JPH03503054A - vaccine - Google Patents
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.
Description
【発明の詳細な説明】 −2−ツー二L−2− ■H 本発明は、寄生線虫類の種、例えばトリキネラ属、アンキロストマ属、円虫属、 毛様線虫属、針虫属、オステルタジア属、烟虫属、トキサスカリス属、ランシナ リア属、鞭虫属、ジロフィラリア属、トキソカラ属、ネカトール属、撓虫属、ス トロンギロイデス属および糸状主属、特に毛様線虫属および針虫属の種による感 染に対して宿主に防御免疫を誘導する抗原の同定に関するものである。このよう な種の例には、旋毛虫、イヌ鉤虫、ストロンギルスブルガリス、コルブリフォル ミス毛様線虫、捻転毛様線虫、オステルタジアオステルタジ、ブタ畑虫、ライオ ントキサスカリス、狭頭鉤虫、トリクリスプルビス、イヌ糸状虫、トキソカラ種 の幼虫、アメリカ鉤虫、ズビニ鉤虫、回虫、ヒト駆虫、焼去、糞線虫およびバン クロフト糸状虫、特にコルブリフォルミス毛様線虫および捻転毛様線虫が含まれ る。[Detailed description of the invention] -2-two two L-2- ■H The present invention relates to parasitic nematode species, such as Trichinella, Ankylostoma, Strongyle, Nematode, Nematoda, Ostertasia, Trichophyton, Toxascaris, Lancinnata Genus Lia, Trichuris, Dirofilaria, Toxocara, Necator, Streptococcus, Sensitivity caused by species of the genus Strongyloides and the filamentous genera, especially the genus Tricholate and nematode. This study concerns the identification of antigens that induce protective immunity in the host against infectious diseases. like this Examples of common species include Trichinella, hookworm, Strongylus vulgaris, and Colubrifol. Mischilioid nematode, Torillus nematode, Ostertasia ostertagi, Pig field worm, Lyo Toxocara spp., Toxocara sp. larvae, American hookworm, Zubini hookworm, roundworm, human deworming, incineration, Strongyloides and vane Includes croft threadworms, particularly Colubliformis trichophytes and Torillus tricholates. Ru.
本発明はまた、これらの抗原をコードするヌクレオチド配列並びにこのようなヌ クレオチド配列を含有する組換え体DNA分子およびこれらのヌクレオチド配列 を発現する宿主細胞にも関する。The invention also provides nucleotide sequences encoding these antigens as well as Recombinant DNA molecules containing nucleotide sequences and their nucleotide sequences It also relates to host cells expressing the .
本発明は更に、本発明の抗原、ヌクレオチド配列、組換え体DNA分子および宿 主の作成方法に関するものである。The invention further provides antigens, nucleotide sequences, recombinant DNA molecules and hosts of the invention. It concerns the method of creation of the Lord.
本発明は本発明の抗原に対して生じる抗体およびこれら抗体と同様に作用する化 合物に関するものである。The present invention provides antibodies raised against the antigens of the present invention and antibodies that act similarly to these antibodies. It is related to compounds.
更に、本発明は寄生線虫、例えばトリキネラ属、アンキロストマ属、円虫属、毛 様線虫属、針虫属、オステルタジア属、姻虫、トキサスカリス属、ランシナリア 属、鞭虫属、ジロフイラリア属、トキソカラ属、ネカトール属、焼去属、ストロ ンギロイデス属および糸状主属、特に毛様線虫属および針虫属の種による感染に 対して防御免疫を誘導するワクチンに関する。このような種の例には、ヒトの旋 毛土着しくはイヌ鉤虫、ウマのストロンギルスブルガリス、ヒツジおよびヤギの コルブリフォルミス毛様線虫、ヒツジおよびヤギの捻転毛様線虫、ウシのオステ ルタジアオステルタジ、ブタのブタ畑土着しくは旋毛虫、ネコのライオントキサ スカリス若しくは狭頭鉤虫、イヌのイヌ鉤虫若しくはトリクリスプルビス、イヌ のイヌ糸状虫またはヒトのトキソカラ種の幼虫或はアメリカ鉤虫、スビニ鉤虫、 回虫、ヒト駆虫、焼土、糞線虫またはバンクロフト糸状虫による感染、特にコル ブリフォルミス毛様線虫または捻転毛様線虫が含まれる。Furthermore, the present invention provides for parasitic nematodes, such as Trichinella sp., Ankylostoma sp., Strongylus sp. genus Nematoda, genus Nematode, genus Ostertagia, genus Toxacaris, genus Lancinaria Genus, Trichuris, Dilophyllaria, Toxocara, Necator, Burning, Stro Infections by species of the genus Ngilloides and the filamentous genera, especially the genera Tricholate and nematode The present invention relates to a vaccine that induces protective immunity against. Examples of such species include the human indigenous hairworms, dog hookworm, horse strongylus vulgaris, sheep and goats; Colubliformis tricholate nematode, ovine and caprine tricholate nematode, bovine ostele Rutasia osteltaji, pig field indigenous or trichinella, cat liontoxa Scalis or Bacillus hookworm, dog hookworm or Trichuris purvis, dog larvae of the dog heartworm or human Toxocara spp. Infections with roundworms, human deworming, baked earth, Strongyloides or Bancroft heartworms, especially Col. Includes Buriformis tricholate nematode or Torillus tricholate nematode.
l二」し」L−逝 キューティクルで覆われた長くて紡錘状または袋様体を有する無節の円筒形状虫 である線虫(nema−系; oides @似する)は天然の、生息土壌、 水および植物の殆ど至る所に所在しており、そして広範囲の動物および植物の寄 生虫疾病に太き(係わっている。L-died Segmentless cylindrical insect with a long, spindle-shaped or pouch-like body covered with a cuticle Nematodes (nema-series; similar to oides) are naturally occurring in the soil where they live, It is almost ubiquitous in water and plants, and is host to a wide range of animals and plants. It is commonly associated with insect diseases.
哺乳動物の線虫寄生虫は線形動物門に属する。線虫に鉤虫(例えば、アメリカ鉤 虫およびズビニ鉤虫)、回虫(例えば、普通の回虫)、砂土(例えば、ヒト駆虫 )および焼虫または線状虫(例えば、焼土)並びに糞線虫、旋毛虫およびフィラ リア虫、即ちバンクロフト糸状虫が含まれる。他の重要な線虫寄生虫には、イヌ 鉤虫(ヒトの感染)、ストロンギルスブルガリス(ウマの感染)、コルブリフォ ルミス毛様線虫、オステルタジアサーカムシンクテ(ヒツジおよびヤギの感染) 、捻転毛様線虫(ヒツジおよびヤギの感染)、オステルタジアオステルタジ、ヘ モンカスブラセイ(ウシの感染)、ブタ培土(ブタのを染)、ライオントキサカ リスまたは狭頭鉤虫(イヌの感染)、トキソカラ種(ヒ1−の循環系感染)およ びイヌ糸状虫(ネコおよびイヌの循環系感染)が含まれる。Nematode parasites of mammals belong to the phylum Nematoda. Nematodes and hookworms (e.g. American hookworm) worms and hookworms), roundworms (e.g., common roundworms), sandy soils (e.g., human dewormers) ) and nematodes or nematodes (e.g. nematodes) and strongyloids, trichinella and phila Includes ria worms, or Bancroft heartworms. Other important nematode parasites include canine Hookworm (human infection), Strongylus vulgaris (horse infection), Colublipho Lumis trichophytes, Ostertadia circumcinctae (infection of sheep and goats) , Nematode Tortis (infection of sheep and goats), Ostertasia ostertagi, Hae Moncus bullasei (infection of cattle), pig soil (dyeing pigs), lion crested crest Squirrel or pinnacephalic hookworm (infection of dogs), Toxocara species (circulatory system infection of humans) and and heartworm (a circulatory system infection of cats and dogs).
症状がないときでさえ、寄生虫感染は、例えば下記の多くの理由から宿主動物に 有害である。即ち、これらの寄生虫は宿主から食物を奪い、器官を傷つけそして 管をふさぎ、宿主に毒性の物質を産生ずる可能性があり、そして他の生物への侵 入口を提供する。他の場合には、宿主が食物用に育成される種であることもあり 、そして食することによって寄生虫が運ばれて食した動物を感染させることがあ るからである。このような寄生虫が発見された場合には、これら寄生虫はできる だけ早(除去することが非常に望ましい。Even when there are no symptoms, parasitic infections can persist in host animals for many reasons, including: Harmful. That is, these parasites deprive the host of food, damage organs, and can block ducts, produce substances toxic to the host, and invade other organisms. Provide an entrance. In other cases, the host may be a species grown for food. , and eating them can carry parasites and infect the animals that eat them. This is because that. If such parasites are discovered, these parasites can It is highly desirable to remove it as soon as possible.
より一般的には、このような感染には症状がない。哺乳動物の嬬虫感染、特に寄 生線虫による感染には、特に家畜ペット、例えばヒツジ、ウシ、ウマ、ブタ、ヤ ギ、イヌ、ネコおよびトリ、殊に家禽の大きな経済的損失の源である(CSIR O/BAE報告−「農業分野における社会−経済発展および傾向:将来の研究の 展望」参照)、これらの動物はこのような感染をコントロールしておくために駆 虫薬化学品で定期的に処置しなければならない。そうしなければ、このような疾 病によって貧血、下痢、脱水1食欲不振を生じ、そして更に死に至ることさえあ る。More commonly, such infections have no symptoms. Mammal infections, especially parasitic Infection with live nematodes is particularly important for domestic pets, such as sheep, cows, horses, pigs, and goats. Horses, dogs, cats and birds, especially poultry, are a source of major economic losses (CSIR O/BAE Report - “Socio-economic developments and trends in the agricultural sector: Future research Perspectives), these animals must be driven to keep these infections under control. Must be treated regularly with insecticide chemicals. Otherwise, diseases like this The disease can cause anemia, diarrhea, dehydration, loss of appetite, and even death. Ru.
畑土感染を抑制するために現在利用可能な唯一の手段は駆虫薬化学品を使用する ことであるが、これらの化学品は処置時に存在する虫に対してしか有効でない。The only means currently available to control soil infections is through the use of anthelmintic chemicals. However, these chemicals are only effective against insects that are present at the time of treatment.
それ故、動物は常に感染にさらされているので継続して処置しなければならない 0例えば、ジエチルカルバマシンによる駆虫薬処置は、イヌ糸状虫を抑制するた めに1年の殆ど毎日または1日置きに実施する必要がある。これは高価で且つ労 働集約的な方法である。駆虫薬化学品の広範囲な使用によって、寄生虫は耐性を 現わすので新規で更に強力なりラスの化学品を開発しなければならない、別の方 法が明らかに望ましい。Therefore, animals are constantly exposed to infection and must be treated on an ongoing basis. 0 For example, anthelmintic treatment with diethylcarbamacine is effective for controlling dog heartworms. Therefore, it is necessary to perform it almost every day of the year or every other day. This is expensive and labor intensive. It is a labor intensive method. With the widespread use of anthelmintic chemicals, parasites have become resistant. As a result, new and more powerful chemical products must be developed. Law is clearly preferable.
寄生線虫に対するワクチンの開発によって畑土感染の予防および治療のための化 学品処置に固有の欠点の多くが克服されるであろう。ワクチンによる防御は確実 に長期間持続し、ワクチン投与された動物だけが影響を受け、そして毒性の問題 や残留物の持続は最も小さくなるかまたは避けられよう、従って、寄生線虫を使 用して上記のようなワクチンを開発する試みが幾つか報告されている。残念なこ とには、それらの試みは限られた成功しか得られず、そして材料の入手可能性お よびワクチンの安定性のようなフォクターによってそれら試みの大規模な使用が 妨げられている。Development of vaccines against parasitic nematodes for the prevention and treatment of field soil infections Many of the shortcomings inherent in handling supplies would be overcome. Protection from vaccines is certain persist for long periods of time, affect only vaccinated animals, and cause toxicity problems. Persistence of nematodes and residues will be minimized or avoided; therefore, using parasitic nematodes Several attempts have been reported to develop vaccines such as those described above. What a shame However, these attempts have met with limited success, and material availability and The large-scale use of these efforts by Foctor such as vaccine stability and hindered.
J、に、ディニーン(Dineen) (1977)が記載した上記のような1 つの試みは照射した幼虫ワクチンの使用に係わるものである。このような他の試 みと同様に、この方法の有用性は、生存線虫を長期間維持する必要性があるため に制限される。1 as described above by Dineen (1977) in J. One attempt involves the use of irradiated larval vaccines. Other trials like this Similar to the above, the utility of this method is due to the need to maintain viable nematodes for long periods of time. limited to.
死滅ワクチン製剤が良好な駆虫薬防御をもたらし得ないのは多数のファクターに よるものと考えられている。例えば、J、T。Many factors prevent killed vaccine formulations from providing good anthelmintic protection. It is thought that it depends on the For example, J, T.
袴、ネイルソン(Neilson) (1975)は、寄生線虫が宿主の免疫系 を免疫抑制するかまたは免疫調節する産生物を分泌できるメカニし且つ宿主が他 の感染にかかり易くなると考えている。デイニーンおよびワグランド(Wagl and) (1982)は、免疫抑制物または免疫調節物が死滅ワクチンに使用 される寄生線虫の粗製調製物中に存在すると考えている。これらの総説論文で示 唆された第2の問題は、寄生線虫がそれらの抗原プロフィールを宿主のプロフィ ールに似たものに変え、その結果、天然の感染では、活力のある免疫学的反応が 防御的寄生虫抗原では誘発されないということである。このような現象は、死滅 した線虫またはその抽出物の不純な調製物によるワクチン投与後にも生起する。Hakama and Neilson (1975) found that parasitic nematodes affect the host's immune system. mechanisms that can secrete immunosuppressive or immunomodulatory products and that the host It is believed that people become more susceptible to infection. Deineen and Wagl and) (1982) that immunosuppressants or immunomodulators are used in killed vaccines. are believed to be present in crude preparations of parasitic nematodes. As shown in these review papers A second problem that has been raised is that parasitic nematodes may not be able to match their antigenic profile to that of the host. as a result of a vigorous immunological response in a natural infection. It is not induced by protective parasite antigens. Such a phenomenon is extinct It also occurs after vaccination with impure preparations of nematodes or their extracts.
寄生虫の全ホモジネートおよび不純なサブフラクションを使用して宿主動物から 寄生虫の急増が加速されることを示している研究者もいる。例えば、ロースウェ ル(Rothwell)および共同研究者(1974,1977,1979) 、オツドネル(0’ Donnell)等(1985)、ネイルソンおよびファ ンドウワール(Van de Walle)(1987)、シルバーマン(Si lverman) :米国特許第894 、603号、オーストラリア特許第 247,354号、アダムス(Adams) (1989)、イースト(Eas t)等(19B9)、ムン(Munn)およびグリーンウッド(Greenw ood) (1987) (オーストラリア特許出願第77590/87号)、 コナン(Connan) (1965)、サビン(Savin)等(1988) およびマツクギリバリー(McGillivery)等(198B)参照。from host animals using whole parasite homogenates and impure subfractions. Some researchers have shown that the proliferation of parasites is accelerated. For example, Rothwell and co-researchers (1974, 1977, 1979) , O'Donnell et al. (1985), Neilson and F. Van de Walle (1987), Silberman (Si lverman): US Patent No. 894, 603, Australian Patent No. 247, 354, Adams (1989), Eas (19B9), Munn and Greenw ood) (1987) (Australian Patent Application No. 77590/87), Connan (1965), Savin et al. (1988) and McGillivery et al. (198B).
これらの研究では全て、線虫の粗製抽出物が動物にワクチン接種するために使用 されており、そして該抽出物のどの特定された抗原またはどの個々の成分も防御 に寄与していると同定されていない。In all of these studies, crude extracts of C. elegans were used to vaccinate the animals. and that any identified antigen or any individual component of the extract is protective. have not been identified as contributing to
精製された防御成分を同定しようと試みている報告が幾つかある。例えば、シル バースタイン(Silberstein)およびデスボミア=(Despov+ +1er) (1985)、ヘッツ(Hoetz)等(1,985)、グランデ ィア(Grandea)等(1989)、ルシウス(Lucius)等(1,9 88)、ドネルソン(Donelson)等(1988)、ニルセン(Nils ep)等(1988)参照。Several reports have attempted to identify purified protective components. For example, sil Silberstein and Despov+ +1er) (1985), Hoetz et al. (1,985), Grande Grandea et al. (1989), Lucius et al. (1,9 88), Donelson et al. (1988), Nilssen et al. (1988).
しかし乍ら、記載された成分に関しては防御は示されていないしまたは証明され てもいない。However, no protection has been shown or proven for the listed ingredients. Not even there.
1つの天然の宿主/寄生線虫系でしか、精製してクローン化したサブユニットが 防御的であるとは示されていない、オーストラリア特許出願第19998/88 号で、線虫トロポミオシンに対して証明されている絹換え体[)NT由来の抗原 が捻転毛様線虫抗原投与に対してヒツジで50%の防御をもたらしたことが証明 された。本願明細書で後で明らかになる理由によって、この抗原は本願明細書中 で同定される抗原とは異なっている二本願の抗原はインビトロでのインキュベー ジラン後に線虫の排泄/分泌液体中で見られる。Purified and cloned subunits can only be used in one natural host/parasitic nematode system. Australian Patent Application No. 19998/88 not shown to be defensive Antigen derived from silk recombinant [)NT that has been demonstrated against tropomyosin in C. elegans in No. was shown to confer 50% protection in sheep against challenge with T. nematode challenge. It was done. For reasons that will become clear later herein, this antigen is referred to herein as The antigens of the present application are different from the antigens identified during in vitro incubation. Found in excreted/secreted fluids of nematodes after dilan.
C3lRO/BAE研究報告「農業分野における社会−経済発展および傾向:将 来の研究の展望、1は、オーストラリアのヒツジ産業における3つの最も緊急な 健康課題の1つとして腸内寄生虫を記載しており、これらの感染をより良く制御 するためにはワクチンの開発に多大の期待が持たれている。C31RO/BAE Research Report “Socio-economic developments and trends in the agricultural sector: Future research prospects, 1, highlight the three most pressing issues in the Australian sheep industry. Intestinal parasites have been listed as one of the health challenges, and these infections can be better controlled. There are great expectations for the development of a vaccine.
寄生線虫に感染している動物が免疫を発現しその後の感染にかかり難くなること が確立されている(Rotbwellの総説、1989参照)。Animals infected with parasitic nematodes develop immunity and become less susceptible to subsequent infections. has been established (see review by Rotbwell, 1989).
感染した宿主動物の免疫系は寄生虫感染中に多くの寄生虫タンパク質を認識する ことが証明されている(例えば、O’Donal1等、1985)が、免疫応答 の多くは再感染への抵抗性に関しては機能的な意義を有していない。主要な段階 は、寄生生物中に存在する何千ものタンパク質から、宿主動物を再感染から防御 する免疫応答を該宿主動物に誘導することができる個々のタンパク質を同定する ことである。The infected host animal's immune system recognizes many parasite proteins during parasite infection It has been demonstrated (e.g., O'Donal et al., 1985) that the immune response Many of these have no functional significance in terms of resistance to reinfection. main stages protects the host animal from reinfection from the thousands of proteins present in the parasite. identify individual proteins capable of inducing an immune response in the host animal that That's true.
バイオテクノロジー、特に組換え体DNT技術における最近の進歩によって、ヒ トおよび家畜動物の経済的に重要な一連の寄生虫に対する商業的に実施可能なワ クチンを製造する機会が現実的に提供される。この試みは提起された問題点の多 くを克服して、粗製寄生虫調製物を使用する死滅ワクチンの有効性の欠如原因を 明らかにするであろう0例えば、組換え体DNT技術により製造されたワクチン は、寄生線虫種の粗製抽出物中に尭い出される可能性のある免疫抑制物または免 疫調節物を含有しないであろう。しかし、先ず抗原を同定することが必要である 。Recent advances in biotechnology, particularly in recombinant DNT technology, have commercially viable treatments against a range of economically important parasites of animals and domestic animals. Opportunities to produce cutin are realistically provided. This attempt raised a number of issues. The cause of the lack of effectiveness of killed vaccines using crude parasite preparations could be overcome. For example, vaccines produced by recombinant DNT technology Immunosuppressive or immune substances that may be present in crude extracts of parasitic nematode species It will not contain any infectious agents. However, it is first necessary to identify the antigen. .
同定されそして特徴が決定されると、これらタンパク質または防御エピトープを 含有するこれらタンパク質の部分を合成する微生物を構築するために組換え体D N?技術を使用することが可能でありそして寄生虫の感染から動物を防御するた めに組換え体生物により合成された産生物がワクチンに使用される。Once identified and characterized, these proteins or protective epitopes can be In order to construct microorganisms that synthesize portions of these proteins containing recombinant D N? It is possible to use techniques and to protect animals from parasitic infections. Products synthesized by recombinant organisms are used in vaccines.
本願発明者は成虫コルブリフォルミス毛様線虫から得た排泄/分泌産生物を詳細 に研究し、標的動物のワクチン接種後に防御をもたらし得る混合物から成分を精 製し、そして分子レベルで特徴を決定した。The inventors have detailed the excretory/secretory products obtained from adult Colubliformis trichophytes. to refine the ingredients from the mixture that can provide protection after vaccination of target animals. were produced and characterized at the molecular level.
本生肌勿説ユ 本願発明者は、寄生線虫種の排泄/分泌産生物で免疫化することによって寄生線 虫の感染に対して防御免疫を誘導できることを見い出した。コルブリフォルミス 毛様線虫の成虫の排泄−分泌液体から精製し特徴を決定した5つの分子は、Tc Ad ESAI、Tc Ad ESA2 、Tc Ad ESA3、Tc Ad ESA4およびTc Ad ESA5と命名して記載する。本発明者は、 ワクチン投与すると、これらタンパク質がコルブリフォルミス毛様線虫感染に対 してモルモットで防御応答を誘導することを見い出した。Genuine skin of course The inventors have demonstrated that parasites can be infected by immunization with the excreted/secreted products of the parasitic nematode species. It was discovered that protective immunity can be induced against insect infection. Colubliformis Five molecules purified and characterized from the excretory-secretory fluid of adult hairworms are Tc. Ad ESAI, Tc Ad ESA2, Tc Ad ESA3, Tc They are named and described as Ad ESA4 and Tc Ad ESA5. The inventor is When administered with a vaccine, these proteins protect against infection with Trichophyllis colbriformis We found that this method induced a defensive response in guinea pigs.
成虫は感染21日後にヒツジから回収し、洗浄しそして抗生物質を含有するRP 旧1640培地中37°Cで16時間維持した。コルブリフォルミス毛様線虫か ら得た排泄/分泌液体を含有する上記の培地は、グイアフロ(Diaflo)膜 で濃縮し、ヒラマメレクチン−セファロース4Bカラムに吸収させて分画した。Adult worms were collected from sheep 21 days after infection, washed and treated with RP containing antibiotics. It was maintained for 16 hours at 37°C in old 1640 medium. Colubliformis hairy nematode? The above medium containing excretory/secretory fluid obtained from a Diaflo membrane The mixture was concentrated and fractionated by absorption onto a lentil lectin-Sepharose 4B column.
未結合フラクション(LL−)および結合フラクション(LL”″、メチルマン ノシドで溶離)は各々僅か2.3のタンパク質バンドを有しており、更にポリア クリルアミドゲル電気泳動および電気溶離で分画した。 Tc Ad ESAI 、 Tc Ad ESA2、およびTc AdESA5と称される3つのタンパ ク質がヒラマメレシチン結合フラクションから単離され、Tc Ad ESA3 およびTc Ad ESA4と称される2つのタンパク質が更に未結合フラクシ ョンから単離された。Unbound fraction (LL-) and bound fraction (LL"", methylman eluted with noside) each had only 2.3 protein bands, and even more Fractionation was performed by acrylamide gel electrophoresis and electroelution. Tc Ad ESAI , TcAd ESA2, and TcAdESA5. Tc Ad ESA3 was isolated from the lentil lecithin-binding fraction and two proteins called TcAd ESA4 further induce unbound flux. isolated from the section.
ヒツジの実験室モデルであるモルモットの腹腔内注入後に、全部で5つのタンパ ク質がコルブリフォルミス毛様線虫感染に対して免疫を与える。A total of five proteins were detected after intraperitoneal injection in guinea pigs, an ovine laboratory model. The substance confers immunity against infection with the trichophyte Colbriformis nematode.
本発明の抗原の例は精製タンパク質Tc Ad ESAI、Tc Ad ESA 2、Tc Ad B5A3、Tc Ad ESA4およびTc Ad ESA5 であり、S[1S−PAGEで推定するときそれぞれ30.37.17.11お よび81kDの分子量を有している。Examples of antigens of the invention are purified protein Tc Ad ESAI, Tc Ad ESA 2, Tc Ad B5A3, Tc Ad ESA4 and Tc Ad ESA5 and when estimated by S[1S-PAGE, 30.37.17.11 and 30.37.17.11 respectively. and has a molecular weight of 81 kD.
本発明の第1の実施態様に従って、第1の寄生線虫種に由来し第2の寄生線虫種 (これらは第1の線虫種と同一または異なることができる)による宿主の感染に 対して防御免疫を誘発することができる排泄/分泌タンパク質;または排泄/分 泌タンパク質の全体、部分、類似体、同族体、誘導体若しくはそれらの組み合わ せ物からなり、寄生線虫による感染に対して宿主に防御免疫を誘発し得るタンパ ク質分子からなる抗原が提供される。According to a first embodiment of the invention, a second parasitic nematode species derived from a first parasitic nematode species; (these can be the same or different from the first nematode species) excreted/secreted proteins capable of inducing protective immunity against; or excreted/min Whole secreted proteins, parts, analogs, congeners, derivatives or combinations thereof It consists of a protein that can induce protective immunity in the host against infection by parasitic nematodes. An antigen consisting of a protein molecule is provided.
好ましくは、排泄/分泌タンパク質は5O3−PAGEで推定するとき概算分子 量11.17.30.37または81kDを有する。Preferably, excreted/secreted proteins have approximate molecular weight when estimated by 5O3-PAGE. has an amount of 11.17.30.37 or 81 kD.
典型的には、第1の寄生線虫種はトリキネラ属、アンキロストマ属、円虫風、毛 様線虫風、針虫属、オステルタジア属、畑虫属、トキサスカリス属、ランシナリ ア属、鞭虫属、ジロフィラリア属、トキソカラ属、ネカトール属、焼去属、スト ロンギロイデス属および糸状主属の種から選択される。このような種の例には、 旋毛虫、イヌ鉤虫、ストロンギルスブルガリス、コルブリフォルミス毛様線虫、 捻転毛様虫、オステルタジアオステルタジ、ブタ蛤虫、ライオントキサスカリス 、狭頭鉤虫、トリクリスプルビス、イヌ糸状虫、トキソカラ種、アメリカ鉤虫、 スビニ鉤虫、回虫、ヒト駆虫、焼出、糞線虫およびバンクロフト糸状虫がある。Typically, the first parasitic nematode species are Trichinella, Ankylostomatoma, Strongyloides, and Trichinella. Nematode style, Nematode genus, Ostertasia genus, Field worm genus, Toxascaris genus, Lancinari genus Trichuria, genus Trichuris, genus Dirofilaria, genus Toxocara, genus Necator, Selected from species of the genus Longiloides and the filamentous genus. Examples of these types include trichinella, hookworm canis, strongilus vulgaris, colubliformis trichium, Trichotidium torsion, Ostertasia ostertagi, Pig clam, Liontoxascaris , Acute hookworm, Tricris purvis, Heartworm canis, Toxocara sp., American hookworm, There are hookworms, roundworms, human anthelmintics, pyrophytes, strongyloids, and bancroft heartworms.
典型的には、第2の寄生線虫種は、トリキネラ属、アンキロストマ属、円虫風、 毛様線虫風、針虫属、オステルタジア属、徊虫属、トキサスカリス属、ランシナ リア属、鞭虫属、ジロフィラリア属、トキソカラ属、ネカトール属、蛸虫属、ス トロンギロイデス属および糸状主属の種から選択される。このような種の例には 、旋毛虫、イヌ鉤虫、ストロンギルスブルガリス、コルブリフォルミス毛様線虫 、捻転毛様線虫、オステルタジアオステルタジ、ブタ畑虫、ライオントキサスカ リス、狭頭鉤虫、トリクリスプルビス、イヌ糸状虫、トキソカラ種、アメリカ鉤 虫、スビニ鉤虫、回虫、ヒト駆虫、撓虫、糞線虫およびバンクロフト糸状虫があ る。Typically, the second parasitic nematode species is Trichinella, Ankylostoma, Strongyles, Nematode style, Nematode genus, Ostertasia genus, Trichopodia spp., Toxascaris spp., Lancina Lia, Trichuris, Dirofilaria, Toxocara, Necator, Octopus, Selected from species of the genus Strongyloides and Filamentosa. Examples of these types include , Trichinella canis, Hookworm canis, Strongylus vulgaris, Colubliformis hairy nematode , Tortis nematode, Ostertasia ostertagi, Pig field worm, Lion crested nematode squirrel, pinnacephalic hookworm, triclis pluvis, canine heartworm, Toxocara sp., American hookworm worms, hookworms, roundworms, human anthelminths, strongyloids, strongyloids, and bancroft heartworms. Ru.
好ましくは、第1の寄生線虫種はコルブリフォルミス毛様線虫である。Preferably, the first parasitic nematode species is Colubliformis nematode.
好ましくは、第2の寄生線虫種はコルブリフォルミス毛様線虫または捻転毛様線 虫である。Preferably, the second parasitic nematode species is Colubliformis nematode or Tortis nematode. It's an insect.
本発明の第2の実施態様に従って、第1の実施態様の抗原のアミノ酸配列をコー ドする第1のヌクレオチド配列;第1のヌクレオチド配列とハイブリッドを形成 するヌクレオチド配列;または1つ若しくは多数の塩基置換、挿入若しくは欠失 を含む変異によって第1のヌクレオチド配列と関連したヌクレオチドが提供され る。According to a second embodiment of the invention, the amino acid sequence of the antigen of the first embodiment is a first nucleotide sequence that hybridizes with the first nucleotide sequence; a nucleotide sequence; or one or more base substitutions, insertions or deletions; a mutation that provides a nucleotide related to the first nucleotide sequence Ru.
本発明の好ましいヌクレオチド配列は、5D5−PAGEで推定するとき概算分 子量11.17.30.37および81kDを有する第1の実施態様の排泄/分 泌タンパク質をコードするヌクレオチド配列である。The preferred nucleotide sequence of the present invention can be estimated by 5D5-PAGE. Excretion/min of the first embodiment with molecular weight 11.17.30.37 and 81 kD A nucleotide sequence encoding a secreted protein.
好ましくは、ヌクレオチド配列はDNA配列である。本願発明が包含するDNA 配列は、例えば、コルブリフォルミス毛様線虫細胞から総DNAを抽出しそして 標準的な方法でDNA配列を単離することによって製造することができる。或は 、DNAはインビトロで、合成的に、または生合成的に、例えばmRNA鋳型を 使用して製造することができる。Preferably the nucleotide sequence is a DNA sequence. DNA included in the present invention Sequencing can be done, for example, by extracting total DNA from C. colubriformis cells and It can be produced by isolating the DNA sequence using standard methods. Or , DNA can be synthesized in vitro, synthetically, or biosynthetically, e.g., from an mRNA template. It can be manufactured using
本発明の第3の実施態様に従って、第1の実施態様による抗原をコードするDN AまたはRNA配列を選択する方法が提供される。該方法は1つまたはそれ以上 のDNAまたはRNA配列を提供し、そしてどの配列が、第1の実施態様の抗原 をコードすることが知られているDNAまたはRNA配列とハイブリッド形成す るのかを決定することからなるか、或いは抗原の抗血清を提供しそして抗原を発 現する宿主−ベクターの組合せを同定することからなる。According to a third embodiment of the invention, a DN encoding an antigen according to the first embodiment A method for selecting A or RNA sequences is provided. the method is one or more and which sequence is the antigen of the first embodiment. Hybridization with DNA or RNA sequences known to encode or by providing antiserum and expressing the antigen. The process consists of identifying the host-vector combinations that are present.
該配列は天然起源であることができ、RNA配列、合成配列、組換え体DNA分 子から得たDNA配列またはこれら配列の組合せ物であることができる。The sequences can be of natural origin, including RNA sequences, synthetic sequences, recombinant DNA sequences, etc. It can be the DNA sequence obtained from the offspring or a combination of these sequences.
好ましくは、抗原をコードするDNAを同定しそして特徴を決定するために使用 される方法は、抗原を産生ずる細胞からa+RNA種の抽出、mRNA種の二重 鎖(cDN^)への転換およびこれらの自律的複製フォクター、例えばプラスミ ドまたはファージベクター中への挿入に係わっている。これに続いて、細菌株の ような宿主細胞を上記ファクターで形質転換し、そして任意の他の細胞タンパク 質成分と異なる抗原をコードするDNAを含有するクローンを検出するためにm RNAまたはDNA配列をコードする抗原に相補的である0合成りNAプローブ で産生されたライブラリーをスクリーニングする。Preferably used to identify and characterize DNA encoding an antigen. The method used is extraction of a+ RNA species from antigen-producing cells, double extraction of mRNA species, and conversion into chains (cDN^) and their autonomous replication foctors, e.g. plasmids. Involved in insertion into a host or phage vector. Following this, bacterial strains Transform host cells with the above factors and add any other cellular proteins. m to detect clones containing DNA encoding antigens different from the quality components. 0 synthetic RNA probes complementary to antigen encoding RNA or DNA sequences Screen the library produced.
本発明の第4の実施態様に従って、第3の実施態様のDNA配列およびベクター 11NAからなる組換え体DNA分子が提供される。According to a fourth embodiment of the invention, the DNA sequences and vectors of the third embodiment Recombinant DNA molecules consisting of 11NA are provided.
DNA配列は天然、合成または生合成りNA配列であることができる。The DNA sequence can be a natural, synthetic or biosynthetic DNA sequence.
本発明の好ましい組換え体DNA分子には、DNA配列に操作して結合された発 現制御配列が含まれる。Preferred recombinant DNA molecules of the invention include proteins operably linked to the DNA sequence. Contains the current control array.
本発明の1つの好ましい形態では、DNA配列は大腸菌のβ−ガラクトシダーゼ に操作して結合されている。他の好ましい制御系にはトリプトファン(Trp) オペロン、大腸菌のTra−T遺伝子、バクテリオファージラムダの左側プロモ ーター、Cuplプロモーターおよびハイブリッドプロモーター、例えばtac またはウィルスプロモーター、例えばSV40初期プロモーターが含まれる。In one preferred form of the invention, the DNA sequence is E. coli β-galactosidase. are operated and combined. Other preferred control systems include tryptophan (Trp). Operon, Tra-T gene of E. coli, left promo of bacteriophage lambda promoter, Cupl promoter and hybrid promoters such as tac or viral promoters, such as the SV40 early promoter.
好ましくは、ベクターDNAはプラスミドDNAである。適当なプラスミドベク ターには、pUR290Sp[Ic18 、pYEUc114およびそれらの誘 導体が含まれる。Preferably, the vector DNA is plasmid DNA. suitable plasmid vector The targets include pUR290Sp[Ic18, pYEUc114 and their inducers. Contains conductors.
或は、ベクターDNAはバクテリオファージラムダのようなバクテリオファージ DNA並びにラムダgtllおよびラムダgtlOのような誘導体であることが できる。Alternatively, the vector DNA may be a bacteriophage such as bacteriophage lambda. DNA and derivatives such as lambda gtll and lambda gtlO. can.
本発明の第5の実施態様に従って、プロモーター、翻訳開始シグナルおよび第3 の実施態様のDNA配列からなる融合遺伝子が提供される。According to a fifth embodiment of the invention, a promoter, a translation initiation signal and a third A fusion gene is provided comprising a DNA sequence of an embodiment of the invention.
本発明の第6の実施態様に従って、第3の実施態様のDNA配列からなるDNA 挿入物を提供することおよび1oNa挿入物をクローニングベクター中に導入す ることからなる、第4の実施態様の組換え体DNA分子の製造方法が提供される 。According to a sixth embodiment of the invention, a DNA consisting of the DNA sequence of the third embodiment Providing the insert and introducing the 1oNa insert into the cloning vector There is provided a method for producing a recombinant DNA molecule according to the fourth embodiment, comprising: .
好ましくは、該DNA挿入物はクローニングベクター中に、発現制御配列に関し て正しい配置で且つ正しい読み取り枠で導入される。Preferably, the DNA insert contains expression control sequences in a cloning vector. be introduced in the correct position and in the correct reading frame.
本発明の第7の実施態様に従って、第4の実施態様の少なくとも1つの組換え体 DNA分子で形質転換された宿主が提供される。According to a seventh embodiment of the invention, at least one recombinant of the fourth embodiment A host transformed with a DNA molecule is provided.
好ましくは、形質転換された宿主は第1の実施態様の抗原を発現することができ る。Preferably, the transformed host is capable of expressing the antigen of the first embodiment. Ru.
適当な宿主には、細菌細胞、サツカロミセスセレビシェ株CL13−ABSY8 6のような酵母、他の真菌、を椎動物細胞、昆虫細胞、植物細胞、ヒト細胞、ヒ ト組繊細胞、痘苗ウィルスおよびバクロウィルスのような生存ウィルス並びに全 真核生物が含まれる。Suitable hosts include bacterial cells, Satucharomyces cerevisiae strain CL13-ABSY8 6 yeasts, other fungi, vertebrate cells, insect cells, plant cells, human cells, cells, live viruses such as variola virus and baculovirus, and whole cells. Includes eukaryotes.
適当な細菌宿主には大腸菌および他の腸内生物、シュードモナス属およびバチル ス属の種が含まれる。Suitable bacterial hosts include Escherichia coli and other enteric organisms, Pseudomonas and Bacillus. Includes species of the genus.
好ましい宿主は大腸菌に12誘導体、特にJM109およびY1090である。Preferred hosts are E. coli 12 derivatives, especially JM109 and Y1090.
本発明の第8の実施態様に従って、宿主を提供すること、宿主を形質転換に適す るようにすることおよび第4の実施態様の組換え体DNA分子を宿主中に導入す ることからなる、第7の実施態様の形質転換された宿主を提供するために宿主を 形質転換する方法が提供される。According to an eighth embodiment of the invention, providing a host, making the host suitable for transformation. and introducing the recombinant DNA molecule of the fourth embodiment into a host. of the seventh embodiment, comprising: A method of transforming is provided.
本発明の第9の実施態様に従って、第1の実施態様の抗原からなる、第7の実施 態様の形質転換された宿主の発現産生物が提供される。According to a ninth embodiment of the invention, a seventh embodiment consisting of the antigen of the first embodiment Expression products of embodiments of transformed hosts are provided.
好ましくは、発現産生物は実質的に純粋な形態で提供される。Preferably, the expression product is provided in substantially pure form.
好ましくは、発現産生物は宿主と相同性の第1のポリペプチド配列および、第1 の実施態様の抗原をコードするアミノ酸配列である第2のポリペプチド配列から なる。Preferably, the expression product comprises a first polypeptide sequence homologous to the host; from a second polypeptide sequence that is an amino acid sequence encoding an antigen of an embodiment of Become.
更に好ましくは、第1のアミノ酸配列はβ−ガラクトシダーゼの1部分若しくは 全部またはTra−Tであり、そして宿主細胞は大腸菌である。More preferably, the first amino acid sequence is a portion of β-galactosidase or Total or Tra-T and the host cell is E. coli.
本発明の第10の実施態様に従って、第1の実施態様の抗原からなるタンパク賞 産生物を生合成する方法が提供される。この方法は: 宿主が第1の実施態様の抗原を含有するタンパク質産生物を発現できるように、 第4の実施態様の組換え体DNA分子で宿主を形質転換し;宿主を培養して発現 させ;そしてタンパク質産生物を採集する、 ことからなる。According to a tenth embodiment of the invention, a protein award consisting of the antigen of the first embodiment A method of biosynthesizing a product is provided. This method: such that the host is capable of expressing a protein product containing the antigen of the first embodiment; Transforming a host with the recombinant DNA molecule of the fourth embodiment; culturing the host for expression. and collecting the protein product; Consists of things.
本発明の第11の実施態様に従って、防御免疫応答に寄与する第1の実施態様の 抗原のエピトープが提供される。このエピトープは、抗原の部分の配列を有する オリゴペプチドを合成して製造することによって人工的に創製することができる 。これは細菌で産生されるかまたは天然若しくは組換え体ペプチドの化学的若し くは酵素開裂の結果化じたタンパク質のフラグメントでの免疫化学的試験の結果 から予言することができる。According to an eleventh embodiment of the invention, the first embodiment contributes to a protective immune response. An epitope of the antigen is provided. This epitope has the sequence of a portion of an antigen Can be created artificially by synthesizing and manufacturing oligopeptides . This can be produced in bacteria or by chemical or chemical synthesis of natural or recombinant peptides. Results of immunochemical tests on protein fragments resulting from enzymatic cleavage It can be predicted from.
本発明の第12の実施態様に従って、第11の実施態様のエピトープに対して生 じる抗体が提供される。これらの抗体またはイディオタイプは動物の受身免疫用 に使用することができる。According to the twelfth embodiment of the present invention, the epitope of the eleventh embodiment Antibodies are provided. These antibodies or idiotypes are used for passive immunization of animals. It can be used for.
本発明の第13の実施態様に従って、第12の実施態様の抗体の可変領域に対し て生じる抗体、所謂抗イデイオタイプ抗体が提供され、この抗体は、抗原の防御 エピトープに似ておりそして動物の能動免疫の有効なワクチンとして使用するこ とができる。According to a thirteenth embodiment of the invention, for the variable region of the antibody of the twelfth embodiment Antibodies generated by this method, so-called anti-idiotype antibodies, are provided, and these antibodies are used to protect against antigens. epitope-like and can be used as an effective vaccine for active immunization in animals. I can do it.
本発明の第14の実施態様に従って、第1の実施態様の1つまたはそれ以上の有 効量の抗原、第9の実施態様の発現産生物、第11175実施態様のエピトープ および/または第13の実施態様の抗イデイオタイプ抗体、並びに製薬的に許容 可能な賦形剤、担体、アジュバントおよび/または希釈剤からなるワクチンが提 供される。According to a fourteenth embodiment of the invention, one or more of the first embodiment Effective amount of antigen, expression product of the ninth embodiment, epitope of the 11175th embodiment and/or the anti-idiotype antibody of the thirteenth embodiment and a pharmaceutically acceptable A vaccine consisting of possible excipients, carriers, adjuvants and/or diluents is proposed. Served.
好ましいワクチンには注入または経口投与に適するものが含まれる。好ましくは 、注入可能なワクチンには製薬的に許容可能なアジュバントが含まれる。Preferred vaccines include those suitable for injection or oral administration. Preferably , the injectable vaccine includes a pharmaceutically acceptable adjuvant.
本発明の第15の実施U様に従って、本願発明の1つまたはそれ以上の抗原、発 現産生物、エピトープ、抗イデイオタイプ抗体および/またはワクチンを宿主に 投与することによって、宿主へのワクチン投与の結果として製造される抗体が提 供される。According to embodiment U of the present invention, one or more antigens, antigens of the present invention host organisms, epitopes, anti-idiotypic antibodies and/or vaccines. By administering the vaccine, antibodies produced as a result of administering the vaccine to the host are presented. Served.
このような抗体にはポリクローナルおよびモノクローナル抗体がある。Such antibodies include polyclonal and monoclonal antibodies.
第15の実施態様の抗体に類似する態様で作用する化合物があることが認められ る。これらの化合物は抗体ではないが、宿主中にこれら化合物が存在すると抗体 に類似する防御効果をもたらすことができる0本願明細書および請求の範囲に亘 って、第15の実施態様の抗体に対する記載はこれら化合物に及ぶように解釈す べきである。It is recognized that there are compounds that act in a similar manner to the antibodies of the fifteenth embodiment. Ru. Although these compounds are not antibodies, the presence of these compounds in the host can lead to antibodies. 0 Throughout the specification and claims of the present application, which can bring about a protective effect similar to Therefore, the description of the antibody in the fifteenth embodiment should be interpreted to cover these compounds. Should.
本発明の第16の実施態様に従って、少なくとも1つの第12および/または第 15の実施態様の抗体並びに製薬的に許容可能な担体、希釈剤および/または賦 形剤からなる抗体組成物が提供される。According to a sixteenth embodiment of the invention, at least one of the twelfth and/or Antibodies of embodiment 15 and pharmaceutically acceptable carriers, diluents and/or excipients An antibody composition comprising a formulation is provided.
本発明の第17の実施態様に従って、寄生線虫種から排泄−分泌液体を採集し; ヒラマメレクチンクロマトグラフィーにより溶離液としてメチルマンノシドを用 いて液体を分画し;結合および未結合フラクションを採集し、 5O5−ゲル電 気泳動によって更に分画し;そして抗原を電気溶離することからなる、第1の実 施態様の抗原の製造方法が提供される。According to a seventeenth embodiment of the invention, collecting excretory-secretory fluid from a parasitic nematode species; Hijack lectin chromatography using methyl mannoside as eluent fractionate the liquid; collect bound and unbound fractions and transfer to a 5O5-gel electrode. The first step consists of further fractionation by pneumophoresis; and electroelution of the antigen. Methods of producing embodiments of antigens are provided.
本発明の第18の実施態様に従って、プロモーター、翻訳開始シグナルおよび第 3の実施態様のDNA配列を提供しそしてプロモーター、翻訳開始シグナルおよ びDNA配列を操作して結合することからなる、第5の実施態様の融合遺伝子の 製造方法が提供される。According to an eighteenth embodiment of the invention, a promoter, a translation initiation signal and a Embodiment 3 of the present invention provides a DNA sequence and includes a promoter, translation initiation signal and of the fusion gene of the fifth embodiment, which comprises manipulating and linking the fusion gene and the DNA sequence. A manufacturing method is provided.
本発明の第19の実施態様に従って、少なくとも1つの有効量の第1の実施態様 の抗原および/または第19の実施態様の発現産生物および/または第11の実 施態様のエピトープおよび/または第13の実施態様の抗イデイオタイプ抗体と 製薬的に許容可能な担体、希釈剤、賦形剤および/またはアジュバントとを混合 することからなる、第14の実施態様のワクチンの製造方法が提供される。According to the nineteenth embodiment of the invention, the first embodiment of at least one effective amount and/or the expression product of the nineteenth embodiment and/or the eleventh embodiment. the epitope of the embodiment and/or the anti-idiotype antibody of the thirteenth embodiment; Mixed with pharmaceutically acceptable carriers, diluents, excipients and/or adjuvants There is provided a method for producing a vaccine according to a fourteenth embodiment, comprising:
本発明の第20の実施態様に従って、第1の実施態様の抗原および/または第9 の実施態様の発現産生物および/または第11の実施態様のエピトープおよび/ または第13の実施態様の抗イデイオタイプ抗体および/または第14の実施態 様のワクチンを用いて免疫応答性宿主を免疫化することからなる、第15の実施 態様の抗体の製造方法が提供される。According to a twentieth embodiment of the invention, the antigen of the first embodiment and/or the ninth embodiment and/or the epitope of the eleventh embodiment and/or the expression product of the embodiment of or the anti-idiotype antibody of the thirteenth embodiment and/or the fourteenth embodiment a fifteenth practice, comprising immunizing an immunocompetent host with a vaccine of Methods of producing antibodies of embodiments are provided.
本発明の第21の実施態様に従って、第12の実施態様の抗体を用いて免疫応答 性宿主を免疫化することからなる、第13の実施態様の抗イデイオタイプ抗体の 製造方法が提供される。According to a twenty-first embodiment of the invention, the antibody of the twelfth embodiment is used to respond to an immune response. of the anti-idiotypic antibody of the thirteenth embodiment, comprising immunizing a sexual host. A manufacturing method is provided.
本発明の第22の実施態様に従って、少なくとも1つの有効量の第12および/ または第15の実施態様の抗体を製薬的に許容可能な担体、希釈剤および/また は賦形剤と混合することからなる、第16の実施態様の抗体組成物の製造方法が 提供される。According to a twenty-second embodiment of the invention, an effective amount of at least one of the twelfth and/or or the antibody of the fifteenth embodiment in a pharmaceutically acceptable carrier, diluent and/or The method for producing an antibody composition according to the sixteenth embodiment comprises mixing with an excipient. provided.
本発明の第23の実施態様に従って、本発明の抗原、発現産生物、ワクチン、エ ピトープおよび/または抗イデイオタイプ抗体を用いて宿主にワクチン接種する ことからなる、防御処置を必要とする宿主を寄生線虫種による感染から防御する 方法が提供される。According to a twenty-third embodiment of the invention, the antigens, expression products, vaccines, etc. of the invention Vaccinate the host with pitopes and/or anti-idiotype antibodies to protect the host from infection by parasitic nematode species in need of protective treatment, consisting of A method is provided.
本発明の第24の実施態様に従って、少なくとも1つの有効量の第12および/ または第15の実施態様の抗体および/または第16の実施態様の抗体組成物を 用いて宿主に受身的にワクチン接種することからなる、防御処置を必要とする宿 主を寄生線虫種による感染に対して受身的に防御する方法が提供される。According to a twenty-fourth embodiment of the invention, an effective amount of at least one of the twelfth and/or or the antibody of the fifteenth embodiment and/or the antibody composition of the sixteenth embodiment. host that requires protective treatment, consisting of passively vaccinating the host using A method is provided for passively protecting the host against infection by parasitic nematode species.
ワクチンの1回投与量形態を提供するために担体、賦形剤、希釈剤および/また はアジュバントと組み合わすことができる抗原、発現産生物、エピトープおよび /または抗イデイオタイプ抗体の量は、治療されているかまたは予防される感染 、治療される宿主および特別の投与様式によって変動する。carriers, excipients, diluents and/or antigens, expression products, epitopes and can be combined with adjuvants. / or the amount of anti-idiotype antibodies , will vary depending on the host treated and the particular mode of administration.
任意の特別の宿主の特定の投与値は、使用される特定の抗原、発現産生物、エピ トープ、抗イデイオタイプ抗体および/またはワクチンの活性、年令、体重、全 体的な健康、性別、食餌、投与時間、投与経路、排泄速度、薬品の組み合せ、治 療または予防すべき特別の感染並びに治療または予防を受けている特別の感染の 重篤度を含む種々のファクターに依拠することも理解されよう。The particular dosage value for any particular host will depend on the particular antigen, expression product, epitope used, etc. topic, anti-idiotypic antibody and/or vaccine activity, age, body weight, total physical health, gender, diet, time of administration, route of administration, excretion rate, combination of drugs, treatment. Special infections to be treated or prevented and special infections being treated or prevented. It will also be understood that this will depend on a variety of factors, including severity.
本願発明のワクチンは経口的にまたは非経口的に、慣用的で非毒性の製薬的に許 容可能な所望の担体、希釈剤、アジュバントおよび/または賦形剤を含有する単 位投与量の製剤で投与することができる。The vaccines of the present invention can be administered orally or parenterally using any conventional, non-toxic, pharmaceutically acceptable method. A monomer containing the desired carriers, diluents, adjuvants and/or excipients that can The formulation can be administered in multiple dosages.
注入可能な製剤、例えば、滅菌注入水性または油性懸濁液は、適当な分散化剤ま たは湿潤化剤および懸濁化剤を使用して既知の技術に従って処方することができ る。滅菌注入製剤はまた、非毒性の非経口的に許容可能な希釈剤または溶媒中の 注入溶液または懸濁液、例えば1.3−ブタンジオール溶液であることもできる 。使用できる許容可能な担体および溶媒には水、リンゲル液および塩化ナトリウ ム等張溶液がある。更に、滅菌した不揮発性油が溶媒または懸濁媒体として慣用 的に使用される。上記の目的のために、合成上ツマ−またはジグリセリドを含む 任意の刺激のない不揮発性油を使用することができる。更に、オレイン酸のよう な脂肪酸が注入剤の調製に使用される。Injectable preparations, for example, sterile injectable aqueous or oleaginous suspensions, are prepared using suitable dispersing agents or oleaginous suspensions. or may be formulated according to known techniques using wetting agents and suspending agents. Ru. Sterile injectable preparations may also be prepared in nontoxic parenterally acceptable diluents or solvents. It can also be an injection solution or suspension, for example a solution in 1,3-butanediol. . Acceptable carriers and solvents that may be employed include water, Ringer's solution and sodium chloride. Isotonic solutions are available. In addition, sterile, fixed oils are conventionally employed as a solvent or suspending medium. used. Contains synthetic triglycerides or diglycerides for the above purposes. Any bland fixed oil may be used. Furthermore, like oleic acid fatty acids are used in the preparation of injectables.
用語「製薬的に許容可能なアジュバント」は、ヒトへの投与に通する標準的な組 成物かまたは動物のワクチン接種に使用される典型的なアジュバントかのいずれ かを意味する。適当なアジュバントは当該技術分野の通常の技術を使用して選択 することができる。The term "pharmaceutically acceptable adjuvant" refers to a standard set of adjuvants for human administration. either a compound or a typical adjuvant used in animal vaccination. It means something. Suitable adjuvants are selected using techniques common in the art. can do.
動物およびヒトのワクチン接種に適するアジュバントには水酸化アルミニウムお よび油性エマルジョン、例えばマルコール(Marcol)52: モンタナイ ド(Montanide)888 (MarcolはEs5oの商標であり、M ontanideはパリの5eppicの商標である)が含まれるがこれに限定 されない0本願発明の使用に適する他のアジュバントには原核生物または真核生 物由来の完全な膜タンパク質、例えばTraTと一緒になった発現産生物からな る抱合体が含まれる。Suitable adjuvants for animal and human vaccination include aluminum hydroxide and and oil-based emulsions, such as Marcol 52: Montanai Montanide 888 (Marcol is a trademark of Es5o, M (ontanide is a trademark of 5eppic of Paris) Other adjuvants suitable for use in the present invention include prokaryotes or eukaryotes. complete membrane proteins derived from human organisms, e.g. from expression products together with TraT. Conjugates include
投与経路、投与すべき投与量並びに注入頻度は当該技術分野の通常の技術を使用 して最適とすることができるファクターの全てである。典型的には、最初のワク チン接種の数週間後に1回またはそれ以上の[ブースター(追加抗原刺激)」ワ クチン接種をし、この真の効果は抗原エピトープ、抗イデイオタイプ抗体または 発現産生物に対して高力価の抗体のような強い免疫学的応答を生じさせることで ある。Routes of administration, doses to be administered and frequency of injections can be determined using ordinary skill in the art. These are all factors that can be optimized as follows. Typically, the first work One or more "booster" vaccinations several weeks after vaccination This true effect is due to antigenic epitope, anti-idiotypic antibody or by generating a strong immunological response, such as a high titer of antibodies, against the expressed product. be.
経口投与用の固体投与形態はカプセル、錠剤、ビル、粉末および顆粒であること ができる。このような固体投与形態では、抗原、エピトープ、抗イデイオタイプ 抗体および/または発現産生物を少なくとも1つの不活性希釈剤、例えば蔗糖、 ラクトースまたは澱粉と混合することができる。このような投与形態は、通常の 実施と同様に、不活性希釈前以外の物質、例えばステアリン酸マグネシウムのよ うな滑沢剤を追加して構成することもできる。カプセル、錠剤およびビルの場合 には、投与形態はまた緩衝剤からなることもできる。錠剤およびビルは更に腸溶 被贋物を用いて製造することができる。Solid dosage forms for oral administration should be capsules, tablets, pills, powders and granules. Can be done. In such solid dosage forms, the antigen, epitope, anti-idiotype Antibodies and/or expression products are combined with at least one inert diluent, such as sucrose, Can be mixed with lactose or starch. Such dosage forms As in the practice, substances other than inert undiluted materials, such as magnesium stearate, It can also be configured by adding a lubricant. For Capsules, Tablets and Bills In some cases, the dosage form can also comprise a buffer. Tablets and tablets are also enteric coated. It can be manufactured using counterfeit products.
経口投与用の液体投与形態は極小粒子、マイクロカプセル、LTB抱合体、即ち 抱合体としてコレラまたはコレラBサブユニットを、水のような当該技術分野で 通常使用される不活性希釈剤を含有する、製薬的に許容可能な工°フルジョン、 シロップ、溶液、懸濁液およびエリキシル剤に含有することができる。このよう な組成物はまた、湿潤化剤、乳化剤および懸濁化剤または抱合体としてTraT のようなアジュバント並びに蔗糖、ソルビトール、フラクトース等のような糖を 含む甘味剤、矯味剤および香料、ポリエチレングリコール、プロピレングリコー ル等のようなグリコール、ゴマ油、オリーブ油、大豆油等のような油、アルキル バラヒドロキシベンゾエート等のような防腐剤、並びにストロベリー風味、ペパ ーミント等のような風味剤からなることもできる。Liquid dosage forms for oral administration include very small particles, microcapsules, LTB conjugates, i.e. cholera or cholera B subunit as a conjugate in the art such as water. a pharmaceutically acceptable formulation containing commonly used inert diluents; It can be included in syrups, solutions, suspensions and elixirs. like this Compositions also include TraT as a wetting agent, emulsifying agent and suspending agent or conjugate. adjuvants such as and sugars such as sucrose, sorbitol, fructose, etc. Contains sweeteners, flavorings and flavors, polyethylene glycol, propylene glycol glycols such as oil, oils such as sesame oil, olive oil, soybean oil etc., alkyl Preservatives such as rose hydroxybenzoate, etc., as well as strawberry flavor, pepper - It can also consist of flavoring agents such as mint and the like.
z皿企旦厘l説旦 図1はLL”およびLL−フラクションの5O5−PAGE分析を示す。zSara planning staff l theory Figure 1 shows the 5O5-PAGE analysis of the LL'' and LL- fractions.
図2はTa Ad ESAI、2.3.4および5の5DS−PAGE分析を示 す。Figure 2 shows 5DS-PAGE analysis of TaAd ESAI, 2.3.4 and 5. vinegar.
図3は脱グリコキシル化前後のTa Ad ESAIの505−PAGE分析を 示す。Figure 3 shows 505-PAGE analysis of Ta Ad ESAI before and after deglycosylation. show.
図4はTraT−Tc Ad ESAIの構造を示す。FIG. 4 shows the structure of TraT-Tc Ad ESAI.
図5はTc Ad ESAIをサツカロミセスセレビシェ中で発現するために使 用される酵母発現ベクターpYEUc114を示す。Figure 5 shows the results used to express TcAd ESAI in Satucharomyces cerevisiae. The yeast expression vector pYEUc114 used is shown.
図6は捻転毛様線虫およびイヌ糸状虫中でESAをコードする配列の検出を示す 。Figure 6 shows the detection of ESA-encoding sequences in C. elegans and C. elegans. .
る の 能 および の 本発明のヌクレオチド配列、融合遺伝子、組換え体DNA分子および形質転換宿 主は、マニアチス(Maniatis)等(1982)に記載されたような分子 バイオロジーの標準的な技術を使用して作成する。of Noh and of Nucleotide sequences, fusion genes, recombinant DNA molecules and transformed hosts of the invention Primarily molecules such as those described by Maniatis et al. (1982) Created using standard techniques in biology.
本発明のヌクレオチド配列の調製においては、問題の遺伝子は、そして更には該 遺伝子から作られるcDNAコピーも、低収量で供給されることが認められる。In the preparation of the nucleotide sequences of the invention, the gene of interest and furthermore the It is recognized that cDNA copies made from genes are also supplied in low yields.
PCR(ポリメラーゼ鎖反応)技術は、検出およびクローニングを促進するのに 関係のあるDNAを増幅するために使用することができる。PCR (polymerase chain reaction) technology is used to facilitate detection and cloning. It can be used to amplify relevant DNA.
本発明の発現産生物は、本発明の形質転換された宿主を特別の宿主に適当な標準 的な条件下で培養し、そして発現産生物を標準的な技術によって培養物から分離 することによって得ることができる0発現産生物は不純な形態で使用することが でき、または産生される発現産生物および特別の宿主に適当な標準的技術によっ て精製することができる。The expression products of the invention can be used to transform the transformed hosts of the invention into a standard suitable for a particular host. culture under standard conditions and isolate the expression product from the culture by standard techniques. The expression product that can be obtained by by standard techniques appropriate to the expression product that can be produced or produced and the particular host. It can be purified by
本発明のワクチンは、抗原、発現産生物、抗イデイオタイプ抗体および/または エピトープと製薬的に許容可能な担体、希釈剤、賦形剤および/またはアジュバ ントとを、標準的な製剤調製方法を使用して混合し、好ましくは均質に混合して 調製する。The vaccine of the invention comprises antigens, expression products, anti-idiotypic antibodies and/or epitope and a pharmaceutically acceptable carrier, diluent, excipient and/or adjuvant. using standard drug preparation methods, preferably homogeneously mixing. Prepare.
1回の投与形態を製造するのに要する抗原、発現産生物、抗イデイオタイプ抗体 および/またはエピトープの量は、治療すべきまたは予防すべき感染、治療すべ き宿主および特別の投与様式によって変動する。任意の特別の宿主の特定の投与 量は、使用される抗原、発現産生物、抗イデイオタイプ抗体および/またはエピ トープの活性、年令、宿主の体重、全体的な健康、性別および食餌、投与時間、 投与経路、排泄速度、薬品の組合せ並びに治療中の感染の重篤度に依拠する。Antigens, expression products, and anti-idiotype antibodies required to produce a single dosage form and/or the amount of the epitope, the infection to be treated or prevented, the treatment Varies depending on host and particular mode of administration. Specific administration of any particular host The amount depends on the antigen, expression product, anti-idiotype antibody and/or epithelial antibody used. Tope activity, age, host weight, general health, sex and diet, time of administration, It depends on the route of administration, rate of excretion, drug combination, and severity of the infection being treated.
ワクチンは、製薬的に許容可能な所望の担体、希釈剤、賦形剤および/または所 望のアジュバントを含有する単位投与製剤で経口的にまたは非経口的に投与する ことができる。The vaccine may contain any desired pharmaceutically acceptable carriers, diluents, excipients and/or excipients. Administer orally or parenterally in a unit dosage formulation containing the desired adjuvant. be able to.
抗体は、適当な宿主中で標準的なワクチン接種形態を使用して生じさせる。宿主 は本発明の抗原、発現産生物、エピトープ、抗イデイオタイプ抗体および/また はワクチンを用いてワクチン接種する。Antibodies are raised in appropriate hosts using standard vaccination formats. host are antigens, expression products, epitopes, anti-idiotype antibodies and/or are vaccinated using vaccines.
本発明の抗体と同様に作用する化合物は、天然に生じる化合物を精製するかまた は、標準的な化学的または生合成的技術を含む標準的な技術を使用して合成的に 製造することができる。Compounds that act similarly to the antibodies of the invention can be obtained by purifying naturally occurring compounds or by can be synthesized using standard techniques, including standard chemical or biosynthetic techniques. can be manufactured.
抗体組成物は、標準的な製剤調製方法を使用して抗体を製薬的に許容可能な担体 、希釈剤および/または賦形剤と混合し、好ましくは均質に混合することによっ て調製する。Antibody compositions are prepared by transferring the antibody to a pharmaceutically acceptable carrier using standard pharmaceutical preparation methods. , diluents and/or excipients, preferably by homogeneous mixing. Prepare.
単一投与形態を製造するのに必要な抗体量は、治療または予防すべき感染、治療 すべき宿主および特別の投与様式によって変動する。任意の特別の宿主の特定の 投与値は、使用される抗体の活性、宿主の年令、体重、全体的な健康、性別およ び食餌、投与時間、投与経路、排泄速度、薬品の組み合わせ並びに治療を受けて いる感染の重篤度を含む種々のファクターに依存する。The amount of antibody required to produce a single dosage form is determined by the amount of antibody required to produce a single dosage form. Varies depending on the intended host and the particular mode of administration. any particular host specific Dosage values depend on the activity of the antibody used, the host's age, weight, general health, gender and diet, time of administration, route of administration, excretion rate, combination of drugs and treatment. It depends on a variety of factors, including the severity of the infection involved.
抗体組成物は、慣用的な、非毒性の製薬的に許容可能な所望の担体、希釈剤およ び/または賦形剤を含有する単位投与製剤で経口的にまたは非経口的に投与する ことができる。Antibody compositions can be carried in any desired conventional, non-toxic, pharmaceutically acceptable carriers, diluents and administered orally or parenterally in unit dosage formulations containing be able to.
以下の実施例を参照して本発明を更に説明する。The invention will be further illustrated with reference to the following examples.
1隻炎上 コルブ1フォルミス の ゛・ ESA の量製 メリノ種ボーダーレスター雑種の、12月齢で虫のない状態で飼育された幼若仔 ヒツジを、コルプリフォルミス毛様線虫の感染性幼虫60,000個で感染させ た。感染の21日後に、ヒツジを層殺し、そしてベーアマニゼーシゴン(Bas r+manization)によって線虫を腸から回収した。ペニシリン(10 0単位/ad)およびストレプトマイシン(100I@/d)を含有するRPM 11640培地中で虫を洗浄し、そして5%のCotのインキュベーター中、3 7°Cで16時間上記と同一の培地でインキュベートした。虫の生存性を目で検 査してモニターし、そして定型的には95%以上が生存しており且つ動いていた 。1 boat on fire Kolb 1 Formis ゛・ ESA Quantity production Juvenile Merino/Border Leicester crossbreed, 12 months old, kept free of insects. Sheep were infected with 60,000 infective larvae of Colpriformis nematode. Ta. Twenty-one days after infection, sheep were stratified and bred with Bas. The nematodes were collected from the intestine by r+manization). Penicillin (10 RPM containing 0 units/ad) and streptomycin (100 I@/d) Wash the worms in 11640 medium and incubate in an incubator with 5% Cot. Incubated in the same medium as above for 16 hours at 7°C. Visually check insect survival examined and monitored, and typically more than 95% were alive and active. .
虫および大きい壊死組織片をろ過または遠心分離によって培地から取り除いた。Worms and large pieces of necrotic tissue were removed from the medium by filtration or centrifugation.
こうして得られた上澄液またはる液は成虫ESA(Tc Ad ESA)と称す る。The supernatant liquid thus obtained is called adult ESA (Tc Ad ESA). Ru.
Tc L4 ESAと称する類似の調製物を、感染7〜8日後にヒツジから回収 したコルブリフォルミス毛様線虫の第4期幼虫から作った。続いてこれら抽出物 の成分を硫酸ドデシルナトリウムの存在下ポリアクリルアミドゲル電気泳動(S O5−PAGE)で分析すると、L4と成虫の抽出物は同じような抗原を有して いたが、成虫抽出物がL4抽出物より多くの抗原物質を産出したの”で、優先し て成虫抽出物を使用する。A similar preparation, termed Tc L4 ESA, was collected from sheep 7-8 days after infection. It was made from the fourth stage larva of Colubliformis ciliary nematode. Then these extracts The components of were subjected to polyacrylamide gel electrophoresis (S) in the presence of sodium dodecyl sulfate. When analyzed by O5-PAGE), L4 and adult extracts have similar antigens. However, the adult extract produced more antigenic substances than the L4 extract, so it was prioritized. Use adult insect extract.
実施I L4 ESAおよび ESAによるモルモー の り ン排泄/分泌抗原は実 施例1に記載したようにしてL4および成虫コルブリフォルミス毛様線虫から調 製した。この材料は、オツドネル等(1985)が記載した方法を使用してモル モットを腹腔内的にワクチン接種するために使用した。 L4または幼若成虫線 虫から得たESAは各実験で非常に有意に防御(寄生虫感染の62〜92%の減 少)したことがわかる(表1および表2)。Implementation I L4 ESA and Mormon excretion/secretion antigen by ESA are actually Prepared from L4 and adult Colubliformis nematodes as described in Example 1. Manufactured. This material was prepared in terms of molarity using the method described by Otsdoner et al. (1985). Motts were used to vaccinate intraperitoneally. L4 or young imaginal line ESA obtained from insects provided highly significant protection (62-92% reduction in parasitic infections) in each experiment. (Tables 1 and 2).
表 1 L4 ESAおよびヒラマメレクチンアフィニティークロマトグラフィーによる L4 ESA由来のフラクションを用いたモルモットの防ワクチン接種は関係の ある抗原で腹腔内に注入した(nは各群のモルモットの数を示す)。動物は28 日後に2,000個の幼虫を用いて抗原投与し、抗原投与の13日後に層殺して 虫数を数えた。LL”は結合物質であり、ヒラマメレクチンカラムから溶出する 。 LL−は非結合の、通り抜ける物質である。Table 1 L4 ESA and lentil lectin affinity chromatography Prophylactic vaccination of guinea pigs using fractions derived from L4 ESA is related to Injected intraperitoneally with certain antigens (n indicates the number of guinea pigs in each group). 28 animals After 1 day, 2,000 larvae were challenged, and 13 days after challenge, they were killed by stratification. I counted the number of insects. LL” is a bound substance, which is eluted from the lentil lectin column. . LL- is a non-binding substance that passes through.
成虫ESAおよびヒラマメレクチンアフィニティークロマトグラフィーによる成 虫ESA由来のフラクションを用いたモルモットの防御 ワクチン接種は関係のある抗原を用いて腹腔内的に注入した(nは各群のモルモ ットの数を示す)、動物は28日後に2.000個の幼虫を用いて抗原投与し、 抗原投与の13日後に層殺して虫数を数えた。ヒラマメレクチンカラムに結合し た物質はLL”であり、非結合はLL−である。Adult ESA and lentil lectin affinity chromatography Protection of guinea pigs using insect ESA-derived fractions Vaccination was performed intraperitoneally with the relevant antigen (n is the number of guinea pigs in each group). animals were challenged with 2,000 larvae 28 days later. Thirteen days after antigen administration, the number of insects was counted by layer killing. Binds to lentil lectin column The bonded substance is LL'', and the unbound substance is LL-.
実m 戒J「易1υ3Jl化 上澄液は「グイアフロJ (Amicon)YMIO膜上で40倍に濃縮した。Real m Precept J “Easy 1υ3Jl” The supernatant was concentrated 40 times on a Guiaflo J (Amicon) YMIO membrane.
濃縮した液体は、トリス−緩衝生理食塩液(TBS ; 10s+M )リス、 150mM NaC1pH7,4)で平衡化したヒラマメレクチン セファロー ス−48(Pharmacia)カラム(5XIC1)に吸収させた。カラムを 1m/分の流速でTBSloodで洗浄し、非吸収性物質(2BOnmの吸収を 測定)を含有するフラクションを採集した。特異的に結合したグリコペプチドを 78592%のメチルマンノシド溶液を使用してカラムから溶離した。2BOn −で吸収する物質を含有するフラクションを集めた。ヒラマメレクチン結合(L L” )および非結合(LL−)成分は両者共、lO容量のメタノールを添加し 、この混合物を一20℃で16時間冷却しそして12.000X gで15分間 遠心して溶液から沈降させた。The concentrated liquid was prepared using Tris-buffered saline (TBS; 10s+M), Hi lentil lectin Sepharo equilibrated with 150mM NaCl pH 7,4) The sample was absorbed onto a Su-48 (Pharmacia) column (5XIC1). column Wash with TBSlood at a flow rate of 1 m/min to reduce the absorption of non-absorbing substances (2BOnm). The fractions containing (measured) were collected. specifically bound glycopeptides The column was eluted using a 78592% methyl mannoside solution. 2BOn Fractions containing substances that absorb at - were collected. Hibu lentil lectin binding (L Both the L'') and unbound (LL-) components were treated with 10 volumes of methanol. , the mixture was cooled at -20° C. for 16 hours and heated at 12.000×g for 15 minutes. It was spun out of solution by centrifugation.
5OS−PAGEで分析するとき(図1 ) 、LL”フラクションは、見かけ 上の分子量81.37.32および30キロダルトン(kD>並びに分子量標準 と比較するとき幾らか分子量の小さい物質を有するクーマシー染色バンドを含有 していた。 LL−フラクションは、約28〜32.17および10〜12キロ ダルトンの主要バンドを含む幾つかの成分を含有していた。When analyzed by 5OS-PAGE (Figure 1), the LL” fraction appears to be molecular weight 81.37.32 and 30 kilodaltons (kD>) and molecular weight standards Contains a Coomassie-stained band with substances of somewhat lower molecular weight when compared to Was. The LL-fraction is about 28-32.17 and 10-12 kg It contained several components including Dalton's major band.
1隻■土 ヒーマメレク ン L4゛ び ESAによるモルモー のえ±l捜1 ヒラマメレクチンクロマトグラフィーによってL4または成虫ESAから調製し た物質はモルモットに腹腔内的にワクチン接種するために使用した(0°Don nal1等、1985) 、結合物質および非結合フラクションは共に、コルブ リフォルミス毛様線虫によるこれらモルモットのその後の抗原投与に対して非常 に顕著な防御度をもたらした(表1および2)、かくして、結合および流出フラ クションの双方にワクチン接種後に防御免疫応答を誘導し得る成分があることが 明白である。1 boat ■Sat Himamelekun L4 and ESA's Mormo Noe±l Search 1 Prepared from L4 or adult ESA by lentil lectin chromatography. The material was used to vaccinate guinea pigs intraperitoneally (0° Don nal1 et al., 1985), both the bound material and the unbound fraction were These guinea pigs were highly susceptible to subsequent challenge with C. liformis. (Tables 1 and 2), thus reducing binding and spillage Both vaccines may have components that can induce a protective immune response after vaccination. It's obvious.
1施U ESAヒーマメレクチン ム゛ び ム の なびに ″ SDS゛ル1゛ 々の の口成虫ESA (100〜500■のタンパク質)から得たLL” およびLL−フラクションの試料をレムリ緩衝剤(Laemmli、 1970 )中に懸濁し、そして12.5%の分離用5OS−ポリアクリルアミドゲル上で 電気泳動分離に付した。タンパク質をクーマシーR−250で視覚化して電気溶 離した(Stearne等、1985) 。1 U ESA Heal Bean Lectin Mum Navi SDS Le 1 LL obtained from mouth adult ESA (100-500 μg of protein) and LL-fraction samples in Laemmli buffer (Laemmli, 1970 ) and on a 12.5% separating 5OS-polyacrylamide gel. It was subjected to electrophoretic separation. Proteins were visualized with Coomassie R-250 and electrolyzed. (Stearne et al., 1985).
LL”フラクションから回収された本明細書に記載した成分は、見かけ上の分子 量30koのTc Ad ESAI ;見かけ上の分子量37kllのTc A d ESA2および見かけ上の分子量81kDのTc Ad ESA5であった (図2)、LL−フラクションから回収され本明細書に記載した成分は見かけ上 の分子量17kDのTc Ad ESA3および見かけ上の分子量11kDのT c Ad ESA4であった(図2)。The components described herein recovered from the LL” fraction are the apparent molecular Tc Ad ESAI with an amount of 30 ko; Tc A with an apparent molecular weight of 37 kll d ESA2 and TcAd ESA5 with an apparent molecular weight of 81 kD. (Figure 2), the components recovered from the LL-fraction and described herein are apparently Tc Ad ESA3 with a molecular weight of 17 kD and T with an apparent molecular weight of 11 kD c Ad ESA4 (Figure 2).
精製Tc Ad FtSAlに対して生じた抗体と共に分画したウェスターン移 動物がこれらの成分と交差反応を示しているので、LL”32kD成分およびL L−28〜30kD成分(図1)はLL” 30kD抗原に関係があると思われ る(Tc Ad ESAI)、これらの差異は、クローン化したDNA配列の分 析によってこの成分が広範にグリコジル化されていることが予測されるので、少 なくとも1部はTc AdESAIのグリコジル化の相異度によるものと思われ る。Western transfer fractionated with antibodies raised against purified Tc Ad FtSAl LL”32kD component and L because animals have shown cross-reactivity with these components. The L-28 to 30kD component (Figure 1) seems to be related to the LL''30kD antigen. (TcAd ESAI), these differences are due to the cloned DNA sequence. Analysis predicts that this component is extensively glycosylated; This is thought to be at least in part due to the different degree of glycosylation of TcAdESAI. Ru.
1施1− [によるモルモ・ の ン SOSゲルから電気溶離された個々の抗原は実施例2に記載したようにしてモル モットのワクチン接種に使用した。モルモットはコルプリフォルミス毛様線虫で 抗原投与され、そして寄生虫感染から有意に防御されることが示された(表3お よび4)。1 delivery 1- [by Mormon] Individual antigens electroeluted from SOS gels were quantified as described in Example 2. It was used for vaccination of motes. Guinea pigs are colpriformis trichophytes. challenged and were shown to be significantly protected against parasitic infection (Table 3). and 4).
ヒラマメレクチン結合フラクション(LL” )から得た、精製抗原、Tc A d ESAI、Tc Ad ESA2およびTc Ad ESA5を用いたワク チン接種によるモルモットの防御 群 抗 原 注入(i)n 束数 防御χワクチン接種 は関係のある抗原を用いて腹腔内に注入した。Purified antigen, TcA, obtained from lentil lectin-binding fraction (LL'') d Works using ESAI, TcAd ESA2 and TcAd ESA5 Protection of guinea pigs by Chin vaccination Group Antigen Injection (i) n Number of bundles Protective χ vaccination was injected intraperitoneally with the relevant antigen.
動物は28日後に2,000個の幼虫を抗原投与し、そして抗原投与の13日後 に層殺して束数を数えた(nは各群の動物数を示す)。Animals were challenged with 2,000 larvae 28 days later and 13 days after challenge. The number of bundles was counted in layers (n indicates the number of animals in each group).
−1−ニー ヒラマメレクチン非結合フラクション(LL−) から得た、精製抗原、Tc Ad ESA3およびTc Ad ESA4での予防接種によるモルモットの 防御 ワクチン接種は成虫コルプリフォルミス毛様線虫ESA調製物から単離した抗原 を用いて腹腔内に注入した。動物には28日後に2,000個の感染性幼虫を抗 原投与し、そして抗原投与13日後に層殺して束数を数えた。-1-knee Purified antigen, Tc, obtained from lentil lectin non-binding fraction (LL-) Guinea pig vaccination with Ad ESA3 and Tc Ad ESA4 defense Vaccination was performed with antigen isolated from adult Colpriformis trichophyton ESA preparations. was injected intraperitoneally using Animals were infected with 2,000 infective larvae after 28 days. The cells were administered directly, and 13 days after the antigen administration, they were sacrificed and the number of bundles was counted.
LL”およびLL−フラクションの双方の505−PAGEから電気溶離した抗 原がコルブリフォルミス毛様線虫による抗原投与感染に対してモルモットに実質 的な防御を与え得ることは表3および4の結果から明白である。この研究では、 LL”フラクションのTc Ad ESAI、Tc Ad ESA2およびTc Ad ESA5成分並びにLL−フラクションのTc Ad ESA3および Tc Ad ESA4の成分が特に関係がある。他のTc Ad ESA成分も 効果を有しており、そして関係がある。Antibody electroeluted from 505-PAGE of both LL” and LL-fractions. In response to challenge infection with the nematode Colubliformis nematode, guinea pigs undergo parenchyma. It is clear from the results in Tables 3 and 4 that it can provide significant protection. In this study, LL” fraction Tc Ad ESAI, Tc Ad ESA2 and Tc Ad ESA5 components and LL-fraction Tc Ad ESA3 and The components of Tc Ad ESA4 are particularly relevant. Other Tc Ad ESA components also It has an effect and is relevant.
アルヒドロゲルで補助されたTc Ad ESAIによるモルモットのワクチン 接種によって63%の防御が得られる。 Tc Ad ESAIの脱グルコシル 化しても、得られる防御度の低下は生じず(実験257では、対照の束数が異常 に低かった)、これはこの分子のタンパク質部分が防御を与えうろことを示して いる:炭水化物は明らかに防御成分ではなかった。Guinea pig vaccine with alhydrogel-assisted TcAd ESAI Vaccination provides 63% protection. Deglucosylation of Tc Ad ESAI (In experiment 257, the number of bundles in the control was abnormal. ), indicating that the protein portion of this molecule may confer protection. Yes: Carbohydrates were clearly not a protective component.
!施■1 −したベブの ミ 1 実施例5に記載したようにして単離したポリペフチドは、アプライドバイオシス テム(Applied Biosyste+s)ガス相アミノ酸配列分析装置で N−末端アミノ酸配列を分析した。内部配列を得るために、精製したタンパク質 はブロテイナーゼで消化した〔37°C1−夜、0.IM NHJCO3(pH 7,8)中、5−/wχの酵素/基質比で〕、ペプチドは30X2.1siのア クアボール(Aquapore) RP−30カラムを使用するHPLCにより 、0.1χTPAから0.1χTFA/70χアセトニトリルに勾配させて分離 した。得られたアミノ酸配列の幾つかは表5に示す:下線を引いた配列は、cD NAクローンの単離に適するオリゴヌクレオチドプローブを設計する為の情報の 提供に特に有用であることが見い出された。! Service ■1 - Bev's Mi 1 Polypeftides isolated as described in Example 5 were purchased from Applied Biosys. TEM (Applied Biosystem+s) gas phase amino acid sequence analyzer The N-terminal amino acid sequence was analyzed. Purified protein to obtain internal sequence was digested with brotainase [37°C 1-night, 0. IM NHJCO3(pH 7,8), with an enzyme/substrate ratio of 5−/wχ], the peptide was By HPLC using Aquapore RP-30 column , separated using a gradient from 0.1χTPA to 0.1χTFA/70χ acetonitrile. did. Some of the amino acid sequences obtained are shown in Table 5: the underlined sequences are cD Information for designing oligonucleotide probes suitable for isolation of NA clones It has been found to be particularly useful in providing
Tc Ad ES^1〜5から得られる幾つかのN−末端および内部アミノ酸配 列 Tc Ad、 ESAI アミノ酸末端配列:ANNKXQXDIEOLMPKYTc Ad ESA2 Tc Ad ESA3 アミノ末端配列:KSDEEI IKDALSALTc Ad ESA4 トリプシンペプチド:RLADDSDFGNYDすMKGOWON Tc Ad ESA5 アミノ末端配列:5XSLKD Tc Ad ESAIでは、還元およびカルボキシメチル化(0’Donal1 等、1973)後のアミノ酸分析によって半一シスチンの2つの残基の存在が示 された。 Tc Ad ESAIのN−グリカナーゼ(Genzyme)による 脱グリコジル化(これによってアスパラギンに結合した炭水化物が除去される) によって、見かけ上の分子量が20kDから15kDに低下した(図3)、これ はcDNA配列によって提供される情報と密接に一致している(以下参照)。Some N-terminal and internal amino acid sequences obtained from Tc Ad ES^1-5 column Tc Ad, ESAI Amino acid terminal sequence: ANNKXQXDIEOLMPKYTc Ad ESA2 Tc Ad ESA3 Amino terminal sequence: KSDEEI IKDALSALTc Ad ESA4 Tryptic peptide: RLADDSDFGNYDSU MKGOWON Tc Ad ESA5 Amino terminal sequence: 5XSLKD In Tc Ad ESAI, reduction and carboxymethylation (0'Donal1 et al., 1973) later amino acid analysis showed the presence of two half-cystine residues. It was done. Tc Ad ESAI N-glycanase (Genzyme) Deglycosylation (this removes carbohydrates attached to asparagine) The apparent molecular weight decreased from 20 kD to 15 kD (Figure 3), which is in close agreement with the information provided by the cDNA sequence (see below).
同様の処置で、Tc Ad ESA2を脱グリコジル化すると、SO5−PAG Eで分析した見かけ上の分子量は37kDから約30kDに減少した。In a similar procedure, when TcAd ESA2 is deglycosylated, SO5-PAG The apparent molecular weight analyzed by E was reduced from 37 kD to approximately 30 kD.
災施IL Tz Ad ESA :2−− る゛ −る え企単塁 A cDNA−イブ−1−の メツセンジャーRNAは、コルブリフォルミス毛様線虫線中のし4期の幼虫を、 塩酸グアニジン(6M)、酢酸ナトリウム(0,2M、pH5,2)、および2 −メルカプトエタノール(5kM)を含有する緩衝剤中で粉砕し、エタノールで 沈降させそしてオリゴ(dT)−セルロースカラムで分画して上記幼虫から単離 した。 L4 ポリA゛mRNAは、アマ−ジャム(^mersham)リボ ヌクレアーゼ)l/DNAポリメラーゼIキット(Amersha+*のcDN A合成システム、1lRPN、1256)を製造者が推奨したように使用して二 重鎖cDNA合成用の鋳型として使用した。 EcoRI リンカ−を添加した 後、二重ticDNAはラムダgt11に結合させそして、本質的にヒュイン( )luynh)等(1985)が記載したようにして、大腸菌Y1090細胞を 感染させるために使用される生存バクテリオファージ中に入れた。上記方法を使 用して、2X10’個の別個の組換え体からなるcDNAライブラリーを確立し た。 1.5X10’個の別個の組換え体を含有するラムダgtlo中に成虫 cDNAライブラリーを確立するために同様な技術を使用した。Disaster relief IL Tz Ad ESA :2-- ゛ -゛゛ - E-Ki single base A cDNA-Eve-1- Metsenger RNA detects 4th stage larvae in the Colubliformis nematode nematode. Guanidine hydrochloride (6M), sodium acetate (0.2M, pH 5.2), and 2 - Triturated in a buffer containing mercaptoethanol (5 kM) and isolated from the larvae by sedimentation and fractionation on an oligo(dT)-cellulose column. did. L4 polyA mRNA is derived from Amersham ribo Nuclease) l/DNA Polymerase I Kit (Amersha+* cDNA A Synthesis System, 11RPN, 1256) as recommended by the manufacturer. It was used as a template for heavy chain cDNA synthesis. Added EcoRI linker Afterwards, the double ticDNA was bound to lambda gt11 and essentially Huin ( E. coli Y1090 cells were grown as described by ) Luynh et al. (1985). into live bacteriophage used to infect. using the above method A cDNA library consisting of 2X10' distinct recombinants was established using Ta. Adult worms in lambda gtlo containing 1.5 x 10' separate recombinants A similar technique was used to establish a cDNA library.
B 第1ゴヌ レオ ゛プロー゛ i ) Tc Ad ESAI アミノ酸配列DIEQLMPは縮重オリゴヌクレオチドプローブ を設計するために使用した。B 1st Gonu Leo ゛Plow゛ i) Tc Ad ESAI Amino acid sequence DIEQLMP is a degenerate oligonucleotide probe used to design.
ii ) Tc Ad ESA2 アミノ酸配列NPPIKDTPは、4倍宿重の位置にデオキシイノシンを使用し て市電オリゴヌクレオチドプローブ ii ) Tc Ad ESA3 アミノ酸配列DEEIIKDAは市電オリゴヌクレオチiv) Tc Ad E SA4 アミノ酸配列−MKGQWQNは、オリゴヌクレオチドプローブ 5’ TTTTGCCATTGICCTTTCATCC^3”を設計するために 使用した。ii) Tc Ad ESA2 The amino acid sequence NPPIKDTP uses deoxyinosine at the 4-fold heavy position. streetcar oligonucleotide probe ii) Tc Ad ESA3 The amino acid sequence DEEIIKDA is the streetcar oligonucleotide iv) Tc Ad E SA4 Amino acid sequence - MKGQWQN is an oligonucleotide probe To design 5’ TTTTGCCATTGICCTTCATCC^3” used.
v) Tc Ad ESA5 オリゴヌクレオチドは全て、選択したアミノ酸配列をコードするDNA配列の逆 補体である。v) Tc Ad ESA5 All oligonucleotides are the reverse of the DNA sequence encoding the selected amino acid sequence. It is a complement.
CcDNA−イブ−1−、+e の−ラムダgtllおよびgtlO中のL4 および幼若成虫のcDNAライブラリーはそれぞれ増幅しそして、ワラス(Wa llace)等[1985]並びにベントン(Benton)およびデービス( Davis) [1977] が記載したようにして重複フィルターリフトを検 索するために上記合成オリゴヌクレオチドを使用してスクリーニングした。CcDNA-eve-1-, +e-lambda gtll and gtlO L4 and young adult cDNA libraries were respectively amplified and [1985] and Benton and Davis ( Detect duplicate filter lifts as described by Davis) [1977]. The synthetic oligonucleotides described above were used for screening.
D cDN^クローンの 1 多数の選択されたクローンは、EcoRIで再び切断されそして同じ酵素で消化 されたM13mplB中にサブクローン化され得る挿入物を含有していた。サブ クローン化された挿入物のDNA配列はサンガー(Sanger)等[1980 ]の方法を使用して決定した。D cDN^clone 1 A number of selected clones were cut again with EcoRI and digested with the same enzyme. It contained an insert that could be subcloned into M13mplB. sub The DNA sequence of the cloned insert was determined by Sanger et al. [1980 ] was determined using the method of
Tc Ad ESAI cDNAの幾つかのクローンのDNA配列を決定しそし て表6に要約する。 DNA配列は130個のアミノ酸のタンパク質をコードす る読み取り枠を有している。N−末端アミノ酸配列はAd ESAIから単離さ れた抗原のガス相配列分析で得られる配列に相当しく表6の下線部)、そしてT c Ad ESAIおアーミラリアメレア(Armillaria園ellea )消化で得られた2つの内部ペプチド配列も同定可能である。 Tc Ad f !SAI遺伝子を含有するプラスミドベクターPTTQ18で形質転換した大腸 菌株TGIは、内部参照番号BTA1689が与えられている。The DNA sequences of several clones of Tc Ad ESAI cDNA were determined and The results are summarized in Table 6. The DNA sequence encodes a 130 amino acid protein. It has a reading frame. The N-terminal amino acid sequence was isolated from Ad ESAI. (underlined part in Table 6), and T c Ad ESAI Armillaria ellea ) Two internal peptide sequences resulting from the digestion can also be identified. Tc Ad f ! Large intestine transformed with plasmid vector PTTQ18 containing SAI gene Strain TGI has been given the internal reference number BTA1689.
幾つかの単離体から得たDNAの配列は、翻訳されたアミノ酸配列に幾らか変動 があることを示している。変動しているアミノ酸は表6中で二重下線を引いであ る。成熟タンパク質に相当する配列は決定されている。推定N−末端リーダー配 列の配列配列は未だ確定されていない。The DNA sequences obtained from some isolates show some variation in the translated amino acid sequence. It shows that there is. Amino acids that vary are double underlined in Table 6. Ru. The sequence corresponding to the mature protein has been determined. Putative N-terminal leader sequence Column array array has not yet been determined.
このアミノ酸配列はN−結合グリコシル化の可能性のある4つの部位を示しくコ ンセンサス配列、AsnX5er/Thr)、これはこの抗原のヒラマメレクチ ン結合特性およびN−グリカナーゼによる処置後のS[1S−PAGEでの抗原 の移動性の変化と一致している。This amino acid sequence shows four potential sites of N-linked glycosylation. sequence, AsnX5er/Thr), which is the lentil antigen Antigen binding properties and antigen on S[1S-PAGE after treatment with N-glycanase This is consistent with changes in the mobility of
最後に、示されたアミノ酸から計算した分子量(15,300ダルトン)はN− グリカナーゼ処理抗原で得られたものと非常に一致している(図3)。Finally, the molecular weight calculated from the indicated amino acids (15,300 Daltons) is N- Very consistent with that obtained with glycanase-treated antigen (Figure 3).
一麦一旦− Tc Ad ESAlをコードするcDNAのDNA配列および完全成熟タンパ AAA AAA AAA AAATc Ad ESA4をコードするクロ ーンのDNA配列は表7に示す。Ichimugi once- DNA sequence of cDNA encoding TcAd ESAl and complete mature protein AAA AAA AAA AAATc Ad ESA4 code code The DNA sequence of the clone is shown in Table 7.
DNA配列は92個のアミノ酸のタンパク質をコードする読み取り枠を有し、そ して唯1つのグリコジル化可能部位を有している。The DNA sequence has an open reading frame that encodes a protein of 92 amino acids; It has only one glycosylation site.
Tc Ad ESA4の遺伝子を有する、内部のpBR322に基づくベクター 、pBTA503で形質転換された大腸菌株TGIは内部参照番号BTA169 0が与えられている。ヒラマメレクチンカラムに結合しないことおよび5O5− PAGEでの概算分子量と配列に基づく推定分子量間の密接な一致はこのタンパ ク質がグリコジル化されていないことを示している。Internal pBR322-based vector carrying the gene for TcAd ESA4 , E. coli strain TGI transformed with pBTA503 has internal reference number BTA169. 0 is given. Does not bind to the lentil lectin column and 5O5- The close agreement between the estimated molecular weight by PAGE and the sequence-based predicted molecular weight suggests that this protein This indicates that the protein is not glycosylated.
−JL二し− Tc Ad ESA4をコードするcDNAのDNA配列および翻訳アミノ酸A AA AAA AAA AAA ATc Ad ESA3を=1−ドす る部分クローンのDNA配列は表8に示す、このDNAは43個のアミノ酸のペ プチドをコードする読み取り枠を有している。天然タンパク質から得たN−末端 アミノ酸配列に相当する配列には下線を引いである0表8に示されるTc Ad ESA3遺伝子フラグメントを有する、プラスミドl)T?T3(Phara acia)で形質転換された大腸菌株DH5a F (BRL)は内部参照番号 1691が与えられている。-JL Nishi- DNA sequence of cDNA encoding Tc Ad ESA4 and translated amino acid A AA AAA AAA AAA ATc Ad ESA3=1-do The DNA sequence of the partial clone is shown in Table 8. This DNA consists of 43 amino acid pairs. It has an open reading frame that encodes a petid. N-terminus obtained from natural protein Sequences corresponding to the amino acid sequences are underlined. Tc Ad shown in Table 8 Plasmid l)T? carrying the ESA3 gene fragment T3 (Phara acia) transformed E. coli strain DH5a F (BRL) with internal reference number 1691 is given.
−表−■− Tc Ad ESA3をコードする部分cDNAのDIiA配列および翻訳アミ ノ裏立斑工 Tra T 人 とし のTc Ad ESAの ′のTraTは、大 腸菌の特定の株の外部膜リボプロティンである。−Table−■− DIiA sequence and translation amino acid of partial cDNA encoding TcAd ESA3 Noura Tachibaku TraT The TraT of a person's Tc Ad ESA's is large. It is an outer membrane riboprotein of certain strains of S. enterica.
本発明者は抗生物質抵抗性のプラスミドR100(Og、1ta R,丁6等、 1982、J、Bact、 耳lイ819〜827) から得られるTraT をコードする遺伝子をクローニングしそしてこの遺伝子を、TraTの発現がバ クテリオファージラムダの左方向のプロモーター(P J、)の制御下にあるプ ラスミド形質転換した。 PLの不耐熱性リプレッサーを有する細胞、λc18 57(Retaaut E、等、1980. GeneS15.81〜93)を 38〜42°Cでインキュベートするとき、高レベルのTraTを得ることがで きる。The present inventor has developed antibiotic-resistant plasmid R100 (Og, 1taR, D6, etc.) TraT obtained from J. Bact, 1982, 819-827) We cloned a gene encoding TraT and introduced this gene into a gene encoding TraT. The protein under the control of the leftward promoter (PJ,) of cterophage lambda rasmid transformed. Cells with thermolabile repressor of PL, λc18 57 (Retaout E, et al., 1980. GeneS15.81-93) High levels of TraT can be obtained when incubated at 38-42°C. Wear.
Tc Ad ESAIをコードする遺伝子は、新しい遺伝子がTraTの最初の 30個のアミノ酸(20個のアミノ酸の長いシグナル配列を含む)をコードする ように、TraTのコード領域の5″位に融合させ、次いで幾つかのアミノ酸が DNA操作に使用される制限部位で生じ、その後Tc Ad ESAIをコード する遺伝子が生じた(図4)。The gene encoding Tc Ad ESAI is a new gene that is the first of TraT. encodes 30 amino acids (including a long signal sequence of 20 amino acids) fused to the 5″ position of the coding region of TraT, and then several amino acids are Occurs at restriction sites used for DNA manipulation and subsequently encodes Tc Ad ESAI A gene was generated that does this (Fig. 4).
Tra−T遺伝子のこの位置への挿入は、TraT遺伝子のコドン31および3 2にPvull制限部位を特定部位の突然変異誘発によって創製することにより 可能となった。Tc Ad ESAI遺伝子は、57QbpのXa+n1(Ec oRI部位を切断し、IINAポリメラーゼ■−フレノウフラグメント−を入れ そして再結合して生成される)から旧ndlffのフラグメントとして得られた 。Insertion of the Tra-T gene at this position will result in codons 31 and 3 of the TraT gene. 2 by creating a Pvull restriction site by site-specific mutagenesis. It has become possible. The Tc Ad ESAI gene is a 57Qbp Xa+n1 (Ec Cut the oRI site and insert IINA polymerase - Frenow fragment. and was obtained as a fragment of the old ndlff from .
適当な大腸菌宿主では、培養温度を上昇させると、00.。。当たり1リツトル 当たり50■までの見かけ上の分子量22kDのTraT−Tc Ad ESA Iが産生される。In a suitable E. coli host, increasing the culture temperature will result in 0.00. . . 1 liter per TraT-Tc Ad ESA with an apparent molecular weight of 22kD up to 50μ I is produced.
発現レベルが細胞の処理能力を超えない場合、シグナル配列を融合タンパク質か ら切り離して末端システィンを更に修飾することができる。このTraT−免疫 原融合体を作成すると、タンパク質に自己補助特性を与え得るので、この修飾は 有利であろう(国際特許出願PCT/AU87100107 、発明の名称:免 疫強化)。If the expression level does not exceed the processing capacity of the cells, the signal sequence can be added to the fusion protein. The terminal cysteine can be further modified by cleaving it from the protein. This TraT-immune This modification is important because creating protofusions can confer self-auxiliary properties to the protein. It would be advantageous (International Patent Application PCT/AU87100107, Title of Invention: Exemption) epidemic reinforcement).
Tc Ad ESAのTraTW人 のTc Ad ESA4コードする 遺伝子はTc Ad ESAI−TraTの構築と同−の方法でTraTのコー ド化領域の5”部分に融合させた。 Tc AdESA4の全コード化領域(9 2個のアミノ酸)はラムダ左側プロモーターの制御下でTc Ad ESA4と して発現される。Tc Ad ESA TraTW person Tc Ad ESA4 code The gene was constructed using the same method as the construction of TcAd ESAI-TraT. The entire coding region of Tc AdESA4 (9 2 amino acids) are combined with Tc Ad ESA4 under the control of the lambda left promoter. It is expressed as
YEUC4への ローニングお のTc Ad ESAIをコードする cDNAフラグメントは、バイオテクノロジー(Biotechnology) のC5IRO部で開発された、酵母発現ベクター、pYEUc114中に挿入し た(図5)、このベクターはサツカロミセスセレビシェのCup 1遺伝子(メ タロチオコンをコードする)を使用する。付随するプロモーターは、酵母細胞に 含まれているとき銅で誘導可能である0w4で誘導可能なCup 1プロモータ ーおよび複数のクローニング部位を有するCup 1遺伝子カセツトはオースト ラリア特許出願第15845/88およびマクレアディ(Macreadie) 等、プラスミド(P1ass+id) 、L、 147〜150に記載されてい る。上記したTc Ad ESAI cDN^を含有するEcoRIフラグメン トをpYEUc中に挿入してCup 1をコードする配列の大部分を置換する。Code Tc Ad ESAI for roning to YEUC4 cDNA fragments are biotechnology The vector was inserted into pYEUc114, a yeast expression vector developed by the C5IRO department of (Fig. 5), this vector carried the Cup 1 gene (Metal code for tarothiocon). The associated promoter is present in yeast cells. The 0w4-inducible Cup1 promoter is copper-inducible when containing The Cup 1 gene cassette, which has a - and multiple cloning sites, is Laria Patent Application No. 15845/88 and Macreadie etc., described in Plasmid (P1ass+id), L, 147-150. Ru. EcoRI fragment containing the above Tc Ad ESAI cDN^ into pYEUc to replace most of the Cup 1-encoding sequence.
これによって、表6に示される配列に続いているメタロチオコンのN−末端の4 つのアミノ酸からなる融合タンパク質が合成される。組換え体プラスミド(pY EUc3084E)を有するサツカロミセスセレビシェ細胞(CL13−ABS Y86株、[α、ΔUra31eu2 his pral prbl prcl cps1l)は、ヒスチジンおよびロイシンを含有する最少培地中で増殖させ た。 Tc Ad ESAIの発現を誘導するために、培地に硫酸銅を添加して 0.5+*Mとした。This results in the N-terminal 4 of the metallotiocone following the sequence shown in Table 6. A fusion protein consisting of two amino acids is synthesized. Recombinant plasmid (pY Satucharomyces cerevisiae cells (CL13-ABS Y86 strain, [α, ΔUra31eu2 his pral prbl prcl cps1l) was grown in minimal medium containing histidine and leucine. Ta. To induce the expression of TcAd ESAI, copper sulfate was added to the medium. It was set to 0.5+*M.
銅の存在下2時間後に、細胞を採集し、チモリアーゼで処理して酵母の外部壁を 除去し、次いで5O5−PAGEおよびウェスターン法で検査した。Tc Ad ESAIをコードするDNAを含有する組換え体プラスミドはpYEUc30 84Bと命名した。After 2 hours in the presence of copper, cells were harvested and treated with zymolyase to remove the yeast external wall. removed and then examined by 5O5-PAGE and Western method. Tc Ad The recombinant plasmid containing the DNA encoding ESAI is pYEUc30 It was named 84B.
1111段 ゛よび )°パれる ” の 組換え体大腸菌細胞により発現された抗原はワクチン接種試験用に精製すること ができる。以下はTc Ad ESAIの単離法を例示するものである。1111 steps ゛ and Antigens expressed by recombinant E. coli cells should be purified for vaccination studies. Can be done. The following is illustrative of a method for isolating TcAd ESAI.
実施例9で記載した組換え体プラスミドを含有する細菌細胞は適当な培地中28 °Cで増殖させ、そしてTc Ad ES^1の発現は温度を42°Cに上昇さ せそしてこの温度で培養物を4〜6時間インキュベートして誘導する。4°C, 10,0OOX gで10分間遠心して培養物から細胞を回収する0次いで、こ のペレットを適当な緩衝剤、例えば50mM )リス−塩酸、10mM EDT A 、 50a+M NaC1,pH8,0中に再懸濁し、そして前と同じよう に遠心して細胞をペレットにする。洗浄したペレットを緩衝剤、例えば50■H トリス−塩酸、1a+M EDTA 、5+wM DTT、0.1++M PM SF、 pH8,0中に再懸濁し、マルトンーガウリン(Marton−Gau lin)ホモジナイザー中、9000ps iで6回ホモシナネートする0次い で、細胞ホモジネートを4°Cl2O,0OOX gで20分間遠心して、組換 え体抗原を含有する濃密な封入体を採集する。上澄液を傾瀉して除きそしてペレ ットを、封入体中のタンパク質を可溶化するのに適する溶液、例えば8Mの尿素 、100mM NaPi、 b+M EDTA、 40mM DTT、 pH8 ,5中に再懸濁し、そして攪拌し乍ら37°Cで4時間インキエベートする。可 溶化した抗原は、上記溶液を「グイアフロ」アミコン(Amicon)YM30 膜を通過させ次いで「グイアフロ」アミコンYMIO膜で溶離物を濃縮すること によって回収することができる0次いで、レアネート(retenate)はり ん酸を添加してpH3,0に調整し、8Mの尿素で1:1に希釈してNa・濃度 を50s+Mに減少させ、そして8Mの尿素、50wM、NaPi、 5mM EOTA 、 5mM 0TTSpH3,0で平衡化させたS−セファロース「 高速流」のカラムを通過させることができる0組換え体抗原は50〜400mM NaPiの勾配でカラムから溶離させる。 21kDO組換え体Tc Ad ESA抗原を集めそして「グイアフロJアミコンYMIO膜で濃縮する0次いで 、この濃縮をSDSに関して0.1χとし、10000カセツトオフ透析袋中、 8Mの尿素、50mM NaPi 、 2mM DTT 、 0.1χSDS、 pH8,5に対して透析してNa”濃度を50mMに減少させ、そしてpHを 8.5にあげる0次いで抗原は、15hM NaC1,101Mトリス−塩酸、 0.0065M酸化型グルタチオン、0.06+aM還元型グルタチオン、0. 1χSOS。Bacterial cells containing the recombinant plasmid described in Example 9 were grown in a suitable medium at 28 grown at °C, and expression of TcAd ES^1 was induced by increasing the temperature to 42 °C. and induce the culture by incubating at this temperature for 4-6 hours. 4°C, Harvest the cells from the culture by centrifuging for 10 minutes at 10,000x g. The pellet in a suitable buffer, e.g. 50mM) Lis-HCl, 10mM EDT A, 50a+M resuspended in NaCl, pH 8.0 and as before Pellet the cells by centrifugation. The washed pellet is placed in a buffer, e.g. 50μH. Tris-HCl, 1a+M EDTA, 5+wM DTT, 0.1++M PM resuspended in SF, pH 8.0, Marton-Gau lin) Homogenize 6 times at 9000 ps i in a homogenizer. Then, the cell homogenate was centrifuged for 20 min at 4 °CCl2O, 0OOX g to remove the recombinant Dense inclusion bodies containing prey antigens are collected. The supernatant was decanted and pelleted. the kit in a solution suitable for solubilizing the proteins in the inclusion bodies, such as 8M urea. , 100mM NaPi, b+M EDTA, 40mM DTT, pH 8 , 5 and incubate for 4 hours at 37°C with stirring. Possible For the solubilized antigen, mix the above solution with “Guiaflo” Amicon YM30. passing through a membrane and then concentrating the eluate on a "Guiaflo" Amicon YMIO membrane. Then, the retenate beam can be recovered by Adjust the pH to 3.0 by adding phosphoric acid, dilute 1:1 with 8M urea, and adjust the Na concentration. to 50s+M, and 8M urea, 50wM, NaPi, 5mM S-Sepharose equilibrated with EOTA, 5mM 0TTS pH 3.0 0 recombinant antigen can be passed through the column in a high flow rate of 50-400mM Elute from the column with a gradient of NaPi. 21kDO recombinant Tc Ad The ESA antigen is collected and concentrated with a Guiaflo J Amicon YMIO membrane. , this concentration was taken as 0.1χ with respect to SDS, in 10,000 cassette-off dialysis bags, 8M urea, 50mM NaPi, 2mM DTT, 0.1χSDS, Dialyzed against pH 8.5 to reduce Na'' concentration to 50mM, and pH The following antigens listed in 8.5 are 15hM NaCl, 101M Tris-HCl, 0.0065M oxidized glutathione, 0.06+aM reduced glutathione, 0. 1χSOS.
pns、sを含有する溶液に対して室温で24時間透析し、最後に150a+M NaC!、 10mMのトリス−塩酸、0.1χのSDS 、 p)17.4 に対して室温で24時間透析することができる。透析袋から回収した抗原は、宿 主動物のワクチン接種に先き立つ適当なアジュバント中での製剤化前に0.22 −のフィルターで滅菌することができる。Dialysis for 24 hours at room temperature against a solution containing pns,s and finally 150a+M NaC! , 10mM Tris-HCl, 0.1χ SDS, p) 17.4 can be dialyzed against for 24 hours at room temperature. The antigen recovered from the dialysis bag is 0.22 prior to formulation in a suitable adjuvant prior to vaccination of the main animal. - Can be sterilized with a filter.
精製プロトコールの詳細は各抗原で異なるが、本明細書に従って他の組換え体抗 原を精製するために同様な方法を実施することができる。The details of the purification protocol will vary for each antigen, but other recombinant antibodies can be Similar methods can be carried out to purify raw materials.
1゛ えTc Ad ESAの1 pYEUc30B4Eを有する酵母細胞は、ヒスチジンおよびロイシンを含有す る最少培地中で2日間増殖させた0次いで、細胞を新鮮な培地に入れ、更に2時 間インキエベートし、ついで硫酸鋼を0.5mMになるように加えた。更にイン キユベートを2時間継続し、細胞を遠心して採取し、そしてブラウン(Brau n)の細胞ホモジナイザーを製造者の指示に従って使用して細胞を溶解させた。1゛ ETC Ad ESA 1 Yeast cells with pYEUc30B4E contain histidine and leucine. Cells were grown for 2 days in minimal medium for 2 hours. Cells were then placed in fresh medium for an additional 2 hours. After incubating for a while, steel sulfate was added to a concentration of 0.5 mM. further in Cubate was continued for 2 hours, cells were harvested by centrifugation, and Brau Cells were lysed using a cell homogenizer according to the manufacturer's instructions.
N単に言うと、細胞はガラスピーズと共に高速で振とうすることによって破壊さ れる。ガラスピーズは重力下で沈ませて細胞溶解物を集める。粗製溶解物を15 .000rp■で遠心し、得られた上澄液およびペレットはTc Ad ES^ 1タンパク質の存在を試験した。該タンパク質は15krp−のペレットにだけ 見られた。Simply put, cells are destroyed by shaking at high speed with glass beads. It will be done. The glass beads are allowed to sink under gravity to collect the cell lysate. 15 min of crude lysate .. The supernatant and pellet obtained were centrifuged at 000 rpm■. The presence of one protein was tested. The protein is present only in the 15 krp pellet. It was seen.
次ぎにこのペレットを、8M尿素、2%SDS、10mM EDTAおよび2% メルカプトエタノールを含有する50s+Mの重炭酸アンモニウム溶液に溶解さ せた0次いで、この粗製物質は、セファデフクスG75カラムを使用し1mM fiDTA、 0.1χSDSおよび0.1χメルカプトエタノールを含有する 50+wMの重炭酸アンモニウム溶液を流して分画した。 Tc Ad ESA I (グリコジル化されていない)に予期される分子量の物質を含有しそして成 虫寄生虫から得られるTc Ad ESAIに対してウサギで生じる抗血清(R 45)と反応するフラクションを集め、そしてその後のワクチン接種試験に使用 した。This pellet was then combined with 8M urea, 2% SDS, 10mM EDTA and 2% Dissolved in 50s+M ammonium bicarbonate solution containing mercaptoethanol. This crude material was then purified to 1mM using a Sephadefex G75 column. Contains fiDTA, 0.1χ SDS and 0.1χ mercaptoethanol Fractionation was carried out by running a 50+wM ammonium bicarbonate solution. Tc Ad ESA I (non-glycosylated) containing substances of the expected molecular weight and Antiserum raised in rabbits against TcAd ESAI obtained from insect parasites (R Collect the fractions that react with 45) and use them in subsequent vaccination trials. did.
皇施拠U に る ’ Tc Ad ESA盪 5295 束数±5DI8御%対照 413±2 99 ワクチン接種 275±166 33組換え体Tc Ad ESAI 製剤でモルモットにワクチン接種し、そして上記したようにしてコルブリフォル ミス毛様線虫で抗原投与した。対照動物での束数が非特異的に低くそしてこの特 別の実験では散在していたことに注意すべきである。このようなことが起きた以 前の事例(例えば表3、実験257参照)では、実験を繰り返すことによって観 察される防御値の上昇がもたらされた(例えば、表3、実験236参照)。Imperial facility U To ’’ Tc Ad ESA 5295 Number of bundles ±5DI8% control 413±2 99 Vaccination 275±166 33 recombinant Tc Ad ESAI Vaccinate guinea pigs with the formulation and administer colbulifol as described above. The cells were challenged with C. elegans. The number of bundles in control animals was nonspecifically low and this characteristic It should be noted that in different experiments it was scattered. Since something like this happened In the previous case (see e.g. Table 3, Experiment 257), the observation can be made by repeating the experiment. (See, eg, Table 3, Experiment 236).
実薯朋■ 他の寄生虫への拡張 組換え体DNA技術により作成されたTc Ad ESA抗原はワクチン接種さ れた動物にコルブリフォルミス毛様線虫侵入に対する防御免疫応答を誘導するこ とができる。この免疫応答はまた、本明細書の他の箇所で引用したような他の寄 生線虫種に対する防御を提供することも可能であるが、他の寄生線虫種はTc AdESA抗原に関係はあるが同一ではないタンパク質を発現すると上記より一 層考えられる。大部分の寄生線虫種では、これら寄生虫から遺伝子をクローニン グしてその成分の防御能力を試験する目的で寄生虫物質の成分を精製し且つ調製 品中のそれらの構造を同定するのに十分な寄生虫物質を得ることは実際的でない 、これらの場合には、関係している抗原を試験出来る唯一の手段は、関係のある タンパク質をコードする遺伝子を単離するために組換え体DNA法を使用して関 係のあるタンパク質を組換え体止物中で発現させ、関係のあるタンパク質をこれ ら組換え体生物から精製して動物にワクチン接種し、そして動物を寄生線虫の他 の種で抗原投与することである。抗原を精製するのに十分な寄生虫物質を得るこ とが可能な場合であっても、Tc AdESA抗原に関係がある防御抗原をコー ドする遺伝子をクローニングするために分子バイオロジーを使用する上記方法は ワクチンを開発するのに好ましい方法である。この方法が実施可能でであること を示すために、以下の実施例は、コルブリフォルミス毛様線虫以外の寄生線虫の 2つの種、即ち特にヒツジやヤギのしわ胃寄生虫である捻転毛様線虫およびイヌ やネコの寄生虫であるイヌ糸状虫にTc Ad ESAIおよび4に関係した遺 伝子があることを証明している。Sweet potato friend Extension to other parasites TcAd ESA antigen created by recombinant DNA technology can be used for vaccination. Inducing a protective immune response against invasion by C. colubriformis nematodes in infected animals. I can do it. This immune response may also be influenced by other contributors, such as those cited elsewhere herein. Although it is also possible to provide protection against live nematode species, other parasitic nematode species are Tc Expressing a protein related to, but not identical to, the AdESA antigen, Layers can be considered. In most parasitic nematode species, genes can be cloned from these parasites. purifying and preparing components of parasitic substances for the purpose of testing the protective capacity of the components by It is impractical to obtain sufficient parasitic material to identify their structures in the product. , in these cases the only means by which the relevant antigen can be tested is Using recombinant DNA methods to isolate protein-encoding genes Related proteins are expressed in recombinant suspensions, and related proteins are expressed in this recombinant suspension. purified from recombinant organisms, vaccinated animals, and infected with parasitic nematodes. The method is to challenge the species with the following species. Obtaining enough parasite material to purify the antigen Even if possible, the protective antigen related to the TcAdESA antigen The above method uses molecular biology to clone genes for It is the preferred method for developing vaccines. This method is practicable In order to demonstrate the two species, virulent nematodes, which are especially gastric parasites of sheep and goats, and dogs. Remains related to Tc Ad ESAI and 4 are found in heartworm canis, which is a parasite of cats and cats. It proves that there is a gene.
ゲノムDNAは、ヘルマン(Herr++ann)およびフリシャラフ(Fr− 3schauf)、1987、が記載した方法によって3種の寄生虫から精製し た。各DNA調製品1trgは制限酵素、BaaHI 、PstIおよびHin d m (Promega)の各々で消化した。適当な大きさのマーカーを共に 存している消化DNAは0.4χのアガロースゲルで電気泳動してそれらの大き さに従ってDNAフラグメントを分離した。このゲルをエチジウムプロミドで染 色しDNAを写真撮影した後、ゲル中のDNAは、プラスに負荷されたナイロン 膜および製造者(A+*ersham)が推奨したようにしてハイブリッド形成 用に製造した膜アルカリ性伝達によって移した。 Tc Ad ESAIおよび 4をコードするDNAのフラグメントは、ベーリンガーーマンハイム(Boeh ringer Manheim)が販売したキットに記載された無作為標識法に よって32pで標識した。次いで、この膜を、lQ”cpm/dの放射性Tc Ad ESA DNAを含有する5 xsSpE、 5 xデンハート(Den hard ts)溶液、0.5χSDSおよび20n/dの変性へリング精子D NA (Naniatis等、1982参照)の溶液中、42°Cで20時間イ ンキュベートした。次いで、この膜を洗浄して全ゆる非特異的に結合したDNA を除去しそしてX線フィルムに暴露した。図6は、捻転毛様線虫およびイヌ糸状 虫DNAの両方に、Tc Ad ESA DNAフラグメントとハイブリッドを 形成する特異的DNA配列があることを示している。このことによって、これら DNA配列はゲノムDNA ライブラリーからか若しくはcDNAライブラリー からクローニングすることができまたは、上記種の寄生虫からポリメラーゼ連鎖 反応のような他の組換え体DNA技術によりそして拡大化により寄生線虫の任意 の他の種から作成することができ、そして寄生線虫の他の種に対するワクチンに 使用するためにこれら関連遺伝子を合成する組換え体生物を構築することができ るであろうことが証明される。Genomic DNA was obtained from Herrmann (Herr++ann) and Frisharaf (Fr- Purified from three parasites by the method described by John Schauf, 1987. Ta. 1trg of each DNA preparation contains restriction enzymes, BaaHI, PstI and Hin. dm (Promega). Use a marker of an appropriate size. Existing digested DNA was electrophoresed on a 0.4x agarose gel to determine its size. The DNA fragments were separated according to their characteristics. This gel was stained with ethidium bromide. After coloring and photographing the DNA, the DNA in the gel is transferred to the positively loaded nylon Hybridization as recommended by the membrane and manufacturer (A+*ersham) Transferred by alkaline transfer to membranes prepared for use. Tc Ad ESAI and The DNA fragment encoding 4 was obtained from the Boehringer-Mannheim The random labeling method described in the kit sold by Ringer Manheim) Therefore, it was labeled with 32p. This membrane was then treated with radioactive Tc at lQ'' cpm/d. 5xsSpE containing Ad ESA DNA, 5x Denhart (Denhart) hard ts) solution, 0.5χ SDS and 20n/d denatured Hering sperm D Incubated for 20 hours at 42°C in a solution of NA (see Naniatis et al., 1982). Incubated. The membrane is then washed to remove any non-specifically bound DNA. was removed and exposed to X-ray film. Figure 6 shows the torsion nematode and canis filamentum. Add Tc Ad ESA DNA fragment and hybrid to both insect DNA. This indicates that there are specific DNA sequences that form. This allows these The DNA sequence can be obtained from a genomic DNA library or a cDNA library. or polymerase chains from parasites of the above species Parasitic nematodes can be isolated by other recombinant DNA techniques such as reaction and by expansion. can be made from other species of parasitic nematodes, and vaccines against other species of parasitic nematodes Recombinant organisms can be constructed to synthesize these relevant genes for use. It is proven that there will be.
裏庭例お 商業的なワクチンを製造するための規模拡大これまで記載した製造および精製技 術は実験室規模で実施されている。本発明の抗原を商業的に製造するためには、 形質転換された宿主の大規模発酵が必要である。backyard example Scaling up to produce commercial vaccines The manufacturing and purification techniques described above The technique is being performed on a laboratory scale. To commercially produce the antigen of the present invention, Large scale fermentation of the transformed host is required.
大M1.槓発酵は標準的技術に従って実施され、その際選択される特別の技術は 抗原を産生ずるために使用される形質転換宿主に適するものである。Large M1. Peeling fermentation is carried out according to standard techniques; the particular technique chosen is It is suitable for transformed hosts used to produce antigens.
二粟敗通且一 本発明は、寄生線虫、特にコルブリフォルミス毛様線虫および捻転毛様線虫によ る動物の寄生虫感染に対する防御用の効果的なワクチンとして使用することがで きる抗原を提供する。Two millet defeats and one The present invention is directed to parasitic nematodes, particularly colubriformis and torsion nematodes. It can be used as an effective vaccine to protect against parasitic infections in animals. Provide antigens that can be used
コルブリフォルミス毛様線虫から単離された精製抗原に対して生じる抗体および これらのタンパク質をコードするDNA配列は、コルブリフォルミス毛様線虫以 外の寄生線虫の種から得た抗原をコードする関連ペプチドおよび遺伝子を同定す るために使用することができる。同一のDNA配列および抗体は、ヒトおよび家 畜動物に寄生する他の線虫種の範囲内の上記タンパク質をコードする関連抗原お よび遺伝子を同定するために使用することができ、そしてこれらタンパク質が、 線虫の上記種による寄生虫感染に対して、寄生虫自体から単離されるかまたは組 換え体DNA技術で製造される。効果的なワクチンを提供することが予想される 。寄生虫の種および感染の可能性のある宿主には、例えば次のものが含まれる: ヒトの旋毛生着しくはイヌ鉤虫感染、ウマのストロンギルスブルガリス感染、ヒ ツジのコルブリフォルミス毛様線虫感染、ヤギの捻転毛様線虫感染、ウシのオス テルタジアオステルタジ感染、ブタのブタ姻土着しくは旋毛虫怒染、ネコのライ オントキサスカリス若しくは狭頭鉤虫感染、イヌのイヌ鉤虫若しくはトリクリス プルビス感染並びにトキソカラ種の幼虫によるヒトの循環系感染およびイヌ糸状 虫によるイヌの循環系感染並びに上記および他の種の動物の循環系、尿生殖系、 呼吸系、皮膚および皮下組織の感染。このリストは決して完全でないことに注意 すべきである。Antibodies raised against purified antigens isolated from C. colubriformis and The DNA sequences encoding these proteins have been Identifying relevant peptides and genes encoding antigens from foreign parasitic nematode species. It can be used to Identical DNA sequences and antibodies Related antigens encoding the above proteins within other nematode species that parasitize livestock can be used to identify proteins and genes, and these proteins For parasitic infections by the above species of nematodes, isolated from the parasite itself or Manufactured using recombinant DNA technology. expected to provide an effective vaccine . Parasite species and potential hosts include, for example: Trichinae engraftment or dog hookworm infection in humans, Strongylus vulgaris infection in horses, and human Columbriformis trichium nematode infection in rhododendrons, torsion trichophyte nematode infection in goats, male cows Tertasia ostertagi infection, pigs with trichinella infection, cats with leprosy. Ontoxascaris or Bacterium hookworm infection, Canis hookworm or Trichuris in dogs Pluvis infection and human circulatory system infection by Toxocara spp. larvae and canine filamentous infections. Infection of the circulatory system of dogs by insects, as well as the circulatory system, urogenital system, of the above and other species of animals, Infections of the respiratory system, skin and subcutaneous tissues. Please note that this list is by no means complete. Should.
M!/ LL+ LL− 第 1 図 T”e Ad ES^ 第 2 図 第 3 図 ■ 補正書の翻訳文提出書 請書の部間 (特許法第184条の7第1項) ■、第1の寄生線虫種の寄生段階から誘導され、第1の寄生よび糸状主属から選 択される請求項1から3のいずれが1項に記載の抗原。M! / LL+ LL- Figure 1 T”e Ad ES^ Figure 2 Figure 3 ■ Submission of translation of written amendment between departments of the letter of acknowledgment (Article 184-7, Paragraph 1 of the Patent Act) ■, derived from the parasitic stage of the first parasitic nematode species and selected from the first parasitic and filamentous main genus; The antigen according to claim 1, wherein any of claims 1 to 3 is selected.
9、第1の線虫種が旋毛虫、イヌ鉤虫、ストロンギルスブルガリス、コルブリフ ォルミス毛様線虫、捻転毛様線虫、オステルタジアオステルタジ、ブタ畑土、ラ イオントキサスカリス、狭頭鉤虫、トリクリスプルビス、イヌ糸状束、トキソカ ラ種、アメリカ鉤虫、ズビニ鉤虫、回虫、ヒト駆虫、焼土、糞便虫およびバンク ロフト糸状束から選択される請求項8に記載の抗原。9. The first nematode species are Trichinella, hookworm, Strongylus vulgaris, and Colubrych. formis trichophyte nematode, torsion tricholate nematode, ostertasia ostertagi, pig field soil, La iontoxascaris, occipital hookworm, triclis purvis, canis filiformis, toxoca Ra species, American hookworm, Zubini hookworm, roundworm, human dewormer, baked earth, fecal worm and bank Antigen according to claim 8, selected from lofted filamentous bundles.
10、第2の線虫種がトリキネラ属、アンキロストマ属、円虫風、毛様線虫属、 針虫属、オステルタジア属、培土属、トキサスカリス属、ランシナリア属、駆虫 属、ジロフィラリア属、トキソカラ属、ネカトール属、焼去属、ストロンギルス デス属および糸状主属から選択される請求項1から9のいずれか1項に記載の抗 原。10. The second nematode species are the genus Trichinella, the genus Ankylostoma, the genus Strongyloides, and the genus Trichinella. Needleworms, Ostertasia, Soil, Toxascaris, Lancinaria, Anthelmintic Genus, Dirofilaria, Toxocara, Necator, Burning, Strongillus Antibiotics according to any one of claims 1 to 9 selected from the genus Des and the filamentous genus. original.
11、第2の線虫種が旋毛虫、イヌ鉤虫、ストロンギルスブルガリス、コルブリ フォルミス毛様線虫、捻転毛様線虫、オステルタジアオステルタジ、ブタ畑土、 ライオントキサスヵリス、狭頭鉤虫、トリクリスプルビス、イヌ糸状束、トキソ カラ種、アメリカ鉤虫、ズビニ鉤虫、回虫、ヒト駆虫、焼土、糞便虫およびバン クロフト糸状束から選択される請求項10に記載の抗原。11. The second nematode species are Trichinella, hookworm, Strongylus vulgaris, and Coluburi. Formis hairy nematode, Tortis hairy nematode, Ostertasia ostertagi, pig field soil, Lion Toxascaris, Pinocchia hookworm, Tricris purvis, Canis filiformis, Toxodonta Kara species, American hookworm, Zubini hookworm, roundworm, human dewormer, baked earth, fecal worm and van 11. The antigen according to claim 10, selected from Croft filamentous bundles.
12、第1の寄生線虫種がコルブリフォルミス毛様線虫である請求項1から11 のいずれか1項に記載の抗原。12. Claims 1 to 11, wherein the first parasitic nematode species is Colubliformis trichophytes. The antigen according to any one of .
13、第2の線虫種がコルブリフォルミス毛様線虫である請求項1から12のい ずれか1項に記載の抗原。13. The nematode according to claims 1 to 12, wherein the second nematode species is Colubliformis nematode. The antigen according to any one of the above.
14゜ Aha Asn Asn Lys Gin Gin Thr Asp lie Glu Gln Leu Met Pr。14° Aha Asn Asn Lys Gin Gin Thr Asp lie Glu Gln Leu Met Pr.
Lys Tyr Asn Ser Thr Phe Ala L ys Met Asn Gly Asn Tyr@ 5er Tyr Lys Leu Ile Trp Asp Asp S er Met Val Ser Asp Ala@ Leu Gin Glu Ala Lys Glu Gln Tyr Ser Thr Asn Ala Thr Phe Lyslle Arg Arg Ar g Lys Val Phe Tie Lys Gay Asp Asn Ala@ Thr Met Glu Glu Lys Val Glu Gly Ala Leu Lys Tyr Pro Val LeuArg Ala Asp Ly s Phe Leu Arg Arg Leu Leu Trp Phe Thr g45 Tyr Ala Cys Asn Gly Tyr Tyr Asp Thr Lys Gly Gly His AspVal Leu Thr Va l Ala Cys Leu Tyr Arg Glu lie Asp Tyr@ Lys Asn Ser His Tyr のアミノ酸配列からなる請求項1から13のいずれか1項に記載の抗原。Lys Tyr Asn Ser Thr Phe Ala L ys Met Asn Gly Asn Tyr@5er Tyr Lys Leu Ile Trp Asp Asp S er Met Val Ser Asp Ala@ Leu Gin Glu Ala Lys Glu Gln Tyr Ser Thr Asn Ala Thr Phe Lyslle Arg Arg Ar g Lys Val Phe Tie Lys Gay Asp Asn Ala@ Thr Met Glu Glu Lys Val Glu Gly Ala Leu Lys Tyr Pro Val LeuArg Ala Asp Ly s Phe Leu Arg Arg Leu Leu Trp Phe Thr g45 Tyr Ala Cys Asn Gly Tyr Tyr Asp Thr Lys Gly Gly His AspVal Leu Thr Va l Ala Cys Leu Tyr Arg Glu lie Asp Tyr@Lys Asn Ser His Tyr The antigen according to any one of claims 1 to 13, consisting of the amino acid sequence.
15゜ Met Leu Tyr Lys Lys Leu Arg Ser Gln Gly Asn Phe Arg LysAsn Asp Ser Ala T yr Phe Lys Leu Glu Asn Lys Arg Glu L euしys Gly Asp Asn Leu Pro Val Glu Glu Lys Val Arg Gln@ Thr lle Glu Lys Phe Lys Asp Asp V al Ser Glu Ile Arg Arg@ Leu Ala Asp Asp Ser Asp Phe Gly C ys Asn Gly Lys Glu Thr@ Gay Gly Aha Met His lie Val Cys Phe Phe Gin Lys Asn Tyr AspTrp Met Lys Gly G in Trp Gln Asnのアミノ酸配列からなる請求項1から13のいず れか1項に記載の抗原。15° Met Leu Tyr Lys Lys Leu Arg Ser Gln Gly Asn Phe Arg LysAsn Asp Ser Ala T yr Phe Lys Leu Glu Asn Lys Arg Glu L eu ys Gly Asp Asn Leu Pro Val Glu Glu Lys Val Arg Gln@Thr lle Glu Lys Phe Lys Asp Asp V al Ser Glu Ile Arg Arg@Leu Ala Asp Asp Ser Asp Phe Gly C ys Asn Gly Lys Glu Thr@Gay Gly Aha Met His lie Val Cys Phe Phe Gin Lys Asn Tyr AspTrp Met Lys Gly G Any of claims 1 to 13, consisting of the amino acid sequence in Trp Gln Asn. The antigen according to item 1.
16゜ Arg Phe Leu Leu Leu Ala Aha Phe Val Ala Tyr Ala Tyr AlaLys Ser Asp Glu G lu Ile Arg Lys Asp Ala Leu Ser Aha L euAsp Val Val Pro Leu Gay Ser Thr P ro Glu Lys Leu Glu Asn Glyのアミノ酸からなる請 求項1から13のいずれか1項に記載の抗原。16° Arg Phe Leu Leu Leu Ala Aha Phe Val Ala Tyr Ala Tyr AlaLys Ser Asp Glu G lu Ile Arg Lys Asp Ala Leu Ser Aha L euAsp Val Val Pro Leu Gay Ser Thr P A chain consisting of the amino acids ro Glu Lys Leu Glu Asn Gly 14. The antigen according to any one of claims 1 to 13.
17、上記で定義したTc Ad ESAI。17. Tc Ad ESAI as defined above.
18、上記で定義したTc Ad ESA2゜19、上記で定義したTc Ad ESA3゜20、上記で定義したTc Ad ESA4゜21、上記で定義し たTc Ad ESA5゜22、請求項1から21のいずれか1項に記載の抗原 のアミノ酸配列をコードする第1のヌクレオチド配列であって、その際ヌクレオ チド配列が上記第1のヌクレオチド配列とハイプリントを形成するかまたは1つ 若しくは多数の塩基置換、挿入若しくは欠失を含む突然変異によって上記第1の ヌクレオチド配列に関連化されたヌクレオチド配列とハイブリッドを形成してい る。18, Tc Ad defined above ESA2゜19, Tc Ad defined above ESA3゜20, Tc Ad defined above ESA4゜21, defined above TcAd ESA5°22, the antigen according to any one of claims 1 to 21 a first nucleotide sequence encoding an amino acid sequence of the nucleotide sequence forms a hyperprint with the first nucleotide sequence or one or by mutation including multiple base substitutions, insertions, or deletions. hybridizes with a nucleotide sequence associated with a nucleotide sequence. Ru.
23、上記ヌクレオチド配列が請求項2から7のいずれか1項または請求項14 から21のいずれか1項に記載の抗原のアミノ酸配列を特徴とする請求項22に 記載のヌクレオチド配列。23. The nucleotide sequence is any one of claims 2 to 7 or claim 14. Claim 22 characterized by the amino acid sequence of the antigen according to any one of claims 21 to 22. The nucleotide sequence described.
24、上記ヌクレオチド配列がDNA配列である請求項22または23に記載の ヌクレオチド配列。24. The nucleotide sequence according to claim 22 or 23, wherein the nucleotide sequence is a DNA sequence. Nucleotide sequence.
25゜ GAA TTCGGG GGCAACACT TACAGT GCA AACAAT AAG CAA CAG ACCGACATA G AA CAA CTCATG CCCAAA TAT AACTCG ACG TTCGCG AAGATG AAT GGA AAC TAT AGT TAT AAG CTG ATCTGG GAT GACAGCAsG GTA TCT GAT GCG CTG CAA GAA G CA AAG GAG CAA TACAGT `CG AAT GCT ACCTTCAAG ATC−σII;T CGG AGA AAG GTG TTCAT八 AAG GGCG`T AACGCA ACG ATG GAG GAA AAA GTG GAG GGA GCT CTG AAG sACCCC GTCTTG AGA GCCGAT AAA TTT CTT CGCCGT CTT CTCTGG TTCACACACTACGCA TGCAAT GGA TAT TACGAT ACG AAA GGT GGA CACGATGTCCTG ACT GTCGC G TGT CTCTACAGA GAG ATCGAT TACA AA AATTCT CACTAT TAG AAA GCA GTCAAC AAA AACAGCAGA GTA AACTGACTG CACATT T CCGCA GTT TTT GAA TAA ATA CTT GAT GC A ACT CAAAAA AAA AAA AAAからなる請求項24 に記載のDNA配列。25° GAA TTCGGG GGCAACACT TACAGT GCA AAACAAT AAG CAA CAG ACCGACATA G AA CAA CTCATG CCCAAA TAT AACTCG ACG TTCGCG AAGATG AAT GGA AAC TAT AGT TAT AAG CTG ATCTGG GAT GACAGCAsG GTA TCT GAT GCG CTG CAA GAA CA AAG GAG CAA TACAGT `CG AAT GCT ACCTTCAAG ATC-σII; T CGG AGA AAG GTG TTCAT8 AAG GGCG`T AACGCA ACG ATG GAG GAA AAA GTG GAG GGA GCT CTG AAG sACCCC GTCTTG AGA GCCGAT AAA TTT CTT CGCCGT CTT CTCTGG TTCACACACTACGCA TGCAAT GGA TAT TACGAT ACG AAA GGT GGA CACGATGTCCTG ACT GTCGC G TGT CTCTACAGA GAG ATCGAT TACA AA AATTCT CACTAT TAG AAA GCA GTCAAC AAA AACAGCAGA GTA AACTGACTG CACATT T CCGCA GTT TTT GAA TAA ATA CTT GAT GC Claim 24 consisting of A ACT CAAAAA AAA AAA The DNA sequence described in.
26゜ ACT ACA AGA CCCCAA TTG TACACG AAA TTCTTCAACGAA GAA AACAGCCTA A AT CTG AGA TGG AACCACATA TGT C GCAGCATG CTCTACAAG AAA TTG AGA AGCCAG GGA AAT TTT CGCAAA AAT GAT TC` GCA TAT TTCAAG CTCGAA AACAAG AGG GA A CTG AAG GGA GACAAT CsA CCA GTG GAG GAG AAA GTA CGCCAA ACT ATT GAA AAA TTCAAf GAT GAT GTA AGCGAA ATCAGA CGT CTT GCT GAT GAT TCG GAT TTs GGA TGCAACGGCAAA GAA ACCGGG GGT GCA ATG CACATT GTG TGT TTCTTCCAG A AG AAT TAT GACTGG ATG AAA GGA CAA TGG CAA AAbTGA TTT TTCTGA AGT ACT TGT TGG ATT CTT CGT AGA ATCGAT GC` CAA AAT ACCTTT TTT GGG AGA CAA CTT CGCATA AAA CTT CTCGAT @GAA AAA AAA AAA AAA八 からなる請求項19に記載のDNA配列。26° ACT ACA AGA CCCCAA TTG TACACG AAA TTCTTCCAACGAA GAA AACAGCCTA A AT CTG AGA TGG AACCACATA TGT C GCAGCATG CTCTACAAG AAA TTG AGA AGCCAG GGA AAT TTT CGCAAA AAT GAT TC` GCA TAT TTCAAG CTCGAA AACAAG AGG GA A CTG AAG GGA GACAAT CsA CCA GTG GAG GAG AAA GTA CGCCAA ACT ATT GAA AAA TTCAAf GAT GAT GTA AGCGAA ATCAGA CGT CTT GCT GAT GAT TCG GAT TTs GGA TGCAACGGCAAA GAA ACCGGG GGT GCA ATG CACATT GTG TGT TTCTTCCAG A AG AAT TAT GACTGG ATG AAA GGA CAA TGG CAA AAbTGA TTT TTCTGA AGT ACT TGT TGG ATT CTT CGT AGA ATCGAT GC` CAA AAT ACCTTT TTT GGG AGA CAA CTT CGCAT AAA CTT CTCGAT @GAA AAA AAA AAA 8 20. The DNA sequence of claim 19 consisting of.
27゜ CGG TTCCTT CTT CTA GCA GCG TTC GTC,GCCTAT GCG TAT GCA `AG TCA GAT GAA GAA ATCCGA AAA GAT GCA CTA TCT GCT CTG fAT GTA GTT CCA CTG GGT TCG ACT CCCGAA AAA CTG GAA AAT GGCからなる請求項24に記 載のDNA配列。27° CGG TTCCTT CTT CTA GCA GCG TTC GTC, GCCTAT GCG TAT GCA `AG TCA GAT GAA GAA ATCCGA AAA GAT GCA CTA TCT GCT CTG fAT GTA GTT CCA CTG GGT TCG ACT CCCGAA According to claim 24, consisting of AAA, CTG, GAA, AAT, and GGC. The DNA sequence of
28.請求項1から21のいずれか1項に記載の抗原をコードするDNAまたは RNA配列を選択する方法であって、該方法は1つまたはそれ以上のDNAまた はRNA配列を提供し、そしてどの配列が請求項1から21のいずれか1項に記 載の抗原をコードすることが知られているDNAまたはRNA配列とハイブリッ ドを形成するのかを決定するか或は、抗原に対する抗血清を提供しそして抗原を 発現する宿主−ベクターの組合せを同定することからなる。28. DNA encoding the antigen according to any one of claims 1 to 21, or A method of selecting an RNA sequence, the method comprising selecting one or more DNA or provides an RNA sequence, and which sequence is defined in any one of claims 1 to 21. hybridizes with a DNA or RNA sequence known to encode the antigen described above. Alternatively, provide an antiserum against the antigen and It consists of identifying the expressing host-vector combination.
29、請求項24から27のいずれか1項に記載のDNA配列およびベクターD NAからなる組換え体DNA分子。29, the DNA sequence and vector D according to any one of claims 24 to 27 A recombinant DNA molecule consisting of NA.
30、上記DNA配列に操作して結合した発現制御配列から更になる請求項29 に記載の組換え体13NA分子。30, further comprising an expression control sequence operably linked to said DNA sequence. The recombinant 13NA molecule described in .
31、発現制御配列が大腸菌のβ−ガラクトシダーゼ遺伝子、トリプトファンオ ペロン、大腸菌のTra−T遺伝子、バクテリオファージラムダの左側プロモー ター、tacプロモーター、CuplプロモーターおよびSV40初期プロモー ターから選択される請求項30に記載の岨換え体DNA分子。31, the expression control sequence is the β-galactosidase gene of Escherichia coli, tryptophan Peron, Tra-T gene of E. coli, left-sided promoter of bacteriophage lambda promoter, tac promoter, Cupl promoter and SV40 early promoter 31. The recombinant DNA molecule according to claim 30, which is selected from the group consisting of:
32、上記ベクターDNAがプラスミドDNAである請求項29から31のいず れか1項に記載の組換え体DNA分子。32. Any of claims 29 to 31, wherein the vector DNA is plasmid DNA. The recombinant DNA molecule according to item 1.
33、上記プラスミドDNAがpUR290、pUc18 、pYEUc114 およびそれらの誘導体から選択される請求項32に記載の組換え体DNA分子。33. The above plasmid DNA is pUR290, pUc18, pYEUc114 33. A recombinant DNA molecule according to claim 32, selected from: and derivatives thereof.
34、上記ベクターDNAがバクテリオファージDNAである請求項29または 30に記載の組換え体DNA分子。34. Claim 29, wherein the vector DNA is bacteriophage DNA; or The recombinant DNA molecule according to 30.
35、上記バクテリオファージDNAがラムダgtlOおよびラムダgtllを 含むバクテリオファージラムダおよびその誘導体から選択される請求項34に記 載の組換え体DNA分子。35. The bacteriophage DNA described above produces lambda gtlO and lambda gtll. 35. selected from bacteriophage lambda and derivatives thereof comprising recombinant DNA molecules.
36、上記で定義したpYEUc30B4E。36, pYEUc30B4E as defined above.
37、プロモーター、翻訳開始シグナルおよび請求項24から27のいずれか1 項に記載のDNA配列からなる融合遺伝子。37, a promoter, a translation initiation signal, and any one of claims 24 to 27 A fusion gene consisting of the DNA sequence described in section.
38、請求項29から35のいずれか1項に記載の組換え体DNA分子の調製方 法であって、その際該方法は請求項24から27のいずれか1項に記載のDNA 配列からなるDNA挿入物を提供しそして該DNA挿入物をベクターDNAに導 入することからなる。38. A method for preparing a recombinant DNA molecule according to any one of claims 29 to 35. 28. A method, wherein the method comprises using a DNA according to any one of claims 24 to 27. providing a DNA insert consisting of the sequence and introducing the DNA insert into vector DNA. It consists of entering.
39、上記DNA挿入物が発現制御配列に関して正しい配置で且つ正しい読み取 り枠でクローニングベクターに導入される請求項38に記載の方法。39. The DNA insert is in the correct location and correct readability with respect to the expression control sequences. 39. The method according to claim 38, wherein the method is introduced into a cloning vector in frame.
40、請求項29から36のいずれか1項に記載の少なくとも1つの組換え体D NA分子で形質転換された形質転換宿主。40, at least one recombinant D according to any one of claims 29 to 36 A transformed host transformed with an NA molecule.
41、上記宿主が請求項1から21のいずれか1項に記載の抗原を発現し得る請 求項40に記載の形質転換宿主。41, wherein the host is capable of expressing the antigen according to any one of claims 1 to 21; 41. The transformed host according to claim 40.
42、上記宿主が細菌細胞、サツカロミセスセレビシェ株CL13−ABSY8 6を含む酵母、他の真菌、を推動物細胞、昆虫細胞、植物細胞、ヒト細胞、ヒト 組繊細胞、痘苗つィルス若しくはバクロウィルスのような生存ウィルスまたは全 真核生物である請求項40または41に記載の形質転換宿主。42, the host is a bacterial cell, Satucharomyces cerevisiae strain CL13-ABSY8 6 including yeast, other fungi, animal cells, insect cells, plant cells, human cells, human Synthetic cells, live viruses such as variola virus or baculovirus, or whole viruses. 42. The transformed host according to claim 40 or 41, which is a eukaryote.
43、上記宿主が大腸菌、大腸菌以外の他の腸内生物、シュードモナス種または ハシラス種である請求項40から42のいずれか1項に記載の形質転換宿主。43. The above host is E. coli, other intestinal organisms other than E. coli, Pseudomonas species, or 43. The transformed host according to any one of claims 40 to 42, which is Hasillus sp.
44、上記宿主がJM109およびY1090から選択される大腸菌に12誘導 体である請求項43に記載の形質転換宿主。44, 12 induction into E. coli where the above host is selected from JM109 and Y1090 44. The transformed host according to claim 43, which is a transformed host.
45、上記に定義したBTA 1689゜46、上記に定義したBTA 169 1゜47、上記に定義したBTA 1690゜48、請求項40から47のいず れか1項に記載の形質転換宿主を提供する宿主の形質転換方法であって、その際 該方法は宿主を提供し、形質転換に適する宿主を作成し、そして請求項29から 36のいずれか1項に記載の組換え体DNA分子を該宿主に導入することからな る。45, BTA defined above 1689° 46, BTA defined above 169 1°47, BTA as defined above 1690°48, any of claims 40 to 47 A method for transforming a host which provides the transformed host according to item 1 above, wherein The method provides a host, creates a host suitable for transformation, and comprises from introducing the recombinant DNA molecule according to any one of 36 into the host. Ru.
49、請求項1から21のいずれか1項に記載の抗原からなる、請求項40から 47のいずれか1項に記載の形質転換宿主の発現産生物。49. Claims 40 to 49, consisting of the antigen according to any one of claims 1 to 21. 48. An expression product of the transformed host according to any one of 47.
50、実質的に精製された形質の請求項49に記載の発現産生物。50. The expression product of claim 49 of a substantially purified trait.
51、上記宿主に相同性の第1のポリペプチド配列および請求項1から21のい ずれか1項に記載の抗原をコードするアミノ酸配列である第2のポリペプチド配 列からなる請求項49または50に記載の発現産生物。51, a first polypeptide sequence homologous to said host and the host of claims 1 to 21. a second polypeptide sequence which is an amino acid sequence encoding an antigen according to any one of the preceding paragraphs; 51. An expression product according to claim 49 or 50, consisting of a sequence of
52、第1のポリペプチド配列がβ−ガラクトシダーゼの全部若しくは1部また はTra−Tでありそして宿主が大腸菌である請求項51に記載の発現産生物。52, the first polypeptide sequence is all or part of β-galactosidase or 52. The expression product of claim 51, wherein is Tra-T and the host is E. coli.
53、請求項1から21のいずれか1項に記載の抗原からなるタンパク質産生物 の生合成方法であって、その際該方法は宿主が請求項1から21のいずれか1項 に記載の抗原を含有するタンパク質産生物を発現するように請求項29から36 のいずれか1項に記載の組換え体DNA分子で該宿主を形質転換し;該宿主を培 養して発現させ、そしてタンパク質産生物を採集することからなる。53. A protein product consisting of the antigen according to any one of claims 1 to 21. 22. A method for biosynthesizing a host according to any one of claims 1 to 21. claims 29 to 36 for expressing a protein product containing an antigen according to transforming the host with a recombinant DNA molecule according to any one of the following: consists of cultivating, expressing, and harvesting the protein product.
54、エピトープが防御免疫応答の原因である請求項1から21のいずれか1項 に記載の抗原のエピトープ。54. Any one of claims 1 to 21, wherein the epitope is responsible for a protective immune response. epitopes of the antigens described in .
55、請求項54に記載のエピトープに対して生じる抗体。55. An antibody raised against the epitope of claim 54.
56、請求項55に記載の抗体の可変領域に対して生じる抗イデイオタイプ抗体 。56. An anti-idiotype antibody raised against the variable region of the antibody according to claim 55. .
57.1つまたはそれ以上の有効量の、請求項1から21のいずれか1項に記載 の抗原、請求項49から52のいずれか1項に記載の発現産生物、請求項54に 記載のエピトープおよび/または請求項56に記載の抗イデイオタイプ抗体と製 薬的に許容可能な担体、希釈剤、賦形剤および/またはアジュバントとからなる ワクチン。57. An effective amount of one or more of any one of claims 1 to 21. an antigen according to any one of claims 49 to 52, an expression product according to any one of claims 49 to 52, and/or the anti-idiotype antibody according to claim 56. consisting of a pharmaceutically acceptable carrier, diluent, excipient and/or adjuvant. vaccine.
58、経口投与または注入可能な形態に適する請求項57に記載のワクチン。58. A vaccine according to claim 57, suitable for oral administration or in injectable form.
59、上記に定義したTc Ad ESAI、Tc Ad ES八へ、Tc A d ESA3、Tc Ad ESA4、Tc Ad ESA5またはこれら抗原 の全部またはいくつかの組み合わせ物から選択される有効量の抗原と製薬的に許 容可能な担体、希釈剤、賦形剤および/またはアジュバントとからなるワクチン 。59, Tc Ad ESAI, Tc Ad ES8 defined above, Tc A d ESA3, Tc Ad ESA4, Tc Ad ESA5 or these antigens an effective amount of the antigen selected from all or some combination of Vaccines consisting of acceptable carriers, diluents, excipients and/or adjuvants .
60.1つまたはそれ以上の請求項1から21のいずれか1項に記載の抗原、請 求項49から52のいずれか1項に記載の発現産生物、請求項54に記載のエピ トープ、請求項56に記載の抗イデイオタイプ抗体および/または請求項57か ら59のいずれか1項に記載のワクチンを宿主に投与することによる宿主のワク チン接種の結果産生される抗体。60. One or more antigens according to any one of claims 1 to 21; The expression product according to any one of claims 49 to 52, the epitope according to claim 54 tope, the anti-idiotype antibody of claim 56 and/or claim 57 Vaccine in a host by administering to the host the vaccine according to any one of Paragraph 59. Antibodies produced as a result of Chin inoculation.
61、請求項55また60に記載の少なくとも1つの有効量の抗体と製薬的に許 容可能な担体、希釈剤および/または賦形剤とからなる抗体組成物。61, an effective amount of at least one antibody according to claim 55 or 60 and a pharmaceutically acceptable amount of An antibody composition comprising an acceptable carrier, diluent and/or excipient.
62、請求項1から21のいずれか1項に記載の抗原の調製方法であって、該方 法は、寄生段階の寄生線虫種から排泄/分泌液体を採集し、溶離溶媒としてメチ ルマンノシドを用いるヒラマメレクチン クロマトグラフィーによって上記液体 を分画し、結合および非結合フラクションを集め、5DS−ゲル電気泳動によっ て更に分画し、そして抗原を電気溶離することからなる。62. A method for preparing the antigen according to any one of claims 1 to 21, comprising: The method involves collecting excretory/secretory fluid from parasitic nematode species during the parasitic stage and using methane as the eluent. The above liquid is analyzed by chromatography using lentil lectin using rumanoside. The bound and unbound fractions were collected and analyzed by 5DS-gel electrophoresis. further fractionation and electroelution of the antigen.
63、請求項37に記載の融合遺伝子の調製方法であって、該方法はプロモータ ー、翻訳開始のシグナルおよび請求項24から27のいずれか1項に記載のDN A配列を提供し、そしてプロモーター、翻訳開始シグナルおよびDNA配列を操 作して結合させることからなる。63. A method for preparing a fusion gene according to claim 37, the method comprising: -, a translation initiation signal and the DN according to any one of claims 24 to 27. A sequence and manipulate the promoter, translation initiation signal and DNA sequence. It consists of creating and combining.
64、請求項57から59のいずれか1項に記載のワクチンの調製方法であって 、該方法は少なくとも1つの有効量の請求項1から21のいずれか1項に記載の 抗原および/または請求項49から52のいずれか1項に記載の発現産生物およ び/または請求項54に記載のエピトープおよび/または請求項56に記載の抗 イデイオタイプ抗体と製薬的に許容可能な担体、希釈剤、賦形剤および/または アジュバントとを混合することからなる。64, a method for preparing the vaccine according to any one of claims 57 to 59, , the method comprises an effective amount of at least one of the following: an antigen and/or an expression product according to any one of claims 49 to 52; and/or the epitope according to claim 54 and/or the antibody according to claim 56. Idiotypic antibodies and pharmaceutically acceptable carriers, diluents, excipients and/or It consists of mixing with an adjuvant.
65、請求項55または60に記載の抗体の調製方法であって、該方法は有効量 の請求項1から21のいずれか1項に記載の抗原、請求項49から52のいずれ か1項に記載の発現産生物、請求項54に記載のエピトープ、請求項56に記載 の抗イデイオタイプ抗体または請求項57から59のいずれか1項に記載のワク チンで免疫応答性宿主を免疫化することからなる。65, a method for preparing the antibody according to claim 55 or 60, the method comprising: The antigen according to any one of claims 1 to 21, any of claims 49 to 52 or the expression product of claim 1, the epitope of claim 54, or the expression product of claim 56. or the vaccine according to any one of claims 57 to 59. consists of immunizing an immunocompetent host with Chin.
66、請求項56に記載の抗イデイオタイプ抗体の調製方法であって、該方法は 請求項55に記載の抗エピトープ抗体または請求項61に記載の抗体組成物で免 疫応答性宿主を免疫化することからなる。66. A method for preparing an anti-idiotype antibody according to claim 56, the method comprising: Immunization with the anti-epitope antibody according to claim 55 or the antibody composition according to claim 61. consists of immunizing an infectiously-competent host.
67、請求項61に記載の抗体組成物の調製方法であって、該方法は請求項55 または60に記載の少なくとも1つの有効量の抗体を製薬的に許容可能な担体、 希釈剤および/または賦形剤と混合することからなる。67. A method for preparing the antibody composition of claim 61, the method comprising: or an effective amount of at least one antibody according to 60 in a pharmaceutically acceptable carrier; It consists of mixing with diluents and/or excipients.
68、寄生線虫による感染の防御を必要とする宿主の感染防御方法であって、該 方法は少なくとも1つの請求項1から21のいずれか1項に記載の抗原、請求項 49から52のいずれか1項に記載の発現産生物、請求項54に記載のエピトー プ、請求項56に記載の抗イデイオタイプ抗体、および/または請求項57から 59のいずれか1項に記載のワクチンで宿主にワクチン接種することからなる。68. A method for preventing infection of a host that requires protection against infection by parasitic nematodes, The method comprises at least one antigen according to any one of claims 1 to 21; an expression product according to any one of claims 49 to 52; an epitope according to claim 54; anti-idiotype antibody according to claim 56, and/or from claim 57. comprising vaccinating a host with a vaccine according to any one of Items 59 to 59.
69、寄生線虫による感染に対してその処置を必要とする宿主を受身的に防御す る方法であって、該方法は少なくとも1つの請求項55または60に記載の抗体 および/または請求項61に記載の抗体組成物で宿主に受身的にワクチン接種す ることからなる。69, to passively protect the host in need of treatment against infection by parasitic nematodes. 61. A method comprising at least one antibody according to claim 55 or 60. and/or passively vaccinating a host with the antibody composition of claim 61. It consists of things.
国際調査報告 I酵IIC酊11開a1ム帥(籠、d開−1にηm器沖粍舖Al閃■T+)工] 打り廿仄−℃w己原スにΣはPゴごlD打EtαT工α幼りにすL工QTK猶圏 、にテにJ 9 区160発 萌 者 ワグランド、バリー、マックスウェル ■出 願 人 コモンウエルス・サイエンティフィック・アンド・インダスト リアル・リサーチ・オーガナイ ゼイション オーストラリア国 ニュー・サウス・ウェールズ 2118、カーリングフォー ド、ノーウッド・アヴエニュー 31オ一ストラリア国 オーストラリアン・キ ャピタル・テリトリ−2600、キャンベル、ライムストーン・アヴエニュー 1international search report I fermentation IIC alcohol 11 open a1 m shu (basket, d open-1 ηm vessel offshore 粍或Al flash■T+) 工] Hit 廿组-℃w In the original Σ is P gogo l D hit Etα T engineering α young L engineering QTK free zone , Niteni J9 Ward 160 Moe people Wagland, Barry, Maxwell ■Submitted by: Commonwealth Scientific and Industrial real research organization zation Australia, New South Wales, 2118, Curling Four Norwood Avenue 31 Australia Capital Territory - 2600 Limestone Avenue, Campbell 1
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