JP7344973B2 - 標的実体を検出するためのシステム、組成物、及び方法 - Google Patents
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Description
本出願は、それぞれの全体が本明細書に援用される2019年3月1日出願の米国特許仮出願第62/812,878号、及び2020年1月17日出願の米国特許仮出願第62/962,722号の利益を請求する。
投与すること:本明細書で使用される場合、「投与すること」または「投与」という用語は典型的には、組成物を対象に投与して、組成物であるか、または組成物に含まれる作用因子を、標的部位または処置される部位に送達することを指す。当業者は、適切な状況で、対象、例えば、ヒトに投与するために利用することができる様々な経路が分かるであろう。例えば、一部の実施形態では、投与は非経口であり得る。一部の実施形態では、投与は経口であり得る。一部の実施形態では、投与は、単回用量のみを含み得る。一部の実施形態では、投与は、固定された数の用量を適用することを含み得る。一部の実施形態では、投与は、断続的(例えば、時間を空けて複数の用量)及び/または周期的(例えば、共通期間を空けて個々の用量)投与である投与を含み得る。一部の実施形態では、投与は、少なくとも選択された期間にわたる連続的投与(例えば、潅流)を含み得る。
本開示は、試料(例えば、生物学的、環境的、または他の試料)において、一部の実施形態では、少なくとも2つまたはそれ以上の標的(例えば、分子標的)を含む目的の実体(例えば、目的の生物学的または化学的実体、例えば、細胞外小胞または分析物)を、単一の実体レベルで検出するための標的実体検出システムを提供する。当業者は、本開示を読むことで、提供される標的実体検出システムが、広範囲の様々な用途及び/または目的に有用であることを認めるであろう。例えば、一部の実施形態では、提供される標的実体検出システムは、医学的用途及び/または目的に有用であり得る。一部の実施形態では、提供される標的実体検出システムは、疾患または状態(例えば、がん)について個体(例えば、無症候性個体)をスクリーニングするために(例えば、定期的にスクリーニングするために)有用であり得る。一部の実施形態では、提供される標的実体検出システムは、異なる種類のがん(例えば、複数の異なるがん)について個体(例えば、無症候性個体)をスクリーニングするために(例えば、定期的にスクリーニングするために)有用であり得る。一部の実施形態では、提供される標的実体検出システムは、無症候性個体を含むか、またはその個体からなる集団に適用される場合にも、有効である(例えば、十分に高い感受性及び/または低率の擬陽性及び/または偽陰性結果により)。一部の実施形態では、提供される標的実体検出システムは、コンパニオン診断として、疾患処置と併せて有用であり得る。
一部の実施形態では、本明細書において提供及び/または利用される検出プローブは、標的結合部分と、その標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメインとを含む。一部の実施形態では、標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメインは、二本鎖部分と、オリゴヌクレオチドドメインの少なくとも一方の末端から伸長している一本鎖オーバーハングとを含み得る。一部の実施形態では、標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメインは、二本鎖部分と、オリゴヌクレオチドドメインの各末端から伸長している一本鎖オーバーハングとを含み得る。
オリゴヌクレオチドドメインにカップリングしている標的結合部分は、標的(例えば、疾患、障害、または状態、例えば、がんについての標的バイオマーカーシグネチャーの分子標的またはバイオマーカー)に特異的に結合する実体または作用因子である。一部の実施形態では、標的結合部分は、標的(例えば、分子標的)について少なくとも約10-4M、少なくとも約10-5M、少なくとも約10-6M、少なくとも約10-7M、少なくとも約10-8M、少なくとも約10-9M、またはそれ未満の結合親和性(例えば、解離定数により測定されるとおりのもの)を有し得る。当業者は、場合によっては、結合親和性(例えば、解離定数により測定されるとおりのもの)が、2つの分子間の非共有結合分子間相互作用、例えば、水素結合、静電相互作用、疎水性及びファンデルワールス力により影響を受け得ることが分かるであろう。別法では、または加えて、リガンドと、その標的分子との間の結合親和性は、他の分子の存在により影響を受け得る。当業者は、例えば、これに限定されないが、ELISA、ゲル-シフトアッセイ、プルダウンアッセイ、平衡透析法、分析用超遠心分離、表面プラスモン共鳴(SPR)、バイオレイヤー干渉法、グレーティング結合干渉法、及び分光学的アッセイを含む、本開示に従って結合親和性及び/または解離定数を測定するための様々な技術を熟知しているであろう。
一部の実施形態では、本開示により使用するためのオリゴヌクレオチドドメイン(例えば、標的結合部分にカップリングしていてよい)は、二本鎖部分と、オリゴヌクレオチドドメインの一方または両方の末端から伸長している一本鎖オーバーハングとを含み得る。オリゴヌクレオチドドメインが各末端から伸長している一本鎖オーバーハングを含む一部の実施形態では、一本鎖オーバーハングは、二本鎖部分の異なる鎖から伸長している。オリゴヌクレオチドドメインがそのオリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している一本鎖オーバーハングを含む一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドドメインの他方の末端は、平滑末端であり得る。
オリゴヌクレオチドドメイン及び標的結合部分を、共有結合により、及び/または非共有結合会合(例えば、タンパク質間相互作用、例えば、ストレプトアビジン-ビオチン相互作用及び/またはイオン相互作用など)により、検出プローブにおいて一緒にカップリングさせることができる。一部の実施形態では、本開示に従って使用するために適した検出プローブは、標的結合部分及びオリゴヌクレオチドドメインを含むコンジュゲート分子であり、その際、それらの2つの構成成分は典型的には、例えば、直接的に結合により、または間接的に1つもしくは複数のリンカーにより相互に共有結合性にカップリングしている。一部の実施形態では、標的結合部分は、共有結合(例えば、直接的に結合により、または間接的に1つもしくは複数のリンカーにより)、及び/または非共有結合性会合(例えば、タンパク質間相互作用、例えば、ストレプトアビジン-ビオチン相互作用及び/またはイオン相互作用など)により、オリゴヌクレオチドドメインの2本の鎖のうちの一方にカップリングしている。
一部の実施形態では、本開示により提供されるとおりの(及び、例えば、少なくとも1つまたはそれ以上の標的(例えば、分子標的)を含む目的の実体(例えば、目的の生物学的実体)を、例えば、単一実体レベルで検出するために有用な)標的実体検出システムは、第1の標的(例えば、第1の標的バイオマーカー)のための第1の検出プローブ(例えば、本明細書において記載及び/または利用されるとおりのもの)の第1の集団、及び第2の標的(例えば、第2の標的バイオマーカー)のための第2の検出プローブ(例えば、本明細書において記載及び/または利用されるとおりのもの)の第2の集団を含み得る。一部の実施形態では、第1の検出プローブ及び第2の検出プローブが指向する第1の標的(例えば、第1の標的バイオマーカー)及び第2の標的(例えば、第2の標的バイオマーカー)はそれぞれ、同じ標的(例えば、同じ標的バイオマーカー)であるか、またはそれを含む。一部の実施形態では、第1の検出プローブ及び第2の検出プローブが指向する第1の標的(例えば、第1の標的バイオマーカー)及び第2の標的(例えば、第2の標的バイオマーカー)はそれぞれ、異なる標的(例えば、異なる標的バイオマーカー)である。
一部の実施形態では、本開示により提供されるような(及び例えば、目的の実体(例えば、目的の生物学的実体)を、例えば、単一の実体レベルで検出するために有用な)標的実体検出システムは、別個のプローブ(例えば、本明細書において記載及び/または利用されるとおりのもの)のn集団を含み得、ここで、n≧3(例えば、n=3、4、5またはそれ以上)である。例えば、n=3である場合の一部の実施形態では、標的実体検出システムは、第1の標的のための第1の検出プローブ(例えば、本明細書において記載及び/または利用されるとおりのもの)、第2の標的のための第2の検出プローブ(例えば、本明細書において記載及び/または利用されるとおりのもの)の集団、及び第3の標的のための第3の検出プローブ(例えば、本明細書において記載及び/または利用されるとおりのもの)の集団を含み得る。一部の実施形態では、第1、第2、及び第3の標的は、同じ標的である。一部の実施形態では、第1、第2、及び第3の標的は、別個の標的である。一部の実施形態では、第1、第2、及び第3の標的のうちの少なくとも2つは、別個の標的である。
a.正常で健康な細胞、細胞外小胞、及び/または組織(例えば、罹患細胞、例えば、がん細胞が由来する正常で健康な細胞、細胞外小胞、及び/または組織)と特異的に関連するバイオマーカーを指向する検出プローブ;
b.1つよりも多い疾患、例えば、1つよりも多いがんと関連するバイオマーカー(ただし、正常で健康な細胞、細胞外小胞、及び/または組織に存在しない)を指向する、例えば、がんに(組織の種類にかかわらず)一般的なバイオマーカーを指向する検出プローブ;ならびに
c.組織特異的疾患バイオマーカー(例えば、組織特異的がんバイオマーカー、例えば、特異的組織、例えば、これに限定されないが、脳、乳房、結腸、卵巣及び/または女性生殖系と関連する他の組織、膵臓、前立腺及び/または男性生殖系と関連する他の組織、肝臓、肺、及び皮膚でのがんと特異的に関連するバイオマーカーなど)を指向する検出プローブ。
提供される標的実体検出システムは、例えば、一部の実施形態では、特定の疾患、障害、もしくは状態(例えば、がん)または複数の疾患、障害、もしくは状態(例えば、複数のがん)の検出と関連して様々な用途及び/または目的のために、試料中で(例えば、生物学的、環境的、または他の試料中で)、目的の実体(例えば、生物学的実体、例えば、細胞外小胞)を検出する際に有用である。したがって、本明細書において提供される一部の態様は、本開示に従って使用するために適した複数の(例えば、少なくとも2、少なくとも3、またはそれ以上の)検出プローブを使用する方法に関する。一部の実施形態では、方法は、試料(例えば、ヒト対象からの血液または血液由来試料)中の目的の実体(例えば、生物学的実体、例えば、細胞外小胞)を、少なくとも2つまたはそれ以上(例えば、少なくとも3、少なくとも4、少なくとも5、少なくとも6、少なくとも7、少なくとも8、少なくとも9、少なくとも10、少なくとも11、少なくとも12、少なくとも13、少なくとも14、少なくとも15、少なくとも16、少なくとも17、少なくとも18、少なくとも19、少なくとも20またはそれ以上を含む)の本明細書において記載及び/または利用されるとおりの検出プローブを含む検出プローブのセットと接触させることを含む。一部の実施形態では、方法は、目的の実体(例えば、生物学的実体、例えば、細胞外小胞)を含む試料を、標的実体検出システム(例えば、本明細書において提供されるとおりのもの)に掛けることを含む。複数の検出プローブ(例えば、少なくとも2つまたはそれ以上)を、目的の実体(例えば、生物学的実体、例えば、細胞外小胞)を含む試料に、同時に、または別の時間に(例えば、連続的に)添加することができる。
一部の実施形態では、本明細書において提供される技術(例えば、システム、組成物、及び方法を含む)は、個々の生物学的実体(例えば、細胞外小胞)において1つまたは複数の標的組合せ(例えば、疾患、障害、または状態、例えば、がんのための1つまたは複数の標的バイオマーカーシグネチャー)を検出するために有用であり得る。一部の実施形態では、本開示は、個々の細胞外小胞における疾患、障害、または状態(例えば、がん)の1つまたは複数の標的組合せ(例えば、1つまたは複数の標的バイオマーカーシグネチャー)の共局在を検出することにより、例えば、細胞非含有核酸、血清タンパク質、及び/または細胞外小胞のバルク分析に基づく多くの従来の診断アッセイの問題を解決する技術(システム、組成物、及び方法を含む)を提供する。一部の実施形態では、本開示に従って検出される標的バイオマーカーシグネチャーは、少なくとも1つの細胞外小胞関連膜結合ポリペプチドと、そのような疾患、障害、または状態(例えば、がん)と関連する細胞外小胞に存在する表面タンパク質バイオマーカー、内部タンパク質バイオマーカー、及びRNAバイオマーカーからなる群から選択される少なくとも1つの標的バイオマーカーとを含む。一部の実施形態では、そのような標的バイオマーカーシグネチャーを、バイオインフォマティクス分析により同定することができる。
一般に、本開示は、それを必要とする対象からの細胞外小胞を含む血液由来試料において標的バイオマーカーシグネチャーを分析し、及び/または評定する技術を提供する;一部の実施形態では、診断または治療の決定を、そのような分析及び/または評定に基づき行う。当業者は、本開示を読むことで、本明細書に記載の検出方法の様々な組合せを、試料において1つまたは複数の標的バイオマーカーシグネチャーを検出するために使用することができることを認めるであろう。例えば、一部の実施形態では、バルクEV分析及び単一EVプロファイリング分析の組合せを、試料において1つまたは複数の標的バイオマーカーシグネチャーを検出するために使用することができる。一部の実施形態では、標的実体検出システム(例えば、本明細書において記載及び/または利用されるとおりのもの)を含む単一EVプロファイリング分析を、標的バイオマーカーシグネチャーの1つまたは複数のタンパク質-及び/または核酸ベースのバイオマーカーを検出するための1つまたは複数の方法(例えば、本明細書に記載のとおりのもの)と組み合わせて使用することができる。一部の実施形態では、細胞外小胞を含む試料を複数のアリコットに分割することができ、それにより、本明細書において記載されている、及び/または利用される異なる検出技術を使用して単一試料において標的バイオマーカーシグネチャーの複数(例えば、少なくとも2つまたはそれ以上)のバイオマーカーの検出が可能になり得る。
一部の実施形態では、個々の細胞外小胞をプロファイルするためのアッセイ(例えば、単一のEVプロファイリングアッセイ)を、1つまたは複数の疾患、障害、または状態(例えば、がん)についての1つまたは複数の標的バイオマーカーシグネチャーを検出するために使用することができる。例えば、一部の実施形態では、そのようなアッセイは、(i)疾患、障害、または状態(例えば、がん)についての標的バイオマーカーシグネチャーの1つまたは複数のマーカーを標的とすることによる捕捉アッセイと、(ii)そのような標的バイオマーカーシグネチャーの少なくとも1つまたはそれ以上の追加の提供されるマーカーについての1つまたは複数の検出アッセイとを含み得、その際、そのような捕捉アッセイを、そのような検出アッセイの前に実行する。
一部の実施形態では、本明細書において提供される技術を、アッセイされる生物学的実体を含む目的の試料に適用することができる。一部の実施形態では、本明細書に記載の技術を、標的の組合せ(例えば、セット)の存在または非存在について試料をスクリーニングするために使用することができる。したがって、提供される技術は、様々な研究及び/または医学用途において使用することができる。そのような用途の例には、これに限定されないが、複合体内の分子(例えば、タンパク質、転写因子、及び/または核酸分子)の相互作用の研究、特異的な疾患または状態についての患者のスクリーニング、疾患または状態の再発及び/または進行のモニタリング、疾患または状態に罹患している患者の治療の選択、及び/またはそれを必要とする対象に投与される処置の有効性の評価及び/またはモニタリングが含まれる。本明細書に記載の技術により検出またはスクリーニングされ得る疾患の例には、これに限定されないが、自己免疫疾患、炎症性疾患、骨疾患、代謝性疾患、神経性及び神経変性疾患、がん、心臓血管疾患、アレルギー及び喘息、アルツハイマー病、及びホルモン関連疾患が含まれる。
A.がん発生または再発の検出
本開示は特に、単一の生物学的実体(例えば、個々の細胞外小胞)の分析ではなく、バルク試料に基づく生物学的実体(例えば、細胞外小胞)または複数のがん関連バイオマーカーにおける単一のがん関連バイオマーカーの検出が典型的には、その生物学的実体を得た対象ががんにおそらく罹患しているか、またはそれに易罹患性であるかどうかを決定する際に十分な特異性及び/または感受性をもたらし得ないことを認識している。本開示は特に、例えば、検出のための実体(例えば、細胞外小胞)が標的の組合せの存在により特徴づけられることを特異的に必要とすることを含む、そのような問題を解決する組成物及び/または方法を含む技術を提供する。例えば、一部の実施形態では、本明細書において提供される技術は、少なくとも2つまたはそれ以上の標的の組合せの存在により実体(例えば、細胞外小胞)を特徴づけるために有用である。例えば、一部のそのような実施形態では、提供される標的実体検出システムを用いて、少なくとも2つまたはそれ以上の標的を決定することができる。別法では、一部のそのような実施形態では、少なくとも1つの標的を、捕捉アッセイ(例えば、本明細書において記載及び/または利用されるとおりのもの)により検出することができる一方で、少なくとも1つの別の標的を、例えば、本明細書において記載及び/または利用されるとおりの標的実体検出システムを含む検出アッセイにより決定することができる。特定の実施形態では、本開示は、そのような実体(例えば、細胞外小胞)が、がんに特異的である分子標的の組合せ(すなわち、関連がん、例えば、がんの「標的バイオマーカーシグネチャー」)の存在により(例えば、発現により)特徴づけられる一方で、標的化組合せ(例えば、標的バイオマーカーシグネチャー)を含まない生物学的実体(例えば、細胞外小胞)は、検出可能なシグナルを生成しないことを必要とする技術を教示する。したがって、一部の実施形態では、本明細書において提供される技術は、対象においてがんのリスク、発生、及び/または再発を検出するために有用であり得る。例えば、一部の実施形態では、少なくとも1つまたはそれ以上の標的(例えば、少なくとも2、少なくとも3、少なくとも4、少なくとも5、少なくとも6、少なくとも7、少なくとも8、少なくとも9、少なくとも10、少なくとも15、少なくとも20、またはそれ以上の標的を含む)を指向する2つまたはそれ以上の検出プローブ(例えば、本明細書に記載のもの)の組合せを、特異的がんまたは様々ながんを検出するために選択する。一部の実施形態では、がん(複数可)を検出するための標的バイオマーカーシグネチャーの少なくとも1つまたはそれ以上の標的(例えば、少なくとも2、少なくとも3、少なくとも4、少なくとも5、少なくとも6、少なくとも7、少なくとも8、少なくとも9、少なくとも10、少なくとも15、少なくとも20、またはそれ以上の標的を含む)を指向する検出プローブ(例えば、本明細書に記載のもの)の特異的組合せを、そのような予測組合せを同定するためにがん患者生検及び/または患者データの集団またはライブラリ(例えば、10、100、1000、10000、100000、またはそれ以上)を分析することにより決定することができる。一部の実施形態では、バイオマーカーの関連組合せは、例えば、データ解析を介して同定される、及び/または特徴づけられるものであり得る。一部の実施形態では、例えば、多様なセットのがん関連データ(例えば、一部の実施形態では、バルクRNAシーケンシング、単一細胞RNA(scRNA)シーケンシング、質量分析法、組織診、翻訳後修飾データ、in vitro及び/またはin vivo実験データのうちの1つまたは複数を含む)を、がんに高度に特異的である予測マーカーの組合せを同定するために、機械学習及び/または計算モデルを介して分析することができる。一部の実施形態では、がんのステージを識別するための予測マーカーの組合せを、異なるステージのがんに関連する多様なデータ(例えば、一部の実施形態では、バルクRNAシーケンシング、scRNAシーケンシング、質量分析法、組織診、翻訳後修飾データ、in vitro及び/またはin vivo実験データを含む)を比較する、及び解析することに基づきin silicoで決定することができる。例えば、一部の実施形態では、本明細書において提供される技術を、がん対象を、例えば、健康な対象、良性腫瘍または腫瘤を有すると診断されている対象、及び非がん関連疾患、障害、及び/または状態を有する対象(例えば、炎症性腸疾患または障害を有する対象)を含む非がん対象から識別するために使用することができる。一部の実施形態では、本明細書において提供される技術は、がんの早期検出、例えば、ステージIまたはステージIIのがんの検出のために有用であり得る。一部の実施形態では、本明細書において提供される技術は、ステージI、II、III、及びIVの黒色腫を、相互に、及び健康な患者から識別するために有用であり得る。一部の実施形態では、本明細書において提供される技術は、ステージI、II、III、及びIVの肺腺癌を、相互に、及び健康な患者から識別するために有用であり得る。一部の実施形態では、本明細書において提供される技術は、ステージI、II、III、及びIVの結腸直腸癌を、相互に、及び健康な患者から識別するために有用であり得る。一部の実施形態では、本明細書において提供される技術は、ステージI、II、III、及びIVの卵巣癌を、相互に、及び健康な患者から識別するために有用であり得る。一部の実施形態では、本明細書において提供される技術は、1つまたは複数のがんサブタイプを検出するために有用であり得る。例に過ぎないが、一部の実施形態では、本明細書において提供される技術は、例えば、高悪性度漿液性卵巣癌、類内膜卵巣癌、明細胞卵巣癌、低悪性度漿液性卵巣癌、または粘液性卵巣癌を含む、1つまたは複数の卵巣癌サブタイプを検出するために有用であり得る。一部の実施形態では、本明細書において提供される技術は、早期ステージがんについて遺伝的リスク及び平均的リスクを有する対象をスクリーニングするために有用であり得る。
一部の実施形態では、提供される技術を、患者(例えば、がんに罹患しているか、またはそれに易罹患性である患者)のために適切な処置を選択するために使用することができる。例えば、本明細書において提供される一部の実施形態は、治療(例えば、がん及び/または補助処置)のために患者を分類するためのコンパニオン診断アッセイに関し、これは、本明細書において提供される技術を使用して、層状化及び/または応答性バイオマーカーの選択された組合せを患者試料(例えば、患者、例えば、がん患者由来の血液または血液由来試料)において評価することを含む。そのようなアッセイ結果に基づき、治療(例えば、がん治療及び/または補助治療)におそらく応答するであろうと決定された患者に、そのような治療を投与することができるか、または特異的なそのような治療に応答しないであろうと決定された患者に、異なる治療を投与することができる。
一部の実施形態では、本明細書において提供される技術を、患者(例えば、がん患者)に投与される治療の有効性をモニター及び/または評価するために使用することができる。例えば、第1の時点で、血液または血液由来試料を、治療(例えば、抗がん治療)前の、または治療を受けている患者(例えば、がん患者)から収集して、患者の疾患、障害、または状態に特異的であるバイオマーカーの組合せを検出または測定することができる。一部の実施形態では、第1の時点で、血液または血液由来試料を、抗がん治療前の、または治療を受けているがん患者(例えば、がん患者)から収集して、例えば、がんの検出に特異的であるバイオマーカーの選択された組合せを含む細胞外小胞の存在または量を検出することにより、腫瘍量を検出または測定することができる。処置期間後に、第2の血液または血液由来試料を同じ患者から収集して、そのような疾患特異的バイオマーカー(複数可)の変化を検出することができる。例えば、一部のそのような実施形態では、処置の期間の後に、第2の血液または血液由来試料を、同じがん患者から収集して、例えば、がんの検出に特異的であるバイオマーカーの選択された組合せを含む細胞外小胞の非存在または量の減少を検出することにより、腫瘍量の変化を検出することができる。処置の間の疾患特異的バイオマーカーのレベル及び/または変化及び/または腫瘍量をモニターすることにより、適切な行動計画、例えば、治療薬の用量の増減、及び/または異なる治療薬の投与を採用することができる。
上記のとおりの技術を実行する際に使用することができるキットも提供する。一部の実施形態では、キットは、複数の検出プローブ(例えば、本明細書において記載及び/または利用されるとおりのもの)を含む。一部の実施形態では、提供されるキットは、2つまたはそれ以上(例えば、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20またはそれ以上)の検出プローブを含み得る。一部の実施形態では、個々の検出プローブは、異なる標的を指向し得る。一部の実施形態では、2つまたはそれ以上の個々の検出プローブは、同じ標的を指向し得る。一部の実施形態では、提供されるキットは、異なる標的を指向する2つまたはそれ以上の異なる検出プローブを含み、任意選択で、別の検出プローブが指向する標的を同じく指向する少なくとも1つの追加の検出プローブを含み得る。一部の実施形態では、提供されるキットは、同じ標的を指向する2つまたはそれ以上の検出プローブをそれぞれ含む検出プローブの複数のサブセットを含む。一部の実施形態では、複数の検出プローブを、1つの容器中で混合物として提供することができる。一部の実施形態では、検出プローブの複数のサブセットを、別々の容器中で個々の混合物として提供することができる。一部の実施形態では、それぞれの検出プローブを、別々の容器中で個々に提供する。
本実施例では、標的結合部分と、その標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメイン(二本鎖部分及び一本鎖オーバーハングを含む)とをそれぞれ含む、異なる標的のための検出プローブの合成を記載する。本実施例ではさらに、2つまたはそれ以上の標的(標的は同じでも、または別個でもよい)を含む生物学的実体の存在または非存在を検出するためのそのような検出プローブの使用を実証する。
オリゴヌクレオチド
一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、次の配列構造及び修飾を有し得る:
鎖1:
/5AmMC12/CAGTCTGACTCACCACTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2:
/5AmMC12/CACCAGACCTACGAAGTCCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGGATGTCAAGGGTAGCAGCGACGATTAACGAGTGGTGAGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAAACTGGACAGTGGCTAATCAGGCAAGGCTATGGACTTCGTAGGTCTGGTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖5:
CAGTCTGACTCACCACTCGT
鎖6:
CACCAGACCTACGAAGTCCA
ポリT:
TTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTT
DNAテンプレートがライゲートし、かつPCRにより増幅され得るかを検証するために、鎖1及び3の、ならびに鎖2及び4の対をハイブリダイズさせた。次いで、ハイブリダイズした鎖1+3及び2+4を、DNAリガーゼ(例えば、T7またはT4リガーゼ)を使用してライゲートし、かつqPCRを、EvaGreen蛍光色素ならびにプライマーとして鎖5及び6を使用して行った。
オリゴヌクレオチド(例えば、ハイブリダイズした鎖1及び3、ならびにハイブリダイズした鎖2及び4)を標的結合部分(例えば、標的タンパク質に対する抗体因子)にコンジュゲートするために、一本鎖の対をハイブリダイズさせて、一方の末端に一本鎖オーバーハングを有する二本鎖オリゴヌクレオチドを形成し、次いで、例えば、市販のDNA-オリゴヌクレオチドコンジュゲーションキット(例えば、Abcam、ab218260)を使用して、標的結合部分(例えば、標的タンパク質に対する抗体因子)を別の末端で二本鎖オリゴヌクレオチドにコンジュゲートした。
当技術分野で公知の任意の方法を使用して、細胞を培養することができる。例えば、T84細胞を、5%エクソソーム非含有ウシ胎児血清(FBS)及び1mLあたり50単位のペニシリン/ストレプトマイシンを含む1:1のダルベッコ変法イーグル培地(DMEM):ハムF12培地中で成長させた。SK-MEL-1及びMeWo細胞を両方とも、10%エクソソーム非含有FBS及び1mLあたり50単位のペニシリン/ストレプトマイシンを含むイーグル最小必須培地(EMEM)中で成長させた。すべての細胞系を5%CO2及び37℃で維持し、継代数は15未満であった。
当技術分野で公知の任意の方法を使用して、細胞を固定化、透過化、及び遮断することができる。例えば、固定化の前に、例えば、TrypLEプロテアーゼを使用して、接着性T84及びMeWo細胞をそれらの基材から取り外した。SK-MEL-1は弱接着性であり、例えば、フラスコを振盪することにより、フラスコ基材から遊離させることができる。溶液中になったら、上記細胞を300rcfで、5分間にわたって室温でペレット化した。上記細胞を1×PBS10mL中で1回洗浄し、上記のとおりペレット化した。次いで、各細胞系を固定化し、透過化した。例えば、細胞を氷冷メタノール中で同時に固定化及び透過化し、かつ-25℃で少なくとも20分間にわたってインキュベートすることができる。遮断前に、細胞を1000rcfで2分間にわたって第1のペレット化により再水和し(固定化すると、それらは、より高いg力に耐え得る)、次いで、1×PBS中で1回洗浄した。次いで、洗浄され再水和されたペレットを遮断バッファー中に再懸濁した。
DNA-コンジュゲート抗体を添加する前に、3つのメタノール固定化細胞系(SK-MEL-1、MeWo、及びT84)のそれぞれを、1.5mL Protein Lo Bindエッペンドルフ管内で、非特異的結合を遮断するための遮断バッファー1mL中で、3つのアリコットに分けた。3つの細胞系のそれぞれのための3本の管を、抗体因子を含まないもの、DNA-コンジュゲート抗体(一方は標的タンパク質1のため、及び他方は標的タンパク質2のため)を1ug/mLで含むもの、及びDNA-コンジュゲート抗体(一方は標的タンパク質1のため、及び他方は標的タンパク質2のため)を10ng/mLで含むものが得られるように分けた。上記抗体を、遮断された細胞1mLを添加する前に、遮断バッファー中で事前希釈し、かつ抗体因子-DNAコンジュゲートを細胞と共に30分間にわたってインキュベートした。抗体インキュベーションの後に、上記細胞を、例えば、1×PBS1mL中で、1,000rcfで室温で2分間にわたって遠心することにより4回洗浄した。
遮断され、標識付けされ、かつ洗浄された細胞のDNAライゲーション(例えば、T7ライゲーション)を、例えば次のプロトコルを使用して行った:1.細胞を最終洗浄後に50uLの体積で再懸濁するために、DNAリガーゼマスターミックスを作製した。DNAリガーゼマスターミックスは、例えば、5%(v/v)T7リガーゼ、50%(v/v)2×T7リガーゼバッファー、及び45%(v/v)ヌクレアーゼ非含有水を含有した。2.DNAリガーゼマスターミックス50uLに細胞系のそれぞれを再懸濁した後に、上記細胞-リガーゼミックスをサーマルサイクラー内に、例えば、25℃で20分間置いた。3.例えば、25uLの最終反応体積が得られるように500nM濃度のプライマー(例えば、鎖5及び6)、1×EvaGreen蛍光色素、及びLuna qPCRマスターミックスを使用して、qPCRマスターミックスを作製した。4.細胞-リガーゼ産物約8uLをqPCR反応物25uLのそれぞれに添加した。5.qPCRを、例えば96ウェルプレート内で、例えば、次のPCRプロトコルを使用して実行した:95℃で1分間保持、95℃で10秒間及び60℃で30秒間を50サイクル実行、ならびに標準融解曲線。温度変化の速度は、標準(例えば、1秒あたり2℃)であるように選択した。すべてのqPCR反応を三重に行い、qPCRシグナルを正規化するために、パッシブ基準(例えば、ROX)を使用した。次いで、データを解析してグラフ化した。
qPCRプロットの解釈
qPCRプロットは、二本鎖DNAに挿入されているEvaGreenからの蛍光シグナルがバックグラウンドを超えて上昇するCt(サイクル閾値)を同定している。任意の種類の二本鎖DNAのための非特異的色素を使用したので、テンプレートなしの対照(NTC)が、およそ35サイクル後に、プライマー二量体の増幅から生じるであろう。さらに、PCR反応に参加するいずれか少量のテンプレートが、予測Ct値よりも低いCt値をもたらし、これは、NTCが30未満のCt値を有する場合に生じることである(図4において、NTCで30未満のCt値が生じた。そのような汚染は、例えば、テンプレートが増幅される(または標識プローブもしくは検出ラベルが加水分解され得る)場合にのみ蛍光をもたらすハイブリダイゼーションプローブを用いて増幅を実行することにより管理することができる。
図3に示されているとおり、プライマー二量体バックグラウンドを超えるqPCRシグナルを達成するためには、リガーゼの存在が必要であった。さらに、T7及びT4リガーゼは、類似のCt値及び一致する結果をもたらした。
図4に示されているとおり、いずれかの抗体因子も含まない群は、細胞系全体で高いCt値(約33+)を有した。逆に、1ug/mLの抗体因子で標識された群は、18の低いCt値を有した。最も強いシグナルを有した細胞系はMeWoであり、続いて、SK-MEL-1及びT84細胞系であった。この観察結果は、標的タンパク質1及び標的タンパク質2を最も多く発現するMeWo、標的タンパク質1及び標的タンパク質2を2番目に多く発現するSK-MEL-1、ならびに標的タンパク質1及び標的タンパク質2を最も少なく発現するT84細胞系と一致する。最後に、より低い濃度の抗体因子(10ng/mL)は、かなり高いCt値を有し、抗体因子のない対照のものと類似する。
二重システム(例えば、上記のもの)は、細胞系において共局在した標的タンパク質1及び標的タンパク質2を同定することが実証されている。第一に、図3において示されているとおり、上記テンプレートはライゲートし、増幅可能である。第二に、これらのDNAテンプレートを2つの異なる抗体にコンジュゲートし、かつ細胞系を染色した後に、発現依存性シグナルが観察された。すなわち、上記MeWo細胞系は、最も高いレベルの標的タンパク質1及び標的タンパク質2(表1)を発現し、かつ比例して、最も強い標的タンパク質1及び標的タンパク質2シグナルを有し、上記SK-MEL-1細胞系は、標的タンパク質1及び標的タンパク質2をMeWoよりも約4.4倍低く発現し、かつより弱いシグナルを有し、上記T84細胞系は、標的タンパク質1及び標的タンパク質2を発現しないか、非常に少なく発現し、かつ最も弱いシグナルを有する。陰性T84細胞も、非特異的バックグラウンドと一致する高いCt値を有する。しかしながら、抗体因子1ug/mLでのT84はさらに、23の低いCt値を1つ有する。このCt値は、27の他の2つのCt値に対する異常値であり、細胞の凝集に、または他の非特異的プライミング相互作用もしくは汚染に由来し得る。一部の実施形態では、最も強いシグナルと最も弱いシグナルとの間の相違は、さらなる十分な洗浄を行うことにより増大し得る。
本実施例では、標的結合部分と、その標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメイン(二本鎖部分及び一本鎖オーバーハングを含む)とをそれぞれ含む3つの標的のための検出プローブの合成を記載する。本実施例はさらに、3つの二本鎖オリゴヌクレオチド(一本鎖オーバーハングをそれぞれ有する)をライゲート及び増幅するための混合物において使用することができることを実証し、そのような二本鎖オリゴヌクレオチドが抗体にコンジュゲートしている場合に、例えば、図5Aに示されているとおりの三重システムを、同じ生物学的実体(例えば、個々の細胞外小胞)にすべて共局在している3つの標的(例えば、分子標的)を同定するために実行することができることを示している。一部の実施形態では、そのような3つの標的は、同じ標的であってよい。一部の実施形態では、そのような3つの標的は、別個の標的であってよい。一部の実施形態では、そのような3つの標的のうちの少なくとも2つは、同じ標的であってよい。
オリゴヌクレオチド
一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、次の配列構造及び修飾を有し得る:
鎖1:
/5AmMC12/CAGTCTGACTCACCACTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2:
/5AmMC12/CACCAGACCTACGAAGTCCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖4(5’リン酸なし):
/5’ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAAACTGGACAGTGGCTAATCAGGCAAGGCTATGGACTTCGTAGGTCTGGTG
鎖5:
CAGTCTGACTCACCACTCGT
鎖6:
CACCAGACCTACGAAGTCCA
鎖8:
/5Phos/TTCCAACTAT/CCAACTAT/CTAT/+TTTTTT/TT+ACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGGATGTCAAGGGTAGCAGCGACGATTAACGAGTGGTGAGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖9:
/5Phos/GAGTGTGAGGATGTCAGTGTGTCTC/TT/CCAA(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖10:
/5AmMC12/ ATAGTTGGAAGAGACACACTGACATCCTCAC(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
DNAテンプレートがライゲートし、かつPCRにより増幅され得るかどうかを検証するために、鎖1及び8の、鎖9及び10の、ならびに鎖2及び4の対をハイブリダイズさせた。次いで、DNAリガーゼ(例えば、T7またはT4リガーゼ)を使用して、ハイブリダイズした鎖1+8、9+10、及び2+4をライゲートし、かつqPCRを、EvaGreen蛍光色素ならびにプライマーとして鎖5及び6を使用して行った。
強固なCt値には、リガーゼが必要とされる
図6に示されているとおり、リガーゼの存在が、強固なCt値を生成するために必要である。
図7~9に示されているとおり、上記3つのテンプレートDNAの各対が反応でライゲートした。3つの鎖のうちの2つのみでは、上記シグナルは、およそ13~14Ct値弱い。これらの所見は、強固なシグナルに必要とされる3つすべての鎖と共に、三重DNAシステムが増幅され得ることを示している。
本実施例では、それぞれ実施例1及び2に記載のとおりの二重システム及び三重システムが、標的のうちの少なくとも1つが欠失している生物学的実体(例えば、細胞外小胞)ではなく、標的の組合せ(例えば、セット)の存在について、異なる種類の生物学的実体(例えば、細胞外小胞)を検出するために有用であることを実証する。本実施例ではまた、標的結合部分と、その標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメイン(二本鎖部分及び一本鎖オーバーハングを含む)とをそれぞれ含む個々の標的のための検出プローブの合成を記載する。
表2.細胞系由来細胞外小胞の遺伝子発現
(100万あたりの転写産物/TPM)
表3.細胞系由来細胞外小胞の遺伝子発現
(100万あたりの転写産物/TPM)
オリゴヌクレオチド
一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、次の配列構造及び修飾を有し得る。下の鎖番号が、図2A及び5Aに示されている鎖に付随する数値に対応することに注意する。
鎖1:
/5AmMC12/CAGTCTGACTCACCACTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2:
/5AmMC12/CACCAGACCTACGAAGTCCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGGATGTCAAGGGTAGCAGCGACGATTAACGAGTGGTGAGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAAACTGGACAGTGGCTAATCAGGCAAGGCTATGGACTTCGTAGGTCTGGTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4(三重システムにおいて使用される場合、5’リン酸はない):
/5’ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAAACTGGACAGTGGCTAATCAGGCAAGGCTATGGACTTCGTAGGTCTGGTG
鎖5:
CAGTCTGACTCACCACTCGT
鎖6:
CACCAGACCTACGAAGTCCA
ポリT:
TTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTT
鎖8:
/5Phos/CCAACTATTTTTTTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGGATGTCAAGGGTAGCAGCGACGATTAACGAGTGGTGAGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖9:
/5Phos/GAGTGTGAGGATGTCAGTGTGTCTCTT(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖10:
/5AmMC12/ATAGTTGGAAGAGACACACTGACATCCTCAC(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
二重システムでは、一部の実施形態では、鎖1及び3を含むオリゴヌクレオチドは、標的マーカーAに特異的な標的結合部分にコンジュゲートしていた一方で、鎖2及び4を含むオリゴヌクレオチドは、標的マーカーBに特異的な標的結合部分にコンジュゲートしていた。一部の実施形態では、実施例1に記載のとおりの、標的結合部分(例えば、抗体因子)をオリゴヌクレオチドにコンジュゲートするための方法を使用して、各標的結合部分(例えば、抗体因子)に対してほぼ2本の二本鎖DNAの鎖をアニールした。
T84細胞を、5%エクソソーム非含有ウシ胎児血清(FBS)及び1mLあたり50単位のペニシリン/ストレプトマイシンを含む1:1のダルベッコ変法イーグル培地(DMEM):ハムF12培地中で成長させた。MeWo細胞は両方とも、10%エクソソーム非含有FBS及び1mLあたり50単位のペニシリン/ストレプトマイシンを含むイーグル最小必須培地(EMEM)中で成長させた。すべての細胞系を5%CO2及び37℃で維持し、継代数は20未満であった。
一部の実施形態では、MeWo及びT84細胞を、約80%の集密度に達するまでそれぞれの培地中で成長させた。細胞培養培地を収集し、300×rcfで5分間にわたって室温で(RT)でスピンさせて、細胞及び破片を除去した。次いで、上清を収集し、-80℃で冷凍した。
一部の実施形態では、例えば、NanoDropを製造者指示に従って使用して、精製細胞外小胞のタンパク質濃度を測定した。この測定を使用して、各試料に添加するビオチンの量を計算した。製造者指示に従って、例えば、EZ-link Micro NHS-PEG4-ビオチン化キットを使用して、細胞外小胞をビオチン化した。ビオチンを試料に添加した後に、これを45分間にわたって振盪した。2つの連続する5mL、40kDa MWCOカラムスピン(例えば、Zeba(商標)製)を使用して、過剰のビオチンを除去した。
65~200nmのナノ粒子範囲を測定するために、例えば、TS400チップを用いるSpectroDyne粒子計数器を使用して、粒子カウントを得た。
一部の実施形態では、等数のビオチン化細胞外小胞を、例えば、アッセイされる各試料条件について3連で、ストレプトアビジンコーティングされた捕捉表面(例えば、96ウェルプレートのウェル)に添加した。プレートをインキュベートし、室温で、しばらく振盪した。
一部の実施形態では、適切な濃度のホルムアルデヒド(1×PBS中)を、ストレプトアビジンコーティングされた表面上に捕捉された細胞外小胞に添加した。次いで、固定化細胞外小胞を、その後のステップで使用するために洗浄した。
固定化細胞外小胞を含む試料を遮断バッファーと混合した。一部の実施形態では、遮断バッファーは、リン酸非含有バッファー(例えば、Candor Bioscience製のLowCross-Buffer(登録商標))などの緩衝液中に適切な濃度でTriton X-100またはサポニン及びサケ精子DNAを含み得る。
検出プローブ(例えば、抗体因子の量に基づき約0.5ug/mL~約3.5ug/mlの濃度で)を、細胞外小胞(例えば、固定化され、遮断され、かつ任意選択で透過化されたインタクトな細胞外小胞)を含む試料に添加した。次いで、混合物を、検出プローブが標的バイオマーカーを含む細胞外小胞に結合するような条件下でインキュベートする。
一部の実施形態では、試料を適切なバッファー中で洗浄した。
非結合検出プローブを除去するために洗浄した後に、検出プローブ結合細胞外小胞(固体基材表面上に捕捉されている)をライゲーションミックスと接触させた。混合物を20分間にわたって室温でインキュベートした。
ライゲーション後に、検出プローブ結合細胞外小胞(固体基材表面上に捕捉されている)をPCRミックスと接触させた。PCRを例えば、Quant Studio 3で、次の例示的なPCRプロトコルで行った:95℃で1分間にわたって保持、95℃で5秒間及び62℃で15秒間を50サイクル実行、及び標準的な融解曲線。温度変化の速度は、標準(1秒あたり2℃)であるように選択した。すべてのqPCRを二重または三重に行い、かつROXを、qPCRシグナルを正規化するためのパッシブ基準として使用した。次いで、データをQuant Studio 3 machineからダウンロードし、Python 3.7で解析及びプロットした。
図13A及び13Bに示されているqPCRの結果は、本明細書に記載のシステム(例えば、二重及び/または三重システム)を使用することで、標的バイオマーカーシグネチャー(例えば、タンパク質-発現パターン)を含有する細胞外小胞が検出可能であり、かつそのような標的バイオマーカーシグネチャーを有さない細胞外小胞から識別可能であることを実証している。本明細書に記載のシステム(例えば、二重及び/または三重システム)を使用することで、親細胞系の示差的遺伝子発現は、それぞれの細胞系由来細胞外小胞において容易に同定可能であった。MeWo細胞及びそれに由来する細胞外小胞は、標的マーカー(二重システムでは標的マーカーA及び標的マーカーB;三重システムでは標的マーカーA、標的マーカーC、及び標的マーカーD)をそれぞれ、T84細胞及びそれに由来する細胞外小胞よりも高いレベルで発現する。したがって、この実施例で実行される二重及び三重アッセイの両方で、MeWo細胞外小胞は続いて、T84細胞外小胞から得られるものよりもかなり低いCt(約6Ct低い)を有した。これらの結果は、表2~3に示されているとおり、各細胞系におけるmRNA発現と一致する。
この本実施例は、共局在した標的マーカーA及び標的マーカーBを同定するための二重システムが、細胞外小胞を標識するレベルで機能し、その際、発現依存性シグナルが観察されることを示している。具体的には、MeWo細胞及びそれに由来する細胞外小胞は、標的マーカーA及び標的マーカーBの両方を、T84細胞及びそれに由来する細胞外小胞と比べて高いレベルで発現し(表2)、したがって、MeWo細胞外小胞を含有する試料では、より強いシグナルが生じた。
本実施例では、本明細書に記載のシステムが複雑な試料マトリックス(例えば、対象からの血漿試料)において標的生物学的実体を検出するために有用であり得ることを実証する。例えば、標的生物学的実体(例えば、がん関連細胞外小胞)を血漿試料(例えば、ヒト対象に由来)にスパイクし、ライゲートされたテンプレートのシグナルを濃度依存的手法で、標的生物学的実体を含む試料中で検出した。
・ 標的マーカーA+標的マーカーB(黒色腫関連細胞外小胞を検出するためにこのアッセイで利用した組合せマーカー)
・ 標的マーカーE+標的マーカーF(肺腺癌関連細胞外小胞を検出するためにこのアッセイで利用した組合せマーカー)
・ 標的マーカーE+標的マーカーA(肺腺癌関連細胞外小胞を検出するためにこのアッセイで利用した組合せマーカー)
・ 標的マーカーG+標的マーカーF(肺腺癌関連細胞外小胞を検出するためにこのアッセイで利用した組合せマーカー)
下の表4に、種々のがん関連細胞外小胞における様々な標的マーカーの発現をまとめている。表4中の組合せ5は上記スパイクイン実験では評価されなかったが、患者試料をスクリーニングするための実験(下記のとおりのもの)で使用されたことに注意されたい。
表4.肺腺癌細胞系(HCC4006)及び黒色腫細胞系(SKMEL1)で発現された、5つの組合せでの100万あたり転写産物(TPM)のスコア
オリゴヌクレオチド
一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、次の配列構造及び修飾を有し得る。下の鎖番号が、図2Aに示されている鎖に付随する数値に対応することに注意する。
鎖1:
/5AmMC12/CAGTCTGACTCACCACTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2:
/5AmMC12/CACCAGACCTACGAAGTCCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGGATGTCAAGGGTAGCAGCGACGATTAACGAGTGGTGAGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAAACTGGACAGTGGCTAATCAGGCAAGGCTATGGACTTCGTAGGTCTGGTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖5:
CAGTCTGACTCACCACTCGT
鎖6:
CACCAGACCTACGAAGTCCA
一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドへの抗体因子のコンジュゲーションを、抗体因子の抗原結合部分における変化を最小化または回避するように実行する。一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、ハイブリダイズした鎖1及び3またはハイブリダイズした鎖2及び4であるか、またはそれを含む。一部の実施形態では、抗体因子を、実施例1及び3に記載のとおりの方法を使用して、オリゴヌクレオチドにコンジュゲートすることができる。一部の実施形態では、抗体因子を、その抗体因子の遊離アミン基を介してオリゴヌクレオチドにコンジュゲートすることができる。一部の実施形態では、抗体因子を、その抗体因子の反応性チオール基を介してオリゴヌクレオチドにコンジュゲートすることができる。一部の実施形態では、抗体因子を、その抗体因子中に存在する炭水化物残基を介してオリゴヌクレオチドにコンジュゲートすることができる。
SK-MEL-1細胞を、10%エクソソーム非含有FBS及び1mLあたり50単位のペニシリン/ストレプトマイシンを含むイーグル最小必須培地(EMEM)中で成長させた。HCC-4006細胞を、10%エクソソーム非含有FBS及び1mLあたり50単位のペニシリン/ストレプトマイシンを含むRoswell Park Memorial Institute(RPMI 1640)中で成長させた。すべての細胞系を5%CO2及び37℃で維持し、継代数は20未満であった。
一部の実施形態では、SK-MEL-1及びHCC4006細胞を、約80%の集密度に達するまでそれぞれの培地中で成長させた。細胞培養培地を収集し、300×rcfで5分間にわたって室温で(RT)でスピンさせて、細胞及び破片を除去した。次いで、上清を収集し、-80℃で冷凍した。
スパイクイン研究のために、異なる体積(例えば、50、100、及び400uL)の精製SK-MEL-1及びHCC-4006細胞外小胞を、例えば、1mLあたり、SpectraDyne nCS1 TS400カートリッジで測定した場合に直径80nm超のナノ粒子およそ3e10の同じ濃度で、健康な患者BL3からの血漿(「BL3血漿」)にスパイクした。BL3血漿500uLから出発して、異なる体積(例えば、0uL、50uL、100uL、または400uL)の精製細胞系由来細胞外小胞を添加した。次いで、各試料が、細胞外小胞の精製前に900uLの体積になるように、緩衝液、例えば、PBSを添加した。血漿試料からの細胞外小胞精製のための例示的なプロトコルは、下記のセクション「健康な血漿及びステージIV血漿からの細胞外小胞精製」に記載したが、ただし、サイズ排除カラム精製後の細胞外小胞を400uLに濃縮し、ELISA捕捉バッファー中で1mLあたり直径80nm超のナノ粒子約3e9まで希釈し、及びPCRプレートに30uLでプレーティングしたという除外を伴った。
一部の実施形態では、血漿細胞外小胞を清澄化に掛け、その後、ただちに、サイズ排除精製カラムに装填した。約65nm~約200nmのサイズ範囲を有するナノ粒子を各試料で収集した。
粒子カウントを、実施例3に記載されているとおりに実行した。
一部の実施形態では、細胞外小胞をPCRプレート上に捕捉した。例えば、がん細胞外小胞を標的とする抗体でコーティングされた表面を使用して、がん細胞外小胞を選択的に捕捉することができる。別の実施例は、細胞外小胞のビオチン化及びストレプトアビジン(例えば、BioTez製)コーティングされたPCRウェル上での捕捉である。
一部の実施形態では、適切な濃度のホルムアルデヒド(1×PBS中)を、PCRプレート表面上に吸着させた細胞外小胞に添加した。次いで、固定化細胞外小胞をその後のステップでの使用のために洗浄した。
固定化細胞外小胞を含む試料を遮断バッファーと混合した。一部の実施形態では、遮断バッファーは、Triton X-100及びサケ精子DNAを適切な濃度で、緩衝液、例えば、リン酸非含有バッファー(例えば、Candor Bioscience製のLowCross-Buffer(登録商標))中に含む。
検出プローブ(例えば、抗体因子の量に基づき、約1ug/mlの濃度)を、細胞外小胞(例えば、固定化、遮断、及び任意選択で透過化されたインタクトな細胞外小胞)を含む試料に添加した。次いで、混合物を、検出プローブが標的バイオマーカーを含む細胞外小胞に結合するような条件下でインキュベートする。
一部の実施形態では、試料を、例えば、適切なバッファー中で複数回洗浄した。
非結合検出プローブを除去するための洗浄の後に、検出プローブ結合細胞外小胞(固体基材表面上に捕捉されている)を、ライゲーションミックスと接触させた。その混合物を20分間にわたって室温でインキュベートした。
ライゲーション後に、検出プローブ結合細胞外小胞(固体基材表面上に捕捉されている)を、PCRミックスと接触させた。PCRを、例えば、Quant Studio 3で、次の例示的なPCRプロトコルで実行した:95℃で1分間保持、95℃で5秒間及び62℃で15秒間を50サイクル実行、ならびに標準融解曲線。温度変化の速度は、標準(1秒あたり2℃)であるように選択した。すべてのqPCRを二重または三重に行い、かつROXを、qPCRシグナルを正規化するためのパッシブ基準として使用した。次いで、データをQuant Studio 3 machineからダウンロードし、Python 3.7で解析及びプロットした。
スパイクイン実験
検出プローブの4つの異なる組合せ(表4に示されているとおりの標的マーカーの異なる組合せを指向)のそれぞれについての生qPCRプロットを得(データは図示せず)、次いで、解析してデルタCtプロットを生成し(図14A~14Dに示されているとおりのもの)、その際、BL3血漿試料(健康な血漿試料)をゼロ基線とした。
組合せ3を使用してHCC4006細胞外小胞スパイクイン血漿試料において検出された強いシグナルを考慮して、組合せ3を、LUAD患者血漿試料を評定するために選択した。図15A~15Cに示されているとおり、組合せ3は、LUAD患者試料(STIV試料)と、健康な対照(HC試料)とを非常に高い感受性及び特異性で識別することができた。図15Cは、一部の実施形態では、そのようなアッセイが感受性100%及び特異性100%をもたらし得ることを示している。
本実施例では、標的結合部分と、その標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメイン(二本鎖部分及び一本鎖オーバーハングを含む)とをそれぞれ含む、標的(例えば、標的バイオマーカー(複数可))のための検出プローブの合成を記載する。本実施例ではさらに、2つまたはそれ以上の別個の標的を含む生物学的実体(例えば、細胞外小胞)の存在または非存在を検出するためのそのような検出プローブの使用を実証する。
一部の実施形態では、本明細書に記載の標的実体検出システムは二重システムである。一部の実施形態では、例えば、図2Aに図示のとおりのそのような二重システムは、それぞれ異なるエピトープを認識する2つの抗体を利用する。対合二本鎖テンプレートDNAもqPCRで利用し、それらはそれぞれ、そのパートナー上の5’オーバーハングに相補的な特異的な4塩基5’オーバーハングを有する。各抗体を、2つの二本鎖DNAテンプレートの一方とコンジュゲートさせる。抗体がそれらの標的エピトープに結合すると、それぞれのテンプレートの接着性末端がハイブリダイズし得る。次いで、PCR増幅前に、これらの接着性末端をT7リガーゼにより一緒にライゲートする。2つのDNAテンプレート間でハイブリダイゼーションが生じるためには、上記2つの抗体は、相互に十分に近接して結合している必要がある(例えば、50~60nm以内、DNAリンカー及び抗体因子の長さ)。結合しているが、ライゲートされないままである任意のテンプレートは、図2Aに示されているとおり、PCR産物を生成しないこととなる。
健康な対照及びがん患者(例えば、卵巣癌を有する患者)からの血漿試料を処理して、精製された細胞外小胞を得、これを、下記のとおりの例示的なアッセイを使用して調べた。
表5.ある特定のがん細胞系 対 陰性対照細胞系(例えば、非がん系)で発現される、次のバイオマーカー組合せの転写産物発現スコア
オリゴヌクレオチド
一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、次の配列構造及び修飾を有し得る。下の鎖番号が、図2Aに示されている鎖に付随する数値に対応することに注意する。
鎖1v1:
/5AzideN/CAGTCTGACACAGCAGTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AzideN/は、NHSエステルリンカーを介して5’オリゴヌクレオチドに結合しているアジド基を指す)、または
/5AmMC12/CAGTCTGACACAGCAGTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)、または
/5ThiolMC6/CAGTCTGACACAGCAGTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5ThiolMC6/は、6-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているチオールを指す)
鎖2v1:
/5AzideN/GACCTGACCTACAGTGACCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AzideN/は、NHSエステルリンカーを介して5’オリゴヌクレオチドに結合しているアジド基を指す)、または
/5AmMC12/GACCTGACCTACAGTGACCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC1/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)、または
/5ThiolMC6/GACCTGACCTACAGTGACCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5ThiolMC6/は、6-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているチオールを指す)。
鎖3v1:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGGATGTCAAGGGTAGCAGCGACGATTAACGACTGCTGTGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、オリゴヌクレオチド末端に結合したリン酸基を指す)
鎖4v1:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAAACTGGACAGTGGCTAATCAGGCAAGGCTATGGTCACTGTAGGTCAGGTC(ここで、/5Phos/は、オリゴヌクレオチド末端に結合したリン酸基を指す)
鎖5v1:
CAGTCTGACACAGCAGTCGT
鎖6v1:
GACCTGACCTACAGTGACCA
鎖7(プローブ)v1:
/56-FAM/TGGCTAGAC/ZEN/AGAGGTGTACTCCTAGTGAGA/3IABkFQ/(ここで、/56-FAM/は、5’オリゴヌクレオチド末端のフルオレセイン(例えば、6-FAM)を指し;かつ/3IABkFQ/は、3’オリゴヌクレオチド末端のフルオレセインクエンチャーを指す)。
鎖1v2:
/5AzideN/CAGTCTGACTCACCACTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AzideN/は、NHSエステルリンカーを介して5’オリゴヌクレオチドに結合しているアジド基を指す)、または
/5AmMC12/CAGTCTGACTCACCACTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)、または
/5ThiolMC6/CAGTCTGACTCACCACTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5ThiolMC6/は、6-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているチオールを指す)
鎖2v2:
/5AzideN/CACCAGACCTACGAAGTCCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AzideN/は、NHSエステルリンカーを介して5’オリゴヌクレオチドに結合しているアジド基を指す)、または
/5AmMC12/CACCAGACCTACGAAGTCCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC1/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)、または
/5ThiolMC6/CACCAGACCTACGAAGTCCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5ThiolMC6/は、6-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているチオールを指す)
鎖3v2:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGGATGTCAAGGGTAGCAGCGACGATTAACGAGTGGTGAGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4v2:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAAACTGGACAGTGGCTAATCAGGCAAGGCTATGGACTTCGTAGGTCTGGTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖5v2:
CAGTCTGACTCACCACTCGT
鎖6v2:
CACCAGACCTACGAAGTCCA
鎖7(Probe)v2:
/56-FAM/TGGCTAGAC/ZEN/AGAGGTGTACTCCTAGTGAGA/3IABkFQ/(ここで、/56-FAM/は、5’オリゴヌクレオチド末端のフルオレセイン(例えば、6-FAM)を指し;かつ/3IABkFQ/は、3’オリゴヌクレオチド末端のフルオレセインクエンチャーを指す)。
例えば、銅非含有クリック化学を使用して、標的マーカー(例えば、がんマーカー2)を指向する抗体の60ugアリコットを、ハイブリダイズした鎖1+3及び2+4とコンジュゲートした。第1のステップは、アジド修飾オリゴヌクレオチドドメイン(例えば、DNAドメイン)とのコンジュゲーション反応に参加するDBCO官能化抗体を調製することであった。これは、上記抗体とDBCO-PEG5-NHSヘテロ二官能性架橋リンカーとの反応から開始した。NHSエステルと利用可能なリシン基との間の反応を室温で2時間にわたって行い、その後、未反応の架橋剤を、遠心限外濾過を使用して除去した。コンジュゲーションを完了するために、アジド修飾オリゴヌクレオチドドメイン(例えば、DNAドメイン)及びDBCO官能化抗体を終夜、室温で反応させた。
陰性対照細胞(例えば、非標的がん細胞、例えば、黒色腫細胞または健康な細胞)を10%エクソソーム非含有FBS及び1mLあたり50単位のペニシリン/ストレプトマイシンを含むイーグル最小必須培地(EMEM)中で成長させた。がん細胞(例えば、卵巣癌細胞)を、10%エクソソーム非含有FBS及び1mLあたり50単位のペニシリン/ストレプトマイシンを含むRoswell Park Memorial Institute(RPMI 1640)中で成長させた。がんを検出するためのアッセイ(例えば、本明細書に記載のもの)を開発するために有用であり得る例示的ながん細胞系には、これに限定されないが、A2780、Caov-3、COV413A、ES2、OVCAR-3、OV90、PA-1、SK-OV-3、SW626、TOV-112、及びInce et al.,“Characterization of twenty-five ovarian tumor cell lines that phenocopy primary tumours” Nature Communications 6:7419(2015)に記載の細胞系が含まれる。すべての細胞系を5%CO2及び37℃で維持し、継代数は20未満であった。
一部の実施形態では、がん細胞(例えば、卵巣癌細胞)及び陰性対照細胞を、約80%の集密度に達するまでそれぞれの培地中で成長させた。細胞培養培地を収集し、300×rcfで5分間にわたって室温で(RT)でスピンさせて、細胞及び破片を除去した。次いで、上清を収集し、-80℃で冷凍した。
65~1000nmのナノ粒子範囲を測定するために、例えば、TS400チップを用いるSpectroDyne粒子計数器を使用して、粒子カウントを得た。一部の実施形態では、より小さな粒子範囲が望ましいことがある。
EV精製の前に、試料の取り扱いに参加しないことになっている人が、試料を盲検化した。データ解析を可能にするために、実験が完了した後に初めて、患者-同定情報を明らかにした。1mLアリコットの全血漿を-80℃での貯蔵から取り出し、3回の清澄化スピンに掛けて、細胞、血小板、及び破片を除去した。
それぞれの清澄化血漿試料を、使い捨てサイズ排除精製カラムに流して、EVを単離した。約65nm~約1000nmのサイズ範囲を有するナノ粒子を各試料で収集した。一部の実施形態では、より小さな粒子範囲が望ましいことがある。
抗体を、磁気ビーズにコンジュゲートさせた。簡単に述べると、ビーズを滅菌環境下で秤量し、バッファー中に再懸濁させた。抗体を官能化ビーズと混合し、コンジュゲーション反応を転倒型混合で行った。ビーズを、コンジュゲーションキットが提供する洗浄バッファーを使用して複数回洗浄し、4℃で、提供された貯蔵バッファー中で貯蔵した。
EV捕捉のために、精製血漿EVの希釈試料を、EV標的(例えば、がんマーカー1)を指向する抗体とコンジュゲートした磁気ビーズと共に適切な期間にわたって、例えば、室温でインキュベートした。
EV捕捉アッセイ(例えば、上記のもの)において使用したものとは異なるEV標的(例えば、がんマーカー2)を指向する抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲート(「抗体プローブ」)を、適切なバッファー中で、それらの最適な濃度で希釈した。抗体プローブを、磁気捕捉ビーズ上に結合したEVを含む試料と相互作用させた。
一部の実施形態では、試料を、適切なバッファー中で、例えば複数回洗浄した。
洗浄して非結合抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲートを除去した後に、結合した細胞外小胞及び結合した抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲートを有するビーズをライゲーションミックスと接触させた。混合物を20分間にわたって室温でインキュベートした。
ライゲーションの後に、結合した細胞外小胞及び結合した抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲートを有するビーズをPCRミックスと接触させた。PCRを、96ウェルプレートにおいて、例えば、Quant Studio 3で、次の例示的なPCRプロトコルを用いて行った:95℃で1分間にわたって保持、95℃で5秒間及び62℃で15秒間を50サイクル実行。温度変化の速度は、標準(例えば、1秒あたり2℃)であるように選択した。単一のqPCR反応を各実験反復で行い、qPCRシグナルを正規化するために、ROXをパッシブ基準として使用した。次いで、データをQuant Studio 3 machineからダウンロードし、Python 3.7で解析してグラフ化した。
一部の実施形態では、2項分類システムをデータ解析のために使用することができる。一部の実施形態では、検出アッセイからのシグナルを、基準シグナルに基づき正規化することができる。例えば、一部の実施形態では、単一抗体二本鎖での正規化シグナルを、基準試料を選択することにより計算した。一部の実施形態では、任意試料iについて正規化シグナルを計算するために使用した式を下に示すが、ここで、Signalmaxは、最高濃度の細胞系EV標準からのシグナルである。
ΔCti=Ctref-Cti
in vitro細胞系実験
精製細胞系EVを、適切なバッファー中で最適な濃度に希釈し、がんマーカー1官能化ビーズ(複製物1mL)を使用して捕捉した。捕捉されたEVを、がんマーカー2をそれぞれ指向する抗体プローブの対を使用して分析した。代表的なqPCRデータ及びΔCt値が図19に示されている。データは、試験されたバイオマーカー組合せ(例えば、例えば本実施例において記載され、かつ図1~2Bに図示されているとおりのものなどの例示的なアッセイとの組合せ)が、がん由来EVを陰性対照細胞系から識別することができ、その際、シグナル強度が、2つのマーカーの発現と十分に相関することを示している(表5を参照されたい)。
パイロット研究に含まれるがん患者(例えば、卵巣癌患者)の人口統計は図20に示されている。医療を、年齢及び性別を種々の試料コホート全体で可能な限り近くマッチさせるようにした。
本実施例は、第1の標的バイオマーカー及び第2の標的バイオマーカーの組合せが標的がんの検出のために特異的であるように、第1の標的バイオマーカーを指向する捕捉アッセイ(例えば、本明細書において利用及び/または記載されているとおりのもの)を、第2の標的バイオマーカーを指向する二重検出アッセイ(例えば、本実施例において記載され、かつ図1~2Bに例示されているとおりのもの)と組み合わせると、早期ステージがん(例えば、卵巣嚢胞腺癌)を特異性>99.5%で検出することができることを実証している。
本実施例では、例えば遺伝的-及び平均的リスク対象をスクリーニングするためのがんリキッドバイオプシーアッセイの開発を記載する。すべてのがんのうちで、女性では5番目に多い死因であるにも関わらず(Howlader et al.,2019)、現在、平均的リスクの女性に推奨される卵巣癌スクリーニングツールは存在しない。これは一部では、提案されている卵巣癌スクリーニング技術の不十分な性能による。平均的リスクの女性における卵巣癌の発病率を考慮すると、不適当な検査特異性(<99.5%)は、真の陽性よりも一桁以上多い擬陽性結果をもたらしている。このことは、擬陽性結果が追加の検査、不必要な外科手術、及び感情的/物理的苦痛につながるため、健康管理システムとスクリーニングされた女性に重大な負担を与える(Buys et al.、2011)。結果として、臨床的有用性をもたらす2つの特徴:(1)擬陽性の数を最小化する非常に高い特異性(>99.5%)、及び(2)予後が最も好ましいステージI及びII卵巣癌について高い感受性(>40%)を示し得る卵巣癌スクリーニング検査を開発することが望まれ得る。そのような検査の開発は、毎年1万人の命を救う可能性を有する。
一部の実施形態では、バイオマーカー発見プロセスは、大きなデータベースのバイオインフォマティクス解析ならびにがん(例えば、卵巣癌)及び細胞外小胞の生態学の理解を活用する。
血液中での腫瘍由来EVの検出は、幅広い健康な組織からの10億のEVのバックグラウンドにおいて血漿中1ミリリットルあたり比較的少ない腫瘍由来EVを検出するために、十分な選択性及び感受性を有するアッセイを必要とする。本開示は特に、この難問に対処する技術を提供する。例えば、一部の実施形態では、個々の細胞外小胞分析のためのアッセイは図1に例示されており、これは、下に略述するとおりの3つの重要なステップで行われる:
1.可溶性タンパク質及び他の干渉性化合物の99%超を除去するサイズ排除クロマトグラフィー(SEC)を使用して、EVを患者血漿から精製する。
2.膜結合タンパク質に特異的な抗体官能化磁気ビーズを使用して、腫瘍特異的EVを捕捉する。
3.近接-ライゲーション-免疫定量的ポリメラーゼ連鎖反応(pliq-PCR)の変更バージョンを行って、捕捉されたEV上に、またはその中に含まれる追加のタンパク質バイオマーカーの共局在を決定する。
先行研究により、バイオマーカー候補がEV中に存在し、かつ市販の抗体またはmRNAプライマー-プローブセットにより検出され得ることを確認するワークフローを開発する。目的の所与のバイオマーカーについて、目的のバイオマーカーを発現する(陽性対照)、及びそれを発現しない(陰性対照)1つまたは複数の細胞系を培養して、それらの細胞培養培地を濃縮し、かつ目的のサイズ範囲を有するナノ粒子を単離するための精製(例えば、SECを使用)を実行することにより、それらのEVを収集することができる。典型的には、細胞外小胞は、直径30nm~数マイクロメートルの範囲であり得る。例えば、種々の細胞外小胞(EV)サブタイプでのサイズ:ミグラソーム(0.5~3pm)、微小小胞体(0.1~1pm)、オンコソーム(1~10pm)、エキソマー(<50nm)、小エクソソーム(60~80nm)、及び大エクソソーム(90~120nm)の情報を提供しているChuo et al.,“Imaging extracellular vesicles:current and emerging methods” Journal of Biomedical Sciences 25:91(2018)を参照されたい。一部の実施形態では、約30nm~1000nmのサイズ範囲を有するナノ粒子を検出アッセイのために単離することができる。一部の実施形態では、特異的EVサブタイプ(複数可)を検出アッセイのために単離することができる。
本実施例では、標的結合部分と、その標的結合部分にカップリングしている様々な長さのオリゴヌクレオチドドメイン(二本鎖部分及び一本鎖オーバーハングを含む)をそれぞれ含む、標的(例えば、標的バイオマーカー(複数可))のための検出プローブの合成を記載する。本実施例ではさらに、検出プローブのオリゴヌクレオチドドメインの長さが標的実体検出システム(例えば、本明細書に記載のもの)及び/またはそれを使用する方法の性能に影響を及ぼし得ることを実証する。
・ 長さ1(「長」):69-73ヌクレオチド(69ヌクレオチド長の二本鎖部分と、4ヌクレオチド長の一本鎖オーバーハング)
・ 長さ2(「中」):40-44ヌクレオチド(40ヌクレオチド長の二本鎖部分と、4ヌクレオチド長の一本鎖オーバーハング)
・ 長さ3(「短」):20-24ヌクレオチド(20ヌクレオチド長の二本鎖部分と、4ヌクレオチド長の一本鎖オーバーハング)
表6.HCC4006及びT84細胞系で発現される100万あたり転写産物(TPM)スコア。
オリゴヌクレオチド
一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、次の配列構造及び修飾を有し得る。下の鎖番号が、図2Aに示されている鎖に付随する数値に対応することに注意する。オリゴヌクレオチド官能化を、ある官能基から別の官能基に(例えば、アミンから、アジドに、チオールに、など)変えることができることにも注意する。
鎖1v1:
/5AmMC12/CAGTCTGACTCACCACTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す);または
鎖2v1:
/5AmMC12/CACCAGACCTACGAAGTCCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3v1:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGGATGTCAAGGGTAGCAGCGACGATTAACGAGTGGTGAGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4v1:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAAACTGGACAGTGGCTAATCAGGCAAGGCTATGGACTTCGTAGGTCTGGTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖1v2:
/5AmMC12/CAGTCTGACACAGCAGTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す);または
鎖2v2:
/5AmMC12/GACCTGACCTACAGTGACCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3v2:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGGATGTCAAGGGTAGCAGCGACGATTAACGACTGCTGTGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4v2:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAAACTGGACAGTGGCTAATCAGGCAAGGCTATGGTCACTGTAGGTCAGGTC(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)。
鎖1v1-中:
/5AmMC12/CAGTCTGACTCACCACTCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2v1-中:
/5AmMC12/CACCAGACCTACGAAGTCCATTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3v1-中:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGAGTGGTGAGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4v1-中:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAATGGACTTCGTAGGTCTGGTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)。
鎖1v2-中:
/5AmMC12/CAGTCTGACACAGCAGTCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2v2-中:
/5AmMC12/GACCTGACCTACAGTGACCATTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3v2-中:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGACTGCTGTGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4v2-中:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAATGGTCACTGTAGGTCAGGTC(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)。
鎖1v1-短:
/5AmMC12/CAGTCTGACTCACCACTCGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2v1-短:
/5AmMC12/CACCAGACCTACGAAGTCCA(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3v1-短:
/5Phos/GAGTACGAGTGGTGAGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4v1-短:
/5Phos/ACTCTGGACTTCGTAGGTCTGGTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖1v2-短:
/5AmMC12/CAGTCTGACACAGCAGTCGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2v2-短:
/5AmMC12/GACCTGACCTACAGTGACCA(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3v2-短:
/5Phos/GAGTACGACTGCTGTGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4v2-短:
/5Phos/ACTCTGGTCACTGTAGGTCAGGTC(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖5v1:
CAGTCTGACACAGCAGTCGT
鎖6v1:
GACCTGACCTACAGTGACCA
鎖5v2:
CAGTCTGACTCACCACTCGT
鎖6v2:
CACCAGACCTACGAAGTCCA
望ましい標的を指向する抗体を、先行の実施例に記載のとおりにオリゴヌクレオチドにコンジュゲートした。当業者は、他の公知のコンジュゲーション方法を使用して、抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲートを形成することができることが分かるであろう。
HCC-4006細胞を、10%エクソソーム非含有FBS及び1mLあたり50単位のペニシリン/ストレプトマイシンを含むRoswell Park Memorial Institute(RPMI 1640)中で成長させた。T84細胞を、5%エクソソーム非含有ウシ胎児血清(FBS)及び1mLあたり50単位のペニシリン/ストレプトマイシンを含む1:1のダルベッコ変法イーグル培地(DMEM):ハムF12培地中で成長させた。すべての細胞系を5%CO2及び37℃で維持し、継代数は20未満であった。
一部の実施形態では、細胞を、約80%の集密度に達するまでそれぞれの培地中で成長させた。細胞培養培地を収集し、300×refで5分間にわたって室温で(RT)でスピンさせて、細胞及び破片を除去した。次いで、上清を収集し、-80℃で冷凍した。
65~1000nmのナノ粒子範囲を測定するために、例えば、TS400チップを用いるSpectroDyne粒子計数器を使用して、粒子カウントを得た。一部の実施形態では、より小さな粒子範囲、例えば、65~200nmの間が望ましいことがある。
抗体を、磁気ビーズにコンジュゲートさせた。簡単に述べると、ビーズを滅菌環境下で秤量し、バッファー中に再懸濁させた。抗体を官能化ビーズと混合し、コンジュゲーション反応を転倒型混合で行った。ビーズを、コンジュゲーションキットが提供する洗浄バッファーを使用して複数回洗浄し、4℃で、提供された貯蔵バッファー中で貯蔵した。
EV捕捉のために、細胞系EVの希釈試料を、EV標的(例えば、標的1)を指向する抗体とコンジュゲートした磁気ビーズと共に適切な期間にわたって、例えば、室温でインキュベートした。
EV捕捉アッセイ(例えば、上記のもの)において使用したものとは異なるEV標的(例えば、標的2)を指向する抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲート(「抗体プローブ」)を、適切なバッファー中で、それらの最適な濃度で希釈した。抗体プローブを、磁気捕捉ビーズ上に結合したEVを含む試料と相互作用させた。
一部の実施形態では、試料を、適切なバッファー中で、例えば、複数回洗浄した。
洗浄して非結合抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲートを除去した後に、結合した細胞外小胞及び結合した抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲートを有するビーズをライゲーションミックスと接触させた。混合物を20分間にわたって室温でインキュベートした。
ライゲーションの後に、結合した細胞外小胞及び結合した抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲートを有するビーズをPCRミックスと接触させた。PCRを、96ウェルプレートにおいて、例えば、Quant Studio 3で、次の例示的なPCRプロトコルを用いて実行した:95℃で1分間保持、95℃で5秒間及び62℃で15秒間を50サイクル実行。温度変化の速度は、標準(例えば、1秒あたり2℃)であるように選択した。単一のqPCR反応を各実験反復で実行し、qPCRシグナルを正規化するために、ROXをパッシブ基準として使用した。次いで、データをQuant Studio 3 machineからダウンロードし、Python 3.7で解析してプロットした。
オリゴヌクレオチドドメイン長さ実験についての生qPCRプロットは図24に示されており、対応するデルタCtデータは図25に示されている。このデータは、このバイオマーカー組合せでは、オリゴヌクレオチド長さの短縮によりアッセイシグナルが強くなることを実証している。69-73ヌクレオチドから20-24ヌクレオチドへのDNA長さの短縮は、約2.5Ctのシグナル上昇をもたらした。さらに、DNA長さの短縮はアッセイバックグラウンドシグナルを有意に上昇させず(EVデータなし)、バックグラウンドの1Ct未満の上昇をもたらした。
この実験では、オリゴヌクレオチド長さの短縮は、免疫親和性捕捉EVからのアッセイシグナルの上昇をもたらした。短いオリゴヌクレオチドは、長いオリゴヌクレオチドよりも約2.5Ct強いシグナルをもたらし、その際、アッセイバックグラウンドでの上昇はわずかのみであった(<1Ct)。しかしながら、理論に束縛されることは望まないが、この観察は、ある特定のバイオマーカー組合せには適用不可能であり得る。一部の実施形態では、標的1及び標的2が相互に相互作用してホモダイマー及び/またはヘテロ二量体を形成し得る、及び/またはEVの膜上で近接して存在する場合、より短いDNA長さが、より望ましいことがある。一部の実施形態では、標的1及び標的2が相互に相互作用せず、及び/またはEVの膜上で分散して存在する場合、より長いDNA長さが、より望ましいことがある。したがって、これらの結果は、オリゴヌクレオチド長さを、本明細書に記載の標的実体検出システム及び/またはアッセイの性能を改善するように構成することができることを実証している。
本実施例では、標的結合部分と、その標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメイン(二本鎖部分及び一本鎖オーバーハングを含む)とをそれぞれ含む標的(例えば、標的バイオマーカー(複数可))のための検出プローブの合成を記載する。本実施例ではまた、非標的(例えば、標的実体と関連しない、及び/または疾患、障害、または状態と関連しないもの)のための阻害因子プローブの合成を記載する。本実施例では、プライマー部位を含まないオリゴヌクレオチドドメイン(例えば、二本鎖DNA部分を含む)の付加が、非標的実体から生じるライゲートされたテンプレートの増幅を阻止し得ることを実証する。本実施例ではまた、そのようなオリゴヌクレオチドドメイン(プライマー部位を含まない)と、非標的実体(例えば、架橋反応性標的)を指向する標的結合実体とのコンジュゲーションが、非標的実体からのバックグラウンドシグナルを減少させ、それにより、本明細書に記載の標的実体検出アッセイのシグナル-対-ノイズ比を上昇させ得ることを実証する。一部の実施形態では、本実施例では、そのようなオリゴヌクレオチドドメイン(例えば、図26に図示されているとおり、プライマー部位を含まない二本鎖DNA部分を含む)と、非標的実体(例えば、架橋反応性標的)を指向する標的結合実体(例えば、抗体因子)とのコンジュゲーションが、非標的実体(例えば、非標的組織からの細胞外小胞)からのバックグラウンドシグナルを減少させ、それにより、標的実体(例えば、標的組織からの細胞外小胞)を検出するために本明細書に記載の標的実体検出アッセイのシグナル-対-ノイズ比を上昇させ得ることを実証する。一部のそのような実施形態では、そのような阻害因子プローブを標的特異的検出プローブと組み合わせて使用することは、がん特異的細胞外小胞を検出するために有用であり得る。
1.(1+3)
2.(2-1-4)
3.(1i+3i)
4.(2i+4i)
5.(1+3)+(2+4)
6.(1-1-3)+(2i+4i)、図26に示されているとおりのもの
7.(1i+3i)+(2+4)
8.(1i+3i)+(2i+4i)
9.(1+3)+(2+4)+(1i+3i)
10.(1-1-3)+(2+4)+(2i+4i)
11.(1+3)+(2+4)+2×(1i+3i)
12.(1-i-3)+(2-1-4)+2×(2i+4i)
13.(1+3)+(2-1-4)+(1i+3i)+(2i+4i)
オリゴヌクレオチド
一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、次の配列構造及び修飾を有し得る。上記のとおり、下の鎖番号は、図26に示されている鎖に随伴する数値に対応する。オリゴヌクレオチド官能化を、ある官能基から別の官能基(例えば、アミンから、アジドへ、チオールへ、など)に変えることができる。
一部の実施形態では、検出プローブのオリゴヌクレオチドドメインを形成するためのオリゴヌクレオチドの例示的なセットを下に示す。
鎖1:
/5AmMC12/CAGTCTGACTCACCACTCGTTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2:
/5AmMC12/CACCAGACCTACGAAGTCCATAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGGATGTCAAGGGTAGCAGCGACGATTAACGAGTGGTGAGTCAGACTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAAACTGGACAGTGGCTAATCAGGCAAGGCTATGGACTTCGTAGGTCTGGTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖5:
CAGTCTGACTCACCACTCGT
鎖6:
CACCAGACCTACGAAGTCCA
一部の実施形態では、3つの異なる長さ(下記)のオリゴヌクレオチドドメイン(プライマー部位を含まない)を有する阻害因子プローブを合成することができる:
・ 長さ1(「長」):69-73ヌクレオチド(69ヌクレオチド長の二本鎖部分と、4ヌクレオチド長の一本鎖オーバーハング)
・ 長さ2(「中」):40-44ヌクレオチド(40ヌクレオチド長の二本鎖部分と、4ヌクレオチド長の一本鎖オーバーハング)
・ 長さ3(「短」):20-24ヌクレオチド(20ヌクレオチド長の二本鎖部分と、4ヌクレオチド長の一本鎖オーバーハング)
鎖1i:
/5AmMC12/GCACACACCTCATCGTCTTGTAATCGTCGCTGCTACCCTTGACATCCGTGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2i:
/5AmMC12/CACAATCTCGACCACGCAAGTAGCCTTGCCTGATTAGCCACTGTCCAGTTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3i:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCACGGATGTCAAGGGTAGCAGCGACGATTACAAGACGATGAGGTGTGTGC(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4i:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAAACTGGACAGTGGCTAATCAGGCAAGGCTACTTGCGTGGTCGAGATTGTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)。
鎖1i-中:
/5AmMC12/GCACACACCTCATCGTCTTGGACTGGCTAGACAGAGGTGT(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2i-中:
/5AmMC12/CACAATCTCGACCACGCAAGTTGGCTCCTGGTCTCACTAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3i-中:
/5Phos/GAGTACACCTCTGTCTAGCCAGTCCAAGACGATGAGGTGTGTGC(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4i-中:
/5Phos/ACTCCTAGTGAGACCAGGAGCCAACTTGCGTGGTCGAGATTGTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖1i-短:
/5AmMC12/GCACACACCTCATCGTCTTG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖2i-短:
/5AmMC12/CACAATCTCGACCACGCAAG(ここで、/5AmMC12/は、12-炭素スペーサーを介して5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているアミン基(例えば、第一級アミノ基)を指す)
鎖3i-短:
/5Phos/GAGTCAAGACGATGAGGTGTGTGC(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
鎖4i-短:
/5Phos/ACTCCTTGCGTGGTCGAGATTGTG(ここで、/5Phos/は、5’オリゴヌクレオチド末端に結合しているリン酸基を指す)
表7.ある特定の細胞系で発現される、100万あたりの転写産物(TPM)スコア。
望ましい標的を指向する抗体を、先行の実施例に記載のとおりにオリゴヌクレオチドにコンジュゲートした。当業者は、他の公知のコンジュゲーション方法を使用して、抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲートを形成することができることを分かるであろう。
抗体を、先行の実施例に記載のとおりに磁気ビーズにコンジュゲートした。
EV捕捉のために、細胞系EVの希釈試料を、EV標的(例えば、標的1)を指向する抗体とコンジュゲートした磁気ビーズと共に適切な期間にわたって、例えば、室温でインキュベートした。
EV捕捉アッセイ(例えば、上記のもの)において使用したものとは異なるEV標的(例えば、標的2)を指向する抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲート(「マーカー2+マーカー2プローブ」;「抗体プローブ」としても既知)を、適切なバッファー中で、それらの最適な濃度で希釈した。抗体プローブを、磁気捕捉ビーズ上に結合したEVを含む試料と相互作用させた。加えて、阻害因子プローブも混合物に加えて、磁気捕捉ビーズ上に結合したEVを含む試料と相互作用させた。
一部の実施形態では、試料を、適切なバッファー中で複数回洗浄した。
洗浄して非結合抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲートを除去した後に、結合した細胞外小胞及び結合した抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲートを有するビーズをライゲーションミックスと接触させた。混合物を20分間にわたって室温でインキュベートした。
ライゲーションの後に、結合した細胞外小胞及び結合した抗体-オリゴヌクレオチドコンジュゲートを有するビーズをPCRミックスと接触させた。PCRを、96ウェルプレートにおいて、例えば、Quant Studio 3で、次の例示的なPCRプロトコルを用いて実行した:95℃で1分間保持、95℃で5秒間及び62℃で15秒間を50サイクル実行。温度変化の速度は、標準(例えば、1秒あたり2℃)であるように選択した。単一のqPCR反応を各実験反復で実行し、qPCRシグナルを正規化するために、ROXをパッシブ基準として使用した。次いで、データをQuant Studio 3 machineからダウンロードし、Python 3.7で解析してプロットした。
実験1:溶液での、阻害因子プローブ(標的結合部分を含まない)の評定:生qPCRデータは図27に示されている。図28に示されているとおり、各阻害因子プローブ(標的結合部分を含まない)では、Ct値の濃度依存的上昇が存在した。同じ濃度(600pM)での阻害因子プローブの添加は、およそ1Ctのシグナル低下をもたらした。阻害因子プローブ(標的結合部分を含まない)のさらなる添加は、シグナルをもう1Ct低下させた。両方の阻害因子プローブ(それぞれ標的結合部分を含まない)の同時の添加は、2×濃度での単一の阻害因子プローブ(標的結合部分を含まない)と比べて、作用をやや減少させる。理論に束縛されることは望まないが、これはおそらく、鎖が増幅反応を阻害することを阻止する、阻害因子プローブの鎖間で生じるライゲーションによるものである。これらのデータは、阻害因子プローブのオリゴヌクレオチドドメインがライゲーションの際に増幅を成功裏に阻止し得ることを実証している。
表8.交差反応性組織を除去する阻害因子プローブの使用。
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当業者は、ルーチンを超えない実験を使用して、本明細書に記載の本発明の具体的な実施形態に対する多くの均等物が分かるか、または確認することができるであろう。別段に示されていない限り、または矛盾もしくは不整合性が生じるであろうことが当業者に明らかでない限り、本発明は、列挙されている特許請求の範囲のうちの1つまたは複数からの1つまたは複数の限定、要素、項目、記述用語などが、同じ基本請求項(または、関連する任意の他の請求項として)に従属する別の請求項に導入されるすべての変形形態、組合せ、及び順列を包含することは理解されるべきである。さらに、具体的な除外が本明細書に記載されているかどうかにかかわらず、本発明の任意の実施形態または態様は、特許請求の範囲から明らかに除外され得ることも理解されるべきである。本発明の範囲は、上記の記載に限定されることは意図されてなく、むしろ次の特許請求の範囲に記載されている。
本発明は、例えば、以下の項目を提供する。
(項目1)
方法であって、
(a)目的の生物学的実体を含み得る試料を、標的をそれぞれ指向する検出プローブの少なくとも1つのセットと接触させることであって、そのセットが少なくとも、第1の標的のための第1の検出プローブ及び第2の標的のための第2の検出プローブを含むので、前記目的の実体及び検出プローブの前記セットを含む組合せが生じ、
その際、前記第1の検出プローブが、第1の標的結合部分と、前記第1の標的結合部分にカップリングしている第1のオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記第1のオリゴヌクレオチドドメインが、第1の二本鎖部分と、前記第1のオリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している第1の一本鎖オーバーハングとを含み;
前記第2の検出プローブが、第2の標的結合部分と、前記第2の標的結合部分にカップリングしている第2のオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記第2のオリゴヌクレオチドドメインが、第2の二本鎖部分と、前記第2のオリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している第2の一本鎖オーバーハングとを含み、前記第2の一本鎖オーバーハングが、前記第1の一本鎖オーバーハングの少なくとも一部分に相補的なヌクレオチド配列を含み、それにより、前記第1の一本鎖オーバーハングとハイブリダイズすることができ;かつ
前記第1のオリゴヌクレオチドドメイン及び前記第2のオリゴヌクレオチドドメインが、前記第1及び第2の標的が前記目的の実体上に同時に存在し、かつ検出プローブの前記セットの前記プローブが前記目的の実体上のそれらのそれぞれの標的に結合した場合に、前記第1の一本鎖オーバーハング及び前記第2の一本鎖オーバーハングが一緒にハイブリダイズし得るような合計長さを有する、前記接触させること;
(b)前記目的の実体が前記第1の標的及び前記第2の標的を含む場合に、前記第1の検出プローブ及び前記第2の検出プローブが前記目的の実体に結合して二本鎖複合体を形成するように、検出プローブの前記セットが前記目的の実体上のそれらのそれぞれの標的に結合することを可能にする条件下で、前記組み合わせを維持すること;
(c)前記二本鎖複合体を核酸リガーゼと接触させて、前記第1の二本鎖部分の鎖及び前記第2の二本鎖部分の鎖を含むライゲートされたテンプレートを生成すること;ならびに(d)前記ライゲートされたテンプレートを検出することであって、その際、前記ライゲートされたテンプレートの存在が、前記第1の標的及び前記第2の標的を含む前記目的の実体が前記試料中に存在することを示す、前記検出すること
を含む、前記方法。
(項目2)
前記検出が、前記ライゲートされたテンプレートの増幅を実行すること、及び前記増幅産物の存在を検出することを含む、項目1に記載の方法。
(項目3)
前記増幅が、定量的ポリメラーゼ連鎖反応であるか、またはそれを含む、項目2に記載の方法。
(項目4)
前記第1の一本鎖オーバーハング及び/または前記第2の一本鎖オーバーハングが4ヌクレオチド長を有する、項目1~3のいずれか1項に記載の方法。
(項目5)
前記第1の一本鎖オーバーハングまたは前記第2の一本鎖オーバーハングがGAGTのヌクレオチド配列を有する、項目4に記載の方法。
(項目6)
前記合計長さが200nm以下である、項目1~5のいずれか1項に記載の方法。
(項目7)
前記目的の実体が固体基材上に固定化されている、項目1~6のいずれか1項に記載の方法。
(項目8)
前記固体基材がビーズであるか、またはそれを含む、項目7に記載の方法。
(項目9)
前記固体基材が表面であるか、またはそれを含む、項目7に記載の方法。
(項目10)
前記表面が、フィルター、マトリックス、膜、プレート、管、及び/またはウェルの捕捉表面である、項目9に記載の方法。
(項目11)
ステップ(c)の接触前に、前記二本鎖複合体を、前記第1のオリゴヌクレオチドを前記第2のオリゴヌクレオチドドメインと会合させるコネクターオリゴヌクレオチドと接触させることを含まない、項目1~10のいずれか1項に記載の方法。
(項目12)
前記コネクターオリゴヌクレオチドが、前記第1のオリゴヌクレオチドドメインの少なくとも一部分及び前記第2のオリゴヌクレオチドドメインの少なくとも一部分とハイブリダイズする、項目11に記載の方法。
(項目13)
前記第1の標的結合部分及び/または前記第2の標的結合部分が抗体因子を含む、項目1~12のいずれか1項に記載の方法。
(項目14)
検出プローブの前記セットがさらに、第3の標的のための追加の検出プローブを含み、前記追加の検出プローブが、第3の標的結合部分と、前記第3の標的結合部分にカップリングしている第3のオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記第3のオリゴヌクレオチドドメインが、二本鎖部分と、前記第3のオリゴヌクレオチドドメインのそれぞれの末端から伸長している第3の一本鎖オーバーハングとを含む、項目1~13のいずれか1項に記載の方法。
(項目15)
検出プローブの前記セットが、それぞれ特異的標的のための2~20の検出プローブを含み、前記検出プローブのそれぞれが、標的結合部分と、前記標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記オリゴヌクレオチドドメインが、二本鎖部分と、前記オリゴヌクレオチドドメインの少なくとも1つの末端から伸長している一本鎖オーバーハングとを含む、項目1~14のいずれか1項に記載の方法。
(項目16)
(i)検出プローブの前記セットが2つの別個の検出プローブを含み;かつ(ii)前記二本鎖複合体が、前記二本鎖複合体の各鎖が核酸リガーゼの存在下でライゲート可能であることにおいて特徴づけられる、項目1~13のいずれか1項に記載の方法。
(項目17)
(i)検出プローブの前記セットが少なくとも3つまたはそれ以上の別個の検出プローブを含み;かつ(ii)前記二本鎖複合体が、前記二本鎖複合体の一方の鎖が、核酸リガーゼの存在下でライゲート可能である一方で、前記二本鎖複合体の別の鎖が、核酸リガーゼの存在下でライゲート不可能であることにおいて特徴づけられる、項目14に記載の方法。
(項目18)
前記二本鎖複合体の前記ライゲート不可能な鎖がギャップを含む、項目17に記載の方法。
(項目19)
検出プローブの前記セットがさらに、対照プローブを含み、その際、前記対照プローブが、前記目的の実体への前記対照プローブの結合により、ライゲートされたテンプレートの生成が阻害される、及び/または非標的生物学的実体からのライゲートされたテンプレートの増幅が阻害されることにおいて特徴づけられる、項目1~18のいずれか1項に記載の方法。
(項目20)
前記対照プローブが、対照基準に結合するように構成されている、項目19に記載の方法。
(項目21)
前記核酸リガーゼが、DNAリガーゼ(例えば、T4またはT7DNAリガーゼ)であるか、またはそれを含む、項目1~20のいずれか1項に記載の方法。
(項目22)
前記試料が、対象の血液由来試料(例えば、血漿または血液試料)に由来する、項目1~21のいずれか1項に記載の方法。
(項目23)
前記目的の実体が、インタクトな細胞またはその断片であるか、またはそれを含む、項目1~22のいずれか1項に記載の方法。
(項目24)
前記目的の実体が、細胞外小胞であるか、またはそれを含む、項目1~22のいずれか1項に記載の方法。
(項目25)
前記オリゴヌクレオチドドメインが、共有結合手段により、前記標的結合部分にカップリングしている、項目1~24のいずれか1項に記載の方法。
(項目26)
前記試料がヒト対象に由来する、項目1~25のいずれか1項に記載の方法。
(項目27)
検出プローブの前記セットが、がん特異的であり;かつ前記ライゲートされたテンプレートの存在が、ヒト対象ががんに罹患しているか、またはがんを発症するリスクを有することを示す、項目26に記載の方法。
(項目28)
前記がんが、急性リンパ球性白血病、急性骨髄性白血病、胆管癌、膀胱癌、脳癌、乳癌、子宮頸癌、慢性リンパ球性白血病、慢性骨髄性白血病、結腸直腸癌、子宮内膜癌、食道癌、胃腸癌、ホジキンリンパ腫、腎臓癌、肝臓癌、肺癌、多発性骨髄腫、非ホジキンリンパ腫、卵巣癌、膵臓癌、前立腺癌、肉腫、皮膚癌、及び胃癌からなる群から選択される、項目27に記載の方法。
(項目29)
前記がんが結腸直腸癌である、項目27に記載の方法。
(項目30)
前記がんが肺癌である、項目27に記載の方法。
(項目31)
前記がんが乳癌である、項目27に記載の方法。
(項目32)
前記がんが卵巣癌である、項目27に記載の方法。
(項目33)
前記ヒト対象が無症候性ヒト対象である、項目26~32のいずれか1項に記載の方法。
(項目34)
前記無症候性ヒト対象が、がんの家族歴を有する、項目33に記載の方法。
(項目35)
前記無症候性ヒト対象が、がんについて以前に処置されたことがある、項目33に記載の方法。
(項目36)
前記無症候性ヒト対象が、がん処置後にがん再発のリスクを有する、項目33に記載の方法。
(項目37)
前記無症候性ヒト対象が、がん処置後に寛解している、項目33に記載の方法。
(項目38)
前記無症候性ヒト対象が、少なくとも1つのがんバイオマーカーの存在について以前に、または周期的にスクリーニングされている、項目33~37のいずれか1項に記載の方法。
(項目39)
前記ヒト対象が、がんについて以前にスクリーニングされている、項目26~32のいずれか1項に記載の方法。
(項目40)
前記ヒト対象が、がんに罹患しているか、または易罹患性であると以前に診断された、項目39に記載の方法。
(項目41)
無症候性ヒト対象を、早期ステージがんまたはがん再発について周期的にスクリーニングするために実行する、項目26~40のいずれか1項に記載の方法。
(項目42)
前記ヒト対象が、がんに罹患していると決定されたヒト対象である、項目26~32のいずれか1項に記載の方法。
(項目43)
前記ヒト対象が、前記ライゲートされたテンプレートの存在及び/または量に基づき、治療に応答する可能性があるかどうかを決定することをさらに含む、項目42に記載の方法。
(項目44)
前記ライゲートされたテンプレートの存在及び/または量に基づき、前記ヒト対象に投与するための治療を選択することをさらに含む、項目42または43に記載の方法。
(項目45)
前記ヒト対象が、治療を受けているヒト対象である、項目26~33のいずれか1項に記載の方法。
(項目46)
前記ヒト対象を一時期にわたって処置した後に、前記ヒト対象からの第2の試料で、前記方法の前記ステップ(a)~(d)を繰り返すことをさらに含む、項目45に記載の方法。
(項目47)
前記ライゲートされたテンプレートの量の変化に基づき、前記ヒト対象が受けた治療の有効性を評価することをさらに含む、項目46に記載の方法。
(項目48)
標的をそれぞれ指向する検出プローブの少なくとも1つのセットを含むキットであって:
a.第1の標的結合部分と、前記第1の標的結合部分にカップリングしている第1のオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記第1のオリゴヌクレオチドドメインが、第1の二本鎖部分と、前記第1のオリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している第1の一本鎖オーバーハングとを含む、第1の標的のための第1の検出プローブ;及び
b.第2の標的結合部分と、前記第2の標的結合部分にカップリングしている第2のオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記第2のオリゴヌクレオチドドメインが、第2の二本鎖部分と、前記第2のオリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している第2の一本鎖オーバーハングとを含み、その際、前記第2の一本鎖オーバーハングが、前記第1の一本鎖オーバーハングの少なくとも一部分と相補的であるヌクレオチド配列を含み、それにより、前記第1の一本鎖オーバーハングとハイブリダイズし得る、第2の標的のための第2の検出プローブ
を含み;
その際、前記第1のオリゴヌクレオチドドメイン及び前記第2のオリゴヌクレオチドドメインが、前記第1及び第2の標的が目的の実体(例えば、目的の生物学的実体)上に同時に存在し、かつ検出プローブの前記セットの前記プローブが前記目的の実体上のそれらのそれぞれの標的に結合した場合に、前記第1の一本鎖オーバーハング及び前記第2の一本鎖オーバーハングが一緒にハイブリダイズし得るような合計長さを有する、前記キット。
(項目49)
検出プローブの前記セットが、それぞれ特異的標的のための2~20の検出プローブを含み、前記検出プローブのそれぞれが、標的結合部分と、前記標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記オリゴヌクレオチドドメインが、二本鎖部分と、前記オリゴヌクレオチドドメインの少なくとも1つの末端から伸長している一本鎖オーバーハングとを含む、項目48に記載のキット。
(項目50)
検出プローブの複数のセットを含み、その際、検出プローブの前記複数のセットが:
(a)それぞれのセットが、同じがんのための少なくとも1つの別個のバイオマーカーを認識する;または
(b)それぞれのセットが、異なるがんのための少なくとも1つの別個のバイオマーカーを認識する;または;
(c)それぞれのセットが、同じがんのための(例えば、少なくとも2つの)バイオマーカーの別個の組合せを認識する;または
(b)それぞれのセットが、異なるがんのための(例えば、少なくとも2つの)バイオマーカーの別個の組合せを認識する
ことにおいて特徴づけられ;
その際、(a)、(b)、(c)または(d)のそれぞれのセットが、少なくとも2つまたはそれ以上の検出プローブを含み、前記検出プローブのそれぞれが、標的結合部分と、前記標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記オリゴヌクレオチドドメインが、二本鎖部分と、前記オリゴヌクレオチドドメインの少なくとも1つの末端から伸長している一本鎖オーバーハングとを含む、項目48に記載のキット。
(項目51)
前記がんが、急性リンパ球性白血病、急性骨髄性白血病、胆管癌、膀胱癌、脳癌、乳癌、子宮頸癌、慢性リンパ球性白血病、慢性骨髄性白血病、結腸直腸癌、子宮内膜癌、食道癌、胃腸癌、ホジキンリンパ腫、腎臓癌、肝臓癌、肺癌、多発性骨髄腫、非ホジキンリンパ腫、卵巣癌、膵臓癌、前立腺癌、肉腫、皮膚癌、及び胃癌からなる群から選択される、項目50に記載のキット。
(項目52)
目的の実体を捕捉するための固体基材をさらに含む、項目48~51のいずれか1項に記載のキット。
(項目53)
固定剤をさらに含む、項目48~52のいずれか1項に記載のキット。
(項目54)
透過化剤をさらに含む、項目48~53のいずれか1項に記載のキット。
(項目55)
遮断剤をさらに含む、項目48~54のいずれか1項に記載のキット。
(項目56)
核酸リガーゼをさらに含む、項目48~55のいずれか1項に記載のキット。
(項目57)
増幅されるテンプレートのためのプライマーの1つまたは複数の対をさらに含む、項目48~56のいずれか1項に記載のキット。
(項目58)
早期ステージがんについて対象をスクリーニングする際に使用するための、項目48~57のいずれか1項に記載のキット。
(項目59)
前記対象が無症候性ヒト対象である、項目58に記載のキット。
(項目60)
前記無症候性ヒト対象ががんの家族歴を有する、項目59に記載のキット。
(項目61)
前記無症候性ヒト対象が、がんについて以前に処置されたことがある、項目59に記載のキット。
(項目62)
前記無症候性ヒト対象が、がん処置後にがん再発のリスクを有する、項目59に記載のキット。
(項目63)
前記無症候性ヒト対象が、がん処置後に寛解している、項目59に記載のキット。
(項目64)
前記対象が、がんについて以前にスクリーニングされている、項目58~63のいずれか1項に記載のキット。
(項目65)
前記ヒト対象が、がんに罹患しているか、または易罹患性であると以前に診断された、項目64に記載のキット。
(項目66)
がんについて処置されたことがある対象において、腫瘍再発をモニターする際に使用するための、項目48~57のいずれか1項に記載のキット。
(項目67)
コンパニオン診断として、がん処置と組み合わせて使用するための、項目48~57のいずれか1項に記載のキット。
(項目68)
それを必要とする対象に投与された治療の有効性をモニターまたは評価する際に使用するための、項目48~57のいずれか1項に記載のキット。
(項目69)
それを必要とする対象のための治療を選択する際に使用するための、項目48~57のいずれか1項に記載のキット。
(項目70)
二本鎖複合体であって、
(a)第1の標的及び第2の標的を含む目的の実体(例えば、目的の生物学的実体);
(b)第1の標的結合部分と、前記第1の標的結合部分にカップリングしている第1のオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記第1のオリゴヌクレオチドドメインが、第1の二本鎖部分と、前記第1のオリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している第1の一本鎖オーバーハングとを含む、前記第1の標的結合部分を介して第1の標的に結合している第1の検出プローブ;及び
(c)第2の標的結合部分と、前記第2の標的結合部分にカップリングしている第2のオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記第2のオリゴヌクレオチドドメインが、第2の二本鎖部分と、前記第2のオリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している第2の一本鎖オーバーハングとを含み、前記第2の標的結合部分を介して第2の標的に結合している第2の検出プローブ
を含み、
その際、前記第1の一本鎖オーバーハングが、前記第2の一本鎖オーバーハングとハイブリダイズしている、前記二本鎖複合体。
(項目71)
第3の標的結合部分と、前記第3の標的結合部分にカップリングしている第3のオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記第3のオリゴヌクレオチドドメインが、第3の二本鎖部分と、前記第3のオリゴヌクレオチドドメインの少なくとも一方の末端から伸長している第3の一本鎖オーバーハングとを含む、第3の標的結合部分を介して前記目的の実体上に存在する第3の標的に結合している第3の検出プローブをさらに含み、かつ
前記第3の一本鎖オーバーハングが、前記第1及び/または第2の一本鎖オーバーハングとハイブリダイズしており;かつ
前記オリゴヌクレオチドドメインの鎖を含む前記二本鎖複合体の一方の鎖が、核酸リガーゼの存在下でライゲート可能である一方で、前記オリゴヌクレオチドドメインの鎖を含む前記二本鎖複合体の他方の鎖が、核酸リガーゼの存在下でライゲート不可能である、項目70に記載の二本鎖複合体。
(項目72)
前記ライゲート不可能な鎖がギャップを含む、項目71に記載の二本鎖複合体。
(項目73)
前記ギャップが、少なくとも2~8ヌクレオチド長のものである、項目72に記載の二本鎖複合体。
(項目74)
前記ギャップが、少なくとも6ヌクレオチド長のものである、項目72に記載の二本鎖複合体。
(項目75)
前記オーバーハングが8ヌクレオチド長を有する、項目70~74のいずれか1項に記載の二本鎖複合体。
(項目76)
目的の実体(例えば、目的の生物学的実体)において少なくとも2つの標的を検出するための検出プローブのセットを提供する方法であって、
a.第1の標的結合部分と、前記第1の標的結合部分にカップリングしている第1のオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記第1のオリゴヌクレオチドドメインが、第1の二本鎖部分と、前記第1のオリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している第1の一本鎖オーバーハングとを含み、その際、前記第1のオリゴヌクレオチドドメインが約20nm~約500nmの長さを有する、第1の標的のための第1の候補検出プローブを得ること;
b.第2の標的結合部分と、前記第2の標的結合部分にカップリングしている第2のオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記第2のオリゴヌクレオチドドメインが、第2の二本鎖部分と、前記第2のオリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している第2の一本鎖オーバーハングとを含み、その際、前記第2の一本鎖オーバーハングが、前記第1の一本鎖オーバーハングの少なくとも一部分と相補的であるヌクレオチド配列を含み、それにより、前記第1の一本鎖オーバーハングとハイブリダイズすることができ、その際、前記第2のオリゴヌクレオチドドメインが約20nm~約500nmの長さを有する、第2の標的のための第2の候補検出プローブを得ること;
c.前記第1の標的及び前記第2の標的を含む目的の実体を、前記第1の候補検出プローブ及び前記第2の候補検出プローブと接触させること;及び
d.前記第1の一本鎖オーバーハングが、二本鎖複合体中で前記第2の一本鎖オーバーハングとハイブリダイズしている、前記目的の実体、前記目的の実体に結合している前記第1の候補検出プローブ、及び前記目的の実体に結合している前記第2の候補検出プローブを含む前記二本鎖複合体の形成を検出することを含み、
それにより、前記二本鎖複合体の存在に基づき、前記第1のオリゴヌクレオチドドメイン及び前記第2のオリゴヌクレオチドドメインの長さを選択して、第1の標的のための第1の検出プローブ及び第2の標的のための第2の検出プローブを含む検出プローブのセットを得る、前記方法。
(項目77)
前記第1のオリゴヌクレオチドドメインを、前記第1の標的結合部分にカップリングさせることをさらに含む、項目76に記載の方法。
(項目78)
前記第2のオリゴヌクレオチドドメインを前記第2の標的結合部分にカップリングさせることをさらに含む、項目76または77に記載の方法。
(項目79)
前記目的の実体が、細胞外小胞であるか、またはそれを含む、項目76~78のいずれか1項に記載の方法。
(項目80)
前記第1のオリゴヌクレオチドドメインが約20nm~約100nmの長さを有し;かつ前記第2のオリゴヌクレオチドドメインが約20nm~約100nmの長さを有する、項目79に記載の方法。
(項目81)
方法であって:
(A)対象から血液由来試料を用意する、または得るステップ;
(B)前記血液由来試料中で、疾患、障害、または状態についての標的バイオマーカーシグネチャーを発現する細胞外小胞(「標的バイオマーカーシグネチャー発現細胞外小胞」)を検出するステップであって、その際、
(a)前記標的バイオマーカーシグネチャー発現細胞外小胞を、前記標的バイオマーカーシグネチャーの標的バイオマーカーをそれぞれ指向する検出プローブのセットと接触させることであって、そのセットが、少なくとも2つの検出プローブを含むので、前記細胞外小胞及び検出プローブの前記セットを含む組合せが生じ、
前記セット中の少なくとも2つの検出プローブのそれぞれが:
(i)前記標的バイオマーカーシグネチャーの標的バイオマーカーを指向する標的結合部分と;
(ii)前記標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメインとを含み、前記オリゴヌクレオチドドメインが二本鎖部分と、前記オリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している一本鎖オーバーハング部分とを含み、
前記少なくとも2つの検出プローブの一本鎖オーバーハング部分が、前記少なくとも2つの検出プローブが同じ細胞外小胞に結合している場合に、相互にハイブリダイズし得ることにおいて特徴づけられる、前記接触させること
(b)前記組合せを、前記少なくとも2つの検出プローブが、前記細胞外小胞上のそれらのそれぞれの標的に結合することを可能にする条件下で維持して、前記少なくとも2つの検出プローブが、前記標的バイオマーカーシグネチャーを発現する同じ細胞外小胞に結合して、二本鎖複合体を形成し得るようにすること;
(c)前記二本鎖複合体を核酸リガーゼと接触させて、ライゲートされたテンプレートを生成すること;及び
(d)前記ライゲートされたテンプレートを検出/測定することであって、その際、前記ライゲートされたテンプレートの存在が、前記血液由来試料における前記標的バイオマーカーシグネチャー発現細胞外小胞の存在及び/またはレベルを示す、前記検出/測定すること
を含む検出アッセイを含む、前記検出するステップ;
(C)前記検出アッセイから得られた試料情報を、基準閾値レベルを含む基準情報と比較するステップ;
(D)前記血液由来試料が、前記基準閾値レベルと比べて上昇したレベルの標的バイオマーカーシグネチャー発現細胞外小胞を示す場合に、前記対象を、疾患、障害、または状態を有する、またはそれに易罹患性であると分類するステップを含む、前記方法。
(項目82)
前記検出アッセイが、前記核酸リガーゼとの接触前に、前記二本鎖複合体を、前記少なくとも2つの検出プローブの前記オリゴヌクレオチドドメインを会合させるコネクターオリゴヌクレオチドと接触させることを含まない、項目81に記載の方法。
(項目83)
前記コネクターオリゴヌクレオチドが、前記少なくとも2つの検出プローブの前記オリゴヌクレオチドドメインのそれぞれの少なくとも一部分とハイブリダイズする、項目82に記載の方法。
(項目84)
前記セットが、前記標的バイオマーカーシグネチャーの標的バイオマーカーをそれぞれ指向する少なくとも3つの検出プローブを含む、項目81~83のいずれか1項に記載の方法。
(項目85)
前記セットが、前記標的バイオマーカーシグネチャーの標的バイオマーカーをそれぞれ指向する2~50の検出プローブまたは3~50の検出プローブを含む、項目81~84のいずれか1項に記載の方法。
(項目86)
前記基準閾値レベルを、基準対象の集団からの比較可能な試料において観察された標的バイオマーカーシグネチャー発現細胞外小胞のレベルにより決定する、項目81~85のいずれか1項に記載の方法。
(項目87)
前記基準対象の集団が、次の対象集団:健康な対象、良性腫瘍または腫瘤と診断されている対象、ならびに無関係の疾患、障害、及び/または状態を有する対象のうちの1つまたは複数を含む、項目86に記載の方法。
(項目88)
前記標的バイオマーカーシグネチャーが、(1)細胞外小胞関連膜結合ポリペプチドを含む第1の標的バイオマーカー;ならびに(2)表面タンパク質バイオマーカー、小胞内タンパク質バイオマーカー、及び小胞内RNAバイオマーカーからなる群から選択される標的バイオマーカーを含む第2の標的バイオマーカーを含み、その際、前記第2の標的バイオマーカーが、前記表面タンパク質バイオマーカーの1つまたは複数から選択される場合、前記選択された表面タンパク質バイオマーカー(複数可)及び前記第1の標的バイオマーカーの前記細胞外小胞関連膜結合ポリペプチドが異なる、項目81~87のいずれか1項に記載の方法。
(項目89)
細胞外小胞を含む目的のサイズ範囲を有するナノ粒子を(例えば、前記血液由来試料から直接)単離するために、前記血液由来試料がサイズ排除クロマトグラフィーに掛けられている、項目81~88のいずれか1項に記載の方法。
(項目90)
前記検出ステップが捕捉アッセイをさらに含む、項目81~89のいずれか1項に記載の方法。
(項目91)
前記検出アッセイの前に、前記捕捉アッセイを実行する、項目90に記載の方法。
(項目92)
前記捕捉アッセイが、前記血液由来試料を、細胞外小胞関連膜結合ポリペプチドを含む前記第1の標的バイオマーカーに結合する標的捕捉部分を含む捕捉因子と接触させることを含む、項目90または91に記載の方法。
(項目93)
前記捕捉因子が、コンジュゲートした前記標的捕捉部分を含む固体基材であるか、またはそれを含む、項目92に記載の方法。
(項目94)
前記固体基材が磁気ビーズを含む、項目93に記載の方法。
(項目95)
前記標的捕捉部分が抗体因子であるか、またはそれを含む、項目92~94のいずれか1項に記載の方法。
(項目96)
前記検出プローブの前記標的結合部分が前記第2の標的バイオマーカーを指向する、項目88~95のいずれか1項に記載の方法。
(項目97)
前記検出プローブの前記標的結合部分が、前記第2の標的バイオマーカーを指向する少なくとも1つの抗体因子であるか、またはそれを含む、項目88~96のいずれか1項に記載の方法。
(項目98)
前記少なくとも2つの検出プローブの前記標的結合部分が、前記標的バイオマーカーシグネチャーの同じ標的バイオマーカーを指向する、項目81~97のいずれか1項に記載の方法。
(項目99)
前記少なくとも2つの検出プローブの前記オリゴヌクレオチドドメインが異なる、項目98に記載の方法。
(項目100)
前記標的バイオマーカーシグネチャーが少なくとも1つの小胞内RNAバイオマーカーを含む場合、前記検出アッセイが逆転写PCRをさらに含む、項目88~99のいずれか1項に記載の方法。
(項目101)
前記標的バイオマーカーシグネチャーが少なくとも1つの小胞内タンパク質バイオマーカーを含む場合、前記標的バイオマーカーシグネチャー発現細胞外小胞を、前記検出アッセイの前に、固定化及び/または透過化を含めて処理する、項目88~100のいずれか1項に記載の方法。
(項目102)
前記標的バイオマーカーシグネチャーが少なくとも1つの表面タンパク質バイオマーカー及び/または小胞内タンパク質バイオマーカーを含む場合、前記検出アッセイが、イムノアッセイ(例えば、免疫-PCR、及び/または近接ライゲーションアッセイを含む)をさらに含む、項目88~101のいずれか1項に記載の方法。
(項目103)
前記標的バイオマーカーシグネチャーが特異的である疾患、障害、または状態が、がんである、項目81~102のいずれか1項に記載の方法。
(項目104)
前記対象において早期ステージがん、後期ステージがん、または再発がんについてスクリーニングするために実行する、項目103に記載の方法。
(項目105)
前記がんが、急性リンパ球性白血病、急性骨髄性白血病、胆管癌、膀胱癌、脳癌、乳癌、子宮頸癌、慢性リンパ球性白血病、慢性骨髄性白血病、結腸直腸癌、子宮内膜癌、食道癌、胃腸癌、ホジキンリンパ腫、腎臓癌、肝臓癌、肺癌、多発性骨髄腫、非ホジキンリンパ腫、卵巣癌、膵臓癌、前立腺癌、肉腫、皮膚癌、及び胃癌からなる群から選択される、項目103または104に記載の方法。
(項目106)
前記対象が、次の特徴:
(i)がんに易罹患性である無症候性対象(例えば、がんについて平均的集団リスクを有する(すなわち、遺伝的リスクを有さない)、または遺伝的リスクを有する);
(ii)がんの家族歴を有する対象(例えば、1人または複数の一等親血縁者ががんの履歴を有する対象);
(iii)1つまたは複数のがん関連遺伝子において1つまたは複数の生殖細胞系変異を有すると決定された対象;
(iv)例えば、65歳またはそれ以上の年齢の高齢対象;
(v)がんの1つまたは複数の非特異的症状を有する対象;及び
(vi)周期的ながんスクリーニングを推奨されている対象;
(vii)画像で確認される腫瘤を有すると診断されている対象;
(viii)リスクを低減する外科的介入を施される前の、がんについて遺伝的リスクを有する対象;
(ix)良性腫瘍を有する対象;及び
(x)がんについて以前に処理されたことがある対象
のうちの少なくとも1つまたはそれ以上を有する、項目103~105のいずれか1項に記載の方法。
(項目107)
次の診断アッセイ:
(i)前記対象の毎年の理学的検査;
(ii)がんスクリーニング検査;
(iii)がんに関連する循環腫瘍DNA及び/またはタンパク質バイオマーカーにおける遺伝子変異について、血漿をスクリーニングするための遺伝子アッセイ;
(iv)細胞表現型及びマーカー発現を同定するための免疫蛍光染色、続いて、次世代シーケンシングによる増幅及び分析を含むアッセイ;ならびに
(v)生殖細胞系及び体細胞突然変異アッセイ、または細胞非含有腫瘍DNA、リキッドバイオプシー、血清タンパク質及び細胞非含有DNA、及び/または循環腫瘍細胞を伴うアッセイ
のうちの1つまたは複数と組み合わせて使用する、項目103~106のいずれか1項に記載の方法。
(項目108)
抗がん治療の処置に対する応答について、及び/またはがん再発/転移についてがん患者をモニターするために実行する、項目103~107のいずれか1項に記載の方法。
(項目109)
疾患、障害、または状態(例えば、がん)を検出するためのキットであって:
(a)細胞外小胞関連膜結合ポリペプチドを指向する標的捕捉部分を含む捕捉因子;及び(b)疾患、障害、または状態(例えば、がん)についての標的バイオマーカーシグネチャーの標的バイオマーカーをそれぞれ指向する少なくとも2つの検出プローブを含む、検出プローブのセット
を含み、
その際、前記少なくとも2つの検出プローブのそれぞれが:
(i)前記標的バイオマーカーシグネチャーの前記標的バイオマーカーを指向する標的結合部分;及び
(ii)前記標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメインであって、二本鎖部分と、前記オリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している一本鎖オーバーハング部分とを含む、前記オリゴヌクレオチドドメイン
を含み、
前記少なくとも2つの検出プローブの前記一本鎖オーバーハング部分が、前記少なくとも2つの検出プローブが同じ細胞外小胞に結合している場合に、それらが相互にハイブリダイズし得ることにおいて特徴づけられ;
疾患、障害、または状態(例えば、がん)についての前記標的バイオマーカーシグネチャーが:
少なくとも1つの細胞外小胞関連膜結合ポリペプチドと、
表面タンパク質バイオマーカー、小胞内タンパク質バイオマーカー、及び小胞内RNAバイオマーカーからなる群から選択される少なくとも1つの標的バイオマーカーとを含み、
前記少なくとも1つの標的バイオマーカーが、前記表面タンパク質バイオマーカーのうちの1つまたは複数から選択される場合、前記選択された表面タンパク質バイオマーカー(複数可)及び前記少なくとも1つの細胞外小胞関連膜結合ポリペプチドが異なる、前記キット。
(項目110)
前記少なくとも2つの検出プローブの前記標的結合部分がそれぞれ、前記標的バイオマーカーシグネチャーの同じ標的バイオマーカーを指向する、項目109に記載のキット。
(項目111)
前記少なくとも2つの検出プローブの前記オリゴヌクレオチドドメインが異なる、項目110に記載のキット。
(項目112)
前記少なくとも2つの検出プローブの前記標的結合部分がそれぞれ、前記標的バイオマーカーシグネチャーの別個の標的バイオマーカーを指向する、項目109~111のいずれか1項に記載のキット。
(項目113)
少なくとも1つの追加の試薬(例えば、リガーゼ、固定化剤、及び/または透過化剤)をさらに含む、項目109~112のいずれか1項に記載のキット。
(項目114)
複合体であって:
(a)疾患、障害、または状態(例えば、がん)についての標的バイオマーカーシグネチャーを発現する細胞外小胞であって、前記標的バイオマーカーシグネチャーが、(1)少なくとも1つの細胞外小胞関連膜結合ポリペプチドを含む第1の標的バイオマーカーと;(2)表面タンパク質バイオマーカー、小胞内タンパク質バイオマーカー、及び小胞内RNAバイオマーカーからなる群から選択される少なくとも1つの標的バイオマーカーを含む第2の標的バイオマーカーとを含み、
前記第2の標的バイオマーカーが、前記表面タンパク質バイオマーカーのうちの1つまたは複数から選択される場合、前記第2の標的バイオマーカーの前記選択された表面タンパク質バイオマーカー(複数可)及び前記第1の標的バイオマーカーの前記少なくとも1つの細胞外小胞関連膜結合タンパク質が異なり;
前記細胞外小胞関連膜結合ポリペプチドを指向する標的捕捉部分を含む固体基材上に固定化されている、前記細胞外小胞と;
(b)第1の検出プローブ及び第2の検出プローブであって、それぞれが、
(i)前記標的バイオマーカーシグネチャーの前記第2の標的バイオマーカーを指向する標的結合部分;及び
(ii)前記標的結合部分にカップリングしているオリゴヌクレオチドドメインであって、二本鎖部分と、前記オリゴヌクレオチドドメインの一方の末端から伸長している一本鎖オーバーハング部分とを含む、前記オリゴヌクレオチドドメイン
を含み、
前記第1及び第2の検出プローブの前記一本鎖オーバーハング部分が相互にハイブリダイズしている、前記細胞外小胞にそれぞれ結合している、前記第1の検出プローブ及び第2の検出プローブとを含む、前記複合体。
(項目115)
前記少なくとも2つの検出プローブの前記標的結合部分がそれぞれ、前記標的バイオマーカーシグネチャーの同じ標的バイオマーカーを指向する、項目114に記載の複合体。
(項目116)
前記少なくとも2つの検出プローブの前記オリゴヌクレオチドドメインが異なる、項目115に記載の複合体。
(項目117)
前記少なくとも2つの検出プローブの前記標的結合部分がそれぞれ、前記標的バイオマーカーシグネチャーの別個の標的バイオマーカーを指向する、項目114に記載の複合体。
(項目118)
前記固体基材が磁気ビーズを含む、項目114~117のいずれか1項に記載の複合体。
(項目119)
前記標的捕捉部分が、抗体因子であるか、またはそれを含む、項目114~118のいずれか1項に記載の複合体。
Claims (20)
- 方法であって、
試料を、第1の標的結合部分と第1の二本鎖部分と第1の一本鎖オーバーハングとを含む第1の検出プローブ、および第2の標的結合部分と第2の二本鎖部分と前記第1の一本鎖オーバーハングの少なくとも一部に相補的な第2の一本鎖オーバーハングとを含む第2の検出プローブと接触させる工程であって、前記第1および第2の標的結合部分がそれらのそれぞれの標的に結合すると、前記第1の一本鎖オーバーハングおよび前記第2の一本鎖オーバーハングが一緒にハイブリダイズする、接触させる工程と;
前記第1の二本鎖部分と前記第2の二本鎖部分とをライゲーションして、ライゲートされた複合体を形成する工程と;
前記ライゲートされた複合体を検出する工程であって、ライゲートされたテンプレートの存在が、標的領域が前記試料中に存在することを示す、検出する工程と
を含む、前記方法。 - 前記検出が、前記ライゲートされたテンプレートの増幅を実行すること、及び増幅産物の存在を検出することを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記増幅が、定量的ポリメラーゼ連鎖反応であるか、またはそれを含む、請求項2に記載の方法。
- 前記試料由来の物質が固体基材上に固定化されている、請求項1に記載の方法。
- 前記固体基材がビーズであるか、またはそれを含む、請求項4に記載の方法。
- 第3の標的のための追加の検出プローブをさらに含み、前記追加の検出プローブが、第3の標的結合部分と、第3の二本鎖部分と、第3の一本鎖オーバーハングとを含む、請求項1に記載の方法。
- それぞれ特異的標的のための2~20の検出プローブをさらに含み、前記検出プローブのそれぞれが、標的結合部分と、二本鎖部分と、一本鎖オーバーハングとを含む、請求項1に記載の方法。
- 対照プローブをさらに含み、その際、前記対照プローブが、前記標的への前記対照プローブの結合により、ライゲートされたテンプレートの生成が阻害される、及び/または非標的領域からのライゲートされたテンプレートの増幅が阻害されることにおいて特徴づけられる、請求項1に記載の方法。
- 前記対照プローブが、対照基準に結合するように構成されている、請求項8に記載の方法。
- 前記試料が、細胞外小胞の集団であるか、またはそれを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記細胞外小胞の少なくとも1つが、疾患、障害、または状態についての標的バイオマーカーシグネチャーを発現する、請求項10に記載の方法。
- 前記疾患、障害、または状態が、がんである、請求項11に記載の方法。
- 前記がんが、膀胱癌、脳癌、乳癌、子宮頸癌、慢性リンパ球性白血病、慢性骨髄性白血病、結腸直腸癌、子宮内膜癌、食道癌、胃腸癌、ホジキンリンパ腫、腎臓癌、肝臓癌、肺癌、多発性骨髄腫、非ホジキンリンパ腫、卵巣癌、膵臓癌、前立腺癌、肉腫、皮膚癌、及び胃癌からなる群から選択される、請求項12に記載の方法。
- 前記試料が、対象からの血液由来試料であるか、またはそれを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記対象が、次の特徴:
(i)がんに易罹患性である無症候性対象;
(ii)がんの家族歴を有する対象;
(iii)1つまたは複数のがん関連遺伝子において1つまたは複数の生殖細胞系変異を有すると決定された対象;
(iv)高齢対象;
(v)がんの1つまたは複数の非特異的症状を有する対象;
(vi)周期的ながんスクリーニングを推奨されている対象;
(vii)画像で確認される腫瘤を有すると診断されている対象;
(viii)リスクを低減する外科的介入を施される前の、がんについて遺伝的リスクを有する対象;
(ix)良性腫瘍を有する対象;及び
(x)がんについて以前に処理されたことがある対象
のうちの少なくとも1つまたはそれ以上を有する、請求項14に記載の方法。 - 前記標的バイオマーカーシグネチャーが、(1)細胞外小胞関連膜結合ポリペプチドを含む第1の標的バイオマーカー;ならびに(2)表面タンパク質バイオマーカー、小胞内タンパク質バイオマーカー、及び小胞内RNAバイオマーカーからなる群から選択される標的バイオマーカーを含む第2の標的バイオマーカーを含む、請求項11に記載の方法。
- 細胞外小胞を含む目的のサイズ範囲を有するナノ粒子を単離するために、前記血液由来試料がサイズ排除クロマトグラフィーに掛けられている、請求項14に記載の方法。
- 前記試料を前記第1の検出プローブに接触させる前に、捕捉アッセイを実行することをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記捕捉アッセイが、前記試料を、細胞外小胞関連膜結合ポリペプチドに結合する標的捕捉部分を含む捕捉因子と接触させることを含む、請求項18に記載の方法。
- 次の診断アッセイ:
(i)前記対象の毎年の理学的検査;
(ii)がんスクリーニング検査;
(iii)がんに関連する循環腫瘍DNA及び/またはタンパク質バイオマーカーにおける遺伝子変異について、血漿をスクリーニングするための遺伝子アッセイ;
(iv)細胞表現型及びマーカー発現を同定するための免疫蛍光染色、続いて、次世代シーケンシングによる増幅及び分析を含むアッセイ;ならびに
(v)生殖細胞系及び体細胞突然変異アッセイ、または細胞非含有腫瘍DNA、リキッドバイオプシー、血清タンパク質及び細胞非含有DNA、及び/または循環腫瘍細胞を伴うアッセイ
のうちの1つまたは複数と組み合わせて使用する、
請求項14に記載の方法。
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