WO2020055083A1 - 유도만능줄기세포 유래 내피세포와 요독 복합체를 사용한 요독성 혈관병증 모델 및 이의 이용 - Google Patents

유도만능줄기세포 유래 내피세포와 요독 복합체를 사용한 요독성 혈관병증 모델 및 이의 이용 Download PDF

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    • C12N2506/45—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from artificially induced pluripotent stem cells

Definitions

  • the present invention relates to a model of urinary toxic angiopathy and use thereof, and more particularly, it includes urea and uric acid, and it contains indoxyl sulfate, creatinine or final glycosylated toxin ( advanced glycation end products, AGE), a medium composition for preparing a uremic vascular disease endothelial cell model using a uremic complex that may further contain uremic toxicosis, comprising treating a uremic complex on endothelial cells derived from induced pluripotent stem cells. It relates to a method of manufacturing a model, a model of urinary toxic angiopathy produced by the manufacturing method, a method of screening a therapeutic agent for inhibiting the progression of urinary vascular disease using the model, or a toxicity test method.
  • Uricemia is caused by various uremic substances that accumulate in the blood.
  • This uremia is a complex "poisoning" of fecal stagnation, which leads to a multifactorial problem by impairment in several metabolic functions as a clinical problem. It causes endothelial dysfunction and affects some organs and organ systems. For example, cardiovascular complications (hypertension, pericarditis and heart failure), peripheral nervous system disorders (multiple neurological disorders), central nervous system disorders (memory, decreased concentration and decreased intelligence levels), hematologic abnormalities (anemia, hemorrhagic predisposition, coagulation), immunity Dysfunction (immune suppression), digestive disorders (nausea, vomiting).
  • Chronic uremia is caused by irreversible damage to renal tissue.
  • chronic renal disease refers to structural abnormalities of the kidneys over 3 months, histological damage, or decreased kidney function.
  • Chronic renal disease is divided into 5 stages according to the degree of damage to the kidney and the degree of loss of function, and if not well managed, it will worsen to the last stage, end stage renal failure, and eventually, a new alternative treatment such as dialysis or kidney transplant should be performed.
  • the main causes of chronic kidney disease in Korea are diabetic kidney disease (41%), hypertension (16%), glomerulonephritis (14%), and other causes include polycystic kidney disease and other kidney urinary tract disease.
  • the present inventors studied to evaluate endothelial dysfunction, which forms the basis of uremic vascular disease, using endothelial cells derived from induced pluripotent stem cells and a uremic complex, while varying the combination and concentration of uremic cells.
  • the present invention was completed by confirming that it is possible to create an environment inducing dysfunction in endothelial cells similarly to the case of using serum directly from an actual chronic kidney disease patient when mixed with a culture medium.
  • the object of the present invention including urea (urea) and uric acid (uric acid), may further include indoxyl sulfate (indoxyl sulfate), creatinine (creatinine) or final glycation toxin (advanced glycation end products, AGE)
  • indoxyl sulfate indoxyl sulfate
  • creatinine creatinine
  • final glycation toxin as advanced glycation end products, AGE
  • a medium composition for preparing a uremic vascular disease endothelial cell model comprising a uremic complex
  • a method for preparing a toxic vascular disease endothelial cell model comprising the step of treating a uremic complex on endothelial cells, the uremic vascular disease endothelial produced by the above manufacturing method It is to provide a cell model and a method for screening a therapeutic agent for suppressing or treating urinary toxic angi
  • the present invention provides a medium composition for the preparation of a uremic vascular disease endothelial cell model comprising a uremic complex comprising urea and uric acid.
  • the present invention provides a method for preparing a toxic endothelial endothelial cell model comprising treating a uremic complex containing urea and uric acid on endothelial cells.
  • the present invention provides a ureotoxic angiopathy endothelial cell model produced by the method for preparing the ureotoxic angiopathy endothelial cell model.
  • the present invention (S1) processing a candidate substance to the ureotoxic angiopathy endothelial cell model; (S2) measuring at least one level selected from the group consisting of evaluating activated oxygen production level, tubular formation level and apoptosis level in the ureotoxic angiopathy endothelial cell model treated with the candidate substance; And (S3) when the level of activated oxygen production is reduced, the level of tubularity is increased, or the level of apoptosis is reduced, compared to the model of ureotoxic angiopathy endothelial cells in which the candidate substance is not treated in the step (S2).
  • a method of screening a therapeutic agent for inhibiting or treating urinary toxic angiosis comprising the step of determining the candidate substance as an agent for suppressing or treating urinary angiogenesis.
  • the present invention provides a medium composition comprising a uremic complex comprising urea and uric acid for the preparation of a model of ureotoxic angiopathy endothelial cells.
  • the present invention provides the use of a media composition comprising a uremic complex comprising urea and uric acid for the production of a media composition for the production of a uremic vascular disease endothelial cell model.
  • the uremic complex containing the urea and uric acid of the present invention When using the uremic complex containing the urea and uric acid of the present invention, among the various uremics, the uremic alone can easily create a uremic environment in endothelial cells similar to the case of using serum from a patient with chronic chronic kidney disease. You can.
  • the uremic endocytic endothelial cell model is prepared using the uremic complex of the present invention, an endothelial cell model capable of reflecting various signs of uremic vascular disease can be prepared.
  • endothelial cells differentiated from induced pluripotent stem cells it is possible to produce a model of ureotoxic angiopathy endothelial cells that reflects the patient's genetic characteristics. It can be useful for the back.
  • FIG. 1 is a diagram showing induced pluripotent stem cells for manufacturing a ureotoxic angiopathy endothelial cell model of the present invention.
  • FIG. 2 is a diagram showing endothelial cells differentiated from induced pluripotent stem cells of FIG. 1.
  • FIG. 3 is a view showing the results of measuring the level of activated oxygen production of endothelial cells in order to confirm the uremic environment in the body occurring in patients with chronic kidney disease.
  • FIG. 4 is a view showing the results of measuring the level of apoptosis of endothelial cells in order to confirm the effect of the uremic environment in the body occurring in patients with chronic kidney disease.
  • FIG. 5 is a view showing the results of measuring the level of activated oxygen production of endothelial cells on the fourth day after application of the uremic complex treatment to confirm the effect of the uremic complex of the present invention on endothelial cells.
  • FIG. 6 is a view showing the results of measuring the activated oxygen production level of endothelial cells on the second and fourth days after application of the uremic complex to confirm the effect of the uremic complex of the present invention on endothelial cells.
  • FIG. 7 is a view showing the results of measuring the level of apoptosis of endothelial cells after treatment of the uremic complex for 4 hours to confirm the effect of the uremic complex of the present invention on endothelial cells.
  • Figure 8 shows the results of measuring the level of tubularity of endothelial cells in the control 1, 2, 4, 5, UA 1 and UT 1 group after treatment of the uremic complex to determine the effect of the uremic complex of the present invention on endothelial cells It is shown.
  • FIG. 10 shows the effectiveness of the urinary complex of the present invention with serum of the terminal renal failure patient by measuring the level of tubularity in order to confirm the effectiveness of the urinary vascular disease model produced by treating the uremic complex of the present invention with endothelial cells. It is the figure which showed the comparison result.
  • Figure 11 shows the results of comparing the tube formation level of endothelial cells after SD-208 and losartan treatment to confirm whether the effect of the drug can be verified using the urinary toxic angiopathy endothelial cell model of the present invention It is.
  • the present invention provides a medium composition for preparing a uremic vascular disease endothelial cell model, comprising a uremic complex comprising urea and uric acid.
  • the "uremic complex" of the present invention means a uremic mixture containing urea and uric acid as basic components among various uremic compounds.
  • the uremic complex of the present invention is a complex for realizing the uremic environment in the body that occurs in patients with chronic renal disease, and is a uremic mixture capable of inducing uremic vascular disease in endothelial cells.
  • the uric acid may be included in the uremic complex at a concentration of 0.55 to 1, preferably 0.8 mM (13 mg / dL) to 1 mM (17 mg / dL).
  • concentration of uric acid in excess of 1 mM is beyond the range of hyperuricemia, which is commonly seen in patients with chronic renal disease, which can cause excessive damage to endothelial cells beyond the uremic environment in the body.
  • the urea may be included in the uremic complex at a concentration of 20 to 55, preferably 25 mM (71 mg / dL) to 50 mM (143 mg / dL). If the urea is included in the uremic complex in the concentration range as described above, the uremic environment in the body occurring in patients with chronic renal disease can be more effectively implemented.
  • the uremic complex may further include indoxyl sulfate or advanced glycation end products (AGE), and the type of uremic oxidized may not be limited thereto.
  • the indoxyl sulfate may be included in the uremic complex at a concentration of 0.3 to 1.5 mM, preferably 0.5 to 1 mM, and the final glycated toxin at a concentration of 0.5 to 15 mg / L, preferably 1 to 10 mg / L.
  • the level appearing in the uremic environment in the body occurring in patients with chronic renal disease, implemented with the uremic complex of the present invention, including the basic components (urea and uric acid), is further increased. It can be increased or maintained.
  • the uremic complex may further include creatinine, and the creatinine may be included in the uremic complex at a concentration of 0.05 to 1.5, preferably 0.1 mM (1 mg / dL) to 1 mM (11 mg / dL). have.
  • creatinine is included in the uremic complex in the concentration range as described above, it is possible to more effectively implement the uremic environment in the body occurring in patients with chronic kidney disease.
  • ureotoxic angiopathy is a disease in which the uremic component in the blood with an increased concentration due to chronic renal disease induces endothelial dysfunction, thereby eventually promoting arteriosclerosis.
  • chronic renal disease excretion of various uremic components decreases, resulting in a high level of uremic content in the body, and endothelial cell dysfunction is caused by continuous decrease in kidney function.
  • Vascular disease caused by endothelial cell dysfunction is a vascular disease caused by damage to endothelial cells, and endothelial cells appear damaged due to stimulation of various uremic poisons that cause endothelial cell damage due to uremic or disease caused by uremic poison.
  • the "endothelial cell” of the present invention may be, but is not limited to, endothelial cells differentiated from induced pluripotent stem cells (iPSCs).
  • iPSCs induced pluripotent stem cells
  • a toxic endothelial endothelial cell model reflecting genetic characteristics can be prepared.
  • the induced pluripotent stem cells may include both induced pluripotent stem cells derived from a normal person or a patient with chronic kidney disease.
  • the endothelial cells derived from patients with chronic renal disease-specific induced pluripotent stem cells are endothelial cells reflecting the characteristics of urinary vascular disease severity
  • the endothelial cells with different characteristics can be used according to the degree of vascular complications of the patient, thereby distinguishing them genetically and functionally.
  • Urine toxic endothelial cell models can be prepared.
  • such a model can be usefully used to screen for drugs suitable for the genetic and functional characteristics of each patient and to examine the presence or absence of drug toxicity for each patient.
  • culture media refers to a medium capable of supporting cell growth and survival under in vitro laboratory conditions (in vitro), and includes all common mediums used in the art suitable for culturing cells. do.
  • the medium may contain essential and non-essential amino acids, vitamins, energy sources, lipids and trace elements necessary for cells to proliferate and / or survive minimally.
  • a medium composition for preparing a uremic vascular disease endothelial cell model comprising a uremic complex comprising urea and uric acid of the present invention
  • serum of the patient with chronic renal disease is actually used only among the uremics among the various uremics. It is possible to easily and effectively obtain a uremic vascular disease endothelial cell model having a uremic environment similar to that of the case.
  • the present invention provides a medium composition comprising a uremic complex comprising urea and uric acid for the preparation of a model of ureotoxic angiopathy endothelial cells.
  • the present invention provides the use of a media composition comprising a uremic complex comprising urea and uric acid for the production of a media composition for the production of a uremic vascular disease endothelial cell model.
  • the present invention also provides a method for preparing a toxic endothelial endothelial cell model comprising treating a uremic complex comprising urea and uric acid on endothelial cells.
  • the endothelial cells may be endothelial cells differentiated from induced pluripotent stem cells (iPSCs), such as endothelial cells derived from specific induced pluripotent stem cells of chronic kidney disease patients, but are not limited thereto.
  • iPSCs induced pluripotent stem cells
  • the preparation method can be preferably performed in vitro.
  • uremic vascular disease endothelial cell model was prepared, and the urea alone used the serum of an actual chronic kidney disease patient.
  • a toxic endothelial endothelial cell model having a similar environment to the time can be easily and effectively produced. Description of each configuration of the manufacturing method of the present invention is omitted to avoid redundancy with the description of the medium composition.
  • the present invention also provides a ureotoxic angiopathy endothelial cell model produced by the method for preparing the ureotoxic angiopathy endothelial cell model.
  • the endothelial cells may be endothelial cells differentiated from induced pluripotent stem cells (iPSCs), such as endothelial cells derived from specific induced pluripotent stem cells of chronic kidney disease patients, but are not limited thereto.
  • iPSCs induced pluripotent stem cells
  • the ureotoxic angiopathy endothelial cell model prepared by the method of manufacturing the ureotoxic angiopathy endothelial cell model of the present invention has a similar uremic environment as when using serum from a patient with chronic chronic renal disease, such as similar activated oxygen production level, tubularity level and cell It may have a level of death, but is not limited thereto. Therefore, the endothelial cell model of the present invention is a model that easily reflects the signs of uremic vascular disease using the uremic complex of the present invention, which can be effectively used for drug screening and toxicity testing for the treatment of patients with uremic vascular disease.
  • the present invention also, (S1) processing a candidate substance in the ureotoxic angiopathy endothelial cell model; (S2) measuring at least one level selected from the group consisting of evaluating activated oxygen production level, tubular formation level and apoptosis level in the ureotoxic angiopathy endothelial cell model treated with the candidate substance; And (S3) when the level of activated oxygen production is reduced, the level of tubularity is increased, or the level of apoptosis is reduced, compared to the model of ureotoxic angiopathy endothelial cells in which the candidate substance is not treated in the step (S2).
  • a method of screening a therapeutic agent for inhibiting or treating urinary toxic angiosis comprising the step of determining the candidate substance as an agent for suppressing or treating urinary angiogenesis.
  • the step (S1) is a step of treating a candidate substance in a uremic vascular disease endothelial cell model in which a uremic environment is formed with the uremic complex of the present invention.
  • “candidate” is a substance expected to treat, prevent or improve uremic vascular disease caused by endothelial cell dysfunction due to chronic kidney disease, chemicals, oligonucleotides, peptides, and genes , Protein, food, formulations, compounds, compositions, medicines, nutritional supplements, health care products or beverages.
  • the "treatment” may be a method of incorporating a candidate substance into a medium composition for preparing a uremic vascular disease endothelial cell model, but is not limited thereto.
  • the (S2) step is a step of measuring various level changes to determine whether or not the candidate substance is treated with a uremic environment of the ureotoxic angiopathy endothelial cell model, activated oxygen production level, tubular formation level, and apoptosis level.
  • One or more levels selected from the group consisting of can be measured, but is not limited thereto.
  • the "measurement” can be performed by conventional methods known in the art.
  • the step (S3) is a step of determining the candidate substance selected as an agent for inhibiting or treating urinary toxic angiopathy by improving the urinary toxic environment of the uremic vascular disease endothelial cell model as a result of the measurement in the step (S2).
  • the step (S3) compared to the ureotoxic angiopathy endothelial cell model in which the candidate substance is not treated in the step (S2), the level of activation oxygen production is reduced, the level of tubularity is increased, or the level of apoptosis is decreased. If it is, the candidate substance may be determined as a substance for suppressing or treating urinary vascular disease.
  • the endothelial cells may be endothelial cells differentiated from induced pluripotent stem cells (iPSCs), or may be normal induced pluripotent stem cells or endogenous cells derived from specific induced pluripotent stem cells of chronic kidney disease patients, but are not limited thereto. .
  • iPSCs induced pluripotent stem cells
  • endothelial cells differentiated from induced pluripotent stem cells it is possible to screen for the treatment or suppression of urinary toxic angiopathy using a ureotoxic angiopathy endothelial cell model reflecting genetic characteristics.
  • the ureotoxic angiopathy inhibitory or therapeutic substance screening that is effective according to the characteristics and extent of vascular complications in the patient is screened. can do.
  • Example 1 Preparation of an endothelial cell model of urinary vascular disease
  • Example 1-1 Endothelial cell differentiation
  • FIG. 1 shows normal control induced pluripotent stem cells
  • FIG. 2 shows endothelial cells differentiated from normal control induced pluripotent stem cells.
  • Example 1-2 Determination of the type and composition of uremic complex
  • Urine Conventional unit SI unit Urea nitrogen 14.01 mg / dL 5 mmol / L 70.01 mg / dL 25 mmol / L 140.06 mg / dL 50 mmol / L 210.08 mg / dL 75 mmol / L
  • Creatinine (Cr) 1.13 mg / dL 0.1 mmol / L 11.3 mg / dL 1 mmol / L
  • Uric acid (UA) 4.2025 mg / dL 0.25 mmol / L 8.405 mg / dL 0.5 mmol / L 13.45 mg / dL 0.8 mmol / L 16.81 mg / dL 1 mmol / L
  • Indoxyl sulfate (IS) 0.5 mmol / L Advanced glycation end products (AGE) 1 mg / L, 10 mg / L
  • Comparative Example 1 Measurement of the level of uremic environment in the body in patients with chronic kidney disease
  • the serum of patients with end-stage renal failure undergoing actual hemodialysis on the endothelial cell model of the present invention is treated with chronic
  • the present invention was compared to compare the effect with the uremic complex.
  • the serum of patients with end-stage renal failure was used for the serum of patients undergoing hemodialysis at Samsung Seoul Hospital (Samsung Seoul Hospital IRB file number 2016-11-025).
  • the activated oxygen production level was measured according to the instructions using the ROS-Glo TM H 2 O 2 assay kit (Promega, catalog number G8820). Shown.
  • the apoptosis level of endothelial cells was measured according to the instructions using the Caspase-Glo 3/7 assay systems kit (Promega, catalog number G8091). 4 is shown.
  • Example 2-1 Measurement of activated oxygen production
  • urea, creatinine and uric acid are required as basic components in the urine complex in order to increase the production of activated oxygen.
  • the addition of phosphyl sulfate or the final glycated toxin can further increase the amount of activated oxygen or maintain a similar level of production.
  • Example 2-2 Cell death ( apoptosis ) Promotion confirmation
  • the apoptosis level was measured by measuring the apoptosis level in order to confirm that the uremic environment in the body was formed as in the case of the actual patient serum in Comparative Example 1. It is shown in 7.
  • the tube formation level was measured and compared as follows to confirm whether the uremic environment in the body was formed as in the case of applying serum from an actual patient.
  • tubular capacity was measured. After dispensing endothelial cells into 24 or 12-well plates coated with Matrigel (Corning, catalog number CB-40234) After incubation for 16-24 hours, the degree of tube formation was compared and analyzed. The results are shown in FIGS. 8 to 10.
  • the uremic complex which exhibits a significant result in common at various measurement levels to confirm that the uremic environment in the body is created, as in the case of applying serum of a real patient, is an element and uric acid. It was confirmed that the uremic complex containing as a basic configuration.
  • uremic complex (UT F, UT H) of the present invention significantly inhibits the ability of endothelial cells to form tubules, similar to the effect of actual patient serum.
  • the uremic complex of the present invention is effective in preparing a toxic endothelial endothelial cell model.
  • Example 4 Experiment of drug effect verification using a uremic vascular disease endothelial cell model
  • the uremic complex of the present invention or end-stage renal disease of the normal control induced pluripotent stem cell Patient serum was applied. Thereafter, SD-208 (TGF- ⁇ inhibitor) and losartan (losartan, angiotensin receptor blocker) were treated, and the degree of tubularity was measured and the results are shown in FIG. 11.
  • the urinary complex of the present invention (UT-F, UT-H, uric acid 3 (UA 3)), serum of patients with chronic kidney disease (patient 2, patient 4), normal control serum (control 1) and cell culture alone (media only) )
  • the results of measuring and comparing endothelial cell tubular capacity in the group are as follows.
  • an endothelial cell model capable of reflecting the signs of uremic vascular disease can be prepared, and the uremic ureter of the present invention is derived by inducing results similar to those of using serum of an actual patient. It was confirmed that the ureotoxic angiopathy endothelial cell model produced by treating the complex can be used for drug screening for the treatment of patients with uremic vascular disease.

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Abstract

본 발명은 요독성 혈관병증 모델 및 이의 이용에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하며, 인독실 황산염(indoxyl sulfate), 크레아티닌(creatinine) 또는 최종 당화 독소(advanced glycation end products, AGE)를 더 포함할 수 있는 요독 복합체를 이용하는 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물, 내피세포에 요독 복합체를 처리하는 단계를 포함하는 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조방법, 상기 제조방법으로 제조된 요독성 혈관병증 내피세포 모델 및 상기 모델을 이용한 요독성 혈관병증 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법 및 독성 검사 방법에 관한 것이다. 본 발명의 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 이용하면 여러 가지 요독 중에서도 상기 요독만으로도 실제 만성 신질환 환자의 혈청을 이용하였을 때와 유사하게 내피세포에 요독 환경을 간편하게 조성할 수 있다. 또한 본 발명의 요독 복합체를 사용하여 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제조하면 여러 가지 요독성 혈관병증의 징후를 반영할 수 있는 내피세포 모델을 제조할 수 있으며, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조 시 유도만능줄기세포에서 분화시킨 내피세포를 사용함으로써 유전적 특성이 반영된 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제조할 수 있어 이를 요독성 혈관병증 환자의 치료를 위한 맞춤형 약물 스크리닝, 신약 개발 및 독성 검사 등에 유용하게 사용할 수 있다.

Description

유도만능줄기세포 유래 내피세포와 요독 복합체를 사용한 요독성 혈관병증 모델 및 이의 이용
본 발명은 요독성 혈관병증 모델 및 이의 이용에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하며, 인독실 황산염(indoxyl sulfate), 크레아티닌(creatinine) 또는 최종 당화 독소(advanced glycation end products, AGE)를 더 포함할 수 있는 요독 복합체를 활용한 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물, 유도만능줄기세포 유래 내피세포에 요독 복합체를 처리하는 단계를 포함하는 요독성 혈관병증 모델 제조방법, 상기 제조방법으로 제조된 요독성 혈관병증 모델 및 상기 모델을 이용한 요독성 혈관병증의 진행 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법 및 독성 검사 방법에 관한 것이다.
요독증은 혈액 속에 축적되는 다양한 요독 물질에 의해 야기된다. 이러한 요독증은 몇몇 대사 작용 기능에서의 장애가 임상적 문제로 나타남으로써 다인성 문제를 야기하는 배설물 정체의 복합 "중독"이다. 내피세포의 기능 장애를 일으키며 몇몇 장기 및 장기 시스템에 영향을 끼친다. 예컨대 심혈관계 합병증 (고혈압, 심막염 및 심부전), 말초 신경계 장애 (다발성신경장애), 중추 신경계 장애 (기억력, 집중력 저하 및 지능 수준의 저하), 혈액학적 이상 (빈혈증, 출혈성 소인, 응고), 면역 기능 장애 (면역 억제), 소화 장애(메스꺼움, 구토) 등이 있다. 그러나 이들 요독 물질 중에서 어느 물질이 요독으로 인한 합병증의 발생 및 진행에 본질적으로 관여하고 있는지는 아직 불분명하고, 요독의 합병증이 단독물질로만 생기는 것인지, 이들 복수의 물질에 의한 복합 작용인지도 판명되어 있지 않다.
이러한 요독증에는 만성과 급성이 있는데, 만성 요독증은 신조직이 비가역적으로 손상되어 요독증이 일어나는 것이다. 이 중 만성 신질환은 3개월 이상 신장의 구조적 이상이나 조직학적 손상이 지속되거나 신장 기능 감소가 지속적으로 나타나는 것을 말한다. 만성 신질환은 신장의 손상 정도와 기능의 감소 정도에 따라 5단계로 나누어지며, 잘 관리하지 않으면 마지막 단계인 말기 신부전으로까지 악화되어 결국 투석이나 신장이식과 같은 신대체요법을 해야 한다. 국내에서 만성 신질환의 주된 발병 원인은 당뇨병성 신질환(41%), 고혈압(16%), 사구체신염(14%) 등이며, 그 밖의 원인으로는 다낭성 신질환과 기타 신장요로계질환이 있다. 신장 기능이 저하되면 피곤함, 가려움증, 식욕부진 등의 요독 증상이 나타난다. 말기 신부전에 이르면 호흡곤란, 식욕부진 및 구토 등의 증상이 더욱 심해지면서 투석이나 신장이식 등의 치료를 받지 않으면 정상적인 생활을 할 수 없는 상태가 된다. 이러한 만성 신질환, 특히 말기 신부전 환자들의 가장 큰 사망 요인은 심혈관계 합병증이다. 말기 신부전 환자들에서는 요독에 의해 혈관 내피세포의 기능 이상이 초래되면서 동맥경화증이 매우 급속도로 진행하는 요독성 혈관병증으로 인해 관상동맥질환이나 말초혈관 및 뇌혈관 질환이 발생률 및 중증도가 증가한다. 요독성 혈관병증은 심혈관계 합병증의 근본 원인으로서 말기 신부전 환자들의 사망률을 증가시키며 의료비를 증가시키는 주요 원인이기 때문에 요독성 혈관병증을 효과적으로 치료할 수 있는 방법이 필요하다.
만성 신질환의 진단과 치료를 위해서는 혈액검사로 요독 수치나 전해질 농도, 산-염기 상태 등을 검사한다. 만성 신질환과 이로 인한 요독성 혈관병증의 진행을 막기 위해서는 만성 신질환의 원인에 따른 치료뿐만 아니라, 고혈압, 당뇨, 고지혈증의 관리 및 치료가 필수적이다.
이에 요독으로 인해 여러 가지 심각한 합병증이 발생하므로 이를 효과적으로 치료할 수 있는 방법이 필요하다. 만성 신질환, 특히 말기 신질환 환자들의 사망률 및 의료비를 증가시키는 주요 요인으로 손꼽히는 요독성 혈관병증을 효과적으로 치료할 수 있는 새로운 약물 개발 및 약물의 효과적인 검증 방법의 개발이 필요하다.
이에 본 발명자들은 요독성 혈관병증의 근간을 이루는 내피세포 기능 이상(endothelial dysfunction)을 유도만능줄기세포 유래 내피세포와 요독 복합체를 이용하여 평가하기 위해 연구하던 중, 요독의 조합과 농도를 달리하여 세포 배양액에 혼합하였을 때 실제 만성 신질환 환자의 혈청을 직접 이용하였을 때와 유사하게 내피세포에 기능 이상을 유도하는 환경을 조성할 수 있음을 확인함으로써 본 발명을 완성하게 되었다.
따라서 본 발명의 목적은, 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하며, 인독실 황산염(indoxyl sulfate), 크레아티닌(creatinine) 또는 최종 당화 독소(advanced glycation end products, AGE)를 더 포함할 수 있는 요독 복합체를 포함하는 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물, 내피세포에 요독 복합체를 처리하는 단계를 포함하는 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조방법, 상기 제조방법으로 제조된 요독성 혈관병증 내피세포 모델 및 상기 모델을 이용한 요독성 혈관병증 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법 및 독성 검사 방법을 제공하는 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 포함하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물을 제공한다.
또한 본 발명은 내피세포에 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 처리하는 단계를 포함하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조방법을 제공한다.
또한 본 발명은 상기 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조방법으로 제조된 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제공한다.
또한 본 발명은 (S1) 상기 요독성 혈관병증 내피세포 모델에 후보 물질을 처리하는 단계; (S2) 상기 후보 물질이 처리된 요독성 혈관병증 내피세포 모델에서 활성화 산소 생성 수준, 관형성 수준 및 세포사멸 수준을 평가하는 것으로 이루어진 군에서 선택된 1 이상의 수준을 측정하는 단계; 및 (S3) 상기 (S2) 단계에서 후보 물질이 처리되지 않은 요독성 혈관병증 내피세포 모델에 비해, 활성화 산소 생성 수준이 감소된 경우, 관형성 수준이 증가된 경우, 또는 세포사멸 수준이 감소된 경우, 상기 후보 물질을 요독성 혈관병증 억제 또는 치료 물질로 판정하는 단계를 포함하는, 요독성 혈관병증 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법을 제공한다.
또한 본 발명은 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조를 위한, 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 포함하는 배지 조성물을 제공한다.
또한 본 발명은 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물의 제조를 위한 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 포함하는 배지 조성물의 용도를 제공한다.
본 발명의 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 이용하면 여러 가지 요독 중에서도 상기 요독만으로도 실제 만성 신질환 환자의 혈청을 이용하였을 때와 유사하게 내피세포에 요독 환경을 간편하게 조성할 수 있다. 또한 본 발명의 요독 복합체를 사용하여 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제조하면 여러 가지 요독성 혈관병증의 징후를 반영할 수 있는 내피세포 모델을 제조할 수 있으며, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조 시 유도만능줄기세포에서 분화시킨 내피세포를 사용함으로써 환자의 유전적 특성이 반영된 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제조할 수 있어 이를 요독성 혈관병증 환자의 치료를 위한 맞춤형 약물 스크리닝, 신약 개발 및 독성 검사 등에 유용하게 사용할 수 있다.
도 1은 본 발명의 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제조하기 위한 유도만능줄기세포를 나타낸 도이다.
도 2는 도 1의 유도만능줄기세포에서 분화시킨 내피세포를 나타낸 도이다.
도 3은 만성 신질환 환자에서 발생하는 체내 요독 환경을 확인하기 위하여 내피세포의 활성화 산소 생성 수준을 측정한 결과를 나타낸 도이다.
도 4는 만성 신질환 환자에서 발생하는 체내 요독 환경의 효과를 확인하기 위하여 내피세포의 세포사멸 수준을 측정한 결과를 나타낸 도이다.
도 5는 본 발명의 요독 복합체가 내피세포에 미치는 영향을 확인하기 위해 요독 복합체 처리 후 적용 4일째에 내피세포의 활성화 산소 생성 수준을 측정한 결과를 나타낸 도이다.
도 6은 본 발명의 요독 복합체가 내피세포에 미치는 영향을 확인하기 위해 요독 복합체 적용 후 2일째 및 4일째에 내피세포의 활성화 산소 생성 수준을 측정한 결과를 나타낸 도이다.
도 7은 본 발명의 요독 복합체가 내피세포에 미치는 영향을 확인하기 위해 요독 복합체를 4시간 동안 처리 후 내피세포의 세포사멸 수준을 측정한 결과를 나타낸 도이다.
도 8은 본 발명의 요독 복합체가 내피세포에 미치는 영향을 확인하기 위해 요독 복합체를 처리 후 control 1, 2, 4, 5, UA 1 및 UT 1 군에서 내피세포의 관형성 수준을 측정한 결과를 나타낸 도이다.
도 9는 본 발명의 요독 복합체가 내피세포에 미치는 영향을 확인하기 위해 요독 복합체를 처리 후 control 1, 3, UA 3, UT E, UT F 및 UT H 군에서 내피세포의 관형성 수준을 측정한 결과를 나타낸 도이다.
도 10은 본 발명의 요독 복합체를 내피세포에 처리하여 제조한 요독성 혈관병증 모델의 효용성을 확인하기 위해, 관형성 수준을 측정하여 말기 신부전 환자의 혈청(serum)과 본 발명 요독 복합체의 효과를 비교한 결과를 나타낸 도이다.
도 11은 본 발명의 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 이용하여 약물의 효과를 검증할 수 있는지 확인하기 위하여, SD-208 및 로살탄(losartan) 처리 후 내피세포의 관형성 수준을 비교한 결과를 나타낸 도이다.
본 발명은 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 포함하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물을 제공한다.
본 발명의 "요독 복합체" 란, 여러 가지 요독 중 요소 및 요산을 기본적인 구성으로 포함하는 요독 혼합물을 의미한다. 또한 본 발명의 요독 복합체는 만성 신질환 환자에서 발생하는 체내 요독 환경을 구현해 내기 위한 복합체로서, 내피세포에 요독성 혈관병증을 유발시킬 수 있는 요독 혼합물이다.
상기 요산은 0.55 내지 1, 바람직하게는 0.8 mM (13 mg/dL) 내지 1 mM (17 mg/dL) 농도로 요독 복합체에 포함될 수 있다. 요산이 0.55 mM (9 mg/dL) 미만으로 포함되면 내피세포의 활성화 산소 생성량이 증가하지 않으며 관형성 능력이 저하되지 않아 내피세포에서 만성 신질환 환자에서 발생하는 체내 요독 환경이 용이하게 구현되지 않는다. 또한 요산의 농도를 1 mM 을 초과하여 포함시키는 것은 만성 신질환 환자가 흔히 보이는 고요산혈증 (hyperuricemia)의 범위를 벗어나는 것으로 만성 신질환 환자에서 발생하는 체내 요독 환경 이상으로 내피세포의 과도한 손상을 유발할 수 있다.
상기 요소는 20 내지 55, 바람직하게는 25 mM (71 mg/dL)내지 50 mM (143 mg/dL) 농도로 요독 복합체에 포함될 수 있다. 요소가 상기와 같은 농도 범위로 요독 복합체에 포함되면 만성 신질환 환자에서 발생하는 체내 요독 환경을 더욱 효과적으로 구현해낼 수 있다.
상기 요독 복합체는 인독실 황산염(indoxyl sulfate) 또는 최종 당화 독소(advanced glycation end products, AGE)를 더 포함할 수 있으며, 포함할 수 있는 요독 종류는 이에 제한되지는 않는다. 상기 인독실 황산염은 0.3 내지 1.5 mM, 바람직하게는 0.5 내지 1 mM, 최종 당화 독소는 0.5 내지 15 mg/L, 바람직하게는 1 내지 10 mg/L 농도로 요독 복합체에 포함될 수 있다. 인독실 황산염 또는 최종 당화 독소가 상기와 같은 농도 범위로 요독 복합체에 포함되면 기본 구성(요소 및 요산)을 포함한 본 발명의 요독 복합체로 구현한 만성 신질환 환자에서 발생하는 체내 요독 환경에서 나타나는 수준을 더욱 증대시키거나 유지시킬 수 있다.
또한 상기 요독 복합체는 크레아티닌(creatinine)을 더 포함할 수 있으며, 상기 크레아티닌은 0.05 내지 1.5, 바람직하게는 0.1 mM (1 mg/dL)내지 1 mM (11 mg/dL) 농도로 요독 복합체에 포함될 수 있다. 크레아티닌이 상기와 같은 농도 범위로 요독 복합체에 포함되면 만성 신질환 환자에서 발생하는 체내 요독 환경을 더욱 효과적으로 구현해낼 수 있다.
상기 "요독성 혈관병증"은 만성 신질환으로 인해 농도가 상승된 혈중 요독 성분이 내피세포 기능 장애(endothelial dysfunction)를 유발함으로써 결국 동맥경화증이 촉진되는 특징을 보이는 질병이다. 만성 신질환에서는 여러 가지 요독 성분의 배설이 저하되어 체내 요독 수치가 높아지게 되며, 지속적인 신장 기능 감소에 따른 내피세포 기능 장애가 유발된다. 내피세포 기능 장애로 인한 혈관병증은 내피세포의 손상으로 유발되는 혈관질병이며 요독으로 인한, 혹은 요독으로 인한 질병에 의해 내피세포 손상을 유발하는 여러 가지 요독의 자극으로 인해 내피세포가 손상되어 나타난다.
본 발명의 "내피세포"는 유도만능줄기세포(induced pluripotent stem cells, iPSCs)에서 분화시킨 내피세포일 수 있으며 이에 제한되지는 않는다. 이와 같이 유도만능줄기세포에서 분화시킨 내피세포를 사용하는 경우, 유전적 특성이 반영된 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제조할 수 있다. 상기 유도만능줄기세포는 정상인 유래 또는 만성 신질환 환자 유래 유도만능줄기세포를 모두 포함할 수 있다. 만성 신질환 환자 특이 유도만능줄기세포 유래 내피세포는 요독성 혈관병증 중증도별 특성이 반영된 내피세포이므로, 이에 따라 환자의 혈관 합병증 정도에 따라 성격이 다른 내피세포를 이용할 수 있어 유전적 및 기능적으로 구별되는 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제조할 수 있다. 또한 이와 같은 모델은, 각 환자의 유전적, 기능적 특성에 적합한 약물을 스크리닝하고 각 환자에 대한 약물의 독성 유무를 검사하는데 유용하게 이용될 수 있다.
상기 "배지(culture media)"는 생체 외 실험실적 조건 (in vitro)에서 세포 성장 및 생존을 지지할 수 있게 하는 배지를 의미하고, 세포의 배양에 적절한 당 분야에서 사용되는 통상의 배지를 모두 포함한다. 상기 배지는 세포가 최소 증식 및/또는 생존하는데 필요한 필수 및 비필수 아미노산, 비타민, 에너지원, 지질 및 미량원소 등을 포함할 수 있다.
본 발명의 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 포함하는 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물을 이용하면, 여러 가지 요독 중에서도 상기 요독만으로도 실제 만성 신질환 환자의 혈청을 이용하였을 때와 유사한 요독 환경을 갖는 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 간편하고 효과적으로 얻을 수 있다.
또한 본 발명은 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조를 위한, 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 포함하는 배지 조성물을 제공한다.
또한 본 발명은 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물의 제조를 위한 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 포함하는 배지 조성물의 용도를 제공한다.
본 발명은 또한, 내피세포에 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 처리하는 단계를 포함하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조방법을 제공한다. 상기 내피세포는 유도만능줄기세포(induced pluripotent stem cells, iPSCs)에서 분화시킨 내피세포, 예컨대 만성 신질환 환자 특이 유도만능줄기세포 유래 내피세포일 수 있으며 이에 제한되지는 않는다. 상기 제조방법은 바람직하게는 in vitro 에서 수행될 수 있다.
내피세포에 본 발명의 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 처리하는 단계를 거쳐 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제조하면, 상기 요독만으로도 실제 만성 신질환 환자의 혈청을 이용하였을 때와 유사한 환경을 갖는 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 간편하고 효과적으로 제조할 수 있다. 본 발명 제조방법의 각 구성에 대한 설명은 상기 배지 조성물에 관한 기재와의 중복성을 피하고자 생략한다.
본 발명은 또한, 상기 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조방법으로 제조된 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제공한다. 상기 내피세포는 유도만능줄기세포(induced pluripotent stem cells, iPSCs)에서 분화시킨 내피세포, 예컨대 만성 신질환 환자 특이 유도만능줄기세포 유래 내피세포일 수 있으며 이에 제한되지는 않는다.
본 발명의 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조방법으로 제조된 요독성 혈관병증 내피세포 모델은 실제 만성 신질환 환자의 혈청을 이용하였을 때와 유사한 요독 환경, 예컨대 유사한 활성화 산소 생성 수준, 관형성 수준 및 세포사멸 수준을 가질 수 있으며 이에 제한되지는 않는다. 따라서 본 발명의 내피세포 모델은 본 발명의 요독 복합체를 사용하여 간편하게 요독성 혈관병증의 징후를 반영시킨 모델로서 이를 요독성 혈관병증 환자의 치료를 위한 약물 스크리닝 및 독성 검사에 효과적으로 사용할 수 있다.
본 발명은 또한, (S1) 상기 요독성 혈관병증 내피세포 모델에 후보 물질을 처리하는 단계; (S2) 상기 후보 물질이 처리된 요독성 혈관병증 내피세포 모델에서 활성화 산소 생성 수준, 관형성 수준 및 세포사멸 수준을 평가하는 것으로 이루어진 군에서 선택된 1 이상의 수준을 측정하는 단계; 및 (S3) 상기 (S2) 단계에서 후보 물질이 처리되지 않은 요독성 혈관병증 내피세포 모델에 비해, 활성화 산소 생성 수준이 감소된 경우, 관형성 수준이 증가된 경우, 또는 세포사멸 수준이 감소된 경우, 상기 후보 물질을 요독성 혈관병증 억제 또는 치료 물질로 판정하는 단계를 포함하는, 요독성 혈관병증 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법을 제공한다.
상기 (S1) 단계는 본 발명의 요독 복합체로 요독 환경이 조성된 요독성 혈관병증 내피세포 모델에 후보 물질을 처리하는 단계이다. 상기 (S1) 단계에서 "후보 물질"은, 만성 신질환으로 인한 내피세포 기능 장애로 유발되는 요독성 혈관병증을 치료, 예방 또는 개선할 수 있을 것으로 기대되는 물질로서 화학물질, 올리고뉴클레오타이드, 펩티드, 유전자, 단백질, 식품, 제형, 화합물, 조성물, 의약, 영양보조제, 건강관리제품 또는 음료 등의 물질을 제한 없이 포함한다. 또한 상기 "처리"는 후보 물질을 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물에 포함시키는 방법일 수 있으며 이에 제한되지는 않는다.
상기 (S2) 단계는 후보 물질이 처리된 요독성 혈관병증 내피세포 모델의 요독 환경 개선 여부를 확인하기 위해 여러 가지 수준 변화를 측정하는 단계로서, 활성화 산소 생성 수준, 관형성 수준 및 세포사멸 수준으로 이루어진 군에서 선택된 1 이상의 수준을 측정할 수 있으며, 이에 제한되지는 않는다. 상기 "측정"은 당 분야에 공지된 통상의 방법들로 수행될 수 있다.
상기 (S3) 단계는 (S2) 단계의 측정 결과, 요독성 혈관병증 내피세포 모델의 요독 환경을 개선함으로써 선별된 후보 물질을 요독성 혈관병증 억제 또는 치료 물질로 판정하는 단계이다. (S3) 단계에서는 상기 (S2) 단계에서 후보 물질이 처리되지 않은 요독성 혈관병증 내피세포 모델에 비해, 활성화 산소 생성 수준이 감소된 경우, 관형성 수준이 증가된 경우, 또는 세포사멸 수준이 감소된 경우, 상기 후보 물질을 요독성 혈관병증 억제 또는 치료 물질로 판정할 수 있다.
상기 내피세포는 유도만능줄기세포(induced pluripotent stem cells, iPSCs)에서 분화시킨 내피세포일 수 있고, 정상 유도만능줄기세포 또는 만성 신질환 환자 특이 유도만능줄기세포 유래 내피세포일 수 있으며 이에 제한되지는 않는다. 유도만능줄기세포에서 분화시킨 내피세포를 사용함으로써 유전적 특성이 반영된 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 이용하여 요독성 혈관병증 억제 또는 치료제를 스크리닝할 수 있다. 특히 상기 환자 특이 유도만능줄기세포에서 분화시킨 내피세포를 이용한 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 이용하게 되면, 환자의 혈관 합병증의 특성 및 정도에 따라 효과를 나타내는 요독성 혈관병증 억제 또는 치료 물질을 스크리닝할 수 있다.
이하, 본 발명을 실시예에 의거하여 보다 구체적으로 설명한다. 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.
실시예 1. 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조
실시예 1-1. 내피세포 분화
요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조를 위하여 우선, 정상 대조군의 유도만능줄기세포를 기존 문헌 (Gimbrone et al. Circ Res. 2016;118:620-636 / Chen et al. Nat Rev Cardiol. 2016;13:333-349 / Paik et al. Circ Res. 2018 Jul 9.Epub ahead of print)에서 입증된 방법으로 내피세포를 분화시켰다.
도 1에 정상 대조군 유도만능줄기세포를, 도 2에 정상 대조군 유도만능줄기세포에서 분화시킨 내피세포를 나타내었다.
실시예 1-2. 요독 복합체 종류 및 조성 결정
요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제조하기 위해서는 만성 신질환 환자에서 발생하는 체내 요독 환경(uremic milieu)을 구현해야 한다. 이를 실험적으로 구현하기 위해 임상적 의의를 고려하여 다음과 같이 여러 가지 조합의 요독 복합체(uremic toxin mixture)를, 분화시킨 내피세포에 적용시켜 각 조합의 요독 복합체가 내피세포에 끼치는 영향을 알아보았다. 요독성 혈관병증 모델 내피세포 제조를 위해 실험에 사용한 요독 및 요독 복합체 목록과 조성을 표 1 및 표 2에 나타내었다. 표 2의 모든 대조군 및 실험군으로 시행한 실험에는 배지(media)만 사용한 control 1군을 공통으로 포함하였다.
　요독 Conventional unit SI unit
요소질소(Urea nitrogen) 14.01 mg/dL 5 mmol/L
70.01 mg/dL 25 mmol/L
140.06 mg/dL 50 mmol/L
210.08 mg/dL 75 mmol/L
크레아티닌(Creatinine, Cr) 1.13 mg/dL 0.1 mmol/L
11.3 mg/dL 1 mmol/L
요산(Uric acid, UA) 4.2025 mg/dL 0.25 mmol/L
8.405 mg/dL 0.5 mmol/L
13.45 mg/dL 0.8 mmol/L
16.81 mg/dL 1 mmol/L
인독실 황산염(Indoxyl sulfate, IS) 　 0.5 mmol/L
최종 당화 독소(Advanced glycation end products, AGE) 1 mg/L, 10 mg/L 　
No 명칭 요소(mM) 크레아티닌(mM) 요산(mM) 인독실 황산염(mM) 최종 당화 독소(mg/L) NaOH(μL/mL)
1 Control 1(media only) 　 　 　 　 　 　
2 Control 2(normal physiologic levels) 5 0.1 　 　 　 　
3 Control 3 5 0.1 0.25 　 　 11
4 Control 4 5 0.1 0.25 　 　 　
5 Control 5 　 　 　 　 　 16
6 UA 1 　 　 0.5 　 　 　
7 UA 2 　 　 1 　 　 　
8 UA 3 5 0.1 0.8 　 　 　
9 Urea 50 　 　 　 　 　
10 Cr 　 1 　 　 　 　
11 IS 　 　 1 　 　 　
12 Uremic toxin mixture 1(UT 1) 50 1 　 　 　 　
13 Uremic toxin mixture 2(UT 2) 50 1 1 　 　 　
14 Uremic toxin mixture 3(UT 3) 50 1 1 0.5 　 　
15 Uremic toxin mixture 4(UT 4) 50 1 1 0.5 1 　
16 Uremic toxin mixture 5(UT 5) 25 1 1 0.5 10 　
17 Uremic toxin mixture 6(UT 6) 50 1 1 0.5 10 　
18 Uremic toxin mixture A(UT A) 25 1 0.5 　 　 　
19 Uremic toxin mixture B(UT B) 25 1 1 　 　 　
20 Uremic toxin mixture C(UT C) 50 1 0.5 　 　 　
21 Uremic toxin mixture D(UT D) 50 1 1 　 　 　
22 Uremic toxin mixture E(UT E) 25 1 0.8 　 　 　
23 Uremic toxin mixture F(UT F) 25 1 0.8 1 　 　
24 Uremic toxin mixture G(UT G) 50 1 0.8 　 　 　
25 Uremic toxin mixture H(UT H) 50 1 0.8 1 　 　
비교예 1. 만성 신질환 환자에서 발생하는 체내 요독 환경 수준 측정
본 발명의 요독 복합체를 처리한 요독성 혈관병증 내피세포 모델의 효용성을 확인하기에 앞서, 본 발명 내피세포 모델에 실제 혈액투석 (hemodialysis)을 시행 받는 말기 신부전 환자의 혈청(serum)을 처리하여 만성 신질환 환자에서 발생하는 체내 요독 환경 수준 측정 결과를 확인함으로써 이후 본 발명 요독 복합체와의 효과를 비교하고자 하였다. 상기 말기 신부전 환자의 혈청은 삼성서울병원에서 혈액투석을 시행 받고 있는 환자의 혈청을 이용하였다 (삼성서울병원 IRB file number 2016-11-025).
비교예 1-1. 내피세포의 활성화 산소(reactive oxygen species, ROS ) 생성량 측정
본 발명 내피세포 모델에 환자의 혈청을 처리한 후 ROS-Glo TM H 2O 2 assay kit (Promega, catalog number G8820)를 이용하여 설명서에 따라 활성화 산소 생성 수준을 측정하였으며 이에 대한 결과를 도 3에 나타내었다.
도 3에 나타낸 바와 같이, 정상 혈청에 비해 혈액투석 환자의 혈청이 내피세포의 활성화 산소 생성을 유의하게 증가시키는 것을 확인하였다.
비교예 1-2. 내피세포의 세포사멸( apoptosis ) 수준 측정
본 발명 내피세포 모델에 환자의 혈청을 처리한 후 Caspase-Glo　 3/7 assay systems kit (Promega, catalog number G8091)를 이용하여 설명서에 따라 내피세포의 세포사멸(apoptosis) 수준을 측정하였으며 이에 대한 결과를 도 4에 나타내었다.
도 4에 나타낸 바와 같이, 환자의 혈청을 24시간 동안 처리한 내피세포에서 세포사멸이 유의하게 촉진되는 것을 확인하였다.
따라서 본 실시예의 결과를 통해 내피세포 모델에 실제 만성 신질환 환자의 혈청을 처리하였을 때 활성화 산소 생성 수준 및 세포사멸 수준이 증가하는 것을 확인하였다.
실시예 2. 요독 복합체가 내피세포에 미치는 영향 확인 및 최적 요독 복합체 조성 확인
실시예 2-1. 활성화 산소 생성량 측정
표 2에 나타낸 요독 단독 물질 또는 요독 복합체를 적용시킨 내피세포 모델에서도 비교예 1에서 실제 환자의 혈청을 적용했을 때와 같이 체내 요독 환경이 조성되는지 확인하기 위해, 활성화 산소의 생성량을 측정하여 이를 도 5 및 6에 나타내었다. 요독 복합체 적용 4일째에 대한 결과를 도 5에, 적용 2일째 및 4일째에 대한 결과를 도 6에 나타내었다.
도 5에 나타낸 바와 같이, 일반 배지만이 첨가된 control 1 및 요소와 크레아티닌이 일반적인 생리 농도로 첨가된 control 2 과 비교하여, 요소와 크레아티닌을 고농도로 처리하여도 변화가 나타나지 않았으나(UT 1) 요산을 혼합하여 첨가할 경우(UT 2 내지 UT 6) 활성화 산소 생성량이 급증하는 것을 확인하였다. 또한 UT2 내지 UT6 에서의 결과를 보면, 인독실 황산염 또는 최종 당화 독소를 더 추가한 요독 복합체를 처리하여도(UT 3 내지 UT 6) 이들을 추가하지 않은 실험군(UT 2)과 유사하게 활성화 산소 생성량이 증가하는 것을 확인하였다.
따라서 유의한 활성화 산소 생성 증가에 있어서 요독 복합체에 요소, 크레아티닌 및 요산이 기본적인 구성으로 필요한 것을 확인하였다. 이에 추가적으로 인독실 황산염 또는 최종 당화 독소를 추가하면 활성화 산소 생성량을 더욱 증가시키거나 유사한 생성량 수준을 유지시킬 수 있음을 확인하였다.
또한 도 6에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 요독 복합체 기본 구성인 요소, 크레아티닌 및 요산을 포함한 control 3 과 비교하였을 때 요산의 농도를 0.8 mM 이상(UA 3) 포함한 실험군에서 유의한 차이가 나타나는 것을 확인하였다. 또한 UT F 및 UT H 실험군의 결과를 보면, 기본적인 구성인 요소, 크레아티닌 및 요산에 인독실 황산염을 더 첨가하여도 활성화 산소 생성량이 증가하는 것을 확인하였다.
실시예 2-2. 세포사멸( apoptosis ) 촉진 확인
또한 마찬가지로 표 2에 나타낸 요독 단독 물질 또는 요독 복합체를 적용시킨 내피세포 모델에서도 비교예 1에서 실제 환자의 혈청을 적용했을 때와 같이 체내 요독 환경이 조성되는지 확인하기 위해, 세포사멸 수준을 측정하여 도 7에 나타내었다.
도 7에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 요독 복합체(요소, 크레아티닌, 요산, 인독실 황산염)(UT H)를 4시간 동안 처리한 내피세포에서 세포사멸이 유의하게 촉진되는 것을 확인하였다. 한편 상기 요독 복합체 구성을 단독으로 처리한 군에서의 결과를 보면 요소(50 mM), 크레아티닌(1mM) 및 인독실 황산염(1mM)의 경우 단독으로 처리하여도 세포사멸이 유의하게 촉진되지 않는 것을 확인하였으며 요산의 경우에만 1mM로 첨가하였을 때 내피세포에서 세포사멸을 유의하게 촉진시킴을 확인하였다.
실시예 2-3. 관형성(tube formation) 능력 측정
또한 표 2에 나타낸 요독 단독 물질 또는 요독 복합체를 적용시킨 내피세포 모델에서도 실제 환자의 혈청을 적용했을 때와 같이 체내 요독 환경이 조성되는지 확인하기 위해, 관형성 수준을 다음과 같이 측정하여 비교하였다.
혈관 구조를 형성할 수 있는 내피세포의 기능적 이상 여부를 평가하기 위하여 관형성 능력을 측정하였는데, Matrigel (Corning, catalog number CB-40234)을 도포한 24 또는 12-well plate에 내피세포를 분주한 후 16-24 시간 배양한 후에 관형성 정도를 비교 분석하였다. 이에 대한 결과를 도 8 내지 도 10에 나타내었다.
도 8에 나타낸 바와 같이, 요산을 포함하지 않거나 요산을 0.8 mM 이상 포함하지 않은 실험군(control 1, 2, 4, 5, UA 1, UT 1)에서는 모두 내피세포의 관형성 능력이 잘 유지되는 것을 확인하였다.
또한 도 9에 나타낸 바와 같이, 요산을 0.8 mM 이상 포함한 실험군(UA 3, UT E)에서 관형성 수준이 억제되는 것을 확인하였으며, 인독실 황산염이 더 포함된 실험군(UT F, UT H)에서는 관형성이 강력하게 억제되는 것을 확인하였다.
따라서 상기 세 가지 수준 측정 결과를 살펴봤을 때, 실제 환자의 혈청을 적용했을 때와 같이 체내 요독 환경이 조성되는지 확인하기 위한 여러 가지 측정 수준들에서 공통적으로 유의한 결과를 나타내는 요독 복합체는 요소와 요산을 기본 구성으로 포함한 요독 복합체인 것을 확인하였다.
실시예 3. 요독성 혈관병증 내피세포 모델 효용성 확인
본 발명의 요독 복합체를 내피세포에 처리하여 제조한 요독성 혈관병증 모델의 효용성을 확인하기 위해, 관형성 수준을 측정하여 혈액투석 (hemodialysis)을 시행 받는 말기 신부전의 환자의 혈청(serum)과 본 발명 요독 복합체의 효과를 비교하였다. 이에 대한 결과를 도 10에 나타내었다.
도 10에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 요독 복합체(UT F, UT H)는 실제 환자 혈청의 효과와 유사하게 내피세포의 관형성 능력을 유의하게 억제시킴을 확인하였다.
따라서 본 발명의 요독 복합체가 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 제조하는데 효과적임을 확인하였다.
실시예 4. 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 이용한 약물 효과 검증 실험
본 발명의 요독 복합체를 처리하여 제조된 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 이용하여 약물의 효과를 검증할 수 있는지 확인하기 위하여, 정상 대조군 유도만능줄기세포 유래 내피세포에 본 발명의 요독 복합체 또는 말기 신질환 환자 혈청을 적용하였다. 그 후 SD-208(TGF-β 저해제)와 로살탄(losartan, 안지오텐신 수용체 차단제)를 처리하여 각각의 효과를 알아보기 위해 관형성 정도를 측정하여 도 11에 나타내었다. 본 발명의 요독 복합체(UT-F, UT-H, uric acid 3(UA 3)), 만성 신질환 환자의 혈청(patient 2, patient 4), 정상 대조군 혈청(control 1) 및 세포 배양액 단독(media only) 군에서 내피세포의 관형성 능력을 측정하여 비교한 결과는 다음과 같다.
도 11에 나타낸 바와 같이, 내피세포의 관형성 능력은 정상 대조군 혈청과 세포 배양액 단독 군에서 잘 유지되었고, 본 발명의 요독 복합체 및 만성 신질환 환자의 혈청 군에서는 관형성이 모두 억제됨을 확인하였다. 또한 상기 요독 복합체 및 말기 신질환 환자의 혈청 군에 SD-208 및 로살탄을 처리하였을 때, 모두 내피세포 관형성 억제가 완화되는 것을 확인하였다.
따라서 본 발명에서 선별한 요독으로 구성된 요독 복합체를 처리하면 요독성 혈관병증의 징후를 반영할 수 있는 내피세포 모델을 제조할 수 있으며, 실제 환자의 혈청을 사용한 것과 유사한 결과를 유도함으로써 본 발명의 요독 복합체를 처리하여 제조되는 요독성 혈관병증 내피세포 모델을 요독성 혈관병증 환자의 치료를 위한 약물 스크리닝에 사용 가능함을 확인하였다.

Claims (13)

  1. 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 포함하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 요산은 0.55 내지 1 mM 농도로 요독 복합체에 포함되는 것을 특징으로 하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 요소는 20 내지 55 mM 농도로 요독 복합체에 포함되는 것을 특징으로 하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물.
  4. 제1항에 있어서,
    상기 요독 복합체는 인독실 황산염(indoxyl sulfate) 또는 최종 당화 독소(advanced glycation end products, AGE)를 더 포함하는 것을 특징으로 하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물.
  5. 제4항에 있어서,
    상기 인독실 황산염은 0.3 내지 1.5 mM, 최종 당화 독소는 0.5 내지 15 mg/L 농도로 요독 복합체에 포함되는 것을 특징으로 하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물.
  6. 제1항에 있어서,
    상기 요독 복합체는 크레아티닌(creatinine)을 더 포함하는 것을 특징으로 하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물.
  7. 제1항에 있어서,
    상기 요독성 혈관병증은 만성 신질환으로 인한 내피세포 기능 장애로 유발되는 것을 특징으로 하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조용 배지 조성물.
  8. 내피세포에 요소(urea) 및 요산(uric acid)을 포함하는 요독 복합체를 처리하는 단계;를 포함하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조방법.
  9. 제8항에 있어서,
    상기 내피세포는 유도만능줄기세포(induced pluripotent stem cells, iPSCs) 유래 내피세포인 것을 특징으로 하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조방법.
  10. 제8항의 요독성 혈관병증 내피세포 모델 제조방법으로 제조된, 요독성 혈관병증 내피세포 모델.
  11. 제10항에 있어서,
    상기 내피세포는 유도만능줄기세포(induced pluripotent stem cells, iPSCs) 유래 내피세포인 것을 특징으로 하는, 요독성 혈관병증 내피세포 모델.
  12. (S1) 제8항의 요독성 혈관병증 내피세포 모델에 후보 물질을 처리하는 단계;
    (S2) 상기 후보 물질이 처리된 요독성 혈관병증 내피세포 모델에서 활성화 산소 생성 수준, 관형성 수준 및 세포사멸 수준을 평가하는 것으로 이루어진 군에서 선택된 1 이상의 수준을 측정하는 단계; 및
    (S3) 상기 (S2) 단계에서 후보 물질이 처리되지 않은 요독성 혈관병증 내피세포 모델에 비해, 활성화 산소 생성 수준이 감소된 경우, 관형성 수준이 증가된 경우, 또는 세포사멸 수준이 감소된 경우, 상기 후보 물질을 요독성 혈관병증 억제 또는 치료 물질로 판정하는 단계를 포함하는, 요독성 혈관병증 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법.
  13. 제12항에 있어서,
    상기 내피세포는 유도만능줄기세포(induced pluripotent stem cells, iPSCs) 유래 내피세포인 것을 특징으로 하는, 요독성 혈관병증 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법.
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