JP2003534006A - ヒト循環樹状細胞組成物および方法 - Google Patents

ヒト循環樹状細胞組成物および方法

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ユ シュエン，
ファン−ヤオ ホウ，
ジェイムズ ジー． ベンダー，
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ネクセル セラピューティックス インコーポレイティド
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Abstract

(57)【要約】 本発明に従って、ヒト血中白血球組成物の、Ｂ細胞、Ｔ細胞および単球を枯渇させることより、治療用途のためのヒト循環樹状細胞（ｃｉｒＤＣ）を産生する方法が提供される。本発明に従って、治療用途のためのｃｉｒＤＣを含む組成物もまた提供される。この方法は、それが、閉じた流路系における実施に受け入れられ、そしてそのように生成されたｃｉｒＤＣが、種々の治療適用における使用のために十分な数および質である点で、有利である。

Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】 （発明の背景） 本発明は、一般に、造血細胞に関し、そしてより詳細には、治療的使用のため
のヒト循環樹状細胞を生成する方法に関する。
【０００２】 樹状細胞（ＤＣ）は、自己分子および外来分子（抗原）の両方を免疫系に提示
することに特化された白血球である。樹状細胞による抗原の取り込み、プロセシ
ングおよび提示は、Ｔリンパ球を、その抗原を発現する細胞を認識し、そしてそ
の細胞に対する効果的な免疫学的攻撃をマウントするよう活性化し得る。
【０００３】 樹状細胞に固有に関連する単一の表面マーカーは存在しないが、ＤＣは、主要
組織適合性抗原の高発現と組み合わせて、Ｂ細胞、Ｔ細胞、単球、ＮＫ細胞に関
連する表面マーカープロフィールの発現のその欠失によって、他の造血細胞から
区別され得る。樹状細胞はまた、他の造血細胞型の効力の約１００倍の効力でイ
ンビトロにて混合リンパ球反応を刺激するその能力によって、他の造血細胞から
区別され得る。
【０００４】 免疫応答を調節する樹状細胞の能力は、ＤＣが感染性疾患および癌の処置にお
いて治療的に使用されるのを可能にする。免疫療法の現在の１つの形態において
、ＤＣは、感染性因子または腫瘍細胞に関連する抗原を用いてエキソビボでパル
スされ、抗原をパルスされた樹状細胞を作製する。この抗原をパルスされたＤＣ
は、体内に再導入され、病原性の細胞を認識しそして攻撃するようインビボにて
Ｔリンパ球を刺激し得る。抗原をパルスされた樹状細胞はまた、共存培養におい
て多くのＴリンパ球をエキソビボでプライムするために使用され得、そして抗原
特異的活性化Ｔ細胞は、患者に再導入され、疾患と闘い得る。
【０００５】 免疫療法手順における使用のためのヒト樹状細胞は、樹状細胞への樹状前駆細
胞の増殖および分化を促進するために、造血増殖因子または他の添加剤の存在下
で、エキソビボにて末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を培養することによって生成さ
れている（例えば、ＷＯ９８／０６８２３およびＷＯ９８／０６８２６を参照の
こと）。このような手順は、臨床的に関連する多くの樹状細胞を生成するが、骨
の折れる、時間のかかるものである。なぜなら、樹状細胞のエキソビボ成熟は、
何日間も細胞を培養することを必要とするからである。また、培養手順によって
得られるＤＣが、インビボで成熟された樹状細胞と同一の機能的、形態学的およ
び表現型的特徴を有するか否かは、明らかではない。
【０００６】 樹状細胞は、リンパ系器官、皮膚、および循環中の血液を含む、種々の組織に
おいて少数で存在する。血液は、樹状細胞の最も簡便な供給源であるが、ＤＣは
、血液中のリンパ球の約１％しか構成せず、このことが、治療目的のための十分
な数の良質の血液樹状細胞（ｃｉｒＤＣ）を得ることを困難にしている。
【０００７】 研究適用のためにｃｉｒＤＣを富化するいくつかの方法が、記載されている。
例えば、Ｒｏｂｉｎｓｏｎら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２９：２７６９−
２７７８（１９９９）は、バフィコートを、段階的なＦＩＣＯＬＬ勾配またはＰ
ＲＥＣＯＬＬ勾配を通す連続的な密度勾配遠心分離に供し、その後、ＣＤ３抗体
、ＣＤ１４抗体、ＣＤ２０抗体およびＣＤ１６抗体を使用する、Ｂ細胞、Ｔ細胞
、単球およびＮＫ細胞の集団の免疫磁気的枯渇を行うことを記載する。Ｋｏｈｒ
ｇｒｕｂｅｒら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６３：３２５０−３２５９（１９９９
）は、アフェレーシス生成物のＦＩＣＯＬＬ分離、その後の細片および小さいリ
ンパ球を除去するための向流溶離（ｃｏｕｎｔｅｒｆｌｏｗ ｅｌｕｔｒｉａｔ
ｉｏｎ）を記載する。プールされた溶離画分は、抗ＣＤ３抗体、抗ＣＤ１１ｂ抗
体、抗ＣＤ１６抗体、抗ＣＤ１９抗体、抗ＣＤ３４抗体および抗ＣＤ５６抗体の
混液を使用して、Ｔ細胞、Ｂ細胞、ＮＫ細胞、造血幹細胞および単球を免疫磁気
的に枯渇される。
【０００８】 Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ（Ｇｌａｄｂａｃｈ、Ｇｅｒｍａｎｙ）は、
研究適用のためのｃｉｒＤＣを生成するために適切な、血液樹状細胞単離キット
を販売する。この方法は、枯渇カラム上での保持によるＴ細胞、単球およびＮＫ
細胞の磁気的枯渇、その後のＣＤ４マイクロビーズを使用するＣＤ４＋血液樹状
細胞の陽性選択を含む。ＣＤ４抗体を用いる最後の陽性選択工程は、ＩＦＮ−α
産生を減少し、そして細胞のアポトーシスまたはアネルギーを引き起こし得る（
６ｔｈ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｗｏｒｋｓｈｏｐ ｏｎ Ｌａｎｇｅｒ
ｈａｎｓ Ｃｅｌｌｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９９９）で提示された、Ｉｚａｇ
ｕｉｒｅら、Ａｂｓｔｒａｃｔ １０６）。
【０００９】 複数の密度勾配遠心分離工程を含む細胞分離手順は、労働集約的であり、時間
消費的であり、十分に効果的でなく、そして十分に再現可能でないものであり得
る。密度勾配手順はまた、操作中の物理的外傷に起因するか、または勾配溶液自
体への長期の曝露に起因する、ＤＣの機能的変化をもたらし得る。さらに、治療
目的のためのｃｉｒＤＣを生成するために使用される密度勾配手順は、自動化す
るのが困難であり得、そしてまた、閉じた流路系において実行することも困難で
あり得る。閉じた流路系におけるｃｉｒＤＣの調製は、細胞が環境中の混入物に
曝されず、そして操作者が細胞組成物に存在するいかなる感染性因子にも曝され
ない点で、臨床的適用に最適である。
【００１０】 陽性選択工程を必要とする樹状細胞単離のための手順はまた、ＤＣを選択また
は選別するために使用される抗体または結合因子が、それらの細胞を活性化し得
るか、またはさもなければ、それらの細胞の機能的特性を変更し得るという点で
、不利である。さらに、結合因子の不完全な除去は、ヒトへの細胞の投与の際に
有害な免疫学的反応を生じ得る。
【００１１】 さらに、陽性選択方法は、その選択手順において使用される特定の細胞表面マ
ーカーを発現するＤＣのみの単離を生じる。しかし、現在、血液中にはｃｉｒＤ
Ｃの少なくとも２つの異なる集団が存在し、これらが、細胞表面マーカーの発現
において量的および質的に異なることが理解されている。従って、現在の陽性選
択方法によって得られたｃｉｒＤＣは、インビボでのｃｉｒＤＣ集団を完全に表
さないかもしれない。
【００１２】 陰性選択によってｃｉｒＤＣを生成するために現在使用される手順は、抗体の
混液を必要とし、混液は、通常、Ｔ細胞、Ｂ細胞、単球、ＮＫ細胞、および他の
前駆細胞と反応性の抗体を含む。より少ない抗体を使用して治療目的に十分な収
率、純度および質のｃｉｒＤＣを生成するための効果的な手順は、記載されてい
ない。より簡単な手順が、試薬、時間および労働力の節約に有利である。
【００１３】 従って、治療適用における使用ために血液から良質の樹状細胞を生成するため
の、迅速で、簡単で、そして再現可能な方法の必要性が存在する。好ましくは、
この方法は、密度勾配精製および陽性選択工程を回避する。理想的には、その方
法全体が、完全に自動化された、閉じた流路系において実施され得る。本発明は
、この必要性を満足し、そして関連する利点もまた提供する。
【００１４】 （発明の要旨） 本発明に従って、治療的使用のためのヒト循環樹状細胞（ｃｉｒＤＣ）を生成
するための方法が提供され、この方法は、Ｂ細胞、Ｔ細胞および単球のヒト血液
リンパ球組成物を枯渇することによる。この方法は、それが、閉じた流路系にお
ける実施に受け入れられ、そしてそのように生成されたｃｉｒＤＣが、種々の治
療適用における使用のために十分な数および質である点で、有利である。
【００１５】 治療的使用のためのｃｉｒＤＣを含む組成物もまた、提供される。これらの組
成物は、有利な免疫応答を誘導または増強するため、または病原性の免疫応答を
抑制するために、患者に有利に投与され得る。
【００１６】 （発明の詳細な説明） 本発明は、治療的使用のためのヒト循環樹状細胞（ｃｉｒＤＣ）を生成するた
めの方法を提供し、この方法は、Ｂ細胞、Ｔ細胞および単球の血中白血球組成物
を枯渇する工程を包含する。この方法は、それが、血液中の樹状細胞を表す多く
の良質のｃｉｒＤＣを簡単かつ迅速に生成するために使用され得るという点で、
有利である。この方法はまた、密度勾配遠心分離および陽性選択工程（これらは
、ｃｉｒＤＣの機能的特性を変更し得るかまたはヒトへの投与の際に有害な影響
を生じ得る）が回避され得るという点で有利である。さらに、この方法は、完全
に自動化され得、そして閉じた流路系において実施され得、その結果、操作者は
、細胞組成物中に存在する感染性因子に曝されず、そして細胞は、環境中の混入
物に曝されない。
【００１７】 本明細書中で使用される場合、用語「循環樹状細胞」または「ｃｉｒＤＣ」と
は、ＣＤ１４−およびＨＬＡ−ＤＲ＋として表現型的に特徴付けられる血液から
得られる白血球をいう。ｃｉｒＤＣは、陰性系統（ｌｉｎｅａｇｅ ｎｅｇａｔ
ｉｖｅ）（ｌｉｎ−）としてさらに特徴付けられ得、これは、ｃｉｒＤＣが、Ｔ
細胞、Ｂ細胞、単球、ＮＫ細胞および造血前駆細胞の特徴であると当該分野で考
えられている表面抗原を発現しないことを示す。従って、ｌｉｎ−であるｃｉｒ
ＤＣは、例えば、ＣＤ３−、ＣＤ１９−、ＣＤ１４−、ＣＤ１６−およびＣＤ３
４−として特徴付けられ得る。本開示を通して使用される表面抗原の名称は、Ｗ
ｏｒｌｄ Ｗｉｄｅ Ｗｅｂ上で入手可能なＰｒｏｔｅｉｎ Ｒｅｖｉｅｗｓ
ｏｎ ｔｈｅ Ｗｅｂ（ＰＲＯＷ）データベースに示される専門用語と一致する
。
【００１８】 本開示を通じてであるが、細胞表面マーカー（例えば、ＣＤ１４抗原など）に
関して言及する場合、用語「＋」とは、免疫学的分野において用いた標準的表現
型決定手順（例えば、ＦＡＣＳ分析、免疫蛍光、または免疫組織化学）によって
評価した場合、この細胞が、陽性コントロール細胞と同様のレベルで、挙げられ
たマーカーを発現することを示すことを意図する。用語「−」は、同じ条件下で
、この細胞が、陰性コントロール細胞と同様のレベルで、挙げられたマーカーを
発現することを示す。ＣＤ３、ＣＤ２０、ＣＤ１４、ＣＤ１１ｃ、またはＨＬＡ
−ＤＲについて、細胞が、「＋」であるか、「−」であるかを決定する代表的な
方法は、以下の実施例１に示している。本明細書に挙げた血球表面マーカー（表
現型決定法（ｐｈｅｎｏｔｙｐｉｎｇ）に適切である）に対する抗体は、市販さ
れている。
【００１９】 血液中には、β２インテグリンＣＤ１１ｃの異なる発現によって特徴づけられ
るように、表現型が異なりかつ機能的に異なる２つの樹状細胞集団が存在すると
現在考えられている。これらの２つのサブセットは、血中の樹状細胞の成熟の異
なる段階を反映し得るか、あるいは異なる細胞系列を反映し得る。
【００２０】 ＣＤ１１ｃ＋ｃｉｒＤＣおよびＣＤ１１ｃ−ｃｉｒＤＣは、特定の機能的、表
現型的、および形態学的差異を示すことが報告されている。例えば、ＣＤ１１ｃ
＋ｃｉｒＤＣは、同種異型のＴ細胞増殖に対して、ＣＤ１１ｃ−ｃｉｒＤＣより
も強力な刺激因子であり得、そしてＣＤ１ｃ−細胞よりも効率的に粒子または可
溶性抗原をエンドサイトーシスし得る（例えば、Ｒｏｂｉｎｓｏｎら、Ｅｕｒ．
Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２９：２７６９〜２７７８（１９９９）；Ｋｏｈｒｇｒｕ
ｂｅｒら．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６３：３２５０〜３２５９（１９９９）；
Ｐｕｌｅｎｄｒａｎら、Ｂｌｏｏｄ ９４：２１３ａ（１９９９）を参照のこと
）。さらに、ＣＤ１１ｃ＋ＤＣは、Ｔｈ１サイトカインを優先的に誘発し得るが
、ＣＤ１１ｃ−ＤＣは、Ｔｈ２サイトカインを優先的に誘発し得る（Ｐｕｌｅｎ
ｄｒａｎら、前出、（１９９９））。
【００２１】 表現型的に、Ｃｄ１１ｃ＋ｃｉｒＤＣは、特定の骨髄マーカー（例えば、ＣＤ
１３、ＣＤ３３、ＣＤ３２、ＣＬＡ、またはＣＤ１１ｂ）の発現によって特徴付
けられ得る。これらの骨髄マーカーは、ＣＤ１１ｃ−ｃｉｒＤＣによっては、発
現されないか、または低レベルでのみ発現される。さらに、ＨＬＡ−ＤＲ、ＣＤ
４０、ＣＤ８０、またはＣＤ８６は、ＣＤ１１ｃ−ｃｉｒＤＣによりもＣＤ１１
ｃ＋ｃｉｒＤＣによってより高レベルで発現され得る。ＣＤ１１ｃ＋ｃｉｒＤＣ
およびＣＤ１１ｃ−ｃｉｒＤＣは両方とも、ＣＤ１２３（インターロイキン３レ
セプター）、およびＣＤ６２Ｌ（Ｌセレクチンのリガンド）およびＣＤ４を発現
し得るが、ＣＤ１１ｃ−は、これらの分子をさらに高レベルで発現し得る。ＣＤ
１１ｃ−ｃｉｒＤＣ集団はまた、ＣＤ１１ｃ＋ｃｉｒＤＣ集団よりもかなり高レ
ベルでＣＤ４５ＲＡを発現し得る（たとえば、Ｒｏｂｉｎｓｏｎら、前出（１９
９９）；Ｐｕｌｅｎｄｒａｎら、前出（１９９９）を参照のこと）。
【００２２】 形態学的に、ＣＤ１１ｃ＋ｃｉｒＤＣは、光学顕微鏡で、不規則な外観および
高度に分葉した核を示すことで、そして電子顕微鏡によって、突出した細胞質突
起および突出した小胞体（ＥＲ）の欠失を示すことによって、特徴付けられ得る
。対照的に、ＣＤ１１ｃ−ｃｉｒＤＣは、丸い形状を有し、これは光学顕微鏡に
よって、長円またはギザギザの核および核周囲の薄いゾーンを伴い、そして電子
顕微鏡によって、わずかな細胞質突起および突出した小胞体（ＥＲ）を有した（
例えば、Ｒｏｂｉｎｓｏｎら、前出、（１９９９）を参照のこと）。これらの２
つの細胞型のさらなる形態学的特徴は、Ｋｏｈｒｇｒｕｂｅｒら（前出）（１９
９９）に記載されている。
【００２３】 本発明の方法は、治療用途のためのヒト循環樹状細胞を生成する。本明細書に
おいて用いる場合、句「治療用途のため（ｆｏｒ ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ ｕ
ｓｅ）」とは、ｃｉｒＤＣが、ヒトへの投与に適した形態かつ量であることをい
う。従って、治療用途のためのｃｉｒＤＣは、ｃｉｒＤＣを投与されたヒトにお
いて可能性として有害な免疫学的反応を生じ得る物質とは接触されない。治療用
途のためのｃｉｒＤＣはまた、所望の治療目的についてその有効性を可能性とし
て減弱し得る物質または操作に対してエキソビボで曝露されていない。
【００２４】 １つの実施形態において、治療用途のためのｃｉｒＤＣは、ポジティブ選択ま
たはソーティング（分別）工程を包含する当該分野で公知の富化方法によって得
られたｃｉｒＤＣ上に存在し得る結合因子（例えば、抗体）と接触されていない
。ポジティブ選択法によって生成したｃｉｒＤＣは、一般に結合因子と接触して
おり、ビーズもしくはカラムのような固体支持体上に捕獲され、次にこの固体支
持体から遊離されるか、または蛍光標示式細胞分取器（ＦＡＣＳ）のような手順
によって、所望されない細胞と分離されるかのいずれかである。結合因子それ自
体、または細胞からのこの結合因子の除去の方法によって、ｃｉｒＤＣの機能を
変更するか、または生存度を減少させ得る。この結合因子が、効果的に除去され
ない場合、この残りの因子は、可能性としては、ヒトへの投与の際に、有害な免
疫学的応答を生じ得る。結合因子と接触されていない、治療用途のためのｃｉｒ
ＤＣは、これらの不利な点を被らない。
【００２５】 別の実施形態において、治療用途のためのｃｉｒＤＣは、この細胞の洗浄後で
さえ、エキソビボで培養された樹状細胞に存在し得る培養試薬（例えば、血清、
非ヒト動物タンパク質、増殖因子、または他の添加物）と接触していない。培養
試薬と接触していないｃｉｒＤＣは、可能性として血清（特に複数のドナーから
プールしたヒト血清）中に存在する感染性因子（例えば、プリオンまたはウイル
ス）に曝露されていないという点において、有利である。さらに、このようなｃ
ｉｒＤＣは、ｃｉｒＤＣを刺激し得るか、またはヒトへの投与の際、有害な免疫
学的応答を引き起こし得る、動物タンパク質または他の物質と接触されていない
という点で有利である。さらに、培養試薬と接触していないｃｉｒＤＣは、エキ
ソビボ（ｃｉｒＤＣが血中に存在する場合のｃｉｒＤＣの特性と比べて、ｃｉｒ
ＤＣの機能的特性を可能性として変更し得る）で増殖されても分化されてもいな
いという点で、培養されたｃｉｒＤＣとは異なり得る。
【００２６】 さらなる実施形態において、治療用途のためのｃｉｒＤＣは、閉鎖式の流体通
過システムで生成される。このようなシステムにおいて、ｃｉｒＤＣは、細胞の
容器の頻繁な開口を包含する方法において生じる、可能性のある環境的汚染物質
（例えば、ウイルスまたは微生物）にも、可能性のある有害な環境条件（例えば
、環境ガスの変化）にも曝露されていない。本明細書において用いる場合、用語
「閉鎖式流体通路システム（ｃｌｏｓｅｄ ｆｌｕｉｄ ｐａｔｈ ｓｙｓｔｅ
ｍ）」とは、環境に対して閉鎖されている成分のアセンブリをいう。好ましくは
、閉鎖式流体通路システムは、いくつかの細胞容器を備える。これらの各々は、
無菌接続配管を介して、この容器間、ならびにこの容器内およびこの容器外への
細胞の無菌的移動を達成するために１つ以上の無菌接続ポートを備えている。
【００２７】 治療用途のためのｃｉｒＤＣを生成するための代表的な閉鎖式流体通路システ
ムは、ＩＳＯＬＥＸ ３００ｉ Ｍａｇｎｅｔｉｃ Ｃｅｌｌ Ｓｅｌｅｃｔｉ
ｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｎｅｘｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ Ｉｎｃ．，Ｉ
ｒｖｉｎｅ，ＣＡ）であり、これを用いて、以下にさらに記載するように、白血
球である、Ｂ細胞、Ｔ細胞および単球を枯渇させ得る。
【００２８】 好ましくは、この個体から血液を得る工程から、個体に治療用組成物を注入す
る工程までの全ての工程は、閉鎖式流体通路システムで実行する。例えば、個体
からの末梢血を回収して、ＣＳ３０００セルセパレーター（Ｆｅｎｗａｌ Ｄｉ
ｖｉｓｉｏｎ，Ｂａｘｔｅｒ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、Ｄｅｅｒｆｉｅｌｄ，Ｉ
ｌｌ．）のような自動血球分離器を用いて分離し得る。この装置は、ＩＳＯＬＥ
Ｘ ３００ｉに無菌的に接続できる。所望の場合、分析用無菌接続ポートを通じ
て、この容器システムから、任意の段階の細胞サンプルを無菌的に吸引すること
ができる。ｃｉｒＤＣの抗原パルスを包含する方法において、滅菌接続ポートを
通じて閉鎖式流体通路システムに、抗原を無菌的に添加し得る。抗原パルスした
ｃｉｒＤＣとＴ細胞との同時培養を包含する方法において、ＰＣＴ ＵＳ９５／
１３９４３に記載のＰＬ２４１７培養バッグ（Ｂａｘｔｅｒ Ｉｍｍｕｎｏｔｈ
ｅｒａｐｙ，Ｒｏｕｎｄ Ｌａｋｅ，ＩＬ）のような閉鎖式培養容器を、この閉
鎖式流体通路システムに無菌的に接続し得る。最終的に、ＰＬＡＳＭＡ−ＬＹＴ
Ｅ Ａ（Ｂａｘｔｅｒ ＩＶ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｒｏｕｎｄ Ｌａｋｅ，ＩＬ）
のような注入可能培地へのｃｉｒＤＣまたは抗原特異的Ｔ細胞の濃縮は、閉鎖式
流体通路システムで実行することができ、そしてこの濃縮細胞を、この細胞を環
境に曝すことなく、患者の静脈ラインを通じて直接注入し得る。
【００２９】 本発明の方法は、まず、ヒト由来の白血球組成物を得る工程を包含する。本明
細書において用いる場合、用語「白血球組成物（ｂｌｏｏｄ ｌｅｕｋｏｃｙｔ
ｅ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ）」とは、全血と比べて、実質的に白血球（ｌｅｕ
ｋｏｃｙｔｅ）（ｗｈｉｔｅ ｂｌｏｏｄ ｃｅｌｌ）が富化されている血液か
ら（例えば、末梢血、または臍帯血から）得た細胞を含む組成物をいう。正常な
成体ヒト血液の細胞組成物は、約０．１％白血球、約５％血小板、および約９５
％赤血球である。好ましくは、白血球組成物は、赤血球を実質的に含まない。よ
り好ましくは、白血球組成物はまた、血小板を実質的に含まない。従って、１つ
の実施形態において、本発明の方法において用いる白血球組成物は、細胞性組成
物であり、その細胞の少なくとも約７０％（例えば、少なくとも約８０％、８５
％、９０％、９５％、９８％またはそれ以上）が白血球である。
【００３０】 血中白血球は、単核細胞（リンパ球、単球、幹細胞および前駆細胞、ならびに
ｃｉｒＤＣを含む）および顆粒球（好中球、好酸球、および好塩基球を含む）か
らなる。顆粒球は通常、約６０〜７０％の白血球を含む。好ましくは、出発白血
球組成物は、実質的に顆粒球細胞を含まない。従って、１つの実施形態において
、本発明の方法において用いる白血球組成物は、細胞性組成物であり、その細胞
の少なくとも約７０％（例えば、少なくとも約８０％、８５％、９０％、９５％
、９８％またはそれ以上）が単核細胞である。
【００３１】 好ましくは、実質的に顆粒球を含まない多数の白血球を得るために、この白血
球組成物は、白血球搬出（ｌｅｕｋａｐｈｅｒｅｓｉｓ）産物である。白血球搬
出法（ｌｅｕｋａｐｈｅｒｅｓｉｓ）によって、Ｆｉｃｏｌｌ分離のような密度
勾配手順による細胞の潜在的な傷害および汚染を回避する。代表的な白血球搬出
手順においては、市販の血球セパレーターおよび単核細胞収集のための製造業者
の推奨する設定を用いて、数時間の経過にわたって、少なくとも１×１０９（例
えば、少なくとも５×１０９、または１×１０１０）の単核細胞（ＭＮＣ）を個
体から得ることができる。白血球搬出手順に適切な細胞セパレーターは当該分野
で周知であり、そしてこれには、例えば、Ｆｅｎｗａｌ ＣＳ ３０００セルセ
パレーター（Ｂａｘｔｅｒ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｃ，Ｄｅｅｒｆ
ｉｅｌｄ，Ｉｌｌ．）、Ｈａｅｍｏｎｅｔｉｃｓ ＭＣＳシステム（Ｈａｒｍｏ
ｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｒｐ．，Ｂｒａｉｎｔｒｅｅ，Ｍａｓｓ．）、またはＣＯＢ
Ｅ Ｓｐｅｃｔｒａ Ａｐｈｅｒｅｓｉｓ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｇａｍｂｒｏ ＢＣ
Ｔ）が挙げられる。
【００３２】 血中白血球組成物を調製する血液は、最終的な治療組成物の意図されるレシピ
エントから入手され得る。あるいは、血液は、ＨＬＡが一致したドナーから入手
され得る。特定の治療用途については、血液は、同種異系ドナーから入手され得
る。用語「ＨＬＡが一致した」ドナーとは、意図されるレシピエントと共通の、
７つの異なる主要組織適合遺伝子複合体（ＭＨＣ）タンパク質のうちのいくつか
または全てを、細胞表面上に発現する個体をいう。対照的に、用語「同種異系」
は、ドナーが、意図されるレシピエントと共通のＭＨＣタンパク質をほとんどま
たは全く発現しないことを示す。２つの個体がＨＬＡが一致しているか否かは、
抗体を用いる標準的な組織タイピング技術によって、または混合リンパ球反応（
ＭＬＲ）によって、決定され得る。
【００３３】 血液中の白血球の総数を増加させる手順、または血中白血球のうちのｃｉｒＤ
Ｃの数を選択的に増加させる手順は、本発明の方法によって得られる治療的用途
のためにｃｉｒＤＣの数を増加させるために有利に用いられ得る。血液中の白血
球の数を増加させる方法は、例えば、骨髄の造血幹細胞または造血前駆細胞から
の増殖、分化および／または動員を誘導する因子の投与を包含する。これらの機
構のうちのいずれかによる、血液中の白血球の数を増加させる因子は、本明細書
中で、「動員因子」と呼ばれる。動因因子としては、化学療法剤、照射およびサ
イトカインまたはこれらの因子の任意の組合せが挙げられる。動員因子は、正常
血液と比較して、血液中の白血球の数を少なくとも２倍（例えば、少なくとも５
倍（少なくとも１０倍を含む））増加させ得る。
【００３４】 血中白血球中で提示されるｃｉｒＤＣの数をさらに増加させる因子は、本明細
書中で「ｃｉｒＤＣ動員因子（ｃｉｒＤＣ ｍｏｂｉｌｉｚｉｎｇ ａｇｅｎｔ
）」と呼ばれる。ｃｉｒＤＣ動員因子は、正常な血中白血球と比較して、血中白
血球中のｃｉｒＤＣの数を少なくとも２倍（例えば、少なくとも５倍、１０倍、
２０倍、３０倍以上）増加させ得る。
【００３５】 血液中の白血球の数を増加させる際に有用な動員因子としては、単独または任
意の組合せの以下が挙げられる：Ｆｌｔ３レセプターについてのリガンド（ＦＬ
Ｔ３Ｌ）、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロ
ニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、幹細胞因子（ＳＣＦ）、マクロファージコロニ
ー刺激因子（Ｍ−ＣＳＦ）、インターロイキン（ＩＬ−１、ＩＬ−２、ＩＬ−３
、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−８、ＩＬ−９、ＩＬ−１０
、ＩＬ−１１、ＩＬ−１２、ＩＬ−１３、ＩＬ−１４、ＩＬ−１５）、白血病阻
害因子（ＬＩＦ）、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、血小板由来増殖因子（ＰＤ
ＧＦ）、上皮増殖因子（ＥＧＦ）、トランスフォーミング増殖因子β（ＴＧＦβ
）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、インターフェロン（ＩＦＮ−α、ＩＦＮβおよび
ＩＦＮ−γ）、ならびにこれらの分子のいずれかについてのレセプターのアゴニ
スト（例えば、ダニプレスティム（ｄａｎｉｐｌｅｓｔｉｍ）、プロゲニポエチ
ン（ｐｒｏｇｅｎｉｐｏｉｅｔｉｎ）（ＰｒｏＧＰ）およびミエロポエチン（ｍ
ｙｅｌｏｐｏｉｅｔｉｎ）（ＭＰＯ））。
【００３６】 本発明の方法において使用するために好ましい動員因子は、ｃｉｒＤＣ動員因
子である。ｃｉｒＤＣ動員因子としては例えば、ＦＬＴ３Ｌ、Ｇ−ＣＳＦ、ＧＭ
−ＣＳＦ、およびこれらのサイトカインについてのレセプターのアゴニスト（例
えば、Ｇ−ＣＳＦレセプターおよびｆｌｔ３レセプターの両方の二重レセプター
アゴニストである、プロゲニポイエチン）（ＰｒｏＧＰ））（Ｆｌｅｍｉｎｇら
，Ｂｌｏｏｄ ９４：４９ａ（１９９９））が挙げられる。特に好ましい動員因
子はＦＬＴ３Ｌであり、これは、米国特許第５，５５４，５１２号および同第５
，８４３，４２３号の主題である。前臨床研究では、ＦＬＴ３Ｌの投与は、１０
０μｇ／ｋｇ／日までの用量で１４日間にわたって安全であり、充分耐えられ、
そしてｃｉｒＤＣのレベルを３０倍まで上昇させることが示された（Ｌｅｂｓａ
ｃｋら，Ｂｌｏｏｄ ９０：１７０ａ（１９９７））。
【００３７】 １０μｇ／ｋｇ／日のＦＬＴ３Ｌの連続１０日間にわたる投与は、血液中の、
表現型的にＣＤ１１ｃ＋ＩＬ３Ｒ−であるｃｉｒＤＣを４８倍、そして表現型的
にＣＤ１１ｃ−ＩＬ３Ｒ＋であるｃｉｒＤＣを１３倍増加させることが示された
（Ｐｕｌｅｎｄｒａｎら，前出（１９９９）を参照のこと）。別の好ましい動員
因子はＧ−ＣＳＦである。１０μｇ／ｋｇ／日のＧ−ＣＳＦの連続５日間にわた
る投与は、表現型的にＣＤｌｌｃ−ＩＬ３Ｒ＋であるｃｉｒＤＣを７倍増加させ
ることが示された（Ｐｕｌｅｎｄｒａｎら，前出（１９９９）を参照のこと）。
【００３８】 本明細書中に記載される動員因子は、商業的供給源から組換え形態で入手され
得、そしてヒトでの投与のために充分な純度である。あるいは、動員因子は、そ
れらの核酸配列が公のデータベースから入手可能であり、そしてさらに全長配列
を含むプラスミドが市販されることを考慮して、当該分野で公知の方法によって
組換え的に調製され得る。サイトカインレセプターのアゴニストとして作用する
動員因子は、商業的に入手され得るか、既知のレセプター構造に基づいて合理的
に設計され得るか、または化合物ライブラリーをスクリーニングすることによっ
て入手され得る。
【００３９】 動員因子およびｃｉｒＤＣ動員因子の個体への適切な投薬量、投与スケジュー
ルおよび投与経路は、臨床医によって決定され得、そして特定の因子の生物活性
、ならびに個体の健康および体重のような因子に依存する。
【００４０】 ｃｉｒＤＣは、動員因子で処置されていない正常個体の血液中に約１％の単核
細胞を含み得る。従って、代表的に、白血球搬出手順において得られる１×１０９ 個のＭＮＣのうち、約１×１０７個がｃｉｒＤＣである。本発明の方法は、未
処置個体から得られる白血球搬出産物中に存在する少なくとも１０％（例えば、
少なくとも２０％、４０％、６０％、８０％、９０％以上）のｃｉｒＤＣの回収
をもたらし得る。従って、未処置個体において本発明の方法を用いて、少なくと
も１×１０６個のｃｉｒＤＣ（例えば、少なくとも１×１０６個、２×１０６個
、４×１０６個、６×１０６個、８×１０６個、９×１０６個以上のｃｉｒＤＣ
）を産生し得る。
【００４１】 動員因子が投与された個体から得たアフェレーシス産物は、少なくとも１×１
０１０個のＭＮＣ（例えば、少なくとも５×１０１０個のＭＮＣ）を含み得る。
従って、動員因子を投与した個体から得たアフェレーシス産物から出発して、約
１％のＭＮＣがｃｉｒＤＣであるとし、そして少なくとも１０％のｃｉｒＤＣの
回収率として、本発明の方法を用いて、治療的用途のために、少なくとも１×１
０７個のｃｉｒＤＣ（例えば、少なくとも５×１０７個のｃｉｒＤＣ、１×１０８ 個のｃｉｒＤＣまたは５×１０８個のｃｉｒＤＣ）を入手し得る。
【００４２】 ｃｉｒＤＣ動員因子を投与した個体から得られたアフェレーシス産物中のＭＮ
Ｃは、少なくとも２％（例えば、少なくとも５％、１０％、２０％、３０％以上
）のｃｉｒＤＣを含み得る。５×１０１０個のＭＮＣから出発して、そのうちの
５％がｃｉｒＤＣであり、４０％のｃｉｒＤＣの回収率で、本発明の方法によっ
て少なくとも１×１０９個のｃｉｒＤＣが容易に入手され得ることが明らかであ
る。アフェレーシス産物中のＭＮＣの出発数、ｃｉｒＤＣである百分率およびｃ
ｉｒＤＣの回収効率に依存して、治療的使用のための少なくとも２×１０９個（
例えば、５×１０９個、好ましくは１×１０１０個）のｃｉｒＤＣが本明細書中
に開示される方法によって入手され得る。
【００４３】 本発明の方法は、血中白血球組成物からＢ細胞、Ｔ細胞および単球を枯渇させ
ることによって実施される。本明細書中で使用される場合、用語「枯渇させる」
とは、ｃｉｒＤＣをまた血中白血球組成物から実質的に除去することなく、示さ
れる細胞型をこの組成物から実質的に除去する任意の手順をいう。
【００４４】 各細胞型の枯渇に関して用語「実質的に除去する」は、特定の細胞型の少なく
とも５０％以上（例えば、特定の細胞型の少なくとも７５％、８０％、９０％、
９５％または９７％（少なくとも９９％、９９．５％、９９．９％以上を含む）
）の除去を意味することが意図される。従って、Ｂ細胞、Ｔ細胞および単球を血
中白血球組成物から枯渇させることによって、残りの細胞は、ｃｉｒＤＣについ
て実質的に富化される。本明細書中で使用される場合、用語「実質的に富化され
る」は、この方法によって得られた細胞組成物が、治療的使用のための少なくと
も５０％、好ましくは少なくとも７０％、より好ましくは少なくとも８０％、９
５％、９７％、９９％以上のｃｉｒＤＣを含むことを意味することが意図される
。
【００４５】 Ｂ細胞（Ｂリンパ球とも呼ばれる）、Ｔ細胞（Ｔリンパ球とも呼ばれる）、単
球および他の造血細胞の機能的特徴、形態学的特徴および表現型的特徴は、当該
分野で周知であり、そして標準的な免疫学の教科書（例えば、Ｋｕｂｙ，Ｉｍｍ
ｕｎｏｌｏｇｙ第３版，Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９９７
））において概説される。本明細書中で使用する場合、用語「Ｔ細胞」とは、Ｃ
Ｄ３＋である白血球をいい、用語「Ｂ細胞」とは、ＣＤ２０＋である白血球をい
い、そして用語「単球」とは、ＣＤ１４＋である白血球をいう。これらの細胞は
また、特定の細胞型の機能的特徴および形態学的特徴を保有する。
【００４６】 特定の細胞型を枯渇させる好ましい方法は、所望の細胞を、細胞選択的結合因
子に結合し、その結果、複合体を形成し、そしてこの結合複合体を組成物から除
去する工程を含む。しかし、Ｂ細胞、Ｔ細胞または単球を枯渇させる他の方法は
、当該分野で公知であるか、または容易に決定され得る。このよな方法としては
例えば、以下が挙げられる：Ｔ細胞を枯渇するために用いられ得る、赤血球ロゼ
ット形成（好ましくは、ヒト赤血球を用いる）；Ｔ細胞、Ｂ細胞または単球を枯
渇するために用いられ得る、細胞のサイズ分離または密度分離（例えば、向流溶
出）；Ｔ細胞またはＢ細胞を枯渇するために用いられ得る、補体媒介細胞溶解（
例えば、ＣＡＭＰＡＴＨ抗体を用いる）；単球を枯渇するために用いられ得るプ
ラスチックへの付着；およびこれらの方法の組合せ。
【００４７】 本明細書中に記載される方法では、Ｂ細胞、Ｔ細胞および単球、ならびに必要
に応じて顆粒球は、任意の順番で、または任意の組合せで個々に枯渇され得る。
従って、Ｂ細胞、Ｔ細胞および単球、ならびに必要に応じて顆粒球は、順次また
は同時に枯渇され得る。
【００４８】 本明細書中で使用される場合、用語「細胞選択的結合因子」は、記載された造
血細胞の表面に存在し、かつｃｉｒＤＣの表面には実質的に存在しない分子に高
親和性で結合する分子である。細胞選択的結合因子は、示した細胞型に、ｃｉｒ
ＤＣ上よりも少なくとも１０倍高い（例えば、少なくとも１００倍高い（少なく
とも１０００倍高いを含む））レベルで存在する分子に結合する。表面分子が所
定の細胞によって発現されるか否かを決定する方法（これは、結合因子の選択を
導く）は、当該分野で周知であり、そして例えば、免疫蛍光、ＦＡＣＳ、放射免
疫アッセイ、免疫沈降、ｍＲＮＡ発現分析などを含む。
【００４９】 細胞選択的結合因子は、ｃｉｒＤＣにもかなりの程度まで結合するというので
はないならば、示された細胞型にのみ結合する必要はない。従って、細胞選択的
結合因子は、Ｂ細胞上およびＴ細胞上の両方にて見出される分子にも、または３
つすべての細胞型にて見出される分子にも、結合し得る。細胞選択的結合因子は
また、他の血球上にて見出される分子にも結合し得る。
【００５０】 好ましい細胞選択的結合因子は、血中白血球を活性化しない。白血球を活性化
する結合因子は、ｃｉｒＤＣの機能的特性を変更し得るサイトカインの産生を誘
導し得る。さらに、ｃｉｒＤＣとともに得られる活性化された残りの白血球は、
個体に投与された場合に有害な効果を引き起こし得る（例えば、Ｈｓｕら、Ｔｒ
ａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ ６８：５４５〜５５４（１９９９）；およびＲｉ
ｃｈａｒｄｓら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．５９：２０９６〜２１０１（１９９９
）を参照のこと）。
【００５１】 Ｂ細胞の表面上に存在する分子の例示的一覧は、以下である：ＣＤ１９、ＣＤ
２０、ＣＤ２１、ＣＤ２２、ＣＤ２３、ＣＤ２４、ＣＤ３７、ＣＤ４０、ＣＤｗ
７５、ＣＤ７６、Ｉｇ軽鎖κおよびλ、ならびにＩｇ重鎖γ、α、μ、δ、およ
びε。従って、Ｂ細胞選択的結合因子は、これらの分子のうちのいずれかに結合
する結合因子（例えば、これらの分子のうちのいずれかに特異的な抗体）であり
得る。好ましいＢ細胞選択的結合因子は、ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＣＤ２１、ＣＤ
２２、またはＣＤ３７に結合する。特に好ましいＢ細胞選択的結合因子は、ＣＤ
１９またはＣＤ２０に結合する。
【００５２】 Ｔ細胞の表面上に存在する分子の例示的一覧は、以下である：ＣＤ２、ＣＤ３
、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ６、ＣＤ７、ＣＤ８、ＣＤ２７、ＣＤ２８、ＣＤ３２、
ＣＤ４３、およびＴ細胞レセプターα鎖、β鎖、γ鎖またはδ鎖。従って、Ｔ細
胞選択的結合因子は、これらの分子のうちのいずれかに結合する結合因子（例え
ば、これらの分子のうちのいずれかに特異的な抗体）であり得る。好ましいＴ細
胞選択的結合因子は、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ７、ＣＤ８、また
はＴＣＲ α鎖もしくはβ鎖に結合する。特に好ましいＴ細胞選択的結合因子は
、ＣＤ２またはＣＤ３に結合する。
【００５３】 単球の表面上に存在する分子の例示的一覧は、以下である：ＣＤｗ１２、ＣＤ
１３、ＣＤ１４、ＣＤ１５、ＣＤｗ１７、ＣＤ３１、ＣＤ３２、ＣＤ３３、ＣＤ
６４、ＣＤ９８。従って、単球選択的結合因子は、これらの分子のうちのいずれ
かに結合する結合因子（例えば、これらの分子のいずれかに特異的な抗体）であ
り得る。好ましい単球選択的結合因子は、ＣＤ１４に結合する。
【００５４】 この血中白血球組成物は、少なくとも１つの顆粒球選択的結合因子を使用して
、必要に応じてさらに顆粒球を枯渇され得る。顆粒球の表面上に存在する分子の
例示的一覧は、以下である：ＣＤ６６ｂ、ＣＤ１５、ＣＤ２４など。従って、顆
粒球選択的結合因子は、これらの分子のうちのいずれかに結合する結合因子（例
えば、ＣＤ６６ｂ、ＣＤ１５、またはＣＤ２４に特異的な抗体）であり得る。顆
粒球選択的結合因子を使用して顆粒球を血中白血球組成物から枯渇させることは
、出発血中白血球組成物がかなりの数の成熟顆粒球または未成熟顆粒球を含む場
合に、特に有利である。例えば、動員因子（ｍｏｂｉｌｉｚｉｎｇ ａｇｅｎｔ
）（例えば、Ｇ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦ、またはプロゲニポエチン（ｐｒｏｇｅ
ｎｉｐｏｉｅｔｉｎ）（ＰｒｏＧＰ）を投与された個体から血液が得られた場合
、血中白血球組成物は、多数の成熟顆粒球および未成熟顆粒球を含み得る。未成
熟顆粒球は、細胞分離装置を使用して単核細胞から分離することが困難であり得
るが、顆粒球選択的結合因子を使用して有利に枯渇され得る。当業者は、顆粒球
選択的結合因子を使用して、顆粒球を血中白血球組成物から枯渇させることの望
ましさを容易に決定し得る。
【００５５】 本発明の方法において有用な結合因子は、標的細胞と、高親和性結合複合体を
形成する。本明細書中で使用される場合、用語「複合体」は、解離定数（Ｋｄ）
が約１０−５Ｍ未満（例えば、約１０−７Ｍ未満（約１０−９Ｍ未満を含む））
である、その結合因子と標的細胞との間の相互作用をいう。好ましい結合因子は
、標的分子と高親和性複合体を形成する、抗体（例えば、モノクローナル抗体、
組換え抗体、または単鎖抗体）またはその抗体由来の抗原結合フラグメントであ
る。本発明の方法における使用に適切な抗体は、市販されているか、または所望
の表面分子についての高親和性を伴って当該分野で公知の方法によって生成され
得る。このような抗体は、単一種（ヒト、齧歯類、ヒツジおよびヤギを含む）由
来であっても、またはキメラであってもよい。
【００５６】 好ましい細胞選択的結合因子は、示された細胞型のすべてまたは大多数に結合
する。しかし、細胞選択的結合因子の組み合わせは、特定の細胞型をより完全に
枯渇させるために使用され得る。例として、ＣＤ４は、Ｔ細胞のうちの約６５％
にて発現され、残りのＴ細胞はＣＤ８を発現する。従って、ＣＤ４に結合する因
子とＣＤ８に結合する結合因子との組み合わせは、Ｔ細胞を枯渇させるために使
用され得る。
【００５７】 抗体以外の細胞選択的結合因子もまた、本発明の方法において使用され得る。
このような結合因子としては、レクチン（例えば、ダイズ凝集素）が挙げられ、
このレクチンは、Ｔ細胞およびＢ細胞に結合する。市販の低分子化合物ライブラ
リーまたは高分子化合物ライブラリーもまた、Ｂ細胞全体、Ｔ細胞全体、もしく
は単球全体、またはそれら由来の膜もしくは単離された表面分子を使用して、他
の結合因子を同定するためにスクリーニングされ得る。結合化合物についてのス
クリーニング方法および選択方法（自動化スクリーニング方法および自動化選択
方法を含む）が、当該分野において周知である。使用される特定の方法は、スク
リーニングされる化合物の性質に依存する。従って、細胞選択的結合因子は、所
望の細胞についての適切な選択性および親和性を有する、本質的にすべての化学
的化合物または生物学的化合物（例えば、核酸、ペプチド、ペプチド模倣物、有
機低分子など）であり得る。
【００５８】 １つの実施形態において、標的細胞は、結合因子と、その結合因子と標的細胞
との間に複合体が形成される条件下で接触させられる。このような条件は、実施
者により決定され得、そしてその結合因子の性質および親和性、その血中白血球
組成物の体積、ならびにその組成物中の標的細胞および混入細胞の数のような、
要因に依存する。例として、結合因子と標的細胞との間で複合体を形成するのに
適切な条件は、１ｍｌ体積中１×１０７個の単核細胞を、１．５μｇのモノクロ
ーナル抗体と室温で３０分間接触させることと等価である条件である。
【００５９】 １つの実施形態において、本発明の枯渇方法は、血中白血球を、Ｔ細胞につい
て選択的な結合因子、Ｂ細胞について選択的な結合因子、および単球について選
択的な結合因子と接触させる工程からなり、他の枯渇工程を含まない。代替の実
施形態において、本発明の枯渇方法は、Ｔ細胞、Ｂ細胞、および単球からなる群
より選択される２つの細胞型について選択的な結合因子と、血中白血球を接触さ
せる工程を包含するか、またはその工程からなる。例えば、血中白血球は、必要
に応じて、ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞選択的結合因子（例えば、ＣＤ１６に
ついて特異的な抗体、ＣＤ５６について特異的な抗体、またはＮＫ細胞上に豊富
に存在するがｃｉｒＤＣ上に有意なレベルでは存在しない他の分子について選択
的な抗体）とも接触させられる。さらなる例として、血中白血球は、必要に応じ
て、幹細胞選択的結合因子（例えば、ＣＤ３４について特異的な抗体、または幹
細胞上に豊富に存在するがｃｉｒＤＣ上に有意なレベルでは存在しない他の分子
について選択的な抗体）とも接触させられる。可能な最小数の試薬および工程を
用いて本発明の方法を実施することは、時間の節約、金の節約、および細胞の取
り扱いにおいて、有利である。
【００６０】 代替の実施形態において、本発明の枯渇方法は、血中白血球を、Ｔ細胞につい
て選択的な結合因子、Ｂ細胞について選択的な結合因子、単球について選択的な
結合因子、および顆粒球について選択的な１つ以上の結合因子と接触させる工程
からなり、他の枯渇工程を含まない。別の代替の実施形態において、枯渇工程は
、Ｔ細胞、Ｂ細胞、および単球からなる群より選択される２つの細胞型について
選択的な結合因子と、血中白血球を接触させること、そしてさらに血中白血球を
、顆粒球について選択的な結合因子と接触させることからなり、他の枯渇工程を
含まない。従って、治療用途のためにヒト循環樹状細胞を産生するための方法は
、Ｔ細胞について選択的な結合因子、単球について選択的な結合因子、および顆
粒球について選択的な結合因子と、血中白血球を接触させる工程を包含し得るか
、またはその工程からなり得る。上記したように、顆粒球を枯渇させるために顆
粒球選択的結合因子を使用することは、出発血中白血球組成物がかなりの数の成
熟顆粒球または未成熟顆粒球を含む場合、例えば、顆粒球数を増加させる動員因
子を投与された個体からその血液が得られた場合に、特に有利である。
【００６１】 その標的細胞を、細胞選択的結合因子と接触させた後、その結合因子と細胞と
の複合体が除去され、それにより、その組成物からその標的細胞が枯渇させられ
る。組成物から結合因子−細胞複合体を除去するための種々の方法が、当該分野
で公知である。
【００６２】 例えば、その結合因子は、検出可能部分（例えば、蛍光色素）を用いて標識さ
れ得、そしてその複合体は、その検出可能部分を有さない細胞からその検出可能
部分を有する細胞を分離する選別装置（例えば、蛍光細胞分析分離装置（ＦＡＣ
Ｓ））を使用するフローサイトメトリーによって分離され得る。あるいは、その
複合体の除去は、その結合因子を、直接かまたは二次結合因子を介してかのいず
れかで、固体支持体に連結する工程を包含し得、この固体支持体は、結合親和性
、密度、磁性または他の物理的特性によって、その懸濁物中の未結合細胞からそ
の複合体を分離することを可能にする。
【００６３】 本明細書中で使用される場合、用語「二次結合因子」は、その固体支持体に結
合因子を連結する手段を提供する、任意の分子または分子の組み合わせをいう。
例示的二次結合因子としては、抗体（事実上すべての細胞選択的結合因子につい
ての親和性を有するように公知の方法により調製され得、そして固体支持体に直
接連結され得る）；ビオチンおよびアビジン（一方は結合因子に連結され得、そ
してもう一方は、固体支持体に連結され得る）；プロテインＡまたはプロテイン
Ｇ（抗体についての親和性を有しそして固体支持体に連結され得る）などが、挙
げられる。
【００６４】 例示的な固体支持体としては、常磁性ビーズ（これらは、磁石を用いて複合体
を取り出すことを可能にする）；クロマトグラフィーカラムおよび中空ファイバ
ー（これらは、複合体を、サイズ、密度またはマトリクスに対する親和性によっ
て取り出すことを可能にする）；およびポリスチレン表面（これらは、複合体を
パニング法により取り出すことを可能にする）が挙げられる。種々の二次的結合
薬剤および適合性の固体支持体が市販されているか、または特定の適用のために
容易に調製され得る。
【００６５】 １つの実施形態において、この固体支持体は、結合薬剤に直接結合される。例
えば、細胞選択的結合薬剤は、常磁性ビーズに結合体化され得て、複合体が、磁
石を用いて組成物から取り出され得る。別の実施形態において、この固体支持体
は、二次的結合薬剤に結合される。例えば、標的細胞−結合薬剤複合体は、常磁
性ビーズに結合体化した二次的結合薬剤（例えば、抗体）とさらに接触され得、
そしてこの細胞−結合薬剤−二次的結合薬剤複合体は、磁石を用いて組成物から
取り出され得る。
【００６６】 磁石を用いた細胞分離のための常磁性ビーズ、抗体結合常磁性ビーズ、磁石お
よび自動化システムが市販されており、それらの使用のための詳細なプロトコル
は、供給業者から入手可能である。
【００６７】 好ましい実施形態において、全ての枯渇工程は、上記（例えば、米国特許第５
，５３６，４７５号）の磁石を用いた細胞分離装置において行われる。例示的な
装置は、ＩＳＯＬＥＸ ３００ｉ完全自動化磁気的細胞分離システム（Ｎｅｘｅ
ｌｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ，Ｉｎｃ．，Ｉｒｖｉｎｅ ＣＡ）である。こ
のような装置において使用するための適切な結合薬剤としては、細胞特異的ＧＭ
Ｐ抗体（市販されている）が挙げられる。磁石を用いた細胞分離装置における枯
渇は、例えば、ヒツジ抗マウスポリクローナル抗体およびＤｙｎａｌ Ａ／Ｓ（
Ｏｓｌｏ，Ｎｏｒｗａｙ）により製造された常磁性ビーズを用いて行われ得る。
【００６８】 上記の方法は、ＣＤ１１ｃ＋ ｃｉｒＤＣおよびＣＤ１１ｃ− ｃｉｒＤＣの
両方を含む、治療的使用のためのｃｉｒＤＣ集団を生成する。特定の適用につい
て所望される場合、ＣＤ１１ｃ＋ ｃｉｒＤＣまたはＣＤ１１ｃ− ｃｉｒＤＣ
のいずれかが、所望でない細胞集団により優先的に発現される細胞表面マーカー
に対して選択的な結合薬剤および上記に類似の枯渇方法を用いて、さらに富化さ
れ得る。
【００６９】 １つの実施形態において、ｃｉｒＤＣが、治療的使用のためのＣＤ１１ｃ−
ｃｉｒＤＣを生成するために、ＣＤ１１ｃ＋ ｃｉｒＤＣがさらに枯渇される。
例として、ＣＤ１１ｃ＋ ｃｉｒＤＣは、ｃｉｒＤＣとＣＤ１１ｃ特異的抗体と
を接触させて複合体を形成し、この複合体と常磁性ビーズに結合した二次抗体と
接触させ、そして磁石を用いてこの複合体を取り出すことにより、枯渇され得る
。代替的実施形態において、ｃｉｒＤＣは、治療的使用のためのＣＤ１１ｃ＋
ｃｉｒＤＣを生成するためにＣＤ１１ｃ− ｃｉｒＤＣがさらに枯渇され得る。
例として、ＣＤ１１ｃ− ｃｉｒＣＤは、ｃｉｒＤＣとＣＤ４５ＲＡ特異的抗体
とを接触させて複合体を形成し、常磁性ビーズに結合した二次抗体とこの複合体
とを接触させ、そして磁石を用いてこの複合体を取り出すことにより枯渇され得
る。
【００７０】 必要に応じて、本発明の方法により生成されるｃｉｒＤＣは、滅菌緩衝液で洗
浄され、濃縮され、そして使用前に非溶解性培地中に懸濁される。ｃｉｒＤＣは
、種々の経路により（例えば、血液へ、リンパ節へ、または皮内投与もしくは皮
下投与により）レシピエントに注入され得る（例えば、Ｍｏｒｓｅら、Ｃａｎｃ
ｅｒ Ｒｅｓ．５９：５６−５８（１９９９）を参照のこと）。
【００７１】 ｃｉｒＤＣは、種々の治療的適用において用いられ得、これらの適用としては
、他の方法により生成された樹上細胞が有用である治療的適用が挙げられる。例
えば、ｃｉｒＤＣは、まず、樹上細胞をパルスするために当該分野で公知の方法
を用いて、エキソビボで所望の抗原でパルスされ得、病理学的状態を予防または
改善するように、その抗原に対する免疫応答を誘導または増強するために用いら
れ得る（例えば、Ｍｏｒｓｅら、Ｃｌｉｎ．Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．５：１３３
１−１３３８（１９９９）；Ｎｅｓｔｌｅら，Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄ．４：３２
８−３３２（１９９８）を参照のこと）。抗原でパルスしたｃｉｒＤＣを調製す
る例示的方法において、ｃｉｒＤＣ（数百万／ｍｌの濃度）は、抗原（約１０〜
２００μｇ／ｍｌの濃度）とともに、数時間から数日間の期間にわたり、同時イ
ンキュベートされ得る。
【００７２】 ｃｉｒＤＣをパルスするための例示的な抗原としては、癌遺伝子の産物、ウイ
ルスタンパク質、細胞溶解物、および病理状態において改変されるか、または異
常に発現されるかのいずれかである正常な細胞成分が挙げられる。癌治療におい
て使用するための意図される抗原としては、例えば、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）（
例えば、乳癌または結腸癌に関して）由来の完全抗原、ペプチドもしくはｍＲＮ
Ａ；Ｈｅｒ２／ｎｅｕ（例えば、乳癌または卵巣癌に関して）由来の完全抗原、
ペプチドもしくはｍＲＮＡ；前立腺特異的抗原（ＰＳＡ）および前立腺癌特異的
膜抗原（ＰＭＳＡ）（例えば、前立腺癌に関して）由来の完全抗原、ペプチドも
しくはｍＲＮＡ；ＭＵＣ（例えば、乳癌に関して）由来の完全抗原、ペプチドも
しくはｍＲＮＡ；ＭＡＧＥ、ＧＰ１００、チロシナーゼまたはＭＡＲＴ１（例え
ば、黒色腫に関して）由来の完全抗原、ペプチドもしくはｍＲＮＡ；ならびに腫
瘍細胞溶解物（例えば、腎臓癌または肝臓癌に関して）あるいはアポトーシス性
腫瘍細胞由来の完全抗原、ペプチドもしくはｍＲＮＡが挙げられる。
【００７３】 感染状態の予防または処置における使用のために意図される抗原としては、ヒ
ト免疫不全ウイルス（例えば、ＨＩＶ−１およびＨＩＶ−２）、Ｂ型肝炎ウイル
ス、Ｃ型肝炎ウイルス、パピローマウイルス、サイトメガロウイルス、エプスタ
イン−バーウイルス、およびクラミジア、ならびにこれらからの抗原性調製物が
挙げられる。
【００７４】 本発明の方法により生成された、抗原でパルスしたｃｉｒＤＣは、外因性抗原
を獲得し、この抗原をペプチドへとプロセシングし、患者へ注入すると、ＭＨＣ
分子の状況でＴ細胞にこのペプチドを提示して、腫瘍または感染細胞に対する免
疫応答を誘導する。このような適用のために、少なくとも１０６個、好ましくは
少なくとも約１０７個、より好ましくは少なくとも約１０８個の抗原でパルスし
たｃｉｒＤＣが用いられ得る。
【００７５】 あるいは、抗原でパルスしたｃｉｒＤＣは、適切な期間にわたり（例えば、数
時間から数日間）、Ｔリンパ球とともに培養されて、抗原特異的Ｔ細胞を生成し
得る。このようなＴ細胞は、個体に注入された場合、抗原でパルスしたＴ細胞と
の接触により活性化され、標的抗原を表面に発現する細胞に対する免疫応答を誘
導する。このＴ細胞は、当該分野で公知の方法により、血液のリンパ球がＤＣを
生じたのと同じドナーから、または上記のように、ＨＬＡが適合した個体から、
得られ得る。抗原をパルスするためのＴ細胞集団は、細胞傷害性Ｔ細胞（ＣＤ８
＋Ｔ細胞）およびヘルパーＴ細胞（ＣＤ４＋Ｔ細胞）の両方を含み得るか、また
は当該分野で公知の予備選択方法を用いて主に細胞傷害性Ｔ細胞を含み得る。
【００７６】 ｃｉｒＤＣがエキソビボでＴ細胞の刺激因子として用いられることが意図され
る場合、抗原でパルスした、必要とされるｃｉｒＤＣの数は、約５０万から約１
億の範囲にあり得る。この範囲は、１：５〜１：１０のＤＣ：Ｔ細胞の比がＴ細
胞の効率的な活性化に必要とされるという想定に基づいている。約１０００万か
ら約１０億の抗原特異的Ｔ細胞が、インビボで所望の細胞殺傷活性を達成するた
めに必要とされること、そして活性化Ｔ細胞が同時培養において総Ｔ細胞の約１
０％を含むことが、予測される。従って、約１億個から約１００億個のＴ細胞が
、最終的な同時培養に必要とされる。培養中のＴ細胞について増殖指数（ＰＩ）
１０を想定すると（１０〜５０であるＰＩが予測されるが）、約５００万〜約１
０億個のＴ細胞が、初めの同時培養において播種される。従って、１：１０のＤ
Ｃ：Ｔ細胞の比において、抗原でパルスされた約５０万から約１億個のＤＣが同
時培養において必要とされる。
【００７７】 本発明のｃｉｒＤＣはまた、抗原でパルスすることなく治療的に用いられ得る
。例えば、ｃｉｒＤＣは、免疫系の増強が所望される適用において、例えば、骨
髄移植後の免疫系を再構成するために投与され得る。さらに、ｃｉｒＤＣは、腫
瘍のアポトーシスを誘導する薬剤を用いた腫瘍処置（例えば、化学療法剤または
照射）とともにか、この処置の前にか、またはこの処置の後に、投与され得る。
このような適用において、投与されたｃｉｒＤＣは、免疫系を活性化して、残り
の腫瘍細胞を殺傷し、そして／または腫瘍転移を予防するように、アポトーシス
した腫瘍細胞からの腫瘍抗原を取り込み得、提示し得る。
【００７８】 さらに、ｃｉｒＤＣは、種々の免疫抑制適用において用いられ得る。これらの
適用としては、自己免疫疾患の治療における適用、および移植した組織の寛容性
を促進する際の適用が挙げられる（例えば、Ｔｈｏｍｓｏｎら、Ｔｒａｎｓｐｌ
ａｎｔａｔｉｏｎ ６８：１−８（１９９９）；米国特許第５，８７１，７２８
号を参照のこと）。例えば、同種異系の組織ドナーから得られたｃｉｒＤＣは、
同種移植片の拒絶の可能性が減少するように、組織レシピエントに投与され得る
。免疫寛容を生じる適用のために、最初にｃｉｒＤＣを薬剤（例えば、ＴＧＦβ
、ＩＬ−１０またはシクロスポリンＡ）で処置することは有利であり得る。これ
らの薬剤は、ｃｉｒＤＣによる副刺激分子および免疫刺激性サイトカインの発現
を減少させる。
【００７９】 本発明の種々の実施形態の活性に実質的に影響を及ぼさない改変もまた、本明
細書中に提供された本発明の定義内に含まれることが理解される。従って、以下
の実施例は、本発明の例示であって、限定するものではないことが意図される。
【００８０】 （実施例Ｉ：ｃｉｒＤＣの小規模調製） 本実施例は、Ｔ細胞、Ｂ細胞および単球の血中白血球を枯渇させることによる
ｃｉｒＤＣの調製を示す。
【００８１】 血小板を洗い流した末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）（１ｍｌ中に１×１０７細胞
）を、１％ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）および１２％クエン酸ナトリウムを含
有するリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ；Ｂｉｏｗｈｉｔｔａｋｅｒ）中に再懸
濁した。細胞を、室温（ＲＴ）にて３０分間にわたって連続的に、マウスＣＤ２
抗体（Ｎｅｘｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ）、マウスＣＤ１９抗体（Ｎｅ
ｘｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ）またはマウスＣＤ１４抗体（Ｄｉａｃｌ
ｏｎｅ）と接触させた。各一次抗体を、１．５μｇ／１０７細胞／ｍｌの濃度で
使用した。各一次抗体とのインキュベーション後に、細胞を、１％ＨＳＡおよび
１２％クエン酸ナトリウムを含有するＰＢＳで洗浄して一次抗体を取り除き、そ
してＲＴにて３０分間にわたり、２：１のビーズ：ＰＢＭＣ比でヒツジ抗マウス
常磁性ビーズ（ＳＡＭ ｂｅａｄｓ；Ｄｙｎａｌ）と共にインキュベートした。
ビーズ／細胞ロゼットを洗浄し、そしてＭＰＣ７−１ Ｄｙｎａｌ Ｍａｇｎｅ
ｔｉｃ Ｐａｒｔｉｃｌｅ Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｏｒを使用して取り出した。
【００８２】 結合していない細胞を収集し、洗浄し、再懸濁し、そしてＢｅｃｔｏｎ Ｄｉ
ｃｋｉｎｓｏｎから入手される以下の標識化抗体を、製造業者の推奨する手順に
従って使用して、表面マーカーの発現についてＦＡＣＳ分析により分析した：抗
ＩｇＧ１ ＦＩＴＣ／抗ＩｇＧ１ ＰＥ（コントロール）；抗ＣＤ２ ＦＩＴＣ
；抗ＣＤ３ ＦＩＴＣ；抗ＣＤ１４ ＦＩＴＣ；抗ＣＤ１９−ＦＩＴＣ；抗ＣＤ
２０ ＦＩＴＣ；抗ＣＤ１１ｃ ＦＩＴＣ／抗ＤＲ ＰＥ／抗ＣＤ１４ ＰＣＰ
。ＦＡＣＳデータを、ＦＡＣＳｃａｎＴＭｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｅｒ（Ｂｅ
ｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）を使用して得た。単一の実験において、種々の
枯渇工程後にＣＤ３＋（すなわち、Ｔ細胞）、ＣＤ２０＋（すなわち、Ｂ細胞）
、ＣＤ１４＋（すなわち、単球）、ＣＤ１６＋５６＋（すなわち、ＮＫ細胞）、
またはＣＤ１１ｃ＋／ＨＬＡ−ＤＲ／ＣＤ１４−（すなわち、ｃｉｒＤＣの部分
集団）であった細胞のパーセンテージを表１に示す。そして、各細胞型の絶対数
を表２に示す。
【００８３】
【表１】
【００８４】
【表２】 これらの結果は、処置されていない個体由来の末梢血単核細胞を、Ｂ細胞、Ｔ
細胞および単球に対して選択的な結合剤と接触させ、そして組成物からこれらの
複合体を取り除くことによって、ＣＤ１１ｃ＋／ＨＬＡ−ＤＲ＋／ＣＤ１４−ｃ
ｉｒＤＣを少なくとも約８倍富化した細胞集団が生成され得ることを示す。これ
らの結果はさらに、開始集団中の少なくとも４５％のＣＤ１１ｃ＋／ＨＬＡ−Ｄ
Ｒ＋／ＣＤ１４−ｃｉｒＤＣが、これらの方法によって回収され得ることを示す
。
【００８５】 上記の実験から得られた結果およびＴ細胞を枯渇させるためにＣＤ２抗体また
はＣＤ３抗体のいずれかを使用した４つのさらなる実験から得られた結果を、以
下の表３および４に示す。表４に提示されるデータは、ＣＤ２抗体、ＣＤ１９抗
体およびＣＤ１４抗体を使用してＢ細胞、Ｔ細胞および単球をヒト血中白血球組
成物から枯渇させることにより、約５２％のｃｉｒＤＣの平均回収率が得られ、
そしてＣＤ３抗体、ＣＤ１９抗体およびＣＤ１４抗体を使用すると、約５８％の
ｃｉｒＤＣの平均回収率が得られることを示す。
【００８６】
【表３】
【００８７】
【表４】 （実施例ＩＩ） （ｃｉｒＤＣの大規模調製） 本実施例は、治療的用途のためのｃｉｒＤＣの調製を示す。
【００８８】 １０日間にわたり１０μｇ／ｋｇ／ｍｌのＦＬＴ３Ｌ（Ｉｍｍｕｎｅｘ）を投
与された個体由来のアフェレーシスサンプルを、Ｆｅｎｗａｌ ＣＳ−３０００
Ｃｅｌｌ Ｓｅｐａｒａｔｏｒを使用して収集した。末梢血単核細胞（ＰＢＭ
Ｃ）（１×１０１０細胞）を、１％ＨＳＡおよび１２％クエン酸ナトリウムを含
有するＰＢＳ中に再懸濁した。細胞を、ＩＳＯＬＥＸ ３００ｉ細胞選別デバイ
ス内において、室温（ＲＴ）にて３０分間にわたって連続的に１ｍｇのＣＤ２抗
体（Ｎｅｘｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ）、１ｍｇのＣＤ１９抗体（Ｎｅ
ｘｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ）または１ｍｇのＣＤ１４抗体（Ｄｉａｃ
ｌｏｎｅ）で感作するか、または３つすべての抗体で一緒に感作した。結合して
いない抗体を、洗浄によって取り除き、そして抗体で感作された細胞を、ＲＴに
て３０分間にわたり、２：１のビーズ：ＰＢＭＣ比でヒツジ抗マウス常磁性ビー
ズ（Ｄｙｎａｌ）と共にインキュベートした。ビーズ／細胞ロゼットを洗浄し、
そして結合していない細胞を収集し、洗浄し、そして再懸濁した。
【００８９】 ＦＬＴ３Ｌ動員ドナー由来では、少なくとも１０％（例えば、約６０％）のＰ
ＢＭＣがｃｉｒＤＣである。従って、開始ｃｉｒＤＣの回収率が少なくとも５０
％であることを考慮すると、治療的用途のために、少なくとも５×１０８ｃｉｒ
ＤＣ（例えば、約３×１０９ｃｉｒＤＣ）が、１０１０細胞を含むＦＬＴ３Ｌ動
員ドナー由来の単一アフェレーシス生成物から得られる。これらのｃｉｒＤＣは
、ピノサイトーシスアッセイ、同種異系混合リンパ球アッセイにおける活性およ
び抗原誘導性Ｔ細胞増殖アッセイによって評価されるように、効率的に抗原をプ
ロセスし、そして提示する。
【００９０】 本願全体を通して、種々の特許および刊行物が参照されている。これらの特許
および刊行物の開示は、それらの全体において、本発明が属する分野の状態をよ
り完全に記載するために、本願において本明細書中で参考として援用される。
【００９１】 本発明を、開示された実施形態を参照して記載したが、当業者は、詳述された
特定の実験が、本発明の単なる例示に過ぎないことを容易に理解する。種々の改
変が、本発明の意図から逸脱することなくなされ得ることが理解されるべきであ
る。従って、本発明は、以下の特許請求の範囲によってのみ制限される。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ａ６１Ｐ 37/02 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ｅ (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ，ＴＲ)，ＯＡ(ＢＦ ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ， ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，Ｇ Ｍ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＭＺ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ， ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＧ，ＡＬ，ＡＭ， ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，Ｂ Ｚ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＯ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ ，ＤＫ，ＤＭ，ＤＺ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ， ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，Ｉ Ｓ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ， ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＭＺ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，Ｐ Ｔ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ， ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＡ，ＺＷ (72)発明者 ベンダー， ジェイムズ ジー． アメリカ合衆国 カリフォルニア 92688， ランチョ サンタ マルガリータ， ク ローバーデイル ３ Ｆターム(参考） 4B065 AA94X BB19 BD14 CA44 4C087 AA01 AA04 BB37 BB63 DA19 NA05 NA06 ZA51 ZB05 ZB26 ZB32

Claims (43)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 治療用途のためのヒト循環樹状細胞（ｃｉｒＤＣ）を産生す
    る方法であって、ヒト血中白血球組成物の、Ｂ細胞、Ｔ細胞および単球を枯渇さ
    せる工程を包含する、方法。
  2. 【請求項２】 請求項１に記載の方法であって、ここで前記血中白血球組成
    物が、実質的に顆粒球を含まない、方法。
  3. 【請求項３】 請求項１に記載の方法であって、ここで前記血中白血球組成
    物が、少なくとも１つの動員因子を投与された個体から得られる、方法。
  4. 【請求項４】 請求項３に記載の方法であって、ここで前記動員因子が、以
    下：ＦＬＴ３Ｌ、Ｇ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦ、ＳＣＦ、Ｍ−ＣＳＦ、ＩＬ−１、
    ＩＬ−２、ＩＬ−３、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−８、Ｉ
    Ｌ−９、ＩＬ−１０、ＩＬ−１１、ＩＬ−１２、ＩＬ−１３、ＩＬ−１４、ＩＬ
    −１５、ＬＩＦ、ＦＧＦ、ＴＮＦ、ＰｒｏＧＰ、ＦＧＦ、ＰＤＧＦ、ＥＧＦ、Ｔ
    ＧＦ，インターフェロン、ダニプレスティム、プロゲニポエチン（ＰｒｏＧＰ）
    およびミエロポエチン（ＭＰＯ）、 からなる群から選択される、方法。
  5. 【請求項５】 請求項４に記載の方法であって、ここで前記動員因子が、ｃ
    ｉｒＤＣ動員因子である、方法。
  6. 【請求項６】 請求項５に記載の方法であって、ここで前記ｃｉｒＤＣ動員
    因子がＦＬＴ３Ｌである、方法。
  7. 【請求項７】 請求項１に記載の方法であって、ここで前記血中白血球組成
    物が、少なくとも１×１０９個の単核球細胞を含む、方法。
  8. 【請求項８】 請求項１に記載の方法であって、ここで治療用途のための前
    記ｃｉｒＤＣが、結合因子と接触していない、方法。
  9. 【請求項９】 請求項１に記載の方法であって、ここで治療用途のための前
    記ｃｉｒＤＣが、血清および非ヒト動物タンパク質と接触していない、方法。
  10. 【請求項１０】 請求項１に記載の方法であって、ここで前記枯渇が、閉鎖
    された流体通路系において起きる、方法。
  11. 【請求項１１】 請求項１に記載の方法であって、ここで治療用途のための
    前記ｃｉｒＤＣが、少なくとも１×１０６個のｃｉｒＤＣを含む、方法。
  12. 【請求項１２】 請求項３に記載の方法であって、ここで前記血中白血球組
    成物が、少なくとも１×１０１０個の単核球細胞を含む、方法。
  13. 【請求項１３】 請求項１２に記載の方法であって、ここで治療用途のため
    に前記ｃｉｒＤＣが、少なくとも１×１０７個のｃｉｒＤＣを含む、方法。
  14. 【請求項１４】 請求項５に記載の方法であって、ここで治療用途のための
    前記ｃｉｒＤＣが、少なくとも１×１０８個のｃｉｒＤＣを含む、方法。
  15. 【請求項１５】 請求項６に記載の方法であって、ここで治療用途のための
    前記ｃｉｒＤＣが、少なくとも１×１０９個のｃｉｒＤＣを含む、方法。
  16. 【請求項１６】 請求項１に記載の方法であって、ここで前記枯渇が、以下
    ： （ａ）前記Ｂ細胞とＢ細胞選択的結合因子との間、前記Ｔ細胞とＴ細胞選択的
    結合因子との間、および前記単球と単球選択的結合因子との間に複合体が形成さ
    れる条件下で、該Ｂ細胞を少なくとも１つの該Ｂ細胞選択的結合因子と接触させ
    る工程；該Ｔ細胞を少なくとも１つの該Ｔ細胞選択的結合因子と接触させる工程
    ；および該単球を少なくとも１つの該単球選択的結合因子と接触させる工程；な
    らびに （ｂ）該複合体を前記血中白血球組成物から取り出す工程 を包含する、方法。
  17. 【請求項１７】 請求項１６に記載の方法であって、前記顆粒球と顆粒球選
    択的結合因子との間に複合体が形成される条件下で、該顆粒球を該顆粒球選択的
    結合因子と接触させる工程、および該複合体を前記白血球組成物から取り出す工
    程をさらに包含する、方法。
  18. 【請求項１８】 請求項１に記載の方法であって、ここで前記枯渇が、以
    下： （ａ）前記Ｂ細胞とＢ細胞選択的結合因子との間、前記Ｔ細胞とＴ細胞選択的
    結合因子との間、および前記単球と単球選択的結合因子との間に複合体が形成さ
    れる条件下で、該Ｂ細胞を少なくとも１つの該Ｂ細胞選択的結合因子と接触させ
    る工程、該Ｔ細胞を少なくとも１つの該Ｔ細胞選択的結合因子と接触させる工程
    、および該単球を少なくとも１つの該単球選択的結合因子と接触させる工程、な
    らびに （ｂ）該複合体を前記血中白血球組成物から取り出す工程 からなる、方法。
  19. 【請求項１９】 請求項１６に記載の方法であって、ここで前記Ｂ細胞選択
    的結合因子が、以下：ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＣＤ２１、ＣＤ２２、ＣＤ２３、Ｃ
    Ｄ２４、ＣＤ３７、ＣＤ４０、ＣＤｗ７５、ＣＤ７６およびＩｇ鎖からなる群か
    ら選択される分子に結合する、方法。
  20. 【請求項２０】 請求項１９に記載の方法であって、ここで前記Ｂ細胞選択
    的結合因子が、ＣＤ１９またはＣＤ２０に結合する、方法。
  21. 【請求項２１】 請求項１６に記載の方法であって、ここで前記Ｔ細胞選択
    的結合因子が、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ６、ＣＤ７、ＣＤ８、Ｃ
    Ｄ２７、ＣＤ２８、ＣＤ３２、ＣＤ４３およびＴ細胞レセプターα鎖またはＴ細
    胞レセプターβ鎖からなる群から選択される分子に結合する、方法。
  22. 【請求項２２】 請求項１７に記載の方法であって、ここで前記顆粒球選択
    的結合因子が、ＣＤ６６ｂ、ＣＤ１５およびＣＤ２４からなる群から選択される
    分子に結合する、方法。
  23. 【請求項２３】 請求項２１に記載の方法であって、ここで前記Ｔ細胞選択
    的結合因子が、ＣＤ２またはＣＤ３に結合する、方法。
  24. 【請求項２４】 請求項１６に記載の方法であって、ここで前記単球選択的
    結合因子が、ＣＤｗｌ２、ＣＤ１３、ＣＤ１４，ＣＤ１５、ＣＤｗｌ７、ＣＤ３
    １、ＣＤ３２、ＣＤ３３、ＣＤ６４、ＣＤ９８からなる群から選択される分子に
    結合する、方法。
  25. 【請求項２５】 請求項２４に記載の方法であって、ここで前記単球選択的
    結合因子が、ＣＤ１４に結合する、方法。
  26. 【請求項２６】 請求項１６に記載の方法であって、ここで （ａ）前記Ｂ細胞選択的結合因子が、ＣＤ１９またはＣＤ２０に結合し、 （ｂ）前記Ｔ細胞選択的結合因子が、ＣＤ２またはＣＤ３に結合し、そして （ｃ）前記単球選択的結合因子が、ＣＤ１４に結合する、 方法。
  27. 【請求項２７】 請求項１６に記載の方法であって、ここで前記Ｂ細胞選択
    的結合因子、前記Ｔ細胞選択的結合因子または前記単球選択的結合因子が、抗体
    である、方法。
  28. 【請求項２８】 請求項２７に記載の方法であって、ここで前記Ｂ細胞選択
    的結合因子、前記Ｔ細胞選択的結合因子および前記単球選択的結合因子が、抗体
    である、方法。
  29. 【請求項２９】 請求項１に記載の方法であって、ここで前記血中白血球が
    、ＮＫ細胞に選択的な結合因子と接触されていない、方法。
  30. 【請求項３０】 請求項１に記載の方法であって、ここで前記血中白血球が
    、密度勾配遠心分離に供されていない、方法。
  31. 【請求項３１】 請求項１に記載の方法であって、ここで前記Ｂ細胞、前記
    Ｔ細胞、および前記単球の前記枯渇が、連続して実施される、方法。
  32. 【請求項３２】 請求項１に記載の方法であって、ここで前記Ｂ細胞、前記
    Ｔ細胞、および前記単球の枯渇が、同時に実施される、方法。
  33. 【請求項３３】 請求項１６に記載の方法であって、ここで前記Ｂ細胞選択
    的結合因子、または前記Ｔ細胞選択的結合因子、または前記単球選択的結合因子
    が、固体支持体に付着される、方法。
  34. 【請求項３４】 請求項３３に記載の方法であって、ここで前記固体支持体
    が、常磁性ビーズである、方法。
  35. 【請求項３５】 請求項１６に記載の方法であって、前記Ｂ細胞結合因子複
    合体、前記Ｔ細胞結合因子複合体、または前記単球結合因子を、固体支持体に付
    着した第２の結合因子と接触させる工程を包含する、方法。
  36. 【請求項３６】 請求項３５に記載の方法であって、ここで前記第２の結合
    因子が、抗体である、方法。
  37. 【請求項３７】 請求項３５に記載の方法であって、ここで前記固体支持体
    が、常磁性ビーズである、方法。
  38. 【請求項３８】 請求項１に記載の方法であって、ＣＤ１１ｃ−ｃｉｒＤＣ
    のｃｉｒＤＣを枯渇させる工程をさらに包含する、方法。
  39. 【請求項３９】 請求項１に記載の方法であって、ＣＤ１１ｃ＋ｃｉｒＤＣ
    のｃｉｒＤＣを枯渇させる工程をさらに包含する、方法。
  40. 【請求項４０】 治療用途のためのヒト循環樹状細胞（ｃｉｒＤＣ）を産生
    する方法であって、ヒト血中白血球組成物の、Ｔ細胞、単球および顆粒球を枯渇
    させる工程を包含する、方法。
  41. 【請求項４１】 請求項４０に記載の方法であって、ここで前記枯渇させる
    工程が、以下： （ａ）前記Ｔ細胞とＴ細胞選択的結合因子との間、前記単球と単球選択的結合
    因子との間、および前記顆粒球と顆粒球選択的結合因子との間に複合体が形成さ
    れる条件下で、該Ｔ細胞を少なくとも１つの該Ｔ細胞選択的結合因子と接触させ
    る工程；該単球を少なくとも１つの該単球選択的結合因子と接触させる工程；お
    よび該顆粒球を少なくとも１つの該顆粒球選択的結合因子と接触させる工程；な
    らびに （ｂ）該複合体を前記血中白血球組成物から取り出す工程 を包含する、方法。
  42. 【請求項４２】 請求項１に記載される方法によって産生される、治療用途
    のための少なくとも１×１０６個のｃｉｒＤＣを含む細胞組成物。
  43. 【請求項４３】 請求項６に記載される方法によって産生される、治療用途
    のための少なくとも１×１０９個のｃｉｒＤＣを含む細胞組成物。
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