JP6181751B2 - 望まれない核酸配列のネガティブ選択のための組成物および方法 - Google Patents
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Description
これは、2012年6月18日に出願された米国仮特許出願第61/661,293号(この全ては、その全体が参考として本明細書に援用される)の優先権の利益を主張する。
本明細書において言及される刊行物、特許、および特許出願はすべて、それぞれの個々の刊行物、特許、または特許出願が、参照によって組み込まれるように明確にかつ個々に示されるのと同じ程度まで、参照によって本明細書において組み込まれる。
本発明の実施形態において、例えば以下の項目が提供される。
(項目1)
核酸ライブラリーから特異的な非所望の核酸配列を排除するまたは低下させるための方法であって、
a.それぞれのDNA断片のそれぞれの末端に対して付加された方向が固定されたアダプターを有する一本鎖DNA断片を含む核酸ライブラリーを生成するステップ、
b.それぞれの末端に付加された方向が固定されたアダプターを有する前記一本鎖DNA断片に対して配列特異的なオリゴヌクレオチドプローブをアニールするステップであって、前記配列特異的なオリゴヌクレオチドプローブが、前記非所望の核酸配列に対して相補的となるように設計され、2つの前記アダプターの少なくとも1つが、二本鎖DNAに対して特異的な制限エンドヌクレアーゼについての認識配列を含む、ステップ、
c.DNAポリメラーゼにより前記配列特異的なオリゴヌクレオチドプローブを伸長させ、それによって、前記非所望の核酸配列の少なくとも1つの一部分を含む二本鎖DNA断片を作るステップ、
d.二本鎖DNAに対して特異的な制限エンドヌクレアーゼにより、二本鎖および一本鎖DNAを含むDNA断片の集団を処理し、それによって、制限エンドヌクレアーゼ部位で二本鎖DNA断片を切断するステップ、ならびに
e.前記アダプターの配列に対して特異的なプライマーのセットによりPCRを実行し、それによって、所望の核酸配列を含む前記DNA断片を増幅するステップ
を含む、方法。
(項目2)
増幅された産物をシークエンシングする追加のステップをさらに含む、項目1に記載の方法。
(項目3)
前記核酸ライブラリーが、ソートされた細胞の集団に由来する、項目1に記載の方法。
(項目4)
前記核酸ライブラリーが、単一細胞に由来する、項目3に記載の方法。
(項目5)
マルチウェルプレート、マイクロアレイ、マイクロ流体デバイス、またはスライドの中に細胞をソートし、それによって、ソートされた細胞の前記集団を生成するステップをさらに含む、項目3に記載の方法。
(項目6)
前記ソートするステップが、細胞表面マーカーに従って実行される、項目5に記載の方法。
(項目7)
前記ソートするステップが、前記細胞の光学的特性に従って実行される、項目5に記載の方法。
(項目8)
前記ソートするステップが、細胞サイズに従って実行される、項目5に記載の方法。
(項目9)
前記非所望の核酸配列が、細菌リボソームRNA、ミトコンドリアDNA、ヒトグロビンmRNA、ヒト細胞質内rRNA、ヒトミトコンドリアrRNA、ブドウ細胞質内rRNA、ブドウミトコンドリアrRNA、またはブドウ葉緑体rRNAを含む、項目1に記載の方法。
(項目10)
ステップd.の制限エンドヌクレアーゼが、BspQIである、項目1に記載の方法。
(項目11)
前記DNAポリメラーゼが、ホットスタートポリメラーゼを含む、項目1に記載の方法。
(項目12)
前記DNAポリメラーゼが、MyTaqポリメラーゼである、項目11に記載の方法。
(項目13)
ステップa.が、以下のステップ:
i.RNAサンプルを逆転写するステップ、
ii.逆転写された前記RNAサンプルから二本鎖cDNAを生成するステップであって、4つのdNTP dATP、dCTP、dGTP、またはdTTPのうちの少なくとも1つが、第2の鎖の合成の間に非標準dNTPと交換され、そして前記第2の鎖の中に組み込まれる、ステップ、
iii.前記二本鎖cDNA上で末端修復を実行するステップ、
iv.前記二本鎖cDNAの5’末端に対してアダプターをライゲーションするステップであって、前記アダプター鎖のうちの1つが、前記アダプターのライゲーション鎖の中に組み込まれる前記非標準ヌクレオチドを有する、ステップ、
v.ギャップ修復を実行するステップ、および
vi.切断剤によって前記第2の鎖を選択的に除去するステップ
を含む、項目1に記載の方法。
(項目14)
前記非標準ヌクレオチドが、ウリジンまたはイノシンを含む、項目5に記載の方法。
(項目15)
ステップviが、1つ以上の前記非標準ヌクレオチドの塩基部分を切断し、それによって、塩基脱落部位を形成することを含む、項目13に記載の方法。
(項目16)
前記切断剤が、グリコシラーゼを含む、項目13に記載の方法。
(項目17)
前記グリコシラーゼが、UNGまたはUDGである、項目16に記載の方法。
(項目18)
前記切断剤が、第一級アミンを含む、項目13に記載の方法。
(項目19)
前記切断剤が、ポリアミンを含む、項目13に記載の方法。
(項目20)
前記ポリアミンが、DMEDである、項目19に記載の方法。
(項目21)
前記切断剤が、グリコシラーゼおよびポリアミンを含む、項目13に記載の方法。
(項目22)
前記切断剤が、エンドヌクレアーゼVを含む、項目13に記載の方法。
(項目23)
核酸のプールに対するアダプターライゲーションの方法であって、
a.5’リン酸を含む第1の核酸鎖、5’リン酸および1つ以上の非標準ヌクレオチドを含む第2の核酸鎖を含む核酸を、5’リン酸を欠く第1のアダプター鎖ならびに5’リン酸および1つ以上の非標準ヌクレオチドを欠く第2のアダプター鎖を含む、少なくとも1つの第1のアダプターとライゲーションするステップ、
b.3’伸長反応を実行するステップ、ならびに
c.1つ以上の切断試薬を含む作用物質により切断反応を実行し、それによって、1つ以上の非標準ヌクレオチドを含む少なくとも1つの核酸鎖を切断するステップであって、前記1つ以上の切断剤のうちの1つが、前記1つ以上の非標準ヌクレオチドを含む核酸鎖に対して特異的である、ステップ
を含む方法。
(項目24)
前記核酸を、5’リン酸を欠く第3のアダプター鎖ならびに5’リン酸および1つ以上の非標準ヌクレオチドを欠く第4のアダプター鎖を含む第2のアダプターとライゲーションするステップをさらに含み、前記第1のアダプターおよび前記第2のアダプターが、異なる、項目23に記載の方法。
(項目25)
前記核酸が、それぞれの末端で第1のアダプターまたは第2のアダプターとライゲーションされる、項目23または24に記載の方法。
(項目26)
前記非標準ヌクレオチドが、ウラシルおよびイノシンから選択される、項目23に記載の方法。
(項目27)
ステップcが、前記1つ以上の非標準ヌクレオチドの塩基部分を切断し、それによって、塩基脱落部位を形成することを含む、項目23に記載の方法。
(項目28)
前記1つ以上の切断試薬が、グリコシラーゼを含む、項目23に記載の方法。
(項目29)
前記グリコシラーゼが、UNGまたはUDGである、項目28に記載の方法。
(項目30)
前記1つ以上の切断試薬が、第一級アミンを含む、項目23に記載の方法。
(項目31)
前記1つ以上の切断試薬が、ポリアミンを含む、項目23に記載の方法。
(項目32)
前記ポリアミンが、DMEDである、項目31に記載の方法。
(項目33)
前記1つ以上の切断試薬が、グリコシラーゼおよびポリアミンを含む、項目23に記載の方法。
(項目34)
前記1つ以上の切断試薬が、エンドヌクレアーゼVを含む、項目23に記載の方法。
(項目35)
第1のプライマーおよび第2のプライマーを含む増幅反応を実行するステップをさらに含み、前記第1のプライマーが、前記第1のアダプター鎖に対してハイブリダイズすることができ、そして前記第2のプライマーが、前記第4のアダプター鎖に対してハイブリダイズすることができ、それによって増幅産物を生成する、項目24に記載の方法。
(項目36)
前記第1のアダプターは、二本鎖DNAに対して特異的な制限エンドヌクレアーゼについての認識配列を含む、項目23〜35のいずれか一項に記載の方法。
(項目37)
d.前記第1の核酸鎖上の配列に対してプローブをハイブリダイズするステップ、
e.DNAポリメラーゼにより前記プローブを伸長させ、それによって、部分的な二重鎖核酸を産生するステップ、および
f.二本鎖DNAに対して特異的な制限エンドヌクレアーゼにより前記部分的な二重鎖核酸を処理し、それによって、前記認識配列で二本鎖DNA断片を切断するステップ
をさらに含む、項目36に記載の方法。
(項目38)
前記アダプターの配列に対して特異的なプライマーのセットによりPCRを実行し、それによって、核酸の前記プールにおいて少なくとも1つの第2の核酸を増幅するステップをさらに含む、項目37に記載の方法。
(項目39)
前記第2の核酸が、ステップdにおける配列を欠く、項目38に記載の方法。
(項目40)
前記第2の核酸の一部分をシークエンシングするステップをさらに含む、項目38に記載の方法。
(項目41)
前記核酸が、以下:
i.RNA上で第1の鎖の合成を実行し、それによって、第1の鎖の合成産物を形成し、そして
ii.非標準ヌクレオチドの存在下において前記第1の鎖上で第2の鎖の合成を実行し、それによって、第2の鎖の合成産物を形成すること
によって生成される、項目23に記載の方法。
(項目42)
前記RNAを選択的に切断するステップをさらに含む、項目41に記載の方法。
(項目43)
前記RNAを選択的に切断するステップが、RNアーゼHによる処理を含む、項目42に記載の方法。
(項目44)
iii.前記第1の鎖の合成産物および前記第2の鎖の合成産物を断片化し、それによって、断片化された第1の鎖の合成産物および第2の鎖の合成産物を生成するステップ、
iv.末端修復を実行するステップ、ならびに
v.5’リン酸化を実行するステップ
をさらに含む、項目41に記載の方法。
(項目45)
核酸の前記プールが、ソートされた細胞の集団に由来する、項目23に記載の方法。
(項目46)
核酸の前記プールが、単一細胞に由来する、項目45に記載の方法。
(項目47)
マルチウェルプレート、マイクロアレイ、マイクロ流体デバイス、またはスライドの中に細胞をソートし、それによって、ソートされた細胞の前記集団を生成するステップをさらに含む、項目45に記載の方法。
(項目48)
前記ソートするステップが、細胞表面マーカーに従って実行される、項目47に記載の方法。
(項目49)
前記ソートするステップが、前記細胞の光学的特性に従って実行される、項目47に記載の方法。
(項目50)
前記ソートするステップが、細胞サイズに従って実行される、項目47に記載の方法。
(項目51)
核酸の前記プールが、細菌リボソームRNA、ミトコンドリアDNA、ヒトグロビンmRNA、ヒト細胞質内rRNA、ヒトミトコンドリアrRNA、ブドウ細胞質内rRNA、ブドウミトコンドリアrRNA、またはブドウ葉緑体rRNAを含む、項目23に記載の方法。
(項目52)
前記制限エンドヌクレアーゼが、BspQIである、項目36に記載の方法。
(項目53)
前記3’伸長反応が、ホットスタートポリメラーゼを使用して実行される、項目23に記載の方法。
(項目54)
前記3’伸長反応が、MyTaqポリメラーゼを使用して実行される、項目53に記載の方法。
(項目55)
所望の核酸および望まれない核酸を含む核酸の鎖保持ライブラリーを作るためのアダプターライゲーションの方法であって、
a.1つ以上の非標準ヌクレオチドを含む望まれない核酸および1つ以上の非標準ヌクレオチドを含む所望の核酸を含む鋳型のプールを、それぞれ3’オーバーハングを含む複数の部分的二重鎖プライマーと混合するステップ、
b.前記複数の部分的二重鎖プライマーを前記鋳型に対してアニールするステップ、
c.前記鋳型に沿ってプライマー伸長反応を実行し、それによって、それぞれプライマー伸長産物を含む二本鎖核酸を形成するステップ、
d.前記プライマー伸長産物の少なくとも1つの5’末端に対してアダプターをライゲーションするステップ、ならびに
e.前記1つ以上のヌクレオチドを含む核酸に対して特異的な切断剤により前記二本鎖核酸から前記鋳型を切断するステップ
を含む、方法。
(項目56)
前記複数の部分的二重鎖プライマーが、相違する3’オーバーハング配列を有する少なくとも2つの部分的二重鎖プライマーを含む、項目55に記載の方法。
(項目57)
前記複数の部分的二重鎖プライマーが、二本鎖部分内に共有配列を含む、項目55または56に記載の方法。
(項目58)
前記アダプターに沿ってプライマー伸長反応を実行することを含むステップをさらに含む、項目55に記載の方法。
(項目59)
ステップeが、前記1つ以上の非標準ヌクレオチドの塩基部分を切断し、それによって、塩基脱落部位を形成することを含む、項目55に記載の方法。
(項目60)
前記切断剤が、グリコシラーゼを含む、項目55に記載の方法。
(項目61)
前記グリコシラーゼが、UNGまたはUDGである、項目60に記載の方法。
(項目62)
前記切断剤が、第一級アミンを含む、項目55に記載の方法。
(項目63)
前記切断剤が、ポリアミンを含む、項目55に記載の方法。
(項目64)
前記ポリアミンが、DMEDである、項目63に記載の方法。
(項目65)
前記切断剤が、グリコシラーゼおよびポリアミンを含む、項目55に記載の方法。
(項目66)
前記切断剤が、エンドヌクレアーゼVを含む、項目55に記載の方法。
(項目67)
前記1つ以上の非標準ヌクレオチドが、ウラシルまたはイノシンを含む、項目55に記載の方法。
(項目68)
前記1つ以上の非標準ヌクレオチドが、ウラシルおよびイノシンを含む、項目55に記載の方法。
(項目69)
鋳型の前記プールが、
i.前記1つ以上の非標準ヌクレオチドの存在下においてRNA上で第1の鎖合成を実行し、それによって、第1の鎖の合成産物を形成し、そして
ii.断片化反応を実行すること
によって生成される、項目55に記載の方法。
(項目70)
前記RNAを選択的に切断するステップをさらに含む、項目69に記載の方法。
(項目71)
前記RNAを選択的に切断するステップが、RNアーゼHによる処理を含む、項目70に記載の方法。
(項目72)
前記断片化反応が、前記1つ以上の非標準ヌクレオチドを標的にする切断剤を利用することを含む、項目69に記載の方法。
(項目73)
断片化反応が、前記1つ以上の非標準ヌクレオチドの塩基部分を切断し、それによって、塩基脱落部位を形成するステップを含む、項目72に記載の方法。
(項目74)
前記切断剤が、グリコシラーゼを含む、項目72に記載の方法。
(項目75)
前記グリコシラーゼが、UNGまたはUDGである、項目74に記載の方法。
(項目76)
前記切断剤が、第一級アミンを含む、項目72に記載の方法。
(項目77)
前記切断剤が、ポリアミンを含む、項目72に記載の方法。
(項目78)
前記ポリアミンが、DMEDである、項目77に記載の方法。
(項目79)
前記切断剤が、グリコシラーゼおよびポリアミンを含む、項目72に記載の方法。
(項目80)
前記切断剤が、エンドヌクレアーゼVを含む、項目72に記載の方法。
(項目81)
前記アダプターが、二本鎖DNAに対して特異的な制限エンドヌクレアーゼについての認識配列を含む、項目55〜80のいずれか一項に記載の方法。
(項目82)
f.前記プライマー伸長産物の配列に対してプローブをハイブリダイズするステップ、
g.DNAポリメラーゼにより前記プローブを伸長させ、それによって、部分的な二重鎖核酸を産生するステップ、
h.二本鎖DNAに対して特異的な制限エンドヌクレアーゼにより前記部分的な二重鎖核酸を処理し、それによって、前記認識配列で二本鎖DNA断片を切断するステップ
をさらに含む、項目81に記載の方法。
(項目83)
前記アダプターに対して逆相補的な配列に対してハイブリダイズすることができるプライマーによりPCRを実行し、それによって、鋳型の前記プールにおいて所望の核酸を増幅するステップをさらに含む、項目82に記載の方法。
(項目84)
前記所望の核酸の一部分をシークエンシングするステップをさらに含む、項目83に記載の方法。
(項目85)
鋳型の前記プールが、ソートされた細胞の集団に由来する、項目55に記載の方法。
(項目86)
鋳型の前記プールが、単一細胞に由来する、項目85に記載の方法。
(項目87)
マルチウェルプレート、マイクロアレイ、マイクロ流体デバイス、またはスライドの中に細胞をソートし、それによって、ソートされた細胞の前記集団を生成するステップをさらに含む、項目85に記載の方法。
(項目88)
前記ソートするステップが、細胞表面マーカーに従って実行される、項目87に記載の方法。
(項目89)
前記ソートするステップが、前記細胞の光学的特性に従って実行される、項目87に記載の方法。
(項目90)
前記ソートするステップが、細胞サイズに従って実行される、項目87に記載の方法。
(項目91)
鋳型の前記プールが、細菌リボソームRNA、ミトコンドリアDNA、ヒトグロビンmRNA、ヒト細胞質内rRNA、ヒトミトコンドリアrRNA、ブドウ細胞質内rRNA、ブドウミトコンドリアrRNA、またはブドウ葉緑体rRNAを含む、項目55に記載の方法。
(項目92)
前記制限エンドヌクレアーゼが、BspQIである、項目81に記載の方法。
(項目93)
前記プライマー伸長反応が、ホットスタートポリメラーゼを使用して実行される、項目55に記載の方法。
(項目94)
前記プライマー伸長反応が、MyTaqポリメラーゼを使用して実行される、項目93に記載の方法。
(項目95)
所望の核酸および望まれない核酸を有する核酸の鎖保持ライブラリーを作るためのアダプターライゲーションの方法であって、
a.望まれない核酸および所望の核酸を含む鋳型のプールを、それぞれ3’オーバーハングを含む複数の部分的二重鎖プライマーと混合するステップ、
b.前記複数の部分的二重鎖プライマーを前記鋳型に対してアニールするステップ、
c.前記鋳型に沿ってプライマー伸長反応を実行し、それによって、それぞれプライマー伸長産物を含む二本鎖核酸を形成するステップ、
d.前記プライマー伸長産物の少なくとも1つの5’末端に対してアダプターをライゲーションするステップ、ならびに
e.前記1つ以上のヌクレオチドを含む核酸に対して特異的な切断剤により前記二本鎖核酸から前記プライマー伸長産物を切断するステップ
を含む、方法。
(項目96)
前記複数の部分的二重鎖プライマーが、相違する3’オーバーハング配列を有する少なくとも2つの部分的二重鎖プライマーを含む、項目95に記載の方法。
(項目97)
前記複数の部分的二重鎖プライマーが、二本鎖部分内に共有配列を含む、項目95または96に記載の方法。
(項目98)
前記3’オーバーハングを有する前記複数の部分的二重鎖プライマーの鎖が、前記二本鎖部分内の前記共有配列においてアデニンを欠く、項目97に記載の方法。
(項目99)
前記アダプターに沿ってプライマー伸長反応を実行することを含むステップをさらに含む、項目95に記載の方法。
(項目100)
前記プライマー伸長反応が、1つ以上の非標準ヌクレオチドの存在下において実行される、項目99に記載の方法。
(項目101)
ステップeが、前記1つ以上の非標準ヌクレオチドの塩基部分を切断し、それによって、塩基脱落部位を形成することを含む、項目95に記載の方法。
(項目102)
前記切断剤が、グリコシラーゼを含む、項目95に記載の方法。
(項目103)
前記グリコシラーゼが、UNGまたはUDGである、項目102に記載の方法。
(項目104)
前記切断剤が、第一級アミンを含む、項目95に記載の方法。
(項目105)
前記切断剤が、ポリアミンを含む、項目95に記載の方法。
(項目106)
前記ポリアミンが、DMEDである、項目105に記載の方法。
(項目107)
前記切断剤が、グリコシラーゼおよびポリアミンを含む、項目95に記載の方法。
(項目108)
前記切断剤が、エンドヌクレアーゼVを含む、項目95に記載の方法。
(項目109)
前記1つ以上の非標準ヌクレオチドが、ウラシルまたはイノシンを含む、項目95または100に記載の方法。
(項目110)
鋳型の前記プールが、以下:
i.前記1つ以上の非標準ヌクレオチドの存在下においてRNA上で第1の鎖合成を実行し、それによって、第1の鎖の合成産物を形成し、そして
ii.断片化反応を実行すること
によって生成される、項目95に記載の方法。
(項目111)
前記RNAを選択的に切断するステップをさらに含む、項目110に記載の方法。
(項目112)
前記RNAを選択的に切断するステップが、RNアーゼHによる処理を含む、項目111に記載の方法。
(項目113)
前記断片化反応が、前記1つ以上の非標準ヌクレオチドを標的にする切断剤を利用することを含む、項目110に記載の方法。
(項目114)
前記断片化反応が、前記1つ以上の非標準ヌクレオチドの塩基部分を切断し、それによって、塩基脱落部位を形成するステップを含む、項目113に記載の方法。
(項目115)
前記切断剤が、グリコシラーゼを含む、項目113に記載の方法。
(項目116)
前記グリコシラーゼが、UNGまたはUDGである、項目115に記載の方法。
(項目117)
前記切断剤が、第一級アミンを含む、項目113に記載の方法。
(項目118)
前記切断剤が、ポリアミンを含む、項目113に記載の方法。
(項目119)
前記ポリアミンが、DMEDである、項目118に記載の方法。
(項目120)
前記切断剤が、グリコシラーゼおよびポリアミンを含む、項目113に記載の方法。
(項目121)
前記切断剤が、エンドヌクレアーゼVを含む、項目113に記載の方法。
(項目122)
前記アダプターが、二本鎖DNAに対して特異的な制限エンドヌクレアーゼについての認識配列を含む、項目95〜121のいずれか一項に記載の方法。
(項目123)
f.前記望まれない核酸の配列に対してプローブをハイブリダイズするステップ、
g.DNAポリメラーゼにより前記プローブを伸長させ、それによって、部分的な二重鎖核酸を産生するステップ、
h.二本鎖DNAに対して特異的な制限エンドヌクレアーゼにより前記部分的な二重鎖核酸を処理し、それによって、前記認識配列で二本鎖DNA断片を切断するステップ
をさらに含む、項目122に記載の方法。
(項目124)
前記アダプターに対して逆相補的な配列および前記3’オーバーハングと対向する前記部分的二重鎖プライマーの前記共有配列に対してハイブリダイズすることができるプライマーのセットによりPCRを実行し、それによって、鋳型の前記プールにおいて所望の核酸を増幅するステップをさらに含む、項目123に記載の方法。
(項目125)
前記所望の核酸の一部分をシークエンシングするステップをさらに含む、項目124に記載の方法。
(項目126)
鋳型の前記プールが、ソートされた細胞の集団に由来する、項目95に記載の方法。
(項目127)
鋳型の前記プールが、単一細胞に由来する、項目126に記載の方法。
(項目128)
マルチウェルプレート、マイクロアレイ、マイクロ流体デバイス、またはスライドの中に細胞をソートし、それによって、ソートされた細胞の前記集団を生成するステップをさらに含む、項目126に記載の方法。
(項目129)
前記ソートするステップが、細胞表面マーカーに従って実行される、項目128に記載の方法。
(項目130)
前記ソートするステップが、前記細胞の光学的特性に従って実行される、項目128に記載の方法。
(項目131)
前記ソートするステップが、細胞サイズに従って実行される、項目128に記載の方法。
(項目132)
鋳型の前記プールが、細菌リボソームRNA、ミトコンドリアDNA、ヒトグロビンmRNA、ヒト細胞質内rRNA、ヒトミトコンドリアrRNA、ブドウ細胞質内rRNA、ブドウミトコンドリアrRNA、またはブドウ葉緑体rRNAを含む、項目95に記載の方法。
(項目133)
前記制限エンドヌクレアーゼが、BspQIである、項目122に記載の方法。
(項目134)
前記プライマー伸長反応が、ホットスタートポリメラーゼを使用して実行される、項目95に記載の方法。
(項目135)
前記プライマー伸長反応が、MyTaqポリメラーゼを使用して実行される、項目134に記載の方法。
(項目136)
a.制限エンドヌクレアーゼ、
b.一方の鎖上に1つ以上の非標準ヌクレオチドを含み、5’リン酸を欠く第1のアダプター、
c.前記1つ以上の非標準ヌクレオチドを欠き、5’リン酸を欠く第2のアダプター、
d.リガーゼ、
e.ポリメラーゼ、
f.切断剤、
g.プローブのライブラリー、および
h.前記アダプターの配列に対して特異的なプライマーのセット
を含むキットであって、前記第2のアダプターが、前記制限エンドヌクレアーゼについての認識配列を含む、キット。
(項目137)
a.制限エンドヌクレアーゼ、
b.5’リン酸を欠く第1のアダプター、
c.それぞれ3’オーバーハングを含み、かつ二本鎖部分内に共有配列を含む、複数の部分的二重鎖プライマー、
d.リガーゼ、
e.ポリメラーゼ、
f.切断剤、
g.プライマー伸長反応のためにプライマーとして作用することができるプローブのライブラリー、および
h.前記アダプターに対して逆相補的な配列にハイブリダイズすることができるプライマー
を含むキットであって、前記第1のアダプターが、前記制限エンドヌクレアーゼについての認識配列を含み、前記複数の部分的二重鎖プライマーが、相違する3’オーバーハング配列を有する少なくとも2つの部分的二重鎖プライマーを含む、キット。
(項目138)
a.制限エンドヌクレアーゼ、
b.5’リン酸を欠く第1のアダプター、
c.複数の部分的二重鎖プライマーであって、それぞれ3’オーバーハングを含み、二本鎖部分内に共有配列を含み、かつ前記3’オーバーハングを有する前記複数の部分的二重鎖プライマーの鎖が前記二本鎖部分内の前記共有配列においてアデニンを欠く、複数の部分的二重鎖プライマー、
d.リガーゼ、
e.ポリメラーゼ、
f.切断剤、
g.プライマー伸長反応のためにプライマーとして作用することができるプローブのライブラリー、および
h.前記アダプターに対して逆相補的な配列および前記3’オーバーハングと対向する前記部分的二重鎖プライマーの前記共有配列に対してハイブリダイズすることができるプライマーのセット
を含むキットであって、前記第1のアダプターが、前記制限エンドヌクレアーゼについての認識配列を含み、前記複数の部分的二重鎖プライマーが、相違する3’オーバーハング配列を有する少なくとも2つの部分的二重鎖プライマーを含む、キット。
(項目139)
前記制限エンドヌクレアーゼが、BspQIである、項目136〜138のいずれか一項に記載のキット。
(項目140)
前記ポリメラーゼが、ホットスタートポリメラーゼである、項目136〜138のいずれか一項に記載のキット。
(項目141)
前記ポリメラーゼが、MyTaqである、項目140に記載のキット。
(項目142)
1つ以上の非標準ヌクレオチドをさらに含む、項目136〜138のいずれか一項に記載のキット。
(項目143)
前記1つ以上の非標準ヌクレオチドが、ウラシルまたはイノシンを含む、項目136〜138のいずれか一項に記載のキット。
(項目144)
前記切断剤が、グリコシラーゼを含む、項目136〜138のいずれか一項に記載のキット。
(項目145)
前記グリコシラーゼが、UNGまたはUDGである、項目144に記載のキット。
(項目146)
前記切断剤が、第一級アミンを含む、項目136〜138のいずれか一項に記載のキット。
(項目147)
前記切断剤が、ポリアミンを含む、項目136〜138のいずれか一項に記載のキット。
(項目148)
前記ポリアミンが、DMEDである、項目147に記載のキット。
(項目149)
前記切断剤が、グリコシラーゼおよびポリアミンを含む、項目136〜138のいずれか一項に記載のキット。
(項目150)
前記切断剤が、エンドヌクレアーゼVを含む、項目136〜138のいずれか一項に記載のキット。
本発明の方法は、非所望の核酸配列が排除されたまたは実質的に低下した次世代シークエンシング(NGS)ライブラリーの生成のために使用することができる。そのような方法は、たとえば、リボソームRNAの低下を示すシークエンシングライブラリーの生成および核酸ライブラリーにおける関心のある核酸配列の濃縮に有用である。概して言えば、本発明の方法は、非所望の核酸配列の排除が核酸ライブラリーの生成の後に生じ、それによって、歪みがなく偏りがない核酸鋳型集団からの始まりを可能にするので、非所望の核酸配列が排除されるNGSライブラリーを作るための既存の方法に対する改善を提供する。
本発明内で使用される場合、用語「オリゴヌクレオチド」は、典型的には200残基長未満、より典型的には15〜100ヌクレオチド長のポリヌクレオチド鎖を指すが、より長いポリヌクレオチド鎖を包含することもまた意図される。オリゴヌクレオチドは、一本鎖または二本鎖であってもよい。本発明において使用される用語「オリゴヌクレオチドプローブ」または「プローブ」は、相補的なヌクレオチド配列に対してハイブリダイズすることができるオリゴヌクレオチドを指す。本発明において使用される場合、用語「オリゴヌクレオチド」は、用語「プライマー」、「アダプター」、および「プローブ」と区別なく使用されてもよい。
本発明の方法は、核酸(NA)修飾酵素を使用する。核酸修飾酵素は、DNA特異的な修飾酵素とすることができる。NA修飾酵素は、二本鎖DNAに対する特異性について選択することができる。酵素は、二重鎖特異的なエンドヌクレアーゼ、平滑末端高頻度カッター制限酵素(blunt−end frequent cutter restriction enzyme)、または他の制限酵素とすることができる。平滑末端カッターの例は、DraIまたはSmaIを含む。NA修飾酵素は、New England Biolabsによって提供される酵素とすることができる。NA修飾酵素は、ホーミングエンドヌクレアーゼとすることができる(ホーミングエンドヌクレアーゼは、厳密に定められた認識配列を有していないエンドヌクレアーゼとすることができる)。NA修飾酵素は、高忠実度エンドヌクレアーゼとすることができる(高忠実度エンドヌクレアーゼは、エンドヌクレアーゼの野生型バージョンよりも少ない「スター活性」を有する、遺伝子操作されたエンドヌクレアーゼとすることができる)。
ライゲーション
ステムループアダプター/プライマーオリゴヌクレオチドおよび標的ポリヌクレオチドなどのような、2つのポリヌクレオチドに関して本明細書において使用される用語「連結」および「ライゲーション」は、連続した主鎖を有する単一のより大きなポリヌクレオチドを生成するための2つの個別のポリヌクレオチドの共有結合を指す。2つのポリヌクレオチドを連結するための方法は、当技術分野において知られており、限定を伴うことなく、酵素的および非酵素的(たとえば化学的)方法を含む。非酵素的であるライゲーション反応の例は、参照によって本明細書において組み込まれる米国特許第5,780,613号および米国特許第5,476,930号において記載される非酵素的ライゲーション技術を含む。いくつかの実施形態において、アダプターオリゴヌクレオチドが、リガーゼ、たとえばDNAリガーゼまたはRNAリガーゼによって標的ポリヌクレオチドに対して連結される。それぞれ特徴付けられる反応条件を有する複数のリガーゼが、当技術分野において知られており、限定を伴うことなく、tRNAリガーゼ、Taq DNAリガーゼ、Thermus filiformis DNAリガーゼ、大腸菌DNAリガーゼ、Tth DNAリガーゼ、Thermus scotoductus DNAリガーゼ(IおよびII)、耐熱性リガーゼ、Ampligase耐熱性DNAリガーゼ、VanC型リガーゼ、9°N DNAリガーゼ、Tsp DNAリガーゼ、ならびにバイオプロスペクティングによって発見された新規なリガーゼを含むNAD+依存性リガーゼ;T4 RNAリガーゼ、T4 DNAリガーゼ、T3 DNAリガーゼ、T7 DNAリガーゼ、Pfu DNAリガーゼ、DNAリガーゼ1、DNAリガーゼIII、DNAリガーゼIV、およびバイオプロスペクティングによって発見された新規なリガーゼを含むATP依存性リガーゼ;ならびにその野生型、突然変異アイソフォーム、および遺伝的に操作された変異体が挙げられる。ライゲーションは、相補的なオーバーハングなどのようなハイブリダイズすることができる配列を有するポリヌクレオチドの間のものとすることができる。ライゲーションはまた、2つの平滑末端の間のものとすることもできる。一般に、5’リン酸が、ライゲーション反応において利用される。5’リン酸は、標的ポリヌクレオチド、アダプターオリゴヌクレオチド、またはその両方によって提供することができる。5’リン酸は、必要に応じて、連結されることになっているポリヌクレオチドに追加するまたはそれから除去することができる。5’リン酸の追加または除去のための方法は、当技術分野において知られており、限定を伴うことなく酵素的および化学的プロセスを含む。5’リン酸の追加および/または除去において有用な酵素は、キナーゼ、ホスファターゼ、およびポリメラーゼを含む。いくつかの実施形態において、ライゲーション反応において連結される2つの末端の両方(たとえばアダプター末端および標的ポリヌクレオチド末端)が、2つの共有結合が2つの末端を連結する際に作製されるように、5’リン酸を提供する。いくつかの実施形態において、ライゲーション反応において連結される2つの末端の1つのみ(たとえばアダプター末端および標的ポリヌクレオチド末端の1つのみ)が、1つのみの共有結合が2つの末端を連結する際に作製されるように、5’リン酸を提供する。いくつかの実施形態において、標的ポリヌクレオチドの1つまたは両方の末端の1つの鎖のみが、アダプターオリゴヌクレオチドに対して連結される。いくつかの実施形態において、標的ポリヌクレオチドの1つまたは両方の末端の両方の鎖が、アダプターオリゴヌクレオチドに対して連結される。いくつかの実施形態において、3’リン酸が、ライゲーションの前に除去される。いくつかの実施形態において、アダプターオリゴヌクレオチドが、標的ポリヌクレオチドの両方の末端に対して追加され、それぞれの末端の1つまたは両方の鎖が、1つ以上のアダプターオリゴヌクレオチドに対して連結される。両方の末端の両方の鎖が、アダプターオリゴヌクレオチドに対して連結される場合、連結は、対応する3’末端の伸長のための鋳型となり得る5’オーバーハングを残す切断反応の後に続くことがあり、3’末端は、アダプターオリゴヌクレオチドに由来する1つ以上のヌクレオチドを含んでいてもよくまたは含んでいなくてもよい。いくつかの実施形態において、標的ポリヌクレオチドが、一方の末端上で第1のアダプターオリゴヌクレオチドに対しておよび他方の末端上で第2のアダプターオリゴヌクレオチドに対して連結される。いくつかの実施形態において、標的ポリヌクレオチドおよびそれが連結されるアダプターが、平滑末端を含む。いくつかの実施形態において、個別のライゲーション反応が、1つを超えるサンプルの標的ポリヌクレオチドに対してバーコード配列が連結されないように、それぞれのサンプルについて少なくとも1つのバーコード配列を含む異なる第1のアダプターオリゴヌクレオチドを使用して、それぞれのサンプルについて実行される。アダプター/プライマーオリゴヌクレオチドが連結された標的ポリヌクレオチドは、連結されたアダプターによって「タグ付けされている」と考えられる。
本明細書において提供される組成物および方法は、二本鎖DNAにおいて方向性をもつ情報を保持するのに有用である。
単一細胞シークエンシングおよび遺伝子発現解析は、疾患診断または予診の適用およびたとえば新規な薬剤標的を同定するための研究道具などのような、当技術分野において知られている様々な適した方法のために提供される。関心のある疾患は、限定を伴うことなく、免疫媒介性機能不全、癌、およびその他同種のものを含む。本発明の方法において、不均質な細胞混合物、たとえば腫瘍針生検、炎症性病変生検、滑液、脊髄穿刺などは、たとえばマルチウェルプレート、マイクロアレイ、マイクロ流体デバイス、またはスライドの中に、空間的に分離された単一細胞にランダムにまたはある順序で分けられる。次いで、細胞は溶解され、内容物は増幅され、関心のある遺伝子のシークエンシングまたは発現について個々に分析される。このように分析された細胞は、個々の細胞の遺伝的特色に従って分類することができる。そのような分類は、試験サンプルの細胞組成の正確な評価を可能にし、その評価は、たとえば、腫瘍中の癌幹細胞の特徴および数を決定する際に;T細胞、樹状細胞、B細胞、およびその他同種のものの数および特異性などのような免疫関連細胞の特徴および数を決定する際に、使用を見出してもよい。
細胞が分析のために別個の位置に単離される場合、細胞は、マイクロ流体ソーターにより、フローサイトメトリー、顕微鏡検査法によってなどでソートされてもよい。微細加工蛍光活性化セルソーター(microfabricated fluorescence−activated cell sorter)は、それぞれ詳細に本明細書において参照によって組み込まれるFuら(1999)Nature Biotechnology 17:1109およびFuら(2002)Anal.Chem.74:2451−2457によって記載される。サンプルは、多層ソフトリソグラフィーを使用する統合された微細加工セルソーターによりソートすることができる。この統合されたセルソーターは、連係した自動式の様式でセルソーティングを実行するために、蠕動ポンプ、ダンパー、スイッチバルブ、および入力および出力ウェルを含む、様々なマイクロ流体の機能性を組み込んでいてもよい。この統合されたセルソーター上で駆動されたバルブの活動容積(active volume)は、1pLほどの大きさとすることができ、光学インターロゲーション(optical interrogation)の容積は、100fLほどの大きさとすることができる。従来のFACSマシンと比較して、マイクロ流体FACSは、高感度、相互汚染なし、および低費用を提供する。
選択された特性を有する細胞、たとえば、選択された表面タンパク質を有する細胞、破壊された細胞膜を有する細胞、病原体に感染した細胞、死にかかっている細胞、または死細胞は、セルソーティング、とりわけ蛍光活性化セルソーティング(FACS)を含む、当技術分野においてよく知られている様々な技術によって、基体(たとえばパニングにおいてのようにプラスチック表面)に対して結合された親和性試薬を使用することによってまたはビーズ(たとえば有色ラテックスビーズもしくは磁性粒子)の特性に基づいて単離することができる固相粒子に対して結合された親和性試薬を使用することによって、サンプル中で検出することができる。もちろん、細胞を検出するために使用される手順は、細胞がどのように標識されたかに依存するであろう。一例において、セルソーターに対して適切な特質を有する任意の検出可能な物質が、使用されてもよい(たとえば蛍光色素の場合には、ソーターの発光源によって励起することができる色素およびセルソーターの検出装置によって検出することができる放出スペクトル)。フローサイトメトリーにおいて、レーザー光線のビームは、細胞または他の粒子を含有する液体ストリームに投射され、これらは、集束した光がぶつかった場合に、検出装置によって拾われるシグナルを発する。次いで、これらのシグナルは、コンピューター記憶およびデータ分析のために変換され、様々な細胞の特性に関する情報を提供することができる。適した色素により標識された細胞は、レーザービームによって励起され、特徴的な波長で光を放射する。この放射された光は、検出装置によって拾われ、これらのアナログシグナルは、デジタルシグナルに変換されて、それらの記憶、分析、およびディスプレイを可能にする。
本発明の様々な実施形態において、核酸が、さらなる操作のための基質として使用される。インプット核酸は、DNAまたは複雑なDNA、たとえばゲノムDNAとすることができる。インプットDNAはまた、cDNAであってもよい。cDNAは、RNA、たとえばmRNAから生成することができる。インプットDNAは、特定の種、たとえばヒト、ブドウ、ラット、マウス、他の動物、植物、細菌、藻、ウイルスなどのものとすることができる。インプット核酸はまた、宿主病原体、細菌集団などのような、様々な種のゲノムの混合物由来のものとすることもできる。インプットDNAは、様々な種のゲノムの混合物から作製されたcDNAとすることができる。あるいは、インプット核酸は、合成供給源由来のものとすることができる。インプットDNAは、ミトコンドリアDNAまたは葉緑体DNAとすることができる。インプットDNAはまた、1つ以上の細胞質内、ミトコンドリア、または葉緑体mRNA、rRNA、またはtRNAから生成されたcDNAを含むことができる。インプットDNAは、無細胞DNAとすることができる。無細胞DNAは、たとえば血清または血漿サンプルから得ることができる。インプットDNAは、1つ以上の染色体を含むことができる。たとえば、インプットDNAがヒト由来のものである場合、DNAは、染色体1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、X、またはYの1つ以上を含むことができる。DNAは、直鎖または環状ゲノム由来のものとすることができる。DNAは、プラスミドDNA、コスミドDNA、細菌人工染色体(BAC)、または酵母人工染色体(YAC)とすることができる。インプットDNAは、1つを超える個体または生物由来のものとすることができる。インプットDNAは、二本鎖または一本鎖であってもよい。インプットDNAは、染色質の一部とすることができる。インプットDNAは、ヒストンに関連していてもよい。本明細書において記載される方法は、たとえば組織もしくは細胞培養物から単離されるなどのような高分子量DNA、血液および尿由来の無細胞DNAなどのような高度に分解されたDNAならびに/またはたとえばホルマリン固定パラフィン包埋組織から抽出されたDNAに対して適用することができる。
核酸または単一細胞を含有するサンプルは、生物学的な供給源から得、当技術分野において知られている従来の方法を使用して調製することができる。特に、本明細書において記載される方法において有用なDNAまたはRNAは、細菌、原生動物、真菌、ウイルス、細胞小器官、同様に、植物または動物、たとえば哺乳動物、特にヒトなどのような高等生物を含む任意の供給源から抽出するおよび/または増幅することができる。適した核酸はまた、環境的な供給源(たとえば池の水)から、人工的な製品(たとえば食品)から、法医学的サンプル、およびその他同種のものから得ることができる。核酸は、様々な標準的な技術のいずれかによって、細胞、体液(たとえば血液、血液画分、尿など)または組織サンプルから抽出するまたは増幅することができる。細胞は、培養されてもよくまたは臨床サンプルなどのような初代単離物由来であってもよい。例証となるサンプルは、血漿、血清、脊髄液、リンパ液、腹水、胸水、口腔液、および皮膚の外部の切片のサンプル;呼吸器系、消化器系、生殖器系、および泌尿器系由来のサンプル;涙、唾液、血球、幹細胞、または腫瘍のサンプルを含む。たとえば、胎児DNAのサンプルは、胚から(たとえば1つもしくは少数の胚細胞もしくは胎児細胞から)または母親の血液から得ることができる。サンプルは、生きているもしくは死んでいる生物またはインビトロ培養物から得ることができる。例証となるサンプルは、単一細胞、パラフィン包埋された組織サンプル、および針生検を含むことができる。本明細書において記載される方法において有用な核酸はまた、cDNA、コスミド、YAC、BAC、P1、PACライブラリー、およびその他同種のものを含む1つ以上の核酸ライブラリーに由来することができる。
いくつかの実施形態において、サンプルポリヌクレオチドが、1つ以上の特定のサイズ範囲(複数可)の断片化インサートDNA分子の集団に断片化される。いくつかの実施形態において、断片が、出発DNAの少なくとも約1、10、100、1000、10000、100000、300000、500000、またはそれ以上のゲノム等価物から生成される。断片化は、化学的、酵素的、および機械的な断片化を含む、当技術分野において知られている方法によって達成されてもよい。いくつかの実施形態において、断片が、約10〜約10,000ヌクレオチドの平均長を有する。いくつかの実施形態において、断片が、約50〜約2,000ヌクレオチドの平均長を有する。いくつかの実施形態において、断片が、約100〜2,500、10〜1,000、10〜800、10〜500、50〜500、50〜250、または50〜150ヌクレオチドの平均長を有する。いくつかの実施形態において、断片が、400ヌクレオチド未満、300ヌクレオチド未満、200ヌクレオチド未満、または150ヌクレオチド未満などのような500ヌクレオチド未満の平均長を有する。いくつかの実施形態において、断片化が、機械的に達成され、音波による超音波処理にサンプルポリヌクレオチドをかけることを含む。いくつかの実施形態において、断片化が、二本鎖核酸破壊を生成するために、1つ以上の酵素に適した条件下で1つ以上の酵素によりサンプルポリヌクレオチドを処理することを含む。ポリヌクレオチド断片の生成において有用な酵素の例は、配列特異的および非配列特異的ヌクレアーゼを含む。ヌクレアーゼの非限定的な例は、DNアーゼI、Fragmentase、制限エンドヌクレアーゼ、その変異体、およびその組み合わせを含む。たとえば、DNアーゼIによる消化は、Mg++の非存在下においておよびMn++の存在下において、DNAにおいてランダムな二本鎖の切れ目を誘発することができる。いくつかの実施形態において、断片化が、1つ以上の制限エンドヌクレアーゼによりサンプルポリヌクレオチドを処理することを含む。断片化は、5’オーバーハング、3’オーバーハング、平滑末端、またはその組み合わせを有する断片を産生することができる。いくつかの実施形態において、断片化が、1つ以上の制限エンドヌクレアーゼの使用を含む場合などのように、サンプルポリヌクレオチドの切断が、予測可能な配列を有するオーバーハングを残す。いくつかの実施形態において、方法が、カラム精製またはアガロースゲルからの単離などのような標準的な方法を介して断片をサイズ選択するステップを含む。酵素的および化学的方法の組み合わせなどのような断片化方法の組み合わせを利用することができる。特定の例において、塩基脱落部位が、たとえばグリコシラーゼ(ウラシル−DNAグリコシラーゼ、チミン−DNAグリコシラーゼなど)を使用して生成することができ、塩基脱落部位は、ジメチルエチレンジアミン(DMED)と塩基脱落部位を接触させることによってなどのような化学的方法を使用して切断することができる。
本明細書において記載される方法、組成物、およびキットは、超並列シークエンシングプラットフォームまたはハイブリダイゼーションプラットフォームなどのような下流の適用のための増幅対応の産物を生成するのに有用になり得る。増幅の方法は、当技術分野においてよく知られている。いくつかの実施形態において、増幅が、たとえばポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によるDNAの特異的二本鎖配列の酵素的増幅において指数関数的である。他の実施形態において、増幅方法が、線形である。他の実施形態において、増幅方法が、等温である。
いくつかの実施形態において、増幅方法が、当業者によって認識されるように、固相増幅、ポロニー増幅、コロニー増幅、エマルションPCR、ビーズRCA、表面RCA、表面SDAなどとすることができる。いくつかの実施形態において、溶液中のまたはDNA分子の一方の末端のみによって適したマトリックスに対してつながれた遊離DNA分子の増幅をもたらす増幅方法を、使用することができる。両方のPCRプライマーが表面に対して付加されるブリッジPCRに依存する方法(たとえば国際公開第2000/018957号パンフレットおよびAdessiら、Nucleic Acids Research(2000):28(20):E87を参照されたい)を、使用することができる。ある場合には、本発明の方法は、同一のアンプリコンの空間的なクラスタリングを維持するマルチプレックス増幅に適用される「ポリメラーゼコロニー技術」または「ポロニー」を作ることができる(Harvard Molecular Technology Group and Lipper Center for Computational Geneticsのウェブサイトを参照されたい)。これらは、たとえばインサイツポロニー(Mitra and Church、Nucleic Acid Research 27、e34、Dec.15、1999)、インサイツローリングサークル増幅(rolling circle amplification)(RCA)(Lizardiら、Nature Genetics 19、225、July 1998)、ブリッジPCR(米国特許第5,641,658号)、ピコタイターPCR(picotiter PCR)(Leamonら、Electrophoresis 24、3769、November 2003)、およびエマルションPCR(Dressmanら、PNAS 100、8817、Jul.22、2003)を含む。
単一プライマー等温増幅(SPIA)などのような線形増幅方法を用いる関心のある配列領域の増幅を使用することができる。SPIAは、関心のある鎖特異的配列領域の複数のコピーの生成を可能にし、単一増幅プライマーを用い、複数のオリゴヌクレオチド設計および製造に関連する複雑さを低下させ、一般的な増幅プライマーの使用を可能にし、線形となり得る。複雑なゲノムのNAサンプルにおける関心のある配列領域のコピー数の定量化の忠実度は、本発明の提起される方法の非常に望ましい特色である。
本発明のいくつかの態様は、ポリヌクレオチド分子またはポリヌクレオチド分子内の配列の増幅を含む。増幅は、一般に、核酸もしくはポリヌクレオチド分子の1つ以上のコピーの形成または核酸もしくはポリヌクレオチド分子の相補体の1つ以上のコピーの形成をもたらすことができる方法を指す。たとえば、増幅は、固体表面に対して結合されたポリヌクレオチドを増幅するまたは分析するために本発明において使用することができる。たとえば、アーカイブに保存されたポリヌクレオチドを分析するために、サンプルをアーカイブに保存した後に、増幅を実行することができる。
本発明の重要な側面は、本明細書において開示される方法および組成物が、関心のある生体物質の最小限の損失で、次世代シークエンシングまたはハイブリダイゼーションプラットフォームなどのような下流の分析のために効率的にかつ費用効果的に利用することができることである。詳細には、本発明の方法は、排除されたまたは低下したrRNA内容物を有するNGSライブラリーから全トランスクリプトームをシークエンシングするのに有用である。
一実施形態において、本発明は、シークエンシングのための調製において増幅に対応している産物を提供する。いくつかの実施形態において、標的ポリヌクレオチドが、プールされ、その後、プール中の1つ以上のポリヌクレオチドのシークエンシングが続く。アダプター組み込み配列を利用するシークエンシング方法は、当技術分野においてよく知られており、たとえば、米国特許第8,053,192号および米国特許第8,017,335号においてさらに記載される。
本明細書において記載される組成物のいずれかは、キット中に含まれていてもよい。非限定的な例において、キットが、適した容器中に、1つのアダプターまたはいくつかのアダプター、1つ以上のオリゴヌクレオチドプライマー、ならびにライゲーション、プライマー伸長、および増幅のための試薬を含む。キットはまた、ビーズ懸濁液などのような精製のための手段および核酸修飾酵素を含んでいてもよい。
本発明の方法に基づく製品は、商品名Encore Complete Prokaryotic RNA−Seq(商標)の下で、出願人によって市販化されてもよい。Encoreは、NuGEN Technologies, Inc.の商標である。
この実施例は、高度に保存された原核生物16Sおよび23S rRNA転写領域を標的にするinsert−dependent adaptor cleavage(InDA−C)プローブを使用する、大腸菌全RNAから生成された、4つの方向性をもつcDNAライブラリーからの細菌rRNA断片の排除を記載する。
原核生物rRNA転写物を標的にするInDA−Cプローブは、ClustalWマルチプル配列アライメントプログラム(European Bioinformatics Institute)を使用して40の細菌株および10の古細菌株の系統発生学的に多様なセット由来のリボソームオペロンを比較することによって設計した。候補プライマー配列は、16S rRNA(9つの部位)および23S rRNA(7つの部位)サブユニットにおいて同定された高度に保存された配列から最初に選択した。これらの保存領域は、Primer3によってコンピューターで断片化し、分析した(Steve Rozen and Helen J. Skaletsky(2000)Primer3 on the WWW for general users and for biologist programmers. In:Krawetz S、Misener S(eds)Bioinformatics Methods and Protocols:Methods in Molecular Biology. Humana Press、Totowa、NJ、pp365−386)。次いで、これらの配列は、55〜65℃の範囲にわたる最適な予測される融解温度および長さに対してフィルターにかけた。rRNAセンス鎖に対応するオリゴヌクレオチドを個々に合成し、等モルの割合でプールした。最終のプライマープールは、長さが14〜18ntの範囲にわたる205オリゴヌクレオチドから構成された。いくつかのプライマーは、それぞれの融解温度を増加させるために、ロックド核酸(LNA)塩基などのような1つ以上のヌクレオチド類似体により合成した。プローブミックスは、25倍に希釈して、InDA−C排除反応において使用する最終濃度にした(種当たり375nM、最終15nM)。
Encore Complete RNA−Seq Library System(NuGEN Technologies、p/n 0311)は、富栄養培地における増殖の対数中期に収集された液体培養物から抽出された100ngの大腸菌全RNA(Life Technologies、p/n AM7940)から4つの鎖特異的cDNAライブラリーを生成するために使用した。逆転写反応は、キット中に供給されるプライマーをOvation Prokaryotic RNA−Seq System(NuGEN Technologies、p/n 9030)からの第1の鎖のプライマーと交換したという点を除いて、メーカーの指示に従って実行した。第2の鎖のDNA合成は、キットにおいて推奨されるように実行し、二本鎖cDNAは、機器により提供される200bp超音波処理プロトコールを使用して、Covaris S−seriesデバイスにより剪断した(10%デューティーサイクル(duty cycle)、200サイクル/バースト、5強度、180秒)。断片化されたcDNAの精製は、2容量のAmpure XPビーズ(Agencourt Genomics)を追加することによって達成し、70%エタノールにより2度洗浄し、15μLの水により溶出した。10マイクロリットルのそれぞれのサンプルを、キット中に記載されるように、末端修復反応を使用してライゲーションのために調製した。ライゲーションは、キット中に提供されるリバースアダプターならびにBspQI認識部位中にデオキシウリジンおよび単一塩基置換を含有するカスタムフォワードアダプター(5’−TACACTCUTTCCCUACACGACGAUCTTCCGAUCT−3’)により実行した。Strand Selection I反応後に、サンプルは、溶出容量を25μLとし、そのうちの18μLを採取したという点を除いて、ビーズにより前のとおりに精製した。
リボソームDNA断片は、別個の3つのステップにおいてライブラリーから選択的に排除した:1)塩基切り取り/rRNA特異的プライマー伸長、2)リバースアダプター切断、および3)PCR濃縮。第1のステップは、それぞれの18μLサンプルを、1μLのInDA−C rRNAプローブ、5μLの5×MyTaqポリメラーゼバッファー、Encore Complete RNA−Seq systemからの0.5μLのStrand Selection II酵素(SS4)、および0.5μLのHS MyTaqポリメラーゼ(Bioline p/n BIO−21111)を含有する7μLのマスターミックスと組み合わせることによって実行した。この溶液を、サーマルサイクラー中に配置し、10分間37℃まで加熱して、鎖選択を終了させ、一本鎖ライブラリー断片を生成し、2分間95℃まで加熱して、ホットスタートポリメラーゼを活性化し、30秒間50℃まで冷却して、rRNAプローブをアニールし、5分間65℃まで加熱して、インサートからリバースアダプター配列へのプライマー伸長を可能にした。サンプルは、1×MyTaqポリメラーゼバッファーおよび2.5ユニットのBspQI制限酵素(New England Biolabs p/n R0712)を含有する25μLのアダプター切断マスターミックスを追加する前に、4℃まで冷却した。反応は、4℃まで冷却する前に5分間55℃および5分間95℃まで加熱することによってサーマルサイクラーにおいて実行した。非rRNA断片の濃縮は、キット中に提供される1×MyTaqポリメラーゼバッファー、2.5ユニットのHS MyTaqポリメラーゼ、および8μLのP2プライマーミックスを含有する50μLの2×PCRマスターミックスを追加することによって達成した。サンプルは、サーマルサイクラー中に配置し、2分間95℃まで加熱して、ポリメラーゼを活性化し、2ステップの温度ルーチンを使用して増幅した:30秒間95℃、90秒間60℃の2サイクルおよび30秒間95℃、90秒間65℃の18サイクル。PCR産物は、AMPure XPビーズを使用して精製し、2100 Bioanalyzer(Agilent Technologies)により分析した。ライブラリーは、Illumina GA2X機器で単一末端フォーマット(single end format)でシークエンシングした。生データは、Illuminaベースコーリングソフトウェアを使用してプロセシングし、大腸菌K−12(亜株MG1655)参照ゲノム(Genbank Accession#AP009048)にマッピングした。リードの方向は、RNA鋳型に関してセンス鎖の方向にあることが期待される。
この実施例は、ミトコンドリアゲノムを標的にするinsert−dependent adaptor cleavage(InDA−C)プローブを使用する、ゲノムDNAライブラリーからのミトコンドリアDNA断片の排除を記載する。
ヒトミトコンドリアゲノム配列のhg19バージョンの両方の鎖に対してアニールするInDA−Cプローブは、UCSC Genome Browserによって提供される「Duke 20bpユニークネス(uniqueness)」トラックによって同定されたミトコンドリア特異的セグメント内で選択した。次いで、これらの配列は、最適な予測される融解温度および長さに対してフィルターにかけた。長さが20〜25ntの範囲にわたるオリゴヌクレオチドを個々に合成し、等モルの割合でプールした。結果として生じるプローブミックスは、25倍に希釈して、InDA−C排除反応において使用する最終濃度にした(種当たり375nM、最終15nM)。
Ovation Ultralow Library System(NuGEN Technologies、San Carlos、CA)は、10ngのヒト男性DNA(Promega)からDNAライブラリーを生成するために使用した。DNAは、機器により提供される200bp超音波処理プロトコールを使用して、Covaris S−seriesデバイスにより剪断した(10%デューティーサイクル、200サイクル/バースト、5強度、180秒)。断片化されたDNAの精製は、2容量のAmpure XPビーズ(Agencourt Genomics)を追加することによって達成し、70%エタノールにより2度洗浄し、15μLの水により溶出した。10マイクロリットルのそれぞれのサンプルを、キット中に記載されるように、末端修復反応を使用してライゲーションのために調製した。ライゲーションは、カスタムフォワードアダプターおよびIllumina TruSeqリバースアダプターにより実行した。フォワードアダプターは、ライゲーションジャンクション(5’−AATGATACGGCGACCACCGAAGATAAGAAGAaTGAcGTcAAgTGCGATCGCAGGATAGAT−3’)の近くにAsiSI認識部位(5’−GCGATCGC−3’)を含有した。リバースアダプターは、ライゲーションジャンクション(5’−CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATGTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCT−3’)の近くにBspQ1認識部位(5’−GCTCTTC−3’)を含有した。サンプルは、溶出容量を25μLとし、そのうちの18μLを採取したという点を除いて、ビーズにより前のとおりに精製した。
ミトコンドリアDNA断片は、別個の3つのステップにおいてライブラリーから選択的に排除した:1)変性/ミトコンドリア特異的プライマー伸長、2)アダプター切断、および3)PCR濃縮。第1のステップは、それぞれの18μLサンプルを、1μLのInDA−Cミトコンドリアプローブ、5μLの5×MyTaqポリメラーゼバッファー、および0.5μLのHS MyTaqポリメラーゼ(Bioline p/n BIO−21111)を含有する7μLのマスターミックスと組み合わせることによって実行した。この溶液を、サーマルサイクラー中に配置し、10分間95℃まで加熱して、鎖分離を終了させ、一本鎖ライブラリー断片を生成し、かつホットスタートポリメラーゼを活性化し、30秒間50℃まで冷却して、rRNAプローブをアニールし、5分間65℃まで加熱して、インサートからリバースアダプター配列へのプライマー伸長を可能にした。サンプルは、1×MyTaqポリメラーゼバッファー、2.5ユニットのBspQI制限酵素(New England Biolabs p/n R0712)、および2.5ユニットのAsiSI制限酵素(New England Biolabs p/n R0630)を含有する25μLのアダプター切断マスターミックスを追加する前に、4℃まで冷却した。反応は、4℃まで冷却する前に5分間40℃および5分間95℃まで加熱することによってサーマルサイクラーにおいて実行した。非ミトコンドリア断片の濃縮は、1×MyTaqポリメラーゼバッファー、2.5ユニットのHS MyTaqポリメラーゼ、ならびに10μMフォワードプライマー(5’−AATGATACGGCGACCACCGA−3’)および10μMリバースプライマー(5’− CAAGCAGAAGACGGCATACG−3’)を含有する8μLの10×PCRプライマーミックスを含有する50μLの2×PCRマスターミックスを追加することによって達成した。サンプルは、サーマルサイクラー中に配置し、2分間95℃まで加熱して、ポリメラーゼを活性化し、2ステップの温度ルーチンを使用して増幅した:30秒間95℃、90秒間60℃の2サイクルおよび30秒間95℃、90秒間65℃の18のサイクル。PCR産物は、AMPure XPビーズを使用して精製し、2100 Bioanalyzer(Agilent Technologies)により分析した。ライブラリーは、Illumina GA2X機器で単一末端フォーマットでシークエンシングした。生データは、Illuminaベースコーリングソフトウェアを使用してプロセシングし、ヒト参照ゲノムに対してマッピングした。
この実施例は、出発物質として修飾二重鎖アダプターおよび50ngのpoly(A)+選択メッセンジャーRNAによる従来の平滑末端ライゲーションを使用する、方向性をもつcDNAライブラリーの生成を記載する。
第1の鎖のcDNAは、ランダムヘキサマープライミングを使用して生成した。第1の鎖の合成反応は、10μMのランダムヘキサマー、3.0mM MgCl2、および1.0mM dNTPと共に、Invitrogen SuperScript III Reverse Transcriptase kitを使用して行った。cDNA合成反応は、10μL容量で実行し、60分間摂氏40度でインキュベートし、摂氏4度まで冷やした。
第2の鎖合成は、New England Biolabs NEBNext Second Strand Synthesis Moduleを使用して実行し、Second Strand Synthesis(dNTP−free)Reaction Bufferに、0.2mMのdATP、dCTP、およびdGTPならびに0.54mM dUTPを含有するdNTPミックスを補足した。RNアーゼH媒介性ニックトランスレーションは、65μLの第2の鎖の合成マスターミックスを追加し、摂氏16度で1時間インキュベートすることによって実行した。反応は、45μLの25mM EDTAを追加することによって停止させた。
120μLの第2の鎖の合成反応液は、メーカーの指示に従ってCovaris S−series Systemを使用し、メーカー推奨の設定を使用して、音波断片化にかけ、150〜200塩基の平均断片サイズを有する断片化DNAを産生した。断片化DNAは、メーカーの指示に従って、QIAquick PCR精製キットを使用して濃縮した。断片化し、濃縮したDNAは、定量化し、Agilent Bioanalyzer DNA 1000チップ上に流して、150〜200bp長の断片分布を確保した。
断片化cDNAの末端を修復して、5’リン酸および3’水酸基を有する平滑末端を生成した。断片化DNAの末端修復は、End Repair Master Mixを使用し、Encore(商標)Ultra Low Input NGS Library System I User Guideの指示に従って実行した。
二重鎖アダプターは、Ligation Adaptor Mixが1つのアダプターを含有し、そのアダプターのライゲーション鎖がその中に組み込まれた少なくとも1つのdUを有したことを除いて、Encore(商標)Ultra Low Input NGS Library System I User Guideの指示に従って平滑末端cDNA断片に対してライゲーションした。
非リン酸化アダプターのライゲーションは、鎖選択および増幅の前に修復されなければならない単鎖ニックを残す。アダプター配列を充填し、完全長二本鎖DNA(dsDNA)を生成するために、反応ミックスを摂氏72度で加熱し、Taq DNAポリメラーゼによるcDNAインサートの3’末端の伸長(それによってアダプター配列を充填)およびライゲーションされていないアダプター鎖の融解がもたらされた。次いで、ライゲーションされたアダプターを有する修復dsDNA断片は、Encore(商標)Ultra Low Input NGS Library System I User Guideの指示に従って、Agencourt RNAClean XP Beadsを使用して精製した。
ウリジン消化は、20分間、37℃で1ユニットのUNGおよび1,000ユニットのAPE Iにより実行した。cDNAインサートの一方の鎖および2つのアダプターのうちの1つのライゲーション鎖へのdUTPの組み込みは、望まれないアダプター方向を有する産物の選択的な除去を可能にした。結果的に、UNG/APE Iにより処理される、組み込まれたdUTPを有するポリヌクレオチド鎖は、ポリメラーゼによる増幅を受けることができなかった。
最終の方向性をもつcDNAライブラリーを産生するために、UNG選択断片は、Encore(商標)Ultra Low Input NGS Library System I User GuideにおけるLibrary Amplification Protocolに従ってPCRによって増幅した。
ヒト血液サンプル由来の細胞を、表面マーカーに基づいて、別個の集団に、Beckman MoFloセルソーターでソートし、それらの集団内の個体を、メーカーの推奨に従ってNuGENのPrelude Direct Lysis Moduleを使用して分離し、溶解する。
CD4+CD25+細胞は、表面マーカーに基づいて、Becton Dickenson Influxセルソーターを使用して、血液サンプルからプールへソートし、メーカーの推奨に従って、NuGENのPrelude Direct Lysis Moduleを使用して溶解した。
ヒト血液サンプル由来のGFPを発現する細胞は、FACS Vantage SE Cell sorter(BD Biosciences、San Diego、CA、http://www.bdbiosciences.com)で、色に基づいて、別個の集団へソートする。閾値GFP発現より高い細胞は、メーカーの推奨に従って、NuGENのPrelude Direct Lysis Moduleを使用して、個々のマイクロウェルに分離し、溶解する。
CFP−YFP FRET系を発現する細胞は、FACS Vantage SE Cell sorter(BD Biosciences、San Diego、CA、http://www.bdbiosciences.com)で、FRET放出シグナルに基づいて、別個の集団へソートする。閾値FRET放出より高い細胞は、メーカーの推奨に従って、NuGENのPrelude Direct Lysis Moduleを使用して、個々のマイクロウェルに分離し、溶解する。
この実施例は、望まれない核酸断片を標的にするinsert−dependent adaptor cleavage(InDA−C)プローブを使用する、様々な起源のライブラリーからの望まれない核酸断片の排除を記載する。
排除のための標的配列は、所定のサンプルタイプ内に頻繁に大量に見つけられるかもしれない転写物について集められる。そのような転写物の例は、ほとんどのサンプルタイプ中のリボソームRNA(rRNA)およびミトコンドリアRNA、血液サンプル内のグロビン、ならびに植物サンプル内の葉緑体RNAである。これらの配列は、入手可能な場合、RefSeqなどのような公的なデータからまたは十分にアノテートされたもしくは完全な参照ゲノムを有していないブドウの場合のように、実験によるデータの供給源から(Grape Genome Browser available online from Genoscope、Denoeudら Annotating genomes with massive−scale RNA sequencing.Genome Biology 2008、9:R175 doi:10.1186/gb−2008−9−12−r175:http://www.genoscope.cns.fr/externe/GenomeBrowser/Vitis/)集められる。プローブの方向は、鋳型のどちらの鎖がアダプターライゲーション後に保持されるべきかに基づいて決定される。それぞれの望まれない転写物は、コンピューターで70塩基領域に「断片化され」、これらの領域は、Primer3などのようなPCRプライマー設計ソフトウェアを使用して照会される(Steve Rozen and Helen J.Skaletsky(2000)Primer3 on the WWW for general users and for biologist programmers.In:Krawetz S、Misener S(eds)Bioinformatics Methods and Protocols:Methods in Molecular Biology.Humana Press、Totowa、NJ、pp365−386)。標的融解温度は、ヒト細胞質内およびミトコンドリアrRNAならびにヒトグロビンメッセージについては60℃に、また、ブドウ細胞質内およびミトコンドリアrRNAならびにブドウ葉緑体rRNAに対しては65℃に設定される。
ヒト細胞質内およびミトコンドリアrRNA、ヒトグロビンmRNA、ブドウ細胞質内およびミトコンドリアrRNA、ブドウ葉緑体rRNAなどのような、望まれない核酸配列に対して特異的な設計されたプライマープローブは、実施例1、2、4、5、6、または7(図1、5〜7、および9)において例証される方法のうちの1つなどのような、本明細書において記載されたやり方のうちの1つにおいて、望まれない配列を排除する際に利用される。より低いアニーリング温度および伸長温度は、より積極的な鎖排除条件のために使用されてもよい。手短かに言えば、様々なアダプター構成における一本鎖核酸は、設計されたプライマープローブのセットとハイブリダイズし、望まれない核酸を排除する。核酸は、5’末端上に供給される制限エンドヌクレアーゼ認識配列と共に調製される。プライマープローブは、伸長し、制限エンドヌクレアーゼ認識配列のまわりに二本鎖構造をもたらす。制限エンドヌクレアーゼ認識部位での核酸の切断は、続く増幅反応、たとえばPCRによって標的にされるプライマーアニーリング配列をさらに破壊する。したがって、プライマープローブによって標的にされる核酸は、増幅に利用不可能であり、サンプル中に残りの核酸を濃縮する。
Claims (30)
- 核酸ライブラリーから非所望の核酸配列を排除するまたは低下させるための方法であって:
a.非所望のDNA断片と所望のDNA断片とを含む核酸ライブラリー中の前記非所望のDNA断片における非所望の一本鎖核酸配列に対して配列特異的なオリゴヌクレオチドプローブをアニールするステップであって、前記非所望のDNA断片と前記所望のDNA断片がアダプターを各末端に含み、前記配列特異的なオリゴヌクレオチドプローブの3’末端が、前記非所望の一本鎖核酸配列の一部分に対して完全な相補性を含み、それによって、部分的な二重鎖を有する非所望のDNA断片を産生するステップ;
b.前記部分的な二重鎖を有する前記非所望のDNA断片を、前記部分的な二重鎖中の二本鎖部分において切断するヌクレアーゼで処理するステップ;および
c.前記所望のDNA断片の各末端における前記アダプターにアニールするプライマーのセットによりポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を実行することにより、前記所望のDNA断片における所望の核酸配列を増幅し、それによって、増幅された所望のDNA断片を生成するステップ;
を含む、方法。 - 前記ヌクレアーゼが、エンドヌクレアーゼを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記ヌクレアーゼが、制限エンドヌクレアーゼを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記ヌクレアーゼが、前記二本鎖DNAの破壊を誘発する、請求項1に記載の方法。
- ステップ(a)の前記核酸ライブラリーを構築するステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- ステップ(a)の前記核酸ライブラリーが、偏りがない核酸鋳型集団を保持しながら、対象のサンプルから構築される、請求項5に記載の方法。
- ステップ(a)の前記非所望のDNA断片と前記所望のDNA断片がそれぞれ、cDNA断片である、請求項5に記載の方法。
- ステップ(a)の前記核酸ライブラリーを構築するステップが、RNAサンプル中のRNAを逆転写して、cDNA断片の第一のcDNA鎖を形成するステップを含む、請求項7に記載の方法。
- 前記RNAサンプルが、生物学的な供給源からの全RNAを含む、請求項8に記載の方法。
- 前記生物学的な供給源がヒトである、請求項9に記載の方法。
- 前記RNAサンプルを精製するステップをさらに含む、請求項8に記載の方法。
- 前記RNAサンプルが、20ng未満の核酸を含む、請求項8に記載の方法。
- 前記RNAが、リボソームRNA(rRNA)を含む、請求項8に記載の方法。
- RNAを逆転写するステップが、ランダムプライマーを前記RNAに対してアニールするステップを含む、請求項8に記載の方法。
- 前記ランダムプライマーが、ランダムヘキサマーを含む、請求項14に記載の方法。
- 前記第一のcDNA鎖の3’末端を末端トランスフェラーゼにより伸長させるステップをさらに含む、請求項8に記載の方法。
- 第二の鎖のcDNA合成を行って、前記cDNA断片の第二の鎖を形成するステップをさらに含む、請求項8に記載の方法。
- 前記非所望の一本鎖核酸配列が、rRNA配列である、請求項1に記載の方法。
- 前記非所望の一本鎖核酸配列が、ミトコンドリア配列である、請求項1に記載の方法。
- 前記ミトコンドリア配列が、ミトコンドリアRNA配列である、請求項19に記載の方法。
- 前記ミトコンドリアRNA配列が、ミトコンドリアrRNA配列である、請求項20に記載の方法。
- 前記配列特異的なオリゴヌクレオチドプローブが、前記非所望の一本鎖核酸配列に相補的であるように設計される、請求項1に記載の方法。
- 前記所望のDNA断片の各末端における前記アダプターの少なくとも一つが、バーコードを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記増幅された所望のDNA断片をシークエンシングするステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記シークエンシングが、超並列シークエンシングを含む、請求項24に記載の方法。
- 前記超並列シークエンシングが、ペアエンドシークエンシングを含む、請求項25に記載の方法。
- 前記プライマーのセットが、バーコードを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記核酸ライブラリーが、方向性をもつcDNAライブラリーである、請求項1に記載の方法。
- ステップ(a)の前に、ステップ(a)における前記核酸ライブラリー中の前記所望のDNA断片と前記非所望のDNA断片を精製するステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- ステップ(c)の前記増幅された所望のDNA断片を精製するステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
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