JP3647369B2 - DNA chip and manufacturing method thereof - Google Patents

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Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、顕微鏡スライドグラス等の基板上に、数千から一万種類以上の異なる種類のDNA断片を微小スポットとして高密度に整列固定させたDNAチップ(DNAマイクロアレイ)及びその製造方法に関する。
【0002】
【従来の技術】
近年における遺伝子構造の解析方法の進歩にはめざましいものがあり、ヒトの遺伝子をはじめとして、多数の遺伝子構造が明らかにされてきている。このような遺伝子構造の解析には、顕微鏡スライドグラス等の基板上に数千から一万種類以上の異なる種類のDNA断片を微小スポットとして整列固定させたDNAチップ(DNAマイクロアレイ)が用いられるようになってきている。
【0003】
このDNAチップの製造における微小スポットの形成方法としては、QUILL方式、ピン&リング方式、あるいはスプリングピン方式といった、いわゆるピンによる基板上へのDNA断片を含んだ試料溶液の接触供給を行う方式が広く用いられており、いずれの方法を採用した場合であっても、各微小スポットの容量と形状のばらつきを低く抑えて、各微小スポット間の距離を一定に保つことが重要となる。
【0004】
一方、更なる高密度化に向けて、微小スポットの形状制御性が良好であり、生産性に優れた新しい方法の開発に対する期待も大きい。
【0005】
【発明が解決しようとする課題】
ところで、基板上に試料溶液の供給(滴下を含む)による多数の微小スポットを形成する場合、多数の供給ノズル(ピンやスプリングピン等)が例えばマトリクス状に配列された分注装置を用いて行うようにしている。
【0006】
通常、基板上に形成される微小スポットの配列ピッチよりも供給ノズルの配列ピッチが大きいため、分注装置での供給位置をずらしながら試料溶液を供給するようにしている。
【0007】
このとき、分注装置のずらし幅や、供給ノズルの配列ピッチにばらつきがあった場合、そのばらつきがそのまま微小スポットの配列状態に反映してしまい、隣接する微小スポット同士が合流して1つのスポットを形成してしまうというおそれがある。
【0008】
一方、プリンタにおいて実用化されている、いわゆるインクジェット方式を用いてスポッティングする方策も検討されているが、インクジェット方式の供給装置を用いた場合、吐出滴の方向が曲がる、いわゆる飛行曲がりや、サテライトと称する不要な吐出滴などの影響で隣接する微小スポット同士が合流して1つのスポットを形成してしまうおそれがある。
【0009】
本発明はこのような課題を考慮してなされたものであり、分注装置のずらし幅や供給ノズルの配列ピッチにばらつきがあったとしても、また、インクジェット方式の供給装置を用いた場合において、飛行曲がりやサテライトによる吐出滴の位置ずれがあったとしても、基板上に形成される多数の微小スポットの配列状態を規定の配列ピッチに沿った状態にさせることができるDNAチップを提供することを目的とする。
【0010】
また、本発明の他の目的は、分注装置のずらし幅や供給ノズルの配列ピッチにばらつきがあったとしても、また、インクジェット方式の供給装置を用いた場合において、飛行曲がりやサテライトによる吐出滴の位置ずれがあったとしても、基板上に形成される多数の微小スポットの配列状態を規定の配列ピッチに沿った状態にさせることができ、DNAチップの品質の向上並びに歩留まりの向上を図ることができるDNAチップの製造方法を提供することにある。
【0011】
【課題を解決するための手段】
本発明は、基板上に試料溶液の供給による微小スポットが多数形成されたDNAチップにおいて、前記基板に、前記微小スポットの位置ずれを自動的に補正する位置ずれ補正手段を設けて構成する。
【0012】
これにより、基板上に試料溶液を供給した際に、その供給位置が規定の位置からずれていたとしても、前記試料溶液の供給による微小スポットは、前記位置ずれ補正手段によって、前記規定の位置に移動し、その位置ずれが補正されることになる。
【0013】
このように、本発明に係るDNAチップにおいては、分注装置のずらし幅や供給ノズルの配列ピッチにばらつきがあったとしても、また、インクジェット方式の供給装置を用いた場合において、飛行曲がりやサテライトによる吐出滴の位置ずれがあったとしても、基板上に形成される多数の微小スポットの配列状態を規定の配列ピッチに沿った状態にさせることができる。
【0014】
また、本発明は、試料溶液を基板上に多数供給してDNAチップを製造するDNAチップの製造方法において、前記基板として、前記試料溶液の供給による微小スポットの位置ずれを自動的に補正する位置ずれ補正手段を有する基板を用いてDNAチップを製造することを特徴とする。
【0015】
これにより、分注装置のずらし幅や供給ノズルの配列ピッチにばらつきがあったとしても、また、インクジェット方式の供給装置を用いた場合において、飛行曲がりやサテライトによる吐出滴の位置ずれがあったとしても、基板上に形成される多数の微小スポットの配列状態を規定の配列ピッチに沿った状態にさせることができ、DNAチップの品質の向上並びに歩留まりの向上を図ることができる。
【0016】
そして、前記試料溶液をインクジェット方式の供給装置を用いて供給することが好ましい。この場合、前記供給装置は、少なくとも1個以上の基体に、外部から前記試料溶液を注入するための注入口と、前記試料溶液が注入・充填されるキャビティと、前記試料溶液を吐出する吐出口とが形成され、前記キャビティを形成する前記基体の少なくとも一壁面に圧電/電歪素子を備え、前記キャビティ内において前記試料溶液が移動するように構成されたマイクロピペットが複数配列されて構成され、かつ、各マイクロピペットの吐出口からそれぞれ異なる種類の試料溶液が吐出される分注装置であることが好ましく、更には、前記試料溶液の移動が層流であることがより好ましい。
【0017】
インクジェット方式では、高速で微小スポットを形成でき、吐出滴のスピード、液量を自由に設定できるため、微小スポットを規定の液量/形状に正確に形成でき、各微小スポット間のばらつきが、ピンやスプリングピンで行う方式と比較して少ないという利点がある。
【0018】
また、インクジェット方式は、ピン式と異なり、非接触で微小スポットを形成するため、位置ずれ補正手段と物理的な干渉、接触がなく、好適に使用できる。
【0019】
更に、インクジェット方式が有するスポット量、吐出速度等の設計の自由度に関しては、前記位置ずれ補正手段とのマッチングをとりやすいという利点も有する。即ち、位置ずれ量が大きいため、大きく補正しなければならないときは、例えば吐出量、吐出速度を増して基板上でのスポットの広がりを大きくすることで、位置ずれ補正手段と接触しやすくし、位置ずれ補正を確実に行わせることができるといった利点がある。
【0020】
上述の位置ずれ補正手段としては、前記微小スポットの接触すべき面を粗面にして、該粗面における前記微小スポットの接触面積を前記粗面以外の部分よりも大きくするようにしてもよいし、前記基板のうち、前記微小スポットが形成されるべき位置に形成された突起であってもよく、前記基板のうち、前記微小スポットが形成されるべき位置に形成された親水性領域とそれ以外の部分に形成された撥水性領域とで構成されるものでもよい。
【0021】
また、上述の前記位置ずれ補正手段としては、前記基板のうち、前記微小スポットが形成されるべき位置に形成された凹部であってもよく、前記基板のうち、前記微小スポットが形成されるべき部分とそれ以外の部分とで表面状態を異ならせるようにしてもよい。
【0022】
また、上述の前記位置ずれ補正手段としては、前記基板のうち、前記微小スポットが形成されるべき部分を、前記試料溶液とは逆の帯電状態とさせる電界発生手段を有するようにしてもよい。
【0023】
例えば、試料溶液が負に帯電(マイナスチャージ)しているとき、前記微小スポットが形成されるべき部分を前記試料溶液とは逆の帯電状態、即ち、正の帯電状態(プラスチャージの状態)にさせる電界発生手段を有するようにすると、規定の位置に確実にスポッティングすることができ好適である。なお、試料溶液がプラスチャージの状態である場合は、微小スポットが形成されるべき部分をマイナスチャージの状態にすればよい。
【0024】
更に、試料溶液を供給する方式としてインクジェット方式を用いた場合、非接触で微小スポットを形成することができるため、電界方向に滴の吐出方向が揃い、かつ、電界で滴下位置の補正がやりやすくなるため、好適に使用することができる。
【0025】
また、試料溶液がDNA断片を含む溶液の場合、電界による位置ずれ補正効果をより有効とするために、DNA断片に電荷を付加する官能基を付けること、あるいは電荷をもった溶液中にDNA断片を分散させることも好ましい。
【0026】
【発明の実施の形態】
以下、本発明に係るDNAチップ及びその製造方法の実施の形態例を図1〜図19Bを参照しながら説明する。
【0027】
本実施の形態に係るDNAチップ20は、図1に示すように、基板10上に試料溶液の供給(滴下を含む)による微小スポット80が多数配列されて構成されている。特に、基板10上には、前記微小スポット80の位置ずれを自動的に補正する位置ずれ補正手段が設けられている。
【0028】
具体的には、図2に示すように、基板10は、その表面に親水性を有するpoly-L-lysine層12が形成され、該基板10上のうち、微小スポット80が形成されるべき位置の各中心部分にそれぞれ突起14が形成されている。これら突起14が位置ずれ補正手段として機能することになる。
【0029】
即ち、図2に示すように、基板10上に試料溶液の供給によって微小スポット80が形成された際において、該微小スポット80の一部が突起14にかかったとき(二点鎖線参照)、該微小スポット80の表面張力によって、該微小スポット80が移動し、微小スポット80の中心位置と突起14とがほぼ一致することになる。
【0030】
このように、この本実施の形態に係るDNAチップ20においては、微小スポット80が規定の位置からずれて滴下されたとしても、基板10上に形成された突起14によって規定の位置に移動し、その位置ずれが補正されることになる。
【0031】
ところで、基板10上に試料溶液の供給による微小スポット80を形成してDNAチップ20を製造するには、例えば図3に示す製造工程を踏んで行われる。
【0032】
即ち、基板10の表面にpoly-L-lysine層12(図2参照)を形成する前処理工程S1と、DNA断片を含む試料溶液を調製する試料調製工程S2と、得られた試料溶液を基板10上に供給する供給工程S3とを踏んでDNAチップ20が製造される。
【0033】
前記試料調製工程S2は、図4に示すように、DNA断片をPCR増幅してPCR産物を調製する増幅工程S11と、得られたPCR産物を乾燥してDNA粉末とする粉末生成工程S12と、得られたDNA粉末を緩衝液に溶かす混合工程S13とを含む。
【0034】
具体的に説明すると、前処理工程S1は、まず、基板10をアルカリ溶液に浸し、室温で少なくとも2時間ゆっくりと振盪する。前記アルカリ溶液は、例えばNaOHを蒸留水に溶かし、更にエタノールを加えて、完全に透明になるまで攪拌した溶液である。
【0035】
その後、基板10を取り出して、蒸留水中に移し、リンスして、アルカリ溶液を除去する。次いで、蒸留水中にpoly-L-lysineを加えて調製されたpoly-L-lysine液に基板10を浸し、1時間放置する。
【0036】
その後、基板10を取り出して、遠心機にかけて遠心し、余分なpoly-L-lysine液を除去する。次いで、基板10を40℃、5分ほど乾燥させて、表面にpoly-L-lysine層12が形成された基板10を得る。
【0037】
次に、試料調製工程S2は、まず、既知のPCR機で増幅したPCR産物(増幅工程S11)に、3Msodium acetateとイソプロパノールとを加え、数時間放置する。その後、このPCR産物溶液を遠心機で遠心し、DNA断片を沈殿させる。
【0038】
沈殿させたDNA断片をエタノールでリンスし、遠心した後、乾燥させてDNA粉末を生成する(粉末生成工程S12)。得られたDNA粉末に×1TEバッファを加え、数時間放置して完全に溶かすことによって(混合工程S13)、試料溶液が調製される。この段階での試料溶液の濃度は1〜10μg/μリットルである。なお、この後に固定化液を試料注入口52からキャビティ56内に供給するようにしてもよい。
【0039】
そして、本実施の形態では、得られた試料溶液を基板10上に供給してDNAチップ20を製造する(供給工程S3)。なお、試料調製工程S2を経て得られた試料溶液に固定化液を混合するようにしてもよいし、試料溶液を希釈するようにしてもよい。この場合、希釈液として水やNaClを含んだ水溶液又はポリマーを含んだ水溶液を使用することができる。
【0040】
更に、この実施の形態においてDNAチップ20を製造する場合、例えば図5A〜図7に示す分注装置30が有効に使用される。
【0041】
この分注装置30は、図5A及び図5Bに示すように、矩形状の固定板32の上面に例えば10個のマイクロピペット34を5行2列に配列し、各列方向に整列されたマイクロピペット34群をそれぞれ固定治具36を介して固定板32に固定させた構成を有する。
【0042】
マイクロピペット34は、図5C及び図6に示すように、ほぼ直方体の形状を有する基体50の上面に形成された試料注入口52と、該基体50の下面に形成された試料吐出口54と、内部に試料注入口52と試料吐出口54との間に形成されたキャビティ56と、基体50を振動させたり、キャビティ56の体積を変化させたりするアクチュエータ部58とを有して構成されている。
【0043】
従って、図6に示すように、前記固定板32には、マイクロピペット34の試料吐出口54に対応する箇所にそれぞれ貫通孔40が設けられている。これにより、マイクロピペット34の試料吐出口54から吐出された試料溶液が、前記貫通孔40を通じて、例えば固定板32の下方に固定された基板20に供給されることになる。
【0044】
このマイクロピペット34は、試料注入口52から基体50の内部にかけて開口幅の大きいほぼL字状の導入穴60が形成されている。この導入穴60とキャビティ56との間には、径の小さい第1の連通孔62が形成され、試料注入口52から注入された試料溶液が導入穴60及び第1の連通孔62を通じてキャビティ56に導入されるようになっている。
【0045】
キャビティ56のうち、前記第1の連通孔62とは異なる位置に、試料吐出口54に連通し、かつ、第1の連通孔62よりも径の大きい第2の連通孔64が形成されている。本実施の形態では、キャビティ56の下面のうち、試料注入口52寄りに第1の連通孔62を形成し、同じくキャビティ56の下面のうち、試料吐出口54に対応した位置に第2の連通孔64を形成するようにしている。
【0046】
更に、この実施の形態では、基体50のうち、キャビティ56の上面が接する部分が薄肉とされ、外部応力に対して振動を受けやすい構造となっており、振動部66として機能するようになっている。振動部66の上面に前記アクチュエータ部58が形成されている。
【0047】
基体50は、複数枚のジルコニアセラミックスのグリーンシート(第1の薄板層50A、第1のスペーサ層50B、第2の薄板層50C、第2のスペーサ層50D及び第3の薄板層50E)を積層し、一体焼成して構成されている。
【0048】
つまり、基体50は、試料注入口52を構成する窓部が形成され、一部において振動部66を構成する薄肉の第1の薄板層50Aと、導入穴60の一部及びキャビティ56を構成する複数の窓部がそれぞれ形成された厚肉の第1のスペーサ層50Bと、導入穴60の一部、第1の連通孔62及び第2の連通孔64の一部を構成する複数の窓部がそれぞれ形成された薄肉の第2の薄板層50Cと、導入穴60の一部及び第2の連通孔64の一部を構成する複数の窓部がそれぞれ形成された厚肉の第2のスペーサ層50Dと、試料吐出口54を構成する窓部が形成された薄肉の第3の薄板層50Eとを積層し、一体焼成して構成されている。
【0049】
アクチュエータ部58は、前記振動部66のほか、該振動部66上に直接形成された下部電極70と、該下部電極70上に形成された圧電/電歪層や反強誘電体層等の圧電層72と、該圧電層72の上面に形成された上部電極74とを有して構成されている。
【0050】
下部電極70と上部電極74は、図5Cに示すように、それぞれ基体50の上面に形成された複数のパッド76及び78を通じて図示しない駆動回路に電気的に接続される。
【0051】
上記のような構成のマイクロピペット34によれば、上部電極74と下部電極70との間に電界が生じると、圧電層72が変形し、それに伴って振動部66が変形し、振動部66に接しているキャビティ(加圧室)56の容積が減少することになる。
【0052】
このキャビティ56の容積の減少によってキャビティ56内に充填された試料溶液がキャビティ56に連通する試料吐出口54から所定速度で吐出され、図1に示すように、マイクロピペット34から吐出された試料溶液が顕微鏡スライドガラス等の基板50上に微小スポット80として整列固定されたDNAチップ20を作製することができる。
【0053】
この場合、基板10上に形成される微小スポット80の配列ピッチよりも分注装置30における試料吐出口54の配列ピッチが大きいため、分注装置30での供給位置をずらしながら試料溶液を供給することになる。
【0054】
このとき、分注装置30のずらし幅や試料吐出口54の配列ピッチにばらつきがあったとしても、試料溶液の供給による微小スポット80は、基板10上に形成された突起14によって、規定の位置にそれぞれ移動し、その位置ずれが補正されることになる。そのため、この実施の形態においては、基板10上に形成される多数の微小スポット80の配列状態を規定の配列ピッチに沿った状態にさせることができる。
【0055】
更に、前記位置補正後、基板10に水分を付加することで、微小スポット80を移動しやすくし、微小スポット80を突起14に移動させることも好適である。また、突起14に集結した微小スポット80の断面形状を半球状に修正できる効果も期待でき好ましい。
【0056】
なお、アクチュエータ部58の駆動によって、キャビティ56の容積が減少する構造としては、いわゆるインクジェット方式の装置構造を採用することができる(特開平6−40030号公報参照)。
【0057】
そして、キャビティ(加圧室)56は、DNA断片などを含む試料溶液が層流で移動するような流路寸法に形成されていることが好ましい。
【0058】
つまり、キャビティ56の寸法は、試料の種類、作成する液滴の大きさ、形成密度より異なるが、例えば、塩基対1〜10000程度のDNA断片を1μg/μリットルの濃度で緩衝液(TEバッファ)に分散させた試料を数百μmピッチで数百μmφ液滴径の滴下を行う場合においては、図7に示すように、キャビティ長(L)は、1〜5mm、キャビティ幅(W)は、0.1〜1mm、キャビティ深さ(D)は、0.1〜0.5mmが好ましい。またキャビティ56の内壁には、流れを乱す突起物がないように滑らかであることがよく、その材質は、試料溶液と親和性のよいセラミックスからなることが好ましい。
【0059】
このような形状にすることにより、キャビティ56を試料注入口52から試料吐出口54に至る流路の一部として、試料注入口52から導入穴60、第1の連通孔62を経てキャビティ56内に移動する試料溶液の流れを乱すことなく試料吐出口54に導くことができる。
【0060】
ところで、図5Aに示すように、固定板32の上面には、マイクロピペット34を位置決め固定するための複数のピン38が設けられている。マイクロピペット34を固定板32上に固定する場合は、マイクロピペット34の基体50の両側に設けられた位置決め用孔90(図5C参照)に固定板32のピン38を挿入させながら、マイクロピペット34を固定板32に載置することで、自動的に複数のマイクロピペット34が所定の並びで配列位置決めされることになる。
【0061】
また、各固定治具36は、複数のマイクロピペット34を固定板32に押さえ付ける押さえ板100を有する。押さえ板100の両端には、それぞれネジ102が挿通される挿通孔が形成され、この挿通孔にネジ102を挿通して、固定板32にねじ込むことによって、前記押さえ板100で複数のマイクロピペット34を一度に固定板32に押さえ付けることができるようになっている。そして、1つの押さえ板100で押さえ付けた複数のマイクロピペット34で1つのユニットが構成される。図5Aの例では列方向に配列された5つのマイクロピペット34で1つのユニットが構成された例を示している。
【0062】
また、押さえ板100には、複数のマイクロピペット34を押さえ付けたときに、各マイクロピペット34の試料注入口52に対応する箇所にそれぞれ試料溶液を供給するための導入孔104(図5B参照)が形成されており、各導入孔104の上端部にはそれぞれ試料溶液を導入孔104に導くためのチューブ106が保持されている。
【0063】
なお、押さえ板100の幅は、配線作業の効率化を考慮すると、複数のマイクロピペット34を固定板32に押さえ付けた際に、アクチュエータ部58の各電極70及び74につながるパッド76及び78が上方に臨むような寸法であることが好ましい。
【0064】
このように、上述の分注装置30は、試料注入口52及び試料吐出口54を有するマイクロピペット34の複数個をそれぞれ試料吐出口54を下方向に向けた状態で立設させて構成されている。
【0065】
即ち、各マイクロピペット34は、それぞれの試料注入口52を上側とし、試料吐出口54を下側とし、かつ、各試料吐出口54が縦横に配列配置されて、試料吐出口54からそれぞれ種類の異なる試料溶液が吐出されるようになっている。
【0066】
このような構成を有する分注装置30において、各試料注入口52に対応してそれぞれ種類の異なる試料溶液を供給する方法としては、図8に示すように、例えば多数の断面ほぼV字状の凹部(溜め部)110が配列されたカートリッジ112を使用する方法がある。この方法は、カートリッジ112の各凹部110にそれぞれ種類の異なる試料溶液を入れ、該カートリッジ112を各凹部110とチューブ106とがそれぞれ対応するように取り付け、針等で各凹部110の底を開封することによって、各凹部110にあった試料溶液をチューブ106を介して各マイクロピペット34に供給する方法等が考えられる。
【0067】
また、チューブ106を用いない場合は、カートリッジ112を各凹部110と固定治具36の各導入孔104とがそれぞれ対応するように取り付け、針等で各凹部110の底を開封することによって、各凹部110にあった試料溶液を導入孔104を介して各マイクロピペット34に供給する方法のほか、予め、固定治具36における各導入孔104の近傍に針等を形成し、カートリッジ112を固定治具36に取り付けると同時に各凹部110が開封されるようにしてもよい。
【0068】
なお、開封後に気体等を圧送し、試料溶液を強制的に押し出す機構を加えてもよい。また、各マイクロピペット34の基体50内に形成された試料注入口52から試料吐出口54に至る空間を洗浄する機構を備えることは、数千から数万種類という多種類のDNA断片などを汚染なく、しかも純度よく微小スポット80として吐出するために望ましい。
【0069】
図5Aの例では、押さえ板100の両端をネジ102で固定板20に締め付けることで行っているが、押さえ板100の固定法は、ネジ、バネ等で機械的に行うほか、接着剤等で行ってもよい。
【0070】
また、マイクロピペット34を構成する基体50は、上述したように、セラミックスで形成されており、例えば、安定化ジルコニアや部分安定化ジルコニア、アルミナ、マグネシア、窒化珪素等を用いることができる。
【0071】
このうち、安定化/部分安定化ジルコニアは、薄板においても機械的強度が大きいこと、靱性が高いこと、圧電層72や電極材との反応性が小さいことから最も好適に採用される。
【0072】
そして、基体50等の材料として安定化/部分安定化ジルコニアを使用する場合には、少なくとも、アクチュエータ部58が形成される部分(振動部66)には、アルミナあるいはチタニア等の添加物が含有されることが好ましい。
【0073】
また、アクチュエータ部58を構成する圧電層72は、圧電セラミックスとして、例えば、ジルコン酸鉛、チタン酸鉛、マグネシウムニオブ酸鉛、マグネシウムタンタル酸鉛、ニッケルニオブ酸鉛、亜鉛ニオブ酸鉛、マンガンニオブ酸鉛、アンチモンスズ酸鉛、マンガンタングステン酸鉛、コバルトニオブ酸鉛、チタン酸バリウム等やこれらのいずれかを組み合わせた成分を含有する複合セラミックスを用いることができるが、本実施の形態においては、ジルコン酸鉛とチタン酸鉛及びマグネシウムニオブ酸鉛からなる成分を主成分とする材料が好適に用いられる。
【0074】
これは、このような材料が、高い電気機械結合係数と圧電定数を有することに加え、圧電層72の焼結時における基体材料との反応性が小さく、所定の組成のものを安定に形成することができることに基づくからである。
【0075】
更に、本実施の形態では、前記圧電セラミックスに、ランタン、カルシウム、ストロンチウム、モリブデン、タングステン、バリウム、ニオブ、亜鉛、ニッケル、マンガン、セリウム、カドミウム、クロム、コバルト、アンチモン、鉄、イットリウム、タンタル、リチウム、ビスマス、スズ等の酸化物、もしくはこれらいずれかの組合せ、又は他の化合物を適宜、添加したセラミックスを用いてもよい。
【0076】
例えば、ジルコン酸鉛とチタン酸鉛及びマグネシウムニオブ酸鉛を主成分とし、これにランタンやストロンチウムを含有するセラミックスを用いることもまた好ましい。
【0077】
一方、アクチュエータ部58における上部電極74及び下部電極70は、室温で、固体であって導電性の金属で構成されていることが好ましく、例えば、アルミニウム、チタン、クロム、鉄、コバルト、ニッケル、銅、亜鉛、ニオブ、モリブデン、ルテニウム、パラジウム、ロジウム、銀、スズ、タンタル、タングステン、イリジウム、白金、金、鉛等の金属単体あるいはこれらのいずれかを組み合わせた合金が用いられ、更に、これらに圧電層72や基体50と同じ材料を分散させたサーメット材料を用いてもよい。
【0078】
次に、この分注装置30を使ってDNAチップ20を製造する第1及び第2の方法について図9及び図10を参照しながら説明する。
【0079】
まず、第1の方法は、図9に示すように、各チューブ106からそれぞれ固定治具36の導入孔104を介して各マイクロピペット34のキャビティ56内にそれぞれ種類の異なる試料溶液を充填し、次いで、各アクチュエータ部58を駆動して、各マイクロピペット34の試料吐出口54から試料溶液を吐出させる。キャビティ56内に溶液を充填する方法は、試料注入口52より導入された溶液の毛細管力により注入してもよいが、試料吐出口54から真空吸引して充填する方法が確実である。
【0080】
ここで、アクチュエータ部58の各電極70及び74に印加する電圧波形のうち、アクチュエータ部58がオン動作して、キャビティ56の容積を減少させる場合、各電極70及び74にはパルス的な電圧が印加されることになる。この場合、パルスの振幅を上げることによって、振動部66の変形が大きくなり、その分、試料溶液の吐出量も多くなる。また、一定期間に複数のパルスを印加する場合は、パルス周期を短くし、各パルスの振幅を小さくすることによって、少量の試料溶液を多数吐出させることができる。
【0081】
このとき、供給位置を適宜変えることによって、供給された試料溶液が基板10上で組み合わされて(合体)、1つのスポット径を有する試料溶液となるが、供給する試料溶液の種類に応じて、供給数、供給位置及び1回の供給量を制御することで、基板10上に形成されるスポット径の均一化を図ることができる。
【0082】
次に、分注装置30を使った第2の方法について説明する。この第2の方法は、図10に示すように、各チューブ106からそれぞれ固定治具36の導入孔104を介して各マイクロピペット34のキャビティ56内に緩衝液やNaClを含んだ水溶液、ポリマーを含んだ水溶液などの置換液を充填し、次いで、試料を試料注入口52からキャビティ56内に層流置換させながら注入した後、置換の完了を待つ。その後、アクチュエータ部58を駆動させて、試料溶液を基板10上に吐出供給させる。
【0083】
キャビティ56内における試料の層流置換完了は、キャビティ56内の流体特性の変化を検知することにより把握することが好ましい。
【0084】
なお、キャビティ56内の置換液と試料の置換は層流で行われることが好ましいが、試料の種類が変わった場合や、液体の移動速度が非常に速い場合においては、キャビティ56のうち、第1の連通孔62の近辺部分は、必ずしも層流でなくてもよい。この場合、試料と置換液の混合により試料溶液のパージ量は増大するが、キャビティ56内の流体特性の変化を検知して置換完了を判断することにより、パージ量の増大を最小に抑えることができる。
【0085】
ここで、キャビティ56内の流体特性の変化は、アクチュエータ部58に振動を励起する程度の電圧を印加し、その振動に伴う電気的定数の変化を検出することにより把握する。このような流体特性の変化の検知については、例えば、特開平8−201265号公報に開示されている。
【0086】
具体的には、アクチュエータ部58に対して、所定の間隔で、吐出駆動用の電源からの電気的接続をリレーで切り離し、同時に、共振周波数を測定する手段をリレーにより接続し、その時点でのインピーダンスあるいは共振特性、例えば共振周波数や減衰率等を電気的に測定する。
【0087】
これにより、液体の粘度、比重等が目的の試料(DNA断片などを含む液体)であるかどうかを把握することができる。即ち、各マイクロピペット34においては、マイクロピペット34自体がセンサとして機能するため、マイクロピペット34の構成も単純化することができる。
【0088】
そして、アクチュエータ部58を、求められるスポット径に応じた液滴量に対応した駆動条件にて駆動し、試料溶液の供給を繰り返すことにより、DNAチップ20を製造する。通常、1つの微小スポット80を形成するのに、マイクロピペット34から1〜数百滴を吐出して行う。
【0089】
なお、試料注入口52中の試料の量が減少した際には、緩衝液を追加し、流路中に気泡が入らないようにして、吐出を続けることにより、試料溶液をマイクロピペット34内に残すことなく使い切ることができる。試料から置換液への置換の完了(試料吐出の終了)は、同じく、アクチュエータ部58を用いた液体の粘度、比重の検出で行う。
【0090】
また、使用する置換液、試料としては、予め脱気操作を通して溶液中の溶存気体を取り除いたものを使用することが好ましい。そのような溶液を用いることにより、マイクロピペット34の流路内に溶液を充填する際に、流路途中で気泡がひっかかり充填が不備になる場合でも、その気泡を溶液中に溶かし込んで不具合を回避できると共に、吐出の途中において、流体中に気泡が発生することがなく、吐出不具合を生じることもない。
【0091】
また、上述の第2の方法において、試料溶液を吐出しつつ、緩衝液やNaClを含んだ水溶液、ポリマーを含んだ水溶液のような置換液を試料注入口52からキャビティ56に注入し、キャビティ56内に残留する試料溶液を完全に吐出し、次の試料注入に備えることができる。
【0092】
そして、キャビティ56内に試料溶液が残留しているかどうか(試料溶液として吐出できるかどうか)を検知するのにも、同じく、キャビティ56内の流体特性の変化を検知することにより把握できる。この場合、置換完了検出機構により使用に供しない試料のパージ量を極めて少なくすることができると共に、試料溶液の使用効率を向上させることができる。
【0093】
また、試料を試料注入口52からキャビティ56に充填する際に、アクチュエータ部58を駆動させながら試料を試料注入口52からキャビティ56内に置換させてもよい。この場合、予め安価な置換液によりキャビティ56内を確実に置換でき、その結果、吐出不良が発生することを完全に防止でき、高価な試料を効率よく吐出できる。
【0094】
更に、キャビティ56内に緩衝液やNaClを含んだ水溶液、ポリマーを含んだ水溶液などの置換液を充填し、キャビティ56内と試料注入口52内にある置換液の量を調整して所定の量にし、次に、試料溶液を試料注入口52から所定の液量だけ注入した後、アクチュエータ部58を所定のパルス数だけ駆動し、キャビティ56内と試料注入口52内にある置換液の量だけ排出してもよい。
【0095】
そうすることにより、キャビティ56内と試料注入口52内にある置換液の量だけ正確に排出され、無駄なく試料溶液の充填を完了することができる。
【0096】
このように、本実施の形態に係るDNAチップ20においては、基板10に、微小スポット80の位置ずれを自動的に補正する位置ずれ補正手段としての突起14を設けるようにしたので、基板10上に試料溶液を供給した際に、その供給位置が規定の位置からずれていたとしても、前記試料溶液の供給による微小スポット80は、突起14によって前記規定の位置に移動し、その位置ずれが補正されることになる。
【0097】
このように、本実施の形態に係るDNAチップ20及びその製造方法においては、分注装置30のずらし幅や試料吐出口54の配列ピッチにばらつきがあったとしても、基板10上に形成される多数の微小スポット80の配列状態を規定の配列ピッチに沿った状態にさせることができ、DNAチップ20の品質の向上並びに歩留まりの向上を図ることができる。
【0098】
次に、基板10に設けられる位置ずれ補正手段の変形例について図11〜図19Bを参照しながら説明する。
【0099】
第1の変形例は、図11に示すように、基板10のうち、微小スポット80が形成されるべき位置に親水性領域Z1を形成し、それ以外の部分に撥水性領域Z2を形成した点で異なる。具体的には、微小スポット80が形成されるべき位置以外の部分に撥水性の膜16を形成することで達成される。撥水性の膜16としては、例えばSiコート、フッ素樹脂等を使用することができる。
【0100】
これによれば、図11に示すように、基板10上に試料溶液の供給によって微小スポット80が形成された際において、該微小スポット80の一部が撥水性の膜16にかかったとき(二点鎖線参照)、該微小スポット80の表面張力と膜16の撥水作用によって、該微小スポット80が移動し、規定の位置に微小スポット80の中心を位置決めできる。この場合、微小スポット80の一部が撥水性の膜16にかかったときでも、膜16が撥水性のため、試料溶液が移動した後の痕跡がなく、固定化後のスポット形状が親水性の部分のみの形状になり、形状のばらつきが低減される。
【0101】
第2の変形例は、図12に示すように、前記撥水性の膜16において、親水性領域Z1の周辺部のみに該親水性領域Z1に向かって下り傾斜とされたテーパ面16aを設けた例を示す。この場合、一点鎖線に示すように、撥水性の膜16に微小スポット80がかかったときでも、撥水性の膜16の撥水作用と、微小スポット80の表面張力と、テーパ面の傾斜による重力で、前記微小スポット80は、該微小スポット80が形成されるべき位置に移動し、規定の位置に微小スポット80の中心を位置決めすることができる。
【0102】
第3の変形例は、図13に示すように、基板10のうち、微小スポット80が形成されるべき位置に凹部18を形成した点で異なる。
【0103】
これによれば、図13に示すように、基板80上に試料溶液の供給によって微小スポット80が形成された際において、該微小スポット80の一部が凹部18の肩部分にかかったとき(二点鎖線参照)、該微小スポット80の表面張力によって、該微小スポット80が移動し、凹部18内に微小スポット80を位置させることができる。この場合、凹部18内に試料溶液が入ると、試料膜厚が均一化され、スポットの厚みのばらつきが低減できる。その結果、スポットが発する蛍光を検査する際の感度ばらつき、感度劣化を抑制できるという利点がある。
【0104】
第4の変形例は、図14に示すように、微小スポット80が形成される部分の周辺部に複数の凸部150を形成する、あるいは前記周辺部に環状の凸部152を形成した例を示す。環状の凸部152の場合には、微小スポット80が形成される部分がクレータ状に形成されることになる。この第4の変形例の場合、上述した第3の変形例による効果に加えて、所定位置(微小スポット80が形成されるべき位置)に微小スポット80が集まりやすくなるという効果がある。特に、凸部150や152の裾の部分をなだらかな傾斜面154に形成すれば、前記効果は更に顕著となる。
【0105】
上述のような凸部150や152は、プリンタにおいて実用化されているインクジェット方式で、噴射圧力やジェットノズルと基板12との距離等を適宜調整して、スポッティングすることにより、基板12上に形成することができる。
【0106】
第5の変形例は、図15に示すように、基板10のうち、微小スポット80が形成されるべき部分とそれ以外の部分とで表面状態を異ならせた点で異なる。
【0107】
これによれば、図15に示すように、基板10上に試料溶液の供給によって微小スポット80が形成された際において、該微小スポット80の一部が粗面22以外の部分にかかったとき(二点鎖線参照)、該微小スポット80の表面張力によって、該微小スポット80が移動し、規定の位置に微小スポット80の中心を位置させることができる。この場合、上述した第1の変形例と同様に、該微小スポット80の一部が粗面22以外にかかったときでも、粗面22以外の部分は、試料が移動した後の痕跡がなく、固定化後のスポット形状が粗面22のみの形状になり、形状のばらつきが低減される。また、微小スポット80は、接触する面が粗面であるため、接触面積が大きく、基板10に強固に固定され、スポッティング後の固定化時において、試料溶液が流れ出すことを低減できる。
【0108】
上述の第2、第3及び第5の変形例でのテーパ面16aの形成並びに凹部18の形成や粗面22の形成など、表面状態の変更は、ブラスト加工、レーザ加工、切削加工等の加工によって一度に大量の基板を処理することができるため、安価に実施でき好ましい。
【0109】
第6の変形例は、電界をかけて位置ずれ補正を行うようにしたものである。具体的には、例えば図16に示すように、基板10におけるpoly-L-lysine層12の下層において、微小スポット80を形成すべき箇所に対応する部分に、金属膜による多数の電極パターン130を形成し、更にその下層に各電極パターン130に共通とされた金属膜による共通電極パターン132を形成する。
【0110】
そして、共通電極パターン132と例えば接地間に電源134を接続し、各電極パターン130を例えば+側に帯電させる。この状態で、基板10上に試料溶液の供給によって微小スポット80が形成されると、該微小スポット80を構成する試料溶液は−側に帯電しているため、微小スポット80の一部が電極パターン130上にかかったとき(二点鎖線参照)、電界の吸引力によって、該微小スポット80が電極パターン130上に移動し、規定の位置に微小スポット80の中心が位置することになる。
【0111】
また、電界強度を上げれば、各マイクロピペット34の試料吐出口54から吐出された液滴140は、空中において、その飛行方向が対応する電極パターン130に向かうべく補正され、前記液滴140による微小スポット80は対応する電極パターン130上に正確に落下することとなる。この場合、液滴140が基板10の表面で移動することがないため、液滴移動による痕跡がなく、スポット形状を安定化(均一化)できるという効果がある。
【0112】
第7の変形例は、図17に示すように、上述した第6の変形例(図16参照)とほぼ同じ原理であるが、基板10が載置固定されるステージ142に所定の電極パターン130及び132を設けたものである。この場合、基板10に電極パターン130及び132を設ける必要がないため、安価に実施できるという利点がある。
【0113】
第8の変形例は、図18に示すように、基板10を例えばガラスで構成し、更に、該基板10内に所定の電極パターン130及び132を形成し、特に、電極パターン130を基板10の表面に露出させた例である。電極パターン130及び132への電圧供給は、ステージ142に形成された電極144を通じて行われる。
【0114】
この第8の変形例においては、基板10のガラス表面は撥水性を呈し、ガラス表面に露出した電極パターン130は親水性を呈するため、上述した第1の変形例と同様に、例えば図19Aに示すように、基板10上に試料溶液の供給によって微小スポット80が形成された際において、該微小スポット80の一部が撥水性のガラス表面にかかったとき(二点鎖線参照)、該微小スポット80の表面張力とガラス表面の撥水作用によって、該微小スポット80が移動し、規定の位置に微小スポット80の中心を位置決めすることができる。この場合、微小スポット80の一部がガラス表面にかかったときでも、ガラス表面が撥水性のため、試料溶液が移動した後の痕跡がなく、固定化後のスポット形状が親水性の部分のみの形状になり、形状のばらつきが低減される。
【0115】
また、電界強度を上げれば、図19Bに示すように、上述した第6の変形例と同様に、落下過程にある液滴140は、空中において、その飛行方向が対応する電極パターン130に向かうべく補正され、前記液滴140による微小スポット80は対応する電極パターン130上に正確に落下することとなる。この場合、液滴140が基板10の表面で移動することがないため、液滴移動による痕跡がなく、スポット形状を安定化(均一化)できるという効果がある。
【0116】
このように、第8の変形例においては、上述した第1の変形例と第6の変形例の効果を合わせ持ったものとなり、より好ましい。なお、基板10の材質は、ガラスに限ることなく、セラミックス、プラスチック等の絶縁物であってもよい。
【0117】
このように、第1〜第8の変形例に係る位置ずれ補正手段を用いても、上述した本実施の形態と同様に、分注装置30のずらし幅や試料吐出口54の配列ピッチにばらつきがあったとしても、基板10上に形成される多数の微小スポット80の配列状態を規定の配列ピッチに沿った状態にさせることができ、DNAチップ20の品質の向上並びに歩留まりの向上を図ることができる。
【0118】
なお、この発明に係るDNAチップ及びその製造方法は、上述の実施の形態に限らず、この発明の要旨を逸脱することなく、種々の構成を採り得ることはもちろんである。
【0119】
【発明の効果】
以上説明したように、本発明に係るDNAによれば、分注装置のずらし幅や滴下ノズルの配列ピッチにばらつきがあったとしても、基板上に形成される多数の微小スポットの配列状態を規定の配列ピッチに沿った状態にさせることができる。
【0120】
また、本発明に係るDNAの製造方法によれば、分注装置のずらし幅や滴下ノズルの配列ピッチにばらつきがあったとしても、基板上に形成される多数の微小スポットの配列状態を規定の配列ピッチに沿った状態にさせることができ、DNAチップの品質の向上並びに歩留まりの向上を図ることができる。
【図面の簡単な説明】
【図1】本実施の形態に係るDNAチップ(本実施の形態に係る製造方法で製造されるDNAチップ)を示す斜視図である。
【図2】本実施の形態に係るDNAチップの構成を示す拡大断面図である。
【図3】本実施の形態に係るDNAチップの製造方法を示す工程ブロック図である。
【図4】試料調製工程の内訳を示す工程ブロック図である。
【図5】図5Aは第1の実施の形態に係るDNAチップの製造方法で使用される分注装置の構成を示す平面図であり、図5Bはその正面図であり、図5Cは、分注装置を構成する1つのマイクロピペットを示す拡大平面図である。
【図6】マイクロピペットの構成を示す縦断面図である。
【図7】マイクロピペットの基体内に形成されるキャビティを含む流路の形状を示す斜視図である。
【図8】カートリッジと共に示す分注装置の分解斜視図である。
【図9】分注装置を使用してDNAチップを製造する場合の第1の方法を示す説明図である。
【図10】分注装置を使用してDNAチップを製造する場合の第2の方法を示す説明図である。
【図11】第1の変形例に係る位置ずれ補正手段を示す断面図である。
【図12】第2の変形例に係る位置ずれ補正手段を示す断面図である。
【図13】第3の変形例に係る位置ずれ補正手段を示す断面図である。
【図14】第4の変形例に係る位置ずれ補正手段を示す断面図である。
【図15】第5の変形例に係る位置ずれ補正手段を示す断面図である。
【図16】第6の変形例に係る位置ずれ補正手段を示す断面図である。
【図17】第7の変形例に係る位置ずれ補正手段を示す断面図である。
【図18】第8の変形例に係る位置ずれ補正手段を示す断面図である。
【図19】図19Aは第8の変形例に係る位置ずれ補正手段において第1の変形例と同様の効果を奏することを示す図であり、図19Bは第8の変形例に係る位置ずれ補正手段において第6の変形例と同様の効果を奏することを示す図である。
【符号の説明】
10…基板 12…poly-L-lysine層
14…突起 16…撥水性の膜
18…凹部 20…DNAチップ
22…粗面 30…分注装置
34…マイクロピペット 54…試料吐出口
58…アクチュエータ部 80…微小スポット
130…電極パターン 132…共通電極パターン
134…電源 140…液滴
142…ステージ S1…前処理工程
S2…試料調製工程 S3…供給工程
S11…増幅工程 S12…粉末生成工程
S13…混合工程
[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a DNA chip (DNA microarray) in which several thousand to 10,000 or more different types of DNA fragments are aligned and fixed at high density as microspots on a substrate such as a microscope slide glass, and a method for producing the same.
[0002]
[Prior art]
In recent years, there has been a remarkable progress in gene structure analysis methods, and a large number of gene structures including human genes have been revealed. For such gene structure analysis, a DNA chip (DNA microarray) in which thousands to 10,000 or more different types of DNA fragments are aligned and fixed as microspots on a substrate such as a microscope slide glass is used. It has become to.
[0003]
As a method for forming a microspot in the manufacture of this DNA chip, there are widely used methods such as a QUILL method, a pin & ring method, or a spring pin method for contacting and supplying a sample solution containing a DNA fragment onto a substrate by a so-called pin. Whichever method is used, it is important to keep the distance between the minute spots constant by suppressing the variation in the capacity and shape of each minute spot to a low level.
[0004]
On the other hand, there is a great expectation for the development of a new method that has good controllability of the shape of the microspots and is excellent in productivity for higher density.
[0005]
[Problems to be solved by the invention]
By the way, when a large number of micro spots are formed on a substrate by supplying a sample solution (including dripping), a dispensing device in which a large number of supply nozzles (pins, spring pins, etc.) are arranged in a matrix, for example, is used. I am doing so.
[0006]
Usually, since the arrangement pitch of the supply nozzles is larger than the arrangement pitch of the minute spots formed on the substrate, the sample solution is supplied while shifting the supply position in the dispensing apparatus.
[0007]
At this time, if there is a variation in the shift width of the dispensing device or the arrangement pitch of the supply nozzles, the variation is directly reflected in the arrangement state of the minute spots, and adjacent minute spots join together to form one spot. May be formed.
[0008]
On the other hand, a method of spotting using a so-called ink jet method that has been put into practical use in a printer is also being studied, but when using an ink jet type supply device, the direction of ejected droplets bends, so-called flight bends, satellites and so on. There is a possibility that adjacent minute spots join together to form one spot due to the influence of unnecessary ejection droplets.
[0009]
The present invention has been made in consideration of such a problem, and even when there is variation in the shift width of the dispensing device and the arrangement pitch of the supply nozzles, in the case of using an inkjet type supply device, To provide a DNA chip capable of causing the arrangement state of a large number of micro-spots formed on a substrate to be in a state along a prescribed arrangement pitch even if there is a displacement of the ejected droplets due to flight bends or satellites. Objective.
[0010]
Another object of the present invention is that even if there is a variation in the shift width of the dispensing device or the arrangement pitch of the supply nozzles, and when an inkjet type supply device is used, flight droplets or ejected droplets due to satellites are used. Even if there is a misalignment, the arrangement state of a large number of microspots formed on the substrate can be brought into a state along a prescribed arrangement pitch, and the quality of the DNA chip and the yield can be improved. An object of the present invention is to provide a method for manufacturing a DNA chip capable of
[0011]
[Means for Solving the Problems]
According to the present invention, in a DNA chip in which a large number of microspots are formed on a substrate by supplying a sample solution, the substrate is provided with a misalignment correcting means for automatically correcting misalignment of the microspots.
[0012]
As a result, even when the supply position of the sample solution is shifted from the specified position when the sample solution is supplied onto the substrate, the minute spot due to the supply of the sample solution is moved to the specified position by the position shift correction means. The position shift is corrected.
[0013]
As described above, in the DNA chip according to the present invention, even when the shift width of the dispensing device and the arrangement pitch of the supply nozzles vary, and when the inkjet supply device is used, the flight curve or satellite Even if the position of the ejected droplet is displaced, the arrangement state of a large number of minute spots formed on the substrate can be made to be in a state along a prescribed arrangement pitch.
[0014]
The present invention also provides a DNA chip manufacturing method for manufacturing a DNA chip by supplying a large number of sample solutions onto a substrate, wherein the substrate is a position that automatically corrects a positional deviation of a minute spot due to the supply of the sample solution. A DNA chip is manufactured using a substrate having a deviation correcting means.
[0015]
As a result, even if there are variations in the shift width of the dispensing device and the arrangement pitch of the supply nozzles, and when using an inkjet type supply device, it is assumed that there was a deviation in the position of the ejected droplets due to flight bending or satellites. In addition, the arrangement state of a large number of minute spots formed on the substrate can be brought into a state along a predetermined arrangement pitch, so that the quality of the DNA chip and the yield can be improved.
[0016]
And it is preferable to supply the said sample solution using the supply apparatus of an inkjet system. In this case, the supply device includes an injection port for injecting the sample solution from the outside into at least one or more substrates, a cavity for injecting and filling the sample solution, and an ejection port for discharging the sample solution A piezoelectric / electrostrictive element is provided on at least one wall surface of the substrate forming the cavity, and a plurality of micropipettes configured to move the sample solution in the cavity are arranged. In addition, it is preferably a dispensing device in which different types of sample solutions are discharged from the discharge ports of each micropipette, and more preferably, the movement of the sample solution is a laminar flow.
[0017]
With the inkjet method, minute spots can be formed at high speed, and the speed and liquid volume of the ejected droplets can be freely set. Therefore, the minute spots can be accurately formed in the prescribed liquid amount / shape, and variations between each minute spot can be pinned. There is an advantage that there are few compared with the method performed with a spring pin.
[0018]
In addition, unlike the pin type, the ink jet method forms a minute spot in a non-contact manner, and therefore can be suitably used without physical interference and contact with the position deviation correcting means.
[0019]
Furthermore, with respect to the degree of freedom of design such as the spot amount and discharge speed of the ink jet system, there is an advantage that it is easy to match with the positional deviation correction means. That is, since the amount of positional deviation is large, when large correction is required, for example, by increasing the ejection amount and the ejection speed to increase the spread of the spot on the substrate, it is easy to contact the positional deviation correction means, There is an advantage that the positional deviation correction can be surely performed.
[0020]
As the above-described positional deviation correction means, The surface to be contacted by the minute spot may be a rough surface, and the contact area of the minute spot on the rough surface may be larger than the portion other than the rough surface, The protrusion may be formed at a position where the micro spot is to be formed in the substrate, and the hydrophilic region formed at the position where the micro spot is to be formed in the substrate and the other region. It may be composed of a water-repellent region formed in the part.
[0021]
Further, the above-described misregistration correction means may be a recess formed at a position where the minute spot is to be formed in the substrate, and the minute spot should be formed in the substrate. You may make it make a surface state differ in a part and a part other than that.
[0022]
Further, as the above-mentioned position deviation correcting means, there may be provided an electric field generating means for causing a portion of the substrate where the micro spot is to be formed to be in a charged state opposite to that of the sample solution.
[0023]
For example, when the sample solution is negatively charged (minus charge), the portion where the micro spot is to be formed is in a charged state opposite to the sample solution, that is, a positively charged state (plus charge state). It is preferable to have the electric field generating means for enabling spotting to a specified position with certainty. When the sample solution is in a positively charged state, a portion where a micro spot is to be formed may be in a negatively charged state.
[0024]
Furthermore, when an inkjet method is used as a method for supplying a sample solution, a minute spot can be formed in a non-contact manner, so that the droplet discharge direction is aligned with the electric field direction, and the correction of the dropping position is easy with the electric field. Therefore, it can be used suitably.
[0025]
In addition, when the sample solution is a solution containing a DNA fragment, in order to make the positional displacement correction effect due to an electric field more effective, a functional group for adding a charge is added to the DNA fragment, or the DNA fragment is included in the charged solution. It is also preferable to disperse.
[0026]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Hereinafter, embodiments of the DNA chip and the method for producing the same according to the present invention will be described with reference to FIGS.
[0027]
As shown in FIG. 1, the DNA chip 20 according to the present embodiment is configured by arranging a large number of microspots 80 by supplying (including dropping) a sample solution on a substrate 10. In particular, on the substrate 10, a misalignment correcting means for automatically correcting misalignment of the minute spot 80 is provided.
[0028]
Specifically, as shown in FIG. 2, the substrate 10 has a hydrophilic poly-L-lysine layer 12 formed on the surface thereof, and a position on the substrate 10 where the micro spot 80 is to be formed. A projection 14 is formed at each central portion of the. These protrusions 14 function as misalignment correction means.
[0029]
That is, as shown in FIG. 2, when a micro spot 80 is formed on the substrate 10 by supplying a sample solution, when a part of the micro spot 80 hits the protrusion 14 (see the two-dot chain line), Due to the surface tension of the microspot 80, the microspot 80 moves, and the center position of the microspot 80 and the protrusion 14 are substantially coincident.
[0030]
As described above, in the DNA chip 20 according to the present embodiment, even if the minute spot 80 is dropped from the prescribed position, the spot is moved to the prescribed position by the protrusion 14 formed on the substrate 10, The positional deviation is corrected.
[0031]
By the way, in order to manufacture the DNA chip 20 by forming the micro spot 80 by supplying the sample solution on the substrate 10, for example, the manufacturing process shown in FIG. 3 is performed.
[0032]
That is, a pretreatment step S1 for forming a poly-L-lysine layer 12 (see FIG. 2) on the surface of the substrate 10, a sample preparation step S2 for preparing a sample solution containing DNA fragments, and the obtained sample solution as a substrate The DNA chip 20 is manufactured through the supply process S3 to be supplied onto the substrate 10.
[0033]
As shown in FIG. 4, the sample preparation step S2 includes an amplification step S11 for PCR amplification of a DNA fragment to prepare a PCR product, a powder generation step S12 for drying the obtained PCR product to obtain a DNA powder, And a mixing step S13 in which the obtained DNA powder is dissolved in a buffer solution.
[0034]
Specifically, in the pretreatment step S1, first, the substrate 10 is immersed in an alkaline solution and slowly shaken at room temperature for at least 2 hours. The alkaline solution is, for example, a solution in which NaOH is dissolved in distilled water, ethanol is further added, and the mixture is stirred until it is completely transparent.
[0035]
Thereafter, the substrate 10 is taken out, moved into distilled water, rinsed, and the alkaline solution is removed. Next, the substrate 10 is immersed in a poly-L-lysine solution prepared by adding poly-L-lysine in distilled water and left for 1 hour.
[0036]
Thereafter, the substrate 10 is taken out and centrifuged in a centrifuge to remove excess poly-L-lysine solution. Next, the substrate 10 is dried at 40 ° C. for about 5 minutes to obtain the substrate 10 on which the poly-L-lysine layer 12 is formed.
[0037]
Next, in the sample preparation step S2, first, 3Msodium acetate and isopropanol are added to a PCR product (amplification step S11) amplified by a known PCR machine and left for several hours. Thereafter, the PCR product solution is centrifuged with a centrifuge to precipitate DNA fragments.
[0038]
The precipitated DNA fragment is rinsed with ethanol, centrifuged, and dried to generate DNA powder (powder generation step S12). A sample solution is prepared by adding × 1 TE buffer to the obtained DNA powder and allowing it to stand for several hours to completely dissolve (mixing step S13). The concentration of the sample solution at this stage is 1 to 10 μg / μl. After this, the immobilization liquid may be supplied from the sample injection port 52 into the cavity 56.
[0039]
And in this Embodiment, the obtained sample solution is supplied on the board | substrate 10, and the DNA chip 20 is manufactured (supply process S3). The immobilization solution may be mixed with the sample solution obtained through the sample preparation step S2, or the sample solution may be diluted. In this case, an aqueous solution containing water or NaCl or an aqueous solution containing a polymer can be used as a diluent.
[0040]
Furthermore, when manufacturing the DNA chip 20 in this embodiment, for example, the dispensing device 30 shown in FIGS. 5A to 7 is effectively used.
[0041]
As shown in FIGS. 5A and 5B, the dispensing device 30 has, for example, ten micropipettes 34 arranged in five rows and two columns on the upper surface of a rectangular fixed plate 32 and arranged in the direction of each column. The pipette 34 group is configured to be fixed to the fixing plate 32 via the fixing jig 36.
[0042]
As shown in FIGS. 5C and 6, the micropipette 34 includes a sample injection port 52 formed on the upper surface of the substrate 50 having a substantially rectangular parallelepiped shape, a sample discharge port 54 formed on the lower surface of the substrate 50, and A cavity 56 formed between the sample injection port 52 and the sample discharge port 54 and an actuator unit 58 that vibrates the base body 50 and changes the volume of the cavity 56 are configured. .
[0043]
Accordingly, as shown in FIG. 6, the fixing plate 32 is provided with through holes 40 at locations corresponding to the sample discharge ports 54 of the micropipette 34. As a result, the sample solution discharged from the sample discharge port 54 of the micropipette 34 is supplied to the substrate 20 fixed below, for example, the fixed plate 32 through the through hole 40.
[0044]
The micropipette 34 has a substantially L-shaped introduction hole 60 having a large opening width from the sample injection port 52 to the inside of the substrate 50. A first communication hole 62 having a small diameter is formed between the introduction hole 60 and the cavity 56, and the sample solution injected from the sample injection port 52 passes through the introduction hole 60 and the first communication hole 62 to form the cavity 56. To be introduced.
[0045]
A second communication hole 64 communicating with the sample discharge port 54 and having a diameter larger than that of the first communication hole 62 is formed at a position different from the first communication hole 62 in the cavity 56. . In the present embodiment, the first communication hole 62 is formed near the sample injection port 52 in the lower surface of the cavity 56, and the second communication is formed at a position corresponding to the sample discharge port 54 in the lower surface of the cavity 56. A hole 64 is formed.
[0046]
Further, in this embodiment, the portion of the base body 50 that is in contact with the upper surface of the cavity 56 is thin, and has a structure that is susceptible to vibration against external stress, and functions as the vibrating portion 66. Yes. The actuator portion 58 is formed on the upper surface of the vibration portion 66.
[0047]
The substrate 50 is formed by laminating a plurality of zirconia ceramic green sheets (first thin plate layer 50A, first spacer layer 50B, second thin plate layer 50C, second spacer layer 50D, and third thin plate layer 50E). And it is configured to be integrally fired.
[0048]
That is, the base 50 is formed with a window portion that constitutes the sample injection port 52, and a thin first thin plate layer 50 </ b> A that constitutes the vibrating portion 66, a part of the introduction hole 60, and the cavity 56. A plurality of window portions constituting the thick first spacer layer 50B formed with a plurality of window portions, a part of the introduction hole 60, a part of the first communication hole 62 and a part of the second communication hole 64, respectively. And a second thin plate layer 50C formed with a plurality of window portions constituting a part of the introduction hole 60 and a part of the second communication hole 64, respectively. The layer 50D and the thin third thin plate layer 50E in which the window constituting the sample discharge port 54 is formed are laminated and integrally fired.
[0049]
In addition to the vibration part 66, the actuator part 58 includes a lower electrode 70 directly formed on the vibration part 66, and a piezoelectric / electrostrictive layer, an antiferroelectric layer, or the like formed on the lower electrode 70. The layer 72 includes an upper electrode 74 formed on the upper surface of the piezoelectric layer 72.
[0050]
As shown in FIG. 5C, the lower electrode 70 and the upper electrode 74 are electrically connected to a drive circuit (not shown) through a plurality of pads 76 and 78 formed on the upper surface of the substrate 50, respectively.
[0051]
According to the micropipette 34 having the above-described configuration, when an electric field is generated between the upper electrode 74 and the lower electrode 70, the piezoelectric layer 72 is deformed, and accordingly, the vibrating portion 66 is deformed, and the vibrating portion 66 is deformed. The volume of the cavity (pressurizing chamber) 56 in contact is reduced.
[0052]
As the volume of the cavity 56 is reduced, the sample solution filled in the cavity 56 is discharged from the sample discharge port 54 communicating with the cavity 56 at a predetermined speed, and the sample solution discharged from the micropipette 34 as shown in FIG. The DNA chip 20 can be fabricated in which the microspots 80 are aligned and fixed on the substrate 50 such as a microscope slide glass.
[0053]
In this case, since the arrangement pitch of the sample discharge ports 54 in the dispensing apparatus 30 is larger than the arrangement pitch of the micro spots 80 formed on the substrate 10, the sample solution is supplied while shifting the supply position in the dispensing apparatus 30. It will be.
[0054]
At this time, even if the shift width of the dispensing device 30 and the arrangement pitch of the sample discharge ports 54 vary, the minute spot 80 due to the supply of the sample solution is defined by the protrusion 14 formed on the substrate 10. And the positional deviation is corrected. Therefore, in this embodiment, the arrangement state of a large number of minute spots 80 formed on the substrate 10 can be brought into a state along a prescribed arrangement pitch.
[0055]
Furthermore, after the position correction, it is also preferable to add the moisture to the substrate 10 to facilitate the movement of the minute spot 80 and to move the minute spot 80 to the protrusion 14. Moreover, the effect that the cross-sectional shape of the minute spots 80 concentrated on the protrusions 14 can be corrected to a hemispherical shape can be expected, which is preferable.
[0056]
In addition, as a structure in which the volume of the cavity 56 is reduced by driving the actuator portion 58, a so-called ink jet type apparatus structure can be adopted (see Japanese Patent Laid-Open No. 6-40030).
[0057]
The cavity (pressurizing chamber) 56 is preferably formed with a flow path dimension so that the sample solution containing DNA fragments and the like moves in a laminar flow.
[0058]
That is, the size of the cavity 56 differs depending on the type of sample, the size of the droplet to be created, and the formation density. For example, a DNA fragment of about 1 to 10,000 base pairs is buffered (TE buffer) at a concentration of 1 μg / μl. When the sample dispersed in () is dropped at a pitch of several hundred μm at a pitch of several hundred μm, the cavity length (L) is 1 to 5 mm and the cavity width (W) is as shown in FIG. 0.1 to 1 mm and the cavity depth (D) is preferably 0.1 to 0.5 mm. Further, the inner wall of the cavity 56 is preferably smooth so that there are no protrusions that disturb the flow, and the material is preferably made of ceramics having good affinity for the sample solution.
[0059]
With this shape, the cavity 56 is used as a part of the flow path from the sample injection port 52 to the sample discharge port 54, and enters the cavity 56 from the sample injection port 52 through the introduction hole 60 and the first communication hole 62. It is possible to guide the sample solution to the sample discharge port 54 without disturbing the flow of the sample solution.
[0060]
Incidentally, as shown in FIG. 5A, a plurality of pins 38 for positioning and fixing the micropipette 34 are provided on the upper surface of the fixing plate 32. When the micropipette 34 is fixed on the fixing plate 32, the micropipette 34 is inserted into the positioning holes 90 (see FIG. 5C) provided on both sides of the base 50 of the micropipette 34 while the pins 38 of the fixing plate 32 are inserted. Is placed on the fixed plate 32, the plurality of micropipettes 34 are automatically arranged and positioned in a predetermined arrangement.
[0061]
Each fixing jig 36 includes a pressing plate 100 that presses the plurality of micropipettes 34 against the fixing plate 32. Insertion holes into which the screws 102 are inserted are formed at both ends of the holding plate 100, and the screws 102 are inserted into the insertion holes and screwed into the fixing plate 32. Can be pressed against the fixed plate 32 at a time. A plurality of micropipettes 34 pressed by one pressing plate 100 constitutes one unit. The example of FIG. 5A shows an example in which one unit is configured by five micropipettes 34 arranged in the row direction.
[0062]
In addition, when a plurality of micropipettes 34 are pressed into the holding plate 100, the introduction holes 104 (see FIG. 5B) for supplying the sample solution to locations corresponding to the sample injection ports 52 of the micropipettes 34, respectively. The tubes 106 for guiding the sample solution to the introduction holes 104 are held at the upper ends of the introduction holes 104, respectively.
[0063]
Note that the width of the pressing plate 100 is determined so that the pads 76 and 78 connected to the electrodes 70 and 74 of the actuator portion 58 when the plurality of micropipettes 34 are pressed against the fixed plate 32 are taken into consideration for the efficiency of wiring work. The dimensions are preferably such that they face upward.
[0064]
Thus, the above-described dispensing apparatus 30 is configured by standing a plurality of micropipettes 34 each having the sample injection port 52 and the sample discharge port 54 with the sample discharge port 54 facing downward. Yes.
[0065]
That is, each micropipette 34 has the respective sample injection ports 52 on the upper side, the sample discharge ports 54 on the lower side, and the sample discharge ports 54 arranged vertically and horizontally. Different sample solutions are discharged.
[0066]
In the dispensing apparatus 30 having such a configuration, as a method of supplying different types of sample solutions corresponding to the respective sample inlets 52, for example, as shown in FIG. There is a method of using a cartridge 112 in which concave portions (reservoir portions) 110 are arranged. In this method, different types of sample solutions are put in the respective recesses 110 of the cartridge 112, the cartridges 112 are attached so that the respective recesses 110 and the tubes 106 correspond to each other, and the bottom of each recess 110 is opened with a needle or the like. Thus, a method of supplying the sample solution in each recess 110 to each micropipette 34 through the tube 106 can be considered.
[0067]
When the tube 106 is not used, the cartridge 112 is attached so that each recess 110 and each introduction hole 104 of the fixing jig 36 correspond to each other, and the bottom of each recess 110 is opened with a needle or the like. In addition to supplying the sample solution in the recess 110 to each micropipette 34 through the introduction hole 104, a needle or the like is previously formed in the vicinity of each introduction hole 104 in the fixing jig 36 to fix the cartridge 112. Each recess 110 may be opened simultaneously with attachment to the tool 36.
[0068]
In addition, you may add the mechanism which pumps gas etc. after opening and forcibly pushes out a sample solution. Further, providing a mechanism for cleaning the space from the sample injection port 52 to the sample discharge port 54 formed in the base 50 of each micropipette 34 contaminates thousands to tens of thousands of DNA fragments. In addition, it is desirable to eject the fine spot 80 with high purity.
[0069]
In the example of FIG. 5A, both ends of the pressing plate 100 are fastened to the fixing plate 20 with screws 102, but the fixing method of the pressing plate 100 is not only mechanically performed with screws, springs, but also with an adhesive or the like. You may go.
[0070]
Moreover, the base | substrate 50 which comprises the micropipette 34 is formed with ceramics as mentioned above, for example, stabilized zirconia, partially stabilized zirconia, alumina, magnesia, silicon nitride, etc. can be used.
[0071]
Of these, stabilized / partially stabilized zirconia is most preferably employed because of its high mechanical strength, high toughness, and low reactivity with the piezoelectric layer 72 and the electrode material even in a thin plate.
[0072]
When stabilized / partially stabilized zirconia is used as the material for the substrate 50 or the like, an additive such as alumina or titania is contained at least in the portion where the actuator portion 58 is formed (vibrating portion 66). It is preferable.
[0073]
In addition, the piezoelectric layer 72 constituting the actuator unit 58 is made of, for example, lead zirconate, lead titanate, lead magnesium niobate, lead magnesium tantalate, lead nickel niobate, lead zinc niobate, manganese niobate as piezoelectric ceramics. A composite ceramic containing lead, lead antimony stannate, lead manganese tungstate, lead cobalt niobate, barium titanate, etc., or a combination of any of these can be used. A material mainly composed of components composed of lead oxide, lead titanate and lead magnesium niobate is preferably used.
[0074]
This is because such a material has a high electromechanical coupling coefficient and a piezoelectric constant, and has low reactivity with the base material during sintering of the piezoelectric layer 72, so that a material having a predetermined composition can be stably formed. Because it is based on what can be done.
[0075]
Further, in the present embodiment, the piezoelectric ceramic includes lanthanum, calcium, strontium, molybdenum, tungsten, barium, niobium, zinc, nickel, manganese, cerium, cadmium, chromium, cobalt, antimony, iron, yttrium, tantalum, lithium. Further, ceramics to which oxides such as bismuth and tin, or any combination thereof, or other compounds are appropriately added may be used.
[0076]
For example, it is also preferable to use a ceramic containing lead zirconate, lead titanate and lead magnesium niobate as main components and containing lanthanum or strontium.
[0077]
On the other hand, the upper electrode 74 and the lower electrode 70 in the actuator unit 58 are preferably made of a solid and conductive metal at room temperature, for example, aluminum, titanium, chromium, iron, cobalt, nickel, copper Zinc, Niobium, Molybdenum, Ruthenium, Palladium, Rhodium, Silver, Tin, Tantalum, Tungsten, Iridium, Platinum, Gold, Lead, etc. A cermet material in which the same material as the layer 72 and the substrate 50 is dispersed may be used.
[0078]
Next, the first and second methods for manufacturing the DNA chip 20 using the dispensing device 30 will be described with reference to FIGS.
[0079]
First, as shown in FIG. 9, different types of sample solutions are filled into the cavities 56 of the micropipettes 34 from the tubes 106 through the introduction holes 104 of the fixing jig 36, respectively, as shown in FIG. Next, each actuator unit 58 is driven to discharge the sample solution from the sample discharge port 54 of each micropipette 34. As a method of filling the solution into the cavity 56, the solution may be injected by the capillary force of the solution introduced from the sample injection port 52, but a method of filling the solution by vacuum suction from the sample discharge port 54 is reliable.
[0080]
Here, of the voltage waveforms applied to the electrodes 70 and 74 of the actuator unit 58, when the actuator unit 58 is turned on to reduce the volume of the cavity 56, a pulsed voltage is applied to the electrodes 70 and 74. Will be applied. In this case, by increasing the amplitude of the pulse, the deformation of the vibrating section 66 increases, and the amount of sample solution discharged increases accordingly. In addition, when a plurality of pulses are applied during a certain period, a large amount of a small amount of sample solution can be discharged by shortening the pulse period and reducing the amplitude of each pulse.
[0081]
At this time, by appropriately changing the supply position, the supplied sample solutions are combined on the substrate 10 (combined) to become a sample solution having one spot diameter, but depending on the type of the sample solution to be supplied, The spot diameter formed on the substrate 10 can be made uniform by controlling the number of supply, the supply position, and the amount of supply at one time.
[0082]
Next, a second method using the dispensing device 30 will be described. In this second method, as shown in FIG. 10, an aqueous solution or a polymer containing a buffer solution or NaCl is introduced from each tube 106 into the cavity 56 of each micropipette 34 through the introduction hole 104 of the fixing jig 36. A replacement liquid such as an aqueous solution is filled, and then the sample is injected from the sample injection port 52 into the cavity 56 while performing laminar flow replacement, and then the completion of the replacement is awaited. Thereafter, the actuator unit 58 is driven to discharge and supply the sample solution onto the substrate 10.
[0083]
The completion of the laminar flow replacement of the sample in the cavity 56 is preferably grasped by detecting a change in fluid characteristics in the cavity 56.
[0084]
The replacement of the replacement liquid and the sample in the cavity 56 is preferably performed in a laminar flow. However, when the type of the sample is changed or the moving speed of the liquid is very high, the first of the cavities 56 is changed. The vicinity of one communication hole 62 may not necessarily be a laminar flow. In this case, the purge amount of the sample solution increases due to the mixing of the sample and the replacement solution, but the increase in the purge amount can be suppressed to a minimum by detecting the change in the fluid characteristics in the cavity 56 and determining the completion of the replacement. it can.
[0085]
Here, the change in the fluid characteristics in the cavity 56 is grasped by applying a voltage that excites vibration to the actuator unit 58 and detecting a change in electrical constant associated with the vibration. Such detection of changes in fluid characteristics is disclosed in, for example, Japanese Patent Application Laid-Open No. 8-201265.
[0086]
Specifically, the electrical connection from the discharge driving power source is disconnected by a relay at a predetermined interval with respect to the actuator unit 58, and at the same time, the means for measuring the resonance frequency is connected by the relay, and at that time Impedance or resonance characteristics such as resonance frequency and attenuation rate are electrically measured.
[0087]
Thereby, it can be grasped whether the viscosity, specific gravity, etc. of a liquid are the target samples (liquid containing a DNA fragment etc.). That is, in each micropipette 34, since the micropipette 34 itself functions as a sensor, the configuration of the micropipette 34 can be simplified.
[0088]
Then, the DNA chip 20 is manufactured by driving the actuator unit 58 under a driving condition corresponding to the amount of liquid droplets corresponding to the required spot diameter and repeating the supply of the sample solution. Usually, one microspot 80 is ejected from the micropipette 34 to form one minute spot 80.
[0089]
When the amount of the sample in the sample injection port 52 decreases, a buffer solution is added so that bubbles do not enter the flow path, and the discharge is continued, so that the sample solution is put into the micropipette 34. Can be used up without leaving. Completion of replacement of the sample with the replacement liquid (end of sample discharge) is similarly performed by detecting the viscosity and specific gravity of the liquid using the actuator unit 58.
[0090]
Moreover, as a substitution liquid and a sample to be used, it is preferable to use a solution in which dissolved gas in the solution is removed in advance through a degassing operation. By using such a solution, when filling the solution into the flow path of the micropipette 34, even if bubbles get caught in the middle of the flow path and the filling is inadequate, the bubbles are dissolved in the solution. In addition to being avoidable, bubbles are not generated in the fluid in the middle of discharge, and no discharge failure occurs.
[0091]
In the second method described above, while discharging the sample solution, a replacement solution such as an aqueous solution containing a buffer solution or NaCl, or an aqueous solution containing a polymer is injected into the cavity 56 from the sample injection port 52, and the cavity 56 is discharged. The sample solution remaining inside can be completely discharged to prepare for the next sample injection.
[0092]
Similarly, whether or not the sample solution remains in the cavity 56 (whether or not the sample solution can be discharged) can be detected by detecting a change in fluid characteristics in the cavity 56. In this case, the purge amount of the sample that is not used by the replacement completion detection mechanism can be extremely reduced, and the use efficiency of the sample solution can be improved.
[0093]
Further, when the sample is filled into the cavity 56 from the sample injection port 52, the sample may be replaced from the sample injection port 52 into the cavity 56 while the actuator unit 58 is driven. In this case, the inside of the cavity 56 can be surely replaced with an inexpensive replacement liquid in advance, and as a result, the occurrence of defective discharge can be completely prevented, and an expensive sample can be discharged efficiently.
[0094]
Further, the cavity 56 is filled with a replacement solution such as an aqueous solution containing a buffer solution or NaCl, or an aqueous solution containing a polymer, and the amount of the replacement solution in the cavity 56 and the sample inlet 52 is adjusted to a predetermined amount. Next, after injecting the sample solution by a predetermined amount from the sample injection port 52, the actuator unit 58 is driven by a predetermined number of pulses, and the amount of the replacement liquid in the cavity 56 and the sample injection port 52 is increased. It may be discharged.
[0095]
By doing so, the amount of the replacement liquid in the cavity 56 and the sample injection port 52 is accurately discharged, and the filling of the sample solution can be completed without waste.
[0096]
As described above, in the DNA chip 20 according to the present embodiment, the substrate 10 is provided with the protrusions 14 as the positional deviation correction means for automatically correcting the positional deviation of the minute spot 80. When the sample solution is supplied to the microspot 80, even if the supply position is deviated from the specified position, the microspot 80 due to the supply of the sample solution is moved to the specified position by the projection 14, and the misalignment is corrected. Will be.
[0097]
As described above, in the DNA chip 20 and the manufacturing method thereof according to the present embodiment, even if there are variations in the shifting width of the dispensing device 30 and the arrangement pitch of the sample discharge ports 54, they are formed on the substrate 10. The arrangement state of a large number of microspots 80 can be brought into a state along a predetermined arrangement pitch, and the quality of the DNA chip 20 and the yield can be improved.
[0098]
Next, a modified example of the positional deviation correction means provided on the substrate 10 will be described with reference to FIGS.
[0099]
In the first modification, as shown in FIG. 11, a hydrophilic region Z1 is formed at a position where a minute spot 80 is to be formed in the substrate 10, and a water-repellent region Z2 is formed at other portions. It is different. Specifically, this is achieved by forming the water repellent film 16 in a portion other than the position where the micro spot 80 is to be formed. As the water repellent film 16, for example, Si coat, fluororesin, or the like can be used.
[0100]
According to this, as shown in FIG. 11, when the micro spot 80 is formed on the substrate 10 by supplying the sample solution, a part of the micro spot 80 is applied to the water-repellent film 16 (2 The fine spot 80 is moved by the surface tension of the fine spot 80 and the water repellent action of the film 16, and the center of the fine spot 80 can be positioned at a predetermined position. In this case, even when a part of the minute spot 80 is applied to the water-repellent film 16, the film 16 is water-repellent, so there is no trace after the sample solution has moved, and the spot shape after immobilization is hydrophilic. Only the portion has a shape, and variations in shape are reduced.
[0101]
In the second modification, as shown in FIG. 12, in the water repellent film 16, a tapered surface 16a inclined downward toward the hydrophilic region Z1 is provided only in the peripheral portion of the hydrophilic region Z1. An example is shown. In this case, as indicated by the alternate long and short dash line, even when the minute spot 80 is applied to the water-repellent film 16, the water-repellent action of the water-repellent film 16, the surface tension of the minute spot 80, and the gravity due to the inclination of the tapered surface. Thus, the micro spot 80 moves to a position where the micro spot 80 is to be formed, and the center of the micro spot 80 can be positioned at a predetermined position.
[0102]
As shown in FIG. 13, the third modification is different in that a recess 18 is formed at a position on the substrate 10 where the minute spot 80 is to be formed.
[0103]
According to this, as shown in FIG. 13, when the micro spot 80 is formed on the substrate 80 by supplying the sample solution, a part of the micro spot 80 is applied to the shoulder portion of the recess 18 (2 The fine spot 80 is moved by the surface tension of the fine spot 80, and the fine spot 80 can be positioned in the recess 18. In this case, when the sample solution enters the recess 18, the sample film thickness is made uniform, and the variation in spot thickness can be reduced. As a result, there is an advantage that it is possible to suppress sensitivity variations and sensitivity degradation when inspecting fluorescence emitted by spots.
[0104]
As shown in FIG. 14, the fourth modification is an example in which a plurality of convex portions 150 are formed in the peripheral portion of the portion where the micro spot 80 is formed, or an annular convex portion 152 is formed in the peripheral portion. Show. In the case of the annular convex portion 152, the portion where the minute spot 80 is formed is formed in a crater shape. In the case of the fourth modified example, in addition to the effect of the third modified example described above, there is an effect that the minute spots 80 are easily collected at a predetermined position (position where the minute spots 80 are to be formed). In particular, if the skirt portions of the convex portions 150 and 152 are formed on the gentle inclined surface 154, the above effect becomes even more remarkable.
[0105]
The convex portions 150 and 152 as described above are formed on the substrate 12 by spotting by appropriately adjusting the jetting pressure, the distance between the jet nozzle and the substrate 12, etc., by an ink jet system that has been put to practical use in a printer. can do.
[0106]
As shown in FIG. 15, the fifth modification is different in that the surface state of the substrate 10 is different between the portion where the minute spot 80 is to be formed and the other portion.
[0107]
According to this, as shown in FIG. 15, when the micro spot 80 is formed on the substrate 10 by supplying the sample solution, a part of the micro spot 80 is applied to a portion other than the rough surface 22 ( The fine spot 80 is moved by the surface tension of the fine spot 80, and the center of the fine spot 80 can be positioned at a predetermined position. In this case, as in the first modified example described above, even when a part of the minute spot 80 is applied to a portion other than the rough surface 22, the portion other than the rough surface 22 has no trace after the sample has moved, The spot shape after immobilization becomes the shape of only the rough surface 22, and variation in shape is reduced. Further, since the contact surface of the micro spot 80 is a rough surface, the contact area is large, and the micro spot 80 is firmly fixed to the substrate 10, so that the sample solution can be prevented from flowing out at the time of fixation after spotting.
[0108]
The surface state changes such as the formation of the tapered surface 16a and the formation of the concave portion 18 and the rough surface 22 in the second, third, and fifth modified examples described above are processes such as blasting, laser processing, and cutting. Can process a large number of substrates at a time, which is preferable because it can be implemented at low cost.
[0109]
In the sixth modified example, misalignment correction is performed by applying an electric field. Specifically, for example, as shown in FIG. 16, a large number of electrode patterns 130 made of a metal film are formed in portions corresponding to locations where the micro spots 80 are to be formed in the lower layer of the poly-L-lysine layer 12 in the substrate 10. Further, a common electrode pattern 132 made of a metal film common to the electrode patterns 130 is formed in the lower layer.
[0110]
Then, a power source 134 is connected between the common electrode pattern 132 and, for example, ground, and each electrode pattern 130 is charged, for example, to the + side. In this state, when the micro spot 80 is formed on the substrate 10 by supplying the sample solution, the sample solution constituting the micro spot 80 is charged to the negative side, so that a part of the micro spot 80 is an electrode pattern. When placed on 130 (see the two-dot chain line), the fine spot 80 moves onto the electrode pattern 130 by the attractive force of the electric field, and the center of the fine spot 80 is positioned at a specified position.
[0111]
Further, if the electric field strength is increased, the droplet 140 ejected from the sample ejection port 54 of each micropipette 34 is corrected so that its flight direction is directed to the corresponding electrode pattern 130 in the air. The spot 80 will accurately fall on the corresponding electrode pattern 130. In this case, since the droplet 140 does not move on the surface of the substrate 10, there is no trace due to the droplet movement, and the spot shape can be stabilized (uniformized).
[0112]
As shown in FIG. 17, the seventh modified example has substantially the same principle as the sixth modified example (see FIG. 16) described above, but a predetermined electrode pattern 130 is placed on the stage 142 on which the substrate 10 is placed and fixed. And 132 are provided. In this case, since it is not necessary to provide the electrode patterns 130 and 132 on the substrate 10, there is an advantage that it can be implemented at low cost.
[0113]
In the eighth modification, as shown in FIG. 18, the substrate 10 is made of glass, for example, and predetermined electrode patterns 130 and 132 are formed in the substrate 10. In particular, the electrode pattern 130 is formed on the substrate 10. It is an example exposed on the surface. The voltage supply to the electrode patterns 130 and 132 is performed through the electrode 144 formed on the stage 142.
[0114]
In the eighth modified example, the glass surface of the substrate 10 exhibits water repellency, and the electrode pattern 130 exposed on the glass surface exhibits hydrophilicity. Therefore, for example, as shown in FIG. As shown, when the microspot 80 is formed on the substrate 10 by supplying the sample solution, when a part of the microspot 80 is applied to the water-repellent glass surface (see the two-dot chain line), Due to the surface tension of 80 and the water repellent action of the glass surface, the minute spot 80 moves and the center of the minute spot 80 can be positioned at a predetermined position. In this case, even when a part of the minute spot 80 is applied to the glass surface, the glass surface is water-repellent, so there is no trace after the sample solution has moved, and the spot shape after immobilization is only a hydrophilic part. It becomes a shape and variation in shape is reduced.
[0115]
Further, when the electric field strength is increased, as shown in FIG. 19B, as in the above-described sixth modification, the droplet 140 that is in the process of dropping should have its flight direction directed toward the corresponding electrode pattern 130 in the air. As a result of the correction, the minute spot 80 by the droplet 140 accurately falls on the corresponding electrode pattern 130. In this case, since the droplet 140 does not move on the surface of the substrate 10, there is no trace due to the droplet movement, and the spot shape can be stabilized (uniformized).
[0116]
As described above, the eighth modification example is more preferable because it combines the effects of the first modification example and the sixth modification example described above. The material of the substrate 10 is not limited to glass but may be an insulator such as ceramics or plastic.
[0117]
As described above, even when the positional deviation correction means according to the first to eighth modifications are used, the shift width of the dispensing device 30 and the arrangement pitch of the sample discharge ports 54 vary as in the above-described embodiment. Even if there is, the arrangement state of a large number of microspots 80 formed on the substrate 10 can be brought into a state along a prescribed arrangement pitch, and the quality of the DNA chip 20 and the yield can be improved. Can do.
[0118]
In addition, the DNA chip and the manufacturing method thereof according to the present invention are not limited to the above-described embodiments, and various configurations can be adopted without departing from the gist of the present invention.
[0119]
【The invention's effect】
As described above, according to the DNA of the present invention, even if there are variations in the shifting width of the dispensing device and the arrangement pitch of the dropping nozzles, the arrangement state of a large number of minute spots formed on the substrate is defined. It can be made to be in a state along the arrangement pitch.
[0120]
In addition, according to the DNA production method of the present invention, even if there are variations in the shifting width of the dispensing device and the arrangement pitch of the dropping nozzles, the arrangement state of a large number of minute spots formed on the substrate is defined. It is possible to achieve a state along the arrangement pitch, and it is possible to improve the quality of the DNA chip and the yield.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a perspective view showing a DNA chip according to the present embodiment (a DNA chip manufactured by the manufacturing method according to the present embodiment).
FIG. 2 is an enlarged cross-sectional view showing a configuration of a DNA chip according to the present embodiment.
FIG. 3 is a process block diagram showing a DNA chip manufacturing method according to the present embodiment.
FIG. 4 is a process block diagram showing a breakdown of a sample preparation process.
FIG. 5A is a plan view showing a configuration of a dispensing apparatus used in the method for producing a DNA chip according to the first embodiment, FIG. 5B is a front view thereof, and FIG. It is an enlarged plan view which shows one micropipette which comprises an injection apparatus.
FIG. 6 is a longitudinal sectional view showing a configuration of a micropipette.
FIG. 7 is a perspective view showing the shape of a flow path including a cavity formed in a base of a micropipette.
FIG. 8 is an exploded perspective view of the dispensing device shown together with the cartridge.
FIG. 9 is an explanatory diagram showing a first method when a DNA chip is manufactured using a dispensing apparatus.
FIG. 10 is an explanatory view showing a second method when a DNA chip is manufactured using a dispensing apparatus.
FIG. 11 is a cross-sectional view showing a misregistration correction unit according to a first modification.
FIG. 12 is a cross-sectional view showing a misregistration correction unit according to a second modification.
FIG. 13 is a cross-sectional view showing a misregistration correction unit according to a third modification.
FIG. 14 is a cross-sectional view showing a misregistration correction unit according to a fourth modification.
FIG. 15 is a cross-sectional view showing a misregistration correction unit according to a fifth modification.
FIG. 16 is a cross-sectional view showing a misregistration correction unit according to a sixth modification.
FIG. 17 is a cross-sectional view showing a misregistration correction unit according to a seventh modification.
FIG. 18 is a cross-sectional view showing a misregistration correction unit according to an eighth modification.
FIG. 19A is a diagram showing that the misalignment correction unit according to the eighth modification has the same effect as the first modification, and FIG. 19B is a misalignment correction according to the eighth modification. It is a figure which shows having the effect similar to the 6th modification in a means.
[Explanation of symbols]
10 ... Substrate 12 ... poly-L-lysine layer
14 ... Protrusions 16 ... Water-repellent film
18 ... recess 20 ... DNA chip
22 ... Rough surface 30 ... Dispensing device
34 ... Micro pipette 54 ... Sample outlet
58 ... Actuator part 80 ... Minute spot
130 ... Electrode pattern 132 ... Common electrode pattern
134 ... Power supply 140 ... Droplet
142 ... stage S1 ... pretreatment process
S2 ... Sample preparation process S3 ... Supply process
S11 ... Amplification process S12 ... Powder production process
S13 ... mixing process

Claims (7)

基板上に試料溶液の供給による微小スポットが多数形成されたDNAチップにおいて、
前記基板は、前記微小スポットの位置ずれを自動的に補正する位置ずれ補正手段を有し、前記位置ずれ補正手段は、前記微小スポットの接触すべき面が粗面であり、該粗面における前記微小スポットの接触面積が前記粗面以外の部分よりも大きいことを特徴とするDNAチップ。
In a DNA chip in which a large number of micro spots are formed on a substrate by supplying a sample solution,
The substrate may have a positional deviation correcting means for automatically correcting the positional deviation of the minute spot, the positional deviation correcting means includes a surface to be contacted of the minute spot is rough, the in crude surface A DNA chip characterized in that a contact area of a minute spot is larger than a portion other than the rough surface .
基板上に試料溶液の供給による微小スポットが多数形成されたDNAチップにおいて、
前記基板は、前記微小スポットの位置ずれを自動的に補正する位置ずれ補正手段を有し、前記位置ずれ補正手段は、前記基板のうち、前記微小スポットが形成されるべき位置に形成された突起であることを特徴とするDNAチップ。
In a DNA chip in which a large number of micro spots are formed on a substrate by supplying a sample solution,
The substrate includes a position deviation correction unit that automatically corrects a position deviation of the minute spot, and the position deviation correction unit is a protrusion formed at a position on the substrate where the minute spot is to be formed. A DNA chip characterized by
試料溶液を基板上に多数供給してDNAチップを製造するDNAチップの製造方法において、In a method for producing a DNA chip in which a large number of sample solutions are supplied onto a substrate to produce a DNA chip,
前記基板として、前記試料溶液の供給による微小スポットの位置ずれを自動的に補正する位置ずれ補正手段を有し、前記位置ずれ補正手段は、前記微小スポットの接触すべき面が粗面であり、該粗面における前記微小スポットの接触面積が前記粗面以外の部分よりも大きいことを特徴とするDNAチップの製造方法。As the substrate, it has a positional deviation correction means for automatically correcting the positional deviation of the micro spot due to the supply of the sample solution, the positional deviation correction means, the surface to be contacted by the micro spot is a rough surface, A method for producing a DNA chip, wherein a contact area of the minute spot on the rough surface is larger than that of a portion other than the rough surface.
試料溶液を基板上に多数供給してDNAチップを製造するDNAチップの製造方法において、In a method for producing a DNA chip in which a large number of sample solutions are supplied onto a substrate to produce a DNA chip,
前記基板は、前記微小スポットの位置ずれを自動的に補正する位置ずれ補正手段を有し、前記位置ずれ補正手段は、前記基板のうち、前記微小スポットが形成されるべき位置に形成された突起であることを特徴とするDNAチップの製造方法。The substrate includes a position deviation correction unit that automatically corrects a position deviation of the minute spot, and the position deviation correction unit is a protrusion formed at a position on the substrate where the minute spot is to be formed. A method for producing a DNA chip, characterized in that
請求項3又は4記載のDNAチップの製造方法において、
前記試料溶液を、供給装置を用いてインクジェット方式で供給することを特徴とするDNAチップの製造方法。
The method for producing a DNA chip according to claim 3 or 4 ,
A method for producing a DNA chip, wherein the sample solution is supplied by an ink jet method using a supply device.
請求項記載のDNAチップの製造方法において、
前記供給装置は、
少なくとも1個以上の基体に、外部から前記試料溶液を注入するための注入口と、前記試料溶液が注入・充填されるキャビティと、前記試料溶液を吐出する吐出口とが形成され、前記キャビティを形成する前記基体の少なくとも一壁面に圧電/電歪素子を備え、前記キャビティ内において前記試料溶液が移動するように構成されたマイクロピペットが複数配列されて構成され、かつ、各マイクロピペットの吐出口からそれぞれ異なる種類の試料溶液が吐出される分注装置であることを特徴とするDNAチップの製造方法。
In the manufacturing method of the DNA chip of Claim 5 ,
The supply device includes:
An inlet for injecting the sample solution from the outside, a cavity for injecting and filling the sample solution, and an outlet for discharging the sample solution are formed in at least one substrate. A piezoelectric / electrostrictive element is provided on at least one wall surface of the substrate to be formed, and a plurality of micropipettes configured to move the sample solution are arranged in the cavity, and each micropipette has a discharge port. A method for producing a DNA chip, characterized by being a dispensing device that discharges different types of sample solutions.
請求項記載のDNAチップの製造方法において、
前記分注装置は、前記キャビティ内において前記試料溶液が層流で移動するように構成されたマイクロピペットが複数配列されて構成されていることを特徴とするDNAチップの製造方法。
In the manufacturing method of the DNA chip of Claim 6 ,
The method of manufacturing a DNA chip, wherein the dispensing device is configured by arranging a plurality of micropipettes configured so that the sample solution moves in a laminar flow in the cavity.
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