WO2024004805A1 - 免疫学的測定方法 - Google Patents

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WO2024004805A1
WO2024004805A1 PCT/JP2023/023041 JP2023023041W WO2024004805A1 WO 2024004805 A1 WO2024004805 A1 WO 2024004805A1 JP 2023023041 W JP2023023041 W JP 2023023041W WO 2024004805 A1 WO2024004805 A1 WO 2024004805A1
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antibody
sample
measured
immunoassay
substance
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Application number
PCT/JP2023/023041
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English (en)
French (fr)
Inventor
建午 藤村
Original Assignee
積水メディカル株式会社
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Publication date
Application filed by 積水メディカル株式会社 filed Critical 積水メディカル株式会社
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Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals

Definitions

  • the present invention relates to an immunoassay method performed in the presence of anti-C1 antibody or anti-C2 antibody.
  • the present invention also relates to a method for suppressing a non-specific reaction using an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody.
  • the present invention also relates to an immunoassay reagent, an immunoassay reagent kit, and a non-specific reaction inhibitor containing an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody.
  • an immunoassay method In the field of diagnostic reagents, target substances present in biological samples are often measured using immune reactions. This method is called an immunoassay method. Since this method utilizes an antigen-antibody reaction, it is a highly specific measurement method. Various substances exist in biological samples. Therefore, binding that is not based on a specific reaction occurs or a specific immune reaction is hindered, resulting in measurement errors. This phenomenon is called a non-specific reaction, and the substance that causes it is called a non-specific factor. Heterophilic antibodies and rheumatoid factor (RF) are known as non-specific factors. Heterophilic antibodies are a general term for human antibodies that show reactivity with animal-derived antibodies, which are the main component of immunoassay methods.
  • RF rheumatoid factor
  • HAMA human anti-mouse immunoglobulin antibody
  • Rheumatoid factor appears in patients with rheumatoid arthritis and collagen disease.
  • Rheumatoid factor like HAMA, shows reactivity with animal-derived antibodies.
  • Rheumatoid factor and HAMA are both known to be human immunoglobulin G and immunoglobulin M (Non-Patent Document 1).
  • Patent Documents 1 to 3 disclose techniques for suppressing non-specific reactions in immunological measurement methods.
  • Patent Document 1 discloses a method of pretreating a sample with an animal-derived antibody that binds to human rheumatoid factor (RF) to suppress nonspecific reactions caused by RF.
  • animal-derived antibodies include anti-human IgG antibodies, anti-human IgA antibodies, and/or anti-human IgM antibodies.
  • the technique of Patent Document 2 aims to eliminate the influence of complement component C1q, which is a non-specific factor, when measuring rheumatoid factor using denatured human immunoglobulin.
  • Patent Document 2 discloses a method of inactivating C1q using Fab or Fab' of an anti-C1q antibody in order to eliminate the influence of C1q.
  • Non-Patent Document 2 states that the epitope recognized by rheumatoid factor is close to the binding site of C1q of the immune complex. Furthermore, for the above-mentioned reasons, there is a description that when measuring immune complexes using rheumatoid factor, C1q is removed by EDTA treatment. Therefore, the technique of Patent Document 2 is aimed at eliminating the influence of C1q, which is a non-specific factor, in quantifying rheumatoid factor.
  • Patent Document 2 does not consider whether C1q influences as a non-specific factor in immunological measurement methods other than rheumatoid factor quantification. Furthermore, this document does not consider at all whether non-specific reactions can be suppressed by anti-C1q antibodies.
  • Patent Document 3 describes a technique for measuring antigens and antibodies in serum by a solid phase method using enzyme-labeled antibodies. It is disclosed that the effects of inhibitory factors can be suppressed by adding anti-C1q (possibly an anti-C1q antibody or a misspelling of C1q), EDTA, kaolin, antigen-antibody complexes, ammonium salts, zymosan, etc. to the reagent.
  • the inhibitory factor at issue in this patent document is that in the solid-phase method using an enzyme-labeled antibody, the inhibitory factor forms its own film along the solid phase surface and blocks the antigen-antibody reaction. It is assumed that this is the cause. Therefore, the inhibiting factor is considered to be a factor that causes a so-called negative measurement error.
  • Patent Document 3 discloses that the inhibitory factor is a factor that is uniformly present in fresh serum and is inactivated over time. In other words, this document does not examine non-specific factors that still exist in serum after a certain period of time.
  • Patent Document 1 discloses a method for suppressing non-specific reactions caused by human RF using anti-human IgM antibodies, anti-human IgG antibodies, and anti-human IgA antibodies. This method is currently in practical use with various reagents. However, according to the tests conducted by the present inventors, it has become clear that even if this method is implemented, there are some nonspecific reactions that cannot be suppressed. Further, Patent Document 2 and Non-Patent Document 2 are methods for suppressing non-specific reactions limited to the measurement of rheumatoid factors. Patent Document 3 is a method for suppressing coating of an inhibitory factor present in fresh serum on a solid phase in a solid phase method using an enzyme-labeled antibody.
  • Patent Documents 2 and 3 only disclose limited methods for suppressing non-specific reactions.
  • An object of the present invention is to provide a new method for suppressing non-specific reactions in immunological measurement methods.
  • the present inventors investigated the non-specific reaction suppressing effects of various substances. As a result, the inventors discovered that non-specific reactions can be suppressed by performing an immune reaction in the presence of anti-C1 or anti-C2 antibodies, and have completed the present invention. That is, the present invention has the following configuration.
  • ⁇ 1> A method for immunologically measuring a substance to be measured in a sample, which is characterized by performing an immune reaction in the presence of an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody (however, if the sample is not tested in the presence of an anti-C1 antibody) (excluding methods that immunologically measure rheumatoid factor in the skin).
  • the immunological measurement method according to ⁇ 1> wherein the immunological measurement method is a method based on a homogeneous method or a heterogeneous method.
  • the immunoassay method according to ⁇ 2> wherein the method based on the homogeneous method is latex immunoturbidimetry.
  • ⁇ 4> A step of bringing the substance to be measured in the sample into contact with the anti-C1 antibody or the anti-C2 antibody in a solution; adding latex particles carrying a specific binding partner for the substance to be measured into the solution; a step of optically detecting the degree of aggregation of latex particles in the solution;
  • the immunoassay method according to ⁇ 3> comprising: ⁇ 5> Any one of ⁇ 1> to ⁇ 4>, wherein the anti-C1 antibody is one or more selected from the group consisting of C1q antibody, anti-C1s antibody, and anti-C1r antibody, and the anti-C2 antibody is anti-C2a antibody or anti-C2b antibody.
  • ⁇ 6> A method for suppressing a non-specific reaction in a method for immunologically measuring a substance to be measured in a sample, which method is characterized by carrying out an immune reaction in the presence of an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody. (excluding non-specific reaction suppression method in a method of immunologically measuring rheumatoid factor in a sample in the presence of anti-C1 antibody).
  • ⁇ 7> The method for suppressing a non-specific reaction according to ⁇ 6>, wherein the immunological measurement method is a method based on a homogeneous method or a heterogeneous method.
  • ⁇ 8> The method for suppressing a non-specific reaction according to ⁇ 7>, wherein the method based on the homogeneous method is latex immunoturbidimetry.
  • the method for suppressing a non-specific reaction according to ⁇ 8> comprising: ⁇ 10> Any one of ⁇ 6> to ⁇ 9>, wherein the anti-C1 antibody is one or more selected from the group consisting of C1q antibody, anti-C1s antibody, and anti-C1r antibody, and the anti-C2 antibody is anti-C2a antibody or anti-C2b antibody.
  • the immunoassay reagent described in . ⁇ 15> An immunoassay reagent kit containing an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody (excluding an immunoassay reagent kit for measuring rheumatoid factor containing an anti-C1 antibody).
  • the immunoassay reagent kit according to ⁇ 15> wherein the immunoassay method is a method based on a homogeneous method or a heterogeneous method.
  • the reagent kit for immunoassay according to ⁇ 16> wherein the method based on the homogeneous method is latex immunoturbidimetry, and the reagent kit for immunological measurement includes the following.
  • First reagent containing anti-C1 antibody or anti-C2 antibody (2) Second reagent containing latex particles carrying a specific binding partner for the substance to be measured ⁇ 18> Any one of ⁇ 15> to ⁇ 17>, wherein the anti-C1 antibody is one or more selected from the group consisting of C1q antibody, anti-C1s antibody, and anti-C1r antibody, and the anti-C2 antibody is anti-C2a antibody or anti-C2b antibody.
  • a non-specific reaction inhibitor in an immunoassay method containing an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody as an active ingredient (However, a non-specific reaction inhibitor in an immunoassay method for measuring rheumatoid factor containing an anti-C1 antibody as an active ingredient) (excluding agents).
  • a non-specific reaction inhibitor in an immunoassay method for measuring rheumatoid factor containing an anti-C1 antibody as an active ingredient) excluding agents.
  • the anti-C1 antibody is any one or more selected from the group consisting of C1q antibody, anti-C1s antibody, and anti-C1r antibody
  • the anti-C2 antibody is anti-C2a antibody or anti-C2b antibody.
  • the present invention in an immunoassay method, by performing an immune reaction in the presence of an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody, it was possible to suppress a non-specific reaction caused by a non-specific factor contained in a sample. Therefore, the present invention has made it possible to perform accurate measurements. In particular, it is of great significance that the present invention makes it possible to suppress non-specific reactions that could not be suppressed even with commercially available non-specific reaction inhibitors.
  • the immunological measurement method of the present invention is a method for measuring a substance to be measured in a sample, and is characterized by carrying out an immune reaction in the presence of an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody.
  • this is a method of immunologically measuring a substance to be measured in a sample using a specific binding partner, using an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody as a non-specific reaction inhibitor.
  • the specific binding partner is other than anti-C1 antibody or anti-C2 antibody.
  • Immunological measurement methods are further divided into homogeneous methods and heterogeneous methods.
  • the homogeneous method is a measurement method that specifically detects a reaction progressing with a substance to be measured in a mixed solution (reaction solution) of a sample and a reagent solution without performing B/F (bond/non-bond) separation.
  • the heterogeneous method is a measurement method in which surplus components not involved in the measurement reaction are washed and removed by a B/F separation operation, and then the main reaction is allowed to proceed and detected.
  • the problem with the heterogeneous method is that it requires a lot of steps and time for measurement because it involves a cleaning step. On the other hand, this method has the advantage of being relatively unaffected by non-specific reactants.
  • the homogeneous method does not involve a washing step, so there is a problem that it is susceptible to non-specific reactions.
  • this method is simple with few steps, and the time required for measurement is short. Therefore, this method is widely sought after in the field of clinical diagnosis.
  • Examples of the homogeneous method include a measurement method using immunoturbidimetry (TIA) and immunochromatography (lateral flow method, flow-through method).
  • TIA is a method for qualitatively or quantitatively detecting an analyte in a sample based on the degree of aggregation of an immune complex formed by cross-linking of the analyte (substance to be measured) with a specific binding partner such as an antibody. be.
  • LTIA latex immunoturbidimetry
  • LTIA latex immunoturbidimetry
  • LTIA uses latex particles as an insoluble carrier to amplify agglutination signals.
  • LTIA is a method suitable for optical detection.
  • LTIA is a highly versatile measurement method that is applied to various inspection items because it is easy to automate.
  • Examples of the heterogeneous method include an ELISA method using a well-shaped plate and a chemiluminescence method.
  • the present invention can utilize any of the above immunoassay methods.
  • the homogeneous method which is relatively susceptible to non-specific reactions, is preferred because it can be expected to be more effective.
  • C1 is one of the classical pathway complement proteins.
  • C1 is composed of three different components, C1q (1 molecule), C1r (2 molecules), and C1s (2 molecules), as one large molecule (molecular weight 700 kDa).
  • C1q is composed of six subunits consisting of three types of polypeptides. The molecular weight of C1q is 400 kDa.
  • C1r is a single chain protein with a molecular weight of 83 kDa.
  • C1r forms a double strand connected by an -ss- bond.
  • C1s is a single chain protein with a molecular weight of 83 kDa.
  • C1s forms a double strand connected by -ss- bonds (Inspection and Technology, vol. 18 no. 11, p. 21-23, Figure 6, (October 1990) Igaku Shoin).
  • the anti-C1 antibody used in the present invention may be any antibody against C1, and is preferably one or more antibodies selected from the group consisting of C1q antibody, anti-C1s antibody, and anti-C1r antibody. Among these, anti-C1q antibodies are particularly preferred.
  • C2 is one of the classical pathway complement proteins.
  • C2 is a single chain protein with a molecular weight of 110 kDa.
  • C2 is cleaved by C1s or MASP-2 in the body and decomposed into C2a (molecular weight 34 kDa) and C2b (molecular weight 74 kDa) (p. 25-26).
  • the anti-C2 antibody used in the present invention may be any antibody against C2.
  • the anti-C2 antibody used in the present invention is more preferably an anti-C2a antibody or an anti-C2b antibody.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody used in the present invention may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody.
  • the anti-C2 antibody used in the present invention is more preferably a monoclonal antibody.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody used in the present invention in addition to the whole antibody molecule, it is also possible to use a functional fragment of an antibody having antigen-antibody reaction activity.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody used in the present invention can be obtained through an immunization process for common animals (mouse, goat, sheep, etc.).
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody used in the present invention is an antibody (chimeric antibody, humanized antibodies, fully humanized antibodies, etc.).
  • Examples of functional antibody fragments include F(ab') 2 and Fab', single chain antibodies (scFv), VHH (variable domain of heavy chain of heavy chain antibody) antibodies, and IgNAR, which are fragments with antigen-antibody reaction activity.
  • Examples include (new antigen receptor) antibodies.
  • Functional fragments of these antibodies can be produced by treating the antibodies obtained as described above with a proteolytic enzyme (eg, pepsin, papain, etc.).
  • a proteolytic enzyme eg, pepsin, papain, etc.
  • anti-C1 antibodies or anti-C2 antibodies include functional fragments.
  • any one of the group consisting of anti-C1q antibody, anti-C1s antibody, and anti-C1r antibody may be used.
  • the antibodies against C1 used in the present invention can also be used in combination of two or more selected from these.
  • an anti-C2a antibody or an anti-C2b antibody may be used.
  • antibodies against C2 can also be used in combination.
  • anti-C1 antibodies can also be used in combination with anti-C2 antibodies.
  • the anti-C1 antibody can also be used in combination with other non-specific reaction inhibitors such as anti-C3 antibodies and anti-human IgM antibodies.
  • the expressions that the antibody "reacts” with the antigen, the expression that the antibody “recognizes” the antigen, and the expression that the antibody and the antigen “bind” are used interchangeably. These expressions are not limited to the above examples.
  • Confirmation of whether an antibody "reacts” with an antigen (compound) can be performed by antigen-immobilized ELISA, competitive ELISA, sandwich ELISA, or the like.
  • the confirmation can be performed by a method using the principle of surface plasmon resonance (SPR method), etc.
  • the SPR method can be carried out using equipment, sensors and reagents commercially available under the name Biacore®.
  • the antibody against C1 or the antibody against C2 used in the present invention can be produced as follows.
  • a commercially available human-derived C1 protein or C2 protein is prepared as an antigen (immunogen). These proteins are dissolved in a solvent such as phosphate buffered saline.
  • the antibody can be produced by administering this solution to an animal and immunizing it. After adding an appropriate adjuvant to the solution as necessary, immunization may be performed using the emulsion.
  • the adjuvant commonly used adjuvants such as water-in-oil emulsions, water-in-oil-in-water emulsions, oil-in-water emulsions, liposomes, and aluminum hydroxide gels can be used.
  • the adjuvant proteins derived from biological components, peptide substances, etc. may be used.
  • Freund's incomplete adjuvant or Freund's complete adjuvant can be suitably used.
  • the administration route, dosage, or timing of administration of the adjuvant It is desirable that the adjuvant be appropriately selected so as to enhance the desired immune response in the animal immunized with the antigen.
  • the type of animal used for immunization is not particularly limited.
  • a mammal is preferably used.
  • the mammal used include mice, rats, cows, rabbits, goats, sheep, alpacas, and more preferably mice and rats.
  • Immunization of animals may be performed according to general techniques. The immunization can be performed, for example, by subcutaneously, intradermally, intravenously, or intraperitoneally injecting a solution of the antigen into the animal.
  • the antigen is preferably used in combination with an adjuvant. Immune responses generally vary depending on the type and strain of animal being immunized. Therefore, it is desirable to set the immunization schedule appropriately depending on the animal used. It is preferable to repeat antigen administration several times after the first immunization.
  • spleen cells or lymph node cells which are antibody-producing cells, are removed from the immunized animal.
  • hybridomas can be produced by fusing these cells with a myeloma-derived cell line. It is preferable to use cells with high antibody production ability (quality and quantity) for cell fusion.
  • the myeloma-derived cell line is preferably compatible with the animal from which the antibody-producing cells to be fused are derived.
  • Cell fusion can be performed according to methods known in the art. As the method, a polyethylene glycol method, a method using Sendai virus, a method using electric current, etc. can be adopted.
  • the resulting hybridoma can be propagated according to conditions commonly used in the art.
  • the hybridoma can be selected by confirming the properties of the antibody produced.
  • Hybridoma cloning can be performed by well-known methods such as the limiting dilution method and the soft agar method.
  • hybridomas can also be carried out efficiently by considering the conditions under which the produced antibodies will be used for actual measurement. For example, an antibody obtained by immunizing an animal is reacted with C1 or C2 immobilized on a solid phase in the presence of a compound whose cross-reactivity is desired to be confirmed. The reactivity in the presence of the compound is compared with the reactivity in the absence of the compound. Through this comparison, hybridomas that produce the desired antibody can be selected more efficiently. Further, an antibody obtained by immunizing an animal is reacted with C1 or C2 immobilized on a solid phase in the presence of a component derived from a biological sample. By comparing the reactivity in the presence of the component and the reactivity in the absence of the component, hybridomas that produce the desired antibody can be selected more efficiently.
  • the binding ability of the produced antibody to C1 or C2 is assayed using methods such as ELISA, RIA, and fluorescent antibody methods. By these methods, it can be confirmed whether the selected hybridoma produces a monoclonal antibody having desired properties.
  • mass culturing the hybridomas selected as described above monoclonal antibodies having desired properties can be produced.
  • the method of mass culturing is not particularly limited. Examples of mass culture methods include a method in which hybridomas are cultured in an appropriate medium to produce monoclonal antibodies in the medium. In addition, examples of mass culture methods include a method in which hybridomas are injected into the peritoneal cavity of a mammal, allowed to proliferate, and antibodies are produced in ascites fluid.
  • Monoclonal antibodies can be purified by a method for purifying antibodies from antiserum.
  • the antibody can be purified by an appropriate combination of anion exchange chromatography such as DEAE, affinity chromatography, ammonium sulfate fractionation, PEG fractionation, ethanol fractionation, and the like.
  • methods for making anti-C1 antibody or anti-C2 antibody exist in the immune reaction system include a method using anti-C1 antibody or anti-C2 antibody as one of the reagent components of an immunoassay reagent, a method using a diluted solution of a sample, Examples include a method of adding an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody to a treatment solution or the like.
  • the immunoassay reagent is a liquid reagent
  • the inside of the immune reaction system refers to the liquid phase in which the sample and the liquid immunoassay reagent are mixed and the immune reaction is performed.
  • a sample may be mixed with an LTIA measurement reagent containing an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody.
  • the sample may be mixed in advance with a pretreatment solution containing an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody, and then mixed with an immunoassay reagent.
  • the sample may be mixed in advance with a pretreatment solution containing an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody and then dropped onto a microplate.
  • the sample may be mixed with a solution containing an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody and a detection antibody and then dropped onto a microplate.
  • the sample may be mixed in advance with a pretreatment solution containing an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody, and then mixed with an immunoassay reagent.
  • an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody may be included in the immunoassay reagent (for example, a solution containing a detection antibody or antigen, and magnetic particles).
  • the term "inside the immune reaction system” refers to the solid phase where the immune reaction between the liquid sample and the binding partner is performed.
  • the sample may be mixed in advance with a pretreatment solution containing anti-C1 antibody or anti-C2 antibody and then dropped onto the immunochromatography test piece.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody may be kept dry on a sample pad, and then the sample may be dropped onto the sample pad.
  • anti-C1 antibody or anti-C2 antibody is dissolved from the sample pad. The antibody becomes present in the reaction system by developing the solid phase.
  • the concentration of anti-C1 antibody or anti-C2 antibody is preferably a concentration that does not strongly affect the immune reaction between the substance to be measured and the specific binding partner. Moreover, any concentration may be used as long as it can exhibit the desired non-specific reaction suppressing effect. A person skilled in the art can appropriately set the concentration according to the substance to be measured or the type of specimen. The concentration of anti-C1 antibody or anti-C2 antibody within the immune reaction system varies depending on the reagent composition of the immune reaction system.
  • the weight of anti-C1 antibody or anti-C2 antibody per 10 ⁇ L of sample is 0.1 to 1000 ⁇ g, preferably 1.0 to 750 ⁇ g, more preferably 2.0 to 500 ⁇ g, even more preferably 3.0 to 250 ⁇ g, most preferably 5 .0 to 150 ⁇ g, but is not limited to this concentration.
  • 5.0-120 ⁇ g, 5.0-110 ⁇ g, 5.0-100 ⁇ g, 5.0-80 ⁇ g, 5.0-60 ⁇ g, 5.0-50 ⁇ g may be preferable.
  • the lower limit of the above range may be preferably 10.0 ⁇ g or more, 15.0 ⁇ g or more, or 20.0 ⁇ g or more.
  • anti-C1 antibody or anti-C2 antibody may be used alone. Further, the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody may be a plurality of types of anti-C1 antibodies, a plurality of types of anti-C2 antibodies, or a mixture of anti-C1 antibodies and anti-C2 antibodies.
  • a monoclonal antibody and a polyclonal antibody may be used in combination.
  • anti-C1 antibody or anti-C2 antibody anti-C1 antibody or anti-C2 antibody bound to an insoluble carrier may be used.
  • the combined concentration of both may be within the above concentration range.
  • an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody is included in the measurement reagent of the present invention in advance, it may be contained in the measurement reagent at a concentration within the reaction system described above.
  • the LTIA method which is one of the immunoassay methods of the present invention, will be explained.
  • Methods for measuring a substance to be measured using the LTIA method can be broadly classified into two types.
  • the first method is to measure the substance to be measured using the following steps. Latex particles immobilized with a specific binding partner for the substance to be measured are reacted with the substance to be measured. This reaction forms a sandwich-type immune complex. Next, the degree of aggregation of the latex particles accompanying immune complex formation is detected. The substance to be measured is calculated from the detected value.
  • the second method is to measure the substance to be measured using the following steps.
  • a protein or the like on which a plurality of substances to be measured or their analogs (including fragments thereof) are immobilized is added to the reagent. These compete with the substance to be measured in the sample. It inhibits the formation of an immune complex between the substance to be measured contained in the reagent and latex particles on which a specific binding partner for the substance to be measured is immobilized. The degree of inhibition of aggregation of the latex particles due to inhibition of immune complex formation is detected. This is a method of calculating the substance to be measured (antigen) from the detected value. Any substance can be selected as the substance to be measured and the specific binding partner for the substance to be measured depending on the purpose.
  • the substance to be measured is an antigen
  • antibodies such as polyclonal antibodies and monoclonal antibodies (including recombinant antibodies and functional fragments of each antibody) can be selected as specific binding partners for the substance to be measured.
  • an antigen naturally type, recombinant antigen, etc.
  • the present invention can be used in any of the above methods. Specifically, the following steps are exemplified. (1) A step of bringing the substance to be measured in the sample into contact with an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody in a solution. (2) After step (1), carrying a specific binding partner for the substance to be measured in the solution.
  • Step (3) of adding latex particles After step (2), a step of optically detecting the degree of aggregation of latex particles in the solution. , a process of measuring the agglutination reaction between the substance to be measured and the latex particles without going through a washing/separation process. Further, step (3) means "a step of measuring the aggregation reaction between the substance to be measured and the latex particles without going through the washing/separation step after step (2).”
  • the analyte can be measured by optically or electrochemically observing the degree of aggregation that occurs.
  • optical observation methods include methods of measuring scattered light intensity, absorbance, or transmitted light intensity with an optical instrument (end point method, rate method, etc.).
  • the measured value of the sample is compared with the measured value of a standard substance (a sample with a known concentration of the target substance) to calculate the concentration (quantitative value) of the target substance contained in the sample.
  • the measurement of the absorbance of transmitted light or scattered light may be performed by either one wavelength measurement or two wavelength measurement (difference or ratio between two wavelengths).
  • the measurement wavelength is generally selected from 500 nm to 900 nm.
  • the measurement of the substance to be measured in the sample of the present invention may be carried out either manually or by using a device such as a measuring device.
  • the measuring device may be a general-purpose automatic analyzer or a dedicated measuring device (dedicated machine).
  • this measurement is preferably carried out by a method involving a plurality of operation steps, such as a two-step method (two-reagent method).
  • a specific binding partner for a substance to be measured can be immobilized and carried on latex particles by a known method.
  • Known methods include physical adsorption methods, chemical bonding methods, and combinations thereof.
  • a physical adsorption method there is a method in which a specific binding partner and latex particles are mixed in a solution such as a buffer solution and brought into contact with each other.
  • a physical adsorption method there is a method in which a specific binding partner dissolved in a buffer solution or the like is brought into contact with a carrier.
  • the chemical bonding method is described in "Clinical Pathology Extraordinary Special Feature No.
  • the synthetic polymer constituting the latex particles of the present invention is not particularly limited.
  • examples of such polymers include polystyrene, styrene-styrene sulfonate copolymers, methacrylic acid polymers, acrylic acid polymers, itaconic acid polymers, and styrene-hydrophilic carboxy monomer copolymers. Further examples include styrene-methacrylic acid copolymer, styrene-acrylic acid copolymer, styrene-itaconic acid copolymer, and the like.
  • styrene-methacrylic acid copolymer Preferred are styrene-methacrylic acid copolymer, styrene-itaconic acid copolymer, styrene and styrene-styrene sulfonate copolymer. Particularly preferred are styrene and styrene-(meth)acrylic acid copolymers.
  • the substance to be measured it is preferable to use multiple types of specific binding partners for the substance to be measured to form a sandwich complex. If there are multiple sites recognized by specific binding partners in the structure of the substance to be measured, only one type of specific binding partner may be used.
  • the specific binding partner is a monoclonal antibody
  • a plurality of monoclonal antibodies with different recognition sites are used.
  • the specific binding partner is a polyclonal antibody
  • the polyclonal antibody may be derived from one type of antiserum or may be derived from multiple types of antiserum.
  • a combination of monoclonal antibodies and polyclonal antibodies may be used.
  • blocking treatment may be performed on the surface of latex particles by a known method.
  • a blocking treatment method include a method of coating the surface of latex particles with proteins such as bovine serum albumin (BSA), casein, gelatin, egg albumin or its salts, a surfactant, or skim milk powder.
  • proteins such as bovine serum albumin (BSA), casein, gelatin, egg albumin or its salts, a surfactant, or skim milk powder.
  • the immunoassay method of the present invention is carried out using an immunoassay reagent.
  • the reagent contains the above-mentioned anti-C1 antibody or anti-C2 antibody in addition to the main components of the immune reaction.
  • the main component of the immune reaction includes a binding partner (other than anti-C1 antibody or anti-C2 antibody) specific to the substance to be measured.
  • Other examples of the main component include particles for immunoassay, immunochromatography test pieces, insoluble carriers such as microplates, and the like.
  • the immunoassay reagent of the present invention contains buffers, proteins, peptides, amino acids, nucleic acids, lipids, phospholipids, sugars, inorganic salts, polymer compounds, and interfaces within the range that does not interfere with the nonspecific reaction suppressing effect. Activators, other non-specific reaction inhibitors, preservatives, etc. may also be included. Components that buffer and adjust the pH, ionic strength, osmotic pressure, etc. of the reaction solution include, for example, acetic acid, citric acid, phosphoric acid, Tris, glycine, boric acid, carbonic acid, phthalic acid, succinic acid, maleic acid, imidazole, etc.
  • the concentration of anti-C1 antibody or anti-C2 antibody in each constituent reagent differs depending on each reagent type.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody may be contained at a concentration that can be adjusted to the concentration within the immune reaction system during measurement (when the reagent and sample are mixed).
  • kit The reagent kit of the present invention is characterized in that the kit includes at least an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody.
  • Kit components include reagents related to immunoassay, sample diluent, sample extract, and the like.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody of the present invention is contained in one or more of these kit components.
  • kit components include instructions for use and sample collection tools (collection pipette, syringe, cotton swab, filtration filter, etc.).
  • sample collection tools collection pipette, syringe, cotton swab, filtration filter, etc.
  • a reagent (LTIA reagent) when the immunoassay method is latex immunoturbidimetry is illustrated.
  • First reagent containing anti-C1 antibody or anti-C2 antibody (2) Second reagent containing latex particles carrying a specific binding partner for the substance to be measured
  • the first reagent typically contains a buffer.
  • the concentration of anti-C1 antibody or anti-C2 antibody in the buffer varies depending on each reagent type.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody may be contained at a concentration that can be adjusted to the above-mentioned preferred antibody concentration during measurement (when the reagent and sample are mixed).
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody may be contained in the second reagent in addition to the first reagent.
  • the concentration of anti-C1 antibody or anti-C2 antibody contained in the first reagent is generally 1 to 2000 ⁇ g/mL, preferably 5 to 1500 ⁇ g/mL, more preferably 10 to 1000 ⁇ g/mL, and even more preferably is between 15 and 500 ⁇ g/mL, most preferably between 25 and 500 ⁇ g/mL.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody may be included in the pretreatment liquid.
  • the concentration of anti-C1 antibody or anti-C2 antibody in the pretreatment solution is 1 to 2000 ⁇ g/mL, preferably 5 to 1500 ⁇ g/mL, more preferably 10 to 1000 ⁇ g/mL, even more preferably 15 to 500 ⁇ g/mL, most preferably 25 ⁇ 500 ⁇ g/mL.
  • Anti-C1q antibody, anti-C1s antibody, anti-C1r antibody, anti-C2a antibody, and anti-C2b antibody can also be used in the same concentration range as the above-mentioned anti-C1 antibody or anti-C2 antibody.
  • the immunoassay particles used in the present invention known particles can be used in addition to the latex particles described above.
  • examples of such particles include inorganic particles such as metal colloids, silica, and carbon.
  • the size of the particles for immunoassay is selected in consideration of the optical measurement method to be used (for example, nephelometric method for measuring transmitted light, nephelometric method for measuring scattered light, etc.). The size is selected so as to obtain desired measurement sensitivity, measurement range, etc. The size can be selected from a range of 0.05 to 1 ⁇ m, for example. Incidentally, in optical measurement using an automatic analyzer, an average particle diameter of 0.1 to 0.4 ⁇ m is commonly used. The particle size is not limited to this.
  • the ELISA method is a method that utilizes a combination of various antigen-antibody reactions and finally adds an enzyme-labeled antigen or antibody to the reaction system to detect enzyme activity.
  • a substrate whose absorption spectrum changes depending on the reaction is used.
  • ELISA methods include direct methods, indirect methods, sandwich methods, competitive methods, etc. depending on the combination of antigen-antibody reactions.
  • the reagents used when the immunoassay method of the present invention is a sandwich ELISA method are illustrated.
  • the insoluble carrier a plate is preferable. Labeling substances can be selected and used as appropriate.
  • the antibody immobilized on the insoluble carrier captures the substance to be measured in the solution containing the sample, and forms a complex on the insoluble carrier.
  • the antibody labeled with the labeling substance binds to the captured substance to be measured to form a sandwich with the aforementioned complex. By measuring the amount of the labeled substance, the substance to be measured in the sample can be measured.
  • a method for immobilizing an antibody on an insoluble carrier a method for binding an antibody to a labeling substance, and the like, methods well known to those skilled in the art can be used.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody of the present invention can be added, for example, to a sample dilution solution, a pretreatment solution, or the like. Further, the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody of the present invention can be added to a solution in which an antigen-antibody reaction is performed.
  • the reagent composition (test piece composition) when the immunoassay method of the present invention is an immunochromatography method will be explained.
  • an immunochromatography test piece is prepared on a sheet-like insoluble carrier such as a porous membrane in the direction of development of a solution containing the sample in order of "1. sample supply site", "2. labeling".
  • This is a test piece that includes an antibody holding site and 3. capture antibody site.
  • Detection by immunochromatography is performed as follows. A predetermined amount of a sample containing the substance to be measured is added to the sample supply portion (1) of the test piece. The sample enters the label holding site (2) by capillary action.
  • the substance to be measured and the labeled antibody combine to form a complex.
  • the complex is spread out on the membrane.
  • the complex enters the capture antibody site (3).
  • the complex forms a sandwich complex of capture antibody, substance to be measured, and labeled antibody.
  • the label of the sandwich complex is detected by an arbitrary method (for example, in the case of a visible label such as gold colloid, its agglutination image; in the case of an enzyme, a coloring reaction by adding a substrate). Through this detection, the substance to be measured can be detected.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody of the present invention is added, for example, to a sample dilution solution, a pretreatment solution, or the like. Further, the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody of the present invention is retained at the sample supply site or the label retention site.
  • the chemiluminescence method is a method in which a labeling substance is caused to emit light by electrochemical stimulation, and the amount of the target substance to be measured is calculated by detecting the amount of light emitted.
  • an enzyme it is called a chemiluminescent enzyme immunoassay (CLEIA method).
  • CLIA method the method of measuring luminescence intensity through an electrochemical reaction using a metal complex such as a ruthenium pyridine complex as a label.
  • ELIA method electrochemiluminescence immunoassay
  • the case where a chemiluminescent substance is used as a label is called a chemiluminescent immunoassay (CLIA method).
  • the reagents used when the immunoassay method of the present invention is the CLEIA method are illustrated.
  • the antibody (or antigen) immobilized on the magnetic particles captures the substance to be measured in the solution containing the sample and forms a complex. Unreacted substances are removed by magnetism.
  • the antibody (or antigen) labeled with the enzyme labeling substance binds to the captured substance to be measured to form a sandwich complex with the aforementioned complex. Unreacted substances are removed by magnetism.
  • the enzyme labeling substance and luminescent reagent are reacted and the amount of luminescence is measured. Through this measurement, the substance to be measured in the sample can be measured.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody of the present invention is added to a solution in which an antigen-antibody reaction is performed.
  • the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody of the present invention is added to, for example, a sample dilution solution or a pretreatment solution.
  • specific binding partners for the substance to be measured include proteins other than anti-C1 antibodies or anti-C2 antibodies, peptides, amino acids, lipids, carbohydrates, nucleic acids, haptens, and the like. There are no particular restrictions on the molecular weight of the specific binding partner. Additionally, the specific binding partner may be natural or synthetic. Such specific binding partners include antibodies or antigens that can be used in immunoassays.
  • the antibody may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody. The antibody is more preferably a monoclonal antibody.
  • As the antibody of the present invention in addition to the whole antibody molecule, it is also possible to use a functional fragment of an antibody having antigen-antibody reaction activity.
  • the antibody may be an antibody (such as a chimeric antibody, a humanized antibody, or a fully humanized antibody) whose amino acid sequence has been changed to an animal species different from that of the animal to which the immunogen (substance to be measured) is immunized.
  • functional antibody fragments include F(ab') 2 and Fab', single chain antibodies (scFv), VHH (variable domain of heavy chain of heavy chain antibody) antibodies, and IgNAR ( Examples include new antigen receptor) antibodies.
  • Functional fragments of these antibodies can be produced by treating the antibodies obtained as described above with a proteolytic enzyme (eg, pepsin, papain, etc.).
  • samples containing the substance to be measured of the present invention include human or animal blood, serum, plasma, culture supernatant, urine, spinal fluid, saliva, sweat, ascites, or cell or tissue extracts.
  • the sample in the present invention includes a sample obtained from a living body itself, a sample obtained by diluting a biological sample, and a sample obtained by subjecting a biological sample to pretreatment such as purification.
  • the sample in the present invention may be either one immediately after collection or one after a certain period of time has passed after collection.
  • the present invention has the effect of suppressing non-specific reactions against non-specific factors that are still present even after a certain period of time has passed after collection. Examples of the fixed time include immediately after collection, one day later, one week later, and the like.
  • the immunoassay reagent of the present invention can use various substances contained in the sample as the substance to be measured.
  • the substance to be measured may be any substance that does not react with the anti-C1 antibody or anti-C2 antibody used to suppress non-specific reactions. Examples of such substances to be measured include proteins, peptides, amino acids, lipids, carbohydrates, nucleic acids, and haptens.
  • the substance to be measured is not particularly limited as long as it is a substance that can be measured theoretically.
  • substances to be measured include CRP (C-reactive protein), Lp(a), MMP3 (matrix metalloproteinase 3), antiphospholipid antibody, type IV collagen, PSA, BNP (brain natriuretic peptide), insulin, and albumin.
  • cystatin C cystatin C
  • RF rheumatoid factor
  • KL-6 procalcitonin
  • FDP phosphatidylcholine
  • SF soluble fibrin
  • TAT thrombin-antithrombin III complex
  • PAI-1 phenytoin, phenobarbital, carbamazepine , valproic acid, theophylline, TARC (Thymus and activation-regulated chemokine), sIL-2R (soluble interleukin-2 receptor), and the like.
  • suppressing a non-specific reaction refers to binding to a factor (non-specific factor) that causes the above-mentioned non-specific reaction in a biological sample and suppressing the influence of reactions other than the immune reaction on measurement. . Therefore, in the present invention, whether a candidate substance has the effect of suppressing non-specific reactions can be determined, for example, as follows.
  • the measured value hereinafter referred to as reference value
  • a method that does not cause non-specific reactions or a method that hardly causes non-specific reactions (CLEIA method in the examples) is used as the standard.
  • the determination can be made based on whether the measured value approaches the reference value by comparing the cases with and without addition of the candidate substance. In other words, if the measured value when the candidate substance is added is closer to the reference value in the desired measurement method than the measured value when the candidate substance is not added, then the candidate substance is It can be judged that it has a non-specific reaction suppressing effect.
  • the candidate substance can be determined to be a non-specific reaction inhibitor in the measurement method. In the present invention, the non-specific reaction inhibitor targets both factors that cause a positive measurement error and factors that cause a negative measurement error.
  • the non-specific reaction inhibitor of the present invention is particularly effective against non-specific factors that cannot be suppressed even by commercially available non-specific reaction inhibitors (such as HBR-1). Furthermore, the non-specific reaction inhibitor of the present invention is effective against so-called divergent analytes.
  • the deviation sample refers to a sample that includes a factor that causes a positive measurement error that causes the measurement value to become abnormally high.
  • the non-specific reaction inhibitor of the present invention only needs to contain a substance capable of suppressing the reaction caused by a non-specific factor derived from a sample.
  • the non-specific reaction inhibitor of the present invention contains at least an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody as an active ingredient.
  • the non-specific reaction inhibitor of the present invention can be used as is in the above-mentioned reagent composition containing anti-C1 antibody or anti-C2 antibody.
  • the non-specific reaction inhibitor of the present invention includes buffers, proteins, peptides, amino acids, nucleic acids, lipids, phospholipids, saccharides, inorganic salts, polymer compounds, and surfactants as long as they do not interfere with the non-specific reaction inhibitory effect.
  • other non-specific reaction inhibitors anti-C3d antibodies, anti-human IgM antibodies, etc.
  • preservatives and the like may be included.
  • the method of suppressing a non-specific reaction of the present invention is a method of suppressing a non-specific reaction caused by a sample by performing an immune reaction in the presence of an anti-C1 antibody or an anti-C2 antibody.
  • Example I Suppression of non-specific reaction in LTIA method: Measurement of sIL-2R
  • the sIL-2R concentration in the sample was measured using a reagent according to the LTIA method to which the anti-C1q polyclonal antibody of the present invention or other non-specific reaction inhibitor was added.
  • Specimens 1 to 5 were used as samples.
  • Samples 1 to 3 control samples are samples whose values measured by the LTIA method are close to the values measured by chemiluminescent enzyme immunoassay (CLEIA method) (Comparative Example 1).
  • Samples 4 and 5 devices that exhibit a non-specific reaction, and the measured value by the LTIA method deviates significantly from the measured value of Comparative Example 1.
  • Measurement method 1-1 Measurement reagent Lumipulse Presto (registered trademark) IL-2R (Fujirebio Co., Ltd.) 1-2. Sample Specimen (serum stored refrigerated for 1 to 3 weeks after collection) 1-5 1-3. Measurement procedure Measurement was performed using Lumipulse (registered trademark) -L2400 (Fujirebio Co., Ltd.) according to the package insert of the measurement reagent.
  • the measurement results are shown in Table 1.
  • the CLEIA method shown in Comparative Example 1 implements a B/F separation operation and has a washing step. Therefore, the CLEIA method is a measurement method that is not easily influenced by non-specific reactions originating from the sample.
  • Measurement method 1-1 Measurement Reagent A first reagent and a second reagent were prepared according to the method described in JP-A-2017-181377. 1-2. Sample Same as the sample of Comparative Example 1. 1-3. Measurement Procedure The first reagent and the second reagent were combined, and the sIL-2R concentration in the sample was measured using a Hitachi 7180 automatic analyzer. Specifically, 120 ⁇ L of the first reagent was added to 5.6 ⁇ L of the sample, and the mixture was incubated at 37° C. for 5 minutes. Thereafter, 40 ⁇ L of the second reagent was added and stirred.
  • the absorbance change associated with aggregate formation was then measured over a period of 5 minutes at a main wavelength of 570 nm and a sub wavelength of 800 nm.
  • the measured value was calculated by applying the amount of change in absorbance to a calibration curve obtained by measuring a standard substance with a known concentration.
  • Comparative Example 3 (Measurement by LTIA method: HBR-1 addition) The same method as in Comparative Example 2 was used except that a commercially available non-specific reaction inhibitor (HBR-1 (SCANTIBODIES LABORATORY, INC.)) was added to the first reagent shown in Comparative Example 2 at a concentration of 100 ⁇ g/mL. Measurements were taken. The measurement results are shown in Table 1.
  • HBR-1 SCANTIBODIES LABORATORY, INC.
  • Example 1 Measurement by LTIA method: addition of anti-C1q polyclonal antibody
  • Measurement was performed in the same manner as in Comparative Example 2, except that an anti-C1q polyclonal antibody (ImmunoReagents, Inc.) was added to the first reagent shown in Comparative Example 2 at a concentration of 100 ⁇ g/mL.
  • the measurement results are shown in Table 1.
  • Comparative Example 1 is a value measured by the CLEIA method.
  • Comparative Examples 2 and 3 and Example 1 are measured values by the LTIA method.
  • no non-specific reaction inhibitor was added to the reagent.
  • Comparative Example 3 commercially available HBR-1 was added to the reagent.
  • Example 1 the anti-C1q polyclonal antibody of the present invention was added to the reagent.
  • the measurement results of control samples (sample numbers 1 to 3) were verified. In the control samples, the measured values of Comparative Example 1 and Comparative Example 2 were generally equivalent. Moreover, the measured values of Example 1 and Comparative Examples 1 and 2 were generally equivalent.
  • Comparative Example 2 is an LTIA method in which the anti-C1q polyclonal antibody of the present invention was not added to the reaction system.
  • Example 1 is an LTIA method in which the anti-C1q polyclonal antibody of the present invention was added to the reaction system. Therefore, it was found that the addition of anti-C1q polyclonal antibody did not affect the measured values of samples that did not exhibit non-specific reactions.
  • the measurement results of the divergent samples (sample numbers 4 and 5) were verified. The measured value of sample number 4 in Comparative Example 1 was 346 U/mL. On the other hand, Comparative Example 2 had a concentration of 1332 U/mL. The measured value deviated greatly from the measured value of Comparative Example 1.
  • Comparative Example 3 had a concentration of 1216 U/mL. The measured value deviated greatly from the measured value of Comparative Example 1. On the other hand, the concentration in Example 1 was 418 U/mL. The measured value showed a tendency to approach the measured value of Comparative Example 1. Similar results were obtained for specimen 5 as well.
  • the non-specific reaction suppressing effect of the anti-C1q antibody of the present invention is an unexpected effect.
  • the non-specific reaction suppressing effect of the anti-C1q antibody found in this study is the effect of suppressing the deviation on the high side that occurs due to some reason.
  • Patent Document 3 describes a phenomenon in which an inhibitory factor forms its own film along a solid phase surface and blocks an antigen-antibody reaction, resulting in a decrease in measured values. It was also disclosed that this inhibitory factor is uniformly present in fresh serum and is inactivated over time. On the other hand, in this study, a non-specific reaction suppression effect was observed when serum that had been refrigerated for one week or more after blood collection was used as a sample. Therefore, unlike Patent Document 3, the non-specific reaction suppressing effect found in this study can be said to be an effect of suppressing non-specific factors that are not related to the passage of time.
  • Example II Suppression of non-specific reaction in LTIA method: Measurement of sIL-2R
  • the sample was diluted with a solution containing the anti-C2a polyclonal antibody of the present invention, the anti-C2b polyclonal antibody, or other non-specific reaction inhibitor, and then measured.
  • Specimen 6 and Specimen 7 were used as samples.
  • Sample 6 control sample
  • Sample 7 device sample
  • Sample 7 device sample
  • Measurement method 1-1 Measurement reagent Lumipulse Presto (registered trademark) IL-2R (Fujirebio Co., Ltd.) 1-2. Sample Specimen (serum stored refrigerated for 1 to 3 weeks after collection) 6, 7 1-3. Measurement procedure Measurement was performed using Lumipulse (registered trademark) -L2400 (Fujirebio Co., Ltd.) according to the package insert of the measurement reagent.
  • the measurement results are shown in Table 2.
  • the CLEIA method shown in Comparative Example 4 implements a B/F separation operation and has a washing step. Therefore, the CLEIA method is a measurement method that is not easily influenced by non-specific reactions originating from the sample.
  • the first reagent and the second reagent were combined, and the sIL-2R concentration in the sample was measured using a Hitachi 7180 automatic analyzer. Specifically, 120 ⁇ L of the first reagent was added to 5.6 ⁇ L of the sample, and the mixture was incubated at 37° C. for 5 minutes. Thereafter, 40 ⁇ L of the second reagent was added and stirred. The absorbance change associated with aggregate formation was then measured over a period of 5 minutes at a main wavelength of 570 nm and a sub wavelength of 800 nm. The measured value was calculated by applying the amount of change in absorbance to a calibration curve obtained by measuring a standard substance with a known concentration. The calculated value was multiplied by the dilution factor of the specimen and converted to the concentration of the stock solution.
  • Comparative Example 6 Measurement by LTIA method: Measurement of a sample diluted in equal volume with a sample diluent containing HBR-1) The same method as in Comparative Example 5 was used except that a commercially available non-specific reaction inhibitor (HBR-1 (SCANTIBODIES LABORATORY, INC.)) was added to the sample dilution solution shown in Comparative Example 5 to a concentration of 1 mg/mL. Measurements were taken. The measurement results are shown in Table 2.
  • HBR-1 SCANTIBODIES LABORATORY, INC.
  • Example 2 Measurement by LTIA method: addition of anti-C2a polyclonal antibody
  • Measurement was performed in the same manner as in Comparative Example 5, except that an anti-C2a polyclonal antibody (Biorbyt) was added to the sample dilution solution shown in Comparative Example 5 at a concentration of 1 mg/mL.
  • the measurement results are shown in Table 2.
  • Example 3 Measurement by LTIA method: addition of anti-C2b polyclonal antibody
  • Measurement was performed in the same manner as in Comparative Example 5, except that an anti-C2b polyclonal antibody (Biorbyt) was added to the sample dilution solution shown in Comparative Example 5 at a concentration of 1 mg/mL.
  • the measurement results are shown in Table 2.
  • Comparative Example 4 is a value measured by the CLEIA method.
  • Comparative Examples 5 to 8 and Examples 2 and 3 are values measured by the LTIA method.
  • Comparative Example 5 no non-specific reaction inhibitor was added to the reagent.
  • Comparative Example 6 commercially available HBR-1 was added to the reagent.
  • Comparative Example 7 an anti-C4a polyclonal antibody was added to the reagent.
  • Comparative Example 8 an anti-C4b polyclonal antibody was added to the reagent.
  • Example 2 the anti-C2a polyclonal antibody of the present invention was added to the reagent.
  • Example 3 the anti-C2b polyclonal antibody of the present invention was added to the reagent.
  • the measurement results of the control sample (sample number 6) were verified.
  • the measured values of Comparative Example 4 and Comparative Example 5 were generally equivalent.
  • the measured values of Examples 2 and 3 were also generally equivalent to the measured values of Comparative Examples 4 and 5.
  • Comparative Example 5 is a measurement test in which no non-specific reaction inhibitor was added to the reaction system.
  • Examples 2 and 3 are measurement tests in which the anti-C2a polyclonal antibody or the anti-C2b polyclonal antibody of the present invention was added to the reaction system.

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Abstract

本発明は免疫反応測定方法において非特異反応を抑制することを課題とする。　試料中の測定対象物質を免疫学的に測定する方法において、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で免疫反応を行うことを特徴とする免疫学的測定方法を提供する。また、試料中の測定対象物質を免疫学的に測定する方法における非特異反応抑制方法であって、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で免疫反応を行うことを特徴とする非特異反応抑制方法を提供する。

Description

免疫学的測定方法
　本発明は、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で行う免疫学的測定方法に関する。また、本発明は、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を用いる非特異反応抑制方法に関する。また、本発明は、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む免疫学的測定試薬、免疫学的測定試薬キット及び非特異反応抑制剤に関する。
　診断薬分野では、生体試料中に存在する測定対象物質を、免疫反応を利用して測定することが多い。この方法を免疫学的測定方法という。この方法は抗原抗体反応を利用していることから、特異性が非常に高い測定方法である。
　生体試料中には様々な物質が存在している。このため、特異反応にもとづかない結合が生じたり、特異的な免疫反応が妨げられたりすることにより、測定誤差が生じる。このような現象を非特異反応といい、その原因となる物質を非特異因子という。非特異因子として、異好性抗体やリウマチ因子（ＲＦ）が知られている。異好性抗体とは、免疫学的測定方法の主成分である動物由来抗体に対して反応性を示すヒト抗体の総称である。ＨＡＭＡ（ヒト抗マウス免疫グロブリン抗体）が代表的なものとして知られている。リウマチ因子は、関節リウマチや膠原病患者に出現する。リウマチ因子は、ＨＡＭＡと同様に動物由来抗体に対して反応性を示す。リウマチ因子及びＨＡＭＡは、いずれもヒトの免疫グロブリンＧや免疫グロブリンＭであることが知られている（非特許文献１）。
　特許文献１～３に免疫学的測定方法において非特異反応を抑制する技術が開示されている。
　特許文献１には、試料をヒトリウマチ因子（ＲＦ）に結合する動物由来抗体で前処理し、ＲＦに起因する非特異反応を抑制する方法が開示されている。このような動物由来抗体としては抗ヒトＩｇＧ抗体、抗ヒトＩｇＡ抗体及び／又は抗ヒトＩｇＭ抗体が挙げられている。
　また、特許文献２の技術は、変性ヒト免疫グロブリンを使用してリウマチ因子を測定する場合において、非特異因子である補体成分Ｃ１ｑの影響を除去することを課題とする。本特許文献２には、前記Ｃ１ｑの影響を排除するために抗Ｃ１ｑ抗体のＦａｂ又はＦａｂ’を用いてＣ１ｑを不活化させる方法が開示されている。ここで、非特許文献２には、リウマチ因子が認識するエピトープが、免疫複合体のＣ１ｑの結合部位に近いとの記述がある。さらに、前記の理由からリウマチ因子を用いて免疫複合体を測定する際、ＥＤＴＡ処理によりＣ１ｑを取り除くとの記述がある。従って、特許文献２の技術は、あくまでもリウマチ因子の定量において非特異因子であるＣ１ｑの影響を排除することを目的としている。特許文献２では、リウマチ因子の定量以外の免疫学的測定方法においても、Ｃ１ｑが非特異因子として影響するかどうかは検討されていない。またこの文献では、抗Ｃ１ｑ抗体により非特異反応を抑制できるかどうかについても、一切検討されていない。
　また、特許文献３には、酵素標識抗体を使用した固相法により血清中の抗原や抗体を測定する技術について記載されている。試薬に抗Ｃ１ｑ（抗Ｃ１ｑ抗体若しくはＣ１ｑの誤記と思われる）やＥＤＴＡ、カオリン、抗原抗体複合物、アンモニウム塩、ザイモザンなどを添加することで、阻害因子の影響を抑制できると開示されている。しかし、本方法では、健常者から採血された直後の新鮮血清に抗Ｃ１ｑ等を添加した試料を測定した場合に、抗Ｃ１ｑ等を無添加の場合に比べて測定値が大きいことが示されているのみである。従って、抗Ｃ１ｑ添加により、正しい測定値に近づいているかどうか不明である。また、本特許文献にて問題とする阻害因子は、酵素標識抗体を使用した固相法において、阻害因子が固相面に沿ってそれ自体の被膜を形成し、抗原抗体反応をブロックすることが原因であると推定されている。従って、前記阻害因子は、いわゆる負の測定誤差となる因子と考えられる。さらにまた、特許文献３には、前記阻害因子は、新鮮血清に一様に存在する因子であり、時間の経過とともに不活化することが開示されている。つまり、本文献では一定時間経過した血清中にもなお存在する非特異因子については検討されていない。
特開平０７－０１２８１８号公報 特許第２６１８６２９号公報 特開昭５７－２０８４５９号公報
臨床化学 ;第23巻補冊175a-1～175a-10 (1994） 日本臨牀；68巻増刊号6　119～121（2010）
　特許文献１には、抗ヒトＩｇＭ抗体、抗ヒトＩｇＧ抗体、抗ヒトＩｇＡ抗体によって、ヒトＲＦに起因する非特異反応を抑制する方法が開示されている。この方法は現在、さまざまな試薬で実用化されている方法である。しかし、本発明者らの試験によれば、この方法を実施しても、抑制できない非特異反応も存在することが、明らかとなった。       
　また、特許文献２および非特許文献２は、リウマチ因子の測定に限定した非特異反応抑制方法である。特許文献３は、酵素標識抗体を使用した固相法において、特に新鮮血清に存在する阻害因子の固相への被覆を抑制する方法である。このように特許文献２及び３には、限定的な非特異反応抑制方法が開示されているにすぎない。
　本発明は、免疫学的測定方法において新たな非特異反応抑制方法の提供を課題とする。特に、本発明は、非特異反応物質の影響を受けにくく、測定対象や測定方法に制限されないような免疫学的測定方法の提供を課題とする。
　本発明者らは上記課題を解決するために、様々な物質の非特異反応抑制効果を検討した。その結果、発明者らは、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で免疫反応を行うことにより非特異反応を抑制できることを見出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は以下の構成を有する。
＜１＞
試料中の測定対象物質を免疫学的に測定する方法において、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で免疫反応を行うことを特徴とする免疫学的測定方法（ただし、抗Ｃ１抗体存在下で試料中のリウマチ因子を免疫学的に測定する方法を除く）。
＜２＞
免疫学的測定方法が、ホモジーニアス法またはヘテロジーニアス法に基づく方法である＜１＞に記載の免疫学的測定方法。
＜３＞
ホモジーニアス法に基づく方法が、ラテックス免疫比濁法である＜２＞に記載の免疫学的測定方法。
＜４＞
試料中の測定対象物質と抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体とを溶液中で接触させる工程と、
前記溶液中に測定対象物質に対する特異的結合パートナーを担持するラテックス粒子を添加する工程と、
溶液中におけるラテックス粒子の凝集度合いを光学的に検出する工程と、
を含む、＜３＞に記載の免疫学的測定方法。
＜５＞
抗Ｃ１抗体がＣ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群から選ばれるいずれか１以上であり、抗Ｃ２抗体が抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体である＜１＞～＜４＞のいずれかに記載の免疫学的測定方法。
＜６＞
試料中の測定対象物質を免疫学的に測定する方法における非特異反応抑制方法であって、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で免疫反応を行うことを特徴とする非特異反応抑制方法（ただし、抗Ｃ１抗体存在下で試料中のリウマチ因子を免疫学的に測定する方法における非特異反応抑制方法を除く）。
＜７＞
免疫学的測定方法が、ホモジーニアス法またはヘテロジーニアス法に基づく方法である＜６＞に記載の非特異反応抑制方法。
＜８＞
ホモジーニアス法に基づく方法が、ラテックス免疫比濁法である＜７＞に記載の非特異反応抑制方法。
＜９＞
試料中の測定対象物質と抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体とを溶液中で接触させる工程と、
前記溶液中に測定対象物質に対する特異的結合パートナーを担持するラテックス粒子を添加する工程と、
溶液中におけるラテックス粒子の凝集度合いを光学的に検出する工程と、
を含む、＜８＞に記載の非特異反応抑制方法。
＜１０＞
抗Ｃ１抗体がＣ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群から選ばれるいずれか１以上であり、抗Ｃ２抗体が抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体である＜６＞～＜９＞のいずれかに記載の非特異反応抑制方法。
＜１１＞
抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む免疫学的測定用試薬（ただし、抗Ｃ１抗体を含むリウマチ因子測定用の免疫学的測定用試薬を除く）。
＜１２＞
免疫学的測定方法が、ホモジーニアス法またはヘテロジーニアス法に基づく方法である＜１１＞に記載の免疫学的測定用試薬。
＜１３＞
ホモジーニアス法に基づく方法が、ラテックス免疫比濁法である＜１２＞に記載の免疫学的測定用試薬。
＜１４＞
抗Ｃ１抗体がＣ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群から選ばれるいずれか１以上であり、抗Ｃ２抗体が抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体である＜１１＞～＜１３＞のいずれかに記載の免疫学的測定用試薬。
＜１５＞
抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む免疫学的測定用試薬キット（ただし、抗Ｃ１抗体を含むリウマチ因子測定用の免疫学的測定用試薬キットを除く）。
＜１６＞
免疫学的測定方法が、ホモジーニアス法またはヘテロジーニアス法に基づく方法である＜１５＞に記載の免疫学的測定用試薬キット。
＜１７＞
ホモジーニアス法にもとづく方法が、ラテックス免疫比濁法であって、以下を含む＜１６＞に記載の免疫学的測定用試薬キット。
（１）抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む第１試薬
（２）測定対象物質に対する特異的結合パートナーを担持するラテックス粒子を含む第２試薬
＜１８＞
抗Ｃ１抗体がＣ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群から選ばれるいずれか１以上であり、抗Ｃ２抗体が抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体である＜１５＞～＜１７＞のいずれかに記載の免疫学的測定用試薬キット。
＜１９＞
抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を有効成分として含む、免疫学的測定方法における非特異反応抑制剤（ただし、抗Ｃ１抗体を有効成分として含むリウマチ因子測定用の免疫学的測定方法における非特異反応抑制剤を除く）。
＜２０＞
抗Ｃ１抗体がＣ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群から選ばれるいずれか１以上であり、抗Ｃ２抗体が抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体である＜１９＞に記載の免疫学的測定方法における非特異反応抑制剤。
　本発明によれば、免疫学的測定方法において、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で免疫反応を行うことにより、試料中に含まれる非特異因子による非特異反応を抑制することができた。このため、本発明により正確な測定をすることが可能となった。特に、市販の非特異反応抑制剤によってもなお抑制できなかった非特異反応を本発明により抑制することが可能となった意義は大きい。
（免疫学的測定方法）
　本発明の免疫学的測定方法は、試料中の測定対象物質を測定する方法において、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で免疫反応を行うことを特徴とする方法である。換言すれば、試料中の測定対象物質を特異的結合パートナーを用いて免疫学的に測定する方法において、非特異反応抑制剤として抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を用いる方法である。ここで、特異的結合パートナーは、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体以外である。
　免疫学的測定方法は、さらにホモジーニアス法とヘテロジーニアス法に大別される。
　ホモジーニアス法は、試料と試薬液の混和溶液（反応液）中で測定対象物質により進行する反応をＢ／Ｆ（結合／非結合）分離を行うことなく特異的に検出する測定法である。ヘテロジーニアス法は、Ｂ／Ｆ分離操作によって測定反応に関与しなかった余剰成分を洗浄・除去した後、主反応を進行させて検出する測定法である。
　ヘテロジーニアス法は、洗浄工程を経るため、工程が多く測定に時間を要するという課題がある。一方、この方法は非特異反応物質による影響を比較的受けにくいという利点がある。これに対してホモジーニアス法は、洗浄工程を経ないため、非特異反応の影響を受けやすいという課題がある。一方、この方法は工程が少なく簡便であり、測定に要する時間も短い。従って、当該方法は臨床診断の分野で広く求められている方法である。
　ホモジーニアス法としては、免疫比濁法を利用した測定方法（ＴＩＡ）、イムノクロマトグラフィー（ラテラルフロー式、フロースルー式）が挙げられる。ＴＩＡは、抗体などの特異的結合パートナーによるアナライト（測定対象物質）の架橋作用によって形成される免疫複合体の凝集度合いに基づいて、試料中のアナライトを定性もしくは定量的に検出する方法である。ＴＩＡのうちでも、凝集シグナルを増幅させるために不溶性担体としてラテックス粒子を用いたラテックス免疫比濁法（以下、ＬＴＩＡということがある）がある。ＬＴＩＡは、光学的な検出に適した方法である。また、ＬＴＩＡは、自動化も容易なことから、さまざまな検査項目に適用されている汎用性の高い測定方法である。
　ヘテロジーニアス法としては、ウェル状プレートを用いたＥＬＩＳＡ法、化学発光法などが挙げられる。
　本発明は、上記いずれの免疫学的測定方法も利用することができる。非特異反応の影響を比較的受けやすいホモジーニアス法が、より効果を享受することが期待できるため好ましい。
（抗Ｃ１抗体、抗Ｃ２抗体）
　Ｃ１は、Classical　pathwayの補体タンパクの１つである。Ｃ１は、Ｃ１ｑ（１分子）、Ｃ１ｒ（２分子）及びＣ１ｓ（２分子）の３種の異なる成分が集まって１つの大きな分子（分子量７００ｋＤａ）として構成されている。Ｃ１ｑは、３種類のポリペプチドからなるサブユニット６本から構成されている。Ｃ１ｑの分子量は４００ｋＤａである。Ｃ１ｒは、分子量８３ｋＤａの一本鎖タンパク質である。Ｃ１ｒは、-s-s-結合で繋がった２本鎖を形成する。Ｃ１ｓは、分子量８３ｋＤａの一本鎖タンパク質である。Ｃ１ｓは、-s-s-結合で繋がった２本鎖を形成する（検査と技術、vol.18 no.11，p21-23，図６，（1990年10月）医学書院）。
　本発明に用いられる抗Ｃ１抗体は、Ｃ１に対する抗体であればよく、Ｃ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群から選ばれる１以上であることが好ましい。このうちでも特に抗Ｃ１ｑ抗体が好ましい。
　Ｃ２は、Classical　pathwayの補体タンパクの１つである。Ｃ２は、分子量１１０ｋＤａの１本鎖タンパクである。Ｃ２は、体内においてＣ１ｓ又はＭＡＳＰ－２によって切られ、Ｃ２ａ（分子量３４ｋＤａ）とＣ２ｂ（分子量７４ｋＤａ）に分解される（同p25-26）。　
　本発明に用いられる抗Ｃ２抗体は、Ｃ２に対する抗体であればよい。本発明に用いられる抗Ｃ２抗体は、より好ましくは抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体である。
　また、本発明に用いられる抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、ポリクローナル抗体でもモノクローナル抗体でもよい。本発明に用いられる抗Ｃ２抗体は、より好ましくは、モノクローナル抗体である。本発明に用いられる抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体としては、抗体分子全体のほかに抗原抗体反応活性を有する抗体の機能性断片を使用することも可能である。
　本発明に用いられる抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、一般的な動物（マウス、ヤギ、ヒツジなど）への免疫工程を経て得られたものを利用できる。また、本発明に用いられる抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、遺伝子組み換え技術等により免疫原（測定対象物質物質）を免疫する動物とは異なる動物種のアミノ酸配列に変化させた抗体（キメラ抗体、ヒト化抗体、又は完全ヒト化抗体等）であってもよい。抗体の機能性断片としては、抗原抗体反応活性を有する断片であるＦ（ａｂ'）2、Ｆａｂ'や一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）、ＶＨＨ（variable domain of heavy chain of heavy chain antibody）抗体、ＩｇＮＡＲ（new antigen receptor）抗体などが挙げられる。これらの抗体の機能性断片は、前記のようにして得られた抗体をタンパク質分解酵素（例えば、ペプシンやパパインなど）で処理することにより製造できる。本発明において、特に断らない限りは、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体には機能性断片を含む。
　本発明に用いられるＣ１に対する抗体は、抗Ｃ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群のいずれか１種を用いればよい。また、本発明に用いられるＣ１に対する抗体は、これらから選ばれるいずれか２種以上を組み合わせて用いることもできる。また、Ｃ２に対する抗体は、抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体を用いればよい。また、Ｃ２に対する抗体はこれらを組み合わせて用いることもできる。
　また、本発明において、抗Ｃ１抗体は、抗Ｃ２抗体と組み合わせて用いることもできる。また、抗Ｃ１抗体は、さらに抗Ｃ３抗体や、抗ヒトＩｇＭ抗体などの他の非特異反応抑制剤と組み合わせて用いることもできる。
　本明細書において、抗体が抗原と「反応する」という表現と抗体が抗原を「認識する」という表現、抗体と抗原が「結合する」という表現は、同義で用いられる。これらの表現は、前記例示に限定されることはない。抗体が抗原（化合物）と「反応する」か否かの確認は、抗原固相化ＥＬＩＳＡ法、競合ＥＬＩＳＡ法、サンドイッチＥＬＩＳＡ法などにより行うことができる。前記確認は、上記方法以外に、表面プラズモン共鳴（ｓｕｒｆａｃｅ  ｐｌａｓｍｏｎ  ｒｅｓｏｎａｎｃｅ）の原理を利用した方法（ＳＰＲ法）などにより行うことができる。ＳＰＲ法は、Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標）の名称で市販されている、装置、センサー及び試薬類を使用して行うことができる。
　本発明に用いられるＣ１に対する抗体又はＣ２に対する抗体は、次のように製造できる。抗原（免疫原）としてそれぞれ市販のヒト由来Ｃ１蛋白又はＣ２蛋白などを準備する。これらの蛋白をリン酸緩衝生理食塩水などの溶媒に溶解する。この溶液を動物に投与して免疫することにより前記抗体を製造できる。必要に応じて前記溶液に適宜のアジュバントを添加した後、エマルジョンを用いて免疫を行ってもよい。アジュバントとしては、油中水型乳剤、水中油中水型乳剤、水中油型乳剤、リポソーム、水酸化アルミニウムゲルなどの汎用されるアジュバントを用いることができる。前記アジュバントとしては、生体成分由来のタンパク質やペプチド性物質などを用いてもよい。例えば、フロイントの不完全アジュバント又はフロイントの完全アジュバントなどを好適に用いることができる。アジュバントの投与経路、投与量、投与時期は特に限定されない。アジュバントは、抗原を免疫する動物において所望の免疫応答を増強できるように適宜選択することが望ましい。
　免疫に用いる動物の種類は特に限定されない。当該動物としては、哺乳動物が好ましく用いられる。当該哺乳動物としては、例えばマウス、ラット、ウシ、ウサギ、ヤギ、ヒツジ、アルパカなどを用いられ、より好ましくはマウス又はラットが用いられる。動物の免疫は、一般的な手法に従って行えばよい。前記免疫は、例えば、抗原の溶液を動物の皮下、皮内、静脈、又は腹腔内に注射することにより免疫を行うことができる。前記抗原は、アジュバントと混合して用いられることが好ましい。免疫応答は、一般的に免疫される動物の種類及び系統によって異なる。従って、免疫スケジュールは使用される動物に応じて適宜設定することが望ましい。抗原投与は最初の免疫後に何回か繰り返し行うことが好ましい。
　モノクローナル抗体それ自体の製造方法については当業界で周知されており、かつ汎用されている。従って、当業者は前記の抗原を用いることによって本発明に使用される抗体を容易に製造することが可能である（例えばＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，（１９８８） 第６章などを参照のこと）。
　モノクローナル抗体を得るために、引き続き以下の操作が行われる。最終免疫後、免疫した動物から抗体産生細胞である脾臓細胞あるいはリンパ節細胞を摘出する。次に、これらの細胞と、骨髄腫由来の細胞株と細胞融合することによりハイブリドーマを作製することができる。細胞融合には抗体産生能（質・量）が高い細胞を用いることが好ましい。また骨髄腫由来の細胞株は、融合する抗体産生細胞の由来する動物と適合することが好ましい。細胞融合は、当該分野で公知の方法に従って行うことができる。前記方法として、ポリエチレングリコール法、センダイウイルスを用いた方法、電流を利用する方法などを採用することができる。得られたハイブリドーマは、当業界で汎用の条件に従って増殖させることができる。前記ハイブリドーマは、産生される抗体の性質を確認することにより選択することができる。ハイブリドーマのクローニングは、限界希釈法や軟寒天法などの周知の方法により行うことが可能である。
　ハイブリドーマの選択は、産生される抗体が実際の測定に用いられる条件を考慮することにより、効率的に行うこともできる。例えば、動物に免疫して得られた抗体を、交差反応性を確認したい化合物の存在下、固相に固定化したＣ１又はＣ２と反応させる。前記化合物の存在下での反応性と前記化合物の非存在下での反応性とを比較する。当該比較により所望の抗体を産生するハイブリドーマをより効率よく選抜することができる。また、動物に免疫して得られた抗体を、生物試料由来成分の存在下、固相に固定化したＣ１又はＣ２と反応させる。前記成分の存在下での反応性と前記成分の非存在下での反応性とを比較することにより所望の抗体を産生するハイブリドーマをより効率よく選択することもできる。
　クローニング工程後、産生される抗体とＣ１又はＣ２との結合能をＥＬＩＳＡ法、ＲＩＡ法、蛍光抗体法などの方法を用いてアッセイする。これらの方法により、選択されたハイブリドーマが所望の性質を有するモノクローナル抗体を産生するか否かを確認することができる。
　前記のようにして選別されたハイブリドーマを大量培養することにより、所望の特性を有するモノクローナル抗体を製造することができる。大量培養の方法は特に限定されない。大量培養の方法としては、ハイブリドーマを適宜の培地中で培養してモノクローナル抗体を培地中に産生させる方法が挙げられる。また、大量培養の方法としては、哺乳動物の腹腔内にハイブリドーマを注射して増殖させ、腹水中に抗体を産生させる方法などを挙げることができる。モノクローナル抗体の精製は、抗血清からの抗体の精製法により行うことができる。前記抗体の精製は、例えばＤＥＡＥ等の陰イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、硫安分画法、ＰＥＧ分画法、エタノール分画法などを適宜組み合わせて行うことができる。
　本発明において、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を免疫反応系内に存在させる方法としては、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を免疫測定試薬の試薬構成の１つとして用いる方法、試料の希釈液や前処理液等に抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を添加する方法が挙げられる。
　免疫反応系内とは、例えば免疫測定試薬が液状試薬の場合は、試料と液状免疫測定試薬が混合され免疫反応が行われる液相をいう。
　例えば、ＬＴＩＡ法の場合、試料を抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含むＬＴＩＡ測定試薬に混合してもよい。また、試料を抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む前処理液とあらかじめ混合した後に免疫測定試薬と混合しても良い。
　また、ＥＬＩＳＡ法の場合、試料を抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む前処理液とあらかじめ混合した後にマイクロプレートに滴下しても良い。また、試料を抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体と検出用抗体を含む溶液と混合した後にマイクロプレートに滴下しても良い。
　また、化学発光法試薬の場合も、試料を抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む前処理液とあらかじめ混合した後に免疫測定試薬と混合しても良い。また、免疫測定試薬（例えば、検出用抗体もしくは抗原、磁性粒子を含む溶液）に抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体が含まれていてもよい。
　さらにまた、イムノクロマトグラフィー法などの固相で免疫反応が行われる場合は、免疫反応系内とは、液状試料と結合性パートナーの免疫反応が行われる固相をいう。この場合、試料を抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む前処理液とあらかじめ混合した後にイムノクロマト試験片に滴下してもよい。また、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体をサンプルパッド上に乾燥保持し、試料を滴下してもよい。この場合抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体がサンプルパッドから溶解する。当該抗体は、固相を展開することで反応系に存在する状態になる。
　本発明において、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体の濃度は、測定対象物質と特異的結合パートナーとの免疫反応に強い影響を及ぼさない濃度がよい。また、所望の非特異反応抑制効果を発揮できる濃度であればよい。測定対象物質や検体の種類に応じて適宜当業者が前記濃度を設定できる。免疫反応系内における抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体の濃度としては、免疫反応系の試薬構成によっても異なる。検体１０μＬに対する抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体の重量として、０．１～１０００μｇ、好ましくは１．０～７５０μｇ、より好ましくは２．０～５００μｇ、さらに好ましくは３．０～２５０μｇ、最も好ましくは５．０～１５０μｇであるが、この濃度に限ることはない。例えば、５．０～１２０μｇ、５．０～１１０μｇ、５．０～１００μｇ、５．０～８０μｇ、５．０～６０μｇ、５．０～５０μｇが好ましい場合もある。また、上記範囲の下限としては１０．０μｇ以上、１５．０μｇ以上、２０．０μｇ以上が好ましい場合もある。
　本発明において、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は単独で用いてもよい。また、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、複数種の抗Ｃ１抗体又は複数種の抗Ｃ２抗体又は抗Ｃ１抗体と抗Ｃ２抗体の混合物でもよい。抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、モノクローナル抗体とポリクローナル抗体を併用してもよい。抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、不溶性担体に結合された抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を使用してもよい。また、複数種の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を併用する場合には、両者を併せた濃度が上記の濃度範囲であればよい。
　本発明の測定試薬中にあらかじめ抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含有させる場合には、上記の反応系内における濃度になるように測定試薬中に含有させればよい。
（ラテックス免疫比濁法（ＬＴＩＡ法））
　本発明の免疫学的測定方法の１つであるＬＴＩＡ法について説明する。ＬＴＩＡ法により測定対象物質を測定する方法は、大きく二つに大別することができる。
　一つ目は、次のステップにより測定対象物質を測定する方法である。測定対象物質に対する特異的結合パートナーを固定化したラテックス粒子と、測定対象物質とを反応させる。当該反応により、サンドイッチ型の免疫複合体が形成される。次に、免疫複合体形成に伴う当該ラテックス粒子の凝集の程度を検出する。当該検出値から測定対象物質を算出する。　
　二つ目は、次のステップにより測定対象物質を測定する方法である。試薬中に複数の測定対象物質又はその類縁体（これらの断片を含む）を固定化した蛋白質等を添加しておく。これらと試料中の測定対象物質とを競合させる。試薬中に含まれる測定対象物質と、測定対象物質に対する特異的結合パートナーを固定化したラテックス粒子との免疫複合体の形成を阻害する。免疫複合体の形成阻害に伴う当該ラテックス粒子の凝集阻害の程度を検出する。前記検出値から測定対象物質（抗原）を算出する方法である。
　測定対象物質と測定対象物質に対する特異的結合パートナーは、目的に応じて任意の物質を選択することができる。例えば、測定対象物質が抗原であれば、測定対象物質に対する特異的結合パートナーとしてポリクローナル抗体、モノクローナル抗体（組み換え型抗体および各抗体の機能性断片を含む）などの抗体を選択することができる。測定対象物質が抗体であれば、測定対象物質に対する特異的結合パートナーとして抗原（天然型および組み換え型抗原など）を選択することができる。本発明は上記いずれの方法にも用いることができる。具体的には、以下の工程が例示される。
（１）試料中の測定対象物質と抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体とを溶液中で接触させる工程
（２）（１）工程の後に、前記溶液中に測定対象物質に対する特異的結合パートナーを担持するラテックス粒子を添加する工程
（３）（２）の工程の後に、溶液中におけるラテックス粒子の凝集度合いを光学的に検出する工程
　ここで、（３）の工程は、「（２）の工程の途中、洗浄・分離工程を経ることなく当該測定対象物質と当該ラテックス粒子の凝集反応を測定する工程」であることを意味する。また（３）の工程は、「（２）の工程の後に、洗浄・分離工程を経ることなく当該測定対象物質と当該ラテックス粒子の凝集反応を測定する工程」であることを意味する。
　ＬＴＩＡ法としては、生じた凝集の程度を光学的あるいは電気化学的に観察することにより被検物質を測定できる。光学的に観察する方法としては、散乱光強度、吸光度、又は透過光強度を光学機器で測定する方法（エンドポイント法、レート法等）が挙げられる。試料の測定値を、標準物質（測定対象物質の濃度が既知の試料）の測定値と比較して、試料中に含まれていた測定対象物質の濃度（定量値）を算出する。なお、透過光又は散乱光などの吸光度等の測定は、１波長測定又は２波長測定（２つの波長による差又は比）のいずれでもよい。測定波長は、一般的に５００ｎｍから９００ｎｍの中から選ばれる。
  本発明の試料中の測定対象物質の測定は、用手法又は測定装置等の装置を用いる方法のいずれで行ってもよい。測定装置は、汎用自動分析装置でも、専用の測定装置（専用機）でもよい。また、この測定は、２ステップ法（２試薬法）等の複数の操作ステップにより行う方法によって実施することが好ましい。
（特異的結合パートナーを担持したラテックス粒子）
  測定対象物質に対する特異的結合パートナーは、公知の方法によりラテックス粒子に固定化して担持させることができる。公知の方法としては、物理的吸着法、化学的結合法又はこれらの併用等が挙げられる。
  物理的吸着法としては、特異的結合パートナーと、ラテックス粒子とを、緩衝液等の溶液中で混合し接触させる方法がある。また、物理吸着法としては、緩衝液等に溶解した特異的結合パートナーを、担体に接触させる方法がある。
  また、化学的結合法は、日本臨床病理学会編「臨床病理臨時増刊特集第５３号  臨床検査のためのイムノアッセイ－技術と応用－」，臨床病理刊行会，１９８３年発行；日本生化学会編「新生化学実験講座１ タンパク質IV」，東京化学同人，１９９１年発行等に記載の公知の方法に従う。特異的結合パートナーと、担体とを、架橋試薬により反応させる方法である。架橋試薬としては、グルタルアルデヒド、カルボジイミド、イミドエステル又はマレイミド等の二価性の架橋試薬が挙げられる。当該方法は、特異的結合パートナーと、担体の、それぞれのアミノ基、カルボキシル基、チオール基、アルデヒド基又は水酸基等と前記二価性の架橋試薬とを反応させる方法である。
　本発明のラテックス粒子を構成する合成高分子としては特に限定はない。当該高分子としては、例えば、ポリスチレン、スチレン－スチレンスルホン酸塩共重合体、メタクリル酸重合体、アクリル酸重合体、イタコン酸重合体、スチレン－親水性カルボキシモノマー共重合体が挙げられる。また、スチレン－メタクリル酸共重合体、スチレン－アクリル酸共重合体、スチレン－イタコン酸共重合体等が挙げられる。好ましくはスチレン－メタクリル酸共重合体、スチレン－イタコン酸共重合体、スチレンおよびスチレン－スチレンスルホン酸塩共重合体である。特に好ましくは、スチレン及びスチレン－（メタ）アクリル酸共重合体である。
　測定対象物質に対する特異的結合パートナーは、サンドイッチ複合体を形成するために複数種類用いることが好ましい。測定対象物質の構造中に特異的結合パートナーによって認識される部位が複数存在する場合には、特異的結合パートナーは１種類でも良い。サンドイッチ複合体を形成するために、例えば、特異的結合パートナーがモノクローナル抗体の場合には、認識部位の異なる複数のモノクローナル抗体を用いる。また、例えば、特異的結合パートナーがポリクローナル抗体の場合には、１種の抗血清由来のポリクローナル抗体でもよいし、複数種の抗血清由来のものでもよい。また、モノクローナル抗体とポリクローナル抗体を組み合わせて用いてもよい。
  なお、ラテックス粒子の自然凝集や、非特異的反応等を抑制するために公知の方法によりラテックス粒子の表面にブロッキング処理（マスキング処理）を行ってもよい。
　そのようなブロッキング処理方法としては、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、カゼイン、ゼラチン、卵白アルブミン若しくはその塩などのタンパク質、界面活性剤又は脱脂粉乳等をラテックス粒子表面に被覆させる方法が挙げられる。
（免疫学的測定用試薬）
　本発明の免疫学的測定方法は、免疫学的測定用試薬を用いて行われる。当該試薬には、免疫反応の主成分の他に、前述の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む。免疫反応の主成分としては、測定対象物質に特異的な結合パートナー（抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体以外）が含まれる。前記主成分としては、他に免疫測定用粒子、イムノクロマト試験片、マイクロプレートなどの不溶性担体等が挙げられる。
　本発明の免疫学的測定用試薬中には、その非特異的反応抑制効果を妨げない範囲でバッファー、タンパク質、ペプチド、アミノ酸、核酸、脂質、リン脂質、糖類、無機塩、高分子化合物、界面活性剤、その他の非特異的反応抑制剤、防腐剤等を含有させてもよい。
　反応液のｐＨ、イオン強度、浸透圧などを緩衝、調整する成分として、例えば、酢酸、クエン酸、リン酸、トリス、グリシン、ホウ酸、炭酸、フタル酸、コハク酸、マレイン酸、イミダゾールなどの緩衝液、及びグッドの緩衝液や、それらのナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩などを含んでも良い。
　また、凝集形成を増強する成分としてポリビニルピロリドン、リン脂質ポリマーなどの高分子を含んでも良い。
　抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体の各構成試薬中における濃度は、各試薬型により異なる。抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、測定時（試薬と試料が混合した状態）に前記免疫反応系内の濃度に調整しうるような濃度で含まれていればよい。
(試薬キット)
　本発明の試薬キットは、キット構成に少なくとも抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含むことを特徴とする。キット構成としては、免疫測定に関わる試薬、試料希釈液、試料抽出液などが挙げられる。本発明の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体はこれらのキット構成のいずれか１つ、あるいは２つ以上に含まれる。キット構成としては、上記のほかに、使用説明書、試料採取用具（採取ピペット、シリンジ、綿棒、ろ過フィルターなど）が挙げられる。
　以下、各免疫測定方法を採用する試薬構成についてそれぞれ説明する。
＜ラテックス免疫比濁法＞
　免疫学的測定法がラテックス免疫比濁法である場合の試薬（ＬＴＩＡ試薬）を例示する。
（１）抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む第１試薬
（２）測定対象物質に対する特異的結合パートナーを担持するラテックス粒子を含む第２試薬
　第１試薬は典型的には緩衝液を含む。抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体の緩衝液中における濃度は、各試薬型により異なる。抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、測定時（試薬と試料の混合状態）において前記好ましい抗体濃度に調整しうるような濃度で含まれていればよ。抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は第１試薬のほかに第２試薬に含まれていてもよい。
　ＬＴＩＡ試薬において、一般的な第１試薬に含まれる抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体の濃度としては、１～２０００μｇ／ｍＬ、好ましくは５～１５００μｇ／ｍＬ、より好ましくは１０～１０００μｇ／ｍＬ、さらに好ましくは１５～５００μｇ／ｍＬ、最も好ましくは２５～５００μｇ／ｍＬである。
　また、ＬＴＩＡ法に供する前に、検体に検体希釈液や前処理液等を添加する場合、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は前処理液に含まれていても良い。前処理液中の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体濃度は１～２０００μｇ／ｍＬ、好ましくは５～１５００μｇ／ｍＬ、より好ましくは１０～１０００μｇ／ｍＬ、さらに好ましくは１５～５００μｇ／ｍＬ、最も好ましくは２５～５００μｇ／ｍＬである。
　抗Ｃ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体、抗Ｃ１ｒ抗体、抗Ｃ２ａ抗体及び抗Ｃ２ｂ抗体についても上記抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体と同様の濃度範囲で用いることができる。
　本発明に用いられる免疫測定用粒子は、上記のラテックス粒子以外にも公知の粒子を使用できる。そのような粒子としては、例えば、金属コロイド、シリカ、カーボン等の無機物粒子が挙げられる。
　免疫測定用粒子のサイズは、使用する光学的測定法（例えば、透過光を測定する比濁法、散乱光を測定する比朧法など）を考慮して選択する。当該サイズは、所望の測定感度、測定範囲などが得られるように選択する。当該サイズは、例えば０．０５～１μｍの範囲から選択することができる。なお、自動分析装置における光学的測定においては平均粒子径０．１～０．４μｍが汎用されている。当該粒子サイズは、これに限定されない。
＜ＥＬＩＳＡ法＞
　ＥＬＩＳＡ法とは、種々の抗原抗体反応の組合せを利用し、最終的には酵素標識した抗原あるいは抗体を反応系に添加して、酵素活性を検出する方法である。酵素活性の検出には、反応によって吸光スペクトルが変化する基質が用いられる。またＥＬＩＳＡ法としては、抗原抗体反応の組合せによって直接法、間接法、サンドイッチ法、競合法などが挙げられる。
　本発明の免疫学的測定法がサンドイッチＥＬＩＳＡ法である場合の試薬を例示する。
（ａ）測定対象物質と反応する抗体を固定化した不溶性担体
（ｂ）標識物質で標識され、測定対象物質と反応する抗体
　（ａ）の不溶性担体としては、プレートが好ましい。標識物質は、適宜選択して使用できる。不溶性担体に固定化された抗体は、試料を含む溶液中の測定対象物質を捕捉し、不溶性担体上で複合体を形成する。標識物質で標識された抗体は、前記捕捉された測定対象物質に結合して前述の複合体とサンドイッチを形成する。標識物質の量を測定することにより、試料中の測定対象物質を測定することができる。抗体の不溶性担体への固定化の方法、抗体と標識物質との結合方法などは、当業者に周知の方法を使用することができる。
　本サンドイッチＥＬＩＳＡ法において、本発明の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は例えば、試料希釈液や前処理液等に添加することができる。また、本発明の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、抗原抗体反応を行う溶液中に添加することができる。
＜イムノクロマトグラフィー法＞
　本発明の免疫学的測定法がイムノクロマトグラフィー法である場合の試薬構成（試験片構成）について説明する。
　イムノクロマト試験片は、特異的結合パートナーとして抗体を用いた場合、多孔性メンブレンなどのシート状の不溶性担体上に、試料を含む溶液の展開方向に順に「１．試料供給部位」、「２．標識抗体保持部位」、「３．捕捉抗体部位」を具備した試験片である。
　イムノクロマトグラフィー法による検出は以下のように行う。測定対象物質を含む試料を上記試験片の試料供給部位（１）に所定量添加する。試料は毛細管現象により標識保持部位（２）に侵入する。測定対象物質と標識抗体とが結合して複合体を形成する。該複合体は、メンブレン上を展開する。該複合体は捕捉抗体部位（３）に侵入する。複合体は捕捉抗体－測定対象物質－標識抗体のサンドイッチ複合体を形成する。そして当該サンドイッチ複合体の標識を任意の方法（例えば、金コロイドなど可視化可能な標識の場合にはその凝集像、酵素の場合には、基質を添加することによる発色反応）で検出する。当該検出により、測定対象物質を検出することができる。
　本イムノクロマトグラフィー法において、本発明の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、例えば、試料希釈液や前処理液等に添加する。また、本発明の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、試料供給部位や標識保持部位に保持させる。これらにより、本発明の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を反応系内に存在させることができる。
＜化学発光法＞
　化学発光法は、標識物質を電気化学的刺激により発光させ、その発光量を検出することで測定対象物の量を算出する方法である。
　標識に酵素を用いた場合を化学発光酵素免疫測定法（ＣＬＥＩＡ法：Chemiluminescent enzyme immunoassay）という。また、標識にルテニウムピリジン錯体等の金属錯体を用いて電気化学反応により発光強度を測定する場合を電気化学発光免疫測定法（ＥＣＬＩＡ法：Electro chemiluminescence immunoassay）という。また、標識に化学発光性物質を用いた場合を化学発光免疫測定法（ＣＬＩＡ法：Chemiluminescent immunoassay）という。
　本発明の免疫学的測定法がＣＬＥＩＡ法である場合の試薬を例示する。
（ａ）測定対象物質と反応する抗体(又は抗原)を固定化した磁性粒子
（ｂ）酵素標識され、測定対象物質と反応する抗体（又は抗原）
（ｃ）発光試薬
　磁性粒子に固定化された抗体（又は抗原）は、試料を含む溶液中の測定対象物質を捕捉し、複合体を形成する。磁気により未反応物質を除去する。酵素標識物質で標識された抗体（又は抗原）は、前記捕捉された測定対象物質に結合して前述の複合体とサンドイッチ複合体を形成する。磁気により未反応物質を除去する。酵素標識物質と発光試薬を反応させて発光量を測定する。当該測定により、試料中の測定対象物質を測定することができる。
　本ＣＬＥＩＡ法において、本発明の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、抗原抗体反応を行う溶液中に添加される。本発明の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体は、例えば、試料希釈液や前処理液等に添加される。
（特異的結合パートナー）
　本発明において、測定対象物質に対する特異的結合パートナーとしては、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体以外のタンパク質、ペプチド、アミノ酸、脂質、糖質、核酸、ハプテンなどが挙げられる。当該特異的結合パートナーとしては、分子量の大小に特に制限はない。また、当該特異的結合パートナーは天然でも合成でもよい。当該特異的結合パートナーとしては、免疫学的測定法に使用され得る抗体または抗原が挙げられる。
　前記抗体は、ポリクローナル抗体でもモノクローナル抗体でもよい。前記抗体は、より好ましくは、モノクローナル抗体である。
　本発明の抗体としては、抗体分子全体のほかに抗原抗体反応活性を有する抗体の機能性断片を使用することも可能である。一般的な動物（マウス、ヤギ、ヒツジなど）への免疫工程を経て得られたものが使用される。また、免疫原（測定対象物質物質）を免疫する動物とは異なる動物種のアミノ酸配列に変化させた抗体（キメラ抗体、ヒト化抗体、又は完全ヒト化抗体等）であってもよい。抗体の機能性断片としては抗原抗体反応活性を有する断片であるＦ（ａｂ'）2、Ｆａｂ'や一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）、ＶＨＨ（variable domain of heavy chain of heavy chain antibody）抗体、ＩｇＮＡＲ（new antigen receptor）抗体などが挙げられる。これらの抗体の機能性断片は前記のようにして得られた抗体をタンパク質分解酵素（例えば、ペプシンやパパインなど）で処理することにより製造できる。 
（試料）
　本発明の測定対象物質を含む試料としては、例えばヒト又は動物の血液、血清、血漿、培養上清、尿、髄液、唾液、汗、腹水、又は細胞あるいは組織の抽出液等が挙げられる。
　また、本発明における試料には、生体から得られた試料そのもの、生体試料を希釈した試料、生体試料に精製などの前処理を行った試料も含まれる。また、本発明における試料は採取直後のもの、採取後一定時間経過したものなどいずれでもよい。本願発明は、採取後一定時間経過してもなお存在する非特異因子に対して非特異反応抑制効果を有する。一定時間としては採取直後、１日後、１週間後などが挙げられる。
（測定対象物質）
　本発明の免疫測定試薬は、前記試料に含有される種々の物質を測定対象物質とすることができる。測定対象物質としては、非特異反応抑制のために用いられる抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体と反応しない物質であればよい。そのような測定対象物質としては、タンパク質、ペプチド、アミノ酸、脂質、糖質、核酸、ハプテンなどが挙げられる。測定対象物質は、理論的に測定可能な物質であれば特に制限はない。測定対象物質としては、例えばＣＲＰ（Ｃ反応性タンパク質）、Ｌｐ（ａ）、ＭＭＰ３（マトリクスメタロプロテイナーゼ３）、抗リン脂質抗体、ＩＶ型コラーゲン、ＰＳＡ、ＢＮＰ（脳性ナトリウム利尿ペプチド）、インスリン、アルブミン、シスタチンＣ、ＲＦ（リウマチ因子）、ＫＬ－６、プロカルシトニン、ＦＤＰ、Ｄダイマー、ＳＦ（可溶性フィブリン）、ＴＡＴ（トロンビン－アンチトロンビンＩＩＩ複合体）、ＰＡＩ－１や、フェニトイン、フェノバルビタール、カルバマゼピン、バルプロ酸、テオフィリン、ＴＡＲＣ（Ｔｈｙｍｕｓ　ａｎｄ　ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ－ｒｅｇｕｌａｔｅｄ　ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ）, ｓＩＬ－２Ｒ（可溶性インターロイキン－２受容体）などが挙げられる。
（非特異反応抑制剤）
　本発明において、非特異反応を抑制するとは、生体試料中の上記の非特異反応を生じさせる因子（非特異因子）と結合し、免疫反応以外の反応による測定への影響を抑制することをいう。従って、本発明において、候補物質に非特異反応の抑制効果があるかどうかは、例えば次のように判断できる。非特異反応を生じない方法（あるいは生じにくい方法（実施例では、ＣＬＥＩＡ法））で測定した場合の測定値（以下、基準値という）を基準にする。目的の測定方法において、候補物質添加有りの場合と無しの場合を比べて測定値が基準値に近づくかどうかによって判断することができる。すなわち、目的の測定方法において、候補物質を添加した場合の測定値の方が、候補物質を添加しなかった場合の測定値に比べて、基準値に近い場合は、当該測定方法において候補物質に非特異反応抑制効果があると判断することができる。当該候補物質は、当該測定方法において非特異反応抑制剤になりうると判断することができる。
　本発明における非特異反応抑制剤の対象は、正の測定誤差を生じる因子や、負の測定誤差を生じる因子のいずれも対象とする。本発明の非特異反応抑制剤は、このうちでも、市販の非特異反応抑制剤（ＨＢＲ－１など）によってもなお抑制できないような非特異因子に対して特に効果を有する。また、本発明の非特異反応抑制剤は、いわゆる乖離検体に対して効果を有する。ここで、乖離検体とは測定値が異常に高値化するような正の測定誤差を生じる因子を含む検体をいう。
　本発明の非特異反応抑制剤は、試料に由来する非特異因子による反応を抑制可能な物質を含んでいればよい。本発明の非特異反応抑制剤は、少なくとも抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を有効成分として含む。本発明の非特異反応抑制剤は、上記試薬構成中の抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む構成をそのまま使用することができる。
　本発明の非特異反応抑制剤には、その非特異的反応抑制効果を妨げない範囲でバッファー、タンパク質、ペプチド、アミノ酸、核酸、脂質、リン脂質、糖類、無機塩、高分子化合物、界面活性剤、その他の非特異的反応抑制剤（抗Ｃ３ｄ抗体や、抗ヒトＩｇＭ抗体など）、防腐剤等を含有させてもよい。
（非特異反応の抑制方法）
　本発明の非特異反応の抑制方法とは、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で免疫反応を行うことにより、試料に起因する非特異反応を抑制する方法である。
　以下、実施例により本発明を詳細に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
 [実施例I：ＬＴＩＡ法における非特異反応抑制：ｓＩＬ－２Ｒの測定]
　本発明の抗Ｃ１ｑポリクローナル抗体又はその他の非特異反応抑制剤を添加したＬＴＩＡ法による試薬を用いて、試料中のｓＩＬ－２Ｒ濃度測定を行った。試料としては、検体１～５を用いた。検体１～３（対照検体）は、ＬＴＩＡ法による測定値が化学発光酵素免疫測定法（ＣＬＥＩＡ法）による測定値（比較例１）と近い値を示す試料である。検体４、５（乖離検体）は、非特異反応を呈し、ＬＴＩＡ法による測定値が比較例１の測定値から大きく乖離する試料である。
 [比較例１]（ＣＬＥＩＡ法による測定)
１．測定方法
１－１．測定試薬
　ルミパルスプレスト(登録商標)ＩＬ－２Ｒ（富士レビオ株式会社）
１－２．試料
　検体（採取後１週間～３週間冷蔵保存した血清）１－５
１－３．測定手順
　ルミパルス(登録商標) －Ｌ２４００（富士レビオ株式会社）にて、前記測定試薬の添付文書に従い測定を行った。
２．測定結果
　測定結果を表１に示した。
　本比較例１で示すＣＬＥＩＡ法は、Ｂ／Ｆ分離操作を実施し、洗浄工程を有する。このため、ＣＬＥＩＡ法は試料に由来する非特異反応の影響を受けにくい測定方法である。
[比較例２]（ＬＴＩＡ法による測定：非特異反応抑制剤の添加なし）
１．測定方法
１－１．測定試薬
　特開２０１７－１８１３７７記載の方法に従い、第１試薬と第２試薬を調製した。
１－２．試料
　比較例１の試料に同じ。
１－３．測定手順
 　第１試薬と第２試薬を組み合わせ、日立７１８０形自動分析装置を用いて、試料中のｓＩＬ－２Ｒ濃度を測定した。具体的には、試料５．６μＬに第１試薬１２０μＬを加えて３７℃で５分間保温した。その後、第２試薬４０μＬを加えて攪拌した。凝集形成に伴う吸光度変化を、その後５分間にわたり、主波長５７０ｎｍ、副波長８００ｎｍで測定した。その吸光度変化量を濃度既知の標準物質を測定して得られる検量線にあてはめ、測定値を算出した。
２．測定結果
　測定結果を表１に示した。
[比較例３]（ＬＴＩＡ法による測定：ＨＢＲ－１添加）
　比較例２で示した第１試薬に、市販の非特異反応抑制剤（ＨＢＲ－１（ＳＣＡＮＴＩＢＯＤＩＥＳ　ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ，ＩＮＣ.社））を１００μｇ／ｍＬとなるよう添加したほかは比較例２と同一の方法で測定を行った。測定結果を表１に示した。
[実施例１]（ＬＴＩＡ法による測定：抗Ｃ１ｑポリクローナル抗体添加）
　比較例２で示した第１試薬に、抗Ｃ１ｑポリクローナル抗体（ＩｍｍｕｎｏＲｅａｇｅｎｔｓ，Ｉｎｃ．社）を１００μｇ／ｍＬとなるよう添加したほかは比較例２と同一の方法で測定を行った。測定結果を表１に示した。　 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
（結果と考察）
　比較例１～３、実施例１の結果から本発明の効果について考察を行った。比較例１はＣＬＥＩＡ法による測定値である。比較例２、３、実施例１はＬＴＩＡ法による測定値である。比較例２は試薬に非特異反応抑制剤を添加していない。比較例３は試薬に市販のＨＢＲ―１を添加した。実施例１は試薬に本発明の抗Ｃ１ｑポリクローナル抗体を添加した。
（１）対照検体（検体番号１～３）の測定結果について検証を行った。
　対照検体では、比較例１と比較例２の測定値は概ね同等であった。また、実施例１も比較例１、２の測定値と概ね同等であった。比較例２は本発明の抗Ｃ１ｑポリクローナル抗体を反応系内に添加していないＬＴＩＡ法である。実施例１は本発明の抗Ｃ１ｑポリクローナル抗体を反応系内に添加したＬＴＩＡ法である。従って、抗Ｃ１ｑポリクローナル抗体の添加は、非特異反応を呈しない検体の測定値に対して影響を与えないことがわかった。
（２）乖離検体（検体番号４、５）の測定結果について検証を行った。
　検体番号４の測定値は、比較例１が３４６Ｕ／ｍＬであった。一方、比較例２は１３３２Ｕ／ｍＬとなった。当該測定値は、比較例１の測定値に対して大きく乖離した。さらに比較例３は１２１６Ｕ／ｍＬであった。当該測定値は比較例１の測定値に対して大きく乖離した。
　一方、実施例１は４１８Ｕ／ｍＬであった。当該測定値は比較例１の測定値に近づく傾向を示した。検体５においても同様の結果が得られた。
　以上より、免疫測定方法において、本発明の抗Ｃ１ｑ抗体を免疫反応系内に存在させることにより、試料に由来する非特異反応を抑制することができた。この非特異反応は、市販の非特異反応抑制剤によっても抑制できなかった。従って、本発明の抗Ｃ１ｑ抗体による非特異反応抑制効果は予想外の効果である。
　本検討で見いだされた抗Ｃ１ｑ抗体による非特異反応抑制効果は、何らかの原因で生じた高値側の乖離を抑制する効果である。特許文献３には、阻害因子が固相面に沿ってそれ自体の被膜を形成し、抗原抗体反応をブロックすることによって測定値が低下する現象が記載されている。また、この阻害因子は、新鮮血清に一様に存在し、時間の経過とともに不活化することが開示されていた。一方、本検討では採血後、冷蔵で１週間以上保存した血清を試料として使用した場合に非特異反応抑制効果が見られた。従って、本検討で見いだされた非特異反応抑制効果は、特許文献３とは異なり、時間の経過とは関係しない非特異因子を抑制する効果であると言える。
[実施例II：ＬＴＩＡ法における非特異反応抑制：ｓＩＬ－２Ｒの測定]
　本発明の抗Ｃ２ａポリクローナル抗体、抗Ｃ２ｂポリクローナル抗体又はその他の非特異反応抑制剤を添加した溶液で検体を希釈し、測定した。試料としては、検体６と検体７を用いた。検体６（対照検体）は、ＬＴＩＡ法による測定値が化学発光酵素免疫測定法（ＣＬＥＩＡ法）による測定値（比較例４）と近い値を示す試料である。検体７（乖離検体）は、非特異反応を呈し、ＬＴＩＡ法による測定値が比較例４の測定値から大きく乖離する試料である。　　
 [比較例４]（ＣＬＥＩＡ法による測定)
１．測定方法
１－１．測定試薬
　ルミパルスプレスト(登録商標)ＩＬ－２Ｒ（富士レビオ株式会社）
１－２．試料
　検体（採取後１週間～３週間冷蔵保存した血清）６、７
１－３．測定手順
　ルミパルス(登録商標) －Ｌ２４００（富士レビオ株式会社）にて、前記測定試薬の添付文書に従い測定を行った。
２．測定結果
　測定結果を表２に示した。
　本比較例４で示すＣＬＥＩＡ法は、Ｂ／Ｆ分離操作を実施し、洗浄工程を有する。このため、ＣＬＥＩＡ法は試料に由来する非特異反応の影響を受けにくい測定方法である。
[比較例５]（ＬＴＩＡ法による測定：非特異反応抑制剤未添加の検体希釈液で等量希釈した試料を測定）
１．測定方法
１－１．測定試薬
　特開２０１７－１８１３７７記載の方法に従い、第１試薬と第２試薬を調製した。
１－２．検体希釈液
　ＰＢＳ緩衝液（ｐＨ７．４）を使用した。
１－３．試料
　比較例４記載の検体（血清）６、７をそれぞれ検体希釈液で等量希釈した試料
１－４．測定手順
 　第１試薬と第２試薬を組み合わせ、日立７１８０形自動分析装置を用いて、試料中のｓＩＬ－２Ｒ濃度を測定した。具体的には、試料５．６μＬに第１試薬１２０μＬを加えて３７℃で５分間保温した。その後、第２試薬４０μＬを加えて攪拌した。凝集形成に伴う吸光度変化を、その後５分間にわたり、主波長５７０ｎｍ、副波長８００ｎｍで測定した。その吸光度変化量を濃度既知の標準物質を測定して得られる検量線にあてはめ、測定値を算出した。算出値に検体の希釈倍率を乗じ原液濃度に換算した。
２．測定結果
　測定結果を表２に示した。
[比較例６]（ＬＴＩＡ法による測定：ＨＢＲ－１を添加した検体希釈液で等量希釈した試料を測定）
　比較例５で示した検体希釈液に、市販の非特異反応抑制剤（ＨＢＲ－１（ＳＣＡＮＴＩＢＯＤＩＥＳ　ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ，ＩＮＣ.社））を１ｍｇ／ｍＬとなるよう添加したほかは比較例５と同一の方法で測定を行った。測定結果を表２に示した。
[比較例７]（ＬＴＩＡ法による測定：抗Ｃ４ａポリクローナル抗体を添加した検体希釈液で等量希釈した試料を測定）
　比較例５で示した検体希釈液に、抗Ｃ４ａポリクローナル抗体（biorbyt社）を１ｍｇ／ｍＬとなるよう添加したほかは比較例５と同一の方法で測定を行った。測定結果を表２に示した。なお、Ｃ４ａ及びＣ４ｂは、Ｃ２ａ、Ｃ２ｂと同じくClassical　pathwayの補体タンパクの１種である。
[比較例８]（ＬＴＩＡ法による測定：抗Ｃ４ｂポリクローナル抗体を添加した検体希釈液で等量希釈した試料を測定）
　比較例５で示した検体希釈液に、抗Ｃ４ｂポリクローナル抗体（biorbyt社）を１ｍｇ／ｍＬとなるよう添加したほかは比較例５と同一の方法で測定を行った。測定結果を表２に示した。
[実施例２]（ＬＴＩＡ法による測定：抗Ｃ２ａポリクローナル抗体添加）
　比較例５で示した検体希釈液に、抗Ｃ２ａポリクローナル抗体（biorbyt社）を１ｍｇ／ｍＬとなるよう添加したほかは比較例５と同一の方法で測定を行った。測定結果を表２に示した。
[実施例３]（ＬＴＩＡ法による測定：抗Ｃ２ｂポリクローナル抗体添加）
　比較例５で示した検体希釈液に、抗Ｃ２ｂポリクローナル抗体（biorbyt社）を１ｍｇ／ｍＬとなるよう添加したほかは比較例５と同一の方法で測定を行った。測定結果を表２に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
（結果と考察）
　比較例４～８、実施例２、３の結果から本発明の効果について考察を行った。比較例４はＣＬＥＩＡ法による測定値である。比較例５～８、実施例２，３はＬＴＩＡ法による測定値である。比較例５は試薬に非特異反応抑制剤を添加していない。比較例６は試薬に市販のＨＢＲ－１を添加した。比較例７は試薬に抗Ｃ４ａポリクローナル抗体を添加した。比較例８は試薬に抗Ｃ４ｂポリクローナル抗体を添加した。実施例２は試薬に本発明の抗Ｃ２ａポリクローナル抗体を添加した。実施例３は試薬に本発明の抗Ｃ２ｂポリクローナル抗体を添加した。
（１）対照検体（検体番号６）の測定結果について検証を行った。
　対照検体では、比較例４と比較例５の測定値は概ね同等であった。また、実施例２、３も、比較例４、５の測定値と概ね同等であった。比較例５は、非特異反応抑制剤を反応系内に添加していない測定試験である。実施例２，３は、本発明の抗Ｃ２ａポリクローナル抗体もしくは、抗Ｃ２ｂポリクローナル抗体を反応系内に添加した測定試験である。
　従って、抗Ｃ２ａポリクローナル抗体、抗Ｃ２ｂポリクローナル抗体の添加は、非特異反応を呈しない検体の測定値に対して影響を与えないことがわかった。
（２）乖離検体（検体番号７）の測定結果について検証を行った。
　検体番号７の測定値は、比較例４が５６７Ｕ／ｍＬであった。一方、比較例５は８６８Ｕ／ｍＬとなった。当該測定値は比較例４の測定値に対して大きく乖離した。さらに比較例６は９３２Ｕ／ｍＬであった。当該測定値は、比較例４に対して大きく乖離した。また、比較例７は１０３８Ｕ／ｍＬ、比較例８は１００８Ｕ／ｍＬであった。これらの測定値は、比較例４の測定値に対して大きく乖離した。
　一方、実施例２の測定値は７５８Ｕ／ｍＬ、実施例３の測定値は５５４Ｕ／ｍＬであった。当該測定値は、比較例４に近づく傾向を示した。
　以上より、免疫測定方法において、本発明の抗Ｃ２ａ抗体もしくは抗Ｃ２ｂ抗体を免疫反応系内に存在させることにより、試料に由来する非特異反応を抑制することができた。この非特異反応は、市販の非特異反応抑制剤によっても抑制できなかった。従って、本発明の抗Ｃ２ａ抗体、抗Ｃ２ｂ抗体による非特異反応抑制効果は予想外の効果であった。また、同じClassical　pathwayの補体タンパクの１種であるＣ４に対する抗体を免疫反応系内に添加しても非特異反応抑制効果は見られなかった。従って、実施例Ｉの抗Ｃ１抗体及び実施例IIの抗Ｃ２抗体による非特異反応抑制効果は予想外の効果であったと言える。
　本発明により、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で免疫反応を行うことにより試料中に非特異因子が含まれている場合でも正確な免疫測定方法を実現することが可能となった。 

Claims (20)

  1. 試料中の測定対象物質を免疫学的に測定する方法において、抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で免疫反応を行うことを特徴とする免疫学的測定方法（ただし、抗Ｃ１抗体存在下で試料中のリウマチ因子を免疫学的に測定する方法を除く）。
  2. 免疫学的測定方法が、ホモジーニアス法またはヘテロジーニアス法に基づく方法である請求項１に記載の免疫学的測定方法。
  3. ホモジーニアス法に基づく方法が、ラテックス免疫比濁法である請求項２に記載の免疫学的測定方法。
  4. 試料中の測定対象物質と抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体とを溶液中で接触させる工程と、
    前記溶液中に測定対象物質に対する特異的結合パートナーを担持するラテックス粒子を添加する工程と、
    溶液中におけるラテックス粒子の凝集度合いを光学的に検出する工程と、
    を含む、請求項３に記載の免疫学的測定方法。
  5. 抗Ｃ１抗体がＣ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群から選ばれるいずれか１以上であり、抗Ｃ２抗体が抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体である請求項１～４のいずれかに記載の免疫学的測定方法。
  6. 試料中の測定対象物質を免疫学的に測定する方法における非特異反応抑制方法であって、
    抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体存在下で免疫反応を行うことを特徴とする非特異反応抑制方法（ただし、抗Ｃ１抗体存在下で試料中のリウマチ因子を免疫学的に測定する方法における非特異反応抑制方法を除く）。
  7. 免疫学的測定方法が、ホモジーニアス法またはヘテロジーニアス法に基づく方法である請求項６に記載の非特異反応抑制方法。
  8. ホモジーニアス法に基づく方法が、ラテックス免疫比濁法である請求項７に記載の非特異反応抑制方法。
  9. 試料中の測定対象物質と抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体とを溶液中で接触させる工程と、
    前記溶液中に測定対象物質に対する特異的結合パートナーを担持するラテックス粒子を添加する工程と、
    溶液中におけるラテックス粒子の凝集度合いを光学的に検出する工程と、
    を含む、請求項８に記載の非特異反応抑制方法。
  10. 抗Ｃ１抗体がＣ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群から選ばれるいずれか１以上であり、抗Ｃ２抗体が抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体である請求項６～９のいずれかに記載の非特異反応抑制方法。
  11. 抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む免疫学的測定用試薬（ただし、抗Ｃ１抗体を含むリウマチ因子測定用の免疫学的測定用試薬を除く）。
  12. 免疫学的測定方法が、ホモジーニアス法またはヘテロジーニアス法に基づく方法である請求項１１に記載の免疫学的測定用試薬。
  13. ホモジーニアス法に基づく方法が、ラテックス免疫比濁法である請求項１２に記載の免疫学的測定用試薬。
  14. 抗Ｃ１抗体がＣ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群から選ばれるいずれか１以上であり、抗Ｃ２抗体が抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体である請求項１１～１３のいずれかに記載の免疫学的測定用試薬。
  15. 抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む免疫学的測定用試薬キット（ただし、抗Ｃ１抗体を含むリウマチ因子測定用の免疫学的測定用試薬キットを除く）。
  16. 免疫学的測定方法が、ホモジーニアス法またはヘテロジーニアス法に基づく方法である請求項１５に記載の免疫学的測定用試薬キット。
  17. ホモジーニアス法にもとづく方法が、ラテックス免疫比濁法であって、以下を含む請求項１６に記載の免疫学的測定用試薬キット。
    （１）抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を含む第１試薬
    （２）測定対象物質に対する特異的結合パートナーを担持するラテックス粒子を含む第２試薬
  18. 抗Ｃ１抗体がＣ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群から選ばれるいずれか１以上であり、抗Ｃ２抗体が抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体である請求項１５～１７のいずれかに記載の免疫学的測定用試薬キット。
  19. 抗Ｃ１抗体又は抗Ｃ２抗体を有効成分として含む、免疫学的測定方法における非特異反応抑制剤（ただし、抗Ｃ１抗体を有効成分として含むリウマチ因子測定用の免疫学的測定方法における非特異反応抑制剤を除く）。
  20. 抗Ｃ１抗体がＣ１ｑ抗体、抗Ｃ１ｓ抗体及び抗Ｃ１ｒ抗体からなる群から選ばれるいずれか１以上であり、抗Ｃ２抗体が抗Ｃ２ａ抗体又は抗Ｃ２ｂ抗体である請求項１９に記載の免疫学的測定方法における非特異反応抑制剤。
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