JP3001919B2 - Preparation method and kit for fluorescently labeled DNA - Google Patents

Preparation method and kit for fluorescently labeled DNA

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恵子 宮崎
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Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、蛍光標識されたDNAの調製方法及びそのキ
ットに関する。
The present invention relates to a method for preparing a fluorescently labeled DNA and a kit thereof.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

従来、目的とするDNA断片を多量に獲得するために
は、組換えDNAを取込ませた宿主細胞を増殖させること
によって、組換えDNAを多量に生成させる手法が用いら
れていた。
Conventionally, in order to obtain a large amount of a target DNA fragment, a technique of producing a large amount of recombinant DNA by growing host cells into which the recombinant DNA has been incorporated has been used.

ところが、近年、サイキ(Saiki)らが開発したPCR
(ポリメラーゼ チェーン リアクション)法により、
微量の細胞DNAから目的とするDNA領域だけを2〜3時間
の自動処理で約100万倍に増幅することが可能となった
〔サイエンス(Science)第239巻、第487〜491頁(198
8)〕。
However, recently, PCR developed by Saiki et al.
(Polymerase chain reaction) method,
It has become possible to amplify only a target DNA region from a small amount of cell DNA by about 1,000,000 times by automatic processing for 2 to 3 hours [Science, Vol. 239, pp. 487-491 (198
8)].

PCR法は、増幅させるDNA領域を挟んでプラス鎖、マイ
ナス鎖に対するDNAプライマー(20〜30ヌクレオチド)
を合成し、熱変性による一本鎖DNAとのアニーリングの
後、DNAポリメラーゼ(例えば耐熱性タックポリメラー
ゼ)によるDNA相補鎖の合成を繰返し行うことで、1サ
イクルごとにDNAは2倍に増幅され、nサイクル後には2
n倍に増幅される。
In the PCR method, a DNA primer (20 to 30 nucleotides) for the plus and minus strands across the DNA region to be amplified
After annealing with a single-stranded DNA by heat denaturation, the synthesis of a complementary DNA strand by a DNA polymerase (for example, a heat-resistant tack polymerase) is repeated, whereby the DNA is amplified twice in each cycle, 2 after n cycles
Amplified n- fold.

これを用いて増幅させたDNA領域内の塩基配列や塩基
変異は、次に、特異的な合成オリゴヌクレオチドを標識
し、これをプローブとして用いて同定できる。なお、DN
Aの標識法としては高感度を必要とするため放射性同位
元素を用いた標識法が一般的である。
The base sequence or base mutation in the DNA region amplified by using this can then be identified by labeling a specific synthetic oligonucleotide and using this as a probe. In addition, DN
As a labeling method for A, a labeling method using a radioisotope is generally used because high sensitivity is required.

このように、PCR法は、極微量の試料より特定のDNAを
検出する方法として、近年、脚光を浴びている。
As described above, the PCR method has recently been spotlighted as a method for detecting a specific DNA from a very small amount of sample.

〔発明が解決しようとする課題〕[Problems to be solved by the invention]

プローブとして合成オリゴヌクレオチドを放射性同位
元素で標識した場合、高感度である反面、安全性、安定
性、設備をはじめ、使用後の廃棄処理の問題等に制約が
あるため、最近は放射性物質の代りに非放射性標識が注
目されるようになっている。
When a synthetic oligonucleotide is labeled with a radioisotope as a probe, it has high sensitivity, but it has limited safety, stability, equipment, and disposal problems after use. Non-radioactive labels are attracting attention.

そこで非放射性物質でプライマーを標識する方法も開
発されたが(特開平1−252300号)、この場合用いるプ
ライマーごとに標識化されたものを合成する必要があ
る。また、基質として用いるヌクレオチドにアミノヘキ
シル基を使用し、そのヌクレオチドを増幅されたDNAに
取込ませた後、アミノヘキシル基を標識してDNAへの標
識化を達成する方法もあるが〔アナリティカル・バイオ
ケミストリー(Analytical Biochemistry)、第157巻、
第199〜207頁(1986)〕、この場合増幅されたDNAを標
識化するという操作が煩雑である。
Therefore, a method of labeling a primer with a non-radioactive substance has been developed (Japanese Patent Application Laid-Open No. 1-252300). In this case, it is necessary to synthesize a labeled substance for each primer used. There is also a method of using an aminohexyl group for a nucleotide used as a substrate, incorporating the nucleotide into amplified DNA, and then labeling the aminohexyl group to achieve labeling of DNA.・ Biochemistry (Analytical Biochemistry), Volume 157,
199-207 (1986)], in which case the operation of labeling the amplified DNA is complicated.

本発明の目的は、上記のような問題点のないDNAの調
製方法及びそのキットを提供することにある。
An object of the present invention is to provide a method for preparing DNA which does not have the above-mentioned problems and a kit therefor.

〔課題を解決するための手段〕[Means for solving the problem]

本発明を概説すれば、本発明の第1の発明は、増幅に
よるDNAの調製において、基質として用いるヌクレオチ
ドに蛍光標識されたヌクレオチドを含むことを特徴とす
る蛍光標識DNAの調製方法に関する。また、本発明の第
2の発明は、増幅による蛍光標識DNAの調製に使用され
るキットであって、蛍光標識された基質ヌクレオチドと
それ以外の基質ヌクレオチドを含有することを特徴とす
る蛍光標識DNA調製用キットに関する。
In summary, the first invention of the present invention relates to a method for preparing a fluorescently labeled DNA, which comprises preparing a DNA by amplification, wherein the nucleotide used as a substrate includes a fluorescently labeled nucleotide. Further, the second invention of the present invention is a kit used for preparing a fluorescence-labeled DNA by amplification, wherein the kit comprises a fluorescence-labeled substrate nucleotide and another substrate nucleotide. It relates to a kit for preparation.

本発明者らは、このため鋭意研究の結果、放射性同位
元素を必要としないDNAの標識方法を見出し、本発明を
完成させた。
As a result, the present inventors have conducted intensive studies and have found a method for labeling DNA that does not require a radioisotope, and have completed the present invention.

DNAを増幅させる方法としては、PCR法が簡便であるの
で、以下、PCR法を例にとって本発明を説明するが、本
発明はPCR法に限定されるものではなく、DNA増幅に用い
られる方法であれば、何でも利用できる。
As a method for amplifying DNA, the PCR method is simple, and therefore, the present invention will be described below by using the PCR method as an example.However, the present invention is not limited to the PCR method, and the method used for DNA amplification is not limited thereto. Anything is available.

PCR法において、4種の基質ヌクレオチド、dATP、dCT
P、dGTP、TTPのうち、一種の基質について、蛍光標識さ
れたヌクレオチド(好ましくは7〜75%)に置換し、他
はタックポリメラーゼを含む遺伝子増幅キット及び宝酒
造(株)から市販されている自動遺伝子増幅装置サーマ
ル・サイクラーを用い、特定のDNA領域の増幅反応を行
う。なお、蛍光標識されたヌクレオチドを含む基質ヌク
レオチドをPCR法の基質として使用する時期は、PCRのサ
イクルの全サイクルでもよいし、途中の任意の時期で
も、また間欠的に行ってもよく、好ましくは後期のサイ
クルだけでよい。法でのプライマーから相補的なDNA鎖
を合成する際に蛍光標識されたヌクレオチドを取込ませ
ることによって標識するので、新規に5′−末端蛍光標
識されたプライマーを合成し、使用することなく、蛍光
標識DNAを調製できる。また、ビオチン−アビジン系で
の標識のように抗体を介する検出方法ではなく、対象と
するDNAを直接的に検出し得るものである。
In the PCR method, four types of substrate nucleotides, dATP, dCT
Among P, dGTP and TTP, one of the substrates is replaced with a fluorescently labeled nucleotide (preferably 7 to 75%), and the other is a gene amplification kit containing tack polymerase and an automatic kit commercially available from Takara Shuzo Co., Ltd. The amplification reaction of a specific DNA region is performed using a gene cycler thermal cycler. The substrate nucleotide containing the fluorescently labeled nucleotide may be used as a substrate in the PCR method during the entire PCR cycle, or at any time during the cycle, or may be performed intermittently. Only the late cycle is needed. When a complementary DNA strand is synthesized from a primer by the method described above, it is labeled by incorporating a fluorescently labeled nucleotide, so that a new 5′-terminal fluorescently labeled primer is synthesized and used without using it. Fluorescently labeled DNA can be prepared. In addition, it is not a detection method using an antibody as in the case of labeling with a biotin-avidin system, but can directly detect a target DNA.

一般に増幅されたDNA断片の分析においては、電気泳
動法によるパターン解析又はサザンブロッティングある
いはドットブロッティング法でフィルターやメンブレン
に固定して標識されたプローブでの検出を行うが、本発
明では増幅された断片が既に蛍光標識されていることか
ら、試料DNAを固定するのではなくプローブの側を何ら
かの固相担体に固定してハイブリダイゼーションを行
い、洗浄後その蛍光を測定して対象とするDNAを直接検
出し得るものである。固相担体としては例えばEIA用マ
ルチプレート、各種ビース、フィルター、ガラスプレー
ト、サンプルチューブ、バイアル等がある。固定化は適
当なスペーサーを介した共有結合によるほか、5′末端
ビオチン化プローブとアビジン化固相担体との結合によ
っても調製できる。本発明方法によれば試料DNAの固定
化を省略できるだけでなく、プローブを固定することで
洗浄後の回収が容易となり、検出の簡略化、多数試料の
一斉処理が可能となる。
In general, in the analysis of amplified DNA fragments, pattern analysis by electrophoresis or detection by a probe labeled and fixed to a filter or membrane by Southern blotting or dot blotting is performed. Is already fluorescently labeled, instead of immobilizing the sample DNA, the probe is immobilized on a solid-phase support for hybridization.After washing, the fluorescence is measured and the target DNA is directly detected. Can be done. Examples of the solid phase carrier include a multiplate for EIA, various beads, a filter, a glass plate, a sample tube, and a vial. Immobilization can be prepared by covalent bonding via an appropriate spacer or by bonding a 5'-terminal biotinylated probe to an avidinated solid support. According to the method of the present invention, not only the immobilization of the sample DNA can be omitted, but also the immobilization of the probe facilitates recovery after washing, simplification of detection, and simultaneous processing of a large number of samples.

〔実施例〕〔Example〕

以下、本発明を実施例をもって更に具体的に説明する
が、本発明はこれら実施例に限定されない。
Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples.

実施例1 フルオレセイン標識dUTPの合成 ヌクレイック・アシッズ・リサーチ(Nucleic Acids
Research)第15巻、第4857〜4876頁(1987)を改変した
方法に従い、5−ヨードデオキシウリジン(IdU:
〔1〕)より5−(アミノプロプ−1−イニル)−デオ
キシウリジンの保護誘導体〔2〕を合成した。次に、
3′−,5′−水酸基保護基を脱保護し〔3〕、オキシ塩
化リンとの反応によりモノリン酸誘導体〔4〕を合成
後、これをN,N′−カルボニルジイミダゾール(CDI)に
て活性化し、ピロリン酸と反応させ、トリリン酸誘導体
〔5〕を合成した。最後に、アミノ基保護基の脱保護
後、アミノ基と容易に反応する蛍光化合物フルオレセイ
ンイソチオシアネート(FITC)を添加し、フルオレセイ
ン標識dUTP(FTC−AP−dUTP:〔6〕)を得た。
Example 1 Synthesis of fluorescein-labeled dUTP Nucleic Acids Research
Research) Vol. 15, pp. 4857-4876 (1987), according to a method modified from 5-iododeoxyuridine (IdU:
From [1]), a protected derivative of 5- (aminoprop-1-ynyl) -deoxyuridine [2] was synthesized. next,
After deprotection of the 3 '-, 5'-hydroxyl protecting group [3], and synthesis with monophosphoric acid derivative [4] by reaction with phosphorus oxychloride, this is treated with N, N'-carbonyldiimidazole (CDI). Activated and reacted with pyrophosphoric acid to synthesize a triphosphate derivative [5]. Finally, after deprotection of the amino group-protecting group, a fluorescent compound fluorescein isothiocyanate (FITC) which easily reacts with the amino group was added to obtain fluorescein-labeled dUTP (FTC-AP-dUTP: [6]).

上記の反応工程の一例を第1図に工程図として示す。
第1図において、Tolはトルオイル基、Tfa基はトリフル
オロアセチル基を示す。
An example of the above reaction process is shown in FIG. 1 as a process diagram.
In FIG. 1, Tol represents a toluoyl group and Tfa represents a trifluoroacetyl group.

実施例2 PCR法による蛍光標識DNAの調製 (2−1) 蛍光標識ヌクレオチド存在下におけるPCR
増幅 100ngのヒト胎盤由来DNA(クローンテック社)を0.5m
l用チューブ(バイオビック社)に採り、95℃で10分間
加熱処理した後、ジーンアンプTMキット(Gene Amp TM
Kit)〔宝酒造(株)〕中の10μの10倍濃度増幅用バ
ッファー〔100mM トリス−HCl、pH8.3、500mM KCl、15
mM MgCl2、0.1%(w/v)ゼラチン〕、16μの第1表記
載の蛍光標識ヌクレオチド入りdNTP混合液、1μの10
0μMc−Ki−ras/61フォワード プライマー、1μの1
00μM c−Ki−ras/61リバースプライマー(共に宝酒
造)、0.5μの2.5ユニット/μタックポリメラーゼ
を加え、更に滅菌水を加えて、100μの溶液にした。
Example 2 Preparation of fluorescently labeled DNA by PCR (2-1) PCR in the presence of fluorescently labeled nucleotide
Amplification 100 ng of human placenta-derived DNA (Clontech) 0.5 m
Transfer to a l l tube (Biovic) and heat-treat at 95 ° C for 10 minutes.
Kit) [Takara Shuzo Co., Ltd.] 10 µ buffer for 10-fold concentration [100 mM Tris-HCl, pH 8.3, 500 mM KCl, 15
mM MgCl 2 , 0.1% (w / v) gelatin], 16 μm of the dNTP mixed solution containing the fluorescently labeled nucleotide described in Table 1, 1 μm
0μMc-Ki-ras / 61 forward primer, 1μ1
00 μM c-Ki-ras / 61 reverse primer (both from Takara Shuzo) and 0.5 μ of 2.5 units / μ tack polymerase were added, and sterile water was further added to make a 100 μ solution.

この反応液に100μのミネラルオイル(シグマ社)
を重層した後、自動遺伝子増幅装置サーマル・サイクラ
ー〔宝酒造(株)〕により増幅反応を行った。反応条件
は、94℃で1分間(変性)→55℃で2分間(プライマー
のアニーリング)→72℃で1分間(合成反応)のサイク
ルを、40サイクル行った。
Add 100μ mineral oil (Sigma) to the reaction mixture.
After that, an amplification reaction was performed using an automatic gene amplifying device, Thermal Cycler (Takara Shuzo Co., Ltd.). As the reaction conditions, 40 cycles of 94 ° C. for 1 minute (denaturation) → 55 ° C. for 2 minutes (primer annealing) → 72 ° C. for 1 minute (synthesis reaction) were performed.

反応後、上層のミネラルオイルを除去した後、反応液
の10μを採り、3%ヌッシーブ(Nu−ssieve)GTGア
ガロース・1%シーケム(Sea−Kem)アガロース(FMC
社)ゲル電気泳動を行い、エチジウム ブロマイドでDN
Aを染色し、増幅されたDNAを解析した。その結果、128b
pの単一バンドを確認した。
After the reaction, after removing the upper layer of mineral oil, 10 μl of the reaction solution was taken and 3% Nu-ssieve GTG agarose / 1% Sea-Kem agarose (FMC
Perform gel electrophoresis and DN with ethidium bromide.
A was stained and the amplified DNA was analyzed. As a result, 128b
A single band of p was identified.

(2−2) 増幅DNAの蛍光強度検出 TTPについて、20〜40%をFTC−AP−dUTPに置換して反
応を行った。各反応液90μに、9μの3M酢酸ナトリ
ウム、pH5.2を加え、更に、200μの冷エタノール、−
20℃を加えて混和した後、1時間以上−20℃で静置す
る。4℃で12,000g、5分間遠心し、沈殿を乾燥させた
後、滅菌水50μに溶解し、試料溶液とする。
(2-2) Detection of Fluorescence Intensity of Amplified DNA About TTP, 20 to 40% of the reaction was performed by substituting FTC-AP-dUTP. To 90 µ of each reaction solution, 9 µ of 3 M sodium acetate, pH 5.2 was added, and further, 200 µ of cold ethanol,-
Add 20 ° C and mix, then let stand at -20 ° C for 1 hour or more. After centrifuging at 4 ° C. at 12,000 g for 5 minutes to dry the precipitate, the precipitate is dissolved in 50 μl of sterilized water to obtain a sample solution.

1μの試料溶液を自動塩基配列決定装置(日立電子
工業社)により解析した。泳動度として128bpに相当す
る位置に蛍光強度の存在を示すピークを確認した(第2
図)。なお、フルオレセイン標識dUTPを含まない場合で
は全く蛍光強度は認められなかった。
The 1 μm sample solution was analyzed by an automatic base sequencer (Hitachi Electronics). A peak indicating the presence of fluorescence intensity was confirmed at a position corresponding to a migration degree of 128 bp (second
Figure). When no fluorescein-labeled dUTP was contained, no fluorescence intensity was observed.

第2図において、レーン1は分子量マーカーとして用
いたM13mp18の塩基配列ピークを示し、レーン2は、FTC
−AP−dUTP標識増幅DNAを示す。そして横軸は泳動時間
を示し、縦軸は蛍光の相対強度を示す。
In FIG. 2, lane 1 shows the base sequence peak of M13mp18 used as a molecular weight marker, and lane 2 shows FTC
-Shows AP-dUTP-labeled amplified DNA. The horizontal axis indicates the migration time, and the vertical axis indicates the relative intensity of the fluorescence.

実施例3 固定化プローブによる増幅DNA領域内の塩基
差異の検出 (3−1) 蛍光用96穴マルチプレートのアミノプロピ
ル化 46μの3−アミノプロピルトリエトキシシランを5m
lの無水エタノールに溶解し、各ウエルに200μずつ分
注、シールして室温で一晩緩やかに振とうした。溶媒を
ピペッティングで除去した後、水洗3回メタノール洗浄
1回を行い、50℃以下で乾燥させた。
Example 3 Detection of Base Difference in Amplified DNA Region Using Immobilized Probe (3-1) Aminopropylation of 96-well Multiplate for Fluorescence 5 μm of 46 μm 3-aminopropyltriethoxysilane
1 μl of absolute ethanol, dispensed 200 μl into each well, sealed and gently shaken overnight at room temperature. After the solvent was removed by pipetting, washing with water was performed three times, and washing with methanol was performed once, followed by drying at 50 ° C. or less.

(3−2) アミノプロピル化プレートへのプローブ固
定 0.1M NaHCO3、2mM EDTA溶液400μにジスクシンイ
ミジルスベレート21mgのジメチルホルムアミド溶液1ml
を混和し、各ウエルに100μずつ分注後遮光し室温で1
0分間静置した。溶液をピペッティングで除去し、水洗
を3回行った後、5′末端にアミノスペーサーを付加し
たプローブ〔宝酒造(株)製、点突然変異ras遺伝子検
出用オンコジーン プローブ(Oncogene Probe)c−Ki
(株)ras/61Gly、Ser、Valの3タイプ〕各25μgを0.1
M NaHCO3、2mM EDTA溶液300μに溶解し、ウエル当り
50μを分注、シールして室温で一晩緩やかに振とうし
た。溶液をピペッティングで除去した後水洗を3回行い
風乾した。
(3-2) Immobilization of probe on aminopropylated plate 1 ml of dimethylformamide solution of 21 mg of disuccinimidyl suberate in 400 μm of 0.1 M NaHCO 3 , 2 mM EDTA solution
, Mix 100 μl into each well, shield from light, and
Let stand for 0 minutes. After removing the solution by pipetting and washing three times with water, a probe having an amino spacer added to the 5 'end [Takara Shuzo Co., Ltd., Oncogene Probe for detection of point mutation ras gene (Oncogene Probe) c-Ki
Ras / 61Gly, Ser, Val 3 types)
M NaHCO 3 , dissolved in 300 μm of 2 mM EDTA solution, per well
50 μl was dispensed, sealed and gently shaken overnight at room temperature. After removing the solution by pipetting, it was washed with water three times and air-dried.

(3−3) 試料DNAのハイブリダイゼーション及び検
出 ウエル当り10mM pH7.4のリン酸バッファー(PBS)に
5%SDSを加えたもの300μを添加し、37℃で3時間緩
やかに振とう(プレハイブリダイゼーション)、溶液を
除去した後、(2−2)と同様にエタノール沈殿、乾燥
させたPCR反応物をプレハイブリダイゼーション溶液300
μに溶解し、95℃で10分間熱変性したものをそのまま
各プローブを固定したウエル中に100μずつ分注し
た。
(3-3) Hybridization and detection of sample DNA 300 μl of 10 mM pH 7.4 phosphate buffer (PBS) plus 5% SDS was added per well, and gently shaken at 37 ° C. for 3 hours (Pre-high Hybridization), and after removing the solution, the PCR reaction product precipitated with ethanol and dried in the same manner as in (2-2).
μ, and heat denatured at 95 ° C. for 10 minutes, and dispensed 100 μl into each well in which each probe was fixed.

37℃で一晩緩やかに振とうした後溶液を除去し、0.5
%SDSを加えたPBSで洗浄(37℃ 15分間 5回)、次い
でPBS洗浄を行い、最後にウエル当りPBS100μを添加
してフルオロスキャンII(タイターテック社製)で蛍光
強度を測定した(励起485nm、測定538nm)。
After gentle shaking at 37 ° C overnight, remove the solution and add
The plate was washed with PBS containing 5% SDS (5 times at 37 ° C. for 15 minutes), and then washed with PBS. Finally, 100 μl of PBS was added per well, and the fluorescence intensity was measured with Fluoroscan II (manufactured by Titertec) (excitation: 485 nm). , Measurement 538 nm).

予想されるK61 Glyタイプの位置にSer、Valタイプと
は明らかに有意差のある蛍光強度が確認された。
At the expected position of the K61 Gly type, a fluorescence intensity having a significant difference from the Ser and Val types was confirmed.

〔発明の効果〕〔The invention's effect〕

以上詳細に説明したように、本発明により増幅方法、
特にPCR法において、蛍光基質を用いることにより直接
蛍光標識でき、更に、試料DNAの方を蛍光標識すること
により、試料のDNAフィルターの作製をせずにハイブリ
ダイゼーションを行うことができ、検出の簡略化を提供
することができた。
As described in detail above, the amplification method according to the present invention,
In particular, in the PCR method, direct fluorescent labeling can be performed by using a fluorescent substrate.Furthermore, by fluorescently labeling the sample DNA, hybridization can be performed without preparing a DNA filter for the sample, thereby simplifying detection. Could be provided.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

第1図は、フルオレセイン標識dUTPの合成の一例を示す
工程図、第2図は、FTC−AP−dUTP標識した増幅DNAの蛍
光強度検出を示す図である。
FIG. 1 is a process diagram showing an example of the synthesis of fluorescein-labeled dUTP, and FIG. 2 is a diagram showing detection of the fluorescence intensity of FTC-AP-dUTP-labeled amplified DNA.

フロントページの続き (72)発明者 加藤 郁之進 滋賀県大津市瀬田3丁目4番1号 寳酒 造株式会社中央研究所内 (56)参考文献 Prac,Natl.Acad.Sc i USA 86(1989)p.9178−9182 バイオサイエンスとインダストリー 47[10](1989)p.1063−1067 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) WPI(DIALOG) BIOSIS(DIALOG)Continuation of front page (72) Inventor Ikunoyuki Kato 3-4-1, Seta, Otsu City, Shiga Prefecture Inside Takara Shuzo Co., Ltd. Central Research Laboratory (56) References Prac, Natl. Acad. ScI USA 86 (1989) p. 9178-9182 Bioscience and Industry 47 [10] (1989) p. 1063-1067 (58) Fields surveyed (Int. Cl. 7 , DB name) WPI (DIALOG) BIOSIS (DIALOG)

Claims (2)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】増幅によるDNAの調製において、基質とし
て用いるヌクレオチドに蛍光標識されたヌクレオチドを
含むことを特徴とする蛍光標識DNAの調製方法。
1. A method for preparing a fluorescence-labeled DNA, wherein a nucleotide used as a substrate in the preparation of the DNA by amplification contains a nucleotide labeled with a fluorescence.
【請求項2】増幅による蛍光標識DNAの調製に使用され
るキットであって、少なくとも下記a及びbを含有する
ことを特徴とする蛍光標識DNA調製用キット。 a.蛍光標識された基質ヌクレオチド b.上記a以外の基質ヌクレオチド
2. A kit for preparing a fluorescently labeled DNA by amplification, comprising at least the following a and b: a. Fluorescently labeled substrate nucleotide b. Substrate nucleotide other than a above
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