like polymer which is decomposed by the action of a microorganism in a natural environment (soil, river, sea). It is about the method.
More specifically, it relates to a transformant having an improved ability to fermentatively synthesize a copolymer polyester, and further to a method for producing a copolymer polyester using the transformant.

【0002】[0002]

【従来の技術および発明が解決しようとする課題】現在
まで数多くの微生物において、ポリエステルを菌体内に
蓄積することが、知られている。その代表例としては、
3−ヒドロキシブチレート(以下3HBと呼ぶ)のホモ
ポリマーであるポリ−3−ヒドロキシブチレート(以下
P(3HB)と呼ぶ)であり、その生産菌は数多く知ら
れている(例えば、デービス(Dawes)ら、アドバンス・
イン・マイクロバイオロジー・アンド・バイオフィジッ
クス(Adv. Microbiol. Biophys.), 14巻,135頁,
1973年参照)。P(3HB)は、自然環境中で生物
的に分解するプラスチック(以下生分解性プラスチック
と呼ぶ)であるが、高分子材料としてみた場合、ホモポ
リマーであるために結晶性が高くかつ脆い性質を有して
おり、実用的には不十分であった。このような欠点を克
服する方法として、コポリマーを生産する菌株のスクリ
ーニングが行われた。特開昭63−226291号公報
によれば、シュードモナスオレオボランスATCC29
347に炭素源としてアルカンを与えることにより炭素
数が6−12までの3−ヒドロキシアルカノエート(以
下3HAと呼ぶ)をモノマーユニットとする共重合体
(以下P(3HA)と呼ぶ)を醗酵合成できた。しか
し、このP(3HA)は、炭素数6から12までに広く
分布した共重合体であり、且つ、側鎖のメチレン基数が
多いことから、物性的には室温でゲル状の高分子であ
る。このため、プラスチック材料としては融点が低過ぎ
るものであった。
2. Description of the Related Art Up to now, it has been known that a large number of microorganisms accumulate polyester in cells. As a typical example,
It is poly-3-hydroxybutyrate (hereinafter referred to as P (3HB)), which is a homopolymer of 3-hydroxybutyrate (hereinafter referred to as 3HB), and many producing bacteria thereof are known (for example, Davis (Dawes)). ) Et al.
In Microbiology and Biophysics (Adv. Microbiol. Biophys.), 14: 135,
See 1973). P (3HB) is a plastic that biodegrades in the natural environment (hereinafter referred to as biodegradable plastic), but when viewed as a polymer material, it is a homopolymer and therefore has high crystallinity and brittle properties. However, it was not practically sufficient. As a method for overcoming such drawbacks, screening of a strain producing a copolymer was carried out. According to Japanese Patent Laid-Open No. 63-226291, Pseudomonas oleovorans ATCC29.
By giving an alkane as a carbon source to 347, a copolymer (hereinafter referred to as P (3HA)) having 3-hydroxyalkanoate (hereinafter referred to as 3HA) having a carbon number of 6 to 12 as a monomer unit can be fermented and synthesized. It was However, since P (3HA) is a copolymer having a wide distribution of carbon atoms of 6 to 12 and has a large number of side chain methylene groups, it has a physical property of being a gel-like polymer at room temperature. . Therefore, the melting point of the plastic material is too low.

【0003】これに対し、ポリエステルを構成している
モノマーユニットとして、3HB以外の構造的に異なる
モノマーユニットを組み込むことが提案された。特開昭
57−150393号公報、特開昭58−69225号
公報、特開昭63−269989号公報、特開昭64−
48821号公報、特開平1−156320号公報によ
れば、アルカリゲネス ユートロファスを用い、炭素源
として炭素数が奇数個のカルボン酸、例えば、プロピオ
ン酸や吉草酸を与えることにより、3HBとβ−ヒドロ
キシバリレート(以下3HVと呼ぶ)との共重合体(以
下P(3HB−CO−3HV)と呼ぶ)が得られる。同
様に、炭素源として、4−ヒドロキシ酪酸やγ−ブチロ
ラクトンを与えることにより、3HBと4−ヒドロキシ
ブチレート(4HB)との共重合体(以下P(3HB−
CO−4HB)と呼ぶ)が得られることが、報告されて
いる。そして、このP(3HB−CO−3HV)やP
(3HB−CO−4HB)は、3HVや4HBの成分組
成を高めることでP(3HB)の脆性を改良し、プラス
チックとして加工性にも広がりを持つ性質を有している
ので実用的な生分解性プラスチックとして注目されてい
る。しかし、このようなコポリマーを微生物内で醗酵合
成させるには、3HBのユニット成分を作るための炭素
源(通常は、グルコース、シュクロースのような糖類や
酢酸、メタノール、エタノール、グリセリン等)と、3
HVや4HBのようなコポリマーのユニット成分を作る
ための中間体(3HVを作る場合は、プロピオン酸、吉
草酸、4HBを作る場合は1,4−ブタンジオール、γ
−ブチロラクトン)とを培地に添加しなければならず、
しかもこのような原料は高価であるために培養コストが
高くなる欠点を有していた。
On the other hand, it has been proposed to incorporate structurally different monomer units other than 3HB as the monomer units constituting the polyester. JP-A-57-150393, JP-A-58-69225, JP-A-63-269989, JP-A-64-
According to JP48821 and JP-A-1-156320, by using Alcaligenes eutrophus and supplying a carboxylic acid having an odd number of carbon atoms as a carbon source, for example, propionic acid or valeric acid, 3HB and β-hydroxyvarie are obtained. A copolymer (hereinafter referred to as P (3HB-CO-3HV)) with a rate (hereinafter referred to as 3HV) is obtained. Similarly, by providing 4-hydroxybutyric acid or γ-butyrolactone as a carbon source, a copolymer of 3HB and 4-hydroxybutyrate (4HB) (hereinafter referred to as P (3HB-
CO-4HB)) is obtained. And this P (3HB-CO-3HV) and P
(3HB-CO-4HB) improves the brittleness of P (3HB) by increasing the component composition of 3HV and 4HB, and has the property that it has a wide range of workability as a plastic. Is attracting attention as a flexible plastic. However, in order to fermentatively synthesize such a copolymer in a microorganism, a carbon source (usually glucose, sugars such as sucrose or acetic acid, methanol, ethanol, glycerin, etc.) for making a unit component of 3HB, Three
Intermediates for making the unit components of copolymers such as HV and 4HB (propionic acid, valeric acid when making 3HV, 1,4-butanediol, γ when making 4HB
-Butyrolactone) and must be added to the medium,
Moreover, since such a raw material is expensive, it has a drawback that the culture cost is high.

【0004】他方、このP(3HB−CO−3HV)や
P(3HB−CO−4HB)の欠点を克服する方法とし
て、アエロモナス属の菌株を用いることが提案された。
特開平5−93049号公報によれば、アエロモナス属
の菌株FA440やOL−338を用い、非常に安価な
天然油脂を炭素源として3−ヒドロキシブチレートと3
−ヒドロキシヘキサノエートの共重合体(以下P(3H
B−CO−3HHx)が得られている。そして、この共
重合体は可塑性が高く柔軟性があるため、P(3HB−
CO−3HV)やP(3HB−CO−4HB)よりもポ
リマー物性が優れているだけでなく、高価な原料(炭素
源)を培地に添加する必要がないことから、安価なコス
トでの生産が期待された。しかしながら、アエロモナス
属の菌株の特徴は脂肪酸のβ−酸化経路の中間代謝物で
ある3−ヒドロキシアシルCoAからポリエステル合成
が進むルートがメインであり、β−酸化の主生成物であ
るアセチルCoAが有効に利用されないことや、P(3
HB−CO−3HHx)の合成酵素活性が低いことなど
が原因となって、菌体内ポリエステル蓄積が抑制される
ことが明らかとなっている。従って、安価な天然油脂を
炭素源として利用できても生産性が低く、炭素源収率も
低いという課題が残されていた。従って、本発明の目的
は、アエロモナス属菌のP(3HB−CO−3HHx)
の合成酵素活性を高めるため、P(3HB−CO−3H
Hx)の合成酵素遺伝子等によって形質転換された形質
転換体を提供することにある。また、本発明の他の目的
は、かかる形質転換体を用いるP(3HB−CO−3H
Hx)等の共重合体を製造する方法を提供することにあ
る。
On the other hand, as a method for overcoming the disadvantages of P (3HB-CO-3HV) and P (3HB-CO-4HB), it has been proposed to use a strain of the genus Aeromonas.
According to Japanese Unexamined Patent Publication No. 5-93049, strains FA440 and OL-338 belonging to the genus Aeromonas are used, and 3-hydroxybutyrate and 3-hydroxybutyrate are used as a carbon source with a very inexpensive natural oil and fat.
-Hydroxyhexanoate copolymer (hereinafter P (3H
B-CO-3HHx) has been obtained. Since this copolymer has high plasticity and flexibility, P (3HB-
CO-3HV) and P (3HB-CO-4HB) are not only superior in polymer physical properties, but also do not require the addition of expensive raw materials (carbon source) to the medium, so production at low cost is possible. Was expected However, the main characteristic of Aeromonas strains is that polyester synthesis proceeds from 3-hydroxyacyl CoA, which is an intermediate metabolite of the β-oxidation pathway of fatty acids, and acetyl CoA, which is the main product of β-oxidation, is effective. Is not used for P.
It has been revealed that intracellular polyester accumulation is suppressed due to, for example, the low activity of HB-CO-3HHx) synthase. Therefore, there remains a problem that productivity is low and carbon source yield is low even if inexpensive natural oils and fats can be used as a carbon source. Therefore, an object of the present invention is to provide P (3HB-CO-3HHx) of Aeromonas sp.
P (3HB-CO-3H to enhance the synthase activity of
It is intended to provide a transformant transformed with the Hx) synthase gene or the like. Another object of the present invention is to use P (3HB-CO-3H) which uses such a transformant.
It is to provide a method for producing a copolymer such as Hx).

【0005】[0005]

【課題を解決するための手段】本発明者は、アエロモナ
ス属の菌株が優れたポリエステルを蓄積出来るにもかか
わらず、菌体中の蓄積量と炭素収率が低いために工業的
に利用できないという欠点に着目し、この菌体中の蓄積
量と炭素収率を高めるため鋭意研究を行った。その結
果、アエロモナス属のポリエステル合成に関与する遺伝
子群を、適当な宿主に移入した形質転換株が、著量のポ
リエステルを合成し、炭素収率も非常に優れていること
を発見し、さらに研究をすすめて本発明を完成するに至
った。即ち、本発明の要旨は、(1) 3−ヒドロキシ
ブチレートと3−ヒドロキシヘキサノエートから構成さ
れる共重合体の合成遺伝子を含有するベクタープラスミ
ドを宿主菌体内に移入して得られる形質転換体、(2)
さらにβ−ケトチオラーゼ遺伝子および/またはアセ
トアセチルCoAリダクターゼ遺伝子が組み込まれたベ
クタープラスミドを宿主菌体内に移入して得られる
(1)記載の形質転換体、(3) 宿主菌がアエロモナ
ス属の菌株であることを特徴とする(1)または(2)
に記載の形質転換体、(4) ベクタープラスミドがp
LA2917、pLA2905、pLA2910、pL
A2901、pRK248、pRK290、pLAFR
1、pVK100、pVK101、pVK102よりな
る群から選択されるものであることを特徴とする(1)
〜(3)のいずれかに記載の形質転換体、並びに(5)
(1)〜(4)のいずれかに記載した形質転換体を培
養することにより、3−ヒドロキシブチレートと3−ヒ
ドロキシヘキサノエートから構成される共重合体を蓄積
させることを特徴とする共重合体の製造方法、に関す
る。以下に本発明を詳細に説明する。
Means for Solving the Problems Although the strains of the genus Aeromonas are capable of accumulating excellent polyesters, the present inventor says that they cannot be industrially used because of the low accumulation amount and carbon yield in the bacterial cells. Focusing on the shortcomings, we conducted diligent research in order to increase the accumulated amount in these cells and the carbon yield. As a result, we discovered that a transformant strain in which a group of genes involved in the polyester synthesis of Aeromonas was transferred into an appropriate host synthesized a significant amount of polyester and had a very good carbon yield. Then, the present invention was completed. That is, the gist of the present invention is (1) transformation obtained by transferring into a host cell a vector plasmid containing a synthetic gene of a copolymer composed of 3-hydroxybutyrate and 3-hydroxyhexanoate. Body, (2)
Furthermore, the transformant according to (1), which is obtained by transferring a vector plasmid in which the β-ketothiolase gene and / or acetoacetyl CoA reductase gene is incorporated into the host cells, and (3) the host strain is a strain of the genus Aeromonas. (1) or (2) characterized in that
The transformant described in 1., (4) The vector plasmid is p
LA2917, pLA2905, pLA2910, pL
A2901, pRK248, pRK290, pLAFR
1, pVK100, pVK101, pVK102 is selected from the group consisting of (1)
~ The transformant according to any one of (3), and (5)
By culturing the transformant described in any one of (1) to (4), a copolymer composed of 3-hydroxybutyrate and 3-hydroxyhexanoate is accumulated. A method for producing a polymer. The present invention will be described in detail below.

【0006】1.共重合体の合成遺伝子によって形質転
換された形質転換体の取得方法 P(3HB−CO−3HHx)の合成遺伝子によって形
質転換された本発明の形質転換体を取得するためには以
下の方法を採るのが便宜である。まず、P(3HB−C
O−3HHx)を合成できる菌株より遺伝子ライブラリ
ーを作成し、次いでP(3HB−CO−3HHx)の合
成遺伝子が欠損した合成能欠損変異株に入れ、最後にP
(3HB−CO−3HHx)の合成能が回復した菌株を
選別すれば、P(3HB−CO−3HHx)の合成遺伝
子によって形質転換された本発明の形質転換体を得るこ
とができる。
1. Method for Obtaining Transformant Transformed by Copolymer Synthetic Gene The following method is used to obtain the transformant of the present invention transformed by the P (3HB-CO-3HHx) synthetic gene. Is convenient. First, P (3HB-C
A gene library was prepared from a strain capable of synthesizing O-3HHx), and then the gene library was put into a synthetic ability-deficient mutant strain lacking the synthetic gene of P (3HB-CO-3HHx).
By selecting a strain in which the synthetic ability of (3HB-CO-3HHx) is recovered, the transformant of the present invention transformed with the synthetic gene of P (3HB-CO-3HHx) can be obtained.

【0007】 P(3HB−CO−3HHx)を合成
できる菌株より遺伝子ライブラリーを作成するために
は、P(3HB−CO−3HHx)を合成できる菌株か
ら染色体DNAを抽出精製し、制限酵素により切断した
後に適当な長さのDNA断片を分離し、ベクタープラス
ミドと結合することにより得られる。
In order to prepare a gene library from a strain capable of synthesizing P (3HB-CO-3HHx), chromosomal DNA is extracted and purified from a strain capable of synthesizing P (3HB-CO-3HHx) and cleaved with a restriction enzyme. After that, a DNA fragment of an appropriate length is separated and ligated with a vector plasmid.

【0008】P(3HB−CO−3HHx)を合成でき
る菌株とは、アエロモナス属の菌株であればいずれでも
よく、例えば、アエロモナス キャビエ FA440
株、アエロモナス ハイドロフィラ OL−338株な
どが挙げられる。
The strain capable of synthesizing P (3HB-CO-3HHx) may be any strain of the genus Aeromonas, for example Aeromonas caviae FA440.
Examples thereof include Aeromonas hydrophila OL-338 strain.

【0009】P(3HB−CO−3HHx)を合成でき
る菌株より染色体DNAを抽出精製する方法としては、
例えば、マーマー(Marmur)らの方法(ジャーナル・オブ
・モレキュラー・バイオロジー(Journal of Molecular
Biology),3巻,208頁,1961年)が挙げられ
る。染色体を切断する際に用いる制限酵素は、ベクター
プラスミドに対応する制限酵素であればいずれでもよ
く、宝酒造、ファルマシア、バイオラッド社などから容
易に入手できる。また、切断されたDNA断片から適当
な長さのDNAを抽出するが、ここで適当な長さとは、
通常のベクターを用いるときは5000〜20000塩
基対程度、コスミドあるいはファージベクターを用いる
ときは15000〜30000塩基対程度を意味する。
DNA断片から適当な長さを取りだす方法としては、蔗
糖密度勾配を用いる方法やアガロースゲルを用いる方法
(モレキュラー・クローニング(Moleculrar Cloning
),150頁,コールド・スプリング・ハーバー・ラ
ボラトリー(Cold Spring Harbor Laboratory)出版(1
982年)参照)などいずれでもよく、例えば、RK2
の複製に関与する領域を有するベクタープラスミド、例
えば、pRK229、pRK248(ジャーナル・オブ
・バクテリオロジー,141巻,219頁,1980年
参照)、pRK290(プロシーディング・ナショナル
・アカデミー・サイエンス・オブ・USA,77巻,7
347頁,1980年)、pLA2901、pLA29
05、pLA2910、pLA2917(ジャーナル・
オブ・バクテリオロジー,161巻,955頁,198
5年参照)、pLAFR1(ジーン(Gene),18巻,2
89頁,1982年参照),pVK100,pVK10
1,pVK102(プラスミド(Plasmid),8巻,45
頁,1982年)、あるいは、RK2の複製に関する領
域を制限酵素で切り出し加工したものなどが挙げられ
る。
As a method for extracting and purifying chromosomal DNA from a strain capable of synthesizing P (3HB-CO-3HHx),
For example, the method of Marmur et al. (Journal of Molecular Biology).
Biology), vol. 3, p. 208, 1961). The restriction enzyme used for cutting the chromosome may be any restriction enzyme corresponding to the vector plasmid, and can be easily obtained from Takara Shuzo, Pharmacia, Bio-Rad and the like. In addition, DNA of an appropriate length is extracted from the cleaved DNA fragment.
When using an ordinary vector, it means about 5000 to 20000 base pairs, and when using a cosmid or phage vector, it means about 15000 to 30000 base pairs.
As a method for extracting an appropriate length from a DNA fragment, a method using a sucrose density gradient or a method using an agarose gel (Moleculr Cloning
), 150 pages, Cold Spring Harbor Laboratory published (1
982))), for example, RK2
Vector plasmids having a region involved in replication of pRK229, pRK229, pRK248 (see Journal of Bacteriology, 141, 219, 1980), pRK290 (Proceeding National Academy Science of USA, Volume 77, 7
347, 1980), pLA2901, pLA29.
05, pLA2910, pLA2917 (Journal
Of Bacteriology, 161, 955, 198.
5 years), pLAFR1 (Gene, 18 volumes, 2
P. 89, 1982), pVK100, pVK10.
1, pVK102 (Plasmid), 8 volumes, 45
(Page, 1982), or a region related to the replication of RK2 that has been cut out with a restriction enzyme and processed.

【0010】ベクタープラスミドは、染色体DNAを断
片化する際に使用した制限酵素の塩基配列に対応する制
限酵素を用いて切断した後、適当な長さにされた染色体
DNA断片と連結する。この連結は、T4DNAリガーゼを
用いればよく、例えばライゲーションキット(宝酒造
(株)など)を用いて行うことができる。これにより、
様々な遺伝子の断片とベクタープラスミドを結合した混
合物(以下、遺伝子ライブラリーと呼ぶ)を得ることが
できる。あるいは、遺伝子ライブラリーにおいて、適当
な長さの染色体DNA断片を用いる代わりに、P(3H
B−CO−3HHx)を合成できる菌株からmRNAを
抽出精製し、mRNAを精製した後それからcDNA断
片を合成する方法(モレキュラー・クローニング(Molec
ular Cloning),コールド・スプリング・ハーバー・ラ
ボラトリー(Cold Spring Harbor Laboratory)出版(1
982年)参照)を利用してもよい。また、遺伝子ライ
ブラリーを、大腸菌に一度形質転換あるいは形質導入し
た後、遺伝子ライブラリーを大量に精製することもでき
る(モレキュラー・クローニング(Molecular Clonin
g),コールド・スプリング・ハーバー・ラボラトリー
(Cold Spring Harbor Laboratory)出版(1982年)
参照)。
The vector plasmid is cleaved with a restriction enzyme corresponding to the nucleotide sequence of the restriction enzyme used for fragmenting the chromosomal DNA, and then ligated with the chromosomal DNA fragment having an appropriate length. This ligation may be performed using T4 DNA ligase, for example, using a ligation kit (Takara Shuzo Co., Ltd.). This allows
It is possible to obtain a mixture (hereinafter referred to as a gene library) in which various gene fragments are ligated to a vector plasmid. Alternatively, instead of using a chromosomal DNA fragment of appropriate length in a gene library, P (3H
B-CO-3HHx) -synthesizing mRNA from a strain capable of synthesizing it, purifying the mRNA, and then synthesizing a cDNA fragment therefrom (molecular cloning (Molec
ular Cloning), Cold Spring Harbor Laboratory published (1
982))). Alternatively, the gene library can be purified in a large amount after once transforming or transducing Escherichia coli (Molecular Cloning).
g), Cold Spring Harbor Laboratory
(Cold Spring Harbor Laboratory) Publishing (1982)
reference).

【0011】 次に、P(3HB−CO−3HHx)
の合成遺伝子が欠損した変異株(以下合成能欠損変異株
と呼ぶ)を取得するためには、P(3HB−CO−3H
Hx)を合成できる菌株に変異処理を施した後、炭素数
6以上の油脂関連物質を唯一の炭素源とする培地で増殖
でき、炭素数6以上の油脂関連物質を唯一の炭素源とし
てP(3HB−CO−3HHx)を合成できる培地でP
(3HB−CO−3HHx)を合成できない菌株を選別
すればよい。
Next, P (3HB-CO-3HHx)
In order to obtain a mutant strain deficient in the synthetic gene (hereinafter referred to as a synthetic ability deficient mutant strain), P (3HB-CO-3H
After mutating a strain capable of synthesizing Hx), the strain can grow in a medium containing an oil-and-fat-related substance having 6 or more carbon atoms as the sole carbon source, and P ( 3HB-CO-3HHx) in a medium capable of synthesizing P
A strain that cannot synthesize (3HB-CO-3HHx) may be selected.

【0012】ここで、変異処理はいずれの方法でもよ
く、例えば、紫外線、X線、γ線などによる変異、N−
メチル−N’−ニトロ−N−ニトロソグアジニン、エチ
ルメタンスルホン酸などの変異剤による処理などいずれ
でもよい。
Here, the mutagenesis treatment may be carried out by any method, for example, mutation by ultraviolet rays, X-rays, γ rays, N-
Any treatment such as treatment with a mutagen such as methyl-N′-nitro-N-nitrosoguadinine or ethylmethanesulfonic acid may be used.

【0013】炭素数6以上の油脂関連物質を唯一の炭素
源とする培地とは、炭素源として炭素数6以上の油脂関
連物質以外を含有しない培地であり、例えば、デービス
(Davis) の最少培地やM9最少培地に増殖に最小限必要
なビタミンとミネラルを添加したものを基本培地とし、
グルコースを炭素数6以上の油脂関連物質に置き換えた
培地である。炭素数6以上の油脂関連物質を唯一の炭素
源としてP(3HB−CO−4HHx)を合成できる培
地とは、炭素源として炭素数6以上の油脂関連物質以外
を含有せず、且つ、炭素源に対して窒素源を十分制限し
た培地であり、例えば、デービス(Davis) の最少培地や
M9最少培地に増殖に最小限必要なビタミンとミネラル
を添加したものを基本培地とし、グルコースを炭素数6
以上の油脂関連物質に置き換え、硫酸アンモニウムなど
の窒素源を通常の1/5以下にした培地である。
The medium containing only an oil-and-fat-related substance having 6 or more carbon atoms as a carbon source is a medium containing only an oil-and-fat-related substance having 6 or more carbon atoms as a carbon source.
(Davis) minimal medium or M9 minimal medium supplemented with the minimum necessary vitamins and minerals for growth as the basic medium,
It is a medium in which glucose is replaced with a fat-and-oil-related substance having 6 or more carbon atoms. A medium capable of synthesizing P (3HB-CO-4HHx) by using an oil-and-fat-related substance having a carbon number of 6 or more as a sole carbon source does not contain any other than the oil-and-fat-related substance having a carbon number of 6 or more as a carbon source, and In contrast, a medium with a sufficiently limited nitrogen source, for example, Davis minimal medium or M9 minimal medium supplemented with the minimum necessary vitamins and minerals for growth is used as the basic medium, and glucose has 6 carbon atoms.
It is a medium in which nitrogen sources such as ammonium sulfate are reduced to ⅕ or less of the usual medium by replacing the above-mentioned fats and oils-related substances.

【0014】炭素数6以上の油脂関連物質として、天然
油脂、例えば、コーン油、大豆油、サフラワー油、サン
フラワー油、オリーブ油、ヤシ油、パーム油、ナタネ
油、魚油、鯨油、豚油、牛油など、脂肪酸、例えば、ヘ
キサン酸、デカン酸、オクタン酸、ラウリン酸、オレイ
ン酸、パルミチン酸、リノレン酸、リノール酸、ミリス
チン酸など、あるいは、これら脂肪酸のエステル、ある
いは、アルコール、例えば、オクタノール、ラウリルア
ルコール、オレイルアルコール、パルミチルアルコール
など、あるいはこれらアルコールのエステルなどが挙げ
られる。
Natural fats and oils such as corn oil, soybean oil, safflower oil, sunflower oil, olive oil, coconut oil, palm oil, rapeseed oil, fish oil, whale oil, pig oil, etc. Fatty acids such as beef oil, eg, hexanoic acid, decanoic acid, octanoic acid, lauric acid, oleic acid, palmitic acid, linolenic acid, linoleic acid, myristic acid, etc., or esters of these fatty acids, or alcohols, eg, octanol , Lauryl alcohol, oleyl alcohol, palmityl alcohol, etc., and esters of these alcohols.

【0015】変異処理を施した菌株について、P(3H
B−CO−3HHx)合成の有無を調べる方法として
は、例えば、スダンブラックBにより染色する方法(ア
キーブス・オブ・バイオテクノロジー(Archives of Bio
technology),71巻,283頁,1970年)、位相
差顕微鏡により蓄積を調べる方法などいずれでもよい。
また、変異株をサッカロースやパーコールの濃度勾配法
(アキーブス・オブ・バイオテクノロジー(Archives of
Biotechnology),143巻,178頁,1985年)
により合成能欠損変異株の濃縮をしてから選別を行って
もよい。そして、共重合体P(3HB−CO−3HH
x)の合成遺伝子の入った形質転換体を得るためには、
合成能欠損変異株に遺伝子ライブラリーを形質転換ある
いは形質導入した後、炭素数6以上の油脂関連物質を唯
一の炭素源としてP(3HB−CO−3HHx)を合成
できる培地でP(3HB−CO−3HHx)の合成能が
修復した菌株(以下、合成能修復株と呼ぶ)を選別すれ
ばよい。
Regarding the strains subjected to the mutation treatment, P (3H
As a method for examining the presence or absence of (B-CO-3HHx) synthesis, for example, a method of staining with Sudan Black B (Archives of Biotechnology)
technology), 71, 283, 1970), a method of examining accumulation by a phase contrast microscope, or the like.
In addition, the mutant strain was subjected to a sucrose or Percoll concentration gradient method (Archives of Biotechnology).
Biotechnology), 143, 178, 1985).
Alternatively, the mutant strain lacking in synthetic ability may be concentrated before screening. And the copolymer P (3HB-CO-3HH
To obtain a transformant containing the synthetic gene of x),
After transforming or transducing the gene library into the synthetic capacity-deficient mutant, P (3HB-CO-3HHx) can be synthesized in a medium capable of synthesizing P (3HB-CO-3HHx) using only an oil-and-fat-related substance having 6 or more carbon atoms as the sole carbon source. -3HHx) -synthesizing ability-repaired bacterial strain (hereinafter referred to as synthetic-ability repairing strain) may be selected.

【0016】合成能欠損変異株へ遺伝子ライブラリーを
形質転換する方法は、一般に利用される方法でよく、例
えば、塩化カルシウム法(ジャーナル・オブ・モレキュ
ラー・バイオロジー(Journal of Molecular Biology),
53巻,159頁,1970年参照)、塩化ルビジウム
法(メソーズ・イン・エンザイモロジー(Methods inEnz
ymology),68巻,253頁,1979年参照)、低
pH法(遺伝子操作マニュアル(講談社サイエンティフ
ィク出版)参照)などが挙げられる。また、コスミドベ
クターやファージベクターを利用する場合の形質導入
は、一般に利用される方法でよく、例えば、市販のin
vitroパッケージング キット(例えば、宝酒造
(株)製)が利用できる。また、ベクタープラスミド
が、プラスミドRK2に存在するtrfA、trfB、
rlx領域を含んでいる場合、接合法(ジャーナル・オ
ブ・バクテリオロジー,161巻,955頁,1985
年参照)により形質導入できる。炭素数6以上の油脂関
連物質を唯一の炭素源としてP(3HB−CO−3HH
x)を合成できる培地は、既に記載した合成能欠損変異
株を取得する場合の培地と同一でよく、P(3HB−C
O−3HHx)の合成の有無を調べる方法も、既に記載
した合成能欠損変異株を取得する場合に使用した方法と
同じでよい。
The method for transforming the gene library into the synthetic defective mutant strain may be a commonly used method, for example, calcium chloride method (Journal of Molecular Biology,
53, p. 159, 1970), Rubidium chloride method (Methods in Enz
ymology), 68, 253, 1979), low pH method (see Gene Operation Manual (Kodansha Scientific Publishing)) and the like. In addition, transduction when using a cosmid vector or a phage vector may be a commonly used method, for example, commercially available in
A vitro packaging kit (for example, manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.) can be used. In addition, the vector plasmids are trfA, trfB, which are present in the plasmid RK2,
When the rlx region is included, the joining method (Journal of Bacteriology, 161, 955, 1985, 1985)
(See year). P (3HB-CO-3HH) with oil and fat-related substances having 6 or more carbon atoms as the sole carbon source
The medium capable of synthesizing x) may be the same as the medium used for obtaining the mutant strain lacking the synthetic ability described above, and P (3HB-C
The method for investigating the presence or absence of the synthesis of O-3HHx) may be the same as the method used for obtaining the synthetic-deficiency mutant strain described above.

【0017】また、β−ケトチオラーゼは、アセチルC
oAからアセトアセチルCoAを合成し、アセトアセチ
ルCoAリダクターゼは、アセトアセチルCoAからβ
−ヒドロキシブチルCoAを合成する。このβ−ヒドロ
キシブチルCoAは、P(3HB)合成のための3HB
のモノマーユニットである。従って、β−ケトチオラー
ゼおよび/またはアセトアセチルCoAリダクターゼ活
性の低い菌体では、菌体が炭素源を代謝する過程で多量
に合成されるアセチルCoAを、P(3HB−CO−3
HHx)合成の3HBのモノマーユニットとして充分に
使えない。これに対し、P(3HB−CO−3HHx)
合成遺伝子の他に、β−ケトチオラーゼおよび/または
アセトアセチルCoAリダクターゼ遺伝子が導入された
形質転換体は、β−ケトチオラーゼおよび/またはアセ
トアセチルCoAリダクターゼ活性が上昇しており、ア
セチルCoAを、P(3HB−CO−3HHx)合成の
3HBのモノマーユニットとして充分に使用できる。そ
れゆえ、炭素数6以上の炭素源以外の物質を唯一の炭素
源とし、窒素源を制限した培地で培養した場合、P(3
HB)を高濃度に蓄積することができる。これらの遺伝
子は、P(3HB−CO−3HHx)の合成遺伝子に近
接して存在している。それゆえ、既に記載した合成能修
復株のなかには、P(3HB−CO−3HHx)の合成
遺伝子を有し、且つ、β−ケトチオラーゼおよびアセト
アセチルCoAリダクターゼ遺伝子を有していない形質
転換体とP(3HB−CO−3HHx)の合成遺伝子を
有し、且つ、β−ケトチオラーゼ遺伝子とアセトアセチ
ルCoAリダクターゼ遺伝子の両方、あるいはその一方
を有する形質転換体が存在する。
Further, β-ketothiolase is acetyl C
Acetoacetyl CoA was synthesized from oA, and acetoacetyl CoA reductase was converted from acetoacetyl CoA to β.
-Hydroxybutyl CoA is synthesized. This β-hydroxybutyl CoA is 3HB for P (3HB) synthesis.
It is a monomer unit of. Therefore, in cells having a low β-ketothiolase and / or acetoacetyl CoA reductase activity, acetyl CoA, which is synthesized in a large amount during the process in which the cells metabolize the carbon source, is converted into P (3HB-CO-3).
HHx) cannot be fully used as a monomer unit for 3HB in synthesis. On the other hand, P (3HB-CO-3HHx)
In addition to the synthetic gene, the transformant into which the β-ketothiolase and / or acetoacetyl CoA reductase gene had been introduced had an increased β-ketothiolase and / or acetoacetyl CoA reductase activity, and thus the acetyl CoA was reduced to P (3HB -CO-3HHx) can be sufficiently used as a monomer unit of 3HB for synthesis. Therefore, when a substance other than a carbon source having 6 or more carbon atoms is used as the only carbon source and the medium is cultured in a nitrogen source-limited medium, P (3
HB) can be accumulated in high concentration. These genes are located close to the P (3HB-CO-3HHx) synthetic gene. Therefore, among the synthetic ability repair strains described above, a transformant having a synthetic gene of P (3HB-CO-3HHx) and no β-ketothiolase and acetoacetyl CoA reductase genes and P (3 3HB-CO-3HHx), and a transformant having both a β-ketothiolase gene and an acetoacetyl CoA reductase gene, or one of them.

【0018】 最後に、本発明の形質転換体を選別す
るには、合成能修復株を炭素数6以上の油脂関連物質以
外の物質を唯一の炭素源とし、窒素源を制限した培地で
培養した後、重合体(3HB)を高濃度に蓄積している
菌株を選択すればよい。炭素数6以上の油脂関連物質以
外の炭素源としては、糖類、例えば、グルコース、サッ
カロース、マルトース、フラクトース、ガラクトース、
でんぷん、でんぷん加水分解物など、低級アルコール
類、例えば、メタノール、エタノール、プロパノール、
ブタノールなど、グリセリン、有機酸類、例えば、酢
酸、アセト酢酸、クエン酸、コハク酸、酒石酸、乳酸、
グルコン酸などが挙げられる。
Finally, in order to select the transformant of the present invention, the synthetic ability-repairing strain was cultivated in a medium in which a substance other than the oil and fat-related substance having 6 or more carbon atoms was the only carbon source and the nitrogen source was restricted. After that, a strain that accumulates the polymer (3HB) at a high concentration may be selected. Examples of carbon sources other than the oil and fat-related substances having 6 or more carbon atoms include sugars such as glucose, sucrose, maltose, fructose, galactose,
Starch, starch hydrolysates, lower alcohols such as methanol, ethanol, propanol,
Butanol, etc., glycerin, organic acids such as acetic acid, acetoacetic acid, citric acid, succinic acid, tartaric acid, lactic acid,
Gluconic acid and the like can be mentioned.

【0019】蓄積量を調べる方法は、既に記載した方法
でよく、例えば、スダンブラックBにより染色する方
法、顕微鏡により蓄積を調べる方法などいずれでもよい
し、ポリマーを回収し重量を測定する方法、例えば、培
養終了後、菌体を蒸留水およびメタノール等により洗浄
し、滅菌乾燥して得られる乾燥菌体をクロロホルム等を
用いて、抽出処理し、遠心分離後、濾過等により菌体成
分を除去後、抽出液にメタノールを加えて共重合体を沈
澱回収する方法でもよい。さらに、形質転換体について
直接β−ケトチオラーゼおよびアセトアセチルCoAリ
ダクターゼ活性を測定してもよい(例えば、セニア(Sen
ior)らの方法、バイオケミカル・ジャーナル(Biochemic
al Journal),125巻,55頁,1971年参照)。
The method of examining the amount of accumulation may be any of the methods already described, for example, a method of staining with Sudan Black B or a method of examining the accumulation with a microscope, or a method of recovering the polymer and measuring the weight thereof, for example, After completion of the culturing, the bacterial cells are washed with distilled water and methanol, and sterilized and dried, and the dried bacterial cells are subjected to an extraction treatment with chloroform or the like, and after centrifugation, the bacterial cell components are removed by filtration or the like. Alternatively, methanol may be added to the extract to precipitate and recover the copolymer. Furthermore, the β-ketothiolase and acetoacetyl CoA reductase activities of transformants may be directly measured (for example, Senia (Sen
ior) et al., Biochemical Journal
al Journal), 125, 55, 1971).

【0020】アエロモナス属の菌株を宿主とした場合の
形質転換体は、宿主内に入れられたベクタープラスミド
上の遺伝子の大部分は、多コピー数が染色体内に挿入さ
れる。それゆえ、P(3HB−CO−3HHx)の生産
には、これらの形質転換体を直接使用することができ
る。
In the transformant using a strain of the genus Aeromonas as a host, most of the genes on the vector plasmid placed in the host have a large copy number inserted into the chromosome. Therefore, these transformants can be used directly for the production of P (3HB-CO-3HHx).

【0021】また、P(3HB−CO−HHx)をアエ
ロモナス属以外の菌株で生産することも可能である。こ
の場合、例えば、形質転換体よりプラスミドを抽出精製
したものを、大腸菌に入れた後、プラスミドを精製し、
プラスミドをそのまま、あるいは、目的の宿主で発現可
能なベクターに連結しなおした後、目的の宿主にプラス
ミドを入れればよい。
It is also possible to produce P (3HB-CO-HHx) in strains other than the genus Aeromonas. In this case, for example, after extracting and purifying the plasmid from the transformant, after putting it in E. coli, the plasmid was purified,
The plasmid may be put in the target host as it is or after being re-ligated to a vector that can be expressed in the target host.

【0022】アエロモナス属からのプラスミドの精製お
よび大腸菌からのプラスミドの精製方法は、通常の方法
でよく、例えば、アルカリ法(メソーズ・イン・エンザ
イモロジー(Methods in Enzymology),100巻,24
3頁,1983年発刊)が使用できる。また、大腸菌や
目的の宿主にプラスミドを入れる方法は、既に述べた合
成能欠損変異株へ遺伝子ライブラリーを形質転換した時
と同じ方法、例えば、塩化カルシウム法、塩化ルビジウ
ム法、低pH法など、コスミドベクターやファージベク
ターを利用する場合の形質導入法例えば、市販のin
vitroパッケージキットを用いる方法など、接合法
などが挙げられる。
The method for purifying a plasmid from the genus Aeromonas and the method for purifying a plasmid from Escherichia coli may be a conventional method, for example, the alkaline method (Methods in Enzymology, 100 volumes, 24).
3 pages, published in 1983) can be used. In addition, the method of inserting the plasmid into Escherichia coli or a target host is the same as the method for transforming the gene library into the synthetic ability-deficient mutant strain, for example, calcium chloride method, rubidium chloride method, low pH method, etc. Transduction method when using cosmid vector or phage vector, for example, commercially available in
Examples include a joining method such as a method using a vitro package kit.

【0023】目的の宿主としては、炭素数6以上の油脂
関連物質を代謝できる微生物であればいずれでもよく、
バクテリアとして、グラム陰性バクテリア、例えば、エ
シェリヒア(Esherihia)属、シュードモナス(Pseudomon
as)属、アルカリゲネス属(Alcaligenes)、アグロバク
テリウム(Agrobacterium)属、フラボバクテリウム(Fla
bobacterium)属、ビブリオ(Vibrio)属、エンテロバクタ
ー(Enterobacter)属、リゾビウム(Rhizobium)属、グル
コノバクター(Gluconobacter)属など、グラム陽性バク
テリア、例えば、バシルス(Bacillus)属、クロストリヂ
ウム(Clostridium)属、ラクトバシルス(Lactobacillu
s)属、コリネバクテリウム(Corynebacterium)属、ア
ルスロバクター(Artherobacter)属、ストレプトコッカ
ス(Streptococcus)属など、また放線菌として、ストレ
プトマイセス(Streptomyces)属、アクチノマイセス(Act
inomyces)属、ノカルディア(Nocardia)属などが挙げら
れる。また、酵母、かびでもよい。
The target host may be any microorganism as long as it is a microorganism capable of metabolizing oil-and-fat-related substances having 6 or more carbon atoms,
As the bacterium, a Gram-negative bacterium, for example, genus Esherihia, Pseudomonas
as) genus, Alcaligenes genus, Agrobacterium genus, Flavobacterium (Fla
Bobacterium) genus, Vibrio (Vibrio) genus, Enterobacter (Enterobacter) genus, Rhizobium (Rhizobium) genus, Gluconobacter (Gluconobacter) genus, such as gram-positive bacteria, for example, Bacillus (Bacillus) genus, Clostridium (Clostridium) genus, Lactobacillus
s) genus, Corynebacterium genus, Artherobacter genus, Streptococcus genus, etc., and actinomycetes such as Streptomyces genus, Actinomyces genus
Inomyces genus, Nocardia genus and the like. Alternatively, yeast or mold may be used.

【0024】2.形質転換体を用いた共重合体の培養方
法及び抽出精製法 P(3HB−CO−3HHx)を醗酵合成するために
は、形質転換体に炭素数6以上の油脂関連物質を含む炭
素源を与え、炭素源以外の栄養源である窒素源、無機
塩、その他の有機栄養源のいずれかを制限した培地(p
Hは中性ないし微アルカリ性)、例えば、窒素源を0.
5〜8%に制限した培地で、培養温度は25〜38℃の
範囲で、好気的に1〜4日培養することにより、P(3
HB−CO−3HHx)を顆粒として菌体内に蓄積さ
せ、その後、この共重合体を回収すればよい。あるい
は、P(3HB−CO−3HHx)を醗酵合成するため
には、形質転換体に炭素数6以上の油脂関連物質を含む
炭素源あるいは炭素数6以上の油脂関連物質を含まない
炭素源を与え、炭素源以外の栄養源である窒素源、無機
塩、その他の有機栄養源を制限しない培地で、pHは中
性〜微アルカリ性、培養温度は25〜38℃の範囲で、
好気的に1〜4日培養した後、炭素数6以上の油脂関連
物質を含む炭素源を与え、炭素源以外の栄養源である窒
素源、無機塩、その他の有機栄養源のいずれか、例え
ば、窒素源を制限した培地で、pHは中性〜微アルカリ
性、培養温度は25〜38℃の範囲で、好気的に1〜4
日培養することにより、P(3HB−CO−3HHx)
顆粒として菌体内に蓄積させ、その後、この共重合体を
回収すればよい。また、培養は半回分培養してもよい
し、連続的に培養してもよい。
2. Method for Culturing Copolymer and Extraction and Purification Method Using Transformant In order to fermentatively synthesize P (3HB-CO-3HHx), the transformant is provided with a carbon source containing an oil and fat-related substance having 6 or more carbon atoms. , A nutrient medium other than carbon sources, such as nitrogen sources, inorganic salts, or other organic nutrient sources, which is restricted (p
H is neutral to slightly alkaline), for example, a nitrogen source of 0.
By culturing aerobically in a medium limited to 5 to 8% at a culture temperature of 25 to 38 ° C for 1 to 4 days, P (3
HB-CO-3HHx) may be accumulated in the cells as granules, and then the copolymer may be recovered. Alternatively, in order to fermentatively synthesize P (3HB-CO-3HHx), the transformant is provided with a carbon source containing an oil-and-fat-related substance having 6 or more carbon atoms or a carbon source containing no oil-and-fat-related substance having 6 or more carbon atoms. , A medium that does not limit the nitrogen source, which is a nutrient source other than the carbon source, inorganic salts, and other organic nutrient sources, the pH is neutral to slightly alkaline, and the culture temperature is in the range of 25 to 38 ° C.
After aerobically culturing for 1 to 4 days, a carbon source containing an oil-and-fat-related substance having 6 or more carbon atoms is given, and a nitrogen source that is a nutrient source other than the carbon source, an inorganic salt, or any other organic nutrient source, For example, in a medium in which the nitrogen source is limited, the pH is neutral to slightly alkaline, the culture temperature is in the range of 25 to 38 ° C, and aerobically 1 to 4
By culturing for one day, P (3HB-CO-3HHx)
The granules may be accumulated in the cells and then the copolymer may be recovered. In addition, the culture may be a semi-batch culture or continuous culture.

【0025】炭素源以外の栄養源として窒素源を制限す
る場合、炭素源は窒素源の5倍以上重量を与えることが
好ましい。また、炭素数6以上の油脂関連物質を含む炭
素源は、炭素数6以上の油脂関連物質と油脂関連物質以
外の炭素源からなり、これらの量比は、目的のP(3H
B−CO−3HHx)の組成に応じて適宜換えればよ
い。炭素数6以上の油脂関連物質の量比が高いほど、3
HHxが豊富な共重合体を得られる。
When limiting the nitrogen source as a nutrient source other than the carbon source, it is preferable to give the carbon source at least 5 times the weight of the nitrogen source. Further, the carbon source containing the oil or fat-related substance having 6 or more carbon atoms is composed of the oil or fat-related substance having 6 or more carbon atoms and the carbon source other than the oil or fat-related substance.
It may be appropriately changed according to the composition of B-CO-3HHx). The higher the amount ratio of oil-related substances having 6 or more carbon atoms, the more 3
A copolymer rich in HHx can be obtained.

【0026】炭素数6以上の油脂関連物質としては、既
に述べたように、天然油脂、例えば、コーン油、大豆
油、サフラワー油、サンフラワー油、オリーブ油、ヤシ
油、パーム油、ナタネ油、魚油、鯨油、豚油、牛油な
ど、脂肪酸、例えば、カプロン酸、デカン酸、オクタン
酸、ラウリン酸、オレイン酸、パルミチン酸、リノレン
酸、リノール酸、ミリスチン酸など、あるいは、これら
脂肪酸のエステル、あるいは、アルコール、例えば、オ
クタノール、ラウリルアルコール、オレイルアルコー
ル、パルミチルアルコールなど、あるいはこれらアルコ
ールのエステルなどが挙げられる。
As the oil-and-fat-related substances having 6 or more carbon atoms, as described above, natural oils and fats such as corn oil, soybean oil, safflower oil, sunflower oil, olive oil, coconut oil, palm oil, rapeseed oil, Fish oil, whale oil, pig oil, cow oil, etc., fatty acids, such as caproic acid, decanoic acid, octanoic acid, lauric acid, oleic acid, palmitic acid, linolenic acid, linoleic acid, myristic acid, etc., or esters of these fatty acids, Alternatively, alcohols such as octanol, lauryl alcohol, oleyl alcohol, palmityl alcohol and the like, or esters of these alcohols and the like can be mentioned.

【0027】炭素数6以上の油脂関連物質以外の炭素源
としては、糖類、例えば、グルコース、サッカロース、
マルトース、フラクトース、ガラクトース、でんぷん、
でんぷん加水分解物など、低級アルコール類、例えば、
メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノールな
ど、グリセリン、有機酸類、例えば、酢酸、アセト酢
酸、プロピオン酸、クエン酸、コハク酸、酒石酸、乳
酸、グルコン酸などが挙げられる。窒素源としては、ア
ンモニウム塩、例えば、硝酸アンモニウム、硫酸アンモ
ニウム、塩化アンモニウム、コハク酸アンモニウム、ク
エン酸アンモニウムなど、硝酸塩、例えば、硝酸ナトリ
ウム、硝酸カリウムなど、また、アンモニア水、アンモ
ニアガス、尿素、アミノ酸、ペプチド、核酸関連物質な
どが挙げられる。無機塩としては、りん酸塩、例えば、
リン酸カリウム、リン酸ナトリウム、リン酸カルシウム
など、カリウム塩、例えば、塩化カリウムなど、カルシ
ウム塩、例えば、塩化カルシウムなど、マグネシウム
塩、例えば、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウムな
ど、ナトリウム塩、例えば、塩化ナトリウム、炭酸ナト
リウムなど、マンガン塩、例えば、硫酸マンガン、塩化
マンガンなど、重金属塩、例えば、鉄、亜鉛、銅、コバ
ルトなどの塩化物、硫酸化物、硝酸化物などが挙げられ
る。
Carbon sources other than the oil-and-fat-related substances having 6 or more carbon atoms include sugars such as glucose, sucrose,
Maltose, fructose, galactose, starch,
Lower alcohols such as starch hydrolysates, for example,
Methanol, ethanol, propanol, butanol and the like, glycerin and organic acids, for example, acetic acid, acetoacetic acid, propionic acid, citric acid, succinic acid, tartaric acid, lactic acid, gluconic acid and the like can be mentioned. As the nitrogen source, ammonium salts, for example, ammonium nitrate, ammonium sulfate, ammonium chloride, ammonium succinate, ammonium citrate, etc., nitrates, for example, sodium nitrate, potassium nitrate, etc., ammonia water, ammonia gas, urea, amino acids, peptides, Examples include nucleic acid-related substances. As the inorganic salt, a phosphate, for example,
Potassium phosphate, sodium phosphate, calcium phosphate, etc., potassium salt, such as potassium chloride, calcium salt, such as calcium chloride, magnesium salt, such as magnesium chloride, magnesium sulfate, sodium salt, such as sodium chloride, carbonic acid Examples thereof include manganese salts such as sodium, for example, manganese sulfate, manganese chloride, etc., and heavy metal salts, for example, chlorides, sulfates, nitric oxides, etc. of iron, zinc, copper, cobalt and the like.

【0028】その他の有機栄養源としては、アミノ酸、
例えば、グリシン、アラニン、セリン、スレオニン、プ
ロリン、アスパラギン酸、オルニチン、プロリン、チロ
シンなど、ペプチド類、例えば、ペプトン、カザミノ
酸、グリシルグリシン、アラニルアラニン、アラニルグ
リシンなど、ビタミン類、例えば、ビタミンB1、ビタ
ミンC、ビタミンB12、ビオチンなど、天然物由来物
質、例えば、酵母エキス、肉エキス、麦芽、麦芽エキ
ス、コーンスティプリカー、大豆粉、米ぬか、大豆蛋白
分解物、カゼイン分解物など、核酸関連物質、例えば、
ウラシル、シトシン、チミン、アデニン、プリン、これ
らとリボース、デオキシリボースからなるヌクレオチド
などが挙げられる。
Other organic nutrient sources include amino acids,
For example, glycine, alanine, serine, threonine, proline, aspartic acid, ornithine, proline, tyrosine and the like, peptides, for example, peptone, casamino acid, glycylglycine, alanylalanine, alanylglycine, vitamins, for example, Natural product-derived substances such as vitamin B1, vitamin C, vitamin B12 and biotin, for example, yeast extract, meat extract, malt, malt extract, corn steep liquor, soybean powder, rice bran, soybean protein decomposed product, casein decomposed product, etc. Nucleic acid-related substances, for example,
Examples include uracil, cytosine, thymine, adenine, purine, nucleotides composed of these and ribose, deoxyribose, and the like.

【0029】醗酵合成された共重合体の菌体からの回収
は、常法により行うことができる。例えば、培養終了
後、菌体を蒸留水およびメタノール等により洗浄し、滅
菌乾燥して得られる乾燥菌体をクロロホルム等を用い
て、抽出処理し、遠心分離後、濾過等により菌体成分を
除去し、得られる抽出液にメタノールを加えて共重合体
を沈澱回収することができる。
The fermentation-synthesized copolymer can be recovered from the cells by a conventional method. For example, after culturing, the bacterial cells are washed with distilled water and methanol, and sterilized and dried, and the dried bacterial cells are subjected to an extraction treatment with chloroform or the like, centrifuged, and then filtered to remove bacterial cell components. Then, methanol can be added to the obtained extract to precipitate and recover the copolymer.

【0030】[0030]

【実施例】以下に実施例を挙げて、本発明を説明する
が、本発明はかかる実施例に限定されるものではない。 実施例1 最初に、ポリエステル合成能欠損変異株を取得した。ア
エロモナス属の菌株として、アエロモナス キャビエ(A
eromonas caviae)FA440株を使用した。アエロモナ
ス キャビエ FA440をN−メチル−N−ニトロソ
グアニジン処理(生物工学実験書、66頁、社団法人日
本生物工学会編(培風館出版)参照)を施し、変異を行
った。そして、1プレート当たりコロニーが約100個
になるようにMM(0.5%グルコース、0.01%硫
酸マグネシウム、0.3%燐酸二カリウム、0.7%燐
酸一カリウム、0.1%硫酸アンモニウム、0.01%
イーストエキス、pH7.0)寒天培地に菌体懸濁液を
塗布し、30℃で5日間インキュベートした。得られた
コロニー10000個に対して、MM寒天培地と、MP
A(0.15%パルミチン酸、0.01%硫酸マグネシ
ウム、0.7%リン酸二カリウム、0.3%リン酸一カ
リウム、0.1%硫酸アンモニウム、0.01%イース
トエキス、1ml/100mlトリトンX−100)寒
天培地と、MNP(0.15%パルミチン酸、0.01
%硫酸マグネシウム、0.7%リン酸二カリウム、0.
3%リン酸一カリウム、0.01%硫酸アンモニウム、
0.01%イーストエキス、1ml/100mlトリト
ンX−100、pH7.0)寒天培地とに、それぞれの
コロニーをレプリカした。そして、MNP寒天培地のプ
レートを30℃で5日間インキュベートした後、スダン
ブラックB法により、ポリエステルを染色した。即ち、
200mg/リットルのスダンブラックBを含む95%
のエタノール溶液を10mlずつ各プレートに注ぎ、3
0分間放置した後、溶液を除去し、95%のエタノール
溶液で1回プレートを洗浄した。その結果、MM培地と
MPA培地で増殖し、且つ、MNP培地で青色に染色さ
れていないコロニーを5個得た。それらを位相差顕微鏡
(オリンパスBH2、1000倍)で観察し、ポリエス
テルが蓄積していないことを確認した。これら、ポリエ
ステル合成遺伝子の欠損株(合成能欠損変異株)のひと
つをAC004と呼ぶ。
The present invention will be described below with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples. Example 1 First, a mutant strain defective in polyester synthesis was obtained. As a strain of the genus Aeromonas, Aeromonas caviae (A
eromonas caviae) FA440 strain was used. Aeromonas caviae FA440 was subjected to N-methyl-N-nitrosoguanidine treatment (see Biotechnology Experimental Manual, page 66, Japan Society for Biotechnology, edited by Baifukan Publishing Co., Ltd.) for mutation. Then, MM (0.5% glucose, 0.01% magnesium sulfate, 0.3% dipotassium phosphate, 0.7% monopotassium phosphate, 0.1% ammonium sulfate) was used so that there were about 100 colonies per plate. , 0.01%
The yeast extract, pH 7.0) agar medium was coated with the cell suspension and incubated at 30 ° C. for 5 days. MM agar medium and MP for 10,000 colonies obtained
A (0.15% palmitic acid, 0.01% magnesium sulfate, 0.7% dipotassium phosphate, 0.3% monopotassium phosphate, 0.1% ammonium sulfate, 0.01% yeast extract, 1 ml / 100 ml Triton X-100) agar and MNP (0.15% palmitic acid, 0.01
% Magnesium sulfate, 0.7% dipotassium phosphate, 0.
3% monopotassium phosphate, 0.01% ammonium sulfate,
Each colony was replicated in 0.01% yeast extract, 1 ml / 100 ml Triton X-100, pH 7.0) agar medium. Then, the plate of the MNP agar medium was incubated at 30 ° C. for 5 days, and then the polyester was dyed by the Sudan Black B method. That is,
95% containing 200 mg / liter Sudan Black B
Pour 10 ml of the ethanol solution of each onto each plate, and
After standing for 0 minutes, the solution was removed and the plate was washed once with a 95% ethanol solution. As a result, 5 colonies that grew in MM medium and MPA medium and were not stained blue in MNP medium were obtained. They were observed with a phase contrast microscope (Olympus BH2, 1000 times), and it was confirmed that polyester did not accumulate. One of these polyester synthetic gene-deficient strains (synthetic ability-deficient mutant strain) is called AC004.

【0031】実施例2 次に、アエロモナスの遺伝子ライブラリーを作成した。
アエロモナス キャビエ FA440株を200mlの
LB培地(1%イーストエキス,0.5%バクトペプト
ン,0.5%塩化ナトリウム,0.1%グルコース、p
H7.2)中、30℃で一昼夜培養した後、10000
rpmで10分間遠心分離することにより集菌した。そ
して、この菌体を0.01Mのトリス(ヒドロキシメチ
ル)アミノメタン−0.001Mのエチレンジアミン四
酢酸二ナトリウム溶液(以下TE溶液と呼ぶ)50ml
に懸濁し、50mgの塩化リゾチームを添加した後、4
℃で30分間放置した。さらに、50mlの1%のラウ
リル硫酸ナトリウムを含有するTE溶液を添加し、70
℃で20分間放置した。この液を室温まで冷却後、10
0mlのフェノール−クロロホルム溶液(容量比1:
1)を添加して静かに攪拌した後、10000rpmで
10分間遠心分離し、上澄みをパスツールピペットで静
かに取りだした。そして、フェノール−クロロホルム溶
液(容量比1:1)の代わりに、100mlのクロロホ
ルム溶液を用いて同様の操作を行い、上澄みをパスツー
ルピペットで静かに取りだし、ビーカーに入れた。この
上澄み液に−20℃に冷却したエタノールを少しずつ添
加しながら、析出してきた染色体DNAをガラス棒で巻
き取ることにより、アエロモナス キャビエFA440
の染色体DNAを得た。
Example 2 Next, an Aeromonas gene library was prepared.
Aeromonas caviae FA440 strain was mixed with 200 ml of LB medium (1% yeast extract, 0.5% bactopeptone, 0.5% sodium chloride, 0.1% glucose, p.
After culturing in H7.2) at 30 ° C for 24 hours, 10000
The cells were collected by centrifugation at rpm for 10 minutes. Then, 50 ml of 0.01 M tris (hydroxymethyl) aminomethane-0.001 M disodium ethylenediaminetetraacetate solution (hereinafter referred to as TE solution)
Suspended in, and after adding 50 mg of lysozyme chloride, 4
It was left at 30 ° C. for 30 minutes. Further, 50 ml of TE solution containing 1% sodium lauryl sulphate is added,
It was left for 20 minutes at ℃. After cooling the liquid to room temperature, 10
0 ml phenol-chloroform solution (volume ratio 1:
After 1) was added and gently stirred, the mixture was centrifuged at 10,000 rpm for 10 minutes, and the supernatant was gently taken out with a Pasteur pipette. Then, instead of the phenol-chloroform solution (volume ratio 1: 1), the same operation was performed using 100 ml of chloroform solution, and the supernatant was gently taken out with a Pasteur pipette and placed in a beaker. Aerosol Cavier FA440 was obtained by winding the precipitated chromosomal DNA with a glass rod while gradually adding ethanol cooled to -20 ° C to the supernatant.
Was obtained.

【0032】得られた染色体DNAを、制限酵素Sau
3AIで部分分解した後、透析チューブ法(モレキュラ
ー クローニング(Molecular cloning),164頁,コ
ールド スプリング ハーバー ラボラトリー(Cold Sp
ring Harbar Laboratory)出版参照)により、5〜15
キロ塩基対のDNA断片を分離精製した。他方、ベクタ
ープラスミドは、アエロモナス属で発現可能なpLA2
917を使用した。このプラスミドを制限酵素BglII
で切断し、脱燐酸化処理(モレキュラー クローニング
(Molecular cloning),133頁,コールド スプリン
グ ハーバーラボラトリー(Cold Spring Harbar Labora
tory)出版参照)を施した後、精製した染色体DNA断
片(遺伝子ライブラリー溶液と呼ぶ)と連結した。
The obtained chromosomal DNA was digested with the restriction enzyme Sau.
After partial digestion with 3AI, dialysis tube method (Molecular cloning, page 164, Cold Spring Harbor Laboratory (Cold Sp)
ring Harbar Laboratory) (see publication), 5-15
A kilobase pair DNA fragment was separated and purified. On the other hand, the vector plasmid is pLA2 which can be expressed in Aeromonas sp.
917 was used. This plasmid is used as a restriction enzyme BglII.
Cleavage with, dephosphorylation treatment (molecular cloning
(Molecular cloning), p. 133, Cold Spring Harbar Labora
tory)), and then ligated with the purified chromosomal DNA fragment (referred to as gene library solution).

【0033】形質転換は、塩化カルシウム法を用いて行
った。即ち、大腸菌DH1株を1mlのLB培地に一白
金耳接種し、37℃で一昼夜振盪培養した。そして、
0.05mlの培養液を5mlのLB培地に入れ、37
℃でさらに2時間培養した。その後、培養液を1000
0rpmで10分間遠心分離して菌体を回収した後、
0.1ml/lの塩化カルシウム溶液2mlに懸濁して
4℃で2時間放置した。その後、再び10000rpm
で10分間遠心分離して菌体を回収した後、0.1mo
l/lの塩化カルシウム−0.01mol/lのトリス
(ヒドロキシメチル)アミノメタン溶液0.2mlに懸
濁し、遺伝子ライブラリー溶液0.01mlを添加し、
さらに45分間放置した。そして、42℃で2分間放置
した後、1.8mlのLB培地を添加して37℃でさら
に2時間放置し、この菌体を集菌した後に25mg/m
lのテトラサイクリンを含有するLB寒天培地上に塗布
し、37℃で24時間インキュベートした。その結果、
105 個程度のテトラサイクリンに耐性を示すコロニー
が得られた。得られたテトラサイクリンに耐性を示すこ
れらのコロニーよりアルカリ法(メソーズ・イン・エン
ザイモロジー(Methods in Enzymology),100巻,2
43頁,1983年発刊)を用いて、プラスミドを粗精
製した後、超遠心分離法(モレキュラー クローニング
(Molecular cloning),150頁,コールド スプリン
グ ハーバー ラボラトリー(Cold SpringHarbar Labor
atory)出版)を用いてプラスミドの精製を行った。こ
のようにして、精製された遺伝子ライブラリーを得た。
Transformation was carried out using the calcium chloride method. That is, 1 platinum loop of the Escherichia coli DH1 strain was inoculated into 1 ml of LB medium, and cultured at 37 ° C. with shaking for 24 hours. And
Add 0.05 ml of culture medium to 5 ml of LB medium,
Incubation was continued for another 2 hours at ℃. After that, add 1000 to the culture solution.
After collecting the cells by centrifugation at 0 rpm for 10 minutes,
The suspension was suspended in 2 ml of a 0.1 ml / l calcium chloride solution and left at 4 ° C. for 2 hours. After that, 10,000 rpm again
After centrifuging at 10 minutes to collect the cells, 0.1mo
l / l calcium chloride-suspended in 0.01 ml / l tris (hydroxymethyl) aminomethane solution 0.2 ml, and added 0.01 ml gene library solution,
It was left for another 45 minutes. Then, after standing at 42 ° C. for 2 minutes, 1.8 ml of LB medium was added, and the mixture was allowed to stand at 37 ° C. for another 2 hours to collect 25 mg / m 2 of the bacterial cells.
It was spread on LB agar medium containing 1 liter of tetracycline and incubated at 37 ° C. for 24 hours. as a result,
About 10 5 colonies resistant to tetracycline were obtained. From these obtained tetracycline-resistant colonies, the alkaline method (Methods in Enzymology, 100, 2
P.43, published in 1983), after roughly purifying the plasmid, followed by ultracentrifugation (molecular cloning).
(Molecular cloning), p. 150, Cold Spring Harbar Laboratories
(atory) publication) was used to purify the plasmid. In this way, a purified gene library was obtained.

【0034】実施例3 アエロモナスの菌株として、実施例1で取得したアエロ
モナス キャビエ(Aeromonas caviae)AC004株の抗
生物質に対する耐性を調べたところ、テトラサイクリ
ン、カナマイシンに感受性であり、アンピシリンには耐
性を示した。そこで、テトラサイクリンをマーカーとし
て使用した。アエロモナス キャビエ AC004に実
施例2で作成した遺伝子ライブラリーを、実施例2の大
腸菌DH1の時と同様に、塩化カルシウム法により形質
転換した後、テトラサイクリンを含有するLB培地に塗
布し、30℃で一昼夜インキュベートした。その結果、
10 5 個程度のテトラサイクリンに耐性を示すコロニー
を得た。
Example 3 Aerosol obtained in Example 1 as a strain of Aeromonas
Anti-monas caviae AC004 strain
When I examined the resistance to biogenic substances,
Sensitive to kanamycin and to ampicillin
Showed sex. So, using tetracycline as a marker
Used. Aeromonas caviae AC004 fruit
The gene library prepared in Example 2 was used as the large library of Example 2.
As with the case of Enterobacter DH1, the trait was determined by the calcium chloride method.
After conversion, spread on LB medium containing tetracycline.
It was covered and incubated at 30 ° C. overnight. as a result,
10 FiveColonies resistant to about 4 tetracyclines
Got

【0035】得られたテトラサイクリンに耐性を示すそ
れぞれのコロニーをテトラサイクリンを含有するMM寒
天培地とテトラサイクリンを含有するMNP寒天培地と
につまようじで10000個レプリカした。テトラサイ
クリンを含有するMM寒天培地のプレートは、30℃で
3日間インキュベートした後4℃の冷蔵庫の中で保存し
た。一方、テトラサイクリンを含有するMNP寒天培地
のプレートは、30℃で5日間インキュベートした後、
前述のスダンブラック法により染色した。その結果、ス
ダンブラックにより青色に染色されるコロニーを3個得
た。さらに、実施例1と同様に位相差顕微鏡を用いて観
察し、ポリエステルの顆粒が蓄積していることを確認し
た。こうして、P(3HB−CO−3HHx)の合成遺
伝子を含む断片がクローニングされたコロニーを3個得
た。それらのうちの1個のコロニーを、以下AC118
株と呼ぶ。
Each of the obtained tetracycline-resistant colonies was replicated with a toothpick onto MM agar medium containing tetracycline and 10,000 MNP agar medium containing tetracycline. Plates of MM agar containing tetracycline were incubated at 30 ° C for 3 days and then stored in a refrigerator at 4 ° C. On the other hand, the plate of MNP agar medium containing tetracycline was incubated at 30 ° C. for 5 days, and
It was dyed by the above-mentioned Sudan Black method. As a result, 3 colonies stained blue with Sudan Black were obtained. Further, it was observed using a phase contrast microscope as in Example 1, and it was confirmed that polyester granules had accumulated. Thus, three colonies in which the fragment containing the P (3HB-CO-3HHx) synthetic gene was cloned were obtained. One colony of them was designated as AC118
Call it a stock.

【0036】アエロモナス キャビエ FA440、A
C004、AC118を10mlのLB培地(AC11
8はテトラサイクリンを含有したLB培地)の入った三
角フラスコ中30℃で24時間振盪培養した。その後、
それぞれの菌を集め、1mlの生理食塩水に懸濁したも
のを、100mlの、M9G(0.6%リン酸二ナトリ
ウム、0.3%リン酸一カリウム、0.05%塩化ナト
リウム、0.01%塩化アンモニウム、0.024%塩
化マグネシウム、0.001%塩化カルシウム、1%グ
ルコース、0.01%イーストエキス)培地に入れ、3
0℃で48時間振盪培養した。得られた培養液中1ml
を遠心分離して菌体を集め、位相差顕微鏡により、菌体
の蓄積状況を調べた。残り99mlより得られた菌を集
め、蒸留水で2回菌体を洗浄し、エタノールで1回洗浄
した後、菌体を集め、乾燥した後、乾燥菌体重量を測定
した。その後、クロロホルム15mlに乾燥菌体を懸濁
し50℃で2時間放置した。そして、ワットマンNo.
1の濾紙により濾過し、さらに、メンブランフィルター
(アドバンテック社製、PTFEタイプT050A04
7A)により濾過することにより、菌体残渣を取り除い
た。さらに、このクロロホルム溶液に40mlのメタノ
ールを添加し、ポリエステルを沈澱させた。沈澱物を遠
心分離し、上澄み液を除去した後、乾燥してポリエステ
ルを得た。
Aeromonas caviae FA440, A
C004 and AC118 were added to 10 ml of LB medium (AC11
8 was cultivated with shaking in an Erlenmeyer flask containing LB medium containing tetracycline) at 30 ° C. for 24 hours. afterwards,
Each bacterium was collected and suspended in 1 ml of physiological saline, and 100 ml of M9G (0.6% disodium phosphate, 0.3% monopotassium phosphate, 0.05% sodium chloride, 0. (01% ammonium chloride, 0.024% magnesium chloride, 0.001% calcium chloride, 1% glucose, 0.01% yeast extract)
Culture was carried out at 0 ° C. for 48 hours with shaking. 1 ml in the obtained culture solution
The cells were centrifuged to collect the cells, and the accumulation state of the cells was examined by a phase contrast microscope. Bacteria obtained from the remaining 99 ml were collected, washed twice with distilled water, washed once with ethanol, collected, dried and then weighed. Then, the dried cells were suspended in 15 ml of chloroform and left at 50 ° C. for 2 hours. And Whatman No.
Filter with the filter paper No. 1 and further use a membrane filter (manufactured by Advantech, PTFE type T050A04
The cell residue was removed by filtration through 7A). Furthermore, 40 ml of methanol was added to this chloroform solution to precipitate the polyester. The precipitate was centrifuged to remove the supernatant, and then dried to obtain polyester.

【0037】全ポリエステル重量を測定した後、得られ
たポリエステル5〜7mgをクロロホルム1mlに溶解
し、0.85mlのメタノールと0.15mlの濃硫酸
を添加して密栓し、100℃で140分間放置すること
により、ポリマーの分解物のメチルエステル体を得た。
これを、0℃の氷水で十分冷却し、硫酸アンモニウムで
飽和した蒸留水0.5mlを添加し激しく攪拌した。静
置して2層に分離させた後、下部の有機層を注意深く抽
出しその組成を分析した。分析には、キャピラリーガス
クロマトグラフィーを使用した。キャピラリーガスクロ
マトグラフは、HP5890II(ヒューレット パッカ
ード社製)を用いて行った。使用したカラムは、J&W
社製のヒューズド シリカ キャピラリーカラムDB−
5(カラム内径0.25mm、液膜厚0.25μm、カ
ラム長30m)である。また、温度は、初発温度60℃
で30分間行い、その後8℃/分の速度で昇温して、最
終温度240℃を3分間行った。得られた結果を表1
(上側)に示す。表1において、AC118のみが、グ
ルコースを唯一の炭素源としてP(3HB)を蓄積でき
た。さらに、セニア(Senior)らの方法(バイオケミカル
・ジャーナル(BiochemicalJournal),125巻,55
頁,1971年参照)に従って、β−ケトチオラーゼ活
性とアセトアセチルCoAリダクターゼ活性を測定した
結果、AC118株はFA440株に対してこれらの活
性がそれぞれ2倍、1.5倍上昇していた。従って、A
C118株にクローニングされたDNA断片には、3−
ヒドロキシブチレートと3−ヒドロキシヘキサノエート
により構成される共重合体の合成遺伝子、及び、β−ケ
トチオラーゼ遺伝子、及び、アセトアセチルCoAリダ
クターゼ遺伝子が存在しており、これらの遺伝子の発現
により対応する酵素活性が上昇したものと結論できる。
After measuring the total weight of the polyester, 5 to 7 mg of the obtained polyester was dissolved in 1 ml of chloroform, 0.85 ml of methanol and 0.15 ml of concentrated sulfuric acid were added, and the bottle was tightly sealed and left at 100 ° C. for 140 minutes. By doing so, a methyl ester form of a polymer decomposition product was obtained.
This was sufficiently cooled with ice water at 0 ° C., 0.5 ml of distilled water saturated with ammonium sulfate was added, and the mixture was vigorously stirred. After standing to separate into two layers, the lower organic layer was carefully extracted and its composition was analyzed. Capillary gas chromatography was used for the analysis. The capillary gas chromatograph was performed using HP5890II (manufactured by Hewlett Packard). The column used is J & W
Fused Silica Capillary Column DB-
5 (column inner diameter 0.25 mm, liquid film thickness 0.25 μm, column length 30 m). In addition, the temperature is the initial temperature 60 ℃
At 30 ° C. for 30 minutes, then heated at a rate of 8 ° C./minute, and a final temperature of 240 ° C. for 3 minutes. The results obtained are shown in Table 1.
(Upper). In Table 1, only AC118 was able to accumulate P (3HB) with glucose as the sole carbon source. In addition, the method of Senior et al. (Biochemical Journal, 125, 55
Page, 1971), the β-ketothiolase activity and the acetoacetyl CoA reductase activity were measured. As a result, the AC118 strain had 2-fold and 1.5-fold higher activities than the FA440 strain, respectively. Therefore, A
The DNA fragment cloned into the C118 strain contains 3-
There are a synthetic gene of a copolymer composed of hydroxybutyrate and 3-hydroxyhexanoate, a β-ketothiolase gene, and an acetoacetyl-CoA reductase gene, and the corresponding enzyme depending on the expression of these genes. It can be concluded that the activity was increased.

【0038】[0038]

【表1】 [Table 1]

【0039】実施例4 アエロモナス キャビエ FA440、AC004、A
C118を10mlのLB培地(AC118はテトラサ
イクリンを含有したLB培地)の入った三角フラスコ中
30℃で24時間振盪培養した。その後、それぞれの菌
を集菌して1mlの生理食塩水に懸濁したものを、10
0mlのMNP培地に入れ、30℃で48時間振盪培養
した。得られた培養液中1mlを遠心分離して菌体を集
め、位相差顕微鏡により、菌体の蓄積状況を調べた。残
り99mlより得られた菌を集め、実施例3と同様の方
法でポリエステルを精製し、分析した。得られた結果を
表1(下側)に示す。
Example 4 Aeromonas caviae FA440, AC004, A
C118 was shake-cultured for 24 hours at 30 ° C. in an Erlenmeyer flask containing 10 ml of LB medium (AC118 is LB medium containing tetracycline). After that, each of the bacteria was collected and suspended in 1 ml of physiological saline,
It was placed in 0 ml of MNP medium and cultured with shaking at 30 ° C. for 48 hours. 1 ml of the obtained culture solution was centrifuged to collect bacterial cells, and the accumulation status of the bacterial cells was examined by a phase contrast microscope. Bacteria obtained from the remaining 99 ml were collected, and the polyester was purified and analyzed in the same manner as in Example 3. The obtained results are shown in Table 1 (lower side).

【0040】親株であるFA440株では、ポリエステ
ル含量及びポリエステル収率が非常に低いのに対し、A
C118株では、ポリエステル含量が60%にも到達
し、ポリエステル収率も著しく改善された。そして、本
実験で得られたポリエステル含量は、アルカリゲネス
ユートロファスを用い、炭素源として炭素数が奇数個の
カルボン酸を与えてP(3HB−CO−3HV)を得る
方法よりも高い含量を得るものであるばかりか、非常に
安価な油脂類似物質を炭素源にするために、生産コスト
の面からも極めて優れた方法であることが判明した。
The FA440 strain, which is the parent strain, has a very low polyester content and polyester yield, whereas
In the C118 strain, the polyester content reached 60%, and the polyester yield was significantly improved. And, the polyester content obtained in this experiment is
Not only is a method using utrophus used to give a carboxylic acid having an odd number of carbon atoms as a carbon source to obtain P (3HB-CO-3HV), but a very inexpensive oil-like substance is used as carbon. It was proved to be an extremely excellent method from the viewpoint of production cost as well.

【0041】なお、本実施例で使用したアエロモナス
キャビエ FA440株は、工業技術院微生物工業技術
研究所(微工研)に平成3年6月11日付けで寄託され
ており、寄託番号は、微工研条寄第BP−3432号で
ある。また、本実施例で得られたアエロモナス キャビ
エ AC118株は、工業技術院生命工学工業技術研究
所(生命研)に平成6年2月2日付けで寄託されてお
り、寄託番号は、生命研条寄第BP−4544号であ
る。さらに、プラスミドpLA2917は、アメリカン
・タイプ・カルチャー・コレクション(ATCC)の寄
託番号37355としてそれぞれ分譲された。
The Aeromonas used in this Example
The caviae FA440 strain has been deposited with the Institute of Microbial Science and Technology of the Institute of Industrial Science (Microtechnical Lab) on June 11, 1991, and the deposit number is Micromachine Lab Article No. BP-3432. In addition, the Aeromonas caviae AC118 strain obtained in this example has been deposited at the Institute of Biotechnology, Institute of Industrial Science (Life Research Institute) on February 2, 1994, and the deposit number is the Life Science Article. It is No. BP-4544. In addition, plasmid pLA2917 was each deposited as American Type Culture Collection (ATCC) deposit number 37355.

【0042】[0042]

【発明の効果】本発明の形質転換体および本発明の製造
方法を用いることにより、3−ヒドロキシブチレートと
3−ヒドロキシヘキサノエートから構成される共重合体
を、安価な油脂や脂肪酸を原料に高収率で生産すること
ができる。
EFFECT OF THE INVENTION By using the transformant of the present invention and the production method of the present invention, a copolymer composed of 3-hydroxybutyrate and 3-hydroxyhexanoate can be used as a raw material from inexpensive oils and fats and fatty acids. It can be produced in high yield.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12R 1:01) (C12P 7/62 C12R 1:01) ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code Internal reference number FI technical display location C12R 1:01) (C12P 7/62 C12R 1:01)

Claims (5)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 3−ヒドロキシブチレートと3−ヒドロ
キシヘキサノエートから構成される共重合体の合成遺伝
子を含有するベクタープラスミドを宿主菌体内に移入し
て得られる形質転換体。
1. A transformant obtained by transferring into a host cell a vector plasmid containing a synthetic gene for a copolymer composed of 3-hydroxybutyrate and 3-hydroxyhexanoate.
【請求項2】 さらにβ−ケトチオラーゼ遺伝子および
/またはアセトアセチルCoAリダクターゼ遺伝子が組
み込まれたベクタープラスミドを宿主菌体内に移入して
得られる請求項1記載の形質転換体。
2. The transformant according to claim 1, which is obtained by transferring a vector plasmid into which a β-ketothiolase gene and / or an acetoacetyl CoA reductase gene has been incorporated into host cells.
【請求項3】 宿主菌がアエロモナス属の菌株であるこ
とを特徴とする請求項1または2に記載の形質転換体。
3. The transformant according to claim 1, wherein the host bacterium is a strain of the genus Aeromonas.
【請求項4】 ベクタープラスミドがpLA2917、
pLA2905、pLA2910、pLA2901、p
RK248、pRK290、pLAFR1、pVK10
0、pVK101、pVK102よりなる群から選択さ
れるものであることを特徴とする請求項1〜3のいずれ
か1項に記載の形質転換体。
4. The vector plasmid is pLA2917,
pLA2905, pLA2910, pLA2901, p
RK248, pRK290, pLAFR1, pVK10
The transformant according to any one of claims 1 to 3, which is selected from the group consisting of 0, pVK101, and pVK102.
【請求項5】 請求項1〜4のいずれか1項に記載した
形質転換体を培養することにより、3−ヒドロキシブチ
レートと3−ヒドロキシヘキサノエートから構成される
共重合体を蓄積させることを特徴とする共重合体の製造
方法。
5. Culturing the transformant according to any one of claims 1 to 4 to accumulate a copolymer composed of 3-hydroxybutyrate and 3-hydroxyhexanoate. A method for producing a copolymer characterized by the following.
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