JPH0616704B2 - Bacterial catalase resistant to fluoride ions and Micrococcus sp. KWI-5 strain - Google Patents

Bacterial catalase resistant to fluoride ions and Micrococcus sp. KWI-5 strain

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JPH0616704B2
JPH0616704B2 JP12388190A JP12388190A JPH0616704B2 JP H0616704 B2 JPH0616704 B2 JP H0616704B2 JP 12388190 A JP12388190 A JP 12388190A JP 12388190 A JP12388190 A JP 12388190A JP H0616704 B2 JPH0616704 B2 JP H0616704B2
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Description

【発明の詳細な説明】 (産業上の利用分野) 本発明は新規なフッ化物イオン耐性カタラーゼ及びそれ
を生産するミクロコッカス属に属する新菌株に関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a novel fluoride ion-resistant catalase and a new strain belonging to the genus Micrococcus that produces it.

(従来技術) 半導体プロセス等過酸化水素を含む排水の水処理分野、
カズノコの漂白に伴う残存過酸化水素の分野等の食品分
野においてカタラーゼは広く利用されている。カタラー
ゼは過酸化水素の分野を触媒する酵素であって、多くの
生物により生産されることが知られている。例えばウマ
(Deutsch、1952)、サッカロミセス セレ
ビシエ(Seahら、1973)、バチルス No.KU
1(Kuronoら、1973)、エスケリッチアコリ
(Claiborneら、1979)等が報告されてい
る。
(Prior Art) Water treatment field of wastewater containing hydrogen peroxide such as semiconductor process,
Catalase is widely used in the field of food such as residual hydrogen peroxide due to bleaching of Kazunoko. Catalase is an enzyme that catalyzes the field of hydrogen peroxide and is known to be produced by many organisms. For example, horses (Deutsch, 1952), Saccharomyces cerevisiae (Seeh et al., 1973), Bacillus No. KU.
1 (Kurono et al., 1973), Escherichia coli (Claiborne et al., 1979), and the like.

(発明が解決しようとする問題点) カタラーゼは一般にフッ化物イオン、シアンイオン、ア
ジ化ナトリウム、β−メルカプトエタノール等によって
阻害を受けることが知られている。水処理分野へのカタ
ラーゼの適用においては、排水に含まれるフッ化物イオ
ンに耐性なカタラーゼを使用することが求められてい
た。フッ化物イオンに耐性のあるカタラーゼとしてはB
acillus No.KU1が知られていたが作用至適
pHがアルカリのため、フッ化物イオンに耐性でかつ中
性で活性を有するカタラーゼを生産する菌株が求められ
ていた。
(Problems to be Solved by the Invention) It is known that catalase is generally inhibited by fluoride ion, cyanide ion, sodium azide, β-mercaptoethanol and the like. In the application of catalase in the field of water treatment, it has been required to use catalase resistant to fluoride ions contained in wastewater. B as a catalase resistant to fluoride ions
Acillus No. KU1 has been known, but since the optimum pH of action is alkaline, a strain producing a catalase which is resistant to fluoride ion and has neutral activity has been required.

(問題を解決するための手段) 本発明者らはフッ化物イオン耐性を有するカタラーゼを
生産する微生物を広く自然界より探索し、製紙工場排水
より単離したミクロコッカス sp.KWI−5菌株が前
述の要求を満たすカタラーゼを生産することを見いだし
本発明を完成した。
(Means for Solving the Problem) The present inventors extensively searched for catalase-producing microorganisms having fluoride ion resistance in nature, and isolated Micrococcus sp. The present invention was completed by finding that the KWI-5 strain produces catalase satisfying the above-mentioned requirements.

次に活性測定法、本発明のフッ化物イオン耐性カタラー
ゼの理化学的性質、本発明のミクロコッカスsp.KWI
−5菌の菌学的性質について述べる。
Next, an activity measuring method, physicochemical properties of the fluoride ion-resistant catalase of the present invention, and Micrococcus sp. KWI
-5 Describe the mycological properties of the bacterium.

(活性測定法) 過酸化水素350ppmを含むリン酸緩衝液(pH6.
8)1mlを1mlの酵素溶液と混合し、30℃で5分
間反応させた後、1mlの硫酸チタン溶液(0.8%硫
酸第2チタン硫酸溶液を含む20%硫酸溶液)を加えて
反応停止及び発色を行い、440nmでの吸光度を測定
する。この測定値を下記の式に代入して活性(Kat-f
値)を求める。(赤堀四朗ら著「酵素研究法」第2巻、
朝倉書店1956年発行、第324〜325頁) Kat-f=log(A/B)×C/D [min]-1[ml]-1 ただし、A:対照(カタラーゼを含まない)の吸光度 B:試料(カタラーゼを入れて反応させた)の吸光度 C:酵素溶液の希釈率 D:反応時間 本発明のフッ化物イオン耐性カタラーゼの理化学的性質
は次のとおりである。
(Activity measuring method) A phosphate buffer solution (pH 6.
8) 1 ml of enzyme solution was mixed with 1 ml of enzyme solution, reacted at 30 ° C. for 5 minutes, and then the reaction was stopped by adding 1 ml of titanium sulfate solution (20% sulfuric acid solution containing 0.8% sulfuric acid 2nd titanium sulfate solution). Then, color is developed, and the absorbance at 440 nm is measured. Substituting this measured value into the following formula, the activity (Kat-f
Value). (Vol. 2, "Enzyme Research Method" by Shiro Akahori,
Asakura Shoten, published in 1956, pages 324 to 325) Kat-f = log (A / B) × C / D [min] -1 [ml] -1 where A: absorbance of control (not containing catalase) B : Absorbance of sample (reacted with catalase) C: Dilution rate of enzyme solution D: Reaction time Physicochemical properties of the fluoride ion-resistant catalase of the present invention are as follows.

(理化学的性質) (1)作用及び基質特異性 過酸化水素に作用し、水と酵素に分解する。(Physical and chemical properties) (1) Action and substrate specificity It acts on hydrogen peroxide and decomposes into water and enzymes.

パーオキシダーゼ活性はない。There is no peroxidase activity.

(2)至適pH及び安定pH範囲 前記の活性測定法に基き、pHに対する影響を調べた。
第1図に活性の最大値を100とした各pHでの相対活
性を示した。至適pHはpH5.5〜11.0であるこ
とがわかる。
(2) Optimum pH and stable pH range The effect on pH was examined based on the above-mentioned activity measuring method.
FIG. 1 shows the relative activity at each pH when the maximum activity was 100. It can be seen that the optimum pH is pH 5.5 to 11.0.

次にpHの安定性について第2図に示した。酵素を各p
Hで30℃で1時間保持したのちpH6.8、30℃に
おいて測定した残存活性を、未処理の酵素活性を100
として示した。
Next, FIG. 2 shows the stability of pH. Enzyme for each p
After maintaining at 30 ° C. for 1 hour in H, the residual activity measured at 30 ° C. at pH 6.8 was measured by measuring the residual enzyme activity as 100%.
Indicated as.

第2図から、本発明のカタラーゼはpH5.5〜10で
安定である。なお用いた緩衝液は、pH4.5〜5.5
(50mM酢酸緩衝液)、pH5.5〜8.0(50m
Mリン酸緩衝液)、pH7.5〜9.0(50mMトリ
ス緩衝液)、pH9.0〜13.0(50mMグリシン
緩衝液)である。
From FIG. 2, the catalase of the present invention is stable at pH 5.5-10. The buffer solution used had a pH of 4.5 to 5.5.
(50 mM acetate buffer), pH 5.5-8.0 (50 m
M phosphate buffer), pH 7.5 to 9.0 (50 mM Tris buffer), pH 9.0 to 13.0 (50 mM glycine buffer).

(3)作用適温の範囲 前記の活性測定法に従い、各温度にて5分間酵素反応を
行なった。第3図は30℃における活性を100とした
ときの各温度における活性比を表わす。第3図から本酵
素の作用最適温度は30〜35℃であることがわかる。
また、至適温度の80%以上の活性を示す作用温度は、
20〜50℃程度であることがわかる。
(3) Range of suitable temperature of action According to the above-mentioned activity measuring method, enzyme reaction was carried out at each temperature for 5 minutes. FIG. 3 shows the activity ratio at each temperature when the activity at 30 ° C. is 100. It can be seen from FIG. 3 that the optimum action temperature of this enzyme is 30 to 35 ° C.
Further, the working temperature at which the activity is 80% or more of the optimum temperature is
It can be seen that the temperature is about 20 to 50 ° C.

(4)熱安定性 pH6.8で20分間各温度にて熱処理後、残存活性を
調べた。未処理の酵素活性を100とし、その残存活性
を第4図に示した。第4図から本酵素は10℃〜50℃
で安定であることがわかる。
(4) Thermal stability After heat treatment at pH 6.8 for 20 minutes at each temperature, the residual activity was examined. The untreated enzyme activity was set to 100 and its residual activity is shown in FIG. From Fig. 4, this enzyme is 10 ℃ ~ 50 ℃
It turns out that it is stable at.

(5)失活の条件 第2図に示したようにpH4.0において、30℃1時
間処理すると本発明のカタラーゼは完全に失活する。ま
た第3図に示すようにpH6.8において、70℃20
分の処理にて完全に失活する。
(5) Deactivation condition As shown in Fig. 2, the catalase of the present invention is completely inactivated when treated at pH 4.0 for 1 hour at 30 ° C. As shown in FIG. 3, at pH 6.8, 70 ° C. 20
It is completely deactivated in minutes.

(6)阻害 第1表に示す薬品の存在下にカタラーゼ活性を測定し、
非存在下の活性を100として、残存活性を百分率で示
した。表からわかるように本酵素はフッ化物イオンに対
し著しい耐性を有する。
(6) Inhibition Catalase activity was measured in the presence of the drugs shown in Table 1,
The activity in the absence was defined as 100, and the residual activity was shown as a percentage. As can be seen from the table, this enzyme is extremely resistant to fluoride ions.

(7)等電点 pH3.5〜9.5のグラジエントポリアクリルアミド
ゲルを用いて等電点電気泳動を行なった結果、等電点は
pH4.4であった。なお、標準物質としてBIO R
AD社のIEFスタンダードを用いた。
(7) Isoelectric point As a result of performing isoelectric focusing using a gradient polyacrylamide gel having a pH of 3.5 to 9.5, the isoelectric point was pH 4.4. As a standard substance, BIOR
AD IEF standard was used.

(8)分子量 Pharmacia社のスーパーローズ10を用いたゲ
ルろ過により、分子量210,000を得た。なお分子
量マーカーとしてチログロブリン(分子量664,00
0)、アポフェリチン(分子量446,000)、β−
アミラーゼ(分子量200,000)、γ−グロブリン
(分子量150,000)、ウシ血清アルブミン(分子
量67,000)、オバルブミン(分子量45,00
0)、シトクロームC(分子量12,400)を用い
た。
(8) Molecular weight A molecular weight of 210,000 was obtained by gel filtration using Super Rose 10 manufactured by Pharmacia. As a molecular weight marker, thyroglobulin (molecular weight 664,00
0), apoferritin (molecular weight 446,000), β-
Amylase (molecular weight 200,000), γ-globulin (molecular weight 150,000), bovine serum albumin (molecular weight 67,000), ovalbumin (molecular weight 45,000)
0) and cytochrome C (molecular weight 12,400) were used.

(9)サブユニット構造 SDS−ポリアクリルアミド電気泳動の結果、本発明の
カタラーゼ1分子は分子量58,000のサブユニット
4個から構成されていた。なお分子量マーカーとしてウ
シ血清アルブミン(分子量67,000)、オバルブミ
ン(分子量45,000)、α−キモトリプシノーゲン
(分子量25,700)、リボヌクレアーゼ(分子量1
4,700)、シトクロームC(分子量12,400)
を用いた。
(9) Subunit structure As a result of SDS-polyacrylamide electrophoresis, one catalase molecule of the present invention was composed of four subunits having a molecular weight of 58,000. As the molecular weight markers, bovine serum albumin (molecular weight 67,000), ovalbumin (molecular weight 45,000), α-chymotrypsinogen (molecular weight 25,700), ribonuclease (molecular weight 1)
4,700), cytochrome C (molecular weight 12,400)
Was used.

(10)比活性 精製された本酵素の比活性は、4,000Kat-f/m
g蛋白である。
(10) Specific activity The specific activity of the purified enzyme is 4,000 Kat-f / m.
g protein.

酵素の精製は、培養終了後の培養液に溶菌剤を加えて抽
出した後、当分野公知の分離精製手段、例えばイオン交
換体、ゲルろ過材等を用いて精製することができる。本
酵素の製造法については後記実施例で具体的に説明す
る。
The enzyme can be purified by adding a lysing agent to the culture broth after the completion of culturing and extracting, and then using an isolation / purification means known in the art, for example, an ion exchanger or a gel filtration material. The method for producing this enzyme will be specifically described in Examples below.

上記各特性を示す本発明により得られるカタラーゼと従
来公知のカタラーゼとの比較を、第2表に示す。
Table 2 shows a comparison between the catalase obtained according to the present invention having the above-mentioned properties and the conventionally known catalase.

本発明のカタラーゼを生産するにはミクロコッカス属に
属するミクロコッカス sp.KWI−5菌株を利用する
ことができる。
To produce the catalase of the present invention, Micrococcus sp. Belonging to the genus Micrococcus is used. The KWI-5 strain can be used.

この菌株の菌学的性質を以下に示す。なお、菌学的性質
の試験及び分類方法は下記の文献に基づいて行なった。
The mycological properties of this strain are shown below. The test and classification method of the mycological properties were performed based on the following documents.

長谷部武治ら著、学会出版センター発行「<改訂版>微
生物の同定」(1984)及びバージェーズ・マニュア
ル・オブ・システマチィック・バクテリオロジー(Be
rgey’S Manual of Systemat
ic Bacteriology)(1984) (1)形態 細胞の形及び大きさ 0.8〜1.2μmの球菌で鞭毛を持たない。
Takeharu Hasebe et al., “<Revised Edition> Identification of Microorganisms” (1984) published by the Society Publishing Center and Burgers Manual of Systematic Bacteriology (Be).
rkey'S Manual of System
ic Bacteriology (1984) (1) Morphology Cell shape and size Cocci having a size of 0.8 to 1.2 μm and no flagella.

運動性:なし。Motility: None.

胞子:なし。Spores: None.

グラム染色は陽性である。Gram stain is positive.

抗酸性は陰性である。The acid resistance is negative.

(2)生育状態(培地pH:6.8) 肉汁寒天平板培養 円形、偏平状または隆起状で縁はなめらかで光沢があ
る。培養時間の経過につれて黄色を呈する。
(2) Growth state (medium pH: 6.8) Meat broth agar plate culture Round, flat or ridged with smooth edges and gloss. It turns yellow as the culture time elapses.

肉汁寒天斜面培養 拡帯状に生育し、縁はなめらかで光沢がある。培養時間
の経過につれて黄色を呈する。培地には色素を分必しな
い。
Meat broth agar slope culture It grows in a wide band and the edges are smooth and shiny. It turns yellow as the culture time elapses. No pigment is required in the medium.

肉汁液体培養 生育良好でうすい黄色を呈する。Broth liquid culture Good growth and light yellow color.

リトマスミルク アルカリ性を呈する。Litmus milk Alkaline.

(3)生理学的性質 硝酸塩の還元:陽性。(3) Physiological properties Reduction of nitrate: Positive.

脱窒反応:陰性 MRテスト:陰性。Denitrification reaction: Negative MR test: Negative.

VPテスト:陰性。VP test: negative.

インドールの生成成:陰性。Formation of indole: negative.

硫化水素の生成:陰性。Hydrogen sulfide formation: Negative.

デンプンの加水分解:陰性。Starch hydrolysis: negative.

クエン酸の利用 Koserの培地:利用する。Utilization of citric acid Koser's medium: used.

Christensenの培地:利用する。Christensen's medium: used.

Simonsの培地:利用する。Simon's Medium: Used.

無機窒素源の利用 硝酸塩:陰性。Use of inorganic nitrogen source Nitrate: Negative.

アンモニウム塩:陽性。Ammonium salt: Positive.

色素の生成:陰性。Dye formation: negative.

ウレアーゼ:弱い陽性。Urease: Weakly positive.

オキシダーゼ:陰性。Oxidase: negative.

カタラーゼ:陽性。Catalase: positive.

生育の範囲 pH:6〜11で生育。6〜8で最適。Range of growth pH: Grow at 6-11. 6-8 is the best.

温度:15−30℃で生育。30℃で最適。Temperature: Grow at 15-30 ° C. Best at 30 ° C.

酸素に対する態度:好気性。Attitude toward oxygen: aerobic.

O−Fテスト(Hugh Leifson法によ
る):O。
OF test (by Hugh Leifson method): O.

糖類から酸及びガスの生成の有無 D−グルコース、D−フルクトース、D−マルトース、
グリセロールを利用し、酸を生成するが、ガスの発生は
認められない。D−アラビノース、D−キシロース、D
−マンノース、D−ガラクトース、D−トレハロース、
D−シュークロース、D−ラクトース、D−ソルビトー
ル、D−マンニトール、D−イノシトールおよびデンプ
ンは利用しない。
Presence or absence of generation of acid and gas from saccharides D-glucose, D-fructose, D-maltose,
Glycerol is used to generate an acid, but no gas is observed. D-arabinose, D-xylose, D
-Mannose, D-galactose, D-trehalose,
D-sucrose, D-lactose, D-sorbitol, D-mannitol, D-inositol and starch are not used.

(4)その他の性質 塩化ナトリウムの耐性:10%塩化ナトリウム存在下
でも生育する。
(4) Other properties Sodium chloride tolerance: Grows in the presence of 10% sodium chloride.

ゼラチンの液化:陽性。Liquefaction of gelatin: Positive.

Tweenの分解:Tween40、60及び80を
分解する。
Tween degradation: Tween 40, 60 and 80 are degraded.

チロシン分解:陽性。Tyrosine degradation: positive.

カゼイン分解:陽性。Casein degradation: Positive.

上記の菌学的性質から前記した文献の分類方法に従つて
ミクロコッカス属の公知の菌種と比較すると、本発明の
菌株はミクロコッカスバリアンスと類似している。しか
しながらグリセロールの利用(ミクロコッカスバリアン
スは利用しない)、食塩の耐性(ミクロコッカスバリア
ンスは10%の塩化ナトリウムに耐性を持たない)とい
う点で明らかに相違する。また本発明の菌株はミクロコ
ッカスロゼウスともその生理学的性質がよく似ている
が、コロニーの色(ミクロコッカスロゼウスは赤色に対
し、本菌株は黄色)、ゼラチンの分解(ミクロコッカス
ロゼウスはしない)、クエン酸の利用(ミクロコッカス
ロゼウスはSimons培地で増殖しない)という点で
明らかに異なる。
The strains of the present invention are similar to Micrococcus variance when compared with the known strains of the genus Micrococcus according to the classification method of the above-mentioned literature based on the above-mentioned mycological properties. However, there is a clear difference in the use of glycerol (without Micrococcus variance) and the tolerance of salt (Micrococcus variance is not resistant to 10% sodium chloride). In addition, the strain of the present invention has a physiological property very similar to that of Micrococcus roseus, but the color of the colony (Micrococcus roseus is red, whereas this strain is yellow), gelatin degradation (Micrococcus roseus is Not) and the use of citric acid (Micrococcus roseus does not grow in Simons medium) is clearly different.

以上の通り、本菌株は公知の菌株とは区別されるため、
ミクロコッカス属に属する新菌株と判断し、ミクロコッ
カスsp.KWI−5と命名した。本菌株は、平成2年
2月6日に通商産業省工業技術院微生物工業技術研究所
に寄託した。
As described above, since this strain is distinguished from known strains,
It was determined to be a new strain belonging to the genus Micrococcus, and Micrococcus sp. It was named KWI-5. This strain was deposited on February 6, 1990 at the Institute for Microbial Technology, Ministry of International Trade and Industry, Institute of Industrial Technology.

微生物受託番号は、微工研菌寄第11258号である。The microorganism accession number is Microbiology Research Institute No. 11258.

(作用) 本発明のフッ化物イオン耐性カタラーゼは10mMのフ
ッ化物イオン存在下でも活性があり、しかも広範囲のp
Hで作用する。従ってフッ化物イオンを含む排水中で過
酸化水素を分解することができる。また、本発明のミク
ロコッカスsP.KWI−5菌を用いて、本発明のフッ化
物イオン耐性カタラーゼを生産することができる。
(Function) The fluoride ion-resistant catalase of the present invention is active even in the presence of 10 mM fluoride ion, and has a wide range of p
Acts on H. Therefore, hydrogen peroxide can be decomposed in waste water containing fluoride ions. In addition, the Micrococcus sP. The KWI-5 bacterium can be used to produce the fluoride ion-resistant catalase of the present invention.

フッ化物イオン耐性カタラーゼを生産するための培養条
件は、次の通りである。まず培地としては炭素源、窒素
源、無機塩等、微生物の生育に必要な成分を含むものを
用いる。炭素源としては、グルコース、オレイン酸、リ
ンゴ酸、グリセロール等が使用でき、窒素源としては魚
肉エキス、ペプトン、カザミノ酸、コーンスチープリカ
ー、大豆粉等、無機塩としては、リン酸二水素カリウ
ム、硫酸マグネシウム、塩化第二鉄等を用いる。培地の
pHは6.8付近にすることが望ましい。
The culture conditions for producing fluoride ion-resistant catalase are as follows. First, as the medium, a medium containing components necessary for the growth of microorganisms such as a carbon source, a nitrogen source, and an inorganic salt is used. As the carbon source, glucose, oleic acid, malic acid, glycerol and the like can be used, as the nitrogen source, fish meat extract, peptone, casamino acid, corn steep liquor, soybean powder and the like, as the inorganic salt, potassium dihydrogen phosphate, Magnesium sulfate, ferric chloride, etc. are used. It is desirable that the pH of the medium is around 6.8.

上記の培地で30℃で本菌株を好気的に培養すれば、培
養開始後約24時間でカタラーゼの生産量が最大とな
る。培養温度が高いと、例えば37℃では生産量が30
℃の60%になり、また温度が低くてもその生産量が低
下する。
When this strain is cultivated aerobically in the above medium at 30 ° C., the production of catalase becomes maximum about 24 hours after the start of culturing. When the culture temperature is high, for example, the production amount is 30 at 37 ° C.
It becomes 60% of ℃, and the production amount decreases even if the temperature is low.

このようにして得られた培養液は、溶菌酵素、核酸分解
酵素、有機溶媒などで処理して菌体を破壊した後、遠心
分離などで固形分を分離して粗酵素液とすることができ
る。粗酵素液は、限外ろ過、ゲルろ過、イオン交換、電
気泳動などの公知の手段によって精製し、精製酵素を得
ることができる。
The culture solution thus obtained can be treated with a lytic enzyme, a nucleolytic enzyme, an organic solvent or the like to destroy the cells, and then the solid content can be separated by centrifugation or the like to obtain a crude enzyme solution. . The crude enzyme solution can be purified by a known means such as ultrafiltration, gel filtration, ion exchange, or electrophoresis to obtain a purified enzyme.

(実施例) 実施例1 グルコース2%、ポリペポプトン1.6%、酵母エキス
0.4%よりなる滅菌された液体培地(pH6.8)1
00mlを坂口フラスコに入れ、ミクロコッカスsp.
KWI−5を接種し、ロータリーシェイカーにて30℃
で培養した。この培養液を溶菌酵素、核酸分解酵素、有
機溶媒で処理後、遠心分離して固形分を除き、粗酵素液
を得た。カタラーゼ活性は400Kat-f/mgであっ
た。
Example 1 Sterile liquid medium (pH 6.8) 1 consisting of 2% glucose, 1.6% polypeptone and 0.4% yeast extract 1
00 ml was placed in a Sakaguchi flask, and Micrococcus sp.
Inoculated with KWI-5, 30 ° C on rotary shaker
It was cultured in. This culture solution was treated with a lytic enzyme, a nucleolytic enzyme, and an organic solvent, and then centrifuged to remove solids to obtain a crude enzyme solution. The catalase activity was 400 Kat-f / mg.

実施例2 実施例1の粗酵素液20mlを、分取用液体クロマトグ
ラフィーにてゲルろ過(カラムは東ソーKK、TSKg
elG3000SW)分画した。得られた酵素画分を
0.05mMリン酸緩衝液中で24時間透析後、分取用
液体クロマトグラフィーにてイオン交換(カラムは東ソ
ーKK、TSKgelDEAE5PW)分画した。こう
して得られた酵素はポリアクリルアミド電気泳動におい
て単一バンドを示した。なお、比活性は4,000Kat
-f/mg蛋白であった。
Example 2 20 ml of the crude enzyme solution of Example 1 was subjected to gel filtration by preparative liquid chromatography (column: Tosoh KK, TSKg.
(elG3000SW) was fractionated. The obtained enzyme fraction was dialyzed in 0.05 mM phosphate buffer for 24 hours, and then subjected to ion exchange (column: Tosoh KK, TSKgel DEAE5PW) by fractionation liquid chromatography. The enzyme thus obtained showed a single band on polyacrylamide gel electrophoresis. The specific activity is 4,000 Kat
-f / mg protein.

(効果) 本発明によれば、ミクロコッカスsp.KWI−5菌株
を培養し、その培養液からフッ化物イオン耐性カタラー
ゼを得ることができる。このカタラーゼはフッ化物イオ
ンに対する優れた耐性を有しているので、半導体工業を
はじめとする過酸化水素を含む排水の水処理に広く利用
することができる。
(Effect) According to the present invention, Micrococcus sp. The KWI-5 strain is cultured, and fluoride ion-resistant catalase can be obtained from the culture solution. Since this catalase has excellent resistance to fluoride ions, it can be widely used for water treatment of wastewater containing hydrogen peroxide, such as in the semiconductor industry.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

第1図は、本発明の酵素の至適pHを表わし、第2図は
本発明の酵素の安定pH範囲を表わす。 第3図は、本発明の酵素の作用適温の範囲を表わし、第
4図は、本発明の酵素の熱安定性を表わす。
FIG. 1 shows the optimum pH of the enzyme of the present invention, and FIG. 2 shows the stable pH range of the enzyme of the present invention. FIG. 3 shows the optimum temperature range for the action of the enzyme of the present invention, and FIG. 4 shows the thermostability of the enzyme of the present invention.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12R 1:265) ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 5 Identification code Office reference number FI technical display location C12R 1: 265)

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】下記の理化学的性質を有するフッ化物イオ
ンに耐性な細菌カタラーゼ。 作用及び基質特異性 過酸化水素に作用し、水と酸素に分解する反応を触媒す
る。 至適pH及び安定pH範囲 至適pHは5.5〜11.0、安定pHは5.0〜10
である。 作用適温の範囲 至適温度は30〜35℃である。 阻害 アジ化ナトリウム(1mM)で著しい阻害を受ける。フ
ッ化カリウム、ヒドラジン、β−メルカプトエタノー
ル、エチレンジアミン四酢酸ナトリウム(各1mM)で
は阻害されない。 分子量 SDSポリアクリルアミドゲル電気泳動によると本酵素
は分子量58,000のサブユニット4個からなり、ゲルろ過
法による分子量は210,000である。 等電点 等電点電気泳動による等電点は、pH4.4である。 比活性 比活性は4,000Kat-f/mg蛋白である。
1. A bacterial catalase resistant to fluoride ions having the following physicochemical properties. Action and substrate specificity It acts on hydrogen peroxide and catalyzes a reaction that decomposes into water and oxygen. Optimal pH and stable pH range Optimal pH is 5.5 to 11.0, stable pH is 5.0 to 10
Is. Range of optimum temperature for action The optimum temperature is 30 to 35 ° C. Inhibition Sodium azide (1 mM) causes significant inhibition. It is not inhibited by potassium fluoride, hydrazine, β-mercaptoethanol, sodium ethylenediaminetetraacetate (1 mM each). Molecular weight According to SDS polyacrylamide gel electrophoresis, this enzyme consists of 4 subunits with a molecular weight of 58,000, and the molecular weight by gel filtration method is 210,000. Isoelectric point The isoelectric point by isoelectric focusing is pH 4.4. Specific activity Specific activity is 4,000 Kat-f / mg protein.
【請求項2】ミクロコッカス属に属し、請求項(1)記
載のフッ化物イオン耐性カタラーゼ生産能を有するミク
ロコッカスsp.KWI−5菌株。
2. Micrococcus sp. Which belongs to the genus Micrococcus and has the ability to produce a fluoride ion-resistant catalase according to claim 1. KWI-5 strain.
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