JP2009520730A - アレルギー性疾患を治療および予防するための手段および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明によれば、この技術的な問題の解決は、肥満細胞の感作および/または活性化に関連する免疫疾患を治療、予防および/または改善するための医薬組成物を製造するための、以下の式Iで示される化合物の使用を提供することによって達成される:
R1は、第四級窒素原子を含むC4〜13炭化水素基であり;
Xは、O、または、直接結合であり;
R2は、C10〜20炭化水素基であり、ここで、1個またはそれより多くの水素が、任意にフッ素で置き換えられいてもよく、ここで、1個またはそれより多くのCH2基が、任意に酸素または以下の式IIで示される基で置換されてもよく:
Yは、O、O(CO)、S、または、S(CO)であり;
R3は、OH、C1〜4アルキル、O−C1〜3アルキル、O(CO)NH−C1〜3アルキル、O(CO)−C1〜6アルキル、S(CO)−C1〜6アルキル、O(CO)−C2〜3アルケニル、または、CH2O−C1〜3アルキルであり;
R3’は、H、または、C1〜4アルキルであり;および、
R4は、C10〜20炭化水素基であり、ここで、1個またはそれより多くの水素が、任意にフッ素で置き換えられいてもよい。
R1は、第四級窒素原子を含むC4〜13炭化水素基である。好ましくは、R1は、以下の式IIIa〜IIIcのうちいずれか一種の基である:
Xは、O、または、直接結合である。好ましくは、Xは、Oである。
Yは、O、O(CO)、S、S(CO)である。好ましくは、Yは、Oである。
R3は、OH、C1〜4アルキル、O−C1〜3アルキル、O(CO)NH−C1〜3アルキル、O(CO)−C1〜6アルキル、S(CO)−C1〜6アルキル、O(CO)−C2〜3アルケニル、または、CH2O−C1〜3アルキルである。一実施態様において、R3は、OH、O−C1〜3アルキル、O(CO)NH−C1〜3アルキル、O(CO)−C1〜6アルキル、S(CO)−C1〜6アルキル、O(CO)−C2〜3アルケニル、または、CH2O−C1〜3アルキルである。好ましくは、R3は、O(C1〜2アルキル)、または、OCONHCH3である。その他の好ましいR3基は、O(CO)−C1〜6アルキルである。より好ましくは、R3は、O(C1〜2アルキル)である。
R4は、C10〜20炭化水素基であり、ここで、1個またはそれより多くの水素が、任意にフッ素で置き換えられいてもよい。好ましくは、R4は、1個またはそれより多くの(例えば、2、3または4個の)二重結合を含むC10〜20炭化水素基、または、C10〜20アルキル基である。より好ましくは、R4は、C12〜18アルキル基である。
R5は、それぞれ独立して、H、および、C1〜3アルキルから選択される。好ましくは、式IVまたはVで示される基において、1個のR5がHであり、その他のR5がCH3である。
リン脂質(XはOであり、R2は式IIで示される基である)のクラスに属する一般式Iで示される化合物、例えばアルキルオキシリン脂質(YはOである)、および、それに対応するアルキルチオ誘導体(Yは、Sである)は、文献で説明されているようにして製造してもよいし(Bittman,R.;J.Med.Chem.1997,40,1391〜1395;Reddy,K.C.;Tetrahedron Lett.1994,35,2679〜2682;Guivisdalsky,P.N.;J.Med.Chem.1990,33,2614〜2621、および、そこで引用された文献)、または、そこで説明されている手法の標準的な改変法によって製造してもよい。それに対応するエステルおよびチオエステル類似体(それぞれYはOCOおよびSCOである)の合成は、ヒドロキシまたはチオ前駆体物質の標準的なアシル化によって達成することができる。
本発明の状況において、移植片対宿主疾患とは、特に、免疫適格細胞を含む同種移植片が、それを拒絶することができない宿主に対する免疫反応を生じさせる場合に発症する症候群であり、これは、このような宿主が免疫学的に未成熟であるか、または、免疫機能が低下しているか、または、抑制されている(例えば放射線または薬物によって)ために起こる。しかしながら、本発明の使用および手段は、同種移植片拒絶反応の改善に限定されることはなく、一般的に移植術における改善/医療介入に関する。
本明細書で説明される化合物の外用塗布は、皮膚肥満細胞症、乾癬、アトピー性皮膚炎、湿疹およびその他の皮膚疾患、ならびに、肥満細胞に関連する皮膚疾患のような徴候を軽減するために想定され、適切な外用塗布は、軟膏、クリーム、ゲル、フォーム、溶液、ローション、エマルジョン、スプレー、リポソームまたはミセル性の懸濁液、もしくは、皮膚の外層に浸透するその他の調合物の形態である。上述した外用塗布される調合物中の活性成分の典型的な適切な濃度は、0.1%〜2%w/wであり、軟膏、クリーム、ゲル、発泡体、溶液、ローション、エマルジョン、スプレー、リポソームまたはミセル性の懸濁液、もしくは、その他の調合物のそれぞれ100グラム中に0.1g〜2gの活性成分が含まれるようにする。外用塗布される調合物の活性成分のさらなる適切な濃度は、3%〜6%w/wであり、さらに、それほど好ましくはないが適切な調合物における濃度は、7〜15%w/wである。しかしながらこのような濃度を改変することは、関連する技術者の能力の範囲内である。治療を受ける患者にとって適切な典型的な投与計画は、患者の年齢、性別、体重、および、全体的な健康状態のような要因に基づいて担当医が決定してもよい。治療の濃度および投与計画の選択は、徴候に依存すると予想される。外用製剤に適した投与計画は、好ましくは1日あたり1〜2回の皮膚のあらゆる領域の治療を想定しているが、1日あたり3〜6回の治療も適切である。塗布ごとに、罹患した領域を完全に覆うように薄い膜状に塗布することが予想される。治療期間は、1回の治療サイクルあたり1日〜6週間である。
図1〜8は、フマル酸ケトチフェンおよびクロモグリク酸と比較した、化合物1〜6による肥満細胞の脱顆粒の用量依存性阻害を示す。
図9および10は、それぞれ抗ヒトIgEおよびイオノフォアA23187によって、C57細胞において誘導されたヒスタミン放出に対するミルテフォシンの阻害作用を示す。
図11および12は、それぞれ抗ヒトIgEおよびサブスタンスPによって、一次ヒト肥満細胞において誘導されたヒスタミン放出に対するミルテフォシンの阻害作用を示す。
図13は、C5aまたは抗ヒトIgEによって、ヒト好塩基球において誘導されたヒスタミン放出に対するミルテフォシンの阻害作用を示す。
図14は、ミルテフォシンおよびプラセボで予め治療された皮膚において、ヒスタミン、または、患者に特異的なアレルゲンを用いたプリックテストを行った後の個々のタイムポイントにおける膨疹の直径を示す。
肥満細胞は、アレルギー性過敏反応または喘息に関する広く使用されているモデル系である。それらの表面に、IgEに対する高親和性受容体が発現される(FcεRI)。抗原特異的なIgEが結合すると、受容体細胞は、抗原(アレルゲン)に対して感受性になる。感作細胞が多価の抗原に遭遇すると、IgE−FcεRI複合体のクラスター形成によって、細胞の現象のカスケードが始動し、それにより最終的に、脱顆粒、すなわちサイトカイン、エイコサノイド、ヒスタミンおよび酵素のような炎症および細胞の活性化の媒介物質の放出が起こる。このカスケードにおける数種の工程は、ラフト依存性であり、例えば抗原によって作動するFcεRIのラフトへの再配置、LAT周辺に集合したシグナル伝達複合体の破壊、および/または、ホスホイノシチドの移動、Ca2+流入(細胞質膜カルシウムチャンネルのラフトへの局在化)、膜の波打ち現象(Akt/WASP/FAKが関与する細胞骨格の再構築)、および、エキソサイトーシスが含まれる。それゆえに、このような分析は、ラフトを調節する化合物、具体的には喘息の医学的管理において有用な化合物を同定するためのスクリーニング方法として用いることができる。
上記分析は、多価の抗原−IgE複合体による高親和性IgE受容体(FcεRI)のクラスター形成に応答した、様々な予め形成された薬理作用のある物質の放出のマーカーとして、β−ヘキソサミニダーゼの放出を測定する。ラット好塩基球性白血病(RBL−2H3)細胞は、肥満細胞の脱顆粒の一般的に使用されるモデルであり、これを抗DNP特異的なIgEで感作して、多価のDNP−BSAで攻撃する。上清へのβ−ヘキソサミニダーゼの放出を、蛍光発生基質4−メチルウンベリフェリル−N−アセチル−β−D−グルコサミニドのN−アセチル−β−D−グルコサミン、および、高い蛍光性を有するメチルウンベリフェロンへの酵素による変換によって測定し、テカン(Tecan)のサファイア(SafireTM)プレートリーダーで蛍光検出によって定量する。
化学物質および特殊な試薬
サーファクト−アンプス(Surfact−Amps)X−100溶液を、ピアース(Pierce)から入手し、DNP−ウシアルブミン結合体(DNP−BSA)、および、4−メチルウンベリフェリル−N−アセチル−β−D−グルコサミニド(MUG)を、カルバイオケム(Calbiochem)から入手し、トリ(エチレングリコール)モノエチルエーテル(TEGME)を、アルドリッチ(Aldrich)から入手し、DMSOハイブリ−マックス(Hybri−Max)、および、ヒトDNP−アルブミンを、シグマ(Sigma)から入手した。ラット抗DNP IgEモノクローナル抗体を、バイオゾル(Biozol)から入手した。全ての細胞培養培地、緩衝液およびサプリメントを、インビトロジェン(Invitrogen)から得たが、ただしウシ胎児血清(FCS)は、PAAラボラトリーズ(PAA Laboratories)(コルベ,ドイツ)から入手した。その他の試薬は、標準的な実験グレードを有するものか、または、それより優れたものであった。その他の化学物質は、特に他の規定がなければ、標準的な実験グレードを有するものか、または、それより優れたものであった。
リン酸緩衝生理食塩水(PBS)、および、1MのHEPESは、社内のサービス施設によって提供された。タイロード緩衝液(TyB)(インビトロジェン)は、フェノールレッドを含まず、2mMのグルタマックス(GlutamaxTM)−Iサプリメント(インビトロジェン)、および、10mMのHEPESが添加された最小必須培地からなる。溶解緩衝液は、25mMのトリス・HCl(pH7.5)、150mMのNaCl、5mMのEDTA、および、1%(w/v)のトリトンX−100からなる。ヒトDNP−BSAを、ミリポア(Millipore)水に1mg/mlになるように溶解させた。MUG基質溶液は、2.5mMの4−メチルウンベリフェリル−N−アセチル−β−D−グルコサミニド、0.05Mのクエン酸塩(pH4.5)であり、停止溶液は、0.1MのNaHCO3/0.1MのNa2CO3(pH10)であった。
ドイツの微生物および細胞培養物の保存機関(German Collection of Microorganisms and Cell Cultures;ブラウンシュバイク,ドイツ)から得たRBL−2H3細胞を、2mMのグルタマックス(GlutamaxTM)−Iが添加されたイーグル塩類溶液/20%のRPMI1640/10%の熱で不活性化したウシ胎児血清を含む70%最小必須培地中で、5%CO2中、37℃で維持し、マイコプラスマ汚染がないかどうかを定期的にチェックした。175cm2フラスコ中で増殖させた細胞を0.05%トリプシン/EDTAで分配し、20mlの新しい培地に再懸濁した。1ウェルあたり100および50μlの細胞懸濁液を、24ウェルのクラスタープレート(コースター(Costar),Schiphol−Rijk,オランダ)で平板培養し、平板培養の1または2日後の細胞をそれぞれ用いた。
方法
試験化合物とインキュベートする2〜24時間前に、培地を除去し、新しい培地中で細胞を0.4μg/mlの抗DNPIgEで感作した。感作後、細胞を温めたTyBで一回洗浄し、最大100μM、または、最高の非毒性の濃度(合計の媒体濃度を、1%に調節した)の試験化合物、または、TyB中の1%媒体と共に、37℃で60分間インキュベートした。DNP−HSA(最終濃度は0.1μg/ml)、または、緩衝液単独を添加し、細胞を37℃で15分間インキュベートした。プレートを、4℃で5分間、250×gで遠心分離し、即座に氷に移した。上清を回収し、溶解緩衝液で細胞を溶解させた。上清および溶解産物中のヘキソサミニダーゼ活性を、96ウェルプレート中で、25μlのアリコートを100μlのMUG基質溶液と共に37℃で30分間インキュベートすることによって測定した。この反応を、150μlの停止溶液の添加によって止めた。テカンのサファイア(SafireTM)プレートリーダーにおいて、365nmの励起、および、440nmの発光の設定で蛍光を測定した。
各化合物は、少なくとも3回の独立した実験においてそれぞれ二連で試験した。β−ヘキソサミニダーゼ放出は、以下の式を用いて非特異的な放出(抗原添加なしでの放出)を差し引いた後に計算した:
脱顆粒(%)=100×RFU上清/RFU溶解産物
コントロールと比較したβ−ヘキソサミニダーゼ放出阻害は、以下のように計算した:
阻害(%)=100×(1−(化合物のRFU上清/コントロールのRFU上清))
独立した実験から得られた脱顆粒の阻害に関する値は平均値であり、標準偏差(SD)が15%以下の場合を許容した。
実験の設計
インビトロおよびエクスビボでの実験:
ミルテフォシンは、インビトロでヒト皮膚肥満細胞の活性化および媒介物質放出を阻害することができるかどうかを決定するために、我々は、以下の技術および材料、ならびに実験アプローチを用いた:
ミルテフォシンのストック溶液の製造
ミルテフォシンのストック溶液(5mM)をDMSOで製造し、−20℃で保存した。使用時の濃度(2mM)に調製するために、ストック溶液を、PAG−CM(PAG−CM=カルシウムおよびマグネシウムを含むPIPESアルブミングルコース)で希釈した。これ以外の全てのミルテフォシン希釈液は、PAG−CM緩衝液中の40%DMSOを用いて製造した。
フィコールパック(D=1.077)を用いてヒト好塩基球を全血から単離した。簡単に言えば、ヘパリン化された全血をPBS(w/oCaおよびMg)で1:3に希釈し、フィコールパック溶液上で層状にし、400×gで30分間遠心分離した。血漿とフィコール溶液との境界面から、リンパ球、単球、好塩基球、および、血小板のような低密度の粒子を回収した。好塩基球分画から血小板を除去するために、境界面からの細胞懸濁液を、200×gで10分間、2回遠心分離した。細胞懸濁液中の好塩基球の数を、トルイジンブルー染色によって決定した。好塩基球の収率は約2%であった。ヒスタミン放出分析に、これらの予め精製した好塩基球を用いた。サイトカイン放出分析のために、境界面の細胞懸濁液から好塩基球以外のものを取り除くための「好塩基球単離キット」を用いて、好塩基球をさらに精製した。この目的を達成するために、第一工程で、CD3、CD7、CD14、CD5、CD16、CD36およびCD45RAを含むハプテン結合抗体混合物と共に細胞懸濁液を30分間インキュベートし、続いてハプテン特異的な抗体で被覆された磁気ビーズに曝露した。磁気ビーズに結合した細胞をオートMACS(AutoMACS)で分離した。この分離プロトコールの陰性の分画に、好塩基球が95パーセントより高い純度で含まれていた。
組織の肥満細胞を、美容外科手術の際に得られたヒトの皮膚から単離した。ヒトの皮膚の使用は、ヘルシンキ宣言の原則に従って行われ、ベルリンのシャリテ医科大学(Charite−Universitatsmedizin)の治験審査委員会によって承認された。肥満細胞を単離するために、1mg/mlの濃度のディスパーゼと共に4℃で一晩インキュベートすることによって表皮を酵素によって剥離させた。残存した真皮を、コラゲナーゼIおよびヒアルロニダーゼの混合物と共に37℃で1時間インキュベートすることによって分散させた。分散を3回繰り返し、回収した細胞を洗浄した。その後、細胞を、10%ウシ胎児血清、グルタミン、ペニシリン、ストレプトマイシン、および、モノチオグリセロールが添加された基礎イスコベ(Iscove)培地中で、5%Co2/95%の空気中で、37℃で一晩培養した。冷PBSで繰り返した洗浄することによって、付着細胞からの非接着性の肥満細胞の分離を達成した。ヒスタミン放出分析のために、回収した細胞をPAG−CMに懸濁し、Kit受容体(CD117)に対して向けられたCD117マイクロビーズ(ミルテニー・バイオテク(Miltenyi Biotech))を用いて親和性によって精製した。簡単に言えば、皮膚細胞をCD117磁気ビーズと共に4℃で30分間インキュベートした。細胞をオートMACSシステムに通過させることによって、標識細胞の非標識細胞からの分離を達成した。最終的な肥満細胞の純度はトルイジンブルー染色によって測定したところ、90%を超えていた。肥満細胞の生存率は、トリパンブルー染色によって評価したところ、95%を超えていた(Grutzkau等,2000,Artuc等,2002)。
自動式のヒスタミン解析システム(フィルム・ボルグヴェルト・テクニーク(Firm Borgwelt Technik))を用いてヒスタミンレベルの定量化を達成した。励起波長は355〜360nmであり、蛍光測定の発光波長は450〜460nmであった。蛍光強度は、サンプル中のヒスタミン濃度に正比例していた。放出されたヒスタミンの量を以下の式に従って計算した:正味のヒスタミン放出=(放出−ブランク)×(100/総量)。このような状況において、「放出」は、刺激された細胞(例えば抗IgEによって)の上清と定義し、それに対して、刺激されていない細胞(すなわち自発的な放出)の上清を「ブランク」と名付けた。「総量」は、肥満細胞の総ヒスタミン含有量(過塩素酸で溶解させた後の)を意味する。ヒスタミン放出分析を、PAG−CM緩衝液システム中で行った。ヒスタミン放出分析に用いられた各サンプル中の多数の肥満細胞または好塩基球は、約1×104細胞であった。刺激のために、細胞を抗IgE、サブスタンスP、Ca−イオノフォア、または、C5aに晒した。
細胞を、PBSw/oCa、Mgで2回、PAG−CMで一回洗浄し、その後250×gで10分間遠心分離した。細胞ペレットを予め温めたPAG−CM(37℃)に懸濁した。この細胞懸濁液を、6種の異なる処理でそれぞれ3種のインキュベート時間(10分間、30分間または60分間)のための18個のファルコンチューブに分配した:
1−PAG−CM、
2−DMSO/PAG−CM、
3−5μMのミルテフォシン、
4−10μMのミルテフォシン、
5−20μMのミルテフォシン、
6−25μMのミルテフォシン。
プレインキュベートした細胞懸濁液のアリコートを準備したチューブに添加し、刺激のために37℃で30分間インキュベートした:
チューブ1=2%過塩素酸、
チューブ2=PAG−CM、
チューブ3=抗IgE、または、サブスタンスP、または、Ca−イオノフォア。
ミルテフォシンは、インビボでIgE依存性のヒト肥満細胞の刺激、および、媒介物質放出を阻害するという概念の証明を提供するために、我々は、選択された既知のI型の感作を有するアレルギー性の志願者(n=5)に関する研究行った。志願者を、それらの既知のアレルゲン、加えてポジティブ(ヒスタミン)およびネガティブ(食塩水)コントロール(表3)を両方の前腕に用いた、標準的なプリックテストで処理した。二重盲検のプラセボ制御されたアプローチを用いて、各試験における志願者の一方の前腕を、外用ミルテフォシン(6%溶液)で前処理した。いずれもプリックテストの2時間前に、反対側を、プラセボ溶液(食塩水)での前処理で処理した。その後、皮膚の症状の進行を、高性能の標準化した方法、すなわち肉眼で見える標準的なプリックテスト評価(Heinzerling等,2005)、容量測定のためのイメージング、サーモグラフィー、および、デジタル低速度撮影(DTLP)を用いて測定した。この研究から、永続的な重度の病気(特に免疫系に影響を及ぼす病気)に罹っていることがわかっている志願者を排除した。志願者は、研究開始前の7日間、経口ヒスタミンまたはロイコトリエンアンタゴニストをまったく摂取しなかった。さらに志願者は、試験前の21日間、経口コルチコステロイドまたはコルチコステロイドのデポー剤、またはその他の免疫抑制薬をまったく摂取しなかった。
インビトロおよびエクスビボでの実験:
C57細胞におけるヒスタミン放出に対するミルテフォシンの作用
ヒト高親和性IgE受容体のアルファ鎖でトランスフェクションされたC57マウス肥満細胞系は、抗ヒトIgEで刺激した後に確かな脱顆粒応答を示した。様々なの濃度のミルテフォシンと共にC57細胞をプレインキュベートすることによって、ヒスタミン放出の阻害が起こった。この阻害は、用量および時間依存性であった(図9)。ミルテフォシンと60分間プレインキュベートした後に、最大阻害(40パーセント)が達成された。ミルテフォシンは、C57細胞において、IgE受容体依存性のヒスタミン放出だけでなく、Ca−イオノフォアによって誘導されたヒスタミン放出も阻害した(図10)。
ミルテフォシンは、ヒト肥満細胞において、IgEによって誘導されたヒスタミン放出を用量依存的に阻害し、最大作用は25μMにおいて達成された。ヒト肥満細胞におけるミルテフォシンの阻害作用は、プレインキュベート時間に依存しておらず、すなわち短いプレインキュベート時間でも、最大の阻害作用が生じる(35%)(図11)。
ミルテフォシンは、好塩基球において抗IgEによって誘導されたヒスタミン放出を用量依存的に阻害したが、この作用は極めて小さかった。従って、10分間プレインキュベートした後の最大の阻害作用は、25μMミルテフォシンを用いると、合計でちょうど10パーセントになった。抗IgE刺激の後に観察された作用に対して、我々は、25μMミルテフォシン(75%)によるC5aによって誘導されたヒスタミン放出の強く有意な阻害を観察した(図13)。
プリックテストの病変が発達する経過を評価するために、膨疹の大きさを、プリックテスト後の別個のタイムポイントで直径を測定することによって目視で評価した。興味深いことに、アレルゲンにより誘導された膨疹の大きさは、6%ミルテフォシン溶液で前処理された領域において、プラセボ(食塩水)で前処理されたコントロール領域と比較してかなり小さかった。加えて、食塩水処理されたコントロールの腕と比較して、ヒスタミンによって誘導されたコントロールの膨疹も、程度は低いがミルテフォシンで前処理された腕においてアレルゲンによって誘導された膨疹よりも減少した(表4および図7)。
肥満細胞に関連する病気における実質的に全ての治療的介入が、H1−ヒスタミン受容体を抗ヒスタミン剤でブロックすることによってヒスタミンが媒介するプロセスを阻害することに焦点を当てている。肥満細胞の脱顆粒の阻害は、ヒスタミンおよびその他の肥満細胞媒介物質が関連する症状を制御するためのそれ以外の関心の高いアプローチである。しかしながら、これまで特異的かつ有効な肥満細胞を安定化する特性を有する物質は同定されていなかった。ここで我々は初めて、ミルテフォシンが、肥満細胞および好塩基球の活性化および脱顆粒を阻害することができること、さらに、6%ミルテフォシン溶液での外用治療は、インビボでのIgE依存性のヒト肥満細胞の刺激を阻害することができることを示す。最も注目すべきことは、インビトロでの肥満細胞を安定化するミルテフォシンの作用は、IgE依存性の活性化に限定されないと思われ、インビボでの抑制作用は、1人の被検体を除く全ての被検体において強力(すなわち検出可能)であり、さらに、顕著である(すなわち、これまでに説明されているあらゆる肥満細胞安定剤(例えばクロモグリク酸塩)に関して予想される作用よりも強い)ことである。興味深いことに、ヒスタミンによって誘導された膨疹形成において、インビボでのミルテフォシンの阻害作用も、低い程度ではあるが検出可能であり、これは、ミルテフォシンは、さらなる炎症促進性の経路をブロックする可能性を有することを示唆している。
Claims (22)
- 肥満細胞の感作および/または活性化に関連する免疫疾患を治療、予防および/または改善するための医薬組成物を製造するための、以下の式I:
式中、
R1は、第四級窒素原子を含むC4〜13炭化水素基であり;
Xは、O、または、直接結合であり;
R2は、C10〜20炭化水素基であり、ここで、1個またはそれより多くの水素が、任意にフッ素で置き換えられいてもよく、ここで、1個またはそれより多くのCH2基が、任意に酸素または以下の式IIで示される基で置換されてもよく:
Yは、O、O(CO)、S、または、S(CO)であり;
R3は、OH、C1〜4アルキル、O−C1〜3アルキル、O(CO)NH−C1〜3アルキル、O(CO)−C1〜6アルキル、S(CO)−C1〜6アルキル、O(CO)−C2〜3アルケニル、または、CH2O−C1〜3アルキルであり;
R3’は、H、または、C1〜4アルキルであり;および、
R4は、C10〜20炭化水素基であり、ここで、1個またはそれより多くの水素が、任意にフッ素で置き換えられいてもよい、上記使用。 - XがOである、請求項1または2に記載の使用。
- R2が、C10〜20炭化水素基であり、ここで、1個またはそれより多くの水素が、任意にフッ素で置き換えられいてもよく、ここで、1個またはそれより多くのCH2基が、任意に酸素で置き換えられいてもよい、請求項1〜3のいずれか一項に記載の使用。
- R2が、C12〜18アルキル基である、請求項4に記載の使用。
- R2が、式IIで示される基であり、X、Y、R3、R3’およびR4は請求項1で定義された通りである、請求項1〜3のいずれか一項に記載の使用。
- YがOである、請求項5に記載の使用。
- R3が、O−C1〜2アルキルである、請求項6または7に記載の使用。
- R4が、C12〜18アルキル基である、請求項6〜8のいずれか一項に記載の使用。
- 前記式Iで示される化合物が、エデルフォシン(Edelfosine)、ミルテフォシン、ペリフォシン(Perifosine)、イルメオフォシン(Ilmeofosine)、1−O−パルミトイル−2−O−メチル−sn−グリセロ−3−ホスホコリン、および、1−O−パルミトイル−2−O−エチル−sn−グリセロ−3−ホスホコリンから選択される、請求項1に記載の使用。
- 前記式Iで示される化合物が、ミルテフォシンである、請求項10に記載の使用。
- 前記免疫疾患が、肥満細胞の脱顆粒に関連する、請求項1〜11のいずれか一項に記載の使用。
- 前記免疫疾患が、急性アレルギー性疾患、アレルギー性障害、または、アレルギー性炎症である、請求項1〜12のいずれか一項に記載の使用。
- 前記免疫疾患が、腎線維症、肝線維症および肺線維症、強皮症、神経線維腫症、間質性膀胱炎、過敏性腸症候群、慢性閉塞性肺疾患(COPD)、食物アレルギー、および、周期性嘔吐症からなる群より選択される、請求項13に記載の使用。
- 前記アレルギー性疾患が、喘息、アレルギー性鼻炎(枯草熱)、紅斑病変、アトピー性湿疹、全身性アナフィラキシー、神経皮膚炎、および、アトピー性皮膚炎からなる群より選択される、請求項13に記載の使用。
- 前記紅斑病変が、じんましん、肥満細胞症、および、紅斑性狼瘡からなる群より選択される、請求項15に記載の使用。
- 前記じんましんが、コリン性じんましん、皮膚描記症、寒冷じんましん、日光じんましん、水性じんましん、薬物関連のじんましん、および、毒素関連のじんましんからなる群より選択される、請求項16に記載の使用。
- 前記アレルギー性障害が、移植片対宿主疾患、または、移植による拒絶反応である、請求項13に記載の使用。
- 肥満細胞の感作および/または活性化に関連する免疫疾患の治療、予防および/または改善方法であって、該方法は、請求項1〜11のいずれか一項で定義された化合物の医薬活性を有する用量を、このような治療、予防および/または改善が必要な被検体に投与することを含む、上記方法。
- 前記免疫疾患が、肥満細胞の脱顆粒に関連する、請求項19に記載の方法。
- 前記免疫疾患が、急性アレルギー性疾患、アレルギー性障害、または、アレルギー性炎症である、請求項19または20に記載の方法。
- 前記被検体が、ヒトである、請求項19〜21のいずれか一項に記載の方法。
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