JP2007225603A - Method and reagent for immunoassay of measured object in sample - Google Patents

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Mizuho Kawamura
みずほ 川村
Akihito Tomita
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Hitachi Chemical Diagnostics Systems Co Ltd
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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a method and a reagent for immunoassay of a measured object in a sample where influence of hemoglobin is suppressed. <P>SOLUTION: In the method for immunoassay of the measured object, the measured object in the sample is made to react with an antibody to be bonded to the measured object under coexistence of cytolysate which does not originate from the sample. The reagent for immunoassay of the measured object contains the cytolysate. The influence of hemoglobin on the immuno-reaction of the measured object is suppressed by making the measured object in the sample react with the antibody to be bonded to the measured object under coexistence of cytolysate which does not originate from the sample. <P>COPYRIGHT: (C)2007,JPO&INPIT

Description

本発明は、測定対象物の免疫測定方法および免疫測定試薬、ならびに、測定対象物の免疫反応に及ぼすヘモグロビンの影響を抑制する方法、および、測定対象物の免疫反応に及ぼすヘモグロビンの影響の抑制試薬に関する。   The present invention relates to an immunoassay method and immunoassay reagent for a measurement object, a method for suppressing the influence of hemoglobin on the immune reaction of the measurement object, and a reagent for suppressing the influence of hemoglobin on the immune reaction of the measurement object About.

血液成分を免疫学的に測定する場合、全血から血球を除去した血清または血漿が試料として用いられるのが一般的である。しかし、血球を除去するためには遠心分離機等の専用の装置が必要であり、手間もかかるため、直接全血検体を測定する方法が提案されている(特許文献1参照)。全血を試料とする場合、溶血により検体に混入するヘモグロビン等の血球成分や血球の膜成分が、光学的な検出系に影響したり、免疫反応を阻害したり、測定対象物質を吸着することにより、測定に影響がでる問題がある。このような問題を回避するため、溶血をさせずに測定する全血を試料とする免疫測定方法が報告されている(特許文献2、3、4および5参照)。   When measuring blood components immunologically, serum or plasma obtained by removing blood cells from whole blood is generally used as a sample. However, in order to remove blood cells, a dedicated device such as a centrifuge is required, which takes time, and a method for directly measuring a whole blood sample has been proposed (see Patent Document 1). When whole blood is used as a sample, blood cell components such as hemoglobin and blood cell components mixed into the specimen due to hemolysis affect the optical detection system, inhibit the immune reaction, and adsorb the measurement target substance. Therefore, there is a problem that affects the measurement. In order to avoid such a problem, an immunoassay method using whole blood that is measured without hemolysis as a sample has been reported (see Patent Documents 2, 3, 4, and 5).

細胞内蛋白質等の血球成分を測定する場合には、血球を溶解する必要があるため、上記の溶血をさせずに測定する方法を用いることができない。この場合には、フローサイトメトリーにより、対象の血球を分離してから、分離した細胞を溶解させて目的の血球成分を測定する方法がとられてきたが、フローサイトメトリーのための専用の装置が必要であり、手間がかかる。一方、細胞内蛋白質の簡便な測定法の例として、界面活性剤で全血中の血球を溶解させたものを測定試料とした、MxAタンパク質の免疫測定法が報告されている(非特許文献1参照)。この報告では特にヘモグロビン等の影響を抑制するための手段はとられていない。したがって全血等のヘモグロビンを含有する試料中の血球を溶解させて、簡便かつ高感度で、ヘモグロビン等の影響を抑制した測定方法については、未だ確立されているとは言えなかった。
特開平10−48214号公報 特開平6−265554号公報 国際公開第96/04558号パンフレット 国際公開第02/73203号パンフレット 特開2004−45395号公報 ジャーナル・オブ・インターフェロン・リサーチ(Journal of Interferon Research),(米国),1992年,第12巻,第2号,p.67−74 ペディアトリック・リサーチ(Pediatric Research),(米国)、1997年,第41巻,第5号,p.647−650
When measuring blood cell components such as intracellular proteins, it is necessary to lyse the blood cells, and thus the above-described measurement method without hemolysis cannot be used. In this case, a method of measuring the target blood cell component by separating the target blood cells by flow cytometry and then lysing the separated cells has been used. Is necessary and time-consuming. On the other hand, as an example of a simple method for measuring intracellular protein, an immunoassay method for MxA protein using a sample obtained by dissolving blood cells in whole blood with a surfactant has been reported (Non-patent Document 1). reference). In this report, no measures are taken to suppress the influence of hemoglobin or the like. Therefore, it has not been established that a measurement method that dissolves blood cells in a sample containing hemoglobin such as whole blood, is simple and highly sensitive, and suppresses the influence of hemoglobin or the like.
JP-A-10-48214 JP-A-6-265554 International Publication No. 96/04558 Pamphlet International Publication No. 02/73203 Pamphlet JP 2004-45395 A Journal of Interferon Research, (USA), 1992, Vol. 12, No. 2, p. 67-74 Pediatric Research, (USA), 1997, Vol. 41, No. 5, p. 647-650

本発明の目的は、ヘモグロビンの影響が抑制された、試料中の測定対象物の免疫測定方法および免疫測定試薬を提供することにある。   An object of the present invention is to provide an immunoassay method and an immunoassay reagent for a measurement object in a sample, in which the influence of hemoglobin is suppressed.

本発明者らは、測定対象物と該測定対象物に結合する抗体とを試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させることにより、ヘモグロビンの影響を抑制できることを見出し、本発明を完成させた。すなわち、本発明は以下の[1]〜[23]に関する。
[1]試料中の測定対象物と該測定対象物に結合する抗体とを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させることを特徴とする、測定対象物の免疫測定方法。
[2]免疫測定方法が、サンドイッチ法または競合法である[1]に記載の方法。
[3]試料中の測定対象物と(i)〜(iii)のいずれかとを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させることを特徴とする、測定対象物の免疫測定方法。
(i)該測定対象物に結合する第1の抗体、および、該測定対象物に結合する第2の抗体に標識が結合した標識化抗体、
(ii)競合物質に標識が結合した標識化競合物質、ならびに、該測定対象物および競合物質に結合する抗体、
(iii)競合物質、ならびに、該測定対象物および競合物質に結合し、かつ、標識が結合した標識化抗体。
[4]試料中の測定対象物と該測定対象物に結合する抗体とを試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させることを特徴とする、測定対象物の免疫反応に及ぼすヘモグロビンの影響を抑制する方法。
The present inventors have found that the influence of hemoglobin can be suppressed by reacting a measurement object and an antibody that binds to the measurement object in the presence of a cell lysate not derived from the sample, and completed the present invention. It was. That is, the present invention relates to the following [1] to [23].
[1] A method for immunoassay of a measurement target, comprising reacting a measurement target in a sample with an antibody that binds to the measurement target in the presence of a cell lysate not derived from the sample.
[2] The method according to [1], wherein the immunoassay method is a sandwich method or a competitive method.
[3] An immunoassay method for an object to be measured, comprising reacting the object to be measured in the sample with any one of (i) to (iii) in the presence of a cell lysate not derived from the sample.
(I) a labeled antibody in which a label is bound to a first antibody that binds to the measurement object, and a second antibody that binds to the measurement object;
(Ii) a labeled competitor with a label bound to the competitor, and an antibody that binds to the analyte and competitor,
(Iii) A competitive substance, and a labeled antibody that binds to the measurement target and the competitive substance and has a label bound thereto.
[4] The influence of hemoglobin on the immune reaction of a measurement object, wherein the measurement object in a sample and an antibody that binds to the measurement object are reacted in the presence of a cell lysate not derived from the sample. How to suppress.

[5]試料が、全血である[1]〜[4]のいずれかに記載の方法。
[6]全血が、血球を溶解させた全血である[5]に記載の方法。
[7]血球を溶解させた全血が、血球を界面活性剤により溶解させた全血である[6]に記載の方法。
[8]細胞溶解物が、動物細胞の細胞溶解物である[1]〜[7]のいずれかに記載の方法。
[9]動物細胞が、動物の株化細胞である[8]に記載の方法。
[10]動物の株化細胞が、Raji細胞またはT98G細胞である[9]に記載の方法。
[11]測定対象物が、MxAタンパク質またはパンクレアティティス・アソシエーテド・プロテインである[1]〜[10]のいずれかに記載の方法。
[5] The method according to any one of [1] to [4], wherein the sample is whole blood.
[6] The method according to [5], wherein the whole blood is whole blood obtained by dissolving blood cells.
[7] The method according to [6], wherein the whole blood in which blood cells are dissolved is whole blood in which blood cells are dissolved with a surfactant.
[8] The method according to any one of [1] to [7], wherein the cell lysate is a cell lysate of animal cells.
[9] The method according to [8], wherein the animal cell is an animal cell line.
[10] The method according to [9], wherein the animal cell line is Raji cell or T98G cell.
[11] The method according to any one of [1] to [10], wherein the object to be measured is MxA protein or Pancreatitis associated protein.

[12]細胞溶解物を含有することを特徴とする、測定対象物と該測定対象物に結合する抗体との反応に及ぼすヘモグロビンの影響の抑制試薬。
[13]細胞溶解物を含有することを特徴とする、測定対象物の免疫測定試薬。
[14]さらに、(i)〜(iii)のいずれかを含有する[13]に記載の免疫測定試薬。
(i)測定対象物に結合する第1の抗体、および、測定対象物に結合する第2の抗体に標識が結合した標識化抗体、
(ii)競合物質に標識が結合した標識化競合物質、ならびに、測定対象物および競合物質に結合する抗体、
(iii)競合物質、ならびに、測定対象物および競合物質に結合する抗体に標識が結合した標識化抗体。
[12] A reagent for suppressing the influence of hemoglobin on the reaction between a measurement object and an antibody that binds to the measurement object, comprising a cell lysate.
[13] An immunoassay reagent for an object to be measured, comprising a cell lysate.
[14] The immunoassay reagent according to [13], further comprising any one of (i) to (iii).
(I) a labeled antibody in which a label is bound to a first antibody that binds to a measurement object, and a second antibody that binds to the measurement object;
(Ii) a labeled competitor having a label bound to the competitor, and an antibody that binds to the analyte and the competitor,
(Iii) A labeled antibody in which a label is bound to a competitive substance, and an antibody that binds to an analyte and a competitive substance.

[15]さらに、試料中の血球を溶解させるための試薬を含有する[13]または[14]に記載の免疫測定試薬。
[16]血球を溶解させるための試薬が、界面活性剤である[15]に記載の免疫測定試薬。
[17]界面活性剤が、非イオン性界面活性剤である[16]に記載の免疫測定試薬。
[18]非イオン性界面活性剤が、ポリオキシエチレン系界面活性剤である[17]に記載の免疫測定試薬。
[19]ポリオキシエチレン系界面活性剤が、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルである[18]に記載の免疫測定試薬。
[15] The immunoassay reagent according to [13] or [14], further comprising a reagent for dissolving blood cells in the sample.
[16] The immunoassay reagent according to [15], wherein the reagent for dissolving blood cells is a surfactant.
[17] The immunoassay reagent according to [16], wherein the surfactant is a nonionic surfactant.
[18] The immunoassay reagent according to [17], wherein the nonionic surfactant is a polyoxyethylene surfactant.
[19] The immunoassay reagent according to [18], wherein the polyoxyethylene-based surfactant is polyoxyethylene alkylphenyl ether.

[20]細胞溶解物が、動物細胞の細胞溶解物である[12]〜[19]のいずれかに記載の試薬。
[21]動物細胞が、動物の株化細胞である[20]に記載の試薬。
[22]動物の株化細胞が、Raji細胞またはT98G細胞である[21]に記載の試薬。
[23]測定対象物が、MxAタンパク質またはパンクレアティティス・アソシエーテド・プロテインである[12]〜[22]のいずれかに記載の試薬。
[20] The reagent according to any one of [12] to [19], wherein the cell lysate is a cell lysate of animal cells.
[21] The reagent according to [20], wherein the animal cell is an animal cell line.
[22] The reagent according to [21], wherein the animal cell line is a Raji cell or a T98G cell.
[23] The reagent according to any one of [12] to [22], wherein the object to be measured is MxA protein or Pancreatitis associated protein.

本発明により、ヘモグロビンの影響が抑制された、試料中の測定対象物の免疫測定方法および免疫測定試薬が提供される。   According to the present invention, there are provided an immunoassay method and an immunoassay reagent for a measurement object in a sample, in which the influence of hemoglobin is suppressed.

(1)試料
本発明の免疫測定方法において試料として使用される試料としては、例えば、全血、全血から調製した赤血球を含む血球画分、溶血が疑われる血漿または血清、赤血球、任意の試料にヘモグロビンを添加した試料等、ヘモグロビンを含有する試料またはヘモグロビンの含有が疑われる試料があげられる。全血としては、被検者より採取した血液そのものでもよいが、採取した血液を処理したものでもよく、処理した血液が好ましい。当該処理としては、例えば抗凝固処理、溶血処理等があげられ、これらの処理を組み合わせてもよい。測定対象物が血球の細胞内成分である場合は、全血として、溶血処理した血液が好ましく、抗凝固処理と溶血処理の両処理を行った血液が特に好ましい。抗凝固処理としては、例えば採取した血液にEDTA、ヘパリン等を添加する処理等があげられる。溶血処理としては、例えば界面活性剤またはサポニン類溶液の添加、低張液との混合、凍結融解、超音波処理等があげられる。界面活性剤としては、測定系に影響せず、細胞を溶解できるものであれば、どのような界面活性剤でも用いることができるが、本発明においては非イオン性界面活性剤が好ましい。非イオン界面活性剤としては、例えば後述の非イオン性界面活性剤があげられる。血球画分や赤血球を試料とする場合も上記に記載したような、抗凝固処理、溶血処理等を行ったものが好ましい。
(1) Sample As a sample used as a sample in the immunoassay method of the present invention, for example, whole blood, a blood cell fraction containing red blood cells prepared from whole blood, plasma or serum suspected of hemolysis, red blood cells, arbitrary sample Examples include a sample containing hemoglobin or a sample suspected of containing hemoglobin, such as a sample added with hemoglobin. The whole blood may be the blood itself collected from the subject, or may be the processed blood, and the processed blood is preferred. Examples of the treatment include anticoagulation treatment and hemolysis treatment, and these treatments may be combined. When the measurement target is an intracellular component of a blood cell, the whole blood is preferably hemolyzed blood, and particularly preferably blood subjected to both anticoagulation treatment and hemolysis treatment. Examples of the anticoagulation treatment include a treatment of adding EDTA, heparin or the like to the collected blood. Examples of the hemolysis treatment include addition of a surfactant or a saponin solution, mixing with a hypotonic solution, freezing and thawing, ultrasonic treatment, and the like. As the surfactant, any surfactant can be used as long as it can lyse cells without affecting the measurement system. In the present invention, a nonionic surfactant is preferable. Examples of the nonionic surfactant include the nonionic surfactant described below. When using a blood cell fraction or erythrocyte as a sample, those subjected to anticoagulation treatment, hemolysis treatment and the like as described above are preferable.

(2)測定対象物
本発明の免疫測定方法で測定される測定対象物は、(1)であげた試料に含まれる物質であれば特に制限はなく、血球の成分、血漿中に含まれる例えば、抗体、インターロイキン、ホルモン等の蛋白質や生理活性物質、外部から投与された薬物等があげられる。具体的な測定対象物の例としては、白血球の成分であるMxAタンパク質(Mol. Cell. Biol., 9, 5062-5072, 1989; J. Virol. 64, 1171-1181, 1990)、血漿中に含まれるパンクレアティティス・アソシエーテド・プロテイン(Pancreatitis Associated Protein;以下、PAPと略す)(Digestion, 29, 242-249, 1984)等があげられる。
(2) Measurement object The measurement object to be measured by the immunoassay method of the present invention is not particularly limited as long as it is a substance contained in the sample mentioned in (1). For example, it is contained in blood cell components or plasma. And proteins such as antibodies, interleukins and hormones, bioactive substances, drugs administered from the outside, and the like. Specific examples of measurement objects include MxA protein (Mol. Cell. Biol., 9 , 5062-5072, 1989; J. Virol. 64 , 1171-1181, 1990), which is a component of leukocytes, in plasma. Pancreatitis Associated Protein (hereinafter abbreviated as PAP) (Digestion, 29 , 242-249, 1984) and the like.

(3)細胞溶解物
本発明の免疫測定方法は、試料に由来しない細胞溶解物、すなわち、試料に含まれる細胞溶解物とは別の細胞溶解物の共存下で、測定対象物と測定対象物に結合する抗体とを反応させる点に特徴がある。本発明の方法で、共存させる細胞溶解物には、試料中の細胞を溶解して免疫測定を行う場合の、試料に含まれる細胞溶解物は含まれない。例えば、全血を試料とし、全血中の血球を溶解させて測定を行う場合、血球の溶解物が共存することになるが、この溶解物とは別に、細胞溶解物を添加して、抗原抗体反応を行う。
(3) Cell lysate The immunoassay method of the present invention is based on the measurement object and the measurement object in the presence of a cell lysate not derived from the sample, that is, a cell lysate different from the cell lysate contained in the sample. It is characterized in that it reacts with an antibody that binds to. The cell lysate coexisting in the method of the present invention does not include the cell lysate contained in the sample when the immunoassay is performed by lysing cells in the sample. For example, when whole blood is used as a sample and blood cells in whole blood are lysed for measurement, a lysate of blood cells will coexist. Perform an antibody reaction.

細胞溶解物は、細胞を溶解、すなわち細胞膜を破壊して得られる細胞質を含む液体を意味し、例えば細胞を溶解した後、遠心分離を行い上清として得ることができる。細胞の溶解は、例えば前述の溶血処理により行うことができるが、界面活性剤による溶血が好ましい。界面活性剤としては、免疫測定に影響せず、細胞を溶解できるものであれば特に制限はないが、非イオン性界面活性剤が好ましい。   The cell lysate means a liquid containing a cytoplasm obtained by lysing cells, that is, by destroying a cell membrane. For example, the cells can be lysed and then centrifuged to obtain a supernatant. Cell lysis can be performed, for example, by the above-described hemolysis treatment, but hemolysis with a surfactant is preferable. The surfactant is not particularly limited as long as it does not affect immunoassay and can lyse cells, but a nonionic surfactant is preferable.

前述の溶血処理および細胞の溶解に使用される非イオン性界面活性剤としては、例えばポリオキシエチレン系界面活性剤、ソルビタン脂肪酸エステル、グリセリン脂肪酸エステル等があげられるが、ポリオキシエチレン系界面活性剤が好ましい。ポリオキシエチレン系界面活性剤としては、例えばポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル等があげられ、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルが好ましい。ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルにおけるアルキルとしては、例えばオクチル、ノニル等があげられる。ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルの具体例(市販品)としては、例えばノニデットP−40(ポリオキシエチレンノニルフェニルエーテル)等があげられる。   Examples of the nonionic surfactant used for the hemolysis treatment and cell lysis described above include polyoxyethylene surfactants, sorbitan fatty acid esters, glycerin fatty acid esters, and the like. Polyoxyethylene surfactants Is preferred. Examples of the polyoxyethylene surfactant include polyoxyethylene alkylphenyl ether, polyoxyethylene alkyl ether, polyoxyethylene sorbitan fatty acid ester, and the like, and polyoxyethylene alkylphenyl ether is preferable. Examples of the alkyl in the polyoxyethylene alkylphenyl ether include octyl and nonyl. Specific examples (commercially available products) of polyoxyethylene alkylphenyl ether include Nonidet P-40 (polyoxyethylene nonylphenyl ether) and the like.

細胞溶解物の原料となる細胞は、動物細胞、植物細胞、微生物等いかなる細胞でもよいが、動物の細胞が好ましく、動物の株化細胞がより好ましい。なお、動物細胞には、非ヒト動物の細胞だけでなく、ヒトの細胞も含まれる。動物の株化細胞としては、ヒト血球系細胞から樹立されたRaji、Namalwa、HL60、ヒト神経細胞から樹立されたT98G、CCF−STTG1、H4、ヒト子宮癌細胞から樹立されたHeLa、サル腎臓細胞から樹立されたCOS−7、Vero、ハムスター卵巣細胞から樹立されたCHO、ハムスター腎臓細胞から樹立されたBHK21、マウス繊維芽細胞から樹立されたNIH/3T3、ラットミエローマ細胞から樹立されたNS0、イヌ腎臓細胞から樹立されたMDCK等があげられる。   The cell used as a raw material of the cell lysate may be any cell such as an animal cell, a plant cell, or a microorganism, but an animal cell is preferable, and an animal cell line is more preferable. Animal cells include not only non-human animal cells but also human cells. Examples of animal cell lines include Raji, Namalwa, HL60 established from human blood cells, T98G established from human neurons, CCF-STTG1, H4, HeLa established from human uterine cancer cells, monkey kidney cells COS-7 established from Vero, CHO established from hamster ovary cells, BHK21 established from hamster kidney cells, NIH / 3T3 established from mouse fibroblasts, NS0 established from rat myeloma cells, dog MDCK established from kidney cells.

細胞溶解物は、本発明の免疫測定方法における、試料中の測定対象物が関わる抗原抗体反応に共存される。すなわち、細胞溶解物は、サンドイッチ法における1次反応(測定対象物に結合する第1の抗体と試料中の測定対象物との反応)、競合法における競合反応に共存される。細胞溶解物は、あらかじめ試料に添加されていてもよいが、反応液に添加されてもよい。例えば、細胞溶解物を含む試料希釈液を調製しておき、試料を検体希釈液で希釈したものを試料として使用することができる。また、細胞溶解物を含む試料希釈液には、試料中の血球を溶解させるための前述の界面活性剤が含まれていてもよい。   The cell lysate coexists in the antigen-antibody reaction involving the measurement object in the sample in the immunoassay method of the present invention. That is, the cell lysate coexists in the primary reaction in the sandwich method (reaction between the first antibody that binds to the measurement object and the measurement object in the sample) and the competitive reaction in the competition method. The cell lysate may be added to the sample in advance, or may be added to the reaction solution. For example, a sample diluent containing a cell lysate can be prepared, and a sample diluted with a specimen diluent can be used as a sample. The sample diluent containing cell lysate may contain the aforementioned surfactant for dissolving blood cells in the sample.

細胞溶解物の添加量は、測定対象物の免疫反応に及ぼすヘモグロビンの影響を抑制する濃度であれば特に制限はないが、例えば測定対象物の反応液中、細胞溶解物の蛋白質濃度として、1μg/mL〜2mg/mL、より好ましくは5〜50μg/mLの量添加する。容量としては、検体の0.1〜10%の量が好ましい。
細胞溶解物は、前述の測定対象物を含有していないものが好ましく、また、測定対象物を含有する場合は、あらかじめ、測定対象物の濃度を決定したものが好ましい。
The amount of cell lysate added is not particularly limited as long as it is a concentration that suppresses the influence of hemoglobin on the immune reaction of the measurement object. For example, the protein concentration of the cell lysate in the reaction solution of the measurement object is 1 μg. / ML to 2 mg / mL, more preferably 5 to 50 μg / mL. The volume is preferably 0.1 to 10% of the sample.
The cell lysate preferably does not contain the above-mentioned measurement object, and when it contains the measurement object, it is preferable to determine the concentration of the measurement object in advance.

(4)抗体
本発明の測定方法において使用される抗体としては、測定対象物に特異的に結合する抗体であれば特に制限はなく、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいずれも使用できるが、モノクローナル抗体が好ましい。また、本発明においては、抗体のみならず、抗体をパパイン処理により得られるFab、ペプシン処理により得られるF(ab’)2、ペプシン処理−還元処理により得られるFab’等のFc部分を除去した抗体フラグメントも使用できる。抗体フラグメントとしては、F(ab’)2が特に好ましい。
(4) Antibody The antibody used in the measurement method of the present invention is not particularly limited as long as it is an antibody that specifically binds to a measurement target, and both a polyclonal antibody and a monoclonal antibody can be used. preferable. In the present invention, not only antibodies but also Fc portions such as Fab obtained by papain treatment, F (ab ′) 2 obtained by pepsin treatment, Fab ′ obtained by pepsin treatment-reduction treatment, etc. were removed from the antibody. Antibody fragments can also be used. As the antibody fragment, F (ab ′) 2 is particularly preferable.

本発明において使用する抗体は、測定対象物またはそのエピトープに相当するペプチドを抗原として用いて通常の方法により取得することができるが、市販品としても入手可能である。   The antibody used in the present invention can be obtained by an ordinary method using a peptide to be measured or a peptide corresponding to its epitope as an antigen, but is also commercially available.

測定対象物がMxAタンパク質である場合、MxAタンパク質に特異的に結合する抗体としては、例えば、WO 96/05230に記載された、ハイブリドーマ細胞株KM1122、KM1123、KM1124(FERM BP−4729)、KM1125、KM1126、KM1127、KM1128、KM1129、KM1130、KM1131、KM1132(FERM BP−4730)、KM1133、KM1134、KM1135(FERM BP−4731)がそれぞれ産生する抗ヒトMxAタンパク質モノクローナル抗体KM1122、KM1123、KM1124、KM1125、KM1126、KM1127、KM1128、KM1129、KM1130、KM1131、KM1132、KM1133、KM1134、KM1135等があげられる。測定対象物がPAPである場合、PAPに特異的に結合する抗体としては、例えば6F3E4(WO94/15218)、16F4B8(WO94/15218)等があげられる。   When the measurement target is MxA protein, examples of antibodies that specifically bind to MxA protein include hybridoma cell lines KM1122, KM1123, KM1124 (FERM BP-4729), KM1125, described in WO 96/05230, KM1126, KM1127, KM1128, KM1129, KM1130, KM1131, KM1132 (FERM BP-4730), KM1133, KM1134, KM1135 (FERM BP-4731) produced by anti-human MxA protein monoclonal antibodies KM1122, KM1123, KM1124, KM1124 , KM1127, KM1128, KM1129, KM1130, KM1131, KM1132, KM1133, KM1134 KM1135 and the like. When the measurement target is PAP, examples of antibodies that specifically bind to PAP include 6F3E4 (WO94 / 15218), 16F4B8 (WO94 / 15218), and the like.

(5)競合物質
本発明において「競合物質」とは、本発明の免疫測定法において用いる「測定対象物に結合する抗体」に結合できる物質であって、かつその結合が、測定対象物と競合的であるような物質を意味し、測定対象物そのものも含まれる。「競合物質」は、試料中の測定対象物を競合法により測定する際に使用されるものである。したがって、競合法において用いる測定対象物に結合する抗体は、測定対象物および競合物質に結合する抗体であり、測定対象物と結合して免疫複合体を生成するとともに、競合物質とも結合して免疫複合体を生成する。競合物質としては、測定対象物に結合する抗体が認識するエピトープの構造と同じ構造を有している物質が好ましく、さらに測定対象物に結合する抗体に対する結合の強さが、該抗体に対する測定対象物の結合の強さと同程度であるものが好ましい。測定対象物そのものは競合物質として好適である。
(5) Competing substance In the present invention, a “competitive substance” is a substance that can bind to an “antibody that binds to a measurement target” used in the immunoassay of the present invention, and the binding competes with the measurement target. It means a substance that is the target, and includes the measurement object itself. The “competitive substance” is used when measuring an object to be measured in a sample by a competitive method. Therefore, the antibody that binds to the measurement target used in the competition method is an antibody that binds to the measurement target and the competitive substance, and binds to the measurement target to generate an immune complex, and also binds to the competitive substance to immunize. Create a complex. The competitive substance is preferably a substance having the same structure as the epitope recognized by the antibody that binds to the measurement target, and the strength of the binding to the antibody that binds to the measurement target is determined by the measurement target for the antibody. Those having the same strength as the bond of the object are preferred. The measurement object itself is suitable as a competitive substance.

(6)免疫測定方法
本発明の免疫測定方法は、試料中の測定対象物と該測定対象物に結合する抗体とを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させることを特徴とする方法である。本発明の免疫測定方法としては、例えばサンドイッチ法、競合法等があげられる。例えば、試料中の測定対象物と、以下の(i)〜(iii)のいずれかとを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させることを特徴とする免疫測定方法があげられる。(i)はサンドイッチ法、(ii)および(iii)は競合法である。
(i)該測定対象物に結合する第1の抗体、および、該測定対象物に結合する第2の抗体に標識が結合した標識化抗体、
(ii)競合物質に標識が結合した標識化競合物質、ならびに、該測定対象物および競合物質に結合する抗体、
(iii)競合物質、ならびに、該測定対象物および競合物質に結合し、かつ、標識が結合した標識化抗体。
(6) Immunoassay method The immunoassay method of the present invention is characterized in that a measurement object in a sample and an antibody that binds to the measurement object are reacted in the presence of a cell lysate not derived from the sample. Is the method. Examples of the immunoassay method of the present invention include a sandwich method and a competition method. For example, an immunoassay method is characterized in that a measurement object in a sample is reacted with any of the following (i) to (iii) in the presence of a cell lysate not derived from the sample. (I) is a sandwich method and (ii) and (iii) are competitive methods.
(I) a labeled antibody in which a label is bound to a first antibody that binds to the measurement object, and a second antibody that binds to the measurement object;
(Ii) a labeled competitor with a label bound to the competitor, and an antibody that binds to the analyte and competitor,
(Iii) A competitive substance, and a labeled antibody that binds to the measurement target and the competitive substance and has a label bound thereto.

具体的には、例えば、以下の態様の方法があげられる。測定方法1および2はサンドイッチ法、測定方法3〜6は試料中の測定対象物と競合物質を競合させる競合法、測定方法7は、免疫複合体と免疫複合体に含まれない標識化抗体または標識化競合物質との分離(B/F分離)を行わないホモジニアス法である。   Specifically, the method of the following aspect is mention | raise | lifted, for example. Measurement methods 1 and 2 are sandwich methods, measurement methods 3 to 6 are competition methods in which a measurement object in a sample and a competitive substance compete with each other, and measurement methods 7 are labeled antibodies that are not included in immune complexes and immune complexes or This is a homogeneous method that does not separate the labeled competitor (B / F separation).

測定方法1
以下の(a)〜(e)の工程を順次行う測定方法。
(a)試料中の測定対象物と、測定対象物に結合する第1の抗体とを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させて、第1の抗体と測定対象物とからなる免疫複合体を生成させる工程;
(b)(a)の工程で生成した免疫複合体と、測定対象物に結合する第2の抗体に標識が結合した標識化抗体とを反応させ、第1の抗体、測定対象物および標識化抗体とからなる免疫複合体を生成させる工程;
(c)(b)の工程で生成した免疫複合体と該免疫複合体に含まれない標識化抗体とを分離する工程;
(d)(b)の工程で生成した免疫複合体中の標識の量を測定する工程;および、
(e)(b)の工程で生成した免疫複合体中の標識の量から、試料中の測定対象物の濃度を決定する工程。
Measurement method 1
A measurement method for sequentially performing the following steps (a) to (e).
(A) A measurement object in a sample and a first antibody that binds to the measurement object are reacted in the presence of a cell lysate that does not originate from the sample, and consists of the first antibody and the measurement object. Generating an immune complex;
(B) The immune complex generated in the step (a) is reacted with the labeled antibody having the label bound to the second antibody that binds to the measurement target, and the first antibody, the measurement target, and the labeling Generating an immune complex comprising an antibody;
(C) a step of separating the immune complex produced in the step (b) and a labeled antibody not contained in the immune complex;
(D) measuring the amount of the label in the immune complex produced in the step (b); and
(E) A step of determining the concentration of the measurement object in the sample from the amount of the label in the immune complex generated in the step (b).

第1の抗体は、不溶性担体に固定化されていることが好ましい。工程(a)と工程(b)は順次行っても、同時に行ってもよい。第1の抗体と結合した測定対象物に第2の抗体が結合することができれば、第1の抗体が認識する測定対象物中の部位と、第2の抗体が認識する測定対象物中の部位とは同じであっても異なっていてもよいが、異なっていることが好ましい。   The first antibody is preferably immobilized on an insoluble carrier. Step (a) and step (b) may be performed sequentially or simultaneously. If the second antibody can bind to the measurement object bound to the first antibody, the site in the measurement object recognized by the first antibody and the site in the measurement object recognized by the second antibody May be the same or different, but are preferably different.

測定方法2
以下の(a)〜(f)の工程を順次行う測定方法。
(a)試料中の測定対象物と、測定対象物に結合する第1の抗体とを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させて、第1の抗体と測定対象物とからなる免疫複合体を生成させる工程;
(b)(a)の工程で生成した免疫複合体と、測定対象物に結合する第2の抗体とを反応させ、第1の抗体、測定対象物および第2の抗体からなる免疫複合体を生成させる工程;
(c)(b)の工程で生成した免疫複合体と、第2の抗体に結合する第3の抗体に標識が結合した標識化抗体とを反応させ、標識化抗体を含む免疫複合体を生成させる工程;
(d)(c)の工程で生成した免疫複合体と、該免疫複合体に含まれない標識化抗体とを分離する工程;
(e)(c)の工程で生成した免疫複合体中の標識の量を測定する工程;および
(f)(c)の工程で生成した免疫複合体中の標識の量から、試料中の測定対象物の量を決定する工程。
Measurement method 2
A measurement method in which the following steps (a) to (f) are sequentially performed.
(A) A measurement object in a sample and a first antibody that binds to the measurement object are reacted in the presence of a cell lysate that does not originate from the sample, and consists of the first antibody and the measurement object. Generating an immune complex;
(B) reacting the immune complex generated in the step (a) with the second antibody that binds to the measurement target, and preparing an immune complex comprising the first antibody, the measurement target, and the second antibody. Generating step;
(C) The immune complex produced in the step (b) is reacted with a labeled antibody having a label attached to a third antibody that binds to the second antibody to produce an immune complex containing the labeled antibody. The step of causing;
(D) a step of separating the immune complex produced in the step (c) and a labeled antibody not contained in the immune complex;
(E) a step of measuring the amount of the label in the immune complex produced in the step (c); and (f) measurement in the sample from the amount of the label in the immune complex produced in the step (c). Determining the amount of the object.

第1の抗体は、不溶性担体に固定化されていることが好ましい。工程(a)〜(c)は順次行っても、同時に行ってもよい。第1の抗体と結合した測定対象物に第2の抗体が結合することができれば、第1の抗体が認識する測定対象物中の部位と、第2の抗体が認識する測定対象物中の部位とは同じであっても異なっていてもよいが、異なっていることが好ましい。   The first antibody is preferably immobilized on an insoluble carrier. Steps (a) to (c) may be performed sequentially or simultaneously. If the second antibody can bind to the measurement object bound to the first antibody, the site in the measurement object recognized by the first antibody and the site in the measurement object recognized by the second antibody May be the same or different, but are preferably different.

なお、試料中の測定対象物がある特定の抗原に対する抗体である場合は、測定方法1または2において、第1の抗体の代わりに該抗原を用いることにより、該測定対象物の測定を行うこともできる。   When the measurement target in the sample is an antibody against a specific antigen, the measurement target is measured by using the antigen instead of the first antibody in measurement method 1 or 2. You can also.

測定方法3
以下の(a)〜(d)の工程を順次行う測定方法。
(a)試料中の測定対象物と、標識化競合物質、ならびに、測定対象物および競合物質に結合する抗体とを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させ、該抗体と標識化競合物質とからなる免疫複合体、および、該抗体と測定対象物とからなる免疫複合体を生成させる工程;
(b)該抗体と標識化競合物質とからなる免疫複合体を、未反応の標識化競合物質から分離する工程;
(c)該抗体と標識化競合物質とからなる免疫複合体中の標識の量を測定する工程;および、
(d)該抗体と標識化競合物質とからなる免疫複合体中の標識の量から、試料中の測定対象物の濃度を決定する工程。
抗体は、不溶性担体に固定化されていることが好ましい。
Measurement method 3
A measurement method for sequentially performing the following steps (a) to (d).
(A) A measurement object in a sample, a labeled competitor, and an antibody that binds to the measurement object and the competitor are reacted in the presence of cell lysate not derived from the sample, and labeled with the antibody. Producing an immune complex comprising a competitor and an immune complex comprising the antibody and a measurement object;
(B) separating the immune complex comprising the antibody and the labeled competitor from unreacted labeled competitor;
(C) measuring the amount of the label in the immune complex comprising the antibody and the labeled competitor; and
(D) A step of determining the concentration of the measurement object in the sample from the amount of the label in the immune complex comprising the antibody and the labeled competitor.
The antibody is preferably immobilized on an insoluble carrier.

測定方法4
以下の(a)〜(d)の工程を順次行う測定方法。
(a)試料中の測定対象物と、競合物質、ならびに、測定対象物および競合物質に結合する抗体に標識が結合した標識化抗体とを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させ、標識化抗体と競合物質とからなる免疫複合体および標識化抗体と測定対象物とからなる免疫複合体を生成させる工程;
(b)標識化抗体と競合物質とからなる免疫複合体を、未反応の標識化抗体、および、標識化抗体と測定対象物とからなる免疫複合体から分離する工程;
(c)標識化抗体と競合物質とからなる免疫複合体中の標識の量を測定する工程;および、
(d)標識化抗体と競合物質とからなる免疫複合体中の標識の量から、試料中の測定対象物濃度を決定する工程。
Measurement method 4
A measurement method for sequentially performing the following steps (a) to (d).
(A) A measurement object in a sample, a competitive substance, and a labeled antibody in which a label is bound to an antibody that binds to the measurement object and the competitive substance are reacted in the presence of a cell lysate not derived from the sample. A step of generating an immune complex comprising a labeled antibody and a competitor and an immune complex comprising a labeled antibody and a measurement object;
(B) separating the immune complex composed of the labeled antibody and the competitor from the unreacted labeled antibody and the immune complex composed of the labeled antibody and the measurement target;
(C) measuring the amount of the label in the immune complex comprising the labeled antibody and the competitor; and
(D) A step of determining the concentration of the analyte in the sample from the amount of the label in the immune complex consisting of the labeled antibody and the competitor.

競合物質は、不溶性担体に固定化されていることが好ましい。なお、競合物質が測定対象物と同じ構造である場合には、(a)の工程において不溶性担体に固定化された競合物質を用いる。   The competitor is preferably immobilized on an insoluble carrier. When the competitive substance has the same structure as the measurement object, the competitive substance immobilized on the insoluble carrier in the step (a) is used.

測定方法5
以下の(a)〜(f)の工程を順次行う測定方法。
(a)試料中の測定対象物と、競合物質、ならびに、測定対象物および競合物質に結合する第1の抗体とを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させ、第1の抗体と競合物質とからなる免疫複合体、および、第1の抗体と測定対象物とからなる免疫複合体を生成させる工程;
(b)第1の抗体と競合物質とからなる免疫複合体を、未反応の第1の抗体、および、第1の抗体と測定対象物とからなる免疫複合体から分離する工程;
(c)第1の抗体と競合物質とからなる免疫複合体と、第1の抗体に結合する第2の抗体に標識が結合した標識化抗体とを反応させ、第1の抗体、競合物質および標識化抗体からなる免疫複合体を生成させる工程;
(d)第1の抗体、競合物質および標識化抗体からなる免疫複合体と、未反応の標識化抗体とを分離する工程;
(e)第1の抗体、競合物質および標識化抗体からなる免疫複合体中の標識の量を測定する工程;および、
(f)第1の抗体、競合物質および標識化抗体からなる免疫複合体中の標識の量から、試料中の測定対象物の濃度を決定する工程。
Measurement method 5
A measurement method in which the following steps (a) to (f) are sequentially performed.
(A) A measurement object in a sample, a competitive substance, and a first antibody that binds to the measurement object and the competitive substance are reacted in the presence of a cell lysate not derived from the sample, and the first antibody Generating an immune complex composed of the first antibody and the competitor, and an immune complex composed of the first antibody and the measurement target;
(B) separating the immune complex composed of the first antibody and the competitor from the unreacted first antibody and the immune complex composed of the first antibody and the measurement target;
(C) reacting an immune complex comprising a first antibody and a competitor with a labeled antibody having a label bound to a second antibody that binds to the first antibody, and reacting the first antibody, the competitor and Generating an immune complex comprising a labeled antibody;
(D) separating the immune complex composed of the first antibody, the competitor and the labeled antibody from the unreacted labeled antibody;
(E) measuring the amount of label in the immune complex consisting of the first antibody, competitor and labeled antibody; and
(F) A step of determining the concentration of the measurement object in the sample from the amount of the label in the immune complex composed of the first antibody, the competitor and the labeled antibody.

競合物質は、不溶性担体に固定化されていることが好ましい。なお、競合物質が測定対象物と同じ構造である場合には、(a)の工程において不溶性担体に固定化された競合物質を用いる。   The competitor is preferably immobilized on an insoluble carrier. When the competitive substance has the same structure as the measurement object, the competitive substance immobilized on the insoluble carrier in the step (a) is used.

測定方法6
以下の(a)〜(e)の工程を順次行う測定方法。
(a)試料中の測定対象物と、競合物質、ならびに、測定対象物および競合物質に結合する第1の抗体とを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させ、第1の抗体と競合物質とからなる免疫複合体、および、第1の抗体と測定対象物とからなる免疫複合体を生成させる工程;
(b)第1の抗体と競合物質とからなる免疫複合体、および、第1の抗体と測定対象物とからなる免疫複合体と、第1の抗体に結合する第2の抗体に標識が結合した標識化抗体とを反応させ、第1の抗体、競合物質および標識化抗体からなる免疫複合体、および、第1の抗体、測定対象物および標識化抗体とからなる免疫複合体を生成させる工程;
(c)第1の抗体、競合物質および標識化抗体からなる免疫複合体を、第1の抗体、測定対象物および標識化抗体とからなる免疫複合体、ならびに、未反応の標識化抗体から分離する工程;
(d)第1の抗体、競合物質および標識化抗体からなる免疫複合体中の標識の量を測定する工程;および、
(e)第1の抗体、競合物質および標識化抗体からなる免疫複合体中の標識の量から、試料中の測定対象物濃度を決定する工程。
Measurement method 6
A measurement method for sequentially performing the following steps (a) to (e).
(A) A measurement object in a sample, a competitive substance, and a first antibody that binds to the measurement object and the competitive substance are reacted in the presence of a cell lysate not derived from the sample, and the first antibody Generating an immune complex composed of the first antibody and the competitor, and an immune complex composed of the first antibody and the measurement target;
(B) A label is bound to the immune complex composed of the first antibody and the competitor, the immune complex composed of the first antibody and the measurement object, and the second antibody that binds to the first antibody. Reacting the labeled antibody to produce an immune complex composed of the first antibody, the competitor and the labeled antibody, and an immune complex composed of the first antibody, the measurement object and the labeled antibody. ;
(C) Separating the immune complex composed of the first antibody, the competitor and the labeled antibody from the immune complex composed of the first antibody, the measurement object and the labeled antibody, and the unreacted labeled antibody The step of:
(D) measuring the amount of label in the immune complex consisting of the first antibody, the competitor and the labeled antibody; and
(E) A step of determining the concentration of the analyte in the sample from the amount of the label in the immune complex consisting of the first antibody, the competitor and the labeled antibody.

競合物質は、不溶性担体に固定化されていることが好ましい。なお、競合物質が測定対象物と同じ構造である場合には、(a)の工程において不溶性担体に固定化された競合物質を用いる。   The competitor is preferably immobilized on an insoluble carrier. When the competitive substance has the same structure as the measurement object, the competitive substance immobilized on the insoluble carrier in the step (a) is used.

測定方法7
以下の(a)〜(c)の工程を有する測定方法。
(a)試料中の測定対象物と、測定対象物に特異的に結合する第1の抗体を標識物質1で標識した標識化抗体1、および、測定対象物に特異的に結合する第2の抗体を標識物質1とは異なる標識物質2で標識した標識化抗体2とを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させ、標識化抗体1、測定対象物および標識化抗体2からなる免疫複合体を生成させる工程;
(b)標識物質1と標識物質2の相互作用の変化量を測定する工程;および
(c)相互作用の変化量から試料中の測定対象物の量を求める工程。
Measurement method 7
The measuring method which has the process of the following (a)-(c).
(A) The measurement object in the sample, the labeled antibody 1 obtained by labeling the first antibody that specifically binds to the measurement object with the labeling substance 1, and the second that specifically binds to the measurement object The antibody is reacted with a labeled antibody 2 labeled with a labeling substance 2 different from the labeling substance 1 in the presence of a cell lysate not derived from the sample, and consists of a labeled antibody 1, a measurement object, and a labeled antibody 2. Generating an immune complex;
(B) a step of measuring the amount of change in the interaction between the labeling substance 1 and the labeling substance 2;

第1の抗体と結合した測定対象物に第2の抗体が結合することができれば、第1の抗体が認識する測定対象物中の部位と、第2の抗体が認識する測定対象物中の部位とは同じであっても異なっていてもよいが、異なっていることが好ましい。   If the second antibody can bind to the measurement object bound to the first antibody, the site in the measurement object recognized by the first antibody and the site in the measurement object recognized by the second antibody May be the same or different, but are preferably different.

上記の通り、測定方法1〜6は、B/F分離を伴う測定法(ヘテロジニアス法)である。測定方法1の工程(c)、測定方法2の工程(d)、測定方法3および4の工程(b)、測定方法5の工程(b)および(d)、測定方法6の工程(c)がB/F分離の工程である。このB/F分離は、抗体または競合物質が不溶性担体に固定化されている場合には、反応溶液を除去した後、不溶性担体を洗浄することにより容易に行うことができる。すなわち、抗原抗体反応後に反応溶液を除去し、不溶性担体を洗浄液により洗浄することにより、不溶性担体上に生成した免疫複合体と未反応の標識体(標識化抗体、標識化競合物質)とを分離することができる。洗浄液としては、リン酸緩衝化生理食塩水(0.15 mol/L 塩化ナトリウムを含有する10 mmol/L リン酸緩衝液、pH 7.2、以下、PBSと記す)、界面活性剤を含有するPBS、後述の水性媒体等をあげることができる。当該界面活性剤としては、例えばツイーン(Tween)20等の非イオン性界面活性剤等があげられる。また、測定方法1または2において、第1の抗体が不溶性担体に固定化されている場合には、工程(a)と工程(b)との間に不溶性担体を洗浄する工程を挿入することもできる。また、測定方法2において、第1の抗体が不溶性担体に固定化されている場合には、工程(b)と工程(c)との間に不溶性担体を洗浄する工程を有することが好ましい。   As described above, measurement methods 1 to 6 are measurement methods (heterogeneous methods) involving B / F separation. Step (c) of measurement method 1, step (d) of measurement method 2, step (b) of measurement methods 3 and 4, steps (b) and (d) of measurement method 5, step (c) of measurement method 6 Is the B / F separation step. This B / F separation can be easily performed by washing the insoluble carrier after removing the reaction solution when the antibody or the competitor is immobilized on the insoluble carrier. In other words, the reaction solution is removed after the antigen-antibody reaction, and the insoluble carrier is washed with a washing solution to separate the immune complex produced on the insoluble carrier from the unreacted label (labeled antibody, labeled competitor). can do. The washing solution contains phosphate buffered saline (10 mmol / L phosphate buffer containing 0.15 mol / L sodium chloride, pH 7.2, hereinafter referred to as PBS), and a surfactant. PBS, the aqueous medium mentioned later, etc. can be mention | raise | lifted. Examples of the surfactant include nonionic surfactants such as Tween 20 and the like. In measurement method 1 or 2, when the first antibody is immobilized on an insoluble carrier, a step of washing the insoluble carrier may be inserted between step (a) and step (b). it can. In measurement method 2, when the first antibody is immobilized on an insoluble carrier, it is preferable to have a step of washing the insoluble carrier between step (b) and step (c).

測定方法3において、測定対象物に結合する抗体が不溶性担体に固定化されていない場合は、(c)の工程で標識化競合物質に結合せず、該抗体に結合する結合性物質を固定化した不溶性担体を添加して、免疫複合体を不溶性担体に結合させた後、反応溶液を除去し、さらに不溶性担体を洗浄することにより、免疫複合体と、免疫複合体に含まれない標識化競合物質とを分離することができる。また、標識化競合物質に結合せず、該抗体に結合する結合性物質を固定化した不溶性担体の存在下で、(a)の工程の免疫複合体を生成させる反応を行い、免疫複合体の生成と免疫複合体の不溶性担体への固定化を同時に行った後、反応溶液を除去し、さらに不溶性担体を洗浄することにより、免疫複合体と、免疫複合体に含まれない標識化競合物質を分離することができる。標識化競合物質に結合せず、該抗体に結合する結合性物質としては、例えば、該抗体の定常領域と結合する抗体等があげられる。また測定対象物がタンパク質でない場合は、(c)の工程で、硫酸アンモニウム、ポリエチレングリコール等のタンパク質沈殿剤を添加して、免疫複合体のみを沈殿させた後、遠心分離することにより、免疫複合体と、免疫複合体に含まれない標識化競合物質を分離することができる。   In measurement method 3, when the antibody that binds to the measurement target is not immobilized on an insoluble carrier, the binding substance that binds to the antibody is immobilized without binding to the labeled competitor in step (c). The insoluble carrier is added to bind the immune complex to the insoluble carrier, and then the reaction solution is removed, and the insoluble carrier is washed, so that the immune complex and the labeled competition not included in the immune complex can be obtained. The substance can be separated. In addition, in the presence of an insoluble carrier immobilized with a binding substance that binds to the antibody without binding to the labeled competitor, a reaction for generating an immune complex in the step (a) is performed, After simultaneously generating and immobilizing the immune complex on an insoluble carrier, the reaction solution is removed, and the insoluble carrier is washed to remove the immune complex and the labeled competitor that is not included in the immune complex. Can be separated. Examples of the binding substance that does not bind to the labeled competitor but binds to the antibody include an antibody that binds to the constant region of the antibody. If the measurement object is not a protein, a protein precipitating agent such as ammonium sulfate or polyethylene glycol is added in the step (c) to precipitate only the immune complex, and then centrifuged to obtain the immune complex. And labeled competitors not contained in the immune complex can be separated.

測定方法1または2の方法において、第1の抗体が不溶性担体に固定化されていない場合は、B/F分離の工程において、標識化抗体に結合せず、第1の抗体に結合する結合性物質を固定化した不溶性担体を添加するか、あるいは免疫複合体を生成させる工程を、標識化抗体に結合せず、第1の抗体に結合する結合性物質を固定化した不溶性担体の存在下で行い、それぞれ反応溶液を除去した後、不溶性担体を洗浄することにより、標識化抗体と免疫複合体に含まれない標識化抗体とを分離することができる。標識化抗体に結合せず、第1の抗体に結合する結合性物質としては、例えば、第1の抗体と標識化抗体の作製に用いた動物種が異なる場合には、第1の抗体の作製に用いた動物種の免疫グロブリンに対する抗体等があげられ、第1の抗体が定常領域を有する抗体で、標識化抗体がFabやF(ab’)2、Fab’等の定常領域を有しない抗体フラグメントである場合であれば、第1の抗体の定常領域に特異的に結合する抗体等があげられる。 In the method of measurement method 1 or 2, when the first antibody is not immobilized on an insoluble carrier, the binding ability that binds to the first antibody is not bound to the labeled antibody in the B / F separation step. The step of adding an insoluble carrier on which a substance is immobilized or generating an immune complex is performed in the presence of an insoluble carrier on which a binding substance that binds to the first antibody is immobilized without binding to the labeled antibody. After removing each reaction solution and washing the insoluble carrier, the labeled antibody and the labeled antibody not contained in the immune complex can be separated. As the binding substance that does not bind to the labeled antibody but binds to the first antibody, for example, when the animal species used for the production of the labeled antibody are different from those of the first antibody, the production of the first antibody Examples include antibodies against immunoglobulins of animal species used in the above, wherein the first antibody is an antibody having a constant region, and the labeled antibody is an antibody having no constant region such as Fab, F (ab ′) 2 , Fab ′ In the case of a fragment, an antibody that specifically binds to the constant region of the first antibody can be used.

測定方法4〜6の方法において、競合物質が不溶性担体に固定化されていない場合は、測定対象物と競合物質が異なる構造を有する場合であれば、測定対象物に結合せず、競合物質に結合する結合性物質を固定化した不溶性担体を反応液中に添加するか、あるいは免疫複合体を生成させる工程を、測定対象物に結合せず、競合物質に結合する結合性物質を固定化した不溶性担体の存在下で行い、それぞれ反応溶液を除去した後、不溶性担体を洗浄することにより、競合物質を含有する免疫複合体(競合物質と標識化抗体とからなる免疫複合体、競合物質と第1の抗体とからなる免疫複合体、あるいは、競合物質、第1の抗体および標識化抗体からなる免疫複合体)のみを分離することができる。測定対象物に結合せず、競合物質に結合する結合性物質としては、例えば、測定対象物には存在せず、競合物質だけが有する部分構造と結合する抗体等があげられる。   In the methods of measurement methods 4 to 6, when the competitive substance is not immobilized on the insoluble carrier, if the measurement target and the competitive substance have different structures, they do not bind to the measurement target and An insoluble carrier in which a binding substance to be bound is immobilized is added to the reaction solution, or the step of generating an immune complex is not bound to the measurement target, and the binding substance that binds to the competitor is immobilized. The reaction is carried out in the presence of an insoluble carrier, the reaction solution is removed, and the insoluble carrier is washed. Thus, an immune complex containing a competitor (an immune complex composed of a competitor and a labeled antibody, a competitor and It is possible to separate only the immune complex consisting of one antibody or the immune complex consisting of a competitor, the first antibody and a labeled antibody). Examples of the binding substance that does not bind to the measurement target but binds to the competitive substance include an antibody that does not exist in the measurement target and binds to a partial structure that only the competitive substance has.

これらの測定方法において、それぞれ(a)の工程を、(3)に記載した細胞溶解物の共存下で行うことにより、ヘモグロビンの影響を抑制することができ、より正確な測定を行うことができる。   In these measurement methods, by performing the step (a) in the presence of the cell lysate described in (3), the influence of hemoglobin can be suppressed, and more accurate measurement can be performed. .

(7)不溶性担体および、抗体または競合物質の不溶性担体への固定化
抗体または競合物質を固定化するための不溶性担体としては、抗体または競合物質を安定に保持できるものであればいかなるものも包含される。不溶性担体の好ましい素材としてはポリスチレン、ポリカーボネート、ポリビニルトルエン、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリ塩化ビニル、ナイロン、ポリメタクリレート、ゼラチン、アガロース、セルロース、ポリエチレンテレフタレート等の高分子素材、ガラス、セラミックス、磁性粒子や金属等があげられる。不溶性担体の好ましい形状としてはチューブ、ビーズ、プレート、ラテックス等の微粒子、スティック等があげられる。例えば、1枚に96ウェルを有するポリスチレン製のマイクロタイタープレート等が好ましい。
(7) Immobilization of insoluble carrier and antibody or competitive substance to insoluble carrier Insoluble carrier for immobilizing antibody or competitive substance includes any substance that can stably hold antibody or competitive substance. Is done. Preferred materials for the insoluble carrier include polystyrene, polycarbonate, polyvinyltoluene, polypropylene, polyethylene, polyvinyl chloride, nylon, polymethacrylate, gelatin, agarose, cellulose, polyethylene terephthalate, and other polymer materials, glass, ceramics, magnetic particles, metals, etc. Can be given. Preferable shapes of the insoluble carrier include tubes, beads, plates, fine particles such as latex, sticks and the like. For example, a polystyrene microtiter plate having 96 wells per sheet is preferable.

抗体または競合物質の不溶性担体への固定化方法としては、物理学的結合を利用した方法と化学的結合を利用した方法またはこれらの併用等、公知の方法が用いられる。物理学的結合としては、例えば静電的結合、水素結合、疎水結合等があげられる。化学的結合としては、例えば共有結合、配位結合等があげられる。例えば、ポリスチレン製免疫測定用マイクロタープレートを不溶性担体として使用する場合には、プレート内のウェルに抗体または競合物質の溶液を添加して、1時間から1日間、4℃〜30℃でインキュベートすることにより、物理吸着させ固定化する方法をあげることができる。   As a method for immobilizing an antibody or a competitive substance on an insoluble carrier, a known method such as a method using physical binding, a method using chemical binding, or a combination thereof is used. Examples of physical bonds include electrostatic bonds, hydrogen bonds, and hydrophobic bonds. Examples of the chemical bond include a covalent bond and a coordination bond. For example, when a polystyrene microterplate for immunoassay is used as an insoluble carrier, an antibody or competitor solution is added to the wells in the plate and incubated at 4 ° C. to 30 ° C. for 1 hour to 1 day. Thus, a method of physical adsorption and immobilization can be mentioned.

抗体または競合物質は、直接、不溶性担体に固定化してもよいし、間接的に不溶性担体に固定化してもよい。間接的な固定化方法としては、例えばアビジンを固定化した不溶性担体に、ビオチン化した抗体または競合物質を添加し、ビオチンとアビジンとの特異的結合を介して、抗体または競合物質を不溶性担体に固定化する方法があげられる。また、不溶性担体に抗体に特異的に結合する抗体または競合物質に特異的に結合する抗体を固定化し、この抗体を介して抗体または競合物質を不溶性担体に固定化してもよい。あるいは、抗体または競合物質は、リンカーを介した共有結合により不溶性担体に固定化してもよい。リンカーとしては、例えば、抗体または測定対象物の官能基と不溶性担体の側鎖の官能基の両者と共有結合できる分子であればどのようなものでもよい。好ましい態様は、例えば、抗体または測定対象物が有する官能基と反応することができる第1の反応活性基と、不溶性担体の側鎖の官能基と反応することができる第2の反応活性基を同時に持つ分子であり、第1の反応活性基と第2の反応活性基が異なる基であることが好ましい。抗体または競合物質の官能基および不溶性担体がその表面に保持している官能基としては例えば、カルボキシ基やアミノ基、グリシジル基、スルフヒドリル基、水酸基、アミド基、イミノ基、N−ヒドロキシサクシニル基、マレイミド基等があげられる。リンカーにおける活性な反応性基としては、例えば、アリルアジド、カルボジイミド、ヒドラジド、アルデヒド、ヒドロキシメチルホスフィン、イミドエステル、イソシアネート、マレイミド、N−ヒドロキシスクシンイミド(NHS)エステル、ペンタフルオロフェニル(PFP)エステル、ソラレン、ピリジルジスルフィド、ビニルスルフォン等の基があげられる。   The antibody or competitor may be directly immobilized on an insoluble carrier or indirectly immobilized on an insoluble carrier. As an indirect immobilization method, for example, a biotinylated antibody or competitor is added to an insoluble carrier on which avidin is immobilized, and the antibody or competitor is made insoluble on the insoluble carrier through specific binding between biotin and avidin. A method of immobilization is mentioned. Alternatively, an antibody that specifically binds to an antibody or an antibody that specifically binds to a competitor may be immobilized on an insoluble carrier, and the antibody or competitor may be immobilized to the insoluble carrier via this antibody. Alternatively, the antibody or competitor may be immobilized on an insoluble carrier by covalent bonding via a linker. The linker may be any molecule that can be covalently bonded to both the functional group of the antibody or the measurement target and the functional group of the side chain of the insoluble carrier. A preferred embodiment includes, for example, a first reactive group capable of reacting with a functional group possessed by an antibody or a measurement object, and a second reactive group capable of reacting with a functional group on the side chain of the insoluble carrier. It is a molecule having at the same time, and it is preferable that the first reaction active group and the second reaction active group are different groups. Examples of the functional group of the antibody or competitor and the functional group held on the surface of the insoluble carrier include a carboxy group, amino group, glycidyl group, sulfhydryl group, hydroxyl group, amide group, imino group, N-hydroxysuccinyl group, And maleimide groups. Examples of the active reactive group in the linker include allyl azide, carbodiimide, hydrazide, aldehyde, hydroxymethylphosphine, imide ester, isocyanate, maleimide, N-hydroxysuccinimide (NHS) ester, pentafluorophenyl (PFP) ester, psoralen, And groups such as pyridyl disulfide and vinyl sulfone.

(8)抗体または測定対象物の標識
抗体または測定対象物を標識する標識物質としては酵素、蛍光物質、発光物質、放射性同位元素、ビオチン、ジゴキシゲニン、タグ配列を含むポリペプチド等があげられる。
(8) Labeling of antibody or measurement object Examples of the labeling substance for labeling the antibody or the measurement object include enzymes, fluorescent substances, luminescent substances, radioisotopes, biotin, digoxigenin, polypeptides containing tag sequences, and the like.

酵素としては、例えば、アルカリフォスファターゼ、ペルオキシダーゼ、ガラクトシダーゼ、グルクロニダーゼ、ルシフェラーゼ等があげられる。
蛍光物質としては、例えば、FITC(フルオレッセイン イソチオシアナート)、RITC(ローダミンB−イソチオシアナート)等があげられる。その他の蛍光物質として、例えばquantum dot(Science, 281, 2016-2018, 1998)、フィコエリスリン等のフィコビリ蛋白質、GFP(Green fluorescent Protein)、RFP(Red fluorescent Protein)、YFP(Yellow fluorescent Protein)、BFP(Blue fluorescent Protein)等の蛍光を発する蛋白質があげられる。
Examples of the enzyme include alkaline phosphatase, peroxidase, galactosidase, glucuronidase, luciferase and the like.
Examples of the fluorescent substance include FITC (fluorescein isothiocyanate), RITC (rhodamine B-isothiocyanate) and the like. As other fluorescent substances, for example, quantum dot (Science, 281 , 2016-2018, 1998), phycobiliproteins such as phycoerythrin, GFP (Green fluorescent Protein), RFP (Red fluorescent Protein), YFP (Yellow fluorescent Protein), Examples of the fluorescent protein include BFP (Blue fluorescent Protein).

発光物質としては、例えば、アクリジニウムおよびその誘導体、ルテニウム錯体化合物、ロフィン等があげられる。またルテニウム錯体化合物としては、電子供与体と共に電気化学的に発光する、Clin. Chem. 37, 9, 1534-1539, 1991に示されたものが好ましい。
放射性同位元素としては、例えば、H、14C、35S、32P、125I、131I等があげられる。
Examples of the luminescent substance include acridinium and its derivatives, ruthenium complex compounds, and lophine. Further, as the ruthenium complex compound, those shown in Clin. Chem. 37 , 9, 1534-1539, 1991 that emit light electrochemically together with an electron donor are preferable.
Examples of the radioisotope include 3 H, 14 C, 35 S, 32 P, 125 I, 131 I, and the like.

タグ配列を含むポリペプチドとしては、FLAGペプチド(FLAGタグ、Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Asp Lys)、ポリヒスチジン(Hisタグ、His His His His His His)、mycエピトープペプチド(mycタグ、Glu Gln Lys Leu Ile Ser Glu Glu Asp Leu)、ヘマグルチニンエピトープペプチド(HAタグ、Tyr Pro Tyr Asp Val Pro Asp Tyr Ala)等があげられる。   Examples of the polypeptide containing the tag sequence include FLAG peptide (FLAG tag, Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Asp Asp Lys), polyhistidine (His tag, His His His His His), myc epitope peptide (myc tag, Glu Gln Lys Leu). Ile Ser Glu Glu Asp Leu), hemagglutinin epitope peptide (HA tag, Tyr Pro Tyr Asp Val Pro Asp Tyr Ala) and the like.

抗体または測定対象物の標識化は、抗体または測定対象物と標識物質それぞれが有するの官能基の間で、リンカーを介してまたは介さず共有結合を生じる反応によって行うことができる。官能基としては、カルボキシ基やアミノ基、グリシジル基、スルフヒドリル基、水酸基、アミド基、イミノ基、ヒドロキシサクシニルエステル基、マレイミド基、イソチオシアナート基等があげられる。この官能基同士の間で縮合反応を行わせることが可能である。   The labeling of the antibody or the measurement target can be performed by a reaction that causes a covalent bond between the functional group of the antibody or the measurement target and the labeling substance through or without a linker. Examples of the functional group include a carboxy group, amino group, glycidyl group, sulfhydryl group, hydroxyl group, amide group, imino group, hydroxysuccinyl ester group, maleimide group, and isothiocyanate group. It is possible to cause a condensation reaction between these functional groups.

リンカーを介さない結合方法としては例えば、EDC等のカルボジイミド化合物を用いる方法等があげられる。この場合、NHSまたはその誘導体等の活性エステルを使用することも可能である。イソチオシアナート基とアミノ基の間の縮合反応は、他の試薬を必要とせず、中性〜弱アルカリ性の条件で混合するだけで進行するため、好ましい。
リンカーとしては、例えば、標識物質と抗体とをそれぞれの官能基を介して結合させうる分子であればどのようなものでもよい。好ましい態様は、例えば、抗体のアミノ酸残基と反応することができる第1の官能基と、標識物質の側鎖の官能基と反応することができる第2の官能基とを同一分子内に有する分子であり、第1の官能基と第2の官能基とが異なる基であることが好ましい。リンカーの官能基としては、例えば前述の官能基があげられる。
Examples of the bonding method without using a linker include a method using a carbodiimide compound such as EDC. In this case, it is also possible to use an active ester such as NHS or a derivative thereof. The condensation reaction between the isothiocyanate group and the amino group is preferable because it does not require other reagents and proceeds only by mixing under neutral to weakly alkaline conditions.
The linker may be any molecule as long as it can bind a labeling substance and an antibody via respective functional groups. A preferable embodiment has, for example, a first functional group capable of reacting with an amino acid residue of an antibody and a second functional group capable of reacting with a functional group of a side chain of a labeling substance in the same molecule. It is a molecule, and the first functional group and the second functional group are preferably different groups. Examples of the functional group of the linker include the functional groups described above.

放射性同位元素を化学的に結合させる方法としては、文献(Antibody Immunoconj. Radiopharm., 3, 60, 1990)記載の方法があげられる。 As a method for chemically combining radioisotopes, there is a method described in literature (Antibody Immunoconj. Radiopharm., 3 , 60, 1990).

標識物質が酵素、アビジン、蛍光を発する蛋白質、フィコビリ蛋白質、タグ配列を含むポリペプチド等のポリペプチドである場合には、公知の遺伝子組換え技術(Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 3rd Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2001)にしたがって、標識物質と抗体の融合蛋白質をコードするDNAを含む発現ベクターを作製し、発現ベクターを適当な宿主に導入して、宿主を培養することにより製造することができる。融合蛋白質をコードするDNAは、抗体および標識物質をそれぞれコードするDNAをPCR等でクローニングし、それぞれのDNAをリガーゼ反応で連結することにより得ることができる。   When the labeling substance is a polypeptide such as an enzyme, avidin, a fluorescent protein, a phycobiliprotein, or a polypeptide containing a tag sequence, a known genetic recombination technique (Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 3rd Edition, Cold Spring) According to Harbor Laboratory Press, 2001), an expression vector containing a DNA encoding a fusion protein of a labeling substance and an antibody can be produced, introduced into an appropriate host, and cultured by culturing the host. . The DNA encoding the fusion protein can be obtained by cloning the DNA encoding the antibody and the labeling substance by PCR or the like and ligating each DNA by a ligase reaction.

前述の(6)の測定方法7に記載のホモジニアス法に用いられる標識物質1と2としては、1つの測定対象物に結合して近接することにより相互作用を起こす標識物質があげられる。このような標識物質として、蛍光共鳴エネルギー移動(FRET:fluorescence resonance energy transfer)を起こす蛍光物質があげられる。FRETとは、第1の蛍光物質が励起光を受光することによって生じた蛍光エネルギーが、近接する第2の蛍光物質の蛍光エネルギーとして利用される現象であり、2種類の蛍光物質が1〜10nmまで近接することにより起こる。FRETを起こす蛍光物質の組み合わせとしては、一方の蛍光波長のスペクトルと、他方の励起波長のスペクトルとに重なりがある組合せがあげられる。蛍光物質としては、蛍光タンパク質、低分子有機蛍光色素、無機化合物等があげられる。FRETを起こす蛍光タンパク質の組み合わせとしては、例えばCFP[緑色蛍光タンパク質(GFP)の黄色変異体]とYFP[緑色蛍光タンパク質(GFP)のシアン色変異体]との組み合わせ等があげられる。低分子有機蛍光色素の組み合わせとしては、例えばCy3とCy5の組み合わせがあげられる。無機化合物としては例えばquantum dot(Science, 281,2016-2018, 1998)があげられる。 Examples of the labeling substances 1 and 2 used in the homogeneous method described in the measurement method 7 of (6) described above include labeling substances that interact with each other by binding to and approaching one measurement object. Examples of such a labeling substance include a fluorescent substance that causes fluorescence resonance energy transfer (FRET). FRET is a phenomenon in which the fluorescence energy generated when the first fluorescent material receives excitation light is used as the fluorescence energy of the adjacent second fluorescent material. Caused by close proximity. Examples of combinations of fluorescent substances that cause FRET include combinations in which there is an overlap between the spectrum of one fluorescence wavelength and the spectrum of the other excitation wavelength. Examples of the fluorescent substance include fluorescent proteins, low molecular organic fluorescent dyes, inorganic compounds, and the like. Examples of a combination of fluorescent proteins that cause FRET include a combination of CFP [yellow mutant of green fluorescent protein (GFP)] and YFP [cyan mutant of green fluorescent protein (GFP)]. Examples of the combination of the low-molecular organic fluorescent dyes include a combination of Cy3 and Cy5. Examples of the inorganic compound include quantum dot (Science, 281 , 2016-2018, 1998).

また、ホモジニアス法での該標識物質の組み合わせとして、バイオルミネッセンス共鳴エネルギー移動(BRET:bioluminescence resonance energy transfer)を起こす、化学発光を生じる酵素と蛍光物質との組み合わせもあげることができる。BRETを起こす酵素と蛍光物質との組み合わせとしては、酵素が基質を分解して生じる発光波長のスペクトルと、蛍光物質の励起波長のスペクトルとに重なりがある組合せがあげられる。例えば酵素としてウミシイタケルシフェラーゼ(Rluc)、基質として例えばディープブルーC[Deep Blue C、パッカードバイオサイエンス(Packard BioScience)社製]、蛍光物質としてGFPを用いる組合せ等があげられる。この場合、Rlucによる基質の分解によって395nmの波長の光が生じ、RlucにGFPが近接することにより、GFPがこの光のエネルギーを受けて発する510nmの波長の蛍光を検出することができる。   In addition, as a combination of the labeling substances in the homogeneous method, a combination of an enzyme that generates bioluminescence resonance energy transfer (BRET) and a chemiluminescence and a fluorescent substance can also be mentioned. Examples of the combination of the enzyme that causes BRET and the fluorescent substance include a combination in which the spectrum of the emission wavelength generated by decomposing the substrate by the enzyme and the spectrum of the excitation wavelength of the fluorescent substance overlap. For example, a combination using Renilla luciferase (Rluc) as an enzyme, Deep Blue C (Deep Blue C, manufactured by Packard BioScience) as a substrate, GFP as a fluorescent substance, and the like can be mentioned. In this case, light having a wavelength of 395 nm is generated by decomposition of the substrate by Rluc, and when GFP comes close to Rluc, it is possible to detect fluorescence having a wavelength of 510 nm emitted by GFP by receiving the energy of this light.

また、ホモジニアス法での該標識物質の組み合わせとして、標識物質1と標識物質2が近接して、ある配向性をもって結合したときに酵素活性を生じる物質の組み合わせがあげられる。例えば、標識物質の組み合わせとしては、標識物質1としてβ−ガラクトシダーゼのΔαサブユニット、標識物質2としてβ−ガラクトシダーゼのΔωサブユニットを用いる組合せ、標識物質1としてRlucのN末端側ドメイン、標識物質2としてRlucのC末端側ドメインを用いる組合せ等があげられる。   In addition, as a combination of the labeling substances in the homogeneous method, a combination of substances that cause enzyme activity when the labeling substance 1 and the labeling substance 2 are close to each other and bonded with a certain orientation can be mentioned. For example, a combination of labeling substances includes a combination using a Δα subunit of β-galactosidase as the labeling substance 1, a Δω subunit of β-galactosidase as the labeling substance 2, an N-terminal domain of Rluc as the labeling substance 1, and a labeling substance 2 And combinations using the C-terminal domain of Rluc.

(9)反応条件
抗原抗体反応は水性媒体中で行われることが好ましい。反応温度としては、例えば0〜50℃があげられ、4℃〜40℃が好ましい。反応時間としては、5分間〜20時間が好ましい。
(9) Reaction conditions The antigen-antibody reaction is preferably performed in an aqueous medium. As reaction temperature, 0-50 degreeC is mention | raise | lifted, for example, and 4-40 degreeC is preferable. The reaction time is preferably 5 minutes to 20 hours.

(10)標識の量の測定
免疫複合体の標識の量の測定方法は、標識物質に応じて適切なものを選ぶことができる。すなわち、標識物質が発色物質すなわちある波長の光を吸収する物質の場合には、分光光度計やマルチウェルプレートリーダー等を用いることができる。標識物質が蛍光物質の場合には、蛍光光度計や蛍光マルチウェルプレートリーダー等を用いることができる。標識物質が発光物質の場合には、発光光度計や発光マルチウェルプレートリーダー等を用いることができる。標識物質が放射性同位元素である場合、放射性同位元素の量は、放射活性をシンチレーションカウンター、γ−ウェルカウンター等により測定することができる。
(10) Measurement of the amount of label As a method for measuring the amount of label of the immune complex, an appropriate one can be selected according to the labeling substance. That is, when the labeling substance is a coloring substance, that is, a substance that absorbs light of a certain wavelength, a spectrophotometer, a multiwell plate reader, or the like can be used. When the labeling substance is a fluorescent substance, a fluorometer, a fluorescent multiwell plate reader, or the like can be used. When the labeling substance is a luminescent substance, a luminescence photometer, a luminescent multiwell plate reader, or the like can be used. When the labeling substance is a radioisotope, the amount of radioisotope can be measured by measuring the radioactivity with a scintillation counter, a γ-well counter, or the like.

標識が酵素である場合、酵素の基質を当該酵素と反応させ、生成した物質を測定することにより、標識量を測定することができる。
酵素がペルオキシダーゼである場合には、例えば吸光度法、蛍光法等によりペルオキシダーゼ量を測定することができる。吸光度法によりペルオキシダーゼ量を測定する方法としては、例えばペルオキシダーゼとその基質である過酸化水素および酸化発色型色原体の組み合わせとを反応させ、反応液の吸光度を分光光度計やマルチウェルプレートリーダー等で測定する方法等があげられる。酸化発色型色原体としては、例えばロイコ型色原体、酸化カップリング発色型色原体等があげられる。
When the label is an enzyme, the amount of the label can be measured by reacting the enzyme substrate with the enzyme and measuring the produced substance.
When the enzyme is peroxidase, the amount of peroxidase can be measured by, for example, an absorbance method or a fluorescence method. As a method for measuring the amount of peroxidase by the absorbance method, for example, a peroxidase is reacted with a combination of its substrate hydrogen peroxide and an oxidative coloring chromogen, and the absorbance of the reaction solution is measured by a spectrophotometer, a multiwell plate reader, etc. The measurement method etc. are mention | raise | lifted. Examples of the oxidative coloring chromogen include a leuco chromogen and an oxidative coupling coloring chromogen.

ロイコ型色原体は、過酸化水素およびペルオキシダーゼ等の過酸化活性物質の存在下、単独で色素へ変換される物質である。具体的には、テトラメチルベンジジン、o−フェニレンジアミン、10−N−カルボキシメチルカルバモイル−3,7−ビス(ジメチルアミノ)−10H−フェノチアジン(CCAP)、10−N−メチルカルバモイル−3,7−ビス(ジメチルアミノ)−10H−フェノチアジン(MCDP)、N−(カルボキシメチルアミノカルボニル)−4,4’−ビス(ジメチルアミノ)ジフェニルアミン ナトリウム塩(DA−64)、4,4’−ビス(ジメチルアミノ)ジフェニルアミン、ビス〔3−ビス(4−クロロフェニル)メチル−4−ジメチルアミノフェニル〕アミン(BCMA)等があげられる。   A leuco chromogen is a substance that is converted into a pigment by itself in the presence of a peroxide active substance such as hydrogen peroxide and peroxidase. Specifically, tetramethylbenzidine, o-phenylenediamine, 10-N-carboxymethylcarbamoyl-3,7-bis (dimethylamino) -10H-phenothiazine (CCAP), 10-N-methylcarbamoyl-3,7- Bis (dimethylamino) -10H-phenothiazine (MCDP), N- (carboxymethylaminocarbonyl) -4,4′-bis (dimethylamino) diphenylamine sodium salt (DA-64), 4,4′-bis (dimethylamino) ) Diphenylamine, bis [3-bis (4-chlorophenyl) methyl-4-dimethylaminophenyl] amine (BCMA), and the like.

酸化カップリング発色型色原体は、過酸化水素およびペルオキシダーゼ等の過酸化活性物質の存在下、2つの化合物が酸化的カップリングして色素を生成する物質である。2つの化合物の組み合わせとしては、カプラーとアニリン類(トリンダー試薬)との組み合わせ、カプラーとフェノール類との組み合わせ等があげられる。カプラーとしては、例えば4−アミノアンチピリン(4−AA)、3−メチル−2−ベンゾチアゾリノンヒドラジン等があげられる。アニリン類としては、N−(3−スルホプロピル)アニリン、N−エチル−N−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−3−メチルアニリン(TOOS)、N−エチル−N−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−3,5−ジメチルアニリン(MAOS)、N−エチル−N−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−3,5−ジメトキシアニリン(DAOS)、N−エチル−N−(3−スルホプロピル)−3−メチルアニリン(TOPS)、N−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−3,5−ジメトキシアニリン(HDAOS)、N,N−ジメチル−3−メチルアニリン、N,N−ジ(3−スルホプロピル)−3,5−ジメトキシアニリン、N−エチル−N−(3−スルホプロピル)−3−メトキシアニリン、N−エチル−N−(3−スルホプロピル)アニリン、N−エチル−N−(3−スルホプロピル)−3,5−ジメトキシアニリン、N−(3−スルホプロピル)−3,5−ジメトキシアニリン、N−エチル−N−(3−スルホプロピル)−3,5−ジメチルアニリン、N−エチル−N−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−3−メトキシアニリン、N−エチル−N−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)アニリン、N−エチル−N−(3−メチルフェニル)−N’−サクシニルエチレンジアミン(EMSE)、N−エチル−N−(3−メチルフェニル)−N’−アセチルエチレンジアミン、N−エチル−N−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−4−フルオロ−3,5−ジメトキシアニリン(F−DAOS)等があげられる。フェノール類としては、フェノール、4−クロロフェノール、3−メチルフェノール、3−ヒドロキシ−2,4,6−トリヨード安息香酸(HTIB)等があげられる。   The oxidative coupling chromogen is a substance that forms a dye by oxidative coupling of two compounds in the presence of a peroxide active substance such as hydrogen peroxide and peroxidase. Examples of the combination of the two compounds include a combination of a coupler and an aniline (Trinder reagent), a combination of a coupler and a phenol. Examples of the coupler include 4-aminoantipyrine (4-AA) and 3-methyl-2-benzothiazolinone hydrazine. Examples of anilines include N- (3-sulfopropyl) aniline, N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -3-methylaniline (TOOS), N-ethyl-N- (2-hydroxy). -3-sulfopropyl) -3,5-dimethylaniline (MAOS), N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -3,5-dimethoxyaniline (DAOS), N-ethyl-N- (3-sulfopropyl) -3-methylaniline (TOPS), N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -3,5-dimethoxyaniline (HDAOS), N, N-dimethyl-3-methylaniline, N , N-di (3-sulfopropyl) -3,5-dimethoxyaniline, N-ethyl-N- (3-sulfopropyl) -3-methoxyaniline, N-ethyl- -(3-sulfopropyl) aniline, N-ethyl-N- (3-sulfopropyl) -3,5-dimethoxyaniline, N- (3-sulfopropyl) -3,5-dimethoxyaniline, N-ethyl-N -(3-sulfopropyl) -3,5-dimethylaniline, N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -3-methoxyaniline, N-ethyl-N- (2-hydroxy-3- Sulfopropyl) aniline, N-ethyl-N- (3-methylphenyl) -N′-succinylethylenediamine (EMSE), N-ethyl-N- (3-methylphenyl) -N′-acetylethylenediamine, N-ethyl- N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -4-fluoro-3,5-dimethoxyaniline (F-DAOS) and the like. Examples of phenols include phenol, 4-chlorophenol, 3-methylphenol, 3-hydroxy-2,4,6-triiodobenzoic acid (HTIB) and the like.

蛍光法によりペルオキシダーゼ量を測定する方法としては、例えばペルオキシダーゼとその基質である過酸化水素および蛍光物質の組み合わせとを反応させ、蛍光光度計や蛍光マルチウェルプレートリーダー等で生成した蛍光の強度を測定する方法等があげられる。当該蛍光物質としては、例えば4−ヒドロキシフェニル酢酸、3−(4−ヒドロキシフェニル)プロピオン酸、クマリン等があげられる。   As a method of measuring the amount of peroxidase by the fluorescence method, for example, the peroxidase is reacted with a combination of hydrogen peroxide and a fluorescent substance as a substrate thereof, and the intensity of fluorescence generated by a fluorometer, a fluorescent multiwell plate reader, or the like is measured. And the like. Examples of the fluorescent substance include 4-hydroxyphenylacetic acid, 3- (4-hydroxyphenyl) propionic acid, and coumarin.

発光法によるペルオキシダーゼ量を測定する方法としては、例えばペルオキシダーゼとその基質である過酸化水素および発光物質の組み合わせとを反応させ、発光強度計や発光マルチウェルプレートリーダー等で生成した発光の強度を測定する方法等があげられる。当該発光物質としては、例えばルミノール化合物、ルシゲニン化合物等があげられる。
酵素がアルカリフォスファターゼである場合には、例えば発光法等によりアルカリフォスファターゼ量を測定することができる。発光法によりアルカリフォスファターゼ量を測定する方法としては、例えばアルカリフォスファターゼとその基質とを反応させ、生成した発光の発光強度を発光強度計や発光マルチウェルプレートリーダー等で測定する方法等があげられる。アルカリフォスファターゼの基質としては、例えば3−(2'−スピロアダマンタン)−4−メトキシ−4−(3'−ホスホリルオキシ)フェニル−1,2−ジオキセタン・二ナトリウム塩(AMPPD)、2−クロロ−5−{4−メトキシスピロ[1,2−ジオキセタン−3,2'−(5'−クロロ)トリシクロ[3.3.1.13,7]カン]−4−イル}フェニルホスフェート・二ナトリウム塩(CDP−StarTM)、3−{4−メトキシスピロ[1,2−ジオキセタン−3,2'−(5'−クロロ)トリシクロ[3.3.1.13,7]デカン]−4−イル}フェニルホスフェート・二ナトリウム塩(CSPDTM)、[10−メチル−9(10H)−アクリジニルイデン]フェノキシメチルリン酸・二ナトリウム塩(LumigenTM APS−5)等があげられる。
As a method of measuring the amount of peroxidase by the luminescence method, for example, the peroxidase is reacted with a combination of hydrogen peroxide and a luminescent substance as a substrate, and the intensity of luminescence generated by a luminescence intensity meter or a luminescence multiwell plate reader is measured. And the like. Examples of the luminescent substance include a luminol compound and a lucigenin compound.
When the enzyme is alkaline phosphatase, the amount of alkaline phosphatase can be measured by, for example, a luminescence method. Examples of the method for measuring the amount of alkaline phosphatase by the luminescence method include a method in which alkaline phosphatase and its substrate are reacted and the luminescence intensity of the generated luminescence is measured with a luminescence intensity meter, a luminescence multiwell plate reader, or the like. Examples of alkaline phosphatase substrates include 3- (2′-spiroadamantane) -4-methoxy-4- (3′-phosphoryloxy) phenyl-1,2-dioxetane disodium salt (AMPPD), 2-chloro- 5- {4-methoxyspiro [1,2-dioxetane-3,2 ′-(5′-chloro) tricyclo [3.3.1.1 3,7 ] can] -4-yl} phenyl phosphate disodium Salt (CDP-Star ), 3- {4-methoxyspiro [1,2-dioxetane-3,2 ′-(5′-chloro) tricyclo [3.3.1.1 3,7 ] decane] -4 - yl} phenyl phosphate disodium salt (CSPD TM), [10- methyl -9 (10H) - acridinyl Louis den] phenoxymethyl phosphate disodium salt (Lumig n TM APS-5), and the like.

酵素がβ−D−ガラクトシダーゼである場合には、例えば吸光度法(比色法)、発光法または蛍光法等によりβ−D−ガラクトシダーゼ量を測定することができる。吸光度法(比色法)によりβ−D−ガラクトシダーゼ量を測定する方法としては、例えばo−ニトロフェル−β−D−ガラクトピラノシド等があげられる。発光法によりβ−D−ガラクトシダーゼ量を測定する方法としては、例えばβ−D−ガラクトシダーゼとその基質とを反応させ、反応液の発光度を発光強度計や発光マルチウェルプレートリーダー等で測定する方法等があげられる。β−D−ガラクトシダーゼの基質としては、例えばガラクトン−プラス[Galacton-Plus、アプライドバイオシステムズ(Applied Biosystems)社製]またはその類似化合物等があげられる。蛍光法によりβ−D−ガラクトシダーゼ量を測定する方法としては、例えばβ−D−ガラクトシダーゼとその基質とを反応させ、反応液の蛍光度を蛍光光度計や蛍光マルチウェルプレートリーダー等で測定する方法等があげられる。β−D−ガラクトシダーゼの基質としては、例えば4−メチルウンベリフェリル−β−D−ガラクトピラノシド等があげられる。   When the enzyme is β-D-galactosidase, the amount of β-D-galactosidase can be measured by, for example, an absorbance method (colorimetric method), a luminescence method, or a fluorescence method. Examples of a method for measuring the amount of β-D-galactosidase by an absorbance method (colorimetric method) include o-nitrofel-β-D-galactopyranoside. As a method of measuring the amount of β-D-galactosidase by a luminescence method, for example, a method of reacting β-D-galactosidase and its substrate and measuring the luminescence intensity of the reaction solution with a luminescence intensity meter, a luminescence multiwell plate reader or the like Etc. Examples of the substrate of β-D-galactosidase include galacton-plus (Galacton-Plus, manufactured by Applied Biosystems) or a similar compound thereof. As a method of measuring the amount of β-D-galactosidase by a fluorescence method, for example, a method of reacting β-D-galactosidase and its substrate and measuring the fluorescence of the reaction solution with a fluorometer, a fluorescent multiwell plate reader or the like Etc. Examples of the substrate for β-D-galactosidase include 4-methylumbelliferyl-β-D-galactopyranoside.

酵素がルシフェラーゼである場合には、例えば発光法等によりルシフェラーゼ量を測定することができる。発光法によりルシフェラーゼ量を測定する方法としては、例えばルシフェラーゼとその基質とを反応させ、反応液の発光度を発光強度計や発光マルチウェルプレートリーダー等で測定する方法等があげられる。ルシフェラーゼの基質としては、例えばルシフェリン、セレンテラジン等があげられる。   When the enzyme is luciferase, the amount of luciferase can be measured by, for example, a luminescence method. Examples of the method for measuring the amount of luciferase by the luminescence method include a method of reacting luciferase with its substrate and measuring the luminescence intensity of the reaction solution with a luminescence intensity meter, a luminescence multiwell plate reader, or the like. Examples of luciferase substrates include luciferin and coelenterazine.

標識物質が蛍光物質、発光物質、放射性同位元素および酵素以外の場合は、当該標識物質に特異的に結合する物質を蛍光物質、発光物質、放射性同位元素、酵素等で標識した標識体と、免疫複合体中の標識化抗体または標識化競合物質を構成している当該標識物質とを結合させ、当該標識物質に特異的に結合する物質を標識している蛍光物質、発光物質、放射性同位元素または酵素を用いて、上記の記載と同様にして検出を行うことができる。標識物質に特異的に結合する物質としては、標識物質を特異的に結合する抗体、また標識物質がビオチンの場合は、アビジンやストレプトアビジン等があげられる。また、標識物質に特異的に結合する物質(標識物質に特異的に結合する抗体、アビジンまたはストレプトアビジン等)は非標識のものを用いて、免疫複合体中の標識物質と結合させた後、標識物質に特異的に結合する物質に結合する抗体、例えば、抗体の定常領域に特異的に結合する抗体またはアビジンまたはストレプトアビジンに特異的に結合する抗体を蛍光物質、発光物質、放射性同位元素または酵素で標識したものを結合させ、これらの抗体を標識している蛍光物質、発光物質、放射性同位元素または酵素を用いて、上記の記載と同様にして検出を行うこともできる。   When the labeling substance is other than a fluorescent substance, luminescent substance, radioisotope and enzyme, a labeling substance labeled with a fluorescent substance, a luminescent substance, a radioisotope, an enzyme, etc., which is specifically bound to the labeling substance, A fluorescent substance, a luminescent substance, a radioisotope or a labeling substance that specifically binds to the labeling substance by binding to the labeling antibody or the labeling competing substance in the complex Detection can be performed using an enzyme in the same manner as described above. Examples of the substance that specifically binds to the labeling substance include an antibody that specifically binds the labeling substance, and when the labeling substance is biotin, avidin, streptavidin, and the like can be given. In addition, a substance that specifically binds to the labeling substance (an antibody that specifically binds to the labeling substance, avidin or streptavidin, etc.) is used after being bound to the labeling substance in the immune complex using an unlabeled substance, An antibody that binds to a substance that specifically binds to a labeling substance, such as an antibody that specifically binds to a constant region of an antibody or an antibody that specifically binds to avidin or streptavidin, a fluorescent substance, a luminescent substance, a radioisotope or Detection can also be carried out in the same manner as described above using a fluorescent substance, a luminescent substance, a radioisotope or an enzyme labeled with these antibodies after binding those labeled with an enzyme.

これらの検出に用いる抗体、アビジンまたはストレプトアビジンや標識物質に特異的に結合する抗体、抗体の定常領域に特異的に結合する抗体、アビジンまたはストレプトアビジンに特異的に結合する抗体は、ポリクローナル抗体でもモノクローナル抗体でもよく、あるいはFab、ペプシン処理により得られるF(ab’)2、ペプシン処理−還元処理により得られるFab’等のFc部分を除去した抗体フラグメントでもよい。 Antibodies used for these detections, antibodies that specifically bind to avidin or streptavidin and labeling substances, antibodies that specifically bind to the constant region of antibodies, antibodies that specifically bind to avidin or streptavidin, and polyclonal antibodies It may be a monoclonal antibody, or an antibody fragment from which Fc portions such as Fab, F (ab ′) 2 obtained by pepsin treatment, and Fab ′ obtained by pepsin treatment-reduction treatment are removed.

(11)測定対象物の定量
測定対象物を定量するためには、標準物質、すなわち既知の濃度の測定対象物の溶液を用いる。好ましくは、既知濃度の測定対象物溶液を複数用いる。この既知濃度の測定対象物溶液を測定用試料として、実際の試料の測定と同じ方法により測定を行い、測定対象物濃度と測定値(標識由来の情報量)との間の関係を示す検量線を作成する。次いで、試料の測定により得られる測定値を先に作成した検量線に当てはめることにより、試料中の測定対象物の濃度を決定することができる。
(11) Quantification of measurement object In order to quantify the measurement object, a standard substance, that is, a solution of the measurement object having a known concentration is used. Preferably, a plurality of measurement object solutions having known concentrations are used. A calibration curve showing the relationship between the concentration of the measurement object and the measured value (the amount of information derived from the label), using the measurement object solution of this known concentration as the measurement sample, by the same method as the actual sample measurement. Create Next, the concentration of the measurement object in the sample can be determined by applying the measurement value obtained by the measurement of the sample to the calibration curve created previously.

(12)水性媒体およびその他の共存物
本発明の免疫測定方法において、測定対象物の抗原抗体反応を行うための水性媒体としては、例えば脱イオン水、蒸留水、緩衝液等があげられ、緩衝液が好ましい。緩衝液の調製に使用される緩衝剤としては、緩衝能を有するものならば特に限定されないが、pH1〜11の例えば乳酸緩衝剤、クエン酸緩衝剤、酢酸緩衝剤、コハク酸緩衝剤、フタル酸緩衝剤、リン酸緩衝剤、トリエタノールアミン緩衝剤、ジエタノールアミン緩衝剤、リジン緩衝剤、バルビツール緩衝剤、イミダゾール緩衝剤、リンゴ酸緩衝剤、シュウ酸緩衝剤、グリシン緩衝剤、ホウ酸緩衝剤、炭酸緩衝剤、グリシン緩衝剤、グッド緩衝剤等があげられる。
(12) Aqueous medium and other coexisting materials In the immunoassay method of the present invention, examples of the aqueous medium for performing the antigen-antibody reaction of the measurement object include deionized water, distilled water, and buffer solution. Liquid is preferred. The buffer used for preparing the buffer solution is not particularly limited as long as it has a buffering capacity. For example, a lactic acid buffer, a citrate buffer, an acetate buffer, a succinate buffer, and phthalic acid having a pH of 1 to 11 Buffer, phosphate buffer, triethanolamine buffer, diethanolamine buffer, lysine buffer, barbitur buffer, imidazole buffer, malate buffer, oxalate buffer, glycine buffer, borate buffer, Examples thereof include carbonate buffer, glycine buffer, and Good buffer.

グッド緩衝剤としては、例えば2−モルホリノエタンスルホン酸(MES)緩衝剤、ビス(2−ヒドロキシエチル)イミノトリス(ヒドロキシメチル)メタン(Bis−Tris)緩衝剤、トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン(Tris)緩衝剤、N−(2−アセトアミド)イミノ二酢酸(ADA)緩衝剤、ピペラジン−N,N’−ビス(2−エタンスルホン酸)(PIPES)緩衝剤、2−[N−(2−アセトアミド)アミノ]エタンスルホン酸(ACES)緩衝剤、3−モルホリノ−2−ヒドロキシプロパンスルホン酸(MOPSO)緩衝剤、2−[N,N−ビス(2−ヒドロキシエチル)アミノ]エタンスルホン酸(BES)緩衝剤、3−モルホリノプロパンスルホン酸(MOPS)緩衝剤、2−{N−[トリス(ヒドロキシメチル)メチル]アミノ}エタンスルホン酸(TES)緩衝剤、N−(2−ヒドロキシエチル)−N’−(2−スルホエチル)ピペラジン(HEPES)緩衝剤、3−[N,N−ビス(2−ヒドロキシエチル)アミノ]−2−ヒドロキシプロパンスルホン酸(DIPSO)緩衝剤、2−ヒドロキシ−3−{[N−トリス(ヒドロキシメチル)メチル]アミノ}プロパンスルホン酸(TAPSO)緩衝剤、ピペラジン−N,N’−ビス(2−ヒドロキシプロパン−3−スルホン酸)(POPSO)緩衝剤、N−(2−ヒドロキシエチル)−N’−(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)ピペラジン(HEPPSO)緩衝剤、N−(2−ヒドロキシエチル)−N’−(3−スルホプロピル)ピペラジン(EPPS)緩衝剤、トリシン[N−トリス(ヒドロキシメチル)メチルグリシン]緩衝剤、ビシン[N,N−ビス(2−ヒドロキシエチル)グリシン]緩衝剤、3−[N−トリス(ヒドロキシメチル)メチル]アミノプロパンスルホン酸(TAPS)緩衝剤、2−(N−シクロヘキシルアミノ)エタンスルホン酸(CHES)緩衝剤、3−(N−シクロヘキシルアミノ)−2−ヒドロキシプロパンスルホン酸(CAPSO)緩衝剤、3−(N−シクロヘキシルアミノ)プロパンスルホン酸(CAPS)緩衝剤等があげられる。   Examples of the good buffer include 2-morpholinoethanesulfonic acid (MES) buffer, bis (2-hydroxyethyl) iminotris (hydroxymethyl) methane (Bis-Tris) buffer, and tris (hydroxymethyl) aminomethane (Tris). Buffer, N- (2-acetamido) iminodiacetic acid (ADA) buffer, piperazine-N, N′-bis (2-ethanesulfonic acid) (PIPES) buffer, 2- [N- (2-acetamido) Amino] ethanesulfonic acid (ACES) buffer, 3-morpholino-2-hydroxypropanesulfonic acid (MOPSO) buffer, 2- [N, N-bis (2-hydroxyethyl) amino] ethanesulfonic acid (BES) buffer Agent, 3-morpholinopropanesulfonic acid (MOPS) buffer, 2- {N- [tris (hydroxymes L) Methyl] amino} ethanesulfonic acid (TES) buffer, N- (2-hydroxyethyl) -N ′-(2-sulfoethyl) piperazine (HEPES) buffer, 3- [N, N-bis (2- Hydroxyethyl) amino] -2-hydroxypropanesulfonic acid (DIPSO) buffer, 2-hydroxy-3-{[N-tris (hydroxymethyl) methyl] amino} propanesulfonic acid (TAPSO) buffer, piperazine-N, N′-bis (2-hydroxypropane-3-sulfonic acid) (POPSO) buffer, N- (2-hydroxyethyl) -N ′-(2-hydroxy-3-sulfopropyl) piperazine (HEPPSO) buffer, N- (2-hydroxyethyl) -N ′-(3-sulfopropyl) piperazine (EPPS) buffer, tricine [N-tris Hydroxymethyl) methylglycine] buffer, bicine [N, N-bis (2-hydroxyethyl) glycine] buffer, 3- [N-tris (hydroxymethyl) methyl] aminopropanesulfonic acid (TAPS) buffer, 2 -(N-cyclohexylamino) ethanesulfonic acid (CHES) buffer, 3- (N-cyclohexylamino) -2-hydroxypropanesulfonic acid (CAPSO) buffer, 3- (N-cyclohexylamino) propanesulfonic acid (CAPS) ) Buffering agent.

緩衝液の濃度は測定に適した濃度であれば特に制限はされないが、0.001〜2.0mol/Lが好ましく、0.005〜1.0mol/Lがより好ましく、0.01〜0.1mol/Lが特に好ましい。
本発明の免疫学的定量方法においては、測定対象物の抗原抗体反応に、金属イオン、塩類、糖類、界面活性剤、防腐剤、タンパク質、タンパク質安定化剤等を共存させることができる。
The concentration of the buffer solution is not particularly limited as long as it is suitable for measurement, but is preferably 0.001 to 2.0 mol / L, more preferably 0.005 to 1.0 mol / L, and 0.01 to 0.00. 1 mol / L is particularly preferable.
In the immunological quantification method of the present invention, metal ions, salts, saccharides, surfactants, preservatives, proteins, protein stabilizers and the like can coexist in the antigen-antibody reaction of the measurement object.

金属イオンとしては、例えばマグネシウムイオン、マンガンイオン、亜鉛イオン等があげられる。
塩類としては、例えば塩化ナトリウム、塩化カリウム等があげられる。
糖類としては、例えばマンニトール、ソルビトール等があげられる。
界面活性剤としては、例えば非イオン性界面活性剤、陽イオン性界面活性剤、陰イオン性界面活性剤、両性界面活性剤等があげられ、非イオン性界面活性剤が好ましい。非イオン性界面活性剤としては、例えばツイーン20、ノニデットP−40等があげられる。 防腐剤としては、例えばアジ化ナトリウム、抗生物質(ストレプトマイシン、ペニシリン、ゲンタマイシン等)、バイオエース、プロクリン300、プロキセル(Proxel)GXL等があげられる。
Examples of the metal ion include magnesium ion, manganese ion, zinc ion and the like.
Examples of the salts include sodium chloride and potassium chloride.
Examples of the saccharide include mannitol and sorbitol.
Examples of the surfactant include nonionic surfactants, cationic surfactants, anionic surfactants, and amphoteric surfactants, and nonionic surfactants are preferred. Examples of the nonionic surfactant include Tween 20 and Nonidet P-40. Examples of preservatives include sodium azide, antibiotics (streptomycin, penicillin, gentamicin, etc.), Bioace, Procrine 300, Proxel GXL, and the like.

タンパク質としては、例えばウシ血清アルブミン(BSA)、ウシ胎児血清(FBS)、カゼイン、ブロックエース(大日本製薬社製)等があげられる。
タンパク質安定化剤としては、例えばペルオキシダーゼ安定化緩衝液[Peroxidase Stabilizing Buffer、ダコサイトメーション(DakoCytomation)社製]等があげられる。
Examples of the protein include bovine serum albumin (BSA), fetal bovine serum (FBS), casein, block ace (Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) and the like.
Examples of the protein stabilizer include peroxidase stabilizing buffer (Peroxidase Stabilizing Buffer, manufactured by DakoCytomation).

(13)免疫測定試薬
本発明の免疫測定試薬は、試料中の測定対象物をヘモグロビンの影響を抑制して免疫測定するための免疫測定試薬であり、上記(3)に記載した細胞溶解物を含有することを特徴とする。本発明の免疫測定試薬としては、例えば(3)に記載した細胞溶解物にさらに、(i)〜(iii)のいずれかを含有する免疫測定試薬があげられる。
(i)測定対象物に結合する第1の抗体、および、測定対象物に結合する第2の抗体に標識が結合した標識化抗体、
(ii)競合物質に標識が結合した標識化競合物質、ならびに、測定対象物および競合物質に結合する抗体、
(iii)競合物質、ならびに、測定対象物および競合物質に結合する抗体に標識が結合した標識化抗体。
(13) Immunoassay reagent The immunoassay reagent of the present invention is an immunoassay reagent for immunoassay of a measurement object in a sample while suppressing the influence of hemoglobin. The cell lysate described in (3) above is used. It is characterized by containing. Examples of the immunoassay reagent of the present invention include an immunoassay reagent containing any of (i) to (iii) in addition to the cell lysate described in (3).
(I) a labeled antibody in which a label is bound to a first antibody that binds to a measurement object, and a second antibody that binds to the measurement object;
(Ii) a labeled competitor having a label bound to the competitor, and an antibody that binds to the analyte and the competitor,
(Iii) A labeled antibody in which a label is bound to a competitive substance, and an antibody that binds to an analyte and a competitive substance.

本発明の免疫測定試薬は、本発明の免疫測定方法に使用され得る。本発明の免疫測定試薬において使用される、細胞溶解物、測定対象物に結合する抗体、競合物質、測定対象物に結合する抗体に標識が結合した標識化抗体、標識化競合物質としては、例えば、それぞれ、前述の細胞溶解物、測定対象物に結合する抗体、競合物質、測定対象物に結合する抗体に標識が結合した標識化抗体、標識化競合物質をあげることができる。また、本発明の免疫測定試薬は、必要に応じて、前述の金属イオン、塩類、糖類、界面活性剤、防腐剤、タンパク質、タンパク質安定化剤等を含有する。   The immunoassay reagent of the present invention can be used in the immunoassay method of the present invention. Examples of the cell lysate, the antibody that binds to the measurement object, the competitive substance, the labeled antibody that binds the label to the antibody that binds to the measurement object, and the labeled competitive substance used in the immunoassay reagent of the present invention include: Examples thereof include the above-mentioned cell lysate, antibody bound to the measurement target, competitive substance, labeled antibody bound to the antibody bound to the measurement target, and labeled competitive substance. Moreover, the immunoassay reagent of this invention contains the above-mentioned metal ion, salt, saccharides, surfactant, preservative, protein, protein stabilizer, etc. as needed.

さらに、(1)に記載した試料中の血球を溶解させるための界面活性剤等の試薬、(12)に記載した反応の水性媒体および共存物、(6)に記載した洗浄液、(10)に記載した標識の量の測定に用いる試薬、および(11)に記載した標準物質をそれぞれ含んでもよい。細胞溶解物、(12)に記載した反応の水性媒体および共存物は、それぞれ別々の試薬としてもよいが、細胞溶解物と共存物を含む水性媒体を検体希釈液としてもよい。   Further, a reagent such as a surfactant for dissolving blood cells in the sample described in (1), an aqueous medium and a coexisting substance of the reaction described in (12), a cleaning solution described in (6), The reagent used for the measurement of the amount of the described label and the standard substance described in (11) may be included. The cell lysate and the aqueous medium and coexisting substance of the reaction described in (12) may be used as separate reagents, but an aqueous medium containing the cell lysate and coexisting substance may be used as the specimen diluent.

また、上記(3)に記載した細胞溶解物を含有する試薬は、測定対象物の免疫反応に及ぼすヘモグロビンの影響の抑制試薬とすることができる。
以下、実施例により本発明をより詳細に説明するが、これらは本発明の範囲を何ら限定するものではない。
Moreover, the reagent containing the cell lysate described in (3) above can be used as a reagent for suppressing the influence of hemoglobin on the immune reaction of the measurement object.
EXAMPLES Hereinafter, although an Example demonstrates this invention in detail, these do not limit the scope of the present invention at all.

MxAタンパク質のサンドイッチELISAによる測定および細胞溶解物によるヘモグロビンの影響の抑制
[1]抗MxAタンパク質モノクローナル抗体の調製
以下のようにして、エピトープの異なる2種類の抗ヒトMxAタンパク質モノクローナル抗体KM1124(WO96/05230)およびKM1135(WO96/05230)を調製した。なお、KM1124は、ヒトMxAタンパク質のアミノ末端から220〜297残基中に存在するエピトープ、KM1135はヒトMxAタンパク質のアミノ末端から10〜220残基中に存在するエピトープとそれぞれ結合するマウスモノクローナル抗体である。
Measurement of MxA protein by sandwich ELISA and suppression of hemoglobin effect by cell lysate [1] Preparation of anti-MxA protein monoclonal antibody As described below, two types of anti-human MxA protein monoclonal antibodies KM1124 with different epitopes (WO96 / 05230) ) And KM1135 (WO 96/05230). KM1124 is a mouse monoclonal antibody that binds to an epitope present in residues 220 to 297 from the amino terminus of human MxA protein, and KM1135 is a mouse monoclonal antibody that binds to an epitope present in residues 10 to 220 from the amino terminus of human MxA protein. is there.

プリスタン処理した8週令ヌード雌マウス(Balb/c)に、モノクローナル抗体KM1124を生産するハイブリドーマ株KM1124(FERM BP−4729)およびモノクローナル抗体KM1135を生産するハイブリドーマ株KM1135(FERM BP−4731)をそれぞれ5〜20×106細胞/匹ずつ腹腔内注射した。10〜21日後に、ハイブリドーマ株が腹水癌化し、腹水のたまったマウスから腹水を採取した。採取した腹水を3000rpmで5分間、遠心分離して固形分を除去し、上清を回収した。この上清から、カプリル酸沈殿法(Antibodies-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, 1988)により精製したモノクローナル抗体を、MxAタンパク質の免疫測定方法に用いた。 Pristane-treated 8-week-old nude female mice (Balb / c) were each given 5 hybridoma strains KM1124 (FERM BP-4729) producing monoclonal antibody KM1124 and 5 hybridoma strains KM1135 (FERM BP-4731) producing monoclonal antibody KM1135. -20 × 10 6 cells / mouse were injected intraperitoneally. After 10 to 21 days, the hybridoma strain became ascites tumor, and ascites was collected from the mice with ascites. The collected ascites was centrifuged at 3000 rpm for 5 minutes to remove solids, and the supernatant was collected. A monoclonal antibody purified from this supernatant by the caprylic acid precipitation method (Antibodies-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, 1988) was used for the immunoassay of MxA protein.

[2]リコンビナントMxAタンパク質の調製
ヒトMxAタンパク質をコードするcDNAを含むNdeI−BamHI断片を、ベクターpET−14b[ノバジェン(Novagen)、EMDバイオサイエンシズ(EMD Biosciences)社製]のNdeI−BamHI間に挿入して作製したヒトMxAタンパク質発現ベクターpET14b−MxA(Nucleic Acids Res, 32, 643-652, 2004)でEscherichia coli BL21(DE3)pLysS株を形質転換した。この形質転換体は、N末端にHisタグが付加したMxAタンパク質を発現する。
[2] Preparation of recombinant MxA protein NdeI-BamHI fragment containing cDNA encoding human MxA protein was inserted between NdeI and BamHI of vector pET-14b [Novagen, EMD Biosciences] The Escherichia coli BL21 (DE3) pLysS strain was transformed with the human MxA protein expression vector pET14b-MxA (Nucleic Acids Res, 32 , 643-652, 2004) prepared as described above. This transformant expresses MxA protein with a His tag added to the N-terminus.

得られた形質転換体を、アンピシリンを含むLB培地5mLに植菌し、600nmの吸光度(OD600)が0.5になるまで37℃で振とう培養した。この培養液をアンピシリンを含むLB培地250mLに植菌し、600nmでの吸光度が0.3〜0.5になるまで37℃で振とう培養した。ここに、イソプロピルチオガラクトシド(IPTG)を終濃度0.4mmol/Lになるように添加し、さらに37℃で2時間振とう培養して培養を終了した。培養液を4℃で3000rpm、10分間遠心分離して菌体を回収した。菌体はMxAタンパク質の調製まで−80℃で保存した。   The obtained transformant was inoculated into 5 mL of LB medium containing ampicillin and cultured with shaking at 37 ° C. until the absorbance at 600 nm (OD600) reached 0.5. This culture was inoculated into 250 mL of LB medium containing ampicillin and cultured with shaking at 37 ° C. until the absorbance at 600 nm reached 0.3 to 0.5. To this, isopropylthiogalactoside (IPTG) was added to a final concentration of 0.4 mmol / L, and further cultured with shaking at 37 ° C. for 2 hours to complete the culture. The culture was centrifuged at 3000 rpm for 10 minutes at 4 ° C. to recover the cells. The cells were stored at −80 ° C. until preparation of MxA protein.

MxAタンパク質は菌体内に不溶体(inclusion body)の状態で存在していたので、菌体を氷上で融解させ、氷冷した結合緩衝液(5mmol/Lイミダゾール、0.5mol/L塩化ナトリウム、20mmol/L Tris−HCl、pH7.9)20mLを添加し、懸濁させた。菌体懸濁液に30秒ずつ5回の超音波処理をして菌体を破砕した後、4℃で4000rpmで10分間遠心分離を行った。上清を除き、沈殿に氷冷した結合緩衝液20mLを添加して懸濁させ、再び同様に超音波処理と遠心分離を行った。上清を除き、沈殿に6mol/L尿素を含む結合緩衝液20mLを添加し、懸濁させた。同様に超音波処理を行った後、氷上で30分間静置して不溶体を溶解させ、4℃で10000rpmで30分間遠心分離を行った。上清を回収して0.45nmミリポアフィルターでろ過した。   Since the MxA protein was present in an insoluble body (inclusion body) in the microbial cells, the microbial cells were thawed on ice and ice-cooled binding buffer (5 mmol / L imidazole, 0.5 mol / L sodium chloride, 20 mmol). / L Tris-HCl, pH 7.9) 20 mL was added and suspended. The bacterial cell suspension was sonicated 5 times for 30 seconds to disrupt the bacterial cells, and then centrifuged at 4 ° C. and 4000 rpm for 10 minutes. The supernatant was removed, and 20 mL of ice-cold binding buffer was added to the precipitate to suspend it, and sonication and centrifugation were again performed in the same manner. The supernatant was removed, and 20 mL of binding buffer containing 6 mol / L urea was added to the precipitate and suspended. Similarly, after ultrasonication, the mixture was allowed to stand on ice for 30 minutes to dissolve insoluble matter, and centrifuged at 4 ° C. and 10,000 rpm for 30 minutes. The supernatant was collected and filtered through a 0.45 nm Millipore filter.

得られた溶液にNi−NTA His・Bindレジン(ノバジェン、EMDバイオサイエンシズ社製)0.5mLを添加し、4℃で2時間回転させながら混和させ、Hisタグを介してレジンにMxAタンパク質を結合させた。4℃で3000rpmで2分間遠心分離し、レジンを回収した。レジンに氷冷した6mol/L尿素を含む結合緩衝液10mLを添加した後、4℃で3000rpmで2分間遠心分離し、レジンを回収した。この洗浄操作を再度繰り返した後、さらにレジンに氷冷した洗浄緩衝液(6mol/L尿素、60mmol/Lイミダゾール、0.5mol/L塩化ナトリウム、20mmol/L Tris−HCl、pH7.9)10mLを添加し、4℃で3000rpmで2分間遠心分離し、レジンを回収した。   Add 0.5 mL of Ni-NTA His / Bind resin (Novagen, manufactured by EMD Biosciences) to the resulting solution, mix while rotating for 2 hours at 4 ° C., and bind the MxA protein to the resin via the His tag. I let you. The resin was collected by centrifugation at 3000 rpm for 2 minutes at 4 ° C. After adding 10 mL of a binding buffer containing 6 mol / L urea cooled on ice to the resin, the resin was centrifuged at 3000 rpm for 2 minutes at 4 ° C. to recover the resin. After repeating this washing operation again, 10 ml of an ice-cooled washing buffer (6 mol / L urea, 60 mmol / L imidazole, 0.5 mol / L sodium chloride, 20 mmol / L Tris-HCl, pH 7.9) was added to the resin. The resin was added and centrifuged at 3000 rpm for 2 minutes at 4 ° C. to recover the resin.

レジンに氷冷した溶出緩衝液(6mol/L尿素、1mol/Lイミダゾール、0.5mol/L塩化ナトリウム、20mmol/L Tris−HCl、pH7.9)10mLを添加し、4℃で2時間回転させながら混和させ、レジンからMxAタンパク質を溶出させた。4℃で3000rpmで2分間遠心分離し、上清を回収し、MxAタンパク質の測定において、標準となるMxAタンパク質溶液として使用した。   Add 10 mL of ice-cold elution buffer (6 mol / L urea, 1 mol / L imidazole, 0.5 mol / L sodium chloride, 20 mmol / L Tris-HCl, pH 7.9) to the resin, and rotate at 4 ° C. for 2 hours. The MxA protein was eluted from the resin. The mixture was centrifuged at 3000 rpm for 2 minutes at 4 ° C., and the supernatant was collected and used as a standard MxA protein solution in the measurement of MxA protein.

[3]抗MxAタンパク質抗体固相化プレートの調製
[1]で調製した抗MxAタンパク質モノクローナル抗体KM1135を5μg/mLになるようにPBS(pH7.5)で希釈し、96ウェルマイクロタイタープレート[ナルジェンヌンクインターナショナル(Nalge Nunc International)社製]に50μL/ウェルの量で分注した。一晩放置後、上清を吸引除去し、25%ブロックエース(大日本製薬社製)、50mmol/L塩化ナトリウムを含むpH7.2リン酸緩衝液200μLを分注し室温で2時間静置しブロッキングした。ブロッキング液を除去した後、PBSで洗浄した。真空乾燥機で一晩乾燥したものを、抗MxAタンパク質モノクローナル抗体固相化プレートとして使用した。
[3] Preparation of anti-MxA protein antibody-immobilized plate The anti-MxA protein monoclonal antibody KM1135 prepared in [1] was diluted with PBS (pH 7.5) to 5 μg / mL, and a 96-well microtiter plate [Null The product was dispensed in a volume of 50 μL / well to Nalge Nunc International. After leaving overnight, the supernatant was removed by aspiration, 200 μL of pH 7.2 phosphate buffer containing 25% Block Ace (Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) and 50 mmol / L sodium chloride was dispensed and allowed to stand at room temperature for 2 hours. Blocked. After removing the blocking solution, the plate was washed with PBS. What dried in the vacuum dryer overnight was used as an anti- MxA protein monoclonal antibody solid-phased plate.

[4]ペルオキシダーゼ標識抗MxAタンパク質抗体の調製
[1]で調製した抗MxA蛋白質モノクローナル抗体KM1124を以下のようにしてマレイミド法でペルオキシダーゼ(以下、PODと略す)と結合させ、POD標識抗MxA蛋白質抗体を作製した。
[4] Preparation of peroxidase-labeled anti-MxA protein antibody The anti-MxA protein monoclonal antibody KM1124 prepared in [1] is bound to peroxidase (hereinafter abbreviated as POD) by the maleimide method as follows, and POD-labeled anti-MxA protein antibody Was made.

まず、KM1124 2mgを含む溶液の溶媒を0.1mol/Lホウ酸緩衝液(pH8.0)に置換し、0.086mgの2−イミノチオラン塩酸塩[ピアース(Pierce)社製]を添加し、攪拌後、30℃で30分間反応させた。0.1mol/Lのリン酸緩衝液(pH6.0)で平衡化したセファデックス(Sephadex)G25(アマシャム・バイオサイエンス社製)カラム(直径1.5cm×30cm)を用いて、反応溶液中の未反応の2−イミノチオランを除去し、スルフヒドリル化したKM1124を回収した。   First, the solvent of a solution containing 2 mg of KM1124 was replaced with 0.1 mol / L borate buffer (pH 8.0), and 0.086 mg of 2-iminothiolane hydrochloride (manufactured by Pierce) was added and stirred. Then, it was made to react at 30 degreeC for 30 minutes. Using a Sephadex G25 (Amersham Biosciences) column (diameter 1.5 cm × 30 cm) equilibrated with 0.1 mol / L phosphate buffer (pH 6.0), Unreacted 2-iminothiolane was removed, and sulfhydrylated KM1124 was recovered.

一方、KM1124に対しモル比で5倍量にあたるPOD(東洋紡績社製、ペルオキシダーゼI−C)2.5mgを0.1mol/Lリン酸緩衝液(pH7.0)250μLに溶解させた。この溶液を30℃で5分間加温した後、N,N−ジメチルホルムアミド(ナカライテスク社製)に溶解させた0.72mgのN−(6−マレイミドカプロイルオキシ)スクシンイミド(EMCS、同仁化学研究所社製)を加えて攪拌し、30℃で30分間反応させた。0.1mol/Lリン酸緩衝液(pH6.0)で平衡化したセファデックスG25カラム(直径1.5cm×30cm)を用いて、反応後の溶液のゲルろ過を行い、未反応のEMCSを除去し、マレイミド化したPODを回収した。   On the other hand, 2.5 mg of POD (manufactured by Toyobo Co., Ltd., peroxidase IC) in a molar ratio of KM1124 was dissolved in 250 μL of 0.1 mol / L phosphate buffer (pH 7.0). This solution was heated at 30 ° C. for 5 minutes, and then 0.72 mg of N- (6-maleimidocaproyloxy) succinimide (EMCS, Dojin Chemical Research) dissolved in N, N-dimethylformamide (manufactured by Nacalai Tesque). (Made by Tosho Co., Ltd.) was added and stirred and reacted at 30 ° C. for 30 minutes. Using a Sephadex G25 column (diameter 1.5 cm x 30 cm) equilibrated with 0.1 mol / L phosphate buffer (pH 6.0), gel filtration of the solution after reaction was performed to remove unreacted EMCS. Then, maleimidated POD was recovered.

上記で得られたスルフヒドリル化したKM1124の溶液とマレイミド化したPODの溶液を混合し、30℃で1時間反応させた。反応後、0.1mol/Lリン酸緩衝液(pH7.0)で平衡化したセファクリルS−300(ファルマシア製)カラム(直径3cm×60cm)を用いて、反応後の溶液のゲルろ過を行い、未反応のPODを除去すると共に、標識化抗体を精製した。ゲルろ過の各フラクションの280nmでの吸光度(A280)および403nmでの吸光度(A403)を測定し、A280からKM1124のモル数、A403からPODのモル数を計算し、PODのモル数/KM1124のモル数が1.5以上のフラクションを、標識化抗体を含むフラクションとして回収した。得られた標識化抗体はPBS(pH7.5)で200倍に希釈し使用した。   The sulfhydrylated KM1124 solution obtained above and the maleimidated POD solution were mixed and reacted at 30 ° C. for 1 hour. After the reaction, gel filtration of the solution after the reaction is performed using a Sephacryl S-300 (Pharmacia) column (diameter 3 cm × 60 cm) equilibrated with 0.1 mol / L phosphate buffer (pH 7.0). Unreacted POD was removed and the labeled antibody was purified. The absorbance at 280 nm (A280) and the absorbance at 403 nm (A403) of each fraction of gel filtration were measured, and the number of moles of AKM from KM1124 and the number of moles of POD from A403 were calculated. The number of moles of POD / mol of KM1124 Fractions having a number of 1.5 or more were collected as fractions containing labeled antibody. The obtained labeled antibody was diluted 200 times with PBS (pH 7.5) and used.

[5]サンドイッチELISAによるMxAタンパク質測定系の構築
前記[2]で調製したMxAタンパク質溶液を緩衝液[150mmol/L塩化ナトリウム、0.1%BSA(インタージェン(InterGen)社製)、50mmol/L Tris−HCl、pH7.2]で希釈し、MxAタンパク質の0(緩衝液のみ)、3.2、6.3、12.5、25、50、100、200ng/mLの各濃度の溶液を調製し、測定試料とした。
[5] Construction of MxA protein measurement system by sandwich ELISA Buffer MxA protein solution prepared in [2] above [150 mmol / L sodium chloride, 0.1% BSA (manufactured by InterGen), 50 mmol / L Dilute with Tris-HCl, pH 7.2] to prepare MxA protein solutions of 0 (buffer only), 3.2, 6.3, 12.5, 25, 50, 100, 200 ng / mL. And used as a measurement sample.

前記[3]で作製した抗MxAタンパク質抗体(KM1135)固定化プレートに100μLの測定試料を添加し、室温で1時間インキュベートし、抗体に測定試料中のMxAタンパク質を結合させた。測定試料を除去した後、洗浄液[0.05%ツイーン20(関東化学社製)を含むPBS]を400μL添加して除去する洗浄操作を5回行った。次いで、[4]で作製したPOD標識抗MxAタンパク質抗体(KM1124)を100μL添加して室温で30分間反応させた。標識化抗体を除去し、洗浄液を400μL添加して除去する洗浄操作を5回行った。暗所で、0.05%テトラメチルベンジジンおよび過酸化水素を含むPODの発色基質TMBlue[セロロジカル(Serological)社製]を100μL添加し、室温で10分間反応させた。0.5mol/L硫酸を100μL添加して室温で10分間インキュベーションして反応を停止させた。波長450nmの吸光度をプレートリーダーで測定した。その結果、測定試料中のMxAタンパク質の濃度の上昇にしたがって、吸光度の上昇が見られ、高感度にMxAタンパク質の測定ができることが示された。   100 μL of a measurement sample was added to the anti-MxA protein antibody (KM1135) -immobilized plate prepared in [3] and incubated at room temperature for 1 hour to bind the MxA protein in the measurement sample to the antibody. After removing the measurement sample, a washing operation [400 μL of PBS containing 0.05% Tween 20 (manufactured by Kanto Chemical Co., Ltd.)] was added and removed five times. Next, 100 μL of the POD-labeled anti-MxA protein antibody (KM1124) prepared in [4] was added and reacted at room temperature for 30 minutes. The labeled antibody was removed, and a washing operation for removing 400 μL of the washing solution was performed 5 times. In a dark place, 100 μL of POD chromogenic substrate TMBlue (manufactured by Serological) containing 0.05% tetramethylbenzidine and hydrogen peroxide was added and allowed to react at room temperature for 10 minutes. The reaction was stopped by adding 100 μL of 0.5 mol / L sulfuric acid and incubating at room temperature for 10 minutes. Absorbance at a wavelength of 450 nm was measured with a plate reader. As a result, as the concentration of MxA protein in the measurement sample increased, the absorbance increased, indicating that MxA protein can be measured with high sensitivity.

[6]細胞溶解物の調製
浮遊性のヒトバーキットリンパ腫細胞株Raji細胞(Lancet, 39, 238-240, 1964、大日本製薬株式会社製)を、10%非働化FBS、1%Antibiotic−Antimycotic[インビトロジェン(Invitrogen)社製]、0.1%ゲンタマイシン(インビトロジェン社製)を含むRPMI1640培地[シグマ−アルドリッチ(Sigma-Aldrich)社製]10mLで、1×106細胞/mLになるよう懸濁させた。細胞懸濁液を25cm2Tフラスコに全量移し、炭酸ガス培養装置(5%CO2)で、37℃で2〜3日浮遊培養した。その後、150cm2Tフラスコ、225cm2Tフラスコへと順次拡大培養を行った。225cm2Tフラスコ内で細胞がコンフルエントになったところで、細胞を含む培養液を滅菌された容器に回収し、25℃で1400rpm、5分間遠心分離した。上清を除去し、細胞数107個/mLになるように低張緩衝液(10mmol/L HEPES、1.5mmol/L MgCl2、10mmol/L KCl)で懸濁して回収し、凍結保存した。
[6] Preparation of cell lysate Suspension human Burkitt lymphoma cell line Raji cells (Lancet, 39 , 238-240, 1964, manufactured by Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) were treated with 10% inactivated FBS, 1% Antibiotic-Antimycotic. [Invitrogen], RPMI 1640 medium containing 0.1% gentamicin (Invitrogen) [Sigma-Aldrich] 10 mL suspended to 1 × 10 6 cells / mL I let you. The whole amount of the cell suspension was transferred to a 25 cm 2 T flask, and suspended in a carbon dioxide culture apparatus (5% CO 2 ) at 37 ° C. for 2 to 3 days. Thereafter, expansion culture was sequentially performed into a 150 cm 2 T flask and a 225 cm 2 T flask. When the cells became confluent in the 225 cm 2 T flask, the culture solution containing the cells was collected in a sterilized container, and centrifuged at 1400 rpm for 5 minutes at 25 ° C. The supernatant was removed, suspended in a hypotonic buffer (10 mmol / L HEPES, 1.5 mmol / L MgCl 2 , 10 mmol / L KCl) and collected to a cell number of 10 7 cells / mL, and stored frozen. .

上記で得られた107個/mLの培養細胞を含む溶液を5%の濃度で細胞溶解用緩衝液(1%ノニデットP40、50mmol/L Tris−HCl、pH7.2)に添加して、30分間インキュベートをして、細胞を溶解させた後に、室温で1400rpm、5分間遠心分離して、不溶解成分を沈殿させ上清を回収し、細胞溶解物を得た。
得られた細胞溶解物中のタンパク質含量を、ブラッドフォード法によるプロテインアッセイキット[バイオラッド(Bio-Rad)社製]を用いて測定した。タンパク質含量は1mg/mLのBSAを標準とし段階的希釈を行い、得られる吸光度とタンパク質濃度をプロットし、検量線を作成し、これを用いて濃度換算を行った。溶液は、−80℃で保管した。
The solution containing 10 7 cells / mL cultured cells obtained above was added to a cell lysis buffer (1% nonidet P40, 50 mmol / L Tris-HCl, pH 7.2) at a concentration of 5%. After incubating for 1 minute to lyse the cells, the mixture was centrifuged at 1400 rpm for 5 minutes at room temperature to precipitate insoluble components and collect the supernatant to obtain a cell lysate.
The protein content in the obtained cell lysate was measured using a protein assay kit by the Bradford method (manufactured by Bio-Rad). The protein content was serially diluted with 1 mg / mL BSA as a standard, the resulting absorbance and protein concentration were plotted, a calibration curve was prepared, and this was used to convert the concentration. The solution was stored at -80 ° C.

[7]細胞溶解物によるMxAタンパク質測定におけるヘモグロビンの影響の抑制
前記[6]で調製したRaji細胞の細胞溶解物を0、0.63、1.25、2.5、5%の各濃度(蛋白質濃度として、それぞれ0、4.3、9.3、17.9、35.8μg/mLに相当した)で含む緩衝液(150mmol/L塩化ナトリウム、0.1%BSA、50mmol/L Tris−HCl、pH7.2)を調製し、検体希釈液とした。
[7] Suppression of influence of hemoglobin in measurement of MxA protein by cell lysate The cell lysates of Raji cells prepared in [6] above were each at concentrations of 0, 0.63, 1.25, 2.5 and 5% ( Buffer concentrations (150 mmol / L sodium chloride, 0.1% BSA, 50 mmol / L Tris-) corresponding to protein concentrations of 0, 4.3, 9.3, 17.9, and 35.8 μg / mL, respectively. HCl, pH 7.2) was prepared and used as a specimen diluent.

MxAタンパク質陰性健常者10名の血液に、4倍の容量のPBSを添加して、3000rpmで10分間遠心分離して、上清を除いた。沈殿の血球に4倍の容量のPBSを添加して懸濁し、3000rpmで10分間遠心分離して、上清を除く洗浄操作を3回繰り返した。得られた洗浄血球を−30℃で凍結した後、融解し、さらに蒸留水を添加して赤血球をバーストさせた。得られた溶液のヘモグロビン濃度を、ヘモグロビン測定キットHbテストワコー(和光純薬工業社製)で測定し、蒸留水でヘモグロビン濃度を60mg/mLに調整したものをヘモグロビン溶液とした。   Four times the volume of PBS was added to the blood of 10 healthy MxA protein-negative individuals, centrifuged at 3000 rpm for 10 minutes, and the supernatant was removed. Four times the volume of PBS was added to the precipitated blood cells, suspended, centrifuged at 3000 rpm for 10 minutes, and the washing operation except the supernatant was repeated three times. The obtained washed blood cells were frozen at −30 ° C., thawed, and distilled water was added to burst red blood cells. The hemoglobin concentration of the obtained solution was measured with a hemoglobin measurement kit Hb Test Wako (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), and the hemoglobin concentration adjusted to 60 mg / mL with distilled water was used as a hemoglobin solution.

各濃度の細胞溶解物を含む検体希釈液にヘモグロビン溶液をヘモグロビン濃度が30mg/mL、15mg/mL、7.5mg/mLになるように添加した各溶液、およびヘモグロビン溶液を添加しない各検体希釈液で、[2]で調製したMxAタンパク質溶液を50ng/mLの濃度になるように希釈したものを測定試料とし、[5]と同様のサンドイッチELISAを行い、吸光度を測定した。   Each solution in which a hemoglobin solution is added to a sample dilution solution containing cell lysate at each concentration so that the hemoglobin concentration is 30 mg / mL, 15 mg / mL, and 7.5 mg / mL, and each sample dilution solution to which no hemoglobin solution is added Then, the MxA protein solution prepared in [2] was diluted to a concentration of 50 ng / mL as a measurement sample, and a sandwich ELISA similar to [5] was performed to measure the absorbance.

ヘモグロビン溶液を添加した各測定試料の吸光度の値を、ヘモグロビン溶液を添加しない測定試料の吸光度の値と比較してヘモグロビンの影響を調べた。その結果、図1に示すように、ヘモグロビン溶液を添加した測定試料では、ヘモグロビン溶液を添加しない測定試料と比較して、ヘモグロビンの濃度が増えるにつれて、測定値の低下がみられ、ヘモグロビンは測定値を低下させる影響を与えることが示された。測定試料に細胞溶解物を添加しない場合と比較して、細胞溶解物を添加した測定試料では、添加した細胞溶解物の濃度が増加するにつれて、ヘモグロビンによる測定値の低下が抑制されており、細胞溶解物を添加することで、ヘモグロビンの影響を抑制できることが示された。   The influence of hemoglobin was examined by comparing the absorbance value of each measurement sample to which the hemoglobin solution was added with the absorbance value of the measurement sample to which no hemoglobin solution was added. As a result, as shown in FIG. 1, in the measurement sample to which the hemoglobin solution was added, the measurement value decreased as the concentration of hemoglobin increased compared to the measurement sample to which the hemoglobin solution was not added. It was shown to have an effect of lowering. Compared to the case where no cell lysate was added to the measurement sample, in the measurement sample to which the cell lysate was added, the decrease in the measurement value due to hemoglobin was suppressed as the concentration of the added cell lysate increased, and the cell It was shown that the influence of hemoglobin can be suppressed by adding a lysate.

T98G細胞の細胞溶解物によるヘモグロビンの影響の抑制
[1]T98G細胞の細胞溶解物の調製
接着性のヒトグリア芽細胞種由来の細胞株T98G(大日本製薬株式会社より購入、J. Cell. Physiol., 99, 43-54, 1979)を、10%FBS、1%非必須アミノ酸(インビトロジェン社製)、1mmol/mLピルビン酸ナトリウム(インビトロジェン社製)を添加したイーグルMEM培地「ダイゴ」(日本製薬株式会社製)10mLを添加した細胞培養用の6cmシャーレ内で、コンフルエントになるまで、炭酸ガス培養装置(5%CO、37℃)を用いて2〜3日間培養した。細胞がコンフルエントになったところで、細胞を15cmシャーレに移して同様に培養を行った。15cmシャーレ内で細胞がコンフルエントになったところで、培地を吸引除去し、PBSで洗浄し、0.02%EDTAで洗浄した。細胞を0.25%トリプシン溶液を添加して細胞をシャーレからはがした後、25℃5分間遠心分離(1400rpm)した。上清を除去し、低張緩衝液(10mmol/L HEPES、1.5mmol/L MgCl2、10mmol/L KCl)を添加して細胞を懸濁し溶液を回収した。
Suppression of the effect of hemoglobin by cell lysate of T98G cells [1] Preparation of cell lysate of T98G cells Cell line T98G derived from an adherent human glioblastoma cell line (purchased from Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd., J. Cell. Physiol. , 99 , 43-54, 1979) with 10% FBS, 1% non-essential amino acid (manufactured by Invitrogen), and 1 mmol / mL sodium pyruvate (manufactured by Invitrogen) Eagle MEM medium “Digo” (Nippon Pharmaceutical Co., Ltd.) The cells were cultured in a 6 cm petri dish for cell culture to which 10 mL was added using a carbon dioxide culture apparatus (5% CO 2 , 37 ° C.) for 2 to 3 days until confluent. When the cells became confluent, the cells were transferred to a 15 cm petri dish and cultured in the same manner. When the cells became confluent in a 15 cm petri dish, the medium was removed by suction, washed with PBS, and washed with 0.02% EDTA. The cells were peeled from the petri dish by adding 0.25% trypsin solution, and then centrifuged (1400 rpm) at 25 ° C. for 5 minutes. The supernatant was removed, and a hypotonic buffer (10 mmol / L HEPES, 1.5 mmol / L MgCl 2 , 10 mmol / L KCl) was added to suspend the cells and collect the solution.

上記で得られた培養細胞を含む溶液を5%の濃度で細胞溶解用緩衝液(1%ノニデットP40、50mmol/L Tris−HCl、pH7.2)に添加して、30分間インキュベートをして、細胞を溶解させた後に、室温で1400rpm、5分間遠心分離して、不溶解成分を沈殿させ上清を回収し、細胞溶解物として用いた。実施例1[6]と同様にして、細胞溶解物の蛋白質濃度を測定し、−80℃で保管した。   The solution containing the cultured cells obtained above was added to a cell lysis buffer (1% nonidet P40, 50 mmol / L Tris-HCl, pH 7.2) at a concentration of 5%, and incubated for 30 minutes. After the cells were lysed, the mixture was centrifuged at room temperature at 1400 rpm for 5 minutes to precipitate insoluble components and the supernatant was collected and used as a cell lysate. In the same manner as in Example 1 [6], the protein concentration of the cell lysate was measured and stored at −80 ° C.

[2]T98G細胞の細胞溶解物によるMxAタンパク質測定におけるヘモグロビンの影響の抑制
[1]で調製したT98G細胞の細胞溶解物をタンパク質濃度0.2、0.4、0.7、1.4mg/mLになるように、緩衝液(150mmol/L塩化ナトリウム、0.1%BSA、50mmol/L Tris−HCl、pH7.2)に添加したもの、および細胞溶解物を添加しない緩衝液を、検体希釈液とした。これらの検体希釈液に、実施例1[7]で調製した60mg/mLヘモグロビン溶液をヘモグロビン濃度が3.75、7.5、15、30mg/mLになるように添加した各溶液、およびヘモグロビン溶液を添加しない各検体希釈液で、実施例1[2]で調製したMxAタンパク質溶液を濃度になるように希釈したものを測定試料とし、実施例1[5]と同様のサンドイッチELISAを行い、吸光度を測定した。
[2] Suppression of influence of hemoglobin in MxA protein measurement by cell lysate of T98G cells The cell lysate of T98G cells prepared in [1] was adjusted to a protein concentration of 0.2, 0.4, 0.7, 1.4 mg / Samples diluted with buffer (150 mmol / L sodium chloride, 0.1% BSA, 50 mmol / L Tris-HCl, pH 7.2) and buffer without addition of cell lysate were prepared so that the volume was mL. A liquid was used. Each solution obtained by adding the 60 mg / mL hemoglobin solution prepared in Example 1 [7] to these specimen dilutions so that the hemoglobin concentration becomes 3.75, 7.5, 15, 30 mg / mL, and the hemoglobin solution Each sample diluted solution without addition of MxA protein solution prepared in Example 1 [2] was diluted to a concentration to obtain a measurement sample, and a sandwich ELISA similar to Example 1 [5] was performed to obtain the absorbance. Was measured.

ヘモグロビン溶液を添加した各測定試料の吸光度の値を、ヘモグロビン溶液を添加しない測定試料の吸光度の値と比較してヘモグロビンの影響を調べた。図2に示すように、実施例1[7]と同様に、ヘモグロビンは測定値を低下させる影響を与えることが示された。実施例1[7]のRaji細胞の細胞溶解物と同様に、測定試料にT98Gの細胞溶解物を添加しない場合と比較して、T98Gの細胞溶解物を添加した測定試料では、添加した細胞溶解物の濃度が増加するにつれて、ヘモグロビンによる測定値の低下が抑制されており、細胞の種類に関わらず、細胞溶解物を添加することで、ヘモグロビンの影響を抑制できることが示された。   The influence of hemoglobin was examined by comparing the absorbance value of each measurement sample to which the hemoglobin solution was added with the absorbance value of the measurement sample to which no hemoglobin solution was added. As shown in FIG. 2, as in Example 1 [7], it was shown that hemoglobin has an effect of reducing the measured value. As in the case of the cell lysate of Raji cells in Example 1 [7], compared to the case where the cell lysate of T98G was not added to the measurement sample, the cell lysis added was added in the measurement sample to which the cell lysate of T98G was added. As the concentration of the substance increased, the decrease in the measured value due to hemoglobin was suppressed, and it was shown that the influence of hemoglobin can be suppressed by adding a cell lysate regardless of the cell type.

全血中のMxAタンパク質の測定
健常者4例の血液を採取し、それぞれの血液を二つに分け、それぞれに血液と等量の10%非働化FBS、1%Antibiotic−Antimycotic、0.1%ゲンタマイシンを含むRPMI1640培地を添加し、一方はインターフェロンαを1000U/mLの濃度で添加し24時間培養することにより白血球でのMxAタンパク質の発現を誘発し、他方はインターフェロンαを添加せずに24時間培養した。培養後の全血試料に4倍の容量の、血球溶解用緩衝液[1%ノニデットP40を含む50mmol/Lトリス緩衝液(pH7.2)]を添加して試料中の血球を溶解させ、血球内のMxAタンパク質を溶液中に放出させ、さらに、検体希釈液[実施例1[6]で調製したRaji細胞の細胞溶解物を5%の濃度で含む緩衝液(150mmol/L塩化ナトリウム、0.1%BSA、50mmol/L Tris−HCl、pH7.2)]で2倍に希釈したものを測定試料とした。測定試料中のMxAタンパク質を実施例1[5]と同様にして測定を行った。
Measurement of MxA protein in whole blood The blood of 4 healthy subjects was collected, and each blood was divided into two, each of which was equivalent to 10% inactivated FBS, 1% Antibiotic-Antilytic, 0.1% RPMI1640 medium containing gentamicin is added, one induces the expression of MxA protein in leukocytes by adding interferon α at a concentration of 1000 U / mL and culturing for 24 hours, and the other for 24 hours without adding interferon α. Cultured. A 4-fold volume of a lysis solution [50 mmol / L Tris buffer (pH 7.2) containing 1% nonidet P40]] is added to the cultured whole blood sample to dissolve the hemocytes in the sample. The MxA protein in the solution was released into the solution, and a buffer solution (150 mmol / L sodium chloride, 0. 1%) was added to the specimen diluent [Raji cell lysate prepared in Example 1 [6] at a concentration of 5%. A sample diluted two-fold with 1% BSA, 50 mmol / L Tris-HCl, pH 7.2)] was used as a measurement sample. MxA protein in the measurement sample was measured in the same manner as in Example 1 [5].

実施例1[2]で調製したMxAタンパク質溶液を、検体希釈液で希釈し、0(検体希釈液のみ)、3.2、6.3、12.5、25、50、100、200ng/mLの各濃度の溶液を調製し、同様に測定を行い、MxAタンパク質濃度および吸光度をプロットして検量線を作成した。検量線に基づいて、測定試料の吸光度から測定試料中のMxAタンパク質濃度を求め、さらに希釈率[検体希釈液による希釈(2倍)×血球溶解用緩衝液による希釈(5倍)=10倍]を乗じて全血試料中のMxAタンパク質濃度を定量した。図3に定量結果を示した。図3に示すように、インターフェロンαで刺激した健常人血液に含まれるMxAタンパク質は117.1〜171.6ng/mL、インターフェロンα刺激しない健常人血液に含まれるMxAタンパク質は0.8〜9.4ng/mLと決定された。   The MxA protein solution prepared in Example 1 [2] was diluted with the sample diluent, and 0 (sample diluent only), 3.2, 6.3, 12.5, 25, 50, 100, 200 ng / mL. Were prepared and measured in the same manner, and a calibration curve was prepared by plotting MxA protein concentration and absorbance. Based on the calibration curve, the MxA protein concentration in the measurement sample is determined from the absorbance of the measurement sample, and the dilution rate [dilution with the sample diluent (2 times) × dilution with the blood cell lysis buffer (5 times) = 10 times] Was multiplied to determine the MxA protein concentration in the whole blood sample. The quantitative results are shown in FIG. As shown in FIG. 3, MxA protein contained in healthy human blood stimulated with interferon α is 117.1 to 171.6 ng / mL, and MxA protein contained in healthy human blood not stimulated with interferon α is 0.8 to 9. It was determined to be 4 ng / mL.

全血検体の希釈試験
実施例3の方法に従って、MxAタンパク質陽性の臨床検体の希釈試験を行った。
MxAタンパク質陽性全血検体に、4倍の容量の血球溶解用緩衝液を添加して試料中の血球を溶解させ、血球内のMxAタンパク質を溶液中に放出させた。これを2つに分け、一方はRaji細胞の細胞溶解物を5%の濃度で含む検体希釈液(150mmol/L塩化ナトリウム、0.1%BSA、50mmol/L Tris−HCl、pH7.2)で、もう一方は細胞溶解物を含まない検体希釈液(0.1%BSAを含むPBS)で、それぞれ2倍に希釈したものを測定試料として用いた。細胞溶解物を含む検体希釈液で希釈した試料をさらに、同じ細胞溶解物を含む検体希釈液で4/5、3/5、2/5、1/5と段階的に希釈した。他方の細胞溶解物を含まない検体希釈液で希釈した測定試料も、さらに同じ細胞溶解物を含まない検体希釈液で4/5、3/5、2/5、1/5と段階的に希釈した。段階的に希釈する前の測定試料および段階的に希釈した測定試料それぞれについて、実施例1[5]と同様にしてMxAタンパク質の測定を行い、実施例3と同様にして作成した検量線に基づいてMxAタンパク質の定量を行った。図4に細胞溶解物を含む検体希釈液で希釈した場合の測定結果、図5に細胞溶解物を含まない検体希釈液で希釈した場合の測定結果を、実際の測定値と理論値(段階的な希釈前の測定試料(5/5)の測定値に希釈率を乗じて求められる値)で示した。第1表に各試料のMxAタンパク質濃度の理論値に対する実際の測定値の比(%)を示した。
Dilution Test of Whole Blood Specimen According to the method of Example 3, a dilution test of a clinical specimen positive for MxA protein was performed.
To the MxA protein-positive whole blood sample, 4 times the volume of hemocyte lysis buffer was added to lyse the hemocytes in the sample, and the MxA protein in the hemocytes was released into the solution. This was divided into two, one with a sample diluent (150 mmol / L sodium chloride, 0.1% BSA, 50 mmol / L Tris-HCl, pH 7.2) containing a cell lysate of Raji cells at a concentration of 5%. On the other hand, a sample dilution solution (PBS containing 0.1% BSA) containing no cell lysate, each diluted 2-fold, was used as a measurement sample. The sample diluted with the sample diluent containing the cell lysate was further diluted stepwise with the sample diluent containing the same cell lysate as 4/5, 3/5, 2/5, and 1/5. The measurement sample diluted with the other sample diluent without cell lysate is further diluted stepwise with 4/5, 3/5, 2/5, and 1/5 with the same sample diluent without cell lysate. did. The MxA protein was measured in the same manner as in Example 1 [5] for each of the measurement sample before dilution in stages and the measurement sample diluted in stages, and based on the calibration curve prepared in the same manner as in Example 3. The MxA protein was quantified. FIG. 4 shows the measurement results when diluted with a sample diluent containing cell lysate, and FIG. 5 shows the measurement results when diluted with a sample diluent without cell lysate. The value obtained by multiplying the measured value of the measurement sample before dilution (5/5) by the dilution rate). Table 1 shows the ratio (%) of the actual measured value to the theoretical value of the MxA protein concentration of each sample.

Figure 2007225603
Figure 2007225603

図4、図5および第1表からわかるように、細胞溶解物を含まない検体希釈液による希釈では、希釈が進むにつれて理論値と測定値の乖離率が上昇し、希釈率1/5では乖離率+20%以上となった。これは、希釈率5/5の状態では、試料中のヘモグロビンにより測定が阻害されており、試料の希釈によりその阻害が弱まったためと考えられた。これに対し、細胞溶解物を含む検体希釈液では希釈直線性は良好で、乖離率±5%以内であり、細胞溶解物の共存下で測定を行うことにより、ヘモグロビンの影響を抑制できることが示された。   As can be seen from FIGS. 4 and 5 and Table 1, in the dilution with the sample diluent not containing the cell lysate, the deviation rate between the theoretical value and the measured value increases as the dilution proceeds, and at the dilution rate of 1/5, the deviation occurs. The rate was + 20% or more. This was thought to be because the measurement was inhibited by hemoglobin in the sample at a dilution ratio of 5/5, and the inhibition was weakened by dilution of the sample. On the other hand, the specimen dilution solution containing cell lysate has good dilution linearity and the deviation rate is within ± 5%, and it is shown that the influence of hemoglobin can be suppressed by measuring in the presence of cell lysate. It was done.

MxAタンパク質測定キット
下記の各試薬からなるMxAタンパク質の酵素免疫測定用の試薬キットを作製した。
(a)抗MxAタンパク質抗体固定化プレート 1枚
実施例1[3]に記載の方法にしたがって、5μg/mLの抗MxAタンパク質モノクローナル抗体KM1135のPBS溶液(pH7.5)を、50μL/ウェルの量で分注して固定化後、25%ブロックエースでブロッキングし、乾燥させた、96ウェルマイクロタイタープレート。
(b)血球溶解用緩衝液
組成:1%ノニデットP40を含む50mmol/Lトリス緩衝液(pH7.2)
容量:10mL/ボトル
(c)検体希釈液
組成:5% Raji細胞の細胞溶解物(実施例1[2]に記載の方法に従って調製したもの)、150mmol/L塩化ナトリウム、0.1%BSA、50mmol/L Tris−HCl(pH7.2)
容量:30mL/ボトル
(d)標識抗MxAタンパク質抗体
実施例1[4]に記載の方法にしたがって調製したPOD標識抗MxAタンパク質モノクローナル抗体KM1124。測定時に標識化抗体希釈液で希釈して使用。
(e)標識化抗体希釈液
組成:PBS(pH7.5)
容量:11mL/ボトル
(f)発色基質液
組成:TMBlue(セロロジカル社製)
容量:11mL/ボトル
(g)反応停止液
組成:0.5mol/L硫酸
容量:11mL/ボトル
(h)洗浄液原液
組成:0.5%ツイーン20、1.5mol/L塩化ナトリウムを含有する10mmol/Lリン酸緩衝液(pH7.2)
容量:100mL/ボトル
使用時に蒸留水で10倍に希釈して使用する。
(i)標準物質
実施例1[2]で調製したMxAタンパク質溶液を、緩衝液[150mmol/L塩化ナトリウム、0.1%BSA、50mmol/L Tris−HCl、pH7.2]で1μg/mLに調製した溶液
MxA protein measurement kit A reagent kit for enzyme immunoassay of MxA protein comprising the following reagents was prepared.
(A) One anti-MxA protein antibody-immobilized plate In accordance with the method described in Example 1 [3], 5 μg / mL anti-MxA protein monoclonal antibody KM1135 in PBS (pH 7.5) was added in an amount of 50 μL / well. A 96-well microtiter plate, which was dispensed with and fixed, blocked with 25% Block Ace and dried.
(B) Hemocytolysis buffer Composition: 50 mmol / L Tris buffer (pH 7.2) containing 1% nonidet P40
Volume: 10 mL / bottle (c) Specimen diluent Composition: 5% Raji cell lysate (prepared according to the method described in Example 1 [2]), 150 mmol / L sodium chloride, 0.1% BSA, 50 mmol / L Tris-HCl (pH 7.2)
Volume: 30 mL / bottle (d) Labeled anti-MxA protein antibody POD-labeled anti-MxA protein monoclonal antibody KM1124 prepared according to the method described in Example 1 [4]. Dilute with labeled antibody diluent at the time of measurement.
(E) Labeled antibody diluent Composition: PBS (pH 7.5)
Capacity: 11 mL / bottle (f) Coloring substrate solution Composition: TMBlue (manufactured by Serological)
Capacity: 11 mL / bottle (g) Reaction stop solution Composition: 0.5 mol / L sulfuric acid Volume: 11 mL / bottle (h) Washing solution stock composition: 0.5% Tween 20, 10 mmol / 1.5 mol / L containing sodium chloride L phosphate buffer (pH 7.2)
Capacity: 100 mL / bottle Use 10 times diluted with distilled water when using.
(I) Standard substance MxA protein solution prepared in Example 1 [2] was adjusted to 1 μg / mL with a buffer [150 mmol / L sodium chloride, 0.1% BSA, 50 mmol / L Tris-HCl, pH 7.2]. Prepared solution

PAP測定における細胞溶解物によるヘモグロビンの影響の抑制
PAPの測定に対するヘモグロビンの影響を、細胞溶解物で抑制できるかどうかを、PAPのELISAキットであるPAP測定キット[ディナビオ(Dynabio)社製]を用いて検討した。
実施例1[6]で調製したRaji細胞の細胞溶解物を蛋白質濃度0(検体希釈液のみ)、17.9、35.8μg/mLになるよう、PAP測定キットに含まれる検体希釈液に添加した。ついで、これらの検体希釈液に実施例1[7]で調製したヘモグロビン溶液をヘモグロビン濃度0.469、0.938、1.88、3.75、7.5、15mg/mLになるよう添加した。これらのヘモグロビン溶液を添加した各検体希釈液およびヘモグロビン溶液を添加しない検体希釈液それぞれに、PAP測定キットに含まれるリコンビナント膵PAP抗原を1ng/mLになるように添加したものを測定試料とし、PAP測定キットを用いて、測定試料中のPAPの測定をおこなった。測定方法は、キットに添付されたマニュアルに従い、以下のように行った。
Suppression of the influence of hemoglobin by cell lysate in PAP measurement Using a PAP ELISA kit [manufactured by Dynabio], a PAP ELISA kit is used to determine whether the influence of hemoglobin on PAP measurement can be suppressed by cell lysate. And examined.
The cell lysate of Raji cells prepared in Example 1 [6] was added to the sample dilution solution contained in the PAP measurement kit so that the protein concentration was 0 (sample dilution solution only), 17.9, 35.8 μg / mL. did. Subsequently, the hemoglobin solution prepared in Example 1 [7] was added to these specimen dilutions so that the hemoglobin concentrations were 0.469, 0.938, 1.88, 3.75, 7.5, and 15 mg / mL. . A sample obtained by adding the recombinant pancreatic PAP antigen contained in the PAP measurement kit so as to be 1 ng / mL to each sample dilution solution to which these hemoglobin solutions were added and each sample dilution solution to which no hemoglobin solution was added was used as a measurement sample. Using the measurement kit, PAP in the measurement sample was measured. The measurement method was performed as follows according to the manual attached to the kit.

キットの抗PAP抗体固定化96ウェルプレートのウェルに各測定試料および標準物質溶液をそれぞれ100μL添加し、室温で3時間インキュベートして、抗体に試料中のPAPを結合させた。ウェルの溶液を除去した後、洗浄液を400μL添加して除去する洗浄操作を5回行った。次いで、ウェルにビオチン標識抗PAP抗体を添加して、室温で30分間インキュベーションした。ウェルの溶液を除去し、上記と同様に5回洗浄した。ウェルにアビジン−POD溶液を100μL添加し、室温で15分間インキュベーションした。ウェルの溶液を除去し、上記と同様に5回洗浄した。キットのTMB(テトラメチルベンジジン)溶液と過酸化水素溶液を混合して発色試薬を調製し、ウェルに100μL添加した。暗所で10〜15分間インキュベーションした後、キットのオルトリン酸溶液を100μL添加して発色反応を停止させた。波長450nmの吸光度をプレートリーダーで測定した。結果を図6に示した。   100 μL of each measurement sample and standard solution was added to the wells of the anti-PAP antibody-immobilized 96-well plate of the kit, and incubated at room temperature for 3 hours to bind the PAP in the sample to the antibody. After removing the well solution, a washing operation for removing 400 μL of the washing solution was performed five times. Next, biotin-labeled anti-PAP antibody was added to the wells and incubated at room temperature for 30 minutes. The well solution was removed and washed 5 times as above. 100 μL of avidin-POD solution was added to the wells and incubated at room temperature for 15 minutes. The well solution was removed and washed 5 times as above. A coloring reagent was prepared by mixing the TMB (tetramethylbenzidine) solution of the kit and a hydrogen peroxide solution, and 100 μL was added to the well. After incubation in the dark for 10 to 15 minutes, 100 μL of the kit's orthophosphoric acid solution was added to stop the color reaction. Absorbance at a wavelength of 450 nm was measured with a plate reader. The results are shown in FIG.

実施例1のMxAタンパク質のELISAと同様に、PAP測定においても、ヘモグロビンの濃度が増えるにつれて、測定値の低下がみられ、ヘモグロビンは測定値を低下させる影響を与えることが示された。測定試料に細胞溶解液を添加しない場合と比較して、細胞溶解液を添加した測定試料では、ヘモグロビンによる測定値の低下が抑制されており、PAPの免疫測定においても、細胞溶解液を添加することで、ヘモグロビンの影響を抑制できることが示された。   Similar to the MxA protein ELISA of Example 1, in the PAP measurement, the measurement value decreased as the hemoglobin concentration increased, indicating that hemoglobin has an effect of decreasing the measurement value. Compared to the case where the cell lysate is not added to the measurement sample, the measurement sample added with the cell lysate suppresses the decrease in the measured value due to hemoglobin, and the cell lysate is also added in the PAP immunoassay. It was shown that the influence of hemoglobin can be suppressed.

本発明により、臨床診断において有用な、ヘモグロビンの影響が抑制された、試料中の測定対象物の測定方法が提供される。該測定方法により、ヘモグロビンを含有する試料中の測定対象物を正確に測定することができる。   The present invention provides a method for measuring a measurement object in a sample, which is useful in clinical diagnosis and in which the influence of hemoglobin is suppressed. By this measurement method, the measurement object in the sample containing hemoglobin can be accurately measured.

各蛋白質濃度のRaji細胞の細胞溶解物を添加した場合の、MxAタンパク質測定におけるヘモグロビンの影響の抑制を示す。横軸はヘモグロビン添加濃度、縦軸はヘモグロビンを添加しない場合に対する吸光度の影響率を表す。The suppression of the influence of hemoglobin in MxA protein measurement when adding cell lysates of Raji cells at various protein concentrations is shown. The horizontal axis represents the concentration of hemoglobin added, and the vertical axis represents the influence rate of absorbance with respect to the case where no hemoglobin is added. 各蛋白質濃度のT98G細胞の細胞溶解物を添加した場合の、MxAタンパク質測定におけるヘモグロビンの影響の抑制を示す。横軸はヘモグロビン添加濃度、縦軸はヘモグロビンを添加しない場合に対する吸光度の影響率を表す。The suppression of the influence of hemoglobin in MxA protein measurement in the case of adding a cell lysate of T98G cells at each protein concentration is shown. The horizontal axis represents the concentration of hemoglobin added, and the vertical axis represents the influence rate of absorbance with respect to the case where no hemoglobin is added. 4種類の全血の検体に対し、インターフェロンαで刺激した場合としなかった場合それぞれのMxAタンパク質の濃度を測定した結果を示す。The result of having measured the density | concentration of each MxA protein with respect to the sample of four types of whole blood when not stimulating with interferon alpha is shown. MxAタンパク質陽性の全血の検体を、細胞溶解物を含む検体希釈液で希釈した場合のMxAタンパク質の測定結果を示す。The measurement result of MxA protein when the sample of whole blood positive for MxA protein is diluted with a sample diluent containing cell lysate is shown. MxAタンパク質陽性の全血の検体を細胞溶解物を含まない検体希釈液で希釈した場合のMxAタンパクの測定結果を示す。The measurement result of MxA protein when the sample of whole blood positive for MxA protein is diluted with a sample diluent not containing cell lysate is shown. 各蛋白質濃度のRaji細胞の細胞溶解物を添加した場合の、PAP測定におけるヘモグロビンの影響の抑制を示す。横軸はヘモグロビン添加濃度、縦軸はヘモグロビンを添加しない場合に対する吸光度の影響率を表す。The suppression of the influence of hemoglobin in PAP measurement when a cell lysate of Raji cells at each protein concentration is added is shown. The horizontal axis represents the concentration of hemoglobin added, and the vertical axis represents the influence rate of absorbance with respect to the case where no hemoglobin is added.

Claims (23)

試料中の測定対象物と該測定対象物に結合する抗体とを、試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させることを特徴とする、測定対象物の免疫測定方法。 A method for immunoassay of a measurement object, comprising reacting a measurement object in a sample and an antibody that binds to the measurement object in the presence of a cell lysate not derived from the sample. 免疫測定方法が、サンドイッチ法または競合法である請求項1に記載の方法。 The method according to claim 1, wherein the immunoassay method is a sandwich method or a competitive method. 試料中の測定対象物と(i)〜(iii)のいずれかとを、試料に 由来しない細胞溶解物の共存下で反応させることを特徴とする、測定対象物の免疫測定方法。
(i)該測定対象物に結合する第1の抗体、および、該測定対象物に結合する第2の抗体に標識が結合した標識化抗体、
(ii)競合物質に標識が結合した標識化競合物質、ならびに、該測定対象物および競合物質に結合する抗体、
(iii)競合物質、ならびに、該測定対象物および競合物質に結合し、かつ、標識が結合した標識化抗体。
A method for immunoassay of a measurement object, comprising reacting the measurement object in a sample with any one of (i) to (iii) in the presence of a cell lysate not derived from the sample.
(I) a labeled antibody in which a label is bound to a first antibody that binds to the measurement object, and a second antibody that binds to the measurement object;
(Ii) a labeled competitor with a label bound to the competitor, and an antibody that binds to the analyte and competitor,
(Iii) A competitive substance, and a labeled antibody that binds to the measurement target and the competitive substance and has a label bound thereto.
試料中の測定対象物と該測定対象物に結合する抗体とを試料に由来しない細胞溶解物の共存下で反応させることを特徴とする、測定対象物の免疫反応に及ぼすヘモグロビンの影響を抑制する方法。 Suppressing the influence of hemoglobin on the immune response of a measurement object, characterized by reacting the measurement object in a sample with an antibody that binds to the measurement object in the presence of a cell lysate not derived from the sample Method. 試料が、全血である請求項1〜4のいずれかに記載の方法。 The method according to any one of claims 1 to 4, wherein the sample is whole blood. 全血が、血球を溶解させた全血である請求項5に記載の方法。 6. The method according to claim 5, wherein the whole blood is whole blood in which blood cells are lysed. 血球を溶解させた全血が、血球を界面活性剤により溶解させた全血である請求項6に記載の方法。 The method according to claim 6, wherein the whole blood in which blood cells are dissolved is whole blood in which blood cells are dissolved with a surfactant. 細胞溶解物が、動物細胞の細胞溶解物である請求項1〜7のいずれかに記載の方法。 The method according to any one of claims 1 to 7, wherein the cell lysate is a cell lysate of animal cells. 動物細胞が、動物の株化細胞である請求項8に記載の方法。 The method according to claim 8, wherein the animal cell is an animal cell line. 動物の株化細胞が、Raji細胞またはT98G細胞である請求項9に記載の方法。 The method according to claim 9, wherein the animal cell line is a Raji cell or a T98G cell. 測定対象物が、MxAタンパク質またはパンクレアティティス・アソシエーテド・プロテインである請求項1〜10のいずれかに記載の方法。 The method according to any one of claims 1 to 10, wherein the object to be measured is MxA protein or Pancreatitis associated protein. 細胞溶解物を含有することを特徴とする、測定対象物と該測定対象物に結合する抗体との反応に及ぼすヘモグロビンの影響の抑制試薬。 A reagent for suppressing the influence of hemoglobin on the reaction between a measurement object and an antibody that binds to the measurement object, comprising a cell lysate. 細胞溶解物を含有することを特徴とする、測定対象物の免疫測定試薬。 An immunoassay reagent for a measurement object, comprising a cell lysate. さらに、(i)〜(iii)のいずれかを含有する請求項13に記載の免疫測定試薬。
(i)測定対象物に結合する第1の抗体、および、測定対象物に結合する第2の抗体に標識が結合した標識化抗体、
(ii)競合物質に標識が結合した標識化競合物質、ならびに、測定対象物および競合物質に結合する抗体、
(iii)競合物質、ならびに、測定対象物および競合物質に結合する抗体に標識が結合した標識化抗体。
The immunoassay reagent according to claim 13, further comprising any one of (i) to (iii).
(I) a labeled antibody in which a label is bound to a first antibody that binds to a measurement object, and a second antibody that binds to the measurement object;
(Ii) a labeled competitor having a label bound to the competitor, and an antibody that binds to the analyte and the competitor,
(Iii) A labeled antibody in which a label is bound to a competitive substance, and an antibody that binds to an analyte and a competitive substance.
さらに、試料中の血球を溶解させるための試薬を含有する請求項13または14に記載の免疫測定試薬。 The immunoassay reagent according to claim 13 or 14, further comprising a reagent for dissolving blood cells in the sample. 血球を溶解させるための試薬が、界面活性剤である請求項15に記載の免疫測定試薬。 16. The immunoassay reagent according to claim 15, wherein the reagent for dissolving blood cells is a surfactant. 界面活性剤が、非イオン性界面活性剤である請求項16に記載の免疫測定試薬。 The immunoassay reagent according to claim 16, wherein the surfactant is a nonionic surfactant. 非イオン性界面活性剤が、ポリオキシエチレン系界面活性剤である請求項17に記載の免疫測定試薬。 The immunoassay reagent according to claim 17, wherein the nonionic surfactant is a polyoxyethylene surfactant. ポリオキシエチレン系界面活性剤が、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテルである請求項18に記載の免疫測定試薬。 The immunoassay reagent according to claim 18, wherein the polyoxyethylene surfactant is polyoxyethylene alkylphenyl ether. 細胞溶解物が、動物細胞の細胞溶解物である請求項12〜19のいずれかに記載の試薬。 The reagent according to any one of claims 12 to 19, wherein the cell lysate is a cell lysate of animal cells. 動物細胞が、動物の株化細胞である請求項20に記載の試薬。 The reagent according to claim 20, wherein the animal cell is an animal cell line. 動物の株化細胞が、Raji細胞またはT98G細胞である請求項21に記載の試薬。 The reagent according to claim 21, wherein the animal cell line is a Raji cell or a T98G cell. 測定対象物が、MxAタンパク質またはパンクレアティティス・アソシエーテド・プロテインである請求項12〜22のいずれかに記載の試薬。 The reagent according to any one of claims 12 to 22, wherein the object to be measured is MxA protein or Pancreatitis associated protein.
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