JP5706612B2 - Determination marker, determination method and determination kit for susceptibility to age-related macular degeneration - Google Patents

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Description

本発明は、加齢黄斑変性症易罹患性判定マーカー並びに該加齢黄斑変性症易罹患性判定マーカーを用いた加齢黄斑変性症易罹患性判定方法及び加齢黄斑変性症易罹患性判定キットに関する。   The present invention relates to an age-related macular degeneration susceptibility determination marker, an age-related macular degeneration susceptibility determination method and an age-related macular degeneration susceptibility determination kit, and an age-related macular degeneration susceptibility determination kit About.

加齢黄斑変性症(Age−related Macular Degeneration:AMD)は、高齢者の眼底において、網膜中心部の黄斑部に組織の変性や血管新生が起こり、視機能障害に至る加齢性眼科疾患であり、我が国を含む先進国において増加傾向にある疾患である。現在、50歳以上の人口の約0.9%が罹患していると考えられ、数百万人単位の高齢者のQOL(Quality of Life)が著しく損なわれる疾患として注目されている。
しかし、加齢黄斑変性症に対する治療としては、視力低下発症後のものが主体であるため、病期進行してからの治療については効果が限られているのが現状である。
Age-related Macular Degeneration (AMD) is an age-related ophthalmological disease that causes visual function impairment due to tissue degeneration and angiogenesis in the macular region at the center of the retina in the fundus of the elderly. This is a disease that is increasing in developed countries including Japan. Currently, about 0.9% of the population over 50 years old is considered to be affected, and has attracted attention as a disease in which QOL (Quality of Life) of millions of elderly people is significantly impaired.
However, since treatments for age-related macular degeneration are mainly those after the onset of vision loss, the effects of treatment after the progression of the disease stage are limited.

加齢黄斑変性症の発症リスク因子としては、近年、補体系の抑制因子である補体H因子(CFH)(非特許文献1〜3参照)及びセリンプロテアーゼ遺伝子HTRA1近傍(非特許文献4〜5参照)の遺伝子多型が同定され、加齢黄斑変性症が遺伝的背景により強く影響を受ける可能性が示唆されている。
しかし、これらの遺伝子多型が加齢黄斑変性症発症に関与するメカニズムの詳細については不明な点が多く、加齢黄斑変性症の診断及び治療の分子標的として必要充分であるか否かについては明らかではない。
In recent years, risk factors for the development of age-related macular degeneration include complement factor H (CFH), which is a suppressor of the complement system (see Non-Patent Documents 1 to 3), and the vicinity of the serine protease gene HTRA1 (Non-Patent Documents 4 to 5). The genetic polymorphism (see below) has been identified, suggesting that age-related macular degeneration may be strongly influenced by the genetic background.
However, there are many unclear points regarding the details of the mechanism by which these gene polymorphisms are involved in the development of age-related macular degeneration, and whether it is necessary and sufficient as a molecular target for the diagnosis and treatment of age-related macular degeneration. It is not clear.

特許文献1には、CFHをコードする遺伝子の多型部位における変異の存在又は非存在を、一塩基多型(SNP)を用いて測定する加齢黄斑変性症を発症する被験体の性向を決定するための診断方法が開示されている。
しかし、この方法を用いても加齢黄斑変性症疾患易罹患性の判定の確立及び精度が十分ではない点で問題であった。
Patent Document 1 determines the propensity of a subject who develops age-related macular degeneration in which the presence or absence of a mutation at a polymorphic site of a gene encoding CFH is measured using a single nucleotide polymorphism (SNP). A diagnostic method for doing so is disclosed.
However, even if this method is used, there is a problem in that the establishment and accuracy of determination of susceptibility to age-related macular degeneration disease are not sufficient.

加齢黄斑変性症の発症は、前記遺伝的な要因だけでなく、喫煙や食生活等の疾患関連性が指摘されていることから、多数の遺伝子が関連する遺伝的要因と、環境要因との両者が関与する多因子疾患であると考えられる。
一般的に、多因子疾患においては、一遺伝子の変異や異常からその罹患リスクを判断することは困難であるため、前記SNPによる判定では不十分であるが、複数の罹患リスクマーカーの組み合わせにより、罹患性の難易をより正確に予測できる可能性が高くなる。
The onset of age-related macular degeneration is not only due to the above-mentioned genetic factors, but also because it is related to diseases such as smoking and eating habits, genetic factors related to many genes and environmental factors It is considered to be a multifactorial disease involving both.
In general, in multifactorial diseases, it is difficult to determine the risk of morbidity from mutations or abnormalities in one gene, so determination by the SNP is insufficient, but by combining a plurality of morbidity risk markers, It is more likely that the difficulty of morbidity can be predicted more accurately.

近年、染色体DNAの重複や、欠失よりは短いゲノム領域(数10キロ塩基対以上)におけるDNAコピー数多型(copy number variation:CNV)が、SNPとは異なる新しいゲノム解析のマーカーとして注目を集めており、DNAコピー数多型の疾患関連性について解析が行われつつある。   In recent years, DNA copy number variation (CNV) in a genomic region (several tens of kilobase pairs or more) shorter than chromosomal DNA duplication or deletion has attracted attention as a new genome analysis marker different from SNP. It is being collected and analyzed for disease relevance of DNA copy number polymorphisms.

従来の遺伝学的解析では、SNPに代表される個人間の遺伝子の“配列の違い”について、よく検討されてきた。これに対して、DNAコピー数多型は、リファレンスとなるゲノムDNAと比較して、1キロ塩基対(kbp)から長いものでは数メガ塩基対(Mbp)に及ぶ長さの大きなゲノム領域において、DNAコピー数が変動する遺伝子の“数の違い”を意味する。
近年、DNAコピー数多型は、ヒトゲノム全体の12%以上(約360Mbp)という、従来考えられていたよりもはるかに広い領域にDNAコピー数多型が見られ、これまで知られていたSNPに加えて新たな個人間のゲノムの多様性を生み出している可能性が示された(非特許文献6参照)。これらのDNAコピー数多型には、様々な疾患、薬剤感受性に関連するものを含め約3,000個の遺伝子が含まれており、いわゆる染色体異常をともなう先天性疾患だけではなく、生活習慣病、自己免疫疾患といったcommon disease(ありふれた病気)を含むヒト形質の個人差に広く寄与している可能性が示された。DNAコピー数多型のデータは、現在、インターネット上の公共データベース(DataBase of Genomic Variants, http://projects.tcag.ca/variation/)に公開されている。
In conventional genetic analysis, gene “sequence differences” between individuals represented by SNPs have been well studied. In contrast, a DNA copy number polymorphism is larger in a genomic region having a length ranging from 1 kilobase pair (kbp) to several megabase pairs (Mbp) in comparison with the reference genomic DNA, It means “number difference” of genes whose DNA copy number fluctuates.
In recent years, DNA copy number polymorphism has been found in a much wider region than previously thought, which is 12% or more (about 360 Mbp) of the entire human genome, in addition to the SNPs known so far. It has been shown that the possibility of generating diversity of genomes among new individuals (see Non-Patent Document 6). These DNA copy number polymorphisms include about 3,000 genes including those related to various diseases and drug susceptibility, and not only congenital diseases with so-called chromosomal abnormalities but also lifestyle-related diseases. This indicates that it may contribute widely to individual differences in human traits including common diseases such as autoimmune diseases. DNA copy number polymorphism data is currently disclosed in a public database on the Internet (DataBase of Genomic Variants, http://projects.tcag.ca/variation/).

SNPのジェノタイピングを検討する場合も、DNAコピー数多型を含むゲノム領域にそのSNPが存在する場合には、以下の問題により、コピー数多型解析が必要になる。
一般的に、SNPのジェノタイピングをTaqMan PCR法、あるいはインベーダ法などの方法で解析した場合、各反応がプラトーに達した後のエンドポイントにおいて、各アレルに対応する蛍光強度の比を求めると、各アレルについてのホモ接合体(アレル比 1:0若しくは0:1)及びヘテロ接合体(アレル比 1:1)の3つの群に対応する数値(グラフ上にプロットした場合は3つのクラスター)に集約される。これに対して、各反応がプラトーに達する前のある時点にてSNPのジェノタイピングを行うと、DNAコピー数多型を含まない領域におけるSNPのジェノタイピングにおいては、各アレルに対応する蛍光強度の比が3つのクラスターに分けられるが、DNAコピー数多型を含む領域におけるSNPのジェノタイピングにおいては、3つのクラスターに分けられない場合が存在しうる(非特許文献7参照)。
即ち、遺伝子の重複が起こっている被験体、特に重複の結果、「アレル非対称性」が生じている被験体では、上記3つのいずれとも異なる蛍光強度比をとり、3つのクラスターのいずれとも異なる位置にプロットされるものが検出されうる。「アレル非対称性」が起こっている被験体では、両アレルのコピー数比が1:1以外(例えば、2:1、1:2など)のヘテロ接合体である可能性を推測することができる。しかし、SNPのジェノタイピング解析のみでは、総コピー数は不明であり、両アレルの詳細な数を求めることができないため、コピー数多型の定量的解析が必要となる。
Even when considering SNP genotyping, if the SNP exists in a genomic region containing a DNA copy number polymorphism, copy number polymorphism analysis is required due to the following problems.
In general, when the genotyping of SNP is analyzed by a method such as TaqMan PCR method or invader method, the ratio of the fluorescence intensity corresponding to each allele at the end point after each reaction reaches a plateau, For each allele, the numbers (three clusters when plotted on the graph) corresponding to three groups of homozygotes (allele ratio 1: 0 or 0: 1) and heterozygotes (allele ratio 1: 1) Aggregated. On the other hand, when SNP genotyping is performed at a certain time before each reaction reaches a plateau, the SNP genotyping in a region not including the DNA copy number polymorphism has a fluorescence intensity corresponding to each allele. Although the ratio is divided into three clusters, there may be cases where the SNP genotyping in a region containing a DNA copy number polymorphism cannot be divided into three clusters (see Non-Patent Document 7).
That is, in a subject in which gene duplication occurs, particularly in a subject in which “allele asymmetry” has occurred as a result of duplication, the fluorescence intensity ratio is different from any of the above three, and the position is different from any of the three clusters. Can be detected. It can be inferred that a subject with “allelic asymmetry” may be a heterozygote having a copy number ratio of both alleles other than 1: 1 (eg, 2: 1, 1: 2, etc.). . However, the total number of copies is unknown only by genotyping analysis of SNP, and the detailed number of both alleles cannot be obtained, so quantitative analysis of copy number polymorphism is required.

したがって、SNPがコピー数多型のあるゲノム領域に含まれている場合には、従来、ヘテロ接合体と考えられていた被験体の中に、例えば、罹患リスクアレル:非リスクアレルが2:1のものと、罹患リスクアレル:非リスクアレルが1:2のものが存在しうることになり、罹患リスクのコピー数が実は異なっている可能性が推測される。また、SNPのジェノタイピング解析のみでは、「アレル対称性」の遺伝子重複(例えば、2コピー:2コピー)と、遺伝子重複のないヘテロ接合体(1コピー:1コピー)とを判別できず、遺伝子重複のあるホモ接合体(3コピー:0コピー)と遺伝子重複のないホモ接合体とホモ接合体と欠失(1コピー:0コピー)を判別できないなどの問題があり、コピー数多型の定量的解析から総コピー数を求めることが必要である。   Therefore, when a SNP is contained in a genomic region having a copy number polymorphism, for example, the risk allele: non-risk allele is 2: 1 among the subjects conventionally considered heterozygotes. There is a possibility that there is a disease risk allele: non-risk allele of 1: 2, and there is a possibility that the copy number of the disease risk is actually different. In addition, the SNP genotyping analysis alone cannot distinguish between “allelic symmetry” gene duplication (eg, 2 copies: 2 copies) and heterozygotes without gene duplication (1 copy: 1 copy). Quantification of copy number polymorphisms such as inability to discriminate between homozygotes with duplication (3 copies: 0 copies), homozygotes without gene duplication, homozygotes, and deletions (1 copy: 0 copies) It is necessary to obtain the total number of copies from a statistical analysis.

前記CFH遺伝子及びその関連遺伝子であるCFHR1−CFHR5は、進化の過程で遺伝子が重複して染色体1番の1q31.3領域で300kb程にわたるRCA(the Regulation of Complement Activation)locus(遺伝子群)を形成していることが知られている(非特許文献2参照)おり、CFH遺伝子の3’領域にDNAコピー数多型が存在することが知られているものの(非特許文献8及びDataBase of Genomic Variants参照)、これらのDNAコピー数多型と、加齢黄斑変性症罹患性との相関性については、国内外ともに未だ解析が進んでいない。   The CFH gene and its related gene, CFHR1-CFHR5, are duplicated in the process of evolution to form an RCA (the Regulation of Complement Activation) locus (gene group) covering about 300 kb in the 1q31.3 region of chromosome 1 Although it is known that a DNA copy number polymorphism exists in the 3 ′ region of the CFH gene (see Non-Patent Document 8 and DataBase of Genomic Variants). As for the correlation between these DNA copy number polymorphisms and susceptibility to age-related macular degeneration, analysis has not progressed both in Japan and overseas.

したがって、著しい視力低下をきたす加齢黄斑変性症の発症及び進行を高い確率で予測可能であり、加齢黄斑変性症の早期予防や、既に発症した患者に対する最適な薬剤治療法の選択に好適に利用可能な加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカー、並びに、加齢黄斑変性症の罹患の難易を簡便に判定可能な加齢黄斑変性症易罹患性判定方法及び加齢黄斑変性症易罹患性判定キットの提供が強く望まれているのが現状である。   Therefore, it is possible to predict the onset and progression of age-related macular degeneration with a significant decrease in visual acuity with a high probability, and it is suitable for early prevention of age-related macular degeneration and selection of the optimal drug treatment method for patients who have already developed it. Markers for determining susceptibility to age-related macular degeneration, methods for determining susceptibility to age-related macular degeneration, and susceptibility to age-related macular degeneration At present, it is strongly desired to provide sex determination kits.

特表2008−529536号公報Special table 2008-529536

Klein RJ et al., Science, 2005, 308(5720), 385−389Klein RJ et al. , Science, 2005, 308 (5720), 385-389. Edwards AO et al., Science, 2005, 308(5720), 421−424Edwards AO et al. , Science, 2005, 308 (5720), 421-424. Haines JL et al., Science, 2005, 308(5720), 419−421Haines JL et al. , Science, 2005, 308 (5720), 419-421. Yang Z et al., Science, 2006, 314(5801), 992−993Yang Z et al. , Science, 2006, 314 (5801), 992-993. Dewan A et al., Science, 2006, 314(5801), 989−92Dewan A et al. , Science, 2006, 314 (5801), 989-92. Redon R et al., Nature,2006, 444(7118), 444−454Redon R et al. , Nature, 2006, 444 (7118), 444-454. Hosono N et al., Hum Mutat, 2008, 29(1), 182−189Hosono N et al. , Hum Mutat, 2008, 29 (1), 182-189. Alkan C et al., Nat Genetics, 2009, 41(10), 1061−1067Alkan C et al. , Nat Genetics, 2009, 41 (10), 1061-1067.

本発明は、従来における前記諸問題を解決し、以下の目的を達成することを課題とする。即ち、本発明は、著しい視力低下をきたす加齢黄斑変性症の発症及び進行を、高い精度及び確率で予測可能であり、加齢黄斑変性症の早期予防や、既に発症した患者に対する最適な薬剤治療法の選択に好適に利用可能な加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカー、並びに、加齢黄斑変性症の罹患性の難易を簡便に判定可能な加齢黄斑変性症易罹患性判定方法及び加齢黄斑変性症易罹患性判定キットを提供することを目的とする。   An object of the present invention is to solve the above-described problems and achieve the following objects. That is, the present invention is capable of predicting the onset and progression of age-related macular degeneration that causes a significant reduction in visual acuity with high accuracy and probability. A marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration, which can be suitably used for selecting a treatment method, and a method for determining susceptibility to age-related macular degeneration, which can easily determine the susceptibility to age-related macular degeneration It is another object of the present invention to provide a kit for determining susceptibility to age-related macular degeneration.

前記課題を解決するため、本発明者らは鋭意検討した結果、以下のような知見を得た。即ち、配列番号:1で表される塩基配列で特定されるCFH遺伝子をマーカーとして、前記マーカーのDNAコピー数多型を定量PCRを用いて決定することで、前記DNAコピー数多型から高い確率及び精度で加齢黄斑変性症の罹患の難易を判定可能であること、また、前記DNAコピー数多型と併せてCFH遺伝子のアミノ酸変異を伴う一塩基多型との組合せにより更に高い精度及び確立で判定可能であることを知見し、本発明の完成に至った。   In order to solve the above-mentioned problems, the present inventors have made extensive studies and as a result, obtained the following findings. That is, by using the CFH gene identified by the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 as a marker and determining the DNA copy number polymorphism of the marker using quantitative PCR, a high probability from the DNA copy number polymorphism In addition, it is possible to determine the difficulty of age-related macular degeneration with accuracy, and further higher accuracy and establishment by combining with the DNA copy number polymorphism and a single nucleotide polymorphism with an amino acid mutation of the CFH gene As a result, the present invention was completed.

本発明は、本発明者らによる前記知見に基づくものであり、前記課題を解決するための手段としては、以下の通りである。即ち、
<1> 下記配列番号:1で表される塩基配列を有し、加齢黄斑変性症の罹患の難易を検出するマーカーとして用いられることを特徴とする加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーである。
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCTGTGCAGCAGGCATACAAATCTGACAATCTCGTAACTATTTGTGGCAAGC (配列番号:1)
<2> 被験体由来のDNA含有試料中の下記配列番号:1で表される塩基配列で特定されるCFH遺伝子の一部及び全部のいずれかに相補的な蛍光標識を有するプローブを、下記配列番号:1で表される塩基配列にハイブリダイズさせ、前記蛍光標識により前記CFH遺伝子の発現を測定する測定工程と、前記測定工程で測定された蛍光強度から前記CFH遺伝子のDNAコピー数を決定するDNAコピー数決定工程と、前記DNAコピー数決定工程で決定されたDNAコピー数から加齢黄斑変性症の罹患の難易を判定する易罹患性判定工程と、を少なくとも含むことを特徴とする加齢黄斑変性症易罹患性判定方法である。
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCTGTGCAGCAGGCATACAAATCTGACAATCTCGTAACTATTTGTGGCAAGC (配列番号:1)
<3> 易罹患性判定工程が、決定されたDNAコピー数を組み合わせて判定する工程であり、前記DNAコピー数の組合せが、(A)0コピー及び1コピーと、(B)2コピー及び3コピーとの組合せ、並びに、(C)0コピー〜2コピーと、(D)3コピーとの組合せのいずれかであり、前記組合せにおいて、前記(B)及び前記(D)のいずれかである場合に加齢黄斑変性症に易罹患性であると判断する工程である前記<2>に記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法である。
<4> 測定工程が、配列番号:1で表される塩基配列で特定されるCFH遺伝子を鋳型とした定量PCRにより前記CFH遺伝子の発現を測定する工程である前記<2>から<3>のいずれかに記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法である。
<5> 下記配列番号:2及び下記配列番号:3で表される塩基配列を有するプライマーを用いて定量PCRを行う前記<4>に記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法である。
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCT (配列番号:2)
GCTTGCCACAAATAGTTACGAGATT (配列番号:3)
<6> 定量PCRがハウスキーピング遺伝子を内部標準として定量され、DNAコピー数決定工程が、CFH遺伝子に対応する蛍光強度と、前記ハウスキーピング遺伝子に対応する蛍光強度とを比較することにより前記CFH遺伝子のDNAコピー数を決定する工程である前記<4>から<5>のいずれかに記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法である。
<7> 定量PCRが、TaqMan法により行なわれる前記<4>から<6>のいずれかに記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法である。
<8> DNAコピー数決定工程が、測定工程で測定された蛍光強度が飽和に達するより前の時点におけるCFH遺伝子に対応する蛍光強度から前記CFH遺伝子のDNAコピー数を決定する工程である前記<2>から<7>のいずれかに記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法である。
<9> 易罹患性判定工程において、一塩基多型を更に組み合わせて加齢黄斑変性症の罹患の難易を判定する前記<2>から<8>のいずれかに記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法である。
<10> 一塩基多型が、rs800292(I62V)、rs1061170(Y402H)、及びrs1410996の少なくともいずれかである前記<9>に記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法である。
<11> 前記<1>に記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーを少なくとも含み、加齢黄斑変性症の罹患の難易を判定することを特徴とする加齢黄斑変性症易罹患性判定用キットである。
<12> 下記配列番号:2及び下記配列番号:3で表される塩基配列を有するプライマーと、下記配列番号:4で表される塩基配列を有するプローブとを少なくとも含み、加齢黄斑変性症の罹患の難易を判定することを特徴とする加齢黄斑変性症易罹患性判定用キットである。
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCT (配列番号:2)
GCTTGCCACAAATAGTTACGAGATT (配列番号:3)
GTGCAGCAGGCATACAAATCTG (配列番号:4)
The present invention is based on the above findings by the present inventors, and means for solving the above problems are as follows. That is,
<1> A marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration, which has the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 and is used as a marker for detecting the difficulty of affairs of age-related macular degeneration It is.
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCTGTGCAGCAGGCATACAAATCTGACAATCTCGTAACTATTTGTGCAAGC (SEQ ID NO: 1)
<2> A probe having a fluorescent label complementary to part or all of the CFH gene specified by the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 in a DNA-containing sample derived from a subject is represented by the following sequence: The measurement step of measuring the expression of the CFH gene with the fluorescent label after hybridizing to the base sequence represented by No. 1 and the DNA copy number of the CFH gene are determined from the fluorescence intensity measured in the measurement step Aging characterized in that it comprises at least a DNA copy number determination step and a susceptibility determination step of determining the difficulty of age-related macular degeneration from the DNA copy number determined in the DNA copy number determination step This is a method for determining macular degeneration susceptibility.
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCTGTGCAGCAGGCATACAAATCTGACAATCTCGTAACTATTTGTGCAAGC (SEQ ID NO: 1)
<3> The susceptibility determination step is a step of determining by combining the determined DNA copy numbers, and the combination of the DNA copy numbers is (A) 0 copy and 1 copy, (B) 2 copies and 3 A combination with a copy, and (C) one of a combination of 0 to 2 copies and (D) a 3 copy, and in the combination, either (B) or (D) The method for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to the above <2>, which is a step of determining susceptibility to age-related macular degeneration.
<4> The measurement step according to <2> to <3>, wherein the measurement step is a step of measuring the expression of the CFH gene by quantitative PCR using the CFH gene specified by the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 as a template It is the age-related macular degeneration susceptibility determination method in any one.
<5> The age-related macular degeneration susceptibility determination method according to <4>, wherein quantitative PCR is performed using a primer having a base sequence represented by SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3 below.
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTGCT (SEQ ID NO: 2)
GCTTGCCCAAATAGTTACGAGATT (SEQ ID NO: 3)
<6> Quantitative PCR is quantified using a housekeeping gene as an internal standard, and a DNA copy number determination step compares the fluorescence intensity corresponding to the CFH gene with the fluorescence intensity corresponding to the housekeeping gene, thereby determining the CFH gene. The method for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to any one of <4> to <5>, which is a step of determining the DNA copy number.
<7> The age-related macular degeneration susceptibility determination method according to any one of <4> to <6>, wherein the quantitative PCR is performed by a TaqMan method.
<8> The DNA copy number determination step is a step of determining the DNA copy number of the CFH gene from the fluorescence intensity corresponding to the CFH gene at a time point before the fluorescence intensity measured in the measurement step reaches saturation. The age-related macular degeneration susceptibility determination method according to any one of <2> to <7>.
<9> Age-related macular degeneration according to any one of <2> to <8>, wherein the difficulty in determining age-related macular degeneration is determined by further combining single nucleotide polymorphisms in the susceptibility determination step. This is a method for determining susceptibility.
<10> The age-related macular degeneration susceptibility determination method according to <9>, wherein the single nucleotide polymorphism is at least one of rs80000292 (I62V), rs1061170 (Y402H), and rs1410996.
<11> Age-related macular degeneration susceptibility, comprising at least the age-related macular degeneration susceptibility determination marker according to <1>, wherein the susceptibility to age-related macular degeneration is determined. This is a determination kit.
<12> At least a primer having the base sequence represented by the following SEQ ID NO: 2 and the following SEQ ID NO: 3 and a probe having the base sequence represented by the following SEQ ID NO: 4, A kit for determining susceptibility to age-related macular degeneration, characterized by determining difficulty of morbidity.
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTGCT (SEQ ID NO: 2)
GCTTGCCCAAATAGTTACGAGATT (SEQ ID NO: 3)
GTGCAGCAGGCATACAACATGTG (SEQ ID NO: 4)

本発明によれば、従来における前記諸問題を解決し、前記目的を達成することができ、著しい視力低下をきたす加齢黄斑変性症の発症及び進行を、高い精度及び確率で予測可能であり、加齢黄斑変性症の早期予防や、既に発症した患者に対する最適な薬剤治療法の選択に好適に利用可能な加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカー、並びに、加齢黄斑変性症の罹患の難易を簡便に判定可能な加齢黄斑変性症易罹患性判定方法及び加齢黄斑変性症易罹患性判定キットを提供することができる。   According to the present invention, it is possible to solve the above-mentioned problems in the past, achieve the object, and predict the onset and progression of age-related macular degeneration causing significant visual loss with high accuracy and probability, Markers for determining age-related macular degeneration susceptibility, which can be suitably used for early prevention of age-related macular degeneration and selection of the optimal drug treatment method for patients who have already developed, and An age-related macular degeneration susceptibility determination method and an age-related macular degeneration susceptibility determination kit capable of easily determining difficulty can be provided.

図1は、染色体1番、cytoband 1q31.3のCFH遺伝子において、配列番号:2で表される塩基配列を有するプライマーと、配列番号:3で表される塩基配列を有するプライマーとを用いたPCRの増幅産物の位置を示す図である。矢印で示した箇所が、PCR増幅産物の位置である。FIG. 1 shows a PCR using a primer having a base sequence represented by SEQ ID NO: 2 and a primer having a base sequence represented by SEQ ID NO: 3 in the CFH gene of chromosome 1 and cytoband 1q31.3. It is a figure which shows the position of amplification product of. The position indicated by the arrow is the position of the PCR amplification product. 図2は、NCBI Build 36(hg 18)においてchr1:194937326−194937399(NCBI Build 35では、chr1:193402360−193402433)に相当する配列において、配列番号:2で表される塩基配列を有するプライマーと、配列番号:3で表される塩基配列を有するプライマーとを用いたPCRの増幅産物とその周辺ゲノムの情報を示す図である。FIG. 2 shows a primer having a base sequence represented by SEQ ID NO: 2 in a sequence corresponding to chr1: 194937326-1949937399 in NCBI Build 36 (hg 18) (chr1: 194022360-19402433 in NCBI Build 35); It is a figure which shows the information of the amplification product of PCR using the primer which has a base sequence represented by sequence number: 3, and its surrounding genome. 図3は、NCBI Build 36(hg 18)においてchr1:194937326−194937399(NCBI Build 35では、chr1:193402360−193402433)に相当する配列において、配列番号:2で表される塩基配列を有するプライマーと、配列番号:3で表される塩基配列を有するプライマーとを用いたPCRの増幅産物とその周辺ゲノムの情報を示す図である。FIG. 3 shows a primer having a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2 in a sequence corresponding to chr1: 194937326-194937399 (in NCBI Build 35, chr1: 194022360-19340433) in NCBI Build 36 (hg 18); It is a figure which shows the information of the amplification product of PCR using the primer which has a base sequence represented by sequence number: 3, and its surrounding genome. 図4は、配列番号:2で表される塩基配列を有するプライマーと、配列番号:3で表される塩基配列を有するプライマーとを用いたPCRの増幅産物を示す図である。FIG. 4 is a diagram showing an amplification product of PCR using a primer having the base sequence represented by SEQ ID NO: 2 and a primer having the base sequence represented by SEQ ID NO: 3. 図5は、配列番号:2で表される塩基配列を有するプライマーと、配列番号:3で表される塩基配列を有するプライマーとを用いたPCRの増幅産物のCFH遺伝子における位置を示す図である。FIG. 5 is a diagram showing the positions in the CFH gene of PCR amplification products using a primer having the base sequence represented by SEQ ID NO: 2 and a primer having the base sequence represented by SEQ ID NO: 3. .

(加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカー)
本発明の加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーは、加齢黄斑変性症の罹患の難易を検出するマーカーとして用いられるマーカーであり、下記配列番号:1で表される塩基配列を有する。
下記配列番号:1で表される塩基配列は、加齢黄斑変性症と関連性が知られているCFH遺伝子9番イントロン(短型CFH遺伝子 NM_001014975では3’下流領域)が有する塩基配列である。
5’−TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCTGTGCAGCAGGCATACAAATCTGACAATCTCGTAACTATTTGTGGCAAGC −3’ (配列番号:1)
(Marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration)
The marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to the present invention is a marker used as a marker for detecting difficulty in afflicting age-related macular degeneration, and has a base sequence represented by SEQ ID NO: 1.
The base sequence represented by SEQ ID NO: 1 is the base sequence possessed by the 9th intron of the CFH gene (3 ′ downstream region in the short CFH gene NM_001014975) that is known to be associated with age-related macular degeneration.
5′-TGTCTCAGGTGTATTGTTCTGTTGCTGTGCAGCAGGCATACAAATCTGACAATCTCGTAACTATTTGTGGCAGGC-3 ′ (SEQ ID NO: 1)

前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーは、1本鎖のDNAであってもよく、2本鎖のDNAであってもよく、前記DNAから転写されたRNAであってもよい。また、前記DNAやRNAからなる抗体であってもよい。
前記配列番号:1で表される塩基配列は、1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入など変異しているものであってもよく、1若しくは数個の塩基が3’末端及び5’末端の少なくともいずれかに付加しているものであってもよいが、前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーは、前記CFH遺伝子又はそのRNAと、ストリンジェントな条件でハイブリダイズすることができる程度の相補関係を有するものが好ましく、前記配列番号:1で表される塩基配列そのものがより好ましい。
The marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration may be single-stranded DNA, double-stranded DNA, or RNA transcribed from the DNA. Moreover, the antibody which consists of said DNA and RNA may be sufficient.
The base sequence represented by SEQ ID NO: 1 may be one in which one or several bases are mutated such as deletion, substitution, insertion, etc. 'It may be added to at least one of the ends, but the marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration is hybridized with the CFH gene or RNA thereof under stringent conditions. The base sequence itself represented by SEQ ID NO: 1 is more preferable.

ここで、ストリンジェントな条件とは、前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーが結合する被験体由来のDNAの融解温度(Tm)に基づいて決定することができる(Berger and Kimmel 1987,Guide to Molecular Cloning Techniques Methods in Enzymology,Vol. 152,Academic Press,San Diego CA参照)。例えば、ハイブリダイズ後の洗浄条件として、通常「1×SSC(NaCl,trisodiumcitrate)、0.1質量% SDS(sodium dodecyl sulfate)、37℃」程度の条件を挙げることができる。前記条件で洗浄しても、前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーと、被験体由来のDNAとがハイブリダイズ状態を維持するものをいう。   Here, the stringent condition can be determined based on the melting temperature (Tm) of DNA derived from a subject to which the marker for susceptibility to age-related macular degeneration is bound (Berger and Kimmel 1987, Guide to Molecular Cloning Technologies Methods in Enzymology, Vol. 152, Academic Press, San Diego CA). For example, as washing conditions after hybridization, the conditions of “1 × SSC (NaCl, trisodium citrate), 0.1 mass% SDS (sodium dodecyl sulfate), 37 ° C.” can be mentioned. Even if it wash | cleans on the said conditions, the said marker for susceptibility determination of age-related macular degeneration and DNA derived from a subject maintain a hybridized state.

<製造方法>
前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーの製造方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、天然の遺伝子から制限酵素などにより酵素的に直接切り出す方法、天然の遺伝子を鋳型としてPCRで増幅させる方法、遺伝子クローニングによる方法、化学合成による方法などが挙げられる。
<Manufacturing method>
The method for producing the age-related macular degeneration susceptibility determination marker is not particularly limited and may be appropriately selected depending on the intended purpose. For example, a method of enzymatically directly cutting out a natural gene using a restriction enzyme or the like And a method of amplifying by PCR using a natural gene as a template, a method by gene cloning, a method by chemical synthesis, and the like.

前記PCR法の場合、前記配列番号:1で表される塩基配列を含む領域を挟むようにプライマーを設計し、公知の方法で調製することができる。   In the case of the PCR method, primers can be designed so as to sandwich a region containing the base sequence represented by SEQ ID NO: 1, and can be prepared by a known method.

前記遺伝子クローニング法の場合、例えば、正常核酸を増幅したものをプラスミドベクター、ファージベクター、プラスミドとファージとのキメラベクター等から選択されるベクターに組み込み、大腸菌、枯草菌等の原核微生物、酵母等の真核微生物、動物細胞等から選択される増殖可能な任意の宿主に導入することにより前記配列番号:1で表される塩基配列を大量に調製することができる。   In the case of the gene cloning method, for example, a normal nucleic acid amplified product is incorporated into a vector selected from a plasmid vector, a phage vector, a plasmid-phage chimeric vector, etc., and prokaryotic microorganisms such as Escherichia coli and Bacillus subtilis, yeasts, etc. A large amount of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 can be prepared by introducing it into any proliferative host selected from eukaryotic microorganisms, animal cells and the like.

前記化学合成法としては、例えば、トリエステル法、亜リン酸法などのような、液相法又は不溶性の担体を使った固相合成法などが挙げられる。前記化学合成法の場合、公知の自動合成機等を用い、1本鎖の前記配列番号:1で表される塩基配列を大量に調製した後、アニーリングを行うことにより、2本鎖前記配列番号:1で表される塩基配列を調製することができる。   Examples of the chemical synthesis method include a liquid phase method such as triester method and phosphorous acid method, or a solid phase synthesis method using an insoluble carrier. In the case of the chemical synthesis method, using a known automatic synthesizer or the like, a single-stranded base sequence represented by SEQ ID NO: 1 is prepared in large quantities, and then annealed to prepare a double-stranded SEQ ID NO: A base sequence represented by 1 can be prepared.

<使用>
本願発明において、加齢黄斑変性症の罹患性の難易は、前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーにより、被験体における、前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーが認識するCFH遺伝子のDNAのコピー数多型により判定することができる。即ち、前記DNAコピー数多型が、加齢黄斑変性症の発症の危険度が低い者では0コピー〜1コピーであり、加齢黄斑変性症の危険度が高い者では2コピー〜3コピーである。このDNAコピー数多型の違いにより、加齢黄斑変性症の罹患性の難易を判定することができる。
<Use>
In the present invention, the susceptibility difficulty of age-related macular degeneration is determined by the CFH recognized by the marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration in a subject by the marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration. It can be determined by the DNA copy number polymorphism of the gene. That is, the DNA copy number polymorphism is 0 to 1 copy for those with low risk of developing age-related macular degeneration, and 2 to 3 copies for those with high risk of age-related macular degeneration. is there. The difficulty of aging macular degeneration can be determined by the difference in the DNA copy number polymorphism.

前記DNAコピー数多型の決定及び加齢黄斑変性症の罹患の難易の判定は、後述する本発明の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法により行うことが好ましい。
なお、後述するとおり、前記DNAコピー数多型は、前記CFH遺伝子のDNAコピー数多型が既知である被験体との相対比による解析値であるため、0コピー〜3コピーはその解析値を示すものである。
The determination of the DNA copy number polymorphism and the determination of the difficulty of age-related macular degeneration are preferably performed by the age-related macular degeneration susceptibility determination method of the present invention described later.
As will be described later, since the DNA copy number polymorphism is an analysis value based on a relative ratio with a subject whose DNA copy number polymorphism of the CFH gene is known, 0 to 3 copies represent the analysis value It is shown.

<用途>
前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーは、著しい視力低下をきたす加齢黄斑変性症の発症及び進行を予測可能であるため、加齢黄斑変性症判定用に用いられる、DNAマイクロアレイ法、PCR法、インベーダーアッセイ等のPCR法によらない迅速DNA増幅法、塩基配列解析法などに好適に利用可能である。
<Application>
The age-related macular degeneration susceptibility determination marker is capable of predicting the onset and progression of age-related macular degeneration, which causes a significant decrease in visual acuity, and is therefore used for determining age-related macular degeneration, a DNA microarray method, It can be suitably used for rapid DNA amplification methods and base sequence analysis methods that do not depend on PCR methods such as PCR methods and invader assays.

(加齢黄斑変性症易罹患性判定方法)
本発明の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法は、測定工程と、DNAコピー数決定工程と、易罹患性判定工程と、を少なくとも含み、必要に応じて、更にその他の工程を含む。
(Method for determining susceptibility to age-related macular degeneration)
The age-related macular degeneration susceptibility determination method of the present invention includes at least a measurement step, a DNA copy number determination step, and an susceptibility determination step, and further includes other steps as necessary.

<測定工程>
前記測定工程は、被験体由来のDNA含有試料中の前記配列番号:1で表される塩基配列で特定されるCFH遺伝子の一部及び全部のいずれかに相補的な蛍光標識を有するプローブを、前記DNA含有試料中の前記CFH遺伝子にハイブリダイズさせ、前記蛍光標識により前記CFH遺伝子の発現を測定する工程である。
<Measurement process>
In the measurement step, a probe having a fluorescent label complementary to part or all of the CFH gene specified by the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the subject-containing DNA-containing sample, The step of hybridizing to the CFH gene in the DNA-containing sample and measuring the expression of the CFH gene by the fluorescent label.

−DNA含有試料−
前記DNA含有試料は、被験体由来の前記配列番号:1で表される塩基配列を有する領域を含むものである。
前記測定工程において、前記DNA含有試料は、予めDNAとして調製されたものであってもよく、被験体から採取してDNA調製から行ってもよい。
また、前記DNA含有試料は、DNAの代わりにDNAの転写産物であってもよく、これらの混合溶液であってもよい。
-DNA-containing sample-
The DNA-containing sample includes a region having a base sequence represented by SEQ ID NO: 1 derived from a subject.
In the measurement step, the DNA-containing sample may be prepared in advance as DNA, or may be collected from a subject and prepared from DNA.
The DNA-containing sample may be a DNA transcription product instead of DNA, or a mixed solution thereof.

前記DNA含有試料を前記被験体から採取する際に用いる被験体由来の試料としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、細胞、組織、血液、血球成分、リンパ液、毛髪などが挙げられる。これらは、1種単独で使用してもよく、2種以上を併用してもよい。これらの中でも、前記被験体由来の試料は、血液及びその分画である血球成分が、採取が簡便であるため好ましい。   There is no restriction | limiting in particular as a sample derived from the subject used when collecting the said DNA containing sample from the said subject, According to the objective, it can select suitably, For example, a cell, a structure | tissue, blood, a blood cell component, lymph fluid And hair. These may be used alone or in combination of two or more. Among these, the sample derived from the subject is preferable because blood and blood cell components which are fractions thereof are easy to collect.

前記被験体由来の試料からDNAを抽出する方法としては、特に制限はなく、公知の方法の中から、目的に応じて適宜選択することができる。
また、前記DNA含有試料は、前記抽出したDNAそのものであってもよく、前記配列番号:1で表される塩基配列を含む領域を予めPCRで増幅して得られた増幅産物であってもよい。
The method for extracting DNA from the sample derived from the subject is not particularly limited, and can be appropriately selected from known methods according to the purpose.
Further, the DNA-containing sample may be the extracted DNA itself, or may be an amplification product obtained by previously amplifying the region containing the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 by PCR. .

−プローブ−
前記プローブの塩基配列としては、前記配列番号:1で表される塩基配列で特定されるCFH遺伝子の一部及び全部のいずれかに相補的な配列であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記配列番号:1で表される塩基配列の一部に相補的な配列が好ましく、下記配列番号:4で表される塩基配列がより好ましい。
5’−GTGCAGCAGGCATACAAATCTG−3’ (配列番号:4)
-Probe-
The base sequence of the probe is not particularly limited as long as it is a sequence complementary to any or all of the CFH gene specified by the base sequence represented by SEQ ID NO: 1. However, a sequence complementary to a part of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 is preferable, and a base sequence represented by SEQ ID NO: 4 below is more preferable.
5′-GTGCAGCAGGGCATACAAATCTG-3 ′ (SEQ ID NO: 4)

前記プローブの蛍光標識としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、FAM、VIC、Cy3、Cy5、FITC、Texas Redなどが挙げられる。また、前記プローブは、蛍光標識の代わりに放射性標識を有するものであってもよいが、安全性の点で蛍光標識が好ましい。   There is no restriction | limiting in particular as a fluorescent label of the said probe, According to the objective, it can select suitably, For example, FAM, VIC, Cy3, Cy5, FITC, Texas Red etc. are mentioned. The probe may have a radioactive label instead of the fluorescent label, but a fluorescent label is preferable from the viewpoint of safety.

前記プローブを入手する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、合成する方法、市販品を用いる方法などが挙げられる。
前記市販品を用いる場合、例えば、TaqMan MGBプローブ(Copy Number Assays:アプライドバイオシステムズ社製)などを用いることができる。
There is no restriction | limiting in particular as a method to acquire the said probe, According to the objective, it can select suitably, For example, the method of synthesize | combining, the method of using a commercial item, etc. are mentioned.
When using the said commercial item, a TaqMan MGB probe (Copy Number Assays: the product made by Applied Biosystems) etc. can be used, for example.

−遺伝子発現の測定−
前記配列番号:1で表される塩基配列で特定されるCFH遺伝子の発現を測定する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、DNAマイクロアレイ法、PCR(polymerase chain reaction)法、インベーダーアッセイ、PCR−RETINA法(polymerase chain reaction−real−time invader assay)(特開2008−263974号公報参照)などが挙げられる。これらは、1種単独で使用してもよく、2種以上を併用してもよい。
これらの中でも、定量PCR法(qRT−PCR)が簡便に測定できる点で好ましく、リアルタイムPCR法がより好ましい。
-Measurement of gene expression-
The method for measuring the expression of the CFH gene specified by the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 is not particularly limited and may be appropriately selected depending on the intended purpose. For example, DNA microarray method, PCR ( Polymerase chain reaction) method, invader assay, PCR-RETINA method (refer to Japanese Patent Application Laid-Open No. 2008-263974) and the like. These may be used alone or in combination of two or more.
Among these, the quantitative PCR method (qRT-PCR) is preferable because it can be easily measured, and the real-time PCR method is more preferable.

前記リアルタイムPCR法は、前記プローブの蛍光強度をモニターすることで前記CFH遺伝子の発現を測定することができるが、該モニターする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、インターカレーター法、TaqMan法、サイクリングプローブ法(Molecular Beacon法)などが挙げられる。これらの中でも、TaqMan法やサイクリングプローブ法が、目的遺伝子であるCFH遺伝子に特異的なプローブを使用することにより極めて高い検出特異性を得ることができる点、また複数のプローブを用いたマルチカラー解析を行うことができる点で好ましい。   In the real-time PCR method, the expression of the CFH gene can be measured by monitoring the fluorescence intensity of the probe. However, the monitoring method is not particularly limited and may be appropriately selected according to the purpose. Examples thereof include an intercalator method, a TaqMan method, a cycling probe method (Molecular Beacon method), and the like. Among these, the TaqMan method and the cycling probe method can obtain extremely high detection specificity by using a probe specific to the target gene CFH gene, and multicolor analysis using a plurality of probes. It is preferable in that it can be performed.

前記TaqMan法で用いられるプローブは、前記配列番号:1で表される塩基配列の両端を蛍光物質と消光物質とで修飾した標的核酸の増幅領域にハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドであり、アニーリング時に前記CFH遺伝子にハイブリダイズするが消光物質の存在により蛍光を発せず、伸長反応時にDNAポリメラーゼのエキソヌクレアーゼ活性により分解されて蛍光物質が遊離することにより蛍光を発する。したがって、蛍光強度を測定することにより増幅産物の生成量をモニタリングすることができ、それによって元の鋳型DNA量を推定することができる。   The probe used in the TaqMan method is an oligonucleotide capable of hybridizing to an amplification region of a target nucleic acid in which both ends of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 are modified with a fluorescent substance and a quenching substance, Although it hybridizes to the CFH gene, it does not emit fluorescence due to the presence of a quenching substance, but emits fluorescence when it is decomposed by the exonuclease activity of DNA polymerase and liberated from the fluorescent substance during the extension reaction. Therefore, the amount of amplification product produced can be monitored by measuring the fluorescence intensity, thereby estimating the original template DNA amount.

前記定量PCRに用いるプライマー配列としては、前記配列番号:1で表される塩基配列を含むゲノム領域を増幅させることができれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
前記プライマー配列の塩基数としても、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、15塩基〜30塩基が好ましく、17塩基〜25塩基がより好ましく、18塩基〜22塩基が更に好ましい。また、ある程度長いゲノム領域において、複数のプローブを用いたマルチPCRを行う場合は、プライマー対は、同等の温度で鋳型DNAにアニーリング可能なように設計されることが好ましい。
The primer sequence used for the quantitative PCR is not particularly limited as long as it can amplify the genomic region containing the base sequence represented by SEQ ID NO: 1, and can be appropriately selected according to the purpose.
The number of bases in the primer sequence is not particularly limited and may be appropriately selected depending on the intended purpose, but is preferably 15 to 30 bases, more preferably 17 to 25 bases, and further 18 to 22 bases. preferable. In addition, when performing multi-PCR using a plurality of probes in a genomic region that is somewhat long, the primer pair is preferably designed so that it can be annealed to the template DNA at an equivalent temperature.

前記プライマー配列を設計する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、Primer Express ver 3.0ソフトウェア(アプライドバイオシステムズ社製)、遺伝子相同性探索プログラムBLASTなどを用いて設計する方法などが挙げられる。   The method for designing the primer sequence is not particularly limited and may be appropriately selected depending on the intended purpose. For example, Primer Express ver 3.0 software (Applied Biosystems), gene homology search program BLAST, etc. The method of designing using

これらの中でも、前記プライマー配列は、下記配列番号:2で表される塩基配列を有するプライマー配列をセンスプライマー配列として、また下記配列番号:3で表される塩基配列を有するプライマー配列をアンチセンスプライマー配列として用いることが好ましい。
5’−TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCT−3’ (配列番号:2)
5’−GCTTGCCACAAATAGTTACGAGATT−3’ (配列番号:3)
Among these, the primer sequence includes a primer sequence having a base sequence represented by SEQ ID NO: 2 as a sense primer sequence, and a primer sequence having a base sequence represented by SEQ ID NO: 3 as an antisense primer. It is preferable to use it as an array.
5′-TGTCTCAGGTGTATTGTTCTGTTGCT-3 ′ (SEQ ID NO: 2)
5′-GCTTGCCACAAATAGTTACGAGATT-3 ′ (SEQ ID NO: 3)

前記プライマーは、前記配列番号:2で表される塩基配列及び前記配列番号:3で表される塩基配列の1若しくは数個の塩基が欠失、置換、挿入された塩基配列からなるものであってもよい。
前記プライマーの入手方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、合成する方法、市販品を用いる方法などが挙げられる。
The primer consists of a base sequence represented by SEQ ID NO: 2 and a base sequence in which one or several bases of the base sequence represented by SEQ ID NO: 3 are deleted, substituted, or inserted. May be.
There is no restriction | limiting in particular as the acquisition method of the said primer, According to the objective, it can select suitably, For example, the method of synthesize | combining, the method of using a commercial item, etc. are mentioned.

前記定量PCRにおいて内部標準として用いる遺伝子としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、ハウスキーピング遺伝子が好ましい。
前記ハウスキーピング遺伝子としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、リボヌクレアーゼP(Ribonuclease P RNA:RNasa P)遺伝子、テロメラーゼ触媒サブユニット(telomerase reverse transriptase:TERT)遺伝子、18SリボソームRNA遺伝子、グリセルアルデヒド3−リン酸デヒドロゲナーゼ(GAPDH)遺伝子、β−アクチン遺伝子、シクロフィリン遺伝子などが挙げられる。
There is no restriction | limiting in particular as a gene used as an internal standard in the said quantitative PCR, Although it can select suitably according to the objective, A housekeeping gene is preferable.
The housekeeping gene is not particularly limited and may be appropriately selected depending on the intended purpose. Examples thereof include a ribonuclease P (Ribonase P RNA: RNasa P) gene, a telomerase reverse subunit (TERT) gene, Examples thereof include 18S ribosomal RNA gene, glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) gene, β-actin gene, cyclophilin gene and the like.

前記定量PCRにおいて、前記配列番号:1で表される塩基配列に対するプローブの蛍光標識と、前記ハウスキーピング遺伝子に対するプローブの蛍光標識とで異なる蛍光標識を用いることで、これらのPCR増幅量を区別して検出することができる。   In the quantitative PCR, by using different fluorescent labels for the fluorescent label of the probe for the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 and the fluorescent label of the probe for the housekeeping gene, these PCR amplification amounts are distinguished. Can be detected.

<DNAコピー数決定工程>
前記DNAコピー数決定工程は、前記測定工程で測定された蛍光強度から前記CFH遺伝子のDNAコピー数を決定する工程である。
前記測定工程が、定量PCRで行われる測定される場合、前記蛍光強度は、該蛍光強度が飽和に達するより前の時点における前記CFH遺伝子に対応する蛍光強度から前記CFH遺伝子のDNAコピー数を決定することが好ましい。
具体的には、前記測定工程において測定した前記配列番号:1で表される塩基配列に対するプローブにより測定された蛍光強度(以下、「CFH遺伝子蛍光強度」と称することがある。)と、前記ハウスキーピング遺伝子に対するプローブにおける蛍光強度(以下、「内部標準蛍光強度」と称することがある。)とを比較して、前記CFH遺伝子のDNAコピー数を決定することができる。
<DNA copy number determination step>
The DNA copy number determination step is a step of determining the DNA copy number of the CFH gene from the fluorescence intensity measured in the measurement step.
When the measurement step is performed by quantitative PCR, the fluorescence intensity is determined by determining the DNA copy number of the CFH gene from the fluorescence intensity corresponding to the CFH gene at a time before the fluorescence intensity reaches saturation. It is preferable to do.
Specifically, the fluorescence intensity measured by the probe with respect to the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 measured in the measurement step (hereinafter sometimes referred to as “CFH gene fluorescence intensity”) and the house. The number of DNA copies of the CFH gene can be determined by comparing the fluorescence intensity of the probe against the keeping gene (hereinafter sometimes referred to as “internal standard fluorescence intensity”).

前記蛍光強度を比較する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、一方の蛍光強度を縦軸に、他方の蛍光強度を横軸にしてグラフ上にプロットする方法、CFH遺伝子蛍光強度及び内部標準蛍光強度を数値化してこれらの計算値により比較する方法などが挙げられる。   The method for comparing the fluorescence intensities is not particularly limited and can be appropriately selected according to the purpose. For example, one fluorescence intensity is plotted on the vertical axis and the other fluorescence intensity is plotted on the horizontal axis on the graph. And a method in which the CFH gene fluorescence intensity and the internal standard fluorescence intensity are converted into numerical values and compared with these calculated values.

前記グラフ上にプロットする方法である場合、CFH遺伝子蛍光強度と、内部標準蛍光強度とのDNAコピー数の比が同じ被験体についてはグラフ上のある領域にプロットが集中(クラスター化)し、前記DNAコピー数の比が異なる被験体についてはグラフ上の異なる位置にプロットされる。   In the case of the method of plotting on the graph, for subjects with the same ratio of the DNA copy number between the CFH gene fluorescence intensity and the internal standard fluorescence intensity, the plot is concentrated (clustered) in a certain area on the graph, Subjects with different DNA copy number ratios are plotted at different locations on the graph.

前記蛍光強度を数値化する方法である場合、CFH遺伝子蛍光強度と、内部標準蛍光強度とのDNAコピー数が同じ被験体については近似した数値が与えられ、前記DNAコピー数が異なる被験体については異なる数値が与えられる。   In the case of the method for quantifying the fluorescence intensity, an approximate numerical value is given for a subject having the same DNA copy number of the CFH gene fluorescence intensity and the internal standard fluorescence intensity, and for a subject having a different DNA copy number. Different numbers are given.

ここで、前記配列番号:1で表される塩基配列のDNAコピー数多型が既知である被験体(以下、「リファレンス」と称することがある。)における蛍光強度と、未知である被験体(以下、「被験者」と称することがある。)における蛍光強度とを比較することにより、DNAコピー数の比を定量化することができる。
前記リファレンスとして用いるDNAとしては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、国際HapMapプロジェクトにおける日本人男性のDNA ID番号:NA19000などが挙げられる。
リファレンスのDNAコピー数をTaqMan法以外のマイクロアレイ法などで特定しておくことにより、TaqMan法で得られるDNAコピー数の相対値を絶対値に変換することができる。
Here, the fluorescence intensity in a subject whose DNA sequence number polymorphism of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 is known (hereinafter sometimes referred to as “reference”) and a subject ( Hereinafter, the ratio of the DNA copy number can be quantified by comparing the fluorescence intensity in “sometimes referred to as“ subject ””.
There is no restriction | limiting in particular as DNA used as said reference, According to the objective, it can select suitably, For example, DNA ID number: NA19000 of a Japanese male in an international HapMap project etc. are mentioned.
By specifying the reference DNA copy number by a microarray method other than the TaqMan method, the relative value of the DNA copy number obtained by the TaqMan method can be converted into an absolute value.

前記定量化方法としては、特に制限はなく、公知の統計学的手法の中から目的に応じて適宜選択することができ、例えば、相対解析法、検量線法、Livakらによるdelta−delta Ct(ΔΔCt)法(Legrand−Andreoletti M et al., Pharmacogenetics, 1998, 8(1), 7−14参照)などが挙げられる。これらの中でも、前記定量化方法は、ΔΔCtが簡便である点で好ましい。   There is no restriction | limiting in particular as said quantification method, According to the objective from the well-known statistical methods, it can select suitably, For example, relative analysis method, a calibration curve method, delta-delta Ct ( ΔΔCt) method (see Legrand-Andreoleti M et al., Pharmacogenetics, 1998, 8 (1), 7-14). Among these, the quantification method is preferable in that ΔΔCt is simple.

前記ΔΔCt法の概略を以下に示す。定量PCR法において、遺伝子が指数関数的に増幅している段階では、遺伝子分子数Nは、下記式1により表される。
N=N×(1+E) ・・・式1
前記式1において、「N」は初期分子数を表し、「E」は遺伝子増幅効率、「n」はPCRサイクル数を表す。
An outline of the ΔΔCt method is shown below. In the quantitative PCR method, at the stage where genes are amplified exponentially, the number N of gene molecules is expressed by the following formula 1.
N = N 0 × (1 + E) n ... Formula 1
In Formula 1, “N 0 ” represents the initial number of molecules, “E” represents gene amplification efficiency, and “n” represents the number of PCR cycles.

ここで、前記遺伝子増幅効率Eが、被験者のCFH遺伝子とリファレンスのCFH遺伝子との間で同様と仮定した場合、遺伝子増幅が飽和に達するより前の指数関数的増幅ステージにおける、ある遺伝子分子数Nを閾値とし、指数関数的な増幅曲線と、前記閾値との交わった点をCt値とすると、標的遺伝子の初期濃度は、2−ΔΔCt値として表される。このΔΔCtは、下記式2で表される。
ΔΔCt=(X−Y)−(X’−Y’) ・・・式2
前記式2において、「X」は、リファレンスの内部標準の蛍光強度のCt値を表し、「Y」はCtリファレンスのCFH遺伝子の蛍光強度のCt値を表し、「X’」は、被験者の内部標準の蛍光強度のCt値を表し、「Y’」は被験者のCFH遺伝子の蛍光強度のCt値を表す。
Here, assuming that the gene amplification efficiency E is the same between the subject CFH gene and the reference CFH gene, the number N of gene molecules in an exponential amplification stage before the gene amplification reaches saturation Is the threshold value, and the point at which the exponential amplification curve intersects the threshold value is the Ct value, the initial concentration of the target gene is expressed as a 2- ΔΔCt value. This ΔΔCt is expressed by the following formula 2.
ΔΔCt = (X−Y) − (X′−Y ′) Equation 2
In Formula 2, “X” represents the Ct value of the fluorescence intensity of the reference internal standard, “Y” represents the Ct value of the fluorescence intensity of the CFH gene of the Ct reference, and “X ′” The standard fluorescence intensity Ct value is represented, and “Y ′” represents the CFt gene fluorescence intensity Ct value of the subject.

前記被験者の2−ΔΔCt値を算出する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、加齢黄斑変性症に罹患しているか否かの質的因子と、DNAコピー数多型という量的因子との相関を、最尤度法に基づき解析するR環境のパッケージなどで算出する方法などが挙げられる。
具体的には、統計ソフトウェアR(ベル研究所で開発されたS言語に基づいたデータ解析用の環境)において動作可能なDNAコピー数多型解析用のCNV tools(Barnes C et al., Nat Genet, 2008, 40(10), 1245−1252参照)を用いた統計解析方法で算出することができる。前記CNV toolsは、オープンソースで入手可能である(http://cnv−tools.sourceforge.net/CNVtools.html)。
これにより、被験者のDNAコピー数多型を決定することができる。
The method for calculating the 2- ΔΔCt value of the subject is not particularly limited and can be appropriately selected according to the purpose. For example, a qualitative factor as to whether or not the subject suffers from age-related macular degeneration, Examples include a method of calculating a correlation with a quantitative factor called DNA copy number polymorphism using an R environment package for analyzing based on the maximum likelihood method.
Specifically, CNV tools (Barnes C et al., Nat Genet) for DNA copy number polymorphism analysis operable in statistical software R (an environment for data analysis based on S language developed at Bell Laboratories) , 2008, 40 (10), 1245-1252). The CNV tools are available in open source (http://cnv-tools.sourceforge.net/CNVtools.html).
Thereby, a test subject's DNA copy number polymorphism can be determined.

<易罹患性判定工程>
前記易罹患性判定工程は、前記DNAコピー数決定工程で決定されたDNAコピー数から加齢黄斑変性症の易罹患性を判定する工程である。
前記易罹患性の判定は、前記DNAコピー数を、1コピー単独で使用して判定してもよく、2コピー以上を組み合わせて判定してもよいが、2コピー以上を組み合わせて判定する方法が、判定の確立及び精度が向上する点で好ましい。
前記DNAコピー数の組合せとしては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、(A)0コピー及び1コピーと、(B)2コピー及び3コピーとの組合せ、並びに、(C)0コピー〜2コピーと、(D)3コピーとの組合せのいずれかが好ましい。
前記組合せにおいて、前記(B)及び前記(D)のいずれかである場合に加齢黄斑変性症に易罹患性であると判断することができる。
<Susceptibility determination process>
The susceptibility determination step is a step of determining susceptibility of age-related macular degeneration from the DNA copy number determined in the DNA copy number determination step.
The determination of the susceptibility may be performed by determining the number of DNA copies by using one copy alone or by combining two or more copies. This is preferable in that the establishment and accuracy of determination are improved.
The combination of the number of DNA copies is not particularly limited and may be appropriately selected according to the purpose. (A) A combination of 0 and 1 copy, (B) 2 and 3 copies, and Any combination of (C) 0-2 copies and (D) 3 copies is preferred.
In the combination, when it is either (B) or (D), it can be determined that the patient is susceptible to age-related macular degeneration.

前記DNAコピー数の組合せが易罹患性の判定に有効か否かを検定する方法としては、特に制限はなく、公知の統計学的手法の中から目的に応じて適宜選択することができ、例えば、カイ二乗検定法、Fisher正確検定法、オッズ比を算出する方法、p値を算出する方法などが挙げられる。これらは、1種単独で使用してもよく、2種以上を併用してもよいが、2種以上を併用することが、確立及び精度が高くなる点で好ましい。   The method for testing whether or not the combination of the DNA copy numbers is effective in determining susceptibility is not particularly limited and can be appropriately selected from known statistical methods according to the purpose. , Chi-square test method, Fisher exact test method, method for calculating odds ratio, method for calculating p-value, and the like. These may be used individually by 1 type, and may use 2 or more types together, but using 2 or more types together is preferable at the point that establishment and precision become high.

<その他の工程>
前記その他の工程としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、CFH遺伝子の一塩基多型(以下、「SNP」と称することがある。)を解析するSNP解析工程を含むことが好ましい。
前記易罹患性判定工程において、前記DNAコピー数の組合せで判定する方法に加え、更にCFH遺伝子のSNPを組み合わせて判定を行うことにより、更に判定の確立及び精度を向上させることができる点で好ましい。
<Other processes>
There is no restriction | limiting in particular as said other process, Although it can select suitably according to the objective, The SNP analysis process which analyzes the single nucleotide polymorphism (henceforth "SNP" may be called hereafter) of a CFH gene. It is preferable to contain.
In the susceptibility determination step, in addition to the method of determining by the combination of the DNA copy number, it is preferable in that the determination can be further established and accuracy can be improved by further determining by combining the SNP of the CFH gene. .

前記CFH遺伝子のSNPとしては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、以下の(1)〜(3)に示すSNPなどが挙げられる。
(1)エクソン2の蛋白質62番目のイソロイシンがバリンへ変異したアミノ酸変異(I62V)を伴うSNP:rs800292(以下、「SNP1」と称することがある。)。
(2)エクソン9の蛋白質402番目のチロシンがヒスチジンに変異したアミノ酸変異(Y402H)を伴うSNP:rs1061170(以下、「SNP2」と称することがある。)。
(3)イントロン14のSNP:rs1410996(以下、「SNP3」と称することがある。)。
There is no restriction | limiting in particular as SNP of the said CFH gene, According to the objective, it can select suitably, For example, SNP shown in the following (1)-(3) etc. are mentioned.
(1) SNP: rs8000029 with an amino acid mutation (I62V) in which the 62nd isoleucine of exon 2 protein is mutated to valine (hereinafter sometimes referred to as “SNP1”).
(2) SNP: rs1061170 (hereinafter sometimes referred to as “SNP2”) with an amino acid mutation (Y402H) in which the protein 402 tyrosine of exon 9 is mutated to histidine.
(3) SNP of intron 14: rs1410996 (hereinafter sometimes referred to as “SNP3”).

前記SNPを解析する方法としては、特に制限はなく、公知の方法の中から、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、Mori K et al., Invest Ophthalmol Vis Sci, 2007, 48(11), 5315−5319に記載の方法や、特表2008−529536号公報に記載の方法などが挙げられる。   The method for analyzing the SNP is not particularly limited and can be appropriately selected from known methods according to the purpose. For example, Mori K et al. , Invest Ophthalmol Vis Sci, 2007, 48 (11), 5315-5319, and the method described in Japanese translations of PCT publication No. 2008-529536.

<用途>
前記加齢黄斑変性症易罹患性判定方法は、後述する本発明の加齢黄斑変性症易罹患性判定用キットに好適に利用可能である。
本発明の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法によれば、加齢黄斑変性症の発症及び進行を予測可能であり、これにより発症の危険度が高い人に関しては、より頻回に眼科検査を受けることにより加齢黄斑変性症の早期予防が可能となり、加齢黄斑変性症を既に発症した患者に対しては、最適な薬剤治療法の選択が可能となる。
<Application>
The age-related macular degeneration susceptibility determination method can be suitably used in the age-related macular degeneration susceptibility determination kit of the present invention described later.
According to the method for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to the present invention, the onset and progression of age-related macular degeneration can be predicted. By receiving this, it becomes possible to prevent age-related macular degeneration at an early stage, and for patients who have already developed age-related macular degeneration, it is possible to select an optimal drug treatment method.

(加齢黄斑変性症易罹患性判定用キット)
本発明の加齢黄斑変性症易罹患性判定用キットの第1の態様としては、本発明の加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーを少なくとも含み、必要に応じて、更に基板、蛍光標識、放射性標識、結合剤、内部標準マーカー、リファレンスゲノムDNA、プレート、ハイブリダイゼーション溶液、容器、使用説明書などのその他の要素を含む。
本発明の加齢黄斑変性症易罹患性判定用キットの第2の態様としては、前記配列番号:2で表される塩基配列を有するプライマー及び前記配列番号:3で表される塩基配列を有するプライマーと、前記配列番号:4で表される塩基配列を有するプローブとを少なくとも含み、必要に応じて、更に蛍光標識、放射性標識、内部標準マーカー、リファレンスゲノムDNA、酵素、PCR用バッファー、容器、使用説明書などのその他の要素を含む。
これらのキットは、被験体由来のDNA含有試料を用い、簡便に加齢黄斑変性症の罹患の難易を判定することができるものである。
(Aged macular degeneration susceptibility determination kit)
The first aspect of the kit for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to the present invention includes at least the marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to the present invention. , Radiolabels, binding agents, internal standard markers, reference genomic DNA, plates, hybridization solutions, containers, other elements such as instructions for use.
As a second aspect of the kit for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to the present invention, the kit having the base sequence represented by SEQ ID NO: 2 and the base sequence represented by SEQ ID NO: 3 is used. At least a primer and a probe having the base sequence represented by SEQ ID NO: 4, and if necessary, a fluorescent label, a radioactive label, an internal standard marker, a reference genomic DNA, an enzyme, a PCR buffer, a container, Includes other elements such as instructions for use.
These kits can easily determine the morbidity of age-related macular degeneration using a sample-containing DNA-containing sample.

<第1の態様>
前記第1の態様の加齢黄斑変性症易罹患性判定用キットの形態としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、DNAマイクロアレイ、インベーダーアッセイなどが挙げられる。
前記DNAマイクロアレイは、基板上に前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカー及び内部標準マーカーが整列してなり、前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーが、前記DNA含有試料中のCFH遺伝子又はその転写産物(以下、「標的試料」と称することがある。)と結合し、前記CFH遺伝子の発現と、内部標準マーカーの遺伝子発現とをモニタリングすることを特徴とする。
<First aspect>
There is no restriction | limiting in particular as a form of the age-related macular degeneration susceptibility determination kit of the said 1st aspect, According to the objective, it can select suitably, For example, a DNA microarray, an invader assay, etc. are mentioned.
In the DNA microarray, the age-related macular degeneration susceptibility determination marker and an internal standard marker are aligned on a substrate, and the age-related macular degeneration susceptibility determination marker is included in the DNA-containing sample. It binds to a CFH gene or a transcription product thereof (hereinafter sometimes referred to as “target sample”), and monitors the expression of the CFH gene and the gene expression of an internal standard marker.

前記基板としては、特に制限はなく、公知の材料の中から目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ガラス、樹脂などが挙げられる。
前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーは、前記基板上に整列固定されてなり、この固定された加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーと、標的試料とのハイブリダイゼーションを行い、高感度で標的DNA断片を検出する。
There is no restriction | limiting in particular as said board | substrate, According to the objective, it can select suitably from well-known materials, For example, glass, resin, etc. are mentioned.
The age-related macular degeneration susceptibility determination marker is aligned and fixed on the substrate, and this fixed age-related macular degeneration susceptibility determination marker is hybridized with a target sample, Detects target DNA fragments with high sensitivity.

前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーと、標的試料とで形成されたハイブリッドの検出手段としては、特に制限はなく、公知の手段の中から目的に応じて適宜選択することができ、例えば、標的試料に予め結合させた蛍光標識若しくは放射性標識を利用する方法、前記ハイブリッドに取り込まれる蛍光発生基若しくは導電性基を有するインターカレーターを利用する方法などが挙げられる。   The detection means for the hybrid formed with the age-related macular degeneration susceptibility determination marker and the target sample is not particularly limited and can be appropriately selected from known means according to the purpose. For example, a method using a fluorescent label or a radioactive label previously bound to a target sample, a method using an intercalator having a fluorogenic group or a conductive group incorporated in the hybrid, and the like can be mentioned.

前記DNAマイクロアレイの製造方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記基材表面において直接前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーを合成する方法(オン・チップ法)、予め別に調製した加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーを前記基材表面に固定する方法などが挙げられる。   The method for producing the DNA microarray is not particularly limited and may be appropriately selected depending on the intended purpose. For example, a method for synthesizing the age-related macular degeneration susceptibility determination marker directly on the substrate surface ( On-chip method), a method of fixing a marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration separately prepared on the substrate surface, and the like.

前記オン・チップ法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、光照射で選択的に除去される保護基の使用と、半導体製造に利用されるフォトリソグラフィー技術及び固相合成技術とを組み合わせて、微小なマトリックスの所定の領域での前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーの選択的合成を行う方法などが挙げられる。   The on-chip method is not particularly limited and can be appropriately selected depending on the purpose. For example, use of a protective group that is selectively removed by light irradiation, and photolithography technology used for semiconductor production And a method of selectively synthesizing the age-related macular degeneration susceptibility marker in a predetermined region of a minute matrix in combination with a solid phase synthesis technique.

予め調製した前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーを前記基材表面に固定する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、スポッターを用いる方法などが挙げられる。
具体的には、まず、マイクロプレートに前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーを調製する。また、前記基板表面にpoly−l−Lysine等の前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーと前記基板との結合剤をコ−ティングする。この後、前記マイクロプレート中の前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーをピンに付着させ、表面に結合剤をコーティングした基板上に、スポッター等を用いてピンに付着させた前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーを接触させてスポットする。マイクロプレート中の全ての前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーをスポットし終わるまでこの作業を繰り返し、DNAマイクロアレイを製造する。
The method for fixing the age-related macular degeneration susceptibility determination marker prepared in advance to the surface of the base material is not particularly limited and can be appropriately selected depending on the purpose. For example, a method using a spotter Etc.
Specifically, first, the marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration is prepared on a microplate. Moreover, the binder for the age-related macular degeneration susceptibility determination marker such as poly-1-Lysine and the substrate is coated on the substrate surface. Thereafter, the marker for determining the susceptibility to age-related macular degeneration in the microplate is attached to a pin, and the addition applied to the pin using a spotter or the like on a substrate whose surface is coated with a binder. Spot with age-related macular degeneration susceptibility determination marker in contact. This operation is repeated until all the markers for susceptibility to age-related macular degeneration in the microplate have been spotted to produce a DNA microarray.

前記DNAマイクロアレイと、標的試料とをハイブリダイゼーションする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーを基板上に固定させたDNAマイクロアレイと、蛍光物質で標識した被験体由来のDNA断片とを、ともにハイブリダイゼーション溶液に入れてハイブリダイズさせる方法などが挙げられる。
前記ハイブリダイゼーション溶液としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ホルムアルデヒド、SSC、SDS、EDTA(ethylenediamidetetraacetic acid)、蒸留水、及びこれらの混合溶液などが挙げられる。
前記ハイブリダイゼーション溶液の混合比率としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
The method for hybridizing the DNA microarray and the target sample is not particularly limited and can be appropriately selected according to the purpose. For example, the marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration is formed on a substrate. Examples thereof include a method in which a fixed DNA microarray and a DNA fragment derived from a subject labeled with a fluorescent substance are both hybridized in a hybridization solution.
There is no restriction | limiting in particular as said hybridization solution, According to the objective, it can select suitably, For example, formaldehyde, SSC, SDS, EDTA (ethylethylenetetraacetic acid), distilled water, these mixed solutions, etc. are mentioned.
There is no restriction | limiting in particular as a mixing ratio of the said hybridization solution, According to the objective, it can select suitably.

前記ハイブリダイゼーションにより、標的試料と、前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーとが相補鎖DNAであれば、両者は二重らせん構造をとり結合することができる。
一方、両者が相補鎖でなければ結合することはなく、蛍光物質で標識したDNA含有試料は、そのままハイブリダイゼーション溶液に残留するか、その一部は基板上にコーティングされている結合剤と結合し残る場合もある。
If the target sample and the marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration are complementary DNAs by the hybridization, both can take a double helix structure and bind to each other.
On the other hand, if the two are not complementary strands, they will not bind, and the DNA-containing sample labeled with a fluorescent substance will remain in the hybridization solution as it is, or part of it will bind to the binding agent coated on the substrate. It may remain.

ハイブリダイズせず前記基板上に残った蛍光物質で標識したDNA含有試料は、洗浄することが好ましい。前記洗浄の方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記基板をそのまま水槽等の中に入れて洗浄する方法などが挙げられる。これにより、前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーと結合していないDNA含有試料は排除される。   It is preferable to wash the DNA-containing sample labeled with a fluorescent substance that has not hybridized and remains on the substrate. There is no restriction | limiting in particular as the said washing | cleaning method, According to the objective, it can select suitably, For example, the method etc. which put the said board | substrate in a water tank etc. as it is, etc. are mentioned. Thereby, the DNA containing sample which is not couple | bonded with the marker for the said age-related macular degeneration susceptibility determination is excluded.

前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーと結合している標的試料を検出する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、標的試料に標識した蛍光物質を、所定の光源からの光エネルギーで励起させ、蛍光物質が励起して発光する光をCCDなどの光センサーで検出する方法などが挙げられる。   The method for detecting a target sample bound to the age-related macular degeneration susceptibility determination marker is not particularly limited and may be appropriately selected depending on the intended purpose. For example, fluorescence labeled on the target sample Examples include a method in which a substance is excited by light energy from a predetermined light source, and light emitted from the fluorescent substance is detected by a photosensor such as a CCD.

前記加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーと、標的試料とのハイブリダイズによる蛍光強度と、内部標準マーカーと被験体由来のDNA断片との蛍光強度とを比較することにより、被験体におけるCFH遺伝子のDNAコピー数多型を決定し、加齢黄斑変性症の罹患の難易を判定することができる。   By comparing the fluorescence intensity by hybridization with the age-related macular degeneration susceptibility marker and the target sample, and the fluorescence intensity of the internal standard marker and the DNA fragment derived from the subject, CFH in the subject By determining the DNA copy number polymorphism of the gene, it is possible to determine the difficulty of suffering from age-related macular degeneration.

<第2の態様>
前記第2の態様の加齢黄斑変性症易罹患性判定用キットは、PCR法、インベーダーアッセイなどで加齢黄斑変性症の罹患の難易を判定することができる。
<Second aspect>
The kit for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to the second aspect can determine the difficulty of afflicting age-related macular degeneration by a PCR method, an invader assay, or the like.

前記第2の態様の加齢黄斑変性症易罹患性判定用キットにおいて、前記プライマー及び前記プローブは、乾燥した状態であってもよく、溶液の状態であってもよい。前記プライマー及び前記プローブが溶液の状態である場合、該溶液としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、水、エタノールなどが挙げられる。
前記プライマー及びプローブは、使用時に適宜前記溶液により所望の濃度に調製して用いることができる。
前記プライマー及びプローブの濃度としては、特に制限はなく、反応条件などに応じて適宜選択することができる。
前記プローブは、蛍光標識若しくは放射性標識を有するものが好ましく、蛍光標識を有するものが安全性が高い点で好ましい。
In the kit for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to the second aspect, the primer and the probe may be in a dry state or in a solution state. When the primer and the probe are in a solution state, the solution is not particularly limited and may be appropriately selected depending on the intended purpose. Examples thereof include water and ethanol.
The primer and the probe can be appropriately used at the desired concentration with the solution at the time of use.
There is no restriction | limiting in particular as the density | concentration of the said primer and probe, According to reaction conditions etc., it can select suitably.
The probe preferably has a fluorescent label or a radioactive label, and a probe having a fluorescent label is preferable in terms of high safety.

前記PCR法及びインベーダーアッセイは、標的試料に前記プローブを結合させ、該標的試料を増幅させ、前記標識の強度により前記CFH遺伝子の発現をモニタリングすることを特徴とする。このとき、同時に内部標準マーカーの遺伝子発現をモニタリングすることが好ましい。   The PCR method and the invader assay are characterized in that the probe is bound to a target sample, the target sample is amplified, and the expression of the CFH gene is monitored based on the intensity of the label. At this time, it is preferable to simultaneously monitor the gene expression of the internal standard marker.

前記第2の態様の加齢黄斑変性症易罹患性判定用キットの使用方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、本発明の前記加齢黄斑変性症易罹患性判定方法を用いることが好ましい。   A method for using the kit for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to the second aspect is not particularly limited and may be appropriately selected depending on the purpose. It is preferable to use a susceptibility determination method.

<用途>
前記加齢黄斑変性症易罹患性判定キットは、加齢黄斑変性症の発症及び進行を予測するための診断キットとして好適に利用可能である。
これにより、発症の危険度が高い人に関してはより頻回に眼科検査を受けることにより加齢黄斑変性症の早期予防が可能となり、また、加齢黄斑変性症を既に発症した患者に対しては、最適な薬剤治療法の選択が可能となる。
<Application>
The age-related macular degeneration susceptibility determination kit can be suitably used as a diagnostic kit for predicting the onset and progression of age-related macular degeneration.
This enables early prevention of age-related macular degeneration by taking ophthalmic examinations more frequently for people at high risk of onset, and for patients who have already developed age-related macular degeneration. This makes it possible to select an optimal drug treatment method.

以下に本発明の実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に何ら限定されるものではない。   EXAMPLES The present invention will be specifically described below with reference to examples of the present invention, but the present invention is not limited to these examples.

(実施例1)
<DNAコピー数多型解析方法>
<<DNA採取工程>>
埼玉医科大学倫理委員会の承認の下、埼玉医科大学病院眼科に受診した加齢黄斑変性症罹患者(以下、「AMD罹患者群」と称することがある。)男女195名と、眼底疾患を有さない非罹患者(以下、「対照群」と称することがある。)男女130名より、血液を採取し、DNAサンプルをWizard Genomic DNA Purification Kit(プロメガ社製)を用いて精製した。
(Example 1)
<DNA copy number polymorphism analysis method>
<< DNA collection process >>
Under the approval of Saitama Medical University Ethics Committee, 195 men and women with age-related macular degeneration (hereinafter referred to as “AMD affected group”) who visited Saitama Medical University Hospital Ophthalmology Blood was collected from 130 male and female non-affected individuals (hereinafter sometimes referred to as “control group”), and DNA samples were purified using Wizard Genomic DNA Purification Kit (Promega).

<<測定工程>>
DNAコピー数多型(以下、「CNV」と称することがある。)の解析には、TaqMan(登録商標) Copy Number Assays(アプライドバイオシステムズ社製)を販売元のインターネットホームページに記載の方法に従いCustom−madeで作製したものを用いた。
染色体1番、cytoband 1q31.3のCFH遺伝子(RefSeqデータベースID:NM_00186)に対するTaqMan MGBプローブ(Copy Number Assays:アプライドバイオシステムズ社製)は、5’末端がFAMにて蛍光標識されており、内部標準として用いたRNase P(Ribonuclease P RNA component H1(H1RNA) gene (RPPH1) on chromosome 14, cytoband 14q11.2)遺伝子に対するTaqMan MGBプローブ(Copy Number Assays:アプライドバイオシステムズ社製)は、5’がVICにて蛍光標識されているため、PCR増幅量を区別して検出することが可能である。
<< Measurement process >>
For the analysis of DNA copy number polymorphism (hereinafter, sometimes referred to as “CNV”), TaqMan (registered trademark) Copy Number Assays (manufactured by Applied Biosystems Co., Ltd.) is customized according to the method described on the Internet homepage of the distributor. What was produced by -made was used.
The TaqMan MGB probe (Copy Number Assays: Applied Biosystems) for the CFH gene of chromosome 1 and cytoband 1q31.3 (RefSeq database ID: NM_00186) is fluorescently labeled at the 5 ′ end with FAM, and is an internal standard. RNase P (Ribonuclease P RNA component H1 (H1RNA) gene (RPPH1) on chromosome 14, cytoband 14q11.2) gene used as the RNase P (Copy Number Assemblies manufactured by Copy Number Assays: 5 manufactured by Copy Number Assays) Since it is fluorescently labeled, it is possible to distinguish and detect the PCR amplification amount.

前記CFH遺伝子に対して特異的なTaqMan MGBプローブ及びPCRプライマーは、Primer Express ver 3.0ソフトウェア(アプライドバイオシステムズ社製)及び遺伝子相同性探索プログラムBLASTを用いて、定量的PCR用に最適化したものを、CFH遺伝子9番イントロン上(短型CFH遺伝子 NM_001014975では3’下流領域)に設計した。前記TaqMan MGBプローブは、下記配列番号:4で表される塩基配列であり、前記PCRプライマーは、下記配列番号:2及び下記配列番号:3で表される塩基配列である。
[センスプライマー]
5’−TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCT−3’ (配列番号:2)
[アンチセンスプライマー]
5’−GCTTGCCACAAATAGTTACGAGATT−3’ (配列番号:3)
[プローブ]
5’−GTGCAGCAGGCATACAAATCTG−3’ (配列番号:4)
TaqMan MGB probes and PCR primers specific for the CFH gene were optimized for quantitative PCR using Primer Express ver 3.0 software (Applied Biosystems) and gene homology search program BLAST. The one was designed on the 9th intron of the CFH gene (3 ′ downstream region in the short CFH gene NM_001014975). The TaqMan MGB probe has a base sequence represented by SEQ ID NO: 4 below, and the PCR primer has a base sequence represented by SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3 below.
[Sense primer]
5′-TGTCTCAGGTGTATTGTTCTGTTGCT-3 ′ (SEQ ID NO: 2)
[Antisense primer]
5′-GCTTGCCACAAATAGTTACGAGATT-3 ′ (SEQ ID NO: 3)
[probe]
5′-GTGCAGCAGGGCATACAAATCTG-3 ′ (SEQ ID NO: 4)

前記PCRプライマーにより増幅されるCFH遺伝子の塩基配列は、下記配列番号:1で表される塩基配列であり、PCRの増幅産物の長さは、74塩基対(bp)である。
また、前記PCRプライマーと、それに挟まれる領域のTaqMan MGBプローブ位置は、ゲノムデータのバージョンとしてNCBI Build 36(hg 18)において、chr1:194937326−194937399(NCBI Build 35では、chr1:193402360−193402433)に相当し、下記に示すとおりである。
[増幅産物]
5’−TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCTgtgcagcaggcatacaaatctgacAATCTCGTAACTATTTGTGGCAAGC−3’ (配列番号:1)
前記配列番号:1で表される塩基配列において、大文字は、PCRプライマー部位を示し、下線部は、解析用TaqMan MGBプローブ相当部位を示す。
The base sequence of the CFH gene amplified by the PCR primer is the base sequence represented by SEQ ID NO: 1, and the length of the PCR amplification product is 74 base pairs (bp).
Further, the TaqMan MGB probe position of the PCR primer and the region sandwiched between the PCR primer and the genomic data version is NCBI Build 36 (hg 18) in chr1: 194937326-1994937399 (in NCBI Build 35, chr1: 193402360-19340433) Correspondingly, as shown below.
[Amplification product]
5′-TGTCTCAGGTGTATTGTTCTGTGTGCT gtgcaggcaggcatacaataattct acAATCTCGTAACTATTTGTGGCAGGC-3 ′ (SEQ ID NO: 1)
In the base sequence represented by SEQ ID NO: 1, the capital letters indicate PCR primer sites, and the underlined portions indicate sites equivalent to the TaqMan MGB probe for analysis.

PCRは、7900HT Fast Real−time PCR System(アプライドバイオシステムズ社製)により、384ウエルプレートを用いて行った。1反応における反応系は、表1に示すとおりであり、1サンプルにつき、3回実験を反復した。また、PCR温度プロトコールとしては、表2に示すとおりである。   PCR was performed using a 384 well plate by 7900HT Fast Real-time PCR System (Applied Biosystems). The reaction system in one reaction is as shown in Table 1, and the experiment was repeated three times for each sample. The PCR temperature protocol is as shown in Table 2.

<<DNAコピー数決定工程>>
CFH遺伝子発現量は、内部標準として同じ反応系において共増幅したRNase P遺伝子発現量との相対値から、ΔΔCt法を用いて決定した。
また、CFH遺伝子のDNAコピー数が既知のリファレンスDNAとしては、国際HapMapプロジェクトにおける日本人男性のDNA ID番号:NA19000を用いた。
遺伝子が指数関数的に増幅しているステージにおいて、遺伝子分子数Nは、下記式1により表される。
N=N×(1+E) ・・・式1
前記式1において、「N」は初期分子数を表し、「E」は遺伝子増幅効率、「n」はPCRサイクル数を表す。
<< DNA copy number determination process >>
The CFH gene expression level was determined using the ΔΔCt method from the relative value with the RNase P gene expression level co-amplified in the same reaction system as an internal standard.
Further, as a reference DNA having a known DNA copy number of the CFH gene, DNA ID number NA19000 of a Japanese male in the international HapMap project was used.
In the stage where the gene is amplified exponentially, the number N of gene molecules is expressed by the following formula 1.
N = N 0 × (1 + E) n ... Formula 1
In Formula 1, “N 0 ” represents the initial number of molecules, “E” represents gene amplification efficiency, and “n” represents the number of PCR cycles.

遺伝子増幅効率Eが、CFH遺伝子と、RNase P遺伝子とで同様と仮定すると、CFH遺伝子の初期濃度は、指数関数的増幅ステージにおけるある閾値と、増幅曲線との交わった点であるCt値を用いて、2−ΔΔCt値として表され、ΔΔCtは、下記式2で表される。
ΔΔCt=(X−Y)−(X’−Y’) ・・・式2
前記式2において、「X」は、リファレンスDNAにおけるRNase P遺伝子の蛍光強度のCt値を表し、「Y」は、リファレンスDNAにおけるCFH遺伝子の蛍光強度のCt値を表し、「X’」は、対照群又はAMD罹患者群におけるRNase P遺伝子の蛍光強度のCt値を表し、「Y’」は対照群又はAMD罹患者群におけるCFH遺伝子の蛍光強度のCt値を表す。
Assuming that the gene amplification efficiency E is the same for the CFH gene and the RNase P gene, the initial concentration of the CFH gene uses a Ct value that is a point where an amplification curve intersects with a certain threshold in the exponential amplification stage. 2− ΔΔCt value, and ΔΔCt is expressed by the following equation 2.
ΔΔCt = (X−Y) − (X′−Y ′) Equation 2
In Formula 2, “X” represents the Ct value of the fluorescence intensity of the RNase P gene in the reference DNA, “Y” represents the Ct value of the fluorescence intensity of the CFH gene in the reference DNA, and “X ′” represents The Ct value of the fluorescence intensity of the RNase P gene in the control group or the AMD affected group is represented, and “Y ′” represents the Ct value of the fluorescence intensity of the CFH gene in the control group or the AMD affected group.

サンプルの2−ΔΔCt値は、統計ソフトウェアRに含まれるDNAコピー数多型解析用のCNV tools(Barnes C et al., Nat Genet, 2008, 40(10), 1245−1252参照)を用いて統計解析を行い、DNAコピー数を、0コピー、1コピー、2コピー、及び3コピーのいずれかに決定した。 The 2- ΔΔCt value of the sample is statistically determined using CNV tools (see Barnes C et al., Nat Genet, 2008, 40 (10), 1245-1252) for DNA copy number polymorphism analysis included in the statistical software R. Analysis was performed, and the number of DNA copies was determined as one of 0 copy, 1 copy, 2 copies, and 3 copies.

<<易罹患性判定工程>>
AMD罹患者群及び対照群において、DNAコピー数多型の違いによるグループ分けを行い、カイ二乗検定による加齢黄斑変性の罹患の難易との相関解析を行った。また、オッズ比(以下、「OR」と称することがある)及びp値による有意差検定を行った。
<< Susceptibility determination process >>
In the AMD affected group and the control group, grouping was performed based on differences in DNA copy number polymorphism, and correlation analysis with difficulty of age-related macular degeneration was performed by chi-square test. In addition, a significant difference test was performed using an odds ratio (hereinafter sometimes referred to as “OR”) and a p-value.

<結果>
AMD罹患者群及び対照群の全人数における各DNAコピー数(以下、「CN」と称することがある。)の人数分布を表3に、AMD罹患者群及び対照群別の各DNAコピー数の人数分布を表4に示す。また、DNAコピー数によりグループ分けを行った場合のAMD罹患者群と、対照群との間の有意差検定の結果を表5及び表6に示す。
なお、DNAコピー数が0コピー及び1コピーの場合を、以下「グループA」と、DNAコピー数が2コピー及び3コピーの場合を、以下「グループB」と、DNAコピー数が0コピー〜2コピーの場合を、以下「グループC」と、DNAコピー数が3コピーの場合を、以下「グループC」と称することがある。
<Result>
Table 3 shows the number distribution of each DNA copy number (hereinafter sometimes referred to as “CN”) in the total number of persons suffering from AMD and the control group. Table 4 shows the number distribution. Tables 5 and 6 show the results of a significant difference test between the AMD affected group and the control group when grouping was performed based on the number of DNA copies.
When the number of DNA copies is 0 and 1 copy, hereinafter “Group A”, when the number of DNA copies is 2 and 3 copies, hereinafter “Group B” and the number of DNA copies is 0 to 2 copies. The case of copying is hereinafter referred to as “group C”, and the case of 3 DNA copies is hereinafter referred to as “group C”.

カイ二乗検定により、AMD罹患者群と、対照群との間のCN値分布には有意差が認められた。
カイ二乗値=19.741
自由度=3
p値=1.921×10−4
By the chi-square test, a significant difference was observed in the CN value distribution between the AMD affected group and the control group.
Chi-square value = 19.741
Degrees of freedom = 3
p value = 1.921 × 10 −4

p値=8.847×10−4
OR=3.219909(95%信頼区間 1.541794〜6.987238)
p value = 8.847 × 10 −4
OR = 3.219909 (95% confidence interval 1.541794 to 6.987238)

p値=6.213×10−5
OR=2.616746(95%信頼区間 1.606671〜4.288098)
p value = 6.213 × 10 −5
OR = 2.616746 (95% confidence interval 1.606671-4.288098)

表5より、DNAコピー数が0コピー及び1コピーの場合(グループA)と、DNAコピー数が2コピー及び3コピーの場合(グループB)とのグループ分けにおける加齢黄斑変性症の罹患と、DNAコピー数との相関性は有意であり、AMD罹患者群において、グループBにおけるオッズ比(OR)は、約3.2倍(95%信頼区間 1.5〜7.0)に期待された。
表6より、DNAコピー数が0コピー〜2コピーの場合(グループC)と、DNAコピー数が3コピーの場合(グループD)とのグループ分けにおける加齢黄斑変性症の罹患と、DNAコピー数との相関性も有意であり、AMD罹患者群において、DNAコピー数が3のオッズ比(OR)は、約2.6倍(95%信頼区間 1.6〜4.3)に期待された。
これらの結果より、オッズ比の点では、グループA及びBの組合せが好ましく、p値の点では、グループC及びDの組合せが好ましいことがわかった。
From Table 5, the incidence of age-related macular degeneration in the grouping of DNA copy number 0 and 1 copy (Group A) and DNA copy number 2 and 3 copies (Group B), The correlation with the DNA copy number was significant, and in the AMD affected group, the odds ratio (OR) in group B was expected to be about 3.2 times (95% confidence interval 1.5 to 7.0). .
From Table 6, the age of macular degeneration and the DNA copy number in the grouping of the DNA copy number from 0 to 2 copies (Group C) and the DNA copy number from 3 copies (Group D) The odds ratio (OR) with a DNA copy number of 3 was expected to be about 2.6 times (95% confidence interval 1.6 to 4.3) in the AMD affected group. .
From these results, it was found that the combination of groups A and B was preferable in terms of odds ratio, and the combination of groups C and D was preferable in terms of p value.

(実施例2)
実施例2では、実施例1におけるグループA及びBと、CFH遺伝子のSNPを用いた解析とを組み合わせてAMDの罹患の難易の相関解析を行った。
(Example 2)
In Example 2, correlation analysis of the difficulty of AMD was performed by combining groups A and B in Example 1 and analysis using SNP of the CFH gene.

<SNP解析方法>
Mori K et al., Invest Ophthalmol Vis Sci, 2007, 48(11), 5315−5319に記載の方法により、AMD罹患性との相関が明らかになっているCFH遺伝子の3種類のSNPについて、TaqMan SNP Genotyping Assays(アプライドバイオシステムズ社製)を用いて遺伝子型を決定した。前記CFH遺伝子の3種類のSNPは、以下の(1)〜(3)に示すとおりである。
(1)エクソン2の蛋白質62番目のイソロイシンがバリンへ変異したアミノ酸変異(I62V)を伴うSNP:rs800292(以下、「SNP1」と称することがある。)。
(2)エクソン9の蛋白質402番目のチロシンがヒスチジンに変異したアミノ酸変異(Y402H)を伴うSNP:rs1061170(以下、「SNP2」と称することがある。)。
(3)イントロン14のSNP:rs1410996(以下、「SNP3」と称することがある。)。
<SNP analysis method>
Mori K et al. , Invest Ophthalmol Vis Sci, 2007, 48 (11), 5315-5319, the three types of SNPs of the CFH gene whose correlation with AMD susceptibility has been clarified, TaqMan SNP Genotyping Assays The genotype was determined using Systems). The three types of SNPs of the CFH gene are as shown in the following (1) to (3).
(1) SNP: rs8000029 with an amino acid mutation (I62V) in which the 62nd isoleucine of exon 2 protein is mutated to valine (hereinafter sometimes referred to as “SNP1”).
(2) SNP: rs1061170 (hereinafter sometimes referred to as “SNP2”) with an amino acid mutation (Y402H) in which the protein 402 tyrosine of exon 9 is mutated to histidine.
(3) SNP of intron 14: rs1410996 (hereinafter sometimes referred to as “SNP3”).

<結果>
SNP1、SNP2、及びSNP3のリスクアレルは、表7に示すとおりである。また、AMD罹患者群及び対照群の全人数におけるSNP1、SNP2、及びSNP3の遺伝子型の人数分布、及びこの結果から劣性遺伝モデルによる分割表にて解析(SNP Alyze(登録商標):ダイナコム株式会社製)を行った結果を併せて表7に示す。
<Result>
The risk alleles of SNP1, SNP2, and SNP3 are as shown in Table 7. In addition, the distribution of the number of genotypes of SNP1, SNP2, and SNP3 in the total number of persons affected with AMD and the control group, and analysis of these results in a contingency table with a recessive genetic model (SNP Alyze (registered trademark): Dynacom Corporation) Table 7 shows the results of the production.

−SNP1の劣性遺伝と、CNV(グループA及びB)との組合せによるAMD易罹患性判定−
AMD罹患者群及び対照者群と、SNP1の劣性遺伝1及び2、並びに実施例1におけるグループA及びBとを用いた8グループ間でカイ二乗検定による加齢黄斑変性症の罹患の難易の相関解析を行った。また、オッズ比及びp値による有意差検定を行った。結果を表8に示す。なお、オッズ比は、最もリスクが低い群(表8において劣性遺伝子1かつCN値0、1の群)を1とする。
-Determination of AMD susceptibility by combination of recessive inheritance of SNP1 and CNV (groups A and B)-
Correlation of difficulty of age-related macular degeneration by chi-square test among 8 groups using AMD affected group and control group, recessive inheritance 1 and 2 of SNP1 and groups A and B in Example 1 Analysis was performed. Moreover, the significant difference test by odds ratio and p value was performed. The results are shown in Table 8. The odds ratio is set to 1 for the group with the lowest risk (the group with recessive gene 1 and CN values 0 and 1 in Table 8).

カイ二乗値=33.01
自由度=3
p値=3.206×10−7
Chi-square value = 33.01
Degrees of freedom = 3
p value = 3.206 × 10 −7

−SNP2の劣性遺伝と、CNV(グループA及びB)との組合せによるAMD易罹患性判定−
AMD罹患者群及び対照者群と、SNP2の劣性遺伝1及び2、並びに実施例1におけるグループA及びBとを用いた8グループ間でカイ二乗検定による加齢黄斑変性症の罹患の難易の相関解析を行った。また、オッズ比及びp値による有意差検定を行った。結果を表9に示す。なお、オッズ比は、最もリスクが低い群(表9において劣性遺伝子2かつCN値0、1の群)を1とする。
-AMD susceptibility determination by combination of recessive inheritance of SNP2 and CNV (groups A and B)-
Correlation of difficulty in affairs of age-related macular degeneration by chi-square test among 8 groups using AMD affected group and control group, recessive inheritance 1 and 2 of SNP2, and groups A and B in Example 1 Analysis was performed. Moreover, the significant difference test by odds ratio and p value was performed. The results are shown in Table 9. The odds ratio is set to 1 for the group with the lowest risk (the group with recessive gene 2 and CN values 0 and 1 in Table 9).

カイ二乗値=13.956
自由度=3
p値=2.966×10−3
Chi-square value = 13.956
Degrees of freedom = 3
p value = 2.966 × 10 −3

−SNP3の劣性遺伝と、CNV(グループA及びB)との組合せによるAMD易罹患性判定−
AMD罹患者群及び対照者群と、SNP3の劣性遺伝1及び2、並びに実施例1におけるグループA及びBとを用いた8グループ間でカイ二乗検定による加齢黄斑変性症の罹患の難易の相関解析を行った。また、オッズ比及びp値による有意差検定を行った。結果を表10に示す。なお、オッズ比は、最もリスクが低い群(表10において劣性遺伝子1かつCN値0、1の群)を1とする。
-Determination of AMD susceptibility by combination of recessive inheritance of SNP3 and CNV (groups A and B)-
Correlation of the difficulty of age-related macular degeneration by chi-square test among 8 groups using AMD affected group and control group, recessive inheritance 1 and 2 of SNP3, and groups A and B in Example 1 Analysis was performed. Moreover, the significant difference test by odds ratio and p value was performed. The results are shown in Table 10. The odds ratio is 1 for the group with the lowest risk (the group with the recessive gene 1 and CN values 0 and 1 in Table 10).

カイ二乗値=27.868
自由度=3
p値=3.871×10−6
Chi-square value = 27.868
Degrees of freedom = 3
p value = 3.871 × 10 −6

(実施例3)
実施例3では、実施例1におけるグループC及びDと、CFH遺伝子のSNPを用いた解析とを組み合わせてAMDの罹患の難易の相関解析を行った。SNP解析方法は、実施例2と同様の方法で行った。
(Example 3)
In Example 3, the group C and D in Example 1 were combined with the analysis using the SNP of the CFH gene to perform a correlation analysis of the difficulty of suffering from AMD. The SNP analysis method was performed in the same manner as in Example 2.

−SNP1の劣性遺伝と、CNV(グループC及びD)との組合せによるAMD易罹患性判定−
AMD罹患者群及び対照者群と、SNP1の劣性遺伝1及び2、並びに実施例1におけるグループC及びDとを用いた8グループ間でカイ二乗検定による加齢黄斑変性症の罹患の難易の相関解析を行った。また、オッズ比及びp値による有意差検定を行った。結果を表11に示す。なお、オッズ比は、最もリスクが低い群(表11において劣性遺伝子1かつCN値0、1、2の群)を1とする。
-Determination of AMD susceptibility by combination of recessive inheritance of SNP1 and CNV (groups C and D)-
Correlation of difficulty in affairs of age-related macular degeneration by chi-square test among 8 groups using AMD affected group and control group, recessive inheritance 1 and 2 of SNP1, and groups C and D in Example 1 Analysis was performed. Moreover, the significant difference test by odds ratio and p value was performed. The results are shown in Table 11. The odds ratio is 1 for the group with the lowest risk (the group with the recessive gene 1 and CN values 0, 1, and 2 in Table 11).

カイ二乗値=38.46
自由度=3
p値=2.261×10−8
Chi-square value = 38.46
Degrees of freedom = 3
p value = 2.261 × 10 −8

−SNP2の劣性遺伝と、CNV(グループC及びD)との組合せによるAMD易罹患性判定−
AMD罹患者群及び対照者群と、SNP2の劣性遺伝1及び2、並びに実施例1におけるグループC及びDとを用いた8グループ間でカイ二乗検定による加齢黄斑変性症の罹患の難易の相関解析を行った。また、オッズ比及びp値による有意差検定を行った。結果を表12に示す。なお、オッズ比は、最もリスクが低い群(表12において劣性遺伝子2かつCN値0、1、2の群)を1とする。
-Determination of AMD susceptibility by combination of recessive inheritance of SNP2 and CNV (groups C and D)-
Correlation of difficulty in affairs of age-related macular degeneration by chi-square test among 8 groups using AMD affected group and control group, recessive inheritance 1 and 2 of SNP2, and groups C and D in Example 1 Analysis was performed. Moreover, the significant difference test by odds ratio and p value was performed. The results are shown in Table 12. The odds ratio is set to 1 for the group with the lowest risk (the group with recessive gene 2 and CN values 0, 1 and 2 in Table 12).

カイ二乗値=19.139
自由度=3
p値=2.559×10−4
Chi-square value = 19.139
Degrees of freedom = 3
p value = 2.559 × 10 −4

−SNP3の劣性遺伝と、CNV(グループC及びD)との組合せによるAMD易罹患性判定−
AMD罹患者群及び対照者群と、SNP3の劣性遺伝1及び2、並びに実施例1におけるグループC及びDとを用いた8グループ間でカイ二乗検定による加齢黄斑変性症の罹患の難易の相関解析を行った。また、オッズ比及びp値による有意差検定を行った。結果を表13に示す。なお、オッズ比は、最もリスクが低い群(表13において劣性遺伝子1かつCN値0、1、2の群)を1とする。
-Determination of AMD susceptibility by combination of recessive inheritance of SNP3 and CNV (groups C and D)-
Correlation of difficulty in age-related macular degeneration by chi-square test among 8 groups using AMD affected group and control group, recessive inheritance 1 and 2 of SNP3, and groups C and D in Example 1 Analysis was performed. Moreover, the significant difference test by odds ratio and p value was performed. The results are shown in Table 13. The odds ratio is set to 1 for the group with the lowest risk (the group with recessive gene 1 and CN values 0, 1, and 2 in Table 13).

カイ二乗値=34.67
自由度=3
p値=1.433×10−7
Chi-square value = 34.67
Degrees of freedom = 3
p value = 1.433 × 10 −7

CNVの組合せのみで判定した場合と比較した実施例1と比較して、SNP1、SNP2、及びSNP3の遺伝子型と、CNVとの組合せにより判定した実施例2及び3では、AMD罹患性の難易を更に高い確率で判定することが可能であった。また、SNPとCNVとの組合せは、SNPの劣性遺伝と、CNVのグループC及びDとを組み合わせることが好ましいことがわかった。   Compared with Example 1 compared with the case of judging only with the combination of CNV, in Examples 2 and 3 judged by the combination of genotypes of SNP1, SNP2, and SNP3 and CNV, the difficulty of AMD susceptibility It was possible to determine with a higher probability. Moreover, it turned out that it is preferable that the combination of SNP and CNV combines the recessive inheritance of SNP and the groups C and D of CNV.

(比較例1)
実施例2におけるSNP1、SNP2、及びSNP3について、各SNP単独でFisher正確検定による加齢黄斑変性症の罹患の難易の相関解析を行った。また、オッズ比及びp値による有意差検定を行った。結果を表14に示す。表14において、SNP1及びSNP3については、各群における劣性遺伝2(リスクアレルがホモ接合型)のパーセントを示す。SNP2については、各群における劣性遺伝1(リスクアレルがホモ接合型およびヘテロ接合型)のパーセントを示す。
(Comparative Example 1)
About SNP1, SNP2, and SNP3 in Example 2, the correlation analysis of the difficulty of age-related macular degeneration by the Fisher exact test was performed for each SNP alone. Moreover, the significant difference test by odds ratio and p value was performed. The results are shown in Table 14. In Table 14, for SNP1 and SNP3, the percentage of recessive inheritance 2 (risk allele is homozygous) in each group is shown. For SNP2, the percentage of recessive inheritance 1 (risk alleles homozygous and heterozygous) in each group is shown.

表14より、SNP単独では、AMD罹患性の難易の判定確率は、実施例1及び2と比較して低いものであった。   From Table 14, SNP alone had a low probability of determining AMD susceptibility compared to Examples 1 and 2.

これらの結果より、従来の一遺伝子の変異や、連鎖不平衡に基づくSNPマーカーに着目した技術と比較して本願発明のDNAコピー数多型による加齢黄斑変性症易罹患性の判定は、精度及び確立が高く、疾患の診断に優れていると考えられる。   Based on these results, the determination of susceptibility to age-related macular degeneration by the DNA copy number polymorphism of the present invention compared to the conventional technique that focuses on mutations in one gene or SNP markers based on linkage disequilibrium is more accurate. And it is highly established and considered to be excellent in diagnosing diseases.

本発明の加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーは、著しい視力低下をきたす加齢黄斑変性症の発症及び進行を予測可能であるため、加齢黄斑変性症判定用に用いられる、DNAアレイ、塩基配列解析、PCR法又はPCR法によらない迅速DNA増幅法(インベーダーアッセイ)などに好適に利用可能である。
また、本発明の加齢黄斑変性症易罹患性判定方法及び加齢黄斑変性症易罹患性判定キットは、加齢黄斑変性症の発症及び進行を予測可能であり、これにより発症の危険度が高い人に関しては、より頻回に眼科検査を受けることにより加齢黄斑変性症の早期予防が可能となり、加齢黄斑変性症を既に発症した患者に対しては、最適な薬剤治療法の選択に好適に利用可能である。これにより、高齢者の視機能の維持とQOL向上、ひいては高齢者の医療費の削減も期待され、社会全体にも利益還元が期待される。
Since the marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration of the present invention can predict the onset and progression of age-related macular degeneration that causes a significant reduction in visual acuity, a DNA array used for determining age-related macular degeneration It can be suitably used for base sequence analysis, PCR method or rapid DNA amplification method (invader assay) not using PCR method.
In addition, the age-related macular degeneration susceptibility determination method and age-related macular degeneration susceptibility determination kit of the present invention can predict the onset and progression of age-related macular degeneration, thereby reducing the risk of onset. For those with high age, more frequent ophthalmic examinations can prevent early age-related macular degeneration, and for patients who have already developed age-related macular degeneration, it is necessary to select the optimal drug treatment method. It can be suitably used. As a result, maintenance of the visual function and improvement of QOL of the elderly, as well as reduction of medical costs for the elderly, are expected, and profits are expected to be returned to society as a whole.

Claims (15)

下記配列番号:1で表される塩基配列を有し、加齢黄斑変性症の罹患の難易を検出するマーカーとして用いられることを特徴とする加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカー。
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCTGTGCAGCAGGCATACAAATCTGACAATCTCGTAACTATTTGTGGCAAGC (配列番号:1)
A marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration, which has the base sequence represented by SEQ ID NO: 1, and is used as a marker for detecting the difficulty of aging macular degeneration.
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCTGTGCAGCAGGCATACAAATCTGACAATCTCGTAACTATTTGTGCAAGC (SEQ ID NO: 1)
日本人の加齢黄斑変性症の罹患の難易を検出するマーカーとして用いられる請求項1に記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカー。The marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to claim 1, which is used as a marker for detecting difficulty in afflicting age-related macular degeneration in Japanese. 下記配列番号:1で表される塩基配列の一部及び全部のいずれかに相補的な蛍光標識を有するプローブを、被験体由来のDNA含有試料中の下記配列番号:1で表される塩基配列にハイブリダイズさせ、前記蛍光標識により前記試料中のCFH遺伝子の発現を測定する測定工程と、A probe having a fluorescent label complementary to any part or all of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 below, a base sequence represented by SEQ ID NO: 1 in a DNA-containing sample derived from a subject A measurement step of measuring the expression of the CFH gene in the sample by the fluorescent label;
前記測定工程で測定された蛍光強度から前記CFH遺伝子のDNAコピー数を決定するDNAコピー数決定工程と、A DNA copy number determination step for determining the DNA copy number of the CFH gene from the fluorescence intensity measured in the measurement step;
前記DNAコピー数決定工程で決定されたDNAコピー数から加齢黄斑変性症の罹患の難易の判定を補助する易罹患性判定補助工程と、An susceptibility determination assisting step for assisting in determining the difficulty of age-related macular degeneration from the DNA copy number determined in the DNA copy number determining step;
を少なくとも含むことを特徴とする加齢黄斑変性症の易罹患性の判定を補助する方法。A method for assisting the determination of susceptibility to age-related macular degeneration, comprising at least
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCTGTGCAGCAGGCATACAAATCTGACAATCTCGTAACTATTTGTGGCAAGC (配列番号:1)TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCTGTGCAGCAGGCATACAAATCTGACAATCTCGTAACTATTTGTGCAAGC (SEQ ID NO: 1)
易罹患性判定補助工程が、決定されたDNAコピー数を組み合わせて判定を補助する工程であり、前記DNAコピー数の組合せが、(A)0コピー及び1コピーと、(B)2コピー及び3コピーとの組合せ、並びに、(C)0コピー〜2コピーと、(D)3コピーとの組合せのいずれかであり、前記組合せにおいて、前記(B)及び前記(D)のいずれかである場合に加齢黄斑変性症に易罹患性であるとする工程である請求項3に記載の加齢黄斑変性症の易罹患性の判定を補助する方法。The susceptibility determination assisting step is a step of assisting the determination by combining the determined DNA copy number, and the combination of the DNA copy number includes (A) 0 copy and 1 copy, (B) 2 copy and 3 A combination with a copy, and (C) one of a combination of 0 to 2 copies and (D) a 3 copy, and in the combination, either (B) or (D) The method for assisting determination of susceptibility to age-related macular degeneration according to claim 3, wherein the method is a step of susceptibility to age-related macular degeneration. 測定工程が、被験体由来のDNA含有試料中の配列番号:1で表される塩基配列を鋳型とした定量PCRによりCFH遺伝子の発現を測定する工程である請求項3から4のいずれかに記載の加齢黄斑変性症の易罹患性の判定を補助する方法。The measurement step is a step of measuring the expression of the CFH gene by quantitative PCR using the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 in the DNA-containing sample derived from the subject as a template. A method for assisting in the determination of susceptibility to age-related macular degeneration. 下記配列番号:2及び下記配列番号:3で表される塩基配列を有するプライマーを用いて定量PCRを行う請求項5に記載の加齢黄斑変性症の易罹患性の判定を補助する方法。The method for assisting the determination of susceptibility to age-related macular degeneration according to claim 5, wherein quantitative PCR is performed using primers having the nucleotide sequences represented by SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3.
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCT (配列番号:2)TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTGCT (SEQ ID NO: 2)
GCTTGCCACAAATAGTTACGAGATT (配列番号:3)GCTTGCCCAAATAGTTACGAGATT (SEQ ID NO: 3)
定量PCRがハウスキーピング遺伝子を内部標準として定量され、Quantitative PCR is quantified using housekeeping genes as internal standards,
DNAコピー数決定工程が、CFH遺伝子に対応する蛍光強度と、前記ハウスキーピング遺伝子に対応する蛍光強度とを比較することにより前記CFH遺伝子のDNAコピー数を決定する工程である請求項5から6のいずれかに記載の加齢黄斑変性症の易罹患性の判定を補助する方法。The DNA copy number determination step is a step of determining the DNA copy number of the CFH gene by comparing the fluorescence intensity corresponding to the CFH gene and the fluorescence intensity corresponding to the housekeeping gene. A method for assisting determination of susceptibility to age-related macular degeneration according to any one of the above.
定量PCRが、TaqMan法により行なわれる請求項5から7のいずれかに記載の加齢黄斑変性症の易罹患性の判定を補助する方法。The method for assisting determination of susceptibility to age-related macular degeneration according to any one of claims 5 to 7, wherein the quantitative PCR is performed by a TaqMan method. DNAコピー数決定工程が、測定工程で測定された蛍光強度が飽和に達するより前の時点におけるCFH遺伝子に対応する蛍光強度から前記CFH遺伝子のDNAコピー数を決定する工程である請求項3から8のいずれかに記載の加齢黄斑変性症の易罹患性の判定を補助する方法。The DNA copy number determination step is a step of determining the DNA copy number of the CFH gene from the fluorescence intensity corresponding to the CFH gene at a time point before the fluorescence intensity measured in the measurement step reaches saturation. A method for assisting determination of susceptibility to age-related macular degeneration according to any one of the above. 易罹患性判定補助工程において、一塩基多型を更に組み合わせて加齢黄斑変性症の罹患の難易の判定を補助する請求項3から9のいずれかに記載の加齢黄斑変性症の易罹患性の判定を補助する方法。The susceptibility of age-related macular degeneration according to any one of claims 3 to 9, wherein in the susceptibility determination assisting step, the single nucleotide polymorphism is further combined to assist in determining the difficulty of age-related macular degeneration. A method to assist in the determination of 一塩基多型が、rs800292(I62V)、rs1061170(Y402H)、及びrs1410996の少なくともいずれかである請求項10に記載の加齢黄斑変性症の易罹患性の判定を補助する方法。The method for assisting the determination of susceptibility to age-related macular degeneration according to claim 10, wherein the single nucleotide polymorphism is at least one of rs80000292 (I62V), rs1061170 (Y402H), and rs14109996. 易罹患性判定補助工程が、日本人の加齢黄斑変性症の罹患の難易の判定を補助する工程である請求項3から11のいずれかに記載の加齢黄斑変性症の易罹患性の判定を補助する方法。The determination of susceptibility to age-related macular degeneration according to any one of claims 3 to 11, wherein the susceptibility determination assisting step is a step of assisting in determining the difficulty of suffering from age-related macular degeneration in Japanese. How to assist. 請求項1に記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定用マーカーを少なくとも含み、加齢黄斑変性症の罹患の難易を判定することを特徴とする加齢黄斑変性症易罹患性判定用キット。A kit for determining susceptibility to age-related macular degeneration, comprising at least the marker for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to claim 1, wherein the susceptibility to age-related macular degeneration is determined. 下記配列番号:2及び下記配列番号:3で表される塩基配列を有するプライマーと、下記配列番号:4で表される塩基配列を有するプローブとを少なくとも含み、加齢黄斑変性症の罹患の難易を判定することを特徴とする加齢黄斑変性症易罹患性判定用キット。It includes at least a primer having the base sequence represented by the following SEQ ID NO: 2 and the following SEQ ID NO: 3 and a probe having the base sequence represented by the following SEQ ID NO: 4, and is difficult to suffer from age-related macular degeneration A kit for determining susceptibility to age-related macular degeneration.
TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTTGCT (配列番号:2)TGTCTCAGTGTATTGTTCTGTGCT (SEQ ID NO: 2)
GCTTGCCACAAATAGTTACGAGATT (配列番号:3)GCTTGCCCAAATAGTTACGAGATT (SEQ ID NO: 3)
GTGCAGCAGGCATACAAATCTG (配列番号:4)GTGCAGCAGGCATACAACATGTG (SEQ ID NO: 4)
日本人の加齢黄斑変性症の罹患の難易を判定する請求項13から14のいずれかに記載の加齢黄斑変性症易罹患性判定用キット。The kit for determining susceptibility to age-related macular degeneration according to any one of claims 13 to 14, wherein the susceptibility to affliction of Japanese age-related macular degeneration is determined.
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