JP2001509025A - 固相捕獲可能なターミネーターによる核酸配列方法 - Google Patents
固相捕獲可能なターミネーターによる核酸配列方法Info
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Abstract
(57)【要約】
本発明は、固相捕獲可能チェーン−ターミネーターを利用した酵素的核酸配列方法に関するものである。本方法においては、断片が獲得可能なチェーン−ターミネーターを有した場合、配列断片が生じる。そして、断片が固相上に捕獲され、配列反応の残りの成分から区別される。そして、断片は固相から開放され、サイズが区別され、検出されて、核酸配列が決定される配列データを導き出す。
Description
【発明の詳細な説明】
固相捕獲可能なターミネーターによる核酸配列方法
序章 技術背景
本発明の分野は、核酸の配列方法に関するものである。発明の背景
分子生物学の分野において、核酸配列決定方法は、非常に重要な手段の一つで
ある。1970年代において、DNA塩基配列を決定する初の方法が開発されて
以来、塩基配列方法においては、今や過半数のオペレイションが自動化され、従
って、ヒト−ゲノムを含む全ゲノムの大規模な配列が可能となった。現在大きく
分けて2つのDNA塩基配列決定法、即ち(1)化学分析法又はマクサム−ギル
バート法、及び(2)酵素法又はジデオキシ−チェーン−ターミネーター法(サ
ンガー法とも云われている)があり、後者の方がより一般的に使用され、自動処
理には適している。
DNA塩基配列法における関心事は、自動塩基配列決定方法であって、そこで
は、サイズによって区別された断片又は酵素法のプライマー伸長生成物を標識す
る為に蛍光性標識が使用される。現在、自動DNA塩基配列決定法としては、3
つの異なった方法が存在する。第一の方法に関して、DNA断片は、1種の蛍光
体で標識され、(各塩基に1レーンの)隣接の配列レーンを移行(run)する
。アンソージ、その他(Ansorge et al)、核酸Res.(1987
年)15:4593〜4602を参照のこと。第二の方法に関して、DNA断片
は、4種の蛍光体で識別されたオリゴヌクレオチド−プライマーで標識され、全
断片が、1レーンを移行する。スミス、その他、自然(1986年)321:6
74〜679を参照のこと。第三の方法に関して、各異なったチェーン−ターミ
ネイティング−ジデオキシヌクレオチド(chain terminating
dideoxynucleotides)が、異なった蛍光体で標識され、全
断片が、1レーンを移行する。プロバー、その他(Prober et al)、
Science(1987年)238:336〜341を参照のこと。第一の方
法には、その低い処理能力は勿論のこと各レーンごとでの変異(lane−to
−lane variations)といった潜
在的問題が存在する。第二、第三の方法は、4種の色素が1レーザー源によって
強く励起される必要があり、それらは、明瞭に異なった発光分光を持つこととな
る。そうでないとすれば、複数のレーザーが必要となり、検出装置の複雑性と費
用を増加させることになる。
共通波長での励起時に、強い蛍光性信号を発するエネルギー移送プライマーの
発生によって、第二の方法は、現在商業的に入手可能な配列装置を利用して粗配
列データを作成する。だが、エネルギー移送プライマーを利用したとしても、第
二の方法は、完全に満足できるものではない。第二の方法においては、全ての誤
終結(false termination)又は誤停止(false sto
p)した断片が検出され、高いバックグラウンドとなる。更に、第二の方法では
、長反復配列を有したDNA鋳型の正確な配列を得ることは難しい。ロビンズ、
その他、生物工芸学(1996年)20:862〜868を参照のこと。
第三の方法は、ターミネーターと統合されたDNA断片のみを検出することに
利点がある。従って、誤停止を検出することによって生じるバックグラウンドが
検出されない。しかし、色素標識されたターミネーターによる蛍光信号は、そう
明るいものではなく、AmpliTaqDNAポリマーゼ(FS酵素)を持って
しても、過剰な色素ターミネーターを完全に浄化することは時間の無駄である。
更に、非配列断片が検出され、バックグラウンド信号の一因となる。応用生物系
Model373A DNA塩基配列システム−ユーザー−ブリテン(Mode
l 373 A DNA Sequencing System User B
ulletin)、11月17日、P3、1990年8月。
従って、長反復配列であっても高精度の配列データを提供できる改良された方
法学の開発が望まれている。そのような方法学は、コンタミナティッドRNA(
contaminated RNA)及び裸DNA鋳型の結果である誤停止した
配列断片及び非配列断片は勿論、塩化ナトリウム、酵素、過剰プライマー、鋳型
等といった配列反応混合物の残存成分からも、DNA塩基配列断片を分離する手
段を含むものであることが望ましい。関連文献
DNA塩基配列決定法は、グリフィン−グリフィン、応用生化学及び生物工学
(1993年)38:147〜159、で検討された。
自動DNA塩基配列決定法における異なった標識方法の影響に関しては、「3
73A色素プライマー及び色素ターミネーター−データの解読ガイド」と題され
たパーキン−エルマー−ユーザー−ブリテン(Perkin Elmer Us
er Bulletin)(1990年8月、ナンバー17)で議論さ
れた。
様々な配列法の適用又は応用におけるビオチニレイティッド−ヌクレオチド(
biotinylated nucleotides)の使用は、米国特許第5
、484、701号、第5、405、746号、第5、401、632号、及び
以下の文献に説明されている。文献とは、ユ、その他、生物発光.化学発光(1
995年)10:239〜245、トン−スミス、J.DNA塩基配列及びマッ
ピング(1993年)4:151〜162、ワルバーグ、その他(Wahlbe
rg et al)、電気泳動法(1992年)13:547〜551、トム−
ミス、Anal.Chem.(1992年)64:672〜2677、リヴァク
、その他(Livak et al)、核酸.Res.(1992年)18:48
31〜4837、ワルバーグ、その他、分子とセルラー−プローブズ(1990
年)4:285〜297、ワルバーグ、その他、Proc.Natl.核酸.S
ci.USA(1990年)87:6569〜6573、セリガー(Selig
er)、その他、ヌクレオチド−ヌクレオチド(1990年)9:383〜38
8、ベック、酵素学の方法(1990年)184:612〜617、リッチテリ
ッチ(Richterich)、核酸Res.(1989年)17:2181〜2
186、ベック、その他、核酸Res.(1989年)17:5115〜512
3、スタル、その他(Stahl et al)、核酸Res.(1988)16
:3025−3038である。
要旨
ここには、酵素的配列を通した核酸の配列決定方法が提供される。本方法にお
いて、捕獲可能なチェーン−ターミネーター(capturable chai
n terminators)が、固相上に捕獲可能なプライマー伸長生成物(
通常は、標識プライマー伸長生成物)を生産するのに使用される。そして、プラ
イマー伸長生成物は、核酸配列を決定する配列データを出す為に、固相上に捕獲
、分離され、固相から開放され、サイズを区別され、検出される。1つの好適な
実施例において、プライマー伸長生成物を作る為に使用されるプライマーは、共
通波長で励起するが標識された生成物が区別できるように4種の各チェーン−タ
ーミネーティング−ベース(chain terminating base)
に関連した区別可能な蛍光性信号を供給する蛍光性エネルギー移送の蛍光標識で
標識される。
図面の簡単な説明
図1は、以下を説明する概略図である。そこでは、色素標識されたプライマー及
びビオチン−ターミネーターが、配列断片を生産するのに用いられ、次に配
列断片がストレプタビジン−コーテッド−磁気ビード(streptavid
in coated magnetic beads)と分離する時、真配列断
片(true sequencing fragments)のみが蛍光DNA
配列装置において検出される。誤停止された断片は捕獲されず、RNAから結果
として得られる非配列プライマー伸長断片及び裸DNA断片は検出されない。
図2は、ビオチン−ターミネーターと生産される4つの配列サンプルの配列ゲル
イメージ(sequencing gel image)の一部を図示している
。サンプル1〜3は、プライマーのピークを完全に消去するストレプタビジン−
コーテッド磁気ビードによって精製される。サンプル4は、エタノール沈殿によ
って移精製され、大きなプライマーのピークを残す。
図3A及び3Bは、ストレプタビジン−コーテッド磁気ビード(3A)によって
精製されたビオチン−ターミネーター及びエネルギー移送(ET)プライマーと
で発生する4色の配列データが、ETプライマー及び通常のddNTPs(3B
)で発生する配列データよりも一段と清浄なものであることを図示している。3
Bの誤停止ピークは、配列エラーとなる。同配列領域においては、誤ピーク(f
alse peak)が、3Aには見うけられなかった。
図4A及び4Bは、ストレプトアビジン−コーテッド磁気ビード(4A)によっ
て精製されたビオチン−ターミネーター及びETプライマーとで発生する4色の
配列データの分解能が、エタノール沈殿(4B)のみによって浄化された同配列
サンプルよりも清浄なものであることを図示している。
図5A、5B、及び5Cは,ストレプトアビジン−コーテッド磁気ビードによっ
て精製されたビオチン−ターミネーターで発生した4色の配列サンプル(pGE
M)の完全なエレクトロフェログラムを図示している。前記データは、基本的に
ノイズフリー(noise free)である。有効な配列は、800bpまで
取得できる。
図6は、従来のサンガー又は酵素配列法を説明する概略図である。
図7は、従来の酵素的配列法を用いた結果を説明する概略図である。
定義「酵素的配列」、「サンガー法」、「ジデオキシ技法」、及び「チェーン−ターミネ
ーター技法」といった用語は、交互に使用され、主要開発者であるF.サンガー
の名を取ってDNA塩基配列決定法を説明する上で代替的に使用されている。上
記技法は、相補DNA鎖を合成する為に、1本鎖DNA鋳型、短DNAプライマ
ー、及びポリマーセ酵素を使用する。プライマーは、まずアニール(annea
l)されて一本鎖の鋳型となり、反応混合物が4つのアリコートに分断され、デ
オキシヌクレオシド三燐酸塩(dNTPs)及びジデオキシヌクレオチド三燐酸
塩(ddNTP)が追加され各チューブが異なったddNTPを持つようにする
。ポリマーゼが、鋳型の相補塩基に対向するddNTPを結合するが、ddNT
Pに3’水酸基グループが不足しても、それ以上dNTPsが追加されることは
ない。ddNTP−dNTP比は、ddNTPが注入されて(全てが1末端、プ
ライマー、を共通に持った)重なった断片のセット(即ち、プライマー伸長生成
物)が形成される全ての位置でポリマーゼが、成長するDNA鎖を終結させる割
合となっている。4つの反応混合物がポリアクリルアミド−ゲルを通じて電気泳
動された時に、ゲル帯パターン又はラダー(ladder)が形成され、そこか
らDNA配列を直接読むことができるように、前記断片が標識される。図6及び
図7にその工程が略図として図示されている。
「標識された」とは、放射性、酵素的、及び蛍光性標識を含む検出可能な標識
を意味する。
「酵素的に生産された」とは、少なくとも一部が酵素作用の結果として生産さ
れたという意味で、例えば、酵素が触媒作用を及ぼす時、ヌクレオチド断片が生
産され、大きな配列が2以上の断片に分離することを意味する。
「プライマー」とは、相補的なものであり、一本鎖ヌクレオチド配列のある部
分が配列されるようにハイブリダイズィング(hybridizing)するこ
とが可能なポリマー配列を意味し、プライマーを使用してインヴィトロDNA合
成を開始する。
「プライマー伸長生成物」とは、プライマー配列及び酵素的配列中に生産され
るチェーン−ターミネーターから成るポリヌクレオチド断片を意味する。
「捕獲可能成分(capturable moiety)」、「捕獲可能チェーン
−ターミネーター(capturable chain terminator
s)」、及び類似成分は、交互に使用され、3‘末端ヌクレオチド配列に結合した
(固相上の成分との結合が可能な)分子成分を表現している。
実施例の詳細な説明
ここに酵素的配列を通して核酸配列を決定する改良方法が提供されている。本
方法において、プライマーは、捕獲可能なチェーン−ターミネーターと伴に
使用され、固相上に捕獲可能なプライマー伸長生成物を生産する。そこでは、プ
ライマー伸長生成物は、(例えば、プライマー伸長生成物を生産する為の標識プ
ライマーを利用することによって)標識される。プライマー伸長生成物を生産後
、プライマー伸長生成物は、固相上に捕獲されることによって分離される。そし
て、分離されたプライマー伸長生成物は、固相から開放され、サイズが分けられ
、検出され、核酸配列が決定される配列データを導き出す。
本発明の詳細が説明される前に、特定実施例の変形例が形成され、それらは更
に下記請求項の範疇に収まる様に、本発明が下記の特定の実施例に限定されるも
のではないことと理解されるべきである。更に、ここに適用された用語は、特定
の実施例を説明するためのものであり、この用語に制限されるように意図された
ものではないとも理解されるべきである。代わりに、本発明の適用範囲は、下記
請求項によって確立されるものである。
文脈が明確にそうでない意を示している以外は、本明細書及び下記請求項に使
用された単数用語の“a”、“an”、及び“the”が複数引用を含む可能性
があると理解されるべきである。定義されていない場合、ここに使用された全技
術用語及び科学用語は、本発明の属する分野の当業者にとって共通に理解されて
いるのと同じ意味で使用されている。
酵素的配列によって核酸(例えばDNA)の配列を決定する方法は、従来技術
でも知られており、サムブルック、その他(Sambrook et al)、「
分子クローンニング:ラボラトリー−マニュアル」(コールド−スプリング−ハ
ーバー−ラボラトリー出版、1989年)とグリフィン−グリフィン(Griff
in and Griffin)、「DNA塩基配列決定法、最新イノベーション
とこれからの傾向」、応用生化学及び生物工学(1993年)38:147〜1
59、それらの開示事項は本発明にもここに引用されるものとする。サンガー法
は、概略図として図6に示されている。一般的に、酵素的配列方法(サンガー−
ジデオキシ又はチェーン−ターミネーション方法とも呼ばれる)において、鋳型
DNAの各塩基での終結を示す異なってサイズされたオリゴヌクレオチド断片は
、酵素的に生産され、サイズで区別され、核酸配列を決定する配列データを導き
出す。そのサイズの区別の結果が、図7に示されている。その方法における第一
ステップとしては、配列されるべき核酸の各異なった塩基に、異なってサイズさ
れたオリゴヌクレオチドのファミリーを生産する。例えば、全4種の塩基A、G
、C、Tより成る一本鎖DNAに対して、(各塩基に1つずつ)4つの異なって
サイズされたオリゴヌクレオチドのファミリーが生産される。図6を参照のこと
。異なってサイズされたオリゴヌクレオチドのファミリーを生産する為には、配
列された核酸(即ち、鋳型核酸)における各塩基が、鋳型核酸の1塩基に対して
、オリゴヌクレオチド−プライマー、ポリマ
ーゼ、ヌクレオチド、及びジデオキシヌクレオチドと結合される。そして、各オ
リゴヌクレオチドのファミリーは、(例えば、エレクトロフェログラムによって
)異なったサイズに区別し、核酸配列を決定する配列データ(例えば、区別パタ
ーン又はエレクトロフェログラム)を取得する為に検出される。図7を参照のこ
と。
本発明の方法を更に詳しく説明する前に、本方法に利用される重要なチェーン
−ターミネーター試薬に関して説明する。本方法に重要なのは、捕獲可能なチェ
ーン−ターミネーターを利用して、3’末端の捕獲成分より成る、異なってサイ
ズされたオリゴヌクレオチド断片のファミリー(以降、プライマー伸長生成物と
する)を生産することである。プライマー伸長生成物を生産する為に用いられた
プライマー配列は、チェーン伸長状態(chain extension co
nditions)のターゲット又は鋳型核酸より成る核酸をハイブリダイズ(
hybridize)するに十分長いものである。そこで、プライマーの長さは
、一般的に6〜40、通常は15〜30ヌクレオチドである。一般的に、プライ
マーは、合成ヌクレオチド、類似物、又は擬態(例えばペプチド核酸)等である
。プライマーは、直接(十分な部分が知られている)3’末端ターゲット核酸に
ハイブリダイズされるが、都合が良いことに、ユニバーサル−プライマー(un
iversal primer)が利用可能で、ターゲット配列の側面に位置す
る公知のベクトル配列にアニールできる。ユニバーサル−プライマー(univ
ersal primer)は、公知のものであり、民間入手可能であり、pU
C/M13、λgt10、λgt11等を含む。
本発明の1つの好適な実施例において、本発明に利用されるプライマーは、検
出可能な標識より成る。従来技術において、放射性、化学発光、及び蛍光標識と
いった様々な標識が知られており、それらの利用が本発明に適している。本方法
が、特にプライマー伸長生成物の自動検出方法への適用に向いている場合、蛍光
性標識の利用が好ましい。本発明に利用される蛍光標識されたプライマーは、一
般的には、オリゴヌクレオチドの1塩基に付いた少なくとも1種の蛍光性成分よ
り成る。
本発明に使用されるプライマーは、様々な異なった蛍光性成分で標識され、蛍
光剤又は蛍光体が、当然高いモル吸光度(high molar absorb
ance)(一般的にモル吸光度は、少なくとも103cm-1M-1であり、通常は
少なくとも104cm-1M-1であり、好ましくは105cm-1M-1である)及び高
蛍光量子収量(蛍光量子収量が一般的に、少なくとも0.1、通常は約0.2、
好ましくは約0.5)を有するべきである。
単一の蛍光剤で標識されたプライマーに関して、その蛍光剤で吸収した光の波
長が、一般的には約300〜900nm、通常は約400〜800nmであ
り、典型的な最高吸光度は約500〜800nmの波長で起こる。単一的に標識
されたプライマーに使用される特定の蛍光剤としては、フルオレスセンイ、ロー
ダミン、BODIPY、シアニン色素等が挙げられ、このことは更に、スミス、
その他、自然(1986年)321;647〜679、に説明され、そこでの開
示事項は本発明にも引用される。
本方法の特に重要な用途は、エネルギー移送標識蛍光性プライマーの使用であ
り、そこでのプライマーは、エネルギー移送関係にあるドナー及びアクセプター
蛍光剤成分を有する。エネルギー移送標識プライマーは、ジュ、その他(Ju
et al)、自然医学(1996年)2:246〜249、そしてPCT国際
出願番号95/01205及びPCT国際出願番号96/13134に説明され
、それらは本発明に引用されるものとする。
本発明のその他の実施例としては、標識プラーマーの代わりに、蛍光標識dU
TPのような、プライマー伸長生成物と結合して標識プライマー伸長生成物とな
る、標識ジデオキシヌクレオチドを用いる。
本方法において捕獲チェーン−ターミネーターとして使われるジデオキシヌク
レオチドは、固相上に存在する機能に結合可能な機能を有している。2つの機能
の反応により起こる結合は、洗浄時にも安定しているが、特定の化学若しくは物
理的手段によって分離可能な程度に十分強力なものでなければならない。一般的
に、チェーン−ターミネーター−ジデオキシヌクレオチドは、固相上に存在する
特定の結合対の他方構成要素と結合可能な特定の結合対の一方構成要素を有する
。特定の結合対としては、抗体と抗原、ビオチンとストレプトアビジン、スルフ
ィドと金(Cheng&Brajter−Toth、Anal.Chem.(1
996年)68:4180〜4185)等のようなリガンドとレセプターを含む
ものが挙げられる。そして、リガンドかレセプターかのいずれか(通常はリガン
ド)は、チェーン−ターミネーター上に存在する。チェーンーターミネーターと
して使用される特に重要なものとしては、ビオチン−ジデオキシヌクレオチドが
挙げられる。ジデオキシヌクレオチドは、先行技術に開示されており、商業的に
も入手可能(例えば、ビオチン−11−ddATP、ビオチン−11−ddGT
P、ビオチン−11−ddCTP、ビオチン−11−ddTTP等)である。
本方法に戻り、本方法で配列可能な核酸は、一般的に適したベクトルでクロー
ニングされたデオキシリボ核酸であり、様々なベクトルが従来技術によって開示
され、商業的にも入手可能であり、それらとしてはM13mp18、pGEM、
pSport等が挙げられる。本方法の第一ステップとしては、配列される配列
の4種の異なった各塩基又はターゲットDNAの為の反応混合物を準備する。各
反応混合物は、酵素的に生産されて同じ塩基で終結するプライマー
伸長生成物のファミリー(通常は、標識プライマー伸長生成物)より成る。言い
換えれば、本方法を実施するにあたって、まず、ターゲットDNAを鋳型として
異なってサイズされたプライマー伸長生成物であるA、G、C、及びTを生産す
る。異なってサイズされたプライマー伸長生成物の4つのファミリーを生産する
為、鋳型DNA、DNAポリマーゼ、(標識可能な)プライマー、4種の異なっ
たデオキシヌクレオチド、及び捕獲可能なジデオキシヌクレオチドがプライマー
伸長反応混合物に結合される。それらの成分は、複数のプライマー伸長生成物を
生産するに十分なコンディションで反応する。それらのプライマー伸長生成物は
、捕獲可能なジデオキシヌクレオチド及び後続のチェーン−ターミネーターのラ
ンダム結合の為に、異なってサイズされている。従って、異なってサイズされた
プライマー伸長生成物のAファミリーを生産するには、上記リストの試薬が、反
応混合物に結合される。そこでは、ジデオキシヌクレオチドが、捕獲可能な成分
(例えば、ビオチン−11−ddATPのようなビオチンddATP)を有する
ように修正されたddATPである。異なってサイズされたプライマー伸長生成
物の残りのG、C、及びTファミリーは、適切なジデオキシヌクレオチドを利用
して、同じような手順で生産される。
標識されたプライマーが各プライマー伸長生成物ファミリーを生産するのに使
用される場所には、標識されたプライマーは、同じでも異なっていても良い。各
プライマー伸長生成物の4つのファミリーの生産の為には、標識されたプライマ
ーが異なり、標識は殆ど同じ波長で励起できるが、区別可能な信号を提供できる
ことが好ましい。異なってサイズされたプライマー伸長生成物が伴に同じ分離培
地に存在する時、区別可能な信号を有した標識を使用することによって、前記生
成物を区別する機会が得られる。その結果、優れた配列データが得られ、従って
、より正確な配列決定を行うことができる。例えば、約470〜480nmの波
長で励起可能な(525nmで発光する)第一蛍光性標識を有したプライマー伸
長生成物のAファミリーを準備する。G、C、及びTファミリーの生産に使用さ
れる標識は、Aファミリーに使用したのと同じ波長で励起されるが、夫々555
nm、580nm、及び605nmで発光する。従って、プライマー伸長標識は
、全4種の標識が殆ど同じ波長で吸収されるが、異なった波長で発光し、発光さ
れた光の波長が、検出可能で区別可能な量(例えば、少なくとも15nmの違い
)で異なっている。
本方法の次のステップは、プライマー伸長生成物の隔離である。プライマー伸
長生成物は、まずプライマー伸長生成物を、3’末端プライマー伸長生成物の捕
獲成分を通して固相上に捕獲し、反応混合物の残りの成分から固相を区別するこ
とによって隔離される。
プライマー伸長生成物の捕獲は、固相を有したプライマー伸長生成物のファ
ミリーより成る反応混合物に接触することによって起こる。固相は、その表面に
特定の結合対の一方を有する。特定の結合対の他方は、上記のように、プライマ
ー伸長生成物に結合される。接触は、特定の結合対の安定した結合を提供するの
に十分なコンディションのもとで起こる。本方法の遂行に当たっては、様々な異
なった固相が適しており、そのような相は、従来技術においても知られており、
商業的にも入手可能である。ここでの特定の固相は、ポリスチレン−ペッグ(p
olystyrene peg)、シート、ビード(beads)、磁気ビード、
金面(gold surface)等を含む。そのような固相の表面は、特定の
結合対を有するように変更される。(例えばビオチニレイテッド−プライマー伸
長生成物に関して、ストレプタビジン−コーテッド磁気ビードが固相として使用
される。)
固相上のプライマー伸長反応生成物の捕獲後、固相は、鋳型DNA、過剰プラ
イマー、過剰デオキシ及びジデオキシヌクレオチド、ポリマーゼ、塩化ナトリウ
ム、捕獲成分を持たない伸長生成物等といった反応混合物の残りの成分から区別
される。区別は、如何なる便利な方法論を利用しても施行可能である。その方法
として典型的なものは、固相を洗浄する工程を含み、次のステップに遠心法等を
取り入れることができる。固相を区別するに利用される特定の方法は、使用され
る方法が固相からプライマー伸長反応生成物の結合リンクを分離しないものであ
る限り、本発明にとって致命的な要求事項とはならない。
そして、プライマー伸長生成物は、固相より開放される。生成物は、特定の結
合対間の結合性質によっては、化学的及び物理的手段を有した如何なる従来技術
を用いても開放できる。例えば、結合がビオチン−ストレプトアビジン結合であ
る場合、(ビオチン−ストレプトアビジン結合を分離し、プライマー伸長生成物
を固相より開放する)アルムアミド等のような化学的分離剤を固相に接触させる
ことによって分離する。そして、開放されたプライマー伸長生成物は、溶出、遠
心等を含んだ如何なる従来手段を用いても、固相より区別することができる。
本方法の次のステップとして、プライマー伸長生成物のサイズを区別する。プ
ライマー伸長生成物のサイズ区別は、一般的に電気泳動法を通じて達成でき、そ
の場合、プライマー伸長生成物が従来技術に知られるような電界の影響下にある
分離培地を介して移動する。代わりに、非標識プライマー伸長生成物が検出され
る質量分析(MS)での配列に関し、配列断片は、フライト−チェンバー(fl
ight chamber)の時間で区別され、断片の質量で検出される。ロス
キー、その他(Roskey et al)、Proc.Natl.Acad.S
ci.アメリカ(1996年)93:4724〜4729を参照のこと。本方法
論は、正確な配列データを取得するのに特に重要なものとなる。
何故なら、捕獲可能なチェーン−ターミネーターで終結するプライマー伸長生成
物のみを供給する手段を提供し、その他の全集団を排除することによって正確な
結果を得ることができる。
断片がサイズ区別される方法において、サイズ区別されたプライマー伸長生成
物が検出され、サイズ区別された生成物の検出が、ターゲット又は鋳型DNAの
配列を決定する配列データを導き出す。例えば、断片ファミリーが、従来からあ
る4つの別々(ターゲットDNAの各塩基に1つ)のレーンのスラブ−ゲルにお
いて区別されると、区別パターンという形で配列データが得られる。図7を参照
のこと。そして、ターゲットDNA配列が、その区別パターンより(例えば、ゲ
ルを分析することによって)得られる。図7左の塩基を参照のこと。代わりに、
自動検出装置が利用され、全反応生成物が、同じ電気泳動培地にて区別されると
、配列データは、従来技術で知られるように、エレクトロフェログラムという形
を取り、そこからDNA配列が決定される。
標識されたプライマーが利用され、標識されたプライマーの特質が、標識プラ
イマー伸長生成物ファミリーが同じ電気泳動培地(例えば、スラブ−ゲルの単一
レーンや、同じ毛細管や、異なった電気泳動メディア)(例えば、スラブ−ゲル
の異なったレーン又は異なった毛細管)において区別できるかを一部決定する。
同じ検出可能な単一物(single)を生産する同じ標識プライマーが、各異
なったファミリーにプライマー伸長生成物を生産するのに使用されると、プライ
マー伸長生成物ファミリーは、異なった電気泳動メディアに電気泳動的に区別さ
れるので、核酸の各塩基に対するプライマー伸長生成物ファミリーが区別可能と
なる。
プライマー伸長生成物の各ファミリーを生産する為に異なった標識プライマー
が使用され、生成物ファミリーは、一緒にグループ化され、電気泳動的に同じ電
気泳動培地において区別される。この好適な方法において、プライマー伸長生成
物ファミリーが、プライマー伸長生成物の生産ステップに続く如何なる段階にお
いても、結合又は寄せ集め(pooled)が可能となる。従って、プライマー
伸長生成物は、電気泳動区別前に、固相に接触する前か、固相に向かうか、若し
くは固相から区別された後で集めること(can be pooled)が可能
である。
ここに本配列方法を実行する為のキットも提供される。少なくとも、前記キッ
トは、捕獲可能なチェーンターミネーター(例えば、ビオチン−ddATP、d
dTTP、ddCTP、及びddGTP)を有す。プライマー伸長生成物が標識
された実施例において、キットは、更に標識デオキシヌクレオチド又好ましくは
標識プライマーといった標識プライマー伸長生成物の生産手段を有し、そこで、
好ましくは標識プライマーが、同じ波長で吸収され、区別可能な蛍光
性信号を発するエネルギー移送標識プライマーである。
便宜上、キットには、更に1つ以上の酵素配列に利用性の高い(例えば、ベクト
ル、ポリマーゼ、デオキシヌクレオチド、バッファー等の)試薬を追加すること
ができる。更に、キットは、複数の容器を含み、各容器は、1つ以上の必要な(
標識プライマー、非標識プライマー又は標識プライマー、dNTPs、蛍光性d
NTPsのフラクションを含むdNTPs、捕獲可能なddNTP、ポリマーゼ
等の)試薬を含む。キットは、更に(磁気ビードで被覆したストレプトアビジン
等の)捕獲可能なddNTPと結合可能な成分から成る固相を含む。
以下の例は、実例であって、これらに限定されるものではない。
実験
DNA塩基配列決定手順
塩基配列は、ABI377配列器(アプライド−バイオシステム)に、M13m
p18又はpGEM鋳型DNA、エネルギー移送プライマー(−40M13fo
rward又は−28M13reverse)(ヴァンドアー−ホーン、その他
、(Vandor Horn et al)コメント、1996年、23、7、
アマーシャム−ライフ−サイエンス(Amersham Life Scien
ce)を参照のこと)、及びサーモ−シィークエンセ(Thermo Sequ
enase)(アマ−シャム−ライフ−サイエンス)を用いて行われた。ビオチン
−ターミネーター(BIOTIN−111−ddATP、ddGTP、ddTT
P、及びddCTP)は、NENライフ−サイエンス(ボストンUSA)から入
手できる。各色素/ddNTPの組み合わせに1つ、計4つの反応が試験された
。ddCTPを含んだ反応は、F10Fプライマー、F10Gプライマーとdd
ATP、F10TプライマーとddGTP、そして、F10RとddTTPと伴
に試験された。これら特定のプライマーは、上記のヴァンドアー−ホーン、その
他(Vander Horn et al)、に説明されている。A及びG反応の
為に、dNTP/ddNTP混合物1.6μl(7−deaza−dGTP、d
ATP、dTTP、及びdCTPを各700mMとビオチン−11−ddATP
又はビオチン−11−ddGTPを2.5μM)が、反応バッファー0.4μl
(260mM Tris/HCI pH9.5、65mM MgCl2)、プラ
イマー0.2pmol、サーモ−ジィークエンセ1.0pl(1.7U/μl)、
及びDNA鋳型2μlと混合された。T及びC反応の為に、dNTP/ddNT
P混合物3.2μl(7−deaza−dGTP、dATP、dTTP、及びd
CTPを各613mMとビオチン−11−ddT
TP又はビオチン−11−ddCTPを2.5μM)が、反応バッファー0.8
μl(260mM Tris/HCI pH9.5、65mM MgCl2)、プ
ライマー0.4pmol、サーモ−シィークエンセ(THermo Seque
nase)2.0μl(1.7U/μl)、及びDNA鋳型4μlと混合された。
配列サンプルに対して、摂氏96度で20秒間、摂氏50度で20秒間、摂氏6
0度で3分間を31サイクル実施した。そして、10xTEバッファー4μl加
えて、各配列に4つの反応混合液を停止し、1つのバイアル(vial)で結合
される。
固相の精製手順
ストレプトアビジン−コーテッド磁気ビード(ダイナビーズM280)80μl
が、結合洗浄緩衝液(binding and washing buffer
又はB&W)(10mM Tris−HCL、pH7.5、1mM EDTA及
び2.0M NaCL)2x80μlで洗浄され、B&W緩衝液50μlで再び
懸濁される。全配列反応混合液は、(ダイナルからの)ストレプトアビジン−コ
ーテッド磁気ビーズと結合され、時より混ぜられながら1時間摂氏50度で定温
放置される。磁気ビーズが磁石で固定化される一方、上澄み液が取り除かれた。
そして、ビーズは、B&W緩衝液2x100μlで2回、100μlxTEで1
回、脱イオン水100μlで1回洗浄された。ビオチニレイテッド配列DNA断
片は、摂氏94度で5分間、10mM EDTAを含むホルムアミド6μlにお
ける磁気ビーズから溶離され、上澄み液1μlが、377インストウルメント(
377Instrument)中のポリアクリルアミド7Mウレア変性ゲル(p
olyacrylamide 7 M urea denaturing ge
l)4%にロード(load)された。ABI337DNA配列器を有した1x
TBE緩衝液とを利用して、48Aラン−モードで、10時間電気泳動された。
結果
図5A、5B、及び5Cは、上記方法に従ってストレプトアビジン−コーテッド
磁気ビーズを利用して精製された後のビオチン−ターミネーターで生産されたp
GEMの4色の配列サンプルの完全電気泳動を示す。そのデータには、本質的に
ノイズがない。有効な配列は、800bpまで得られる。同じような結果が他の
鋳型で得られた。
比較結果
本方法で入手可能な結果をエタノール沈殿で得られる結果と比較する為に、ビ
オチン−ターミネーターを利用して4つの配列サンプルを用意した。そのうち3
つの配列サンプルは、ストレプトジン−コーテッド−ビーズを利用して精製され
、一方残りのサンプルは、エタノール沈殿にかけられる。図2は、ビオチン−タ
ーミネーターで生産された4つの配列サンプルの配列ゲルイメージの一部である
。サンプル1〜3は、完全にプライマー−ピークが除去されるストレプトアビジ
ン−コーテッド磁気ビーズで精製された。サンプル4は、エタノール沈殿によっ
て精製され、大きなプライマー−ピークが残る。
配列断片は、鋳型として、M13−40、F10F、F10G、F10T、及
びF10Rと4色のエネルギー移送プライマー、M13mp18とpGEMを利
用して生産される。一方のセット(3A)では、ビオチン−ターミネーターが利
用され、一方他方のセット(3B)では、標準の非ビオチニレイテッド−ターミ
ネーターが利用される。セット3Aの配列断片は、ストレプトアビジン−コーテ
ッド磁気ビーズで精製され、一方セット3Bの断片は、ストレプトアビジン−コ
ーテッド磁気ビーズで精製されない。図3A及び3Bは、ビオチン−ターミネー
ターで生産された4色配列データであり、ストレプトアビジン−コーテッド磁気
ビーズ(3A)で精製された後のエネルギー移送(ET)プライマーが、ETプ
ライマーと標準ddNTPs(3B9で生産された配列データより一層清浄なも
のであることを示している。3Bにおける誤停止ピーク(false stop
peak)は、配列エラーとなった。同配列領域において、誤ピークは3Aに
は見うけられなかった。図4A及び4Bは、ストレプトビビジン−コーテッド磁
気ビーズ(4A)で精製された後のビオチン−ターミネーターとETプライマー
で生産された4色配列データの分解能が、エタノール沈殿(4B)によってのみ
精製された同じ配列サンプルより良いことが図示されている。
上記の結果及び検討項目は、標識プライマーと固相捕獲可能なチェーン−ター
ミネーターを酵素的配列法に利用することによって、たとえ長DNA鎖であって
も、非常に正確な配列データを得ることができることを実証した。本方法を利用
することによって、誤停止、セルフ−プライミングRNAself−primi
ng RNA)、及び裸2本鎖DNAの為にバックグラウンドが除去されると、
真DNA配列断片のみが隔離され、検出される。更に、本方法を使用することに
よって、塩化ナトリウム、過剰プライマー、鋳型核酸、及び他の配列断片生産に
必要な試薬が、検出及び隔離以前に配列断片から区別され、結果の改善となる。
本明細書に引用された全ての出版物及び特許出願は、あたかも各々の出版物又
は特許出願が明らかに夫々引用されるべく表示されたかの様に、ここに引用
されるものとする。出版物の引用は、出願日以前の開示を示すもので、本発明が
従来技術によって出版物より前に発明されたと主張する権利が無いということを
承認したと解釈されるべきではない。
明確性と理解性を目的として、前述の発明が図や例によってある程度詳細に説
明されているが、本発明の開示事項を参照することによってある程度の変更及び
改修が本請求項の精神又は範疇から離れること無しに実施可能であることは当業
者にとって自明なことである。
─────────────────────────────────────────────────────
フロントページの続き
(81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE,
DK,ES,FI,FR,GB,GR,IE,IT,L
U,MC,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF
,CG,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE,
SN,TD,TG),AP(GH,GM,KE,LS,M
W,SD,SZ,UG,ZW),EA(AM,AZ,BY
,KG,KZ,MD,RU,TJ,TM),AL,AM
,AT,AU,AZ,BA,BB,BG,BR,BY,
CA,CH,CN,CU,CZ,DE,DK,EE,E
S,FI,GB,GE,GH,GM,GW,HU,ID
,IL,IS,JP,KE,KG,KP,KR,KZ,
LC,LK,LR,LS,LT,LU,LV,MD,M
G,MK,MN,MW,MX,NO,NZ,PL,PT
,RO,RU,SD,SE,SG,SI,SK,SL,
TJ,TM,TR,TT,UA,UG,UZ,VN,Y
U,ZW
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 ここにクレームされるのは: 1. (a) 核酸、ポリマーゼ(polymerase)、デオキシヌクレオチ ド、オリゴヌクレオチド−プライマー及び捕獲可能なデオキシ−チェーン−ター ミネーター(capturable dideoxy chain termi nator)を、捕獲可能なプライマー伸長生成物を生産するに十分なコンディ ションで、結合されることによって酵素的に生産された捕獲可能なプライマー伸 長生成物のファミリーから構成された夫々の反応混合物が、前記核酸の各塩基に 応じて準備し、 (b) 固相に捕獲されたプライマー伸長生成物を生産する為に、固相上に存 在する成分と前記チェーン−ターミネーターの相互作用を通じて、各反応混合物 を、捕獲可能な前記チェーン−ターミネーターより成る前記プライマー伸長生成 物を捕獲可能な固相に接触させ、 (c) 前記固相に捕獲されたプライマー伸長生成物を反応混合物から区別し 、 (d) 前記プライマー伸長生成物を固相から開放し、 (e) 配列データを導き出す為に、サイズを区別し、前記の開放されたプラ イマー伸長生成物を検出し、 (f) 前記配列データより前記核酸の配列を決定する、 核酸の配列決定方法。 2. 前記プライマー伸長生成物が標識されていることを特徴とする、請求項1 に記載の、 核酸の配列決定方法。 3. 少なくとも一つの前記プライマー及びデオキシヌクレオチドが標識されて いることを特徴とする、請求項2に記載の、 核酸の配列決定方法。 4. 前記標識が、蛍光性標識であることを特徴とする、請求項2又は3の、 核酸の配列決定方法。 5. 前記蛍光性標識が、エネルギー移送標識であることを特徴とする、請求 項4の、 核酸の配列決定方法。 6. 前記成分が特定の結合対の構成要素(members of a spe cific binding pair)であることを特徴とする、請求項1〜 5の何れかに記載の、 核酸の配列決定方法。 7. 請求項1〜6に記載の方法に従って生産される、 プライマー伸長生成物。 8. 前記生成物が標識されることを特徴とする、請求項7に記載の、 プライマー伸長生成物。 9. 少なくとも一つの標識されたオリゴヌクレオチド−プライマー標識dNT Psと、 固相捕獲可能チェーン−ターミネーターとより成る、 核酸配列決定に使用するキット。 10.更に固相を有した、 請求項9に記載のキット。
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